JP2018536406A - 目的分子を電気化学検出するためのシステム - Google Patents
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Abstract
Description
−金の電極上における、3’末端に固定化されたヘアピンDNAプローブ、及び
−DNAプローブのヘアピン構造を介して、前記電極に近接して位置する前記DNAプローブの5’末端に連結されたレドックスプローブ。
− レドックスプローブを電極表面から離すことを可能にするための、又はそれをマスクすることを可能にするためのDNAプローブに特異的な予備構造化(preliminary structuring)、及び
−各目的DNA分子に対するDNAプローブの構造適合化(structural adaptation)。
−導電性材料、
−前記導電性材料に共有結合される、正の官能基を有する少なくとも1つのナノ材料、
−少なくとも1つのレドックス分子、及び
−目的分子を標的とする少なくとも1つの一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ
を含み;
前記レドックス分子が、前記ナノ材料に共有結合しており;
前記オリゴヌクレオチドプローブが、前記ナノ材料又は前記レドックス分子に共有結合しており;
前記ナノ材料の正の官能基の数が、オリゴヌクレオチドプローブの数よりも多い。
この電気化学検出システムは、
−酸化還元電位が異なる少なくとも2種類のレドックス分子、及び
−少なくとも2種類の一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ(各プローブは、異なる目的分子を標的とする)
を含み、
同種類のオリゴヌクレオチドプローブは、同種類のレドックス分子に結合している。
この電気化学検出システムは、
−酸化還元電位が異なる2種類のレドックス分子、及び
−2種類の一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ(各プローブは、異なる目的分子を標的とする)
を含み、
同種類のオリゴヌクレオチドプローブは、同種類のレドックス分子に結合している。
この電気化学検出システムは、
−酸化還元電位が異なる3種類のレドックス分子、及び
−3種類の一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ(各プローブが、異なる目的分子を標的とする)、
を含み、同種類のオリゴヌクレオチドプローブが、同種類のレドックス分子に結合している。
−デンドリマー、好ましくはポリ(アミドアミン)型のデンドリマー、特に第2世代、第4世代、又は第6世代(それぞれ、G2、G4又はG6)のデンドリマー、
−金属粒子(例えば、金ナノ粒子)、
−磁性ナノ粒子(例えば、酸化鉄)、
−キトサンを主成分とするハイブリッドナノ材料、及び
−導電性ポリマー(場合により、正の官能基(例えば、ポリピロール、ポリアニリン、又はポリパラフェニレン)によって修飾された導電性ポリマー)。
−G2 PAMAMは、約2.9nmの直径を有し、16個の第1級アミン基を有し、
−G4 PAMAMは、約4.5nmの直径を有し、64個の第1級アミン基を有し、
−G6 PAMAMは、約6.7nmの直径を有し、256個の第1級アミン基を有する。
−疾患のインビトロ又はインビボ診断を可能にする、生物学的サンプル中における病原体(例えば、細菌、ウイルス、寄生虫、又はバイオマーカー(例えば、腫瘍学的バイオマーカー、アルツハイマー病バイオマーカー、パーキンソン病バイオマーカー))を検出すること、
−医薬品に対する少なくとも1つの病原体の耐性を同定すること、
−農業食品、薬学的サンプル、又は流出液における病原体又は毒素(例えば、サルモネラ属、ブドウ球菌属、アエロモナス属、大腸菌属、リステリア属、クロストリジウム属などの細菌毒素)を検出すること、及び
−特に、慢性及び/又は集中治療(例えば、化学療法又は抗凝固剤の服用)の枠組みの中で、体液中の少なくとも1つの医薬品の存在又は非存在をモニタリングすること。
i.前記電気化学検出システムと前記サンプルとを接触させる工程、及び
ii.少なくとも1つの病原体、少なくとも1つの毒素、又は少なくとも1つの目的医薬品を検出する工程。
前記方法は、以下の工程を含む:
(i)本発明による検出システムを、目的分子を含有することができるサンプルと接触させる工程、及び
(ii)前記目的分子に特異的な酸化還元シグナルの電気化学測定を行う工程。
(i)前記のような少なくとも2種類のレドックス分子と少なくとも2種類のオリゴヌクレオチドプローブとを含む検出システムを、前記目的分子を含むことができるサンプルと接触させる工程;
(ii)前記目的分子に特異的な酸化還元シグナルを測定する工程。
前記方法は、少なくとも2種類の目的分子を同時に検出することを可能にする。
−導電性材料、
−正の官能基を有するナノ材料、及び
−少なくとも1つのレドックス分子、
を含み、
前記ナノ材料は、前記導電性材料と前記レドックス分子との間に位置し、後者の2つに共有結合している。
−正の官能基を有するナノ材料で導電性材料を覆い、前記導電性材料と前記ナノ材料との間に共有結合を形成する工程;
−官能化もされている少なくとも1つのレドックス分子を用いて、正の官能基を有する前記ナノ材料を官能化する工程。
この方法は、
(i)上記の修飾された支持体を、目的分子を標的とする少なくとも1つの官能化されたオリゴヌクレオチドと接触させる工程;
(ii)前記修飾された支持体と前記官能化されたオリゴヌクレオチドとの間に共有結合を形成する工程;
を含む。
(i)上記のような修飾された支持体、及び
(ii)目的の目的分子を標的とする少なくとも1つのオリゴヌクレオチド。
−酸化還元電位が異なる少なくとも2種類のレドックス分子、及び
−少なくとも2種類の一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ、
を含むことができ、
各種類のオリゴヌクレオチドプローブは、その酸化還元電位が相互に異なるレドックス分子に結合されている。
図1は、目的分子(特に、DNA分子)の非存在下及び存在下における、本発明による検出システムを示す。
図2は、目的分子(特に、アプタマー)の非存在下及び存在下における、本発明による検出システムを示す。
図3a及び3bは、使用されるナノ材料がG4 PAMAMである場合における、本発明による検出システムの特異性を示す。図3cは、前記システムによって検出することのできる濃度の範囲を示す。
図4a及び4bは、使用されるナノ材料が修飾された金ナノ粒子である場合における、本発明による検出システムの特異性を示す。図4cは、前記システムによって検出することのできる濃度の範囲を示す。
図5a及び5bは、使用されるナノ材料が、修飾された金ナノ粒子で結合されたG4PAMAMである場合における、本発明による検出システムの特異性を示す。図5cは、前記システムによって検出することのできる濃度の範囲を示す。
図6は、オリゴヌクレオチドプローブが合成DNA分子である場合における、特にC型肝炎ウイルスの検出での、本発明による検出システムの特異性を示す。
図7a及び7bは、オリゴヌクレオチドプローブがオクラトキシンAに特異的なアプタマーである場合における、本発明による検出システムの特異性を示す。特に、図7bは、オクラトキシンA対オクラトキシンBに関する前記検出システムの選択性を示す。
図8は、本発明によるオクラトキシンAを検出するためのシステムの特異性を示す。このシステムにおいて、使用されるナノ材料は、レドックスプローブとしてのナフトキノンで修飾されたG2 PAMAMであり、そして、オクラトキシンAに特異的なアプタマーである。
図9は、キトサンで被覆され、オクラトキシンAを検出するためのナフトキノンレドックスプローブで修飾された磁性酸化鉄(Fe3O4)ナノ粒子を含有する、本発明による検出システムの特異性を示す。
図10は、キトサンのミクロスフェアを含み、オクラトキシンAを検出するためのナフトキノンレドックスプローブで修飾される、本発明による検出システムの特異性を示す。
−生成物
フェロセンFc(NHP)2は、当業者にとって公知の方法に従って合成される。
サイクリックボルタンメトリー(CV)
分析は、50mV.s−1のスキャン速度で、−0.2〜0.5Vの電位の範囲内で、5mMの[Fe(CN)6]4−/5mMの[Fe(CN)6]3−のペアを用いて、0.1MのKCl中で行う。
分析は、5mM の[Fe(CN)6]4−/5mMの[Fe(CN)6]3−のペアを用いて、0.1MのKCl中で行う。全てのインピーダンスは、100KHz〜0.1Hzまでの周波数の範囲内で、10Vの直流電位で、0.2Vに対するAg/AgClで得られる。
分析は、0.22μmの膜で濾過された(10mMのNa2HPO4、1.8mMのKH2PO4、2.7mMのKCl、及び137mMのNaClを含有する)PBS(pH=7.4)中において行い、そして、使用するまで4℃で保存する。SWV分析は、調整時間180秒、周波数25Hz、及び変調振幅20mVによって、−0.3〜0.4の電位の範囲内で行う。
分析は、0.22μmの膜で濾過された(10mMのNa2HPO4、1.8mMのKH2PO4、2.7mMのKCl、及び137mMのNaClを含有する)PBS(pH=7.4)中において行い、そして、使用するまで4℃で保存する。DPV分析は、45mVのパルス高及び0.05sのパルス長によって、50mV.s−1のスキャン速度で、0.3〜0.4Vの電位の範囲内で行われる。
−G4 PAMAMデンドリマーによるガラス状炭素電極の表面修飾
ガラス状炭素電極上のG4 PAMAMデンドリマーの共有結合は、0.5MのLiClO4を含有する水中において、0.0〜1.1の電位(V vs.(参照電極としての)Ag/AgCl)をスキャンすることによるCV法によって、50mV.s−1のスキャン速度でのサイクル中に生成される。反応中、作用電極及び対極は、200μlのG4 PAMAM(50μM溶液)を含む低容量のセル(BASi)中で分けられている。分子を表面に固定し、再蒸留水で電極を注意深く洗浄した後に、CV及びEIS分析が行われる。
2個のフタルイミジルFc(NHP)2基によって修飾されたフェロセンは、デンドリマーと結合し、その表面は修飾されている。この反応は、アセトニトリル中のフェロセンの1mM溶液中において、周囲温度で、1時間、電極を浸漬することによって行われる。非結合残基をアセトニトリル及び二重蒸留水で洗浄する。次いで、(PBS中で製造された)配列番号1の修飾されたssDNA−C6NH2プローブの10μM溶液中において、室温で、1時間、電極を浸漬する。次いで、電極を蒸留水及びPBS中ですすぎ、そしてフェロセンフタルイミドエステルを飽和させるために、周囲温度で、30分間、PBS溶液中のエタノールアミンの1mM溶液に浸漬する。次いで、検出システムを蒸留水及びPBSで洗浄し、使用するまで4℃でPBSに保存する。DNA検出システムの構築の各工程の後に、表面修飾はSWV法によって試験される。
表面に結合した配列番号1のssDNAプローブに相補的な15塩基のハイブリダイゼーションは、40℃、1時間、合成DNA溶液(配列番号2)中において、電極を浸漬することによって行われる。ハイブリダイゼーションに使用される異なる濃度は、100fM、1pM、10pM、100pM、1nM、10nM、及び100nMである。各インキュベーション後に、蒸留水及びPBSで電極を注意深く洗浄し、SWV法で電極を分析する。対照試験は、目的合成DNA分子(配列番号2)と同じ条件下(40℃、1時間)で、PBS中の非相補的なオリゴヌクレオチド(配列番号3)の1μMへの電極の浸漬が行われ、そしてインキュベートされる。PCRに由来するサンプルの検出に同じ条件を適用し、PCR後に得られる二本鎖DNAの脱ハイブリダイゼーションのために、90℃、5分間、サンプルを予め処理する。
a)配列番号2で表される配列の目的合成DNA分子の検出
配列番号2の配列の目的の合成DNA分子の検出は、SWV法によって行われる。検出システムは、DNA濃度(100fMと1nMとの間で変化させる)を含む溶液中において、連続的にインキュベートされる。各濃度について、SWVによる分析を行う。図3cは、目的DNAの各濃度と伴に、0.11Vにおけるフェロセンに相当する電流の増加を示す。この電流の変化は、目的合成DNA分子の濃度に比例する。
G4 PAMAM及び配列番号4で表される配列のオリゴヌクレオチドプローブを含む検出システムは、PCR(cPCR)に由来する411塩基からなる目的DNA分子を検出するための上記の方法に従って製造される。
−金ナノ粒子の修飾、及びその表面での結合
2g(0.008モル)のシスタミンジクロロ水和物を、20mlの5M NaOH(0.1M)に溶解し、10mlのCH2Cl2で抽出する。有機相を10mlの蒸留水ですすぎ、MgSO4で乾燥させ、真空下で濃縮する。再蒸留水に溶解したシスタミンを、最終濃度が50μMとなるように、1mlの金ナノ粒子(OD=0.4)の溶液に添加する。この溶液を、使用するまで4℃でインキュベートする。シスタミン濃度並びにインキュベーション時間は、紫外−可視分光分析及び動的光散乱による分析のための、修飾された非凝集金ナノ粒子のウェルを得ることを可能にするように、最適化された。
ガラス状炭素電極上のβ−アラニンの共有結合は、0.5MのLiClO4を含有する水中において、0.2〜1.1の電位(V vs.(参照電極としての)Ag/AgCl)を50mV.s−1のスキャン速度で飽和するまでの10サイクルで、スキャンすることによって、生成される。その反応の間において、作用電極及び対極は、β−アラニン10mM溶液の200μlを含む低容量のセル(BASi)中で分けられている。次いで電極を再蒸留水で慎重にすすぐ。エタノールアミンによる表面の飽和は、0.2〜1.1の電位(V vs.Ag/AgCl)を3サイクルスキャンすることによって、同じ条件下で行われる。この反応に使用されるエタノールアミンの濃度は、0.5MのLiClO 4を含有する水中で製造された1mMである。分子を表面に固定し更に再蒸留水で電極を注意深くすすいだ後に、EIS分析を行う。
2個のフタルイミジルFc(NHP)2基によって修飾されたフェロセンは、修飾されたAuNPs−NH2表面上に結合している。反応は、アセトニトリル中のフェロセンの1mM溶液中において、周囲温度で、1時間、電極を浸漬することによって行われる。非結合残基をアセトニトリル及び再蒸留水で洗浄する。次いで、(PBS中で製造された)修飾されたDNA配列番号1の10μM溶液において、室温で、1時間、電極を浸漬する。電極を蒸留水及びPBSですすいだ後に、電極は、フェロセンフタルイミドエステルを飽和させるために、PBS中のエタノールアミンの1mM溶液において、周囲温度で、30分間、浸漬される。次いで、検出システムを蒸留水及びPBSで洗浄し、そして、使用するまで4℃でPBSにおいて保存する。DNAプローブを構築する各工程の後に、表面修飾は、EIS法によってモニタリングされる。
相補的な目的合成DNA分子のその表面に結合したssDNAプローブへのハイブリダイゼーションは、配列番号2の目的合成DNA分子の溶液中において、40℃、1時間、電極を浸漬することによって行われる。ハイブリダイゼーションに使用される様々な濃度は、100fM、1pM、10pM、100pM、1nM、10nM及び100nMである。各インキュベーションの後に、蒸留水及びPBSで注意深く電極を洗浄し、次いで電極をDPV法により分析する。
a)配列番号2で表される配列の目的合成DNA分子の検出
目的DNA分子の検出は、SWV法によって行われる。検出システムは、100fMと1nMとの間で変化するDNA濃度を含む溶液中において連続してインキュベートされ、各濃度についてSWVによる分析が行われる。図4cは、相補的な目的DNAの各濃度での、0.11Vにおけるフェロセンに相当する電流の増加を示す。この電流の変化は、目的合成DNA分子(配列番号2)の濃度に比例する。
−G4 PAMAMデンドリマーによるガラス状炭素電極の表面の修飾
ガラス状炭素電極上のG4 PAMAMデンドリマーの共有結合は、0.5MのLiClO4を含有する水中において、0.0〜1.1の電位(V vs.(参照電極としての)Ag/AgCl)をスキャンすることによるCV法によって、50mV.s−1のスキャン速度でのサイクル中に生成される。反応中において、作用電極及び対極は、G4 PAMAMの50μM溶液を200μlを含む低容量のセル(BASi)中で分離されている。分子を表面に固定し、再蒸留水で電極を注意深く洗浄した後に、CV及びEIS分析を行う。
検出システムの構築の第一段階は、ガラス状炭素電極の表面上へのG4 PAMAMデンドリマーの電着である。電着は、50mV.s−1のスキャン速度でのスキャン中において、0.0〜1.1の電位(V vs.(参照電極としての)Ag/AgCl)をスキャンすることによるCV法によって、生成される。酸化反応中に、デンドリマーのアミン基は、炭素含有表面のC=C芳香族基と相互作用する−NH・+カチオンラジカルを形成する。
シスタミン二塩酸塩2g(0.013モル)を20mlの5M NaOH(0.1M)に溶解し、10mlのCH2Cl2で抽出する。有機層を10mlの蒸留水ですすぎ、MgSO4で乾燥させ、真空下で濃縮する。再蒸留水に溶解したシスタミンを、最終濃度が50μMとなるように、1mlの金ナノ粒子溶液(OD=0.4)に添加する。この溶液を、使用するまで4℃でインキュベートする。
G4 PAMAMデンドリマーによって修飾されたガラス状炭素電極にAuNPs−NH2を結合するために、グルタルアルデヒドがリンクとして使用される。G4 PAMAMデンドリマーで修飾した電極を0.5%グルタルアルデヒドの溶液に20分間浸漬し、注意深くすすいだ。次いで、100μlのAuNPs−NH2中において、周囲温度、2時間、電極をインキュベートする。様々なインキュベーション時間が試験され、2時間が、検出システムの良好な性能のための最適な時間である。再蒸留水で電極を慎重にすすぎ、CV及びEIS測定によって分析する。
2個のフタルイミジルFc(NHP)2基によって修飾されたフェロセンは、その表面が修飾されたAuNPs−NH2と結合している。この反応は、アセトニトリルのフェロセン1mM溶液において、室温、1時間、電極を浸漬することによって行われる。非結合残基をアセトニトリル及び再蒸留水で洗浄する。次いで、PBS中で製造したssDNA−C6NH2プローブの10μM溶液において、室温、1時間、電極を浸漬する。次いで、蒸留水及びPBSで電極をすすぎ、そしてフェロセンフタルイミドエステルを飽和させるために、PBSの1mMエタノールアミン溶液中において、周囲温度、30分間、電極を浸漬する。次いで、検出システムを蒸留水及びPBSで洗浄し、そして、使用するまで4℃でPBSに保存する。DNA検出システムを構築するための各工程の後に、表面修飾が、SWV法によってモニタリングされる。
目的合成DNA分子(配列番号2)の、その表面に結合したssDNAプローブ(配列番号1)へのハイブリダイゼーションは、目的合成DNA分子の溶液中において、40℃、1時間、電極を浸漬することによって行う。ハイブリダイゼーションに使用される様々な濃度は、100fM、1pM、10pM、100pM、1nM、10nM及び100nMである。各インキュベーション後に、蒸留水及びPBSで注意深く電極を洗浄し、SWV法で電極を分析する。対照試験は、目的DNA分子と同じ条件下(40℃、1時間)で、PBS中の配列番号3で表される配列の非相補的なDNA分子(1μM)に電極を浸漬することによって行われ、そして、インキュベートされる。同じ条件が、PCRに由来するサンプルを検出するために適用される。
a)目的合成DNA分子の検出
目的DNA分子(配列番号2)の検出は、SWV法によって行われる。検出システムは、100fMと1nMとの間で変化するDNA濃度を含む溶液中において、連続してインキュベートされ、各濃度についてSWVによる分析が行われる。図5cは、配列番号2の目的合成DNA分子の各濃度での、0.11Vにおける、フェロセンに相当する電流の増加を示す。この電流の変化は、目的合成DNA分子の濃度に比例する。
実施例1で述べた検出システムと同じ検出システムは、食品サンプル(例えば、ミルク又はワイン)中でのOTA(このマトリックスは、複雑である)の有無を検出するために、配列番号6で表される配列のアプタマープローブを用いて構築される。
−G2 PAMAMデンドリマーによるガラス状炭素電極の表面の修飾
ガラス状炭素電極上でのG2 PAMAMデンドリマーの共有結合は、0.5MのLiClO4を含有する水中において、0.0〜1.1の電位(V vs.(参照電極としての)Ag/AgCl)をスキャンすることによるCV法によって、50mV.s−1のスキャン速度でのサイクル中に生成される。反応中において、作用電極及び対極は、G2 PAMAMの50μM溶液の200μlを含む低容量のセル(BASi)中で分離されている。分子を表面に固定し、再蒸留水で注意深く電極を洗浄した後に、CV及びEIS分析を行う。
プロパン酸で変性されたナフトキノンは、デンドリマーと結合している。この反応は、1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)をカップリング剤として使用して、プロパン酸とデンドリマーの表面上のアミン官能基との間のペプチドカップリングによって行われる。
OTAは、製造された検出システムと1時間接触させ、次いでその表面を洗浄する。
上記の検出システムは、食品サンプル(例えば、ミルク又はワイン)中でのOTA(このマトリックスは、複雑である)の有無を検出するために、使用される。
実施例5で述べた検出システムと同じ検出システムが、食品サンプル(例えば、ミルク又はワイン)中でのOTA(このマトリックスは、複雑である)の有無を検出するために、ナノ材料としてキトサンによって修飾された磁性ナノ粒子で構築される。
実施例6で述べた検出システムと同じ検出システムが、食品サンプル(例えば、ミルク又はワイン)中でのOTA(このマトリックスは、複雑である)の有無を検出するために、ナノ材料としてキトサンによって修飾された磁性ナノ粒子で構築される
Claims (17)
- 目的分子を電気化学検出するためのシステムであって、
前記システムが、
−導電性材料、
−前記導電性材料に共有結合され、正の官能基を有する少なくとも1つのナノ材料、
−少なくとも1つのレドックス分子、及び
−目的分子を標的とする少なくとも1つの一本鎖オリゴヌクレオチドプローブ
を含み;
前記レドックス分子が、前記ナノ材料に共有結合しており;
前記オリゴヌクレオチドプローブが、前記ナノ材料又は前記レドックス分子に共有結合しており;
前記ナノ材料の正の官能基の数が、オリゴヌクレオチドプローブの数よりも多い;
ことを特徴とする、前記システム。 - 前記レドックス分子が、前記ナノ材料及び前記オリゴヌクレオチドプローブの両方に共有結合していることを特徴とする、請求項1に記載の電気化学検出システム。
- 前記システムが、
−少なくとも2種類のレドックス分子であって、これらのレドックス分子についての酸化還元電位が異なる、前記のレドックス分子;及び
−少なくとも2種類の一本鎖オリゴヌクレオチドプローブであって、各プローブが、異なる目的分子を標的とする、前記オリゴヌクレオチドプローブ;
を含み、
同種類のオリゴヌクレオチドプローブが、同種類のレドックス分子に結合していることを特徴とする、請求項2に記載の電気化学検出システム。 - 前記オリゴヌクレオチドプローブ及び前記レドックス分子が、それぞれ、前記ナノ材料に共有結合していることを特徴とする、請求項1に記載の電気化学検出システム。
- 前記の正の官能基を有するナノ材料が、下記の群:
−デンドリマー、好ましくはポリ(アミドアミン)型のデンドリマー、特に第2世代、第4世代又は第6世代のデンドリマー;
−金属粒子、例えば金ナノ粒子;
−磁性ナノ粒子、例えば酸化鉄;
−キトサンを主成分とするハイブリッドナノ材料;及び
−導電性ポリマー、場合により、正の官能基によって修飾された導電性ポリマー;
から選択されることを特徴とする、請求項1〜4のいずれか一項に記載の電気化学検出システム。 - 前記導電性材料が、カーボン、特に、カーボンナノチューブ、グラッシーカーボン、グラファイト、グラフェン又は金属から形成されていることを特徴とする、請求項1〜5のいずれか一項に記載の電気化学検出システム。
- 前記の正の官能基を有するナノ材料が導電性である場合において、前記導電性材料が前記システムには無いことを特徴とする、請求項1〜6のいずれか一項に記載の電気化学検出システム。
- 前記レドックス分子が、フェロセン、キノン、メチレンブルー、メタロポルフィリン、ビオロゲンを含む群から選択されることを特徴とする、請求項1〜7のいずれか一項に記載の電気化学検出システム。
- 前記オリゴヌクレオチドプローブが、DNA分子、RNA分子、タンパク質、又は毒素から独立して選択される少なくとも1つの目的分子を標的とすることを特徴とする、請求項1〜8のいずれか一項に記載の電気化学検出システム。
- 請求項1〜9のいずれか一項に記載の電気化学検出システムを製造するための修飾された支持体であって、
その修飾された支持体が、
−導電性材料;
−正の官能基を有するナノ材料;及び
少なくとも1つのレドックス分子;
を含み、
前記ナノ材料が前記導電性材料と前記レドックス分子との間に位置し、更に、そのナノ材料がその導電性材料及びそのレドックス分子に共有結合している、前記修飾された支持体。 - 請求項1〜9のいずれか一項に記載の電気化学検出システムを製造するためのキットであって、
そのキットが、
(i)請求項10に記載の修飾された支持体、及び
(ii)目的分子を標的とする少なくとも1つのオリゴヌクレオチド
を含む、前記キット。 - 請求項1〜9のいずれか一項に記載の電気化学検出システムを製造する方法であって、
その方法が、
(i)請求項10に記載の修飾された支持体と、目的分子を標的とする少なくとも1つの官能化されたオリゴヌクレオチドとを接触させること;
(ii)前記の修飾された支持体と前記の官能化されたオリゴヌクレオチドとの間に共有結合を形成すること;
を含む、前記方法。 - サンプル中における少なくとも1種類の目的分子を検出するための電気化学方法であって、
その電気化学方法が、以下の工程:
(i)請求項1〜9のいずれか一項に記載の検出システムと、前記目的分子を含有することのできるサンプルとを接触させる工程;
(ii)前記目的分子に特異的な酸化還元シグナルの電気化学測定
を含むことを特徴とする、前記電気化学方法。 - 工程(i)及び(ii)に加えて、工程(ii)の後に、検量線を基準とする前記の目的分子の定量分析を含むことを特徴とする、請求項13に記載の電気化学検出方法。
- サンプル中の少なくとも2種類の目的分子を検出するための電気化学方法であって、
その電気化学方法が、以下の工程:
(i)請求項3に記載の検出システムと、前記目的分子を含有することのできるサンプルとを接触させる工程;
(ii)前記目的分子に特異的な酸化還元シグナルを測定する工程;
を含むことを特徴とする、前記電気化学方法。 - 医薬品に対する耐性を同定し、かつ生体液中における医薬品の存在をモニタリングするための、疾患をインビトロ若しくはインビボ診断するのに用いる、請求項1〜9のいずれか一項に記載の電気化学検出システムの使用、又は請求項11に記載の前記システムを製造するためのキットの使用。
- 農業食品若しくは薬剤サンプル若しくは廃液中における病原体又は毒素の存在を検出するために用いる、請求項1〜9のいずれか一項に記載の電気化学検出システムの使用、又は請求項11に記載の前記システムを製造するためのキットの使用。
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