JP2018533728A - 薬物又は薬物の組み合わせに対する初代細胞集団の細胞応答性を試験するためのエクスビボの方法 - Google Patents

Abstract

本明細書で提示される発明は、初代細胞集団の人工環境、具体的には原発腫瘍細胞集団の人工腫瘍環境を産生する方法、及び、薬物又は薬物の組み合わせに対する初代細胞集団の細胞応答性を試験するためのエクスビボの方法におけるその使用に関する。本発明の方法は、人工腫瘍環境及び薬物での原発腫瘍細胞のインキュベーションを含み、原発腫瘍細胞集団の反応を分析する。人工腫瘍環境での原発腫瘍細胞のインキュベーションは、前記腫瘍細胞の生存率を増強し、及び／又は、より大きなレベルの腫瘍細胞増殖を誘発させ、そして結果的に、分析される薬物に関する試験の感度及び精度を増大させる。【選択図】なし

Description

本発明は、薬理学の分野、具体的には抗腫瘍薬物活性の評価に関する。

微小環境（ＭＥ）は、腫瘍細胞の生残、増殖、及び薬物耐性に決定的な影響を及ぼす（１）。ＭＥの役割は、ＭＥの成分を特異的に標的とする制癌剤の発見と開発と共に更に重要なものである（２）。これは、癌を処置する薬物のエクスビボの試験の障害となっている。これらエクスビボのアッセイにおいてＭＥを構成する因子の欠如は、多くの薬物の認識された効能に影響を及ぼす。この結果、エクスビボの結果とこれら薬物の臨床効果との相関性が欠如する。

様々なグループが、様々な成功の度合いで、これら障害の一部に試み且つこれを克服するために微小環境模倣アッセイを開発した。先行技術に開示されるそのような方法は、細胞要素を加える工程（３−５）、細胞外マトリクスの成分を加える工程（６、７）、及び／又は、可溶性サイトカイン／ケモカイン、又は腫瘍内微小環境に存在する非腫瘍細胞由来の分子のカクテルの追加を含む（８、９）。このような試みは幾らか成功しているが、本発明は、以前に試みられていない微小環境の成分を模倣する新たな方法を導入する。

慢性リンパ球性白血病（ＣＬＬ）は、非常に異質な生態及び臨床経過を持つ疾患の原型であり；これは最も頻度の高い成人の血液系悪性腫瘍である（１０）。この明白な臨床的多様性は、疾患の細胞内因機構及び細胞外因機構の両方に関連付けられる。細胞内因機構の中で最も良く知られているものは、ゲノムの異常、後成的修飾、及びマイクロＲＮＡに関する。化学療法抵抗性を含むＣＬＬの挙動及び結果は、白血病のＭＥに存在する刺激にも依存する（１１）。外部刺激の重大な役割は、ＣＬＬ−ＭＥの相互作用に干渉する薬物、即ちクローン型Ｂ細胞受容体（ＢｃＲ）を介するシグナル伝達の阻害剤の著しい治療活性により示され；これら新たな薬物（イブルチニブとイデラリシブ）は、ＣＬＬ処置において主なパラダイム・シフトを構成する（１２、１３）。

多発性骨髄腫（ＭＭ）は、骨髄（ＢＭ）中のクローンの形質細胞（ｐｌａｓｍａｔｉｃ ｃｅｌｌ）の増殖を特徴とする悪性疾患である。ＭＭは未だに難病であり、米国と欧州において２番目に頻度の高い血液悪性腫瘍である。ＭＭ細胞は、強固なＢＭ微小環境依存性を有しており、抗アポトーシス性及び生残促進性のシグナル、及び薬物に対する耐性を付与する。ＭＭ腫瘍細胞は、特定のＢＭ微小環境内での可溶性因子と分子の相互作用により促進される高い増殖速度を持つ。

ここで、分離された原発腫瘍細胞を使用するエクスビボのアッセイへの人工環境（ＡＥ）の追加が、前記腫瘍細胞の生存率及び増殖に対し深刻な効果をもたらしたことを示す。これは、エクスビボのアッセイにおいて、原発腫瘍細胞の薬物、特に抗腫瘍薬物に対する応答性を改善する新たな方法を構成する。

癌患者から抽出した腫瘍サンプルは、非常に異質な環境のコンテキストにおいて腫瘍細胞を含んでいる。この環境は、例えば骨髄、末梢血、又はリンパ節などの血液の組織サンプル中の、患者から抽出したサンプルの９９％を表し得る。これら原発腫瘍細胞を研究するために、この異質な環境の大半を取り除いて、研究されている残りの腫瘍細胞を濃縮することが、共通の慣習である。血液サンプルにおいて、これは、サンプル全体の１％にしかほぼ一致しない、白血球を含む分画を分離させる密度勾配により一般に実行される。一般に廃棄される密度勾配の他の主要な分画は、血漿分画及び赤血球分画である。これら廃棄された分画の両方を人工環境（ＡＥ）と称する。これら廃棄された分画は白血球にかなり関連しており、それらの廃棄は、白血球の生態の中で人工産物に繋がることもある。密度勾配の分離を実行することにより、及び、同じ又は異なる患者サンプルから分離された人工環境分画を原発腫瘍細胞に加えることにより、原発腫瘍細胞上の化合物の活性に対するこれら廃棄された分画の効果を調査した。

本発明の開示された方法は、原発腫瘍細胞に人工環境を加える。本発明は、先行技術を上回る様々な利点を有する。初代細胞上の化合物の活性は、エクスビボで分離された初代細胞を使用するアッセイにおいて人工的に変更される。潜在的な抗腫瘍薬物のアッセイも含まれる本発明の方法は、分離された細胞の微小環境の欠如を補う人工環境を加える。幾つかの以前のアッセイにおいて、全体のサンプルを使用したが、これは通常、大いに希釈される。全体のサンプルアッセイへのＡＥの追加は、サンプルのＭＥの初期の希釈により与えられた人工産物を補う。別の利点は、本発明の方法が原発腫瘍細胞の集団の生存率を増強するということである。付加的な利点は、本発明の方法が、以前に報告されなかったレベルにまで原発腫瘍細胞集団の増殖を促進するということである（１４）。これらの利点は、増殖を阻害する薬物を含む多くの薬物組成物の異なるインキュベーション時間及び試験を含む、多くの変動に対する原発腫瘍細胞集団の細胞の応答のエクスビボ分析を可能にする。更に、本発明の別の利点は、患者のインビボの微小環境をより良く模倣する様式で原発腫瘍細胞を分析する能力である。これは、微小環境を標的とする薬物、例えばイブルチニブとイデラリシブの場合には特に重要であり、その評価は微小環境を模倣するアッセイを恐らく必要とする。人工環境を用いた、これらの化合物及び該化合物と他の化合物との組み合わせの効果の調査は、分離された原発腫瘍細胞に基づいてアッセイで実際に存在する主な人工産物を防ぐ。本発明の方法は、それ故、薬物（複数可）が患者（複数可）にとって有益かどうかを判定するためのエクスビボの試験の能力を改善するという利点をもたらす。

本明細書で提示される発明は、初代細胞集団の人工環境（ＡＥ）、特に原発腫瘍細胞集団の人工腫瘍環境を産生する方法、並びに、薬物又は薬物の組み合わせに対する原発腫瘍細胞集団の細胞応答性を試験するための方法におけるそれらの使用に関する。細胞応答性の試験は、人工腫瘍環境及び試験される薬物での原発腫瘍細胞のインキュベーションを含み、原発腫瘍細胞集団の反応を分析する。人工腫瘍環境での原発腫瘍細胞のインキュベーションは、前記腫瘍細胞の生存率を増強し、及び／又は、より大きなレベルの腫瘍細胞増殖を誘発させ、そして結果的に、分析される薬物に関する試験の感度及び精度を増大させる。

本明細書にはまた、末梢血（ＰＢ）、骨髄（ＢＭ）、又はリンパ節（ＬＮ）のサンプルからＡＥの成分を得るためのプロセスも記載される。原発腫瘍細胞集団を安定させるために前記成分が使用される。ＡＥを構成する、これらの選択された成分は、ドナー（図１及び実施例１）から得た末梢血、骨髄、又はリンパ節から選択されるサンプルから分離及び／又は混合された成分であるが、白血球分画は除く（白血球の無いＡＥ）。

ここで、本発明の好ましい実施形態に対する詳細な言及を行い、その例を本明細書に提供する。本明細書中の開示は特定の例示された実施形態を指すが、これら実施形態は一例であり、限定的なものとして提示されるものでないことを理解されたい。以下の詳細な説明の意図は、典型的な実施形態について議論するものであるが、付随する請求項により定義されるように本発明の趣旨及び範囲内に含まれるものと同様の、実施形態の改良、変更、及び同等物を全て包含すると解釈されるべきである。開示された方法は、当該技術分野で従来使用される様々な医療処置と共に利用されてもよい。

人工環境（ＡＥ）を得る方法である。末梢血、骨髄、又はリンパ節のサンプルの成分は、密度勾配遠心分離により様々な成分部分へと分離される。白血球分画は廃棄され、血漿層及び包装された赤血球はＡＥを生成するために組み合わせられた。 ＡＥがＡＭＬ患者の新鮮且つ冷凍された原発腫瘍細胞間の結果の優れた相関性を可能にすることを示す。図２Ａは、２４時間（中が塗りつぶされた円）及び４８時間（中が塗りつぶされていない円）で７つの異なる薬物に関する新鮮且つ冷凍されたＡＭＬサンプルの曲線下面積（ＡＵＣ）間の相関性を表わす。中が塗りつぶされた円の異なる色彩強度は、異なる薬物を表わす。 ＡＥがＡＭＬ患者の新鮮且つ冷凍された原発腫瘍細胞間の結果の優れた相関性を可能にすることを示す。図２Ｂは、基礎レベル（上部パネル）で及び４８時間のインキュベーション後（下部パネル）にＡＥを加えた、又は加えていない、新鮮且つ冷凍されたＡＭＬ骨髄サンプルの生存率のパーセンテージを表す。 ＡＥがＡＭＬ患者の新鮮且つ冷凍された原発腫瘍細胞間の結果の優れた相関性を可能にすることを示す。図２Ｃは、ＡＬＬサンプル中の薬物について４８時間（左）及び７２時間（右）での用量−反応曲線を示す。実線は新鮮なサンプルを表わし、点線はＡＥで再構成された冷凍サンプル（血漿と赤血球の分画）を表わす。 原発腫瘍細胞集団を識別する細胞表面マーカーの使用を示す。アネキシン−Ｖを使用して、生存率とＣＦＤＡを評価し、増殖をモニタリングする。上部パネルＡは、Ｂ−ＣＬＬ細胞を識別するためのフローサイトメトリーによるゲーティング戦略を表わす。中央パネルＢは、アネキシン−Ｖの発現に応じたアポトーシス性Ｂ−ＣＬＬ細胞と生存可能なＢ−ＣＬＬ細胞と間の識別を表わす。下部パネルＣの右及び左は、ＣＦＤＡ発現に応じて増殖する集団を識別するための一例を表わす。 最良のサイトカインプロトコルを判定するための、ＮＰＢ細胞、ＮＢＭ細胞、及び＋／−ＨＳ−５細胞に由来するＡＥでの生存率及び増殖を示す。中央値の応答は、７２時間又は９６時間で、ＮＰＢ、ＮＢＭ、＋／−ＨＳ−５の細胞株（０、１：１０、１：１００）の何れかのＡＥで試験され、インキュベートされる、各条件に関する５つのＣＬＬ原発腫瘍サンプルについて示される。これら条件は、３つのサイトカインの組み合わせ（ｓＣＤ４０Ｌ＋ＩＬ−２、ＣｐＧ＋ｓＣＤ４０Ｌ、ＣｐＧ＋ＩＬ−２）、加えて対照について試験される。 図４の最良の条件を使用するＮＰＢ及びＣＬＬＰＢに由来するＡＥでの生存率及び増殖を示す。５つのドナーのＡＥをＣＬＬ原発腫瘍サンプル中で試験した。図５は、ＡＥの混合物と共にＣｐＧ＋ＩＬ２（左のパネル）又はＨＳ−５＋ＣｐＧ＋ＩＬ２（右のパネル）を追加したＣＬＬサンプルの、生存率（上部パネル）又は増殖（下部パネル）のパーセンテージを表す。対照サンプルは、ＣｐＧ＋ＩＬ２を加えた又は差し引いた、ＡＥの無いＣＬＬ原発腫瘍サンプルを指す。 サイトカインを含む又は含まない様々なＡＥ条件を使用する生存率及び増殖を示す。４つのＣＬＬ原発腫瘍サンプルを使用し、健康なドナー（ＮＰＢ）のＡＥ及びＣＬＬを患うドナー（ＣＬＬ ＰＢ）のＡＥを試験してデータを比較する。 ヒト血清（ＨＳ）対ウシ血清（ＦＢＳ）を示す。アッセイ系に対する血清の効果を判定するために、３つのＣＬＬサンプルを、２つの濃度（１０及び２０％）でＦＢＳとＨＳの両方を使用する４つの異なる血清条件で試験した。Ｘは対照を指し、円はＣｐＧ＋ＩＬ２の組み合わせに相当する。垂直なエラーバーはＳＤの生存率に相当し、水平なエラーバーはＳＤの増殖に相当する。生存率と増殖に対する効果を報告する。 最良のサイトカインプロトコルを判定するためにＣＬＬＰＢ＋／−ＨＳ−５細胞を使用する生存率と増殖を示す。２０のＣＬＬサンプル中で試験したサイトカインの組み合わせはそれぞれ、生存率と増殖に関する中央値の応答により表わされる。数は、表２に示されるサイトカインの組み合わせに相当する。 ３つの異なる骨格刺激（ｓＣＤ４０Ｌ＋ＣｐＧ、ｓＣＤ４０Ｌ＋ＩＬ２１、ＣｐＧ＋ＩＬ２）によりグループ化される、表２の２４のサイトカインの組み合わせの生存率及び増殖を示す。各条件につき３つの異なる骨格刺激に関する中央値の応答が示される。 ＡＥの存在下での初代ＣＬＬ細胞上で試験されたイブルチニブ及びイデラリシブの増殖抑制作用を示す。非増殖性（左のパネル）及び増殖性（右のパネル）細胞分画の両方におけるイブルチニブの用量反応曲線が示される。 ＡＥの存在下での初代ＣＬＬ細胞上で試験されたイブルチニブ及びイデラリシブの増殖抑制作用を示す。非増殖性（左のパネル）及び増殖性（右のパネル）細胞分画の両方におけるイデラリシブ（図１０Ｂ）の用量反応曲線が示される。 ＡＥの存在下での初代ＣＬＬ細胞上で試験されたイブルチニブ及びイデラリシブの増殖抑制作用を示す。図１０Ｃは、イブルチニブ（左のパネル）及びイデラリシブ（右のパネル）の非増殖性（ＮＰ、灰色の線）及び増殖性（ＰＲ、黒色の線）の細胞サブセットの中央値を表わす。 異なる試験条件での生存率及び絶対的なＣＤ３４芽細胞（ｂｌａｓｔ）回復を示す。図１１は、異なる時間でのインキュベーションにおける、７つの異なる細胞培養条件に加えて対照を用いた、ＭＤＳサンプルの生存率（上部パネル）又は絶対的なＣＤ３４細胞回復（下部パネル）のパーセンテージを表わす。数は、実施例１０で指定された条件を指す。 表３に示されるサイトカインカクテルを伴う４つのＢ−ＮＨＬ原発サンプル、及び通常のＢＭのＡＥにおける、生存率及び増殖を示す。中央値の応答は、４つのＢ−ＮＨＬ原発腫瘍サンプル中で試験された１５のサイトカインの組み合わせの各々における生存率及び増殖について示される。図１２Ａは７２時間のインキュベーションのデータである。塗りつぶされた正方形はＣＤ４０Ｌを含む組み合わせであり、塗りつぶされていない正方形はＩＬ２を含む組み合わせであり、円はサイトカインを含まない。 表３に示されるサイトカインカクテルを伴う４つのＢ−ＮＨＬ原発サンプル、及び通常のＢＭのＡＥにおける、生存率及び増殖を示す。中央値の応答は、４つのＢ−ＮＨＬ原発腫瘍サンプル中で試験された１５のサイトカインの組み合わせの各々における生存率及び増殖について示される。図１２Ｂは９６時間のインキュベーションのデータである。塗りつぶされた正方形はＣＤ４０Ｌを含む組み合わせであり、塗りつぶされていない正方形はＩＬ２を含む組み合わせであり、円はサイトカインを含まない。 サイトカインを含む又は含まない異なる試験条件での７つのＭＭ原発サンプルにおける生存率及び増殖を示す。原発ＭＭサンプルの生存率は、表４に要約された異なる試験条件下での増殖性（ＰＲ、塗りつぶされた円）及び非増殖性（ＮＰ、塗りつぶされていない円）の細胞の両方に示される。 ＡＥの存在下での原発ＭＭ細胞上で試験されたレナリドミドの増殖抑制作用を示す。図１４Ａは、４つ代表的なサンプルの非増殖性（ＮＰ、灰色の正方形）及び増殖性（ＰＲ、黒色の円）の細胞集団の生存率を示す。図１４Ｂは、４つ代表的なサンプルの非増殖性（灰色の線と正方形）及び増殖性（黒色の線と円）の生きたＭＭ腫瘍細胞の集団の両方におけるレナリドミドの用量反応曲線を表示する。

本発明は、原発腫瘍細胞の人工腫瘍環境を産生する方法と、薬物または薬物の組み合わせへの原発腫瘍細胞集団の細胞の応答性を試験するため、エクスビボでの方法における使用と、に関する。この方法は、エクスビボアッセイにおいて原発腫瘍細胞集団の増殖を増強および／または促進することを特徴とする。分離された原発腫瘍細胞は十分に分析することができず、というのも、これらは、インビボで腫瘍の生存および増殖を生体内で促進するのに重要な、特定の微小環境要素を欠くからである。

まず、アッセイ培地中の抗腫瘍薬物に、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）と診察された患者から分離された原発腫瘍細胞の応答性の評価のためのエクスビボ分析用のＡＥを組み込む方法を定義した。本開示は、ＣＬＬを中心とするものの、原発腫瘍細胞集団が血液学的悪性腫瘍または固形腫瘍からのものであっても、任意の原発腫瘍細胞集団に適用しうるであろう技術の発明を提示する。同様に、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）および多発性骨髄腫（ＭＭ）を含む、他の血液学的悪性腫瘍からの原発腫瘍細胞集団に対するＡＥの影響を実証することが本明細書に含まれる。

本発明はまた、患者のサンプルから分離された原発腫瘍細胞上での薬物の効果を判定（薬物の効果の分析および定量化）するための、エクスビボアッセイにおけるＡＥの使用を開示する。

微小環境とは、腫瘍が存在する環境であり、ここには、周囲の血管、免疫細胞、繊維芽細胞、間質細胞、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）、可溶性因子（例えば、腫瘍由来エキソソーム、シグナル分子、成長因子、マイクロＲＮＡ、ケモカイン、サイトカイン、および、腫瘍細胞または非腫瘍細胞由来の任意の可溶性の分子）が含まれ、これらはすべて腫瘍細胞動態に影響する。

人工環境（ＡＥ、ＡＥ分画とも称される）とは、白血球分画を除く、密度勾配遠心分離後の、ドナーからの末梢血、骨髄、またはリンパ節のサンプルから分離された分画または分画の混合物（白血球の無いＡＥ）である。残存する白血球は、なおＡＥ内に残留できるだろう。ＡＥは、血漿分画のみであってもよく、赤血球分画のみであってもよく、または任意の比率（例えば１：１、１：２、２：１など）の２つの分画の組み合わせであってもよい。

白血球の無いＡＥ：白血球がないか、または、白血球の残存する数がＡＥ１μｌ当たり１００未満と定義された、分画またはサンプル。

ドナーとは、生体サンプルを提供する人物を指す。当該人物は健康であってもよく、または、疾病（例えば癌）と診断されたことがあってもよい。生体サンプルは、例えば、血液、骨髄、リンパ節または腫瘍の生検標本であってもよい。

エクスビボとは、自然状態の変化を最小限に抑えながら、外部環境内の有機体からの組織または細胞の中またはその上で行われる実験または測定である。本発明では、疾患に罹患している患者または正常個体からの、インビトロでの初代ヒト細胞に参照し、この細胞は、直近に抽出、凍結保存または凍結して、その状態を保存することができる。いくつかの実施形態では、これらの細胞は薬物効果のインビトロでの評価のために解凍される。本特許明細書のために、「エクスビボ」および「インビトロ」という用語が区別されずに使用される。

血液学的悪性腫瘍（ＨＭ）とは、血液学的腫瘍とも呼ばれ、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫（例えばＢ細胞リンパ腫、びまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、マントル細胞リンパ腫、辺縁帯Ｂ細胞リンパ腫、バーキットリンパ腫、リンパ形質細胞性リンパ腫、ヘアリー細胞白血病）、慢性リンパ性白血病、急性骨髄性白血病、慢性骨髄白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫または急性リンパ性白血病を含む、世界保健機関の分類に従って定義される疾病の一群を指す。

固形腫瘍とは、血液、骨髄またはリンパ性細胞以外の体組織細胞の成長異常によって形成された腫瘍または病変からなる。固形腫瘍には、限定されないが、卵巣癌および直腸癌、肛門部の癌、胃癌、精巣癌、子宮癌、結腸癌、直腸癌、腎細胞癌、肝臓癌、非小細胞肺癌、小腸の癌、食道癌、黒色腫、内分泌系の癌、甲状腺の癌、副甲状腺の癌、副腎の癌、骨癌、膵癌、皮膚癌、頭部または頚部の癌、皮膚または眼内の悪性黒色腫、子宮癌、卵管の癌腫、脳幹神経膠腫、下垂体腺腫、カポジ肉腫、類表皮癌、扁平上皮癌、子宮内膜の細胞腫、子宮頸癌、膣癌、外陰癌、軟繊維の肉腫、尿道の癌、陰茎の癌、膀胱癌、腎臓または尿管の癌、腎盂の細胞腫、中枢神経系（ＣＮＳ）の腫瘍、原発性ＣＮＳリンパ腫、腫瘍の血管新生、脊椎軸腫瘍、前記癌の転移性病巣、またはその組み合わせ、が含まれる。

サンプルとは、患者サンプル、原発腫瘍細胞、分離された腫瘍細胞、初代細胞とも呼ばれ、これらすべてが、患者から抽出され、分析のために分離された初代細胞を指す。サンプルは、健康な個体、癌と診察された患者、または他の血液学的疾患と診断された患者からの初代細胞であってもよい。サンプルは凍結保存される場合とされてない場合がある。使用前に凍結保存されたサンプルを解凍しなければならない。

ＥｘｖｉＴｅｃｈとは、応答を評価するために、患者のサンプル上で直接、微小環境の刺激の状況において薬物および薬物の組み合わせの処置の薬理学的特性を有効にする、自動的かつ独自のフローサイトメトリープラットフォームである（１５）。

原発腫瘍細胞とは、生体組織（例えば骨髄、末梢血、リンパ節、脾臓または腫瘍生検標本）から直接採取された腫瘍細胞を指し、エクスビボでの成長のために分離され株化される。原発腫瘍細胞は予め抽出され凍結保存され、使用前に解凍されてもよく、凍結保存されることなく直近で抽出され使用されてもよい。

初代細胞集団とは、生体組織（例えば骨髄、末梢血、リンパ節、脾臓または腫瘍生検標本）から直接採取された細胞（非発病）を指し、エクスビボでの成長のために株化される。

細胞型を表す間質細胞集団が、インビボでの腫瘍微小環境に見られた。腫瘍微小環境は、いくつかの非腫瘍細胞型からなり、これらには、限定されないが、繊維芽細胞の細網細胞、ナース様細胞（ｎｕｒｓｅ−ｌｉｋｅ ｃｅｌｌｓ）、間葉系幹細胞、濾胞樹状細胞、内皮細胞および周皮細胞が含まれる。間質細胞は、初代細胞、または、ＨＳ−５、ＨＳ２７ａ、ＵＥ６Ｅ７Ｔ−２、ＮＫ−Ｔｅｒｔ、ＨＭＥＣ−１、ＫＵＳＡ−Ｈ１、Ｍ２１０Ｂ４、ＳＴ−２およびＫＵＭ−４を含むが、これらに限定されない初代間質細胞に由来する細胞であってもよい。

密度勾配遠心分離とは、血液、骨髄、またはサンプルを、個別の成分、例えば血漿、赤血球、顆粒球、単球の分画に分離するプロセスを指す。血液、骨髄、またはリンパ節のサンプルは、勾配培地（例えばＦｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ（登録商標）、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（登録商標）、Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ１０７７ＴＭ（登録商標）または他の同様の培地）上で重なっており、遠心分離後、各成分の分離された分画を除去できる（図１）。

血漿分画または血清分画とは、密度勾配遠心分離後に、血液、骨髄、またはリンパ節サンプルから得られた血漿である。図１で見られるように、これは上部の分画である。残存する白血球がなおこの分画に残留している可能性があるが、ＡＥ１μｌあたり白血球が１００未満の濃度であろう。血清は血漿であり、凝固因子は除去される。

赤血球分画とは、主に赤血球を含むＡＥ。末梢血、骨髄またはリンパ節のサンプルが、密度勾配遠心分離によって様々な成分部分へ分離される場合、図１で見られるように、赤血球は底部の分画である。残存する白血球がなおこの分画に残留している可能性があるが、ＡＥ１μｌあたり白血球が１００未満の濃度であろう。

可溶性因子とは、腫瘍微小環境の非細胞成分を指し、これには、腫瘍由来エキソソーム、シグナル分子、成長因子、ケモカイン、サイトカイン、マイクロＲＮＡ、および、腫瘍細胞または非腫瘍細胞由来の任意の可溶性分子が含まれうる（９，１６，１７）。これらの例には、限定されないが、インターロイキン（ＩＬ）−２、ＩＬ−４、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＩＬ−１３、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１、分化（ｓＣＤ）４０リガンドの可溶性クラスタ、免疫グロブリン（Ｉｇ）Ｍ、ＣｐＧ（非メチル化ＣｐＧジヌクレオチドモチーフを含む短い合成一本鎖ＤＮＡ分子）、Ｂ細胞活性化因子（ＢＡＦＦ）、増殖誘導リガンド（Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ Ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｌｉｇａｎｄ）（ＡＰＲＩＬ）、腫瘍由来エキソソーム（腫瘍微小環境の中に存在する腫瘍細胞由来の小胞）、が含まれうる。

種々の薬物とは、化学療法薬または細胞障害性薬物であり、細胞に対し有毒な化学製品を含み、細胞の複製または成長を妨害する薬剤（例えばブスルファン、シクロホスファミド、ミトキサントロン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、メルファラン、ビンクリスチン、ビンブラスチンおよびクロラムブチル）；標的化された抗癌療法薬であり、腫瘍の成長および進行に必要な特定の分子を妨害するように設計された薬物（例えばイマチニブ、ダサチニブ、ニロチニブ）；腫瘍溶解性薬物、すなわち腫瘍に侵入して自身を複製するウイルスで、それにより、癌を死滅させ、その効果を増幅するために免疫応答を喚起するもの（例えばＩｍｌｙｇｉｃとペプチケミオ）；免疫療法薬であり、免疫応答を誘導、増強、または抑制することによる疾患の処置するもの（例えばアレムツズマブ、オファツムマブ、リツキシマブ）；サイトカイン療法であり、サイトカインは疾病を処置するために使用されうる細胞シグナリングにおいて重要な、幅広いカテゴリーの小さいタンパク質（例えばインターフェロン（ＩＦＮα、ＩＦＮβ、ＩＦＮγおよびＩＦＮλ）およびインターロイキン（ＩＬ−２、ＩＬ−８、ＩＬ−２１）；腫瘍微小環境薬物、すなわち、腫瘍よりも微小環境を標的とする薬物（例えばイブルチニブおよびイデラリシブ）；共刺激分子の活性化剤、すなわち有効な免疫応答の進行にとって重要な共刺激分子を活性化する薬剤（例えば分化（ＣＤ）２８、ＯＸ４０、ＣＤ１３７、ＣＤ２７、のクラスタ、ヘルペスウイルス侵入メディエータ（Ｈｅｒｐｅｓｖｉｒｕｓ−ｅｎｔｒｙ ｍｅｄｉａｔｏｒ）（ＨＶＥＭ））；抑制分子の阻害剤、すなわち、システムのサイレンシング阻害剤により、応答を喚起する薬物（例えば、プログラム細胞死１（ＰＤ１）およびリンパ球活性化遺伝子３（ＬＡＧ−３）に対する抗体）。

測定されうるパラメータは、生存率、すなわち生細胞の測定値；増殖、すなわち、細胞の形成または発達；アポトーシス、すなわち、プログラム細胞死のプロセス；細胞不足、すなわち、壊死またはアポトーシスではないメカニズムによる細胞の損失；表面マーカー発現の変化、すなわち、ＣＤマーカーなどの細胞表面マーカーの出現または消失をモニタリングする；サイトカイン／ケモカイン産生の変化、すなわち、細胞集団によって産生されるこれらの分子のレベルを測定する。

３Ｄ細胞培養とは、生物学的細胞が成長すること、または３次元すべてにおいて周囲と相互作用することを可能にする、人工的に創出された環境（例えばスフェロイド構築物、細胞外マトリックスゲル、合成スキャフォールド、回転式細胞培養システム、または低／非接着性培養プラスチック（１５，１８，１９））である。

循環腫瘍細胞とは、腫瘍から抜け出し、癌患者の血流を通って移動する細胞である。

サンプル全体（例えば、末梢血全体、骨髄全体、またはリンパ節全体）とは、サンプルを全体的に使用することである。成分はサンプルから取り除かれず、分離されなかった。一例として、骨髄サンプルから分離されたリンパ球はサンプル全体とは見なされない。

本発明で開示された薬物または薬物の組み合わせの方法に対する、原発腫瘍細胞集団の応答性を試験するためのＡＥの使用には、本明細書に記載される先行技術のものを上回るいくつかの利点がある。１つの利点は、本発明の方法が原発腫瘍細胞集団の生存率を増強させるということであり、これにより、試験の期間および薬の長期的な活性についての対応する評価を延長させる。別の利点としては、この方法は、原発腫瘍細胞集団の増殖を、以前に報告されていないレベルにまで促進する（１４）ということである。これらの利点により、様々なインキュベーション時間および細胞増殖を阻害する薬物のような多くの薬物組成物を含む、原発腫瘍細胞集団の細胞応答のエクスビボ分析における多数の変数の使用が可能になる。別の利点は、患者の原発腫瘍細胞集団のインビボの微小環境をより厳密に模倣するような方法で、原発腫瘍細胞集団を分析できるということである。これは、評価に微小環境模倣アッセイを必要とする、微小環境を標的とする薬物、例えばイブルチニブおよびイデラリシブの場合には特に重要である。該方法の前述された特徴および利点と組み合わさり、本発明はまた、１つまたは複数の薬物が原発腫瘍の処置において患者（または複数の患者）にとって有益であるかどうかを決定するためのエクスビボ試験の能力を改善するという利点をもたらす。特定の実施形態では、この試験は、患者における所与の治療の有効性を決定するために使用することができる。

ある実施形態では、ＡＥ（例えば、血漿分画のみ、赤血球分画のみ、またはその両方であるが、白血球分画は常に除外する、すなわち白血球の無いＡＥ）は、薬物（複数可）に対する初代細胞の細胞応答性を試験する、エクスビボアッセイに加えられる。別の実施形態では、ＡＥ（例えば、血漿分画のみ、赤血球分画のみ、またはその両方であるが、白血球分画は常に除外する、すなわち無白血球ＡＥ）は、薬物（複数可）に対する原発腫瘍細胞の細胞応答性を試験する、エクスビボアッセイに加えられる。ある実施形態では、ＡＥは、残存する数がＡＥ１μｌ当たり１００未満の白血球を含んでいる。別の実施形態では、ＡＥ調製物中に存在する残存する白血球は、試験される原発腫瘍細胞と区別するために標識される。一実施形態では、原発腫瘍細胞は、原発腫瘍細胞と、ＡＥと、薬物（複数可）と、を含むインキュベーション混合物中でインキュベートされる。別の実施形態では、原発腫瘍細胞は、ＡＥと、１つ以上の可溶性因子（例えば、サイトカイン／ケモカインまたは非腫瘍細胞由来の分子）と、薬物（複数可）と、を含むインキュベーション混合物中でインキュベートされる。別の実施形態では、原発性腫瘍細胞は、ＡＥと、インビボ腫瘍微小環境において見出される細胞型を表すさらなる細胞集団の共培養物と、薬物（複数可）と、を含むインキュベーション混合物中でインキュベートされる。さらなる実施形態では、原発腫瘍細胞は、ＡＥと、１つ以上の可溶性因子（例えば、サイトカイン／ケモカインまたは非腫瘍細胞由来の分子）と、インビボ腫瘍微小環境において見出される細胞型を表すさらなる細胞集団の共培養物と、薬物（複数可）と、を含むインキュベーション混合物中でインキュベートされる。

ある実施形態では、ＡＥは、他の種からの成分を含むエクスビボアッセイ系に加えられる。これらの成分には、限定されないが、ウシ胎児血清、子ウシ血清、またはこれらに由来する成分が含まれる。一実施形態では、ＡＥは、様々な栄養素で補足された培地を含むエクスビボアッセイに加えられる。これらの培地には、限定されないが、ＲＰＭＩ−１６４０、ＡＩＭ−Ｖ、ＤＭＥＭとＩＭＤＭが含まれる。さらなる実施形態では、ＡＥは、固形腫瘍の微小環境構造を模倣するために構築された、エクスビボの３Ｄ細胞培養構築物で構成されたアッセイ系に加えられる。これは、例えば、スフェロイド、細胞外マトリックスゲル、合成スキャフォールド、回転式細胞培養システム内、または、低／非接着性培養プラスチック（１８−２０）上の一次組織または樹立細胞株の培養により達成される。

一実施形態において、インキュベーション混合物は、原発腫瘍細胞に対する薬物（複数可）の効果の分析前に、２時間から１４日の期限の間インキュベートされる。一実施形態において、インキュベーション混合物に添加された溶性因子は、限定されないが、腫瘍由来のエキソソーム、シグナル分子、成長因子、ケモカイン、サイトカイン、および腫瘍または非腫瘍細胞（９、１６、１７）に由来するいかなる可溶性分子を含むリストにあるものから構成される。これらの例は、限定されないが、ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＩＬ−１３、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１、ｓＣＤ４０Ｌ、ＩｇＭ、ＣｐＧ、ＢＡＦＦ、またはＡＰＲＩＬを含みうる。

一実施形態において、インビボ腫瘍微小環境において発見され、インキュベーション混合物に添加された細胞型の代表であるさらなる細胞集団は、限定されないが、以下のものに由来する初代細胞または細胞株のいずれかを含むリストから含まれる：細網線維芽細胞、ナース様細胞、間葉系幹細胞、濾胞樹状細胞、内皮細胞、および周皮細胞（５、２１、２２）。初代間質細胞に由来する細胞株は、限定されないが、ＨＳ−５、ＨＳ２７ａ、ＵＥ６Ｅ７Ｔ−２、ＮＫ−Ｔｅｒｔ、ＨＭＥＣ−１、ＫＵＳＡ−Ｈ１、Ｍ２１０Ｂ４、ＳＴ−２、およびＫＵＭ−４を含みうる。

好ましい実施形態において、ＡＥ分画は数人のドナーから採取され、全てのドナーは原発腫瘍細胞を提供する患者とは異なり、ここで全ての血漿分画はともにプールされ、適合する血液型からの赤血球がプールされ、ＡＥ内の患者間のドナー変動性を低下させた。別の実施形態において、ＡＥ分画は、原発腫瘍細胞を提供する患者とは異なる単独のドナーからの分画から成る。さらなる実施形態において、ＡＥ分画は、原発腫瘍細胞を提供した同じ患者から得られた分画から成る。

好ましい実施形態において、ＡＥは、試験される原発腫瘍細胞が抽出された患者と同じタイプの癌のドナー／患者から得られた分画から成る（例えばＣＬＬと診断された患者からの第１の腫瘍サンプルを試験するために、アッセイにおいて使用されるＡＥは、ＣＬＬと診断された１人以上の患者から得られた血漿分画および血清分画から成るだろう。）。別の実施形態において、ＡＥは健康的なドナーから得られた分画から成る。さらなる実施形態において、ＡＥは、試験される原発腫瘍細胞の癌とは異なる癌と診断されたドナーから得られた分画から成る。

一実施形態において、初代細胞サンプルに対応するＡＥは別々に保存され、それによって、血漿分画は−８０℃で冷凍することができ、赤血球分画は４℃でＣＰＤＡバッグ内に最大４５日間保存される。

好ましい実施形態において、初代細胞サンプルは、試験の前に凍結保存された。別の実施形態において、初代細胞サンプルは新たに抽出された。特定の実施形態において、凍結保存された初代細胞サンプルは、ＡＥと共に解凍される。好ましい実施形態では、凍結保存された初代細胞サンプルは、ＡＥと共に凍結保存される。初代細胞サンプルは、冷凍した後に任意の時間凍結保存することができた。一実施形態において、初代細胞サンプルは、冷凍した５日後から１年後まで凍結保存される。別の実施形態において、初代細胞サンプルは、冷凍した１年後から２０年後まで凍結保存される。ＡＥと共に凍結保存された初代細胞サンプルを再構成することによって、前記初代細胞のネイティブ環境により類似したサンプルが提供され、初代細胞の、生存率および／もしくは増殖、ならびに／または薬理学的特性の維持が向上する。

一実施形態において、第１の腫瘍サンプルは成人の癌患者から抽出された。別の実施形態において、第１の腫瘍サンプルは小児患者から抽出された。一実施形態において、第１の腫瘍サンプルは、癌のための前処置を受けていない癌患者から抽出された。別の実施形態において、第１の腫瘍サンプルは、癌のための１回以上の前処置を受けた癌患者から抽出された。さらなる実施形態において、第１の腫瘍サンプルは微小残存病変（ＭＲＤ）の患者から抽出された。

特定の実施形態において、原発腫瘍細胞は血液学的悪性腫瘍と診断された患者から得られる。血液学的悪性腫瘍は、限定されないが、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫（例えばＢ細胞リンパ腫、びまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、マントル細胞リンパ腫、辺縁帯Ｂ細胞リンパ腫、バーキットリンパ腫、リンパ形質細胞性リンパ腫、ヘアリー細胞白血病）、慢性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、または急性リンパ性白血病を含む。好ましい実施形態において、血液学的悪性腫瘍と診断された患者から原発腫瘍細胞は、末梢血液、骨髄、リンパ節、および脾臓から成る群から選択される。

別の実施形態において、原発腫瘍細胞は、固形腫瘍と診断された患者から抽出される。固形腫瘍は、限定されないが、卵巣癌、直腸癌、肛門部の癌、胃癌、精巣癌、子宮癌、結腸癌、直腸癌、腎細胞癌、肝臓癌、肺非小細胞癌、小腸の癌、食道癌、黒色腫、内分泌系の癌、甲状腺の癌、副甲状腺の癌、副腎の癌、骨癌、膵癌、皮膚癌、頭頸部癌、皮膚または眼内の悪性黒色腫、子宮癌、ファロピウス管の細胞腫、脳幹神経膠腫、下垂体腺腫、カポジ肉腫、類表皮癌、扁平上皮癌、子宮内膜の細胞腫、頚部の細胞腫、膣癌、外陰癌、軟組織の肉腫、尿道癌、陰茎癌、膀胱癌、腎臓癌もしくは尿管癌、腎盂癌、中枢神経系（ＣＮＳ）の腫瘍、中枢神経原発リンパ腫、腫瘍血管新生、脊椎軸腫瘍、前記癌の転移巣、またはそれらの組み合わせを含む。好ましい実施形態において、固形腫瘍からの原発腫瘍細胞は固形腫瘍の生検を介して得られる。別の実施形態において、固形腫瘍細胞は末梢血液のサンプルを介して抽出された循環腫瘍細胞である。一実施形態において、ＡＥを含むインキュベーション混合物中で試験された薬物（複数可）は、限定されないが、以下のカテゴリーから選択された１つ以上の治療剤から成る：化学療法、標的化された抗癌療法、腫瘍溶解性の薬物、細胞毒性薬、免疫療法、サイトカイン、微小環境を標的とする薬物、副刺激分子の活性剤、抑制分子の阻害剤、または細胞免疫療法。

一実施形態において、原発腫瘍細胞集団の細胞応答のエクスビボ分析は、限定されないが、以下のものの１つ以上の測定を含む：生存率、増殖、アポトーシス、細胞不足、表面マーカーの発現における変化サイトカイン／ケモカインの生産における変化、原発腫瘍細胞集団内で特定された１つ以上の細胞亜集団に対するこれらのパラメータの分析。

一実施形態において、ＡＥ（例えば血漿分画のみ、赤血球分画のみまたは両方）は、薬物（複数可）に対する、初代細胞すなわち腫瘍細胞でない細胞の細胞応答性を試験するエクスビボアッセイに加えられる。初代細胞は、限定されないが、自己免疫疾患、血液凝固異常、および貧血症を含む血液疾患と診断された患者から抽出されることもある。特定の実施形態において、疾患の処置が開始された後、原発腫瘍細胞は患者から抽出される。原発腫瘍細胞の細胞応答性を試験するエクスビボアッセイは、所定の処理が前記患者に対して効果的であるかどうかを判定するために使用されうる。一実施形態において、患者のサンプルは、処置の開始５、６、７、８、９、または１０日後に得られる。特定の実施形態において、患者からのサンプルは、処置を始めて７日後にイデラリシブを用いて処理されて得られたリンパ節生検標本に対応する。

一実施形態において、ＡＥ（例えば血漿分画のみ、赤血球分画のみまたは両方）は、開発中の薬物（複数可）に対する、健康的なまたは病的な初代細胞の細胞応答性を試験するエクスビボアッセイに加えられる。

一実施形態において、ＡＥ（例えば血漿分画のみ、赤血球分画のみまたは両方）は、臨床試験において試験されている薬物（複数可）に対する、初代細胞の細胞応答性を試験するエクスビボアッセイに加えられる。本実施形態において、結果から、その薬物が患者に潜在的に有用であるかどうか、かつその患者が臨床試験にとって優れた候補であったかどうかに関する情報を提供することができた。

本明細書中で使用されるＰＢ、ＢＭ、およびＬＮサンプルは、１８歳以上の成人の患者からのものであった。全ての患者は、各病院の倫理委員会により承認されたプロトコルを使用する研究への参加のための書面でのインフォームド・コンセントを与えた。サンプルは、Ｐｒｏｇｒａｍａ Ｅｓｐａｎｏｌ ｄｅ Ｔｒａｔａｍｉｅｎｔｏｓ ｅｎ Ｈｅｍａｔｏｌｏｇｉａ（ＰＥＴＨＥＭＡ）のグループからのＳｐａｎｉｓｈ Ｃｅｎｔｅｒｓ、およびＨｏｓｐｉｔａｌ Ｓａｎ Ｒａｆｆａｅｌｌｅ，Ｍｉｌａｎ，Ｉｔａｌｙにより提供された。

実施例１ − 密度勾配遠心分離による人工環境（ＡＥ）成分の調製
本発明において記載されるＡＥの成分を以下のように調製する：Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ１０７７（Ｓｉｇｍａ）をコニカル遠心管に添加する。ドナーからの末梢血液（ＰＢ）、または骨髄（ＢＭ）、またはリンパ節（ＬＮ）サンプルを、慎重にＨｉｓｔｏｐａｑｕｅ−１０７７の溶液上へと重ね、そして１５００ｒｐｍで４０分間遠心分離にかける。血漿分画を含む上部の層を先に取り除く。単核細胞（ＭＮＣ）、Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ−１０７７、および顆粒球層（白血球分画）を含む中心の層を取り除き、廃棄する。その後、赤血球（ＲＢＣ）または赤血球分画を含む下部の層を取り除く（図１）。血漿分画を、使用するまで−８０℃で貯蔵する。抗凝血性クエン酸リン酸デキストロースアデニン溶液（ＣＰＤＡ−１，Ｔｅｒｕｍｏ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を、ＲＢＣ分画（１５０μｌ ＣＰＤＡ／ｍｌ ＲＢＣ）に添加し、これを最大３５日の間４℃で貯蔵する。血漿および赤血球の分画を、ＡＥが細胞培地を補う全ての実験用に１：１の割合で混合する。

中間部分を勾配培地（ｇｒａｄｉｅｎｔ ｍｅｄｉａ）および白血球集団を取り除くために除外する。白血球を除外することによって、主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）の相互作用を心配することなく、他のドナーからの初代細胞のサンプルの試験においてＡＥ調製物を使用することを可能にする。白血球集団（例えばＴ細胞およびＮＫ細胞）一部上のＭＨＣ受容体は、白血球集団に自己由来ではないサンプルからの初代細胞を攻撃させることもある。したがって、ＡＥ調製物から白血球集団を除外することが必要である。しかしながら、実際問題として、記載された方法は富化プロセスである。全ての分画は残留数の白血球を含むこともあるが、その数は試験されている初代細胞集団に対する測定可能なＭＨＣの効果を持つには十分ではないこともある。血漿と赤血球からなるＡＥを使用して、初代細胞の生存率およびそれらの増殖する能力に影響を与えるエクスビボアッセイ系へ因子を加える。これらのＡＥ因子はまた、薬物がどのように有効性と潜在能力に関して初代細胞と相互作用するか、に影響を与えることもある。

血漿分画だけ使用する場合には、ＡＥは以下のように調製される：全ＰＢ、ＢＭ、またはＬＮのサンプルを、４℃で１５分間、２５００ｒｐｍで遠心分離機にかける。血漿分画を含む上部の層を取り除き、少量の分画に小分けし、使用するまで−８０℃で保管する。

実施例２ − ＡＥは、新鮮な原発性腫瘍細胞と冷凍の原発性腫瘍細胞との間の結果の優れた相関作用を可能にする
予め凍結保存されたサンプルの解凍おけるＡＥの役割を調査した。凍結保存の方法は、一般的に白血球を分離するために密度勾配に依存し、白血球分画だけが凍結保存される。ゆえに、これらの細胞が解凍されたとき、分離された白血球はそのＡＥを全く持たないという結果となる。したがって、これらの解凍された細胞上の化合物の活性を、ＡＥが存在しないことで、人為的に改変することができた。これらの凍結保存された細胞のＡＥを加減（ａｄｄ ｂａｃｋ）することができるのか、および、凍結／解凍のプロセスによって細胞毒性や抗増殖性の薬物の化合物の活性が変わるかどうかを調査した。新鮮なＢＭ ＡＭＬのサンプルを２つのパートに分けた；１つ目のパートでは、新鮮なサンプルとして、そのＡＥ中のいくつかの化合物の用量反応曲線を評価した。他のパートでは、凍結保存された白血球分画、−２０℃で冷凍された血漿分画、および血液バッグからのＣＰＤＡ内に４℃で保存されていた赤血球−顆粒球分画を分離する密度勾配を行った。２週後に、凍結保存されたガラス瓶は解凍された。また、各患者からの血漿と赤血球の分画は１：１比率で混合され、解凍された初代細胞へ添加した。これらの化合物の活性と同じ評価を繰り返し、再構成されたＡＥを用いて同じ患者の新鮮なサンプル対凍結されたサンプルにおける結果を比較した。

７つの様々な薬物の８つの濃度について試験し、２４時間および４８時間インキュベートし、また、インキュベーションの前の生存率の結果も得た。インキュベーションの後、赤血球を溶解し、白血病細胞を特定するために、白血球をモノクローナル抗体の組み合わせを使用して染色した。分析からアポトーシス細胞を除外するためにアネキシンＶも含ませた。曲線下面積（ＡＵＣ）を、各薬物および各疾患に対して算出した。図２Ａは、新鮮な及び冷凍の初代ＡＭＬ細胞を使用して、２４時間および４８時間（黒丸対白丸）で、各薬物（様々な色彩強度）に対する得られたＡＵＣ間の相関作用を示す。優れた相関作用が、各薬物および条件に対して得られた（ｒ^２＝０．６１８）。このことは、ＡＥが回復する限り、これらの化合物の活性は、これらの細胞を凍結し解凍することによる影響を受けなかったことを示す。したがって、再構成されたＡＥを有する凍結保存されたサンプルは、化合物の活性を評価するために使用することもできる。

図２Ｂは、同じＡＭＬサンプルが様々な分析を用いて処理されるときに得られた生存率の違いを示す。新鮮な骨髄全体中の白血球細胞の生存率と、凍結して解凍した同じサンプルから分離された白血球の生存率との比較を、５つのＡＭＬサンプルにおいて分析した（灰色の四角）。新鮮な骨髄全体中の白血球細胞の生存率と、凍結して解凍した再構成されたＡＥを有する同じサンプルから分離された白血球の生存率との比較を、１０のＡＭＬサンプルにおいて分析した（黒色の四角）。上のパネルは白血球細胞の最初の生存率を表わすが、下のパネルは４８時間のインキュベーション後の白血球細胞の生存率を示す。各条件の中央値、平均（Ａｖｇ）および標準偏差（ＳｔｄＤｅｖ）を、各グラフの下の表に示す。各条件に関する最初の生存率において、有意差は観察されない。しかしながら、骨髄全体と比較して、再構成されたＡＥ用いることなく分離した白血球が使用されるとき、生存率の低下が観察される。この低下は、ＡＥが分離した白血球へ一旦加えられると観察されなくなり、新鮮な骨髄全体で得られる能力に類似の非常によい生存率が得られる。

類似の結果が、ＡＬＬなどの他の血液学的悪性腫瘍に対しても観察された。図２Ｃは、ＡＬＬのサンプル中の化合物に関する４８時間および７２時間の用量反応曲線を示す。実線は新鮮なサンプルを表わし、点線は、患者（血漿および赤血球の分画）からの凍結保存されたＡＥで再構成された同じサンプルから解凍し分離したリンパ球を表わす。図２Ｃで見られるように両方の方法の間で有意差が観察されず、これによってＡＥを解凍されたサンプルへ後に加えて、類似の薬物感受性を得ることができることを示す。

実施例３ − 原発性腫瘍細胞集団における生存率および増殖を試験ための分析
原発性腫瘍細胞集団を試験する全ての分析に関して、Ｖｙｂｒａｎｔ（登録商標）ＣＦＤＡ ＳＥ Ｃｅｌｌ Ｔｒａｃｅｒ Ｋｉｔ（分子プローブ）は細胞増殖を測定するために使用される。ＣＦＤＡ ＳＥ（成分Ａ）を、原液として５ｍＭの濃度でジメチルスルホキシド（成分Ｂ）内に溶解し、次の使用まで−２０℃で保存する。本実施例において、新たに抽出し分離したＣＬＬ細胞を、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ（Ｓｉｇｍａ））中に１０ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌで調節した。ＣＦＤＡを、初代ＣＬＬ細胞の１ｍｌ細胞懸濁液へ加え、５μＭの最終濃度とする。ＣＦＤＡの添加後、連続的に振とうし光から保護した状態で、細胞を１０分間室温で攪拌してインキュベートした。インキュベーション期間の終わりに、細胞を培地中で再撹拌し、５分間氷上で維持した。その細胞を培養液で２回洗浄し、使用するまで４℃で維持した。このステップを、実験用調製における全ての他のステップ前に実施した。

その後、ＣＦＤＡで標識された初代ＣＬＬ細胞を９６ウェルプレートへと分配する。細胞は、１μｇ／ｍｌのオリゴデオキシリボヌクレオチド含有ＣｐＧモチーフ（ＯＤＮ２００６；Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ，Ｂｅｒｇｉｓｃｈ Ｇｌａｄｂａｃｈ，Ｇｅｒｍａｎｙ）と、５０ｎｇ／ｍｌのインターロイキン２（ＩＬ−２，Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ，Ｌｏｎｄｏｎ，Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｎ）と、のサイトカインの組み合わせで刺激した。刺激は、生存率および増殖の両方を制御するためには使用されない。インキュベーションの９６時間後、そのプレートを洗浄した。その後、２０μｌのアネキシンＶ ＣＦ Ｂｌｕｅ（Ｉｍｍｕｎｏｓｔｅｐ，Ｓａｌａｍａｎｃａ，Ｓｐａｉｎ）と、ＣＤ１９ ＰＣ７（Ｃｌｏｎｅ Ｊ４．１１９，Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ）と、ＣＤ４５−ＡＰＣ（ｃｌｏｎ ＨＩ３０，Ｉｍｍｕｎｏｓｔｅｐ，Ｓａｌａｍａｎｃａ，Ｓｐａｉｎ）との組み合わせを添加した。暗所において室温で１５分間インキュベーションした後洗浄ステップを実施し、そのペレットを、ＶｉｖｉａのＥｘｖｉＴｅｃｈプラットフォームにおける分析のために、８０μｌバッファー中で再撹拌する。

分析に関して、初代ＣＬＬ細胞を特定するために、抗体ＣＤ１９とＣＤ４５を使用し、アネキシンＶ染色によってアポトーシス細胞および生細胞を区別して生存率を試験し、ＣＦＤＡによって増殖をモニタリングすることを可能にする。図３Ａは、初代ＣＬＬ細胞が、前方散乱（ＦＳＣ）および／または側方散乱（ＳＳＣ）に基づくゲーティング戦略（ｇａｔｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｙ）、および様々な表面マーカー（ＣＤ１９とＣＤ４５）の発現を使用してどのように特定されるかを示す。図３Ｂは、Ａにおいて特定された初代ＣＬＬ細胞を表示するプロットを示すが、しかし、アネキシンＶ染色がアポトーシス細胞および生存細胞を区別する場合である。図３Ｃは、増殖する集団をＣＦＤＡ染色によってどのように特定するかを示す。左のパネルは、サイトカインへさらされておらず、なお単一の集団を示すＣＬＬ細胞の実施例を示す。右のパネルは、サンプルのある部分が増殖しており、サンプルのある部分がそうではないサイトカインへさらされたＣＬＬ細胞を示す。

実施例４ − ＨＳ−５間質細胞で共培養された、正常なＰＢまたはＢＭからＡＥを補足されたＣＬＬサンプル中の生存率および増殖
ＣＬＬと診断された患者からの原発腫瘍細胞に対する最適条件に関して試験するために、フローサイトメトリーベースのスクリーニング過程が使用される。試験される条件は表１に要約される。各アッセイにおけるＢ細胞に対するＨＳ−５間質細胞の比率が示される。

３つの凍結保存されたＣＬＬ原発腫瘍サンプルが、ＨＳ−５間質細胞とともに及びそれなしで試験される（無し、１：１０および１：１００）。ＨＳ−５（２３）細胞を組み込んだプレートは、１０^２または１０^３細胞／６０μｌ／ウェルで９６ウェルプレートに蒔かれ、２４時間インキュベートされて、細胞を接着させる。ＣＬＬ原発腫瘍細胞はＣＦＤＡで標識される。ＡＥに存在する残余の白血球は、ＣＦＤＡで標識されず、これによって、試験されている原発腫瘍細胞集団と区別され得る。

ＡＥ、血漿および赤血球分画は、ＰＢから３人およびＢＭから３人の、６人の健康なドナーから分離され、別々に試験される（サンプルはプールされなかった）。ＡＥは１μｌ／ウェルで適切なウェルに加えられる。３つのサイトカインの対も試験される：１μｇ／ｍｌのＣＤ４０リガンド（ｓＣＤ４０Ｌ、Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ， Ｌｏｎｄｏｎ， Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｎ）＋２５ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ， Ｌｏｎｄｏｎ， Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｎ）、１μｇ／ｍｌのｓＣＤ４０Ｌ＋１μｇ／ｍｌのＣｐＧ（ＯＤＮ２００６ Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ， Ｂｅｒｇｉｓｃｈ Ｇｌａｄｂａｃｈ， Ｇｅｒｍａｎｙ）および１μｇ／ｍｌのＣｐＧ＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２。刺激は、生存率および増殖の両方の制御として使用されない。各条件に対する複製（Ｒｅｐｌｉｃａｔｅ）プレートは、それぞれ３回繰り返して、７２時間および９６時間の２つの時間点に対してインキュベートされる。

実験は、ＣＬＬ患者のサンプルにおける悪性Ｂ細胞集団の生存率および増殖両方を試験した。全体的な結果は図４に示され、グラフはそれぞれ、中央値の生存率＋／−ＳＤ（標準偏差）として測定された、Ｙ軸上の生存率およびＸ軸上の増殖を示す。７２時間または９６時間の各時間点に関して、縦の列は、ＨＳ−５細胞（０）での共培養のない状態、または腫瘍細胞に対するＨＳ−５細胞の１：１０（１：１０）または１：１００（１：１００）比率での共培養を示している。３つの横の行はＡＥ条件を示し、一番上の行はＡＥを含まず。真ん中の行は正常なＢＭからのＡＥを含み、および一番下の行は正常なＰＢからのＡＥである。図４は、各サイトカインの組み合わせに対する中央値の応答を示す。増殖の最高レベルは、ＡＥを含んでいいないサンプルである（一番上の行）。これは、ＡＥ成分なしで分離された細胞に対する薬物の効果を試験することが、薬物の有効性を過大評価することになり得ることを示しており、これは、ＡＥが腫瘍細胞にも影響を与える成分を有し得るからである。薬物が主として増殖細胞に対して影響を与える場合、それはＡＥがない状態でより大きなエクスビボでの効果を有するだろう。多くの条件は生存率を改善したが、増殖を誘発することはより難しい。試験されたすべての条件のうち、ＣｐＧ＋ＩＬ−２サイトカインの対だけが、生存率および増殖両方に対してプラスの効果があった（円を参照）。これは、ＡＥなしでの又はＮＰＢ由来のＡＥを含む、ＨＳ−５細胞での１：１００の共培養の存在下において９６時間で見られる。ＮＢＭ由来のＡＥは、ＣｐＧ＋ＩＬ−２によって誘発された増殖を阻害するように見える。生存率および増殖両方を考慮する最良の全体的な条件は、ＣｐＧ＋ＩＬ−２およびＮＰＢ由来のＡＥが、１：１００でＨＳ−５細胞で共培養された、９６時間のインキュベーションであった（図４の右下）。

実施例５ − 健康なドナーからの及びＣＬＬ患者のサンプルからのＰＢ由来のＡＥを使用する生存率および増殖
本発明の方法を、健康なドナーおよびＣＬＬ患者両方のＰＢ由来のＡＥを評価するために使用した。この実験のための条件を、１μｇ／ｍｌのＣｐＧ＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２を使用して、ＨＳ−５共培養なしで及び１：１０のＨＳ−５共培養を用いて、各々７２時間および９６時間のインキュベーション時間でサンプルを刺激するように設定した。代表的な患者のサンプルからの凍結保存された原発性ＣＬＬ腫瘍細胞は、図５に示される。白棒は７２時間の結果であり、黒棒は９６時間の結果である。対照サンプルは、ＣｐＧ＋ＩＬ２をプラスした又はマイナスした、ＡＥのないＣＬＬ原発腫瘍サンプルを指す。原発腫瘍サンプルを、５人の健康なドナー（ＮＰＢ）から及び５人のＣＬＬドナー（ＣＬＬ）からのＡＥ（血漿および赤血球分画、１μｌ／ウェル）を用いて試験した。上のグラフの設定において見ることができるように、生存率のレベルは２つのタイプのＡＥ間でかなり近似しており、ＨＳ−５共培養の存在は、両方に対するレベルを幾らか低下させた。下のグラフは増殖のレベルを示し、最も大きな効果は、ＨＳ−５共培養およびＣＬＬ患者からのＡＥ（右下）を用いる条件である。これらの条件は、最大６０％までの腫瘍細胞増殖のレベルをもたらした。これは、最近報告された（１４）原発性ＣＬＬ細胞におけるわずか１５％の増殖レベルを十分に超えるものである。対象の１つの他のポイントは、類似したドナーサンプル内では、結果が様々であるということである。これは、ＨＳ−５共培養でＣＬＬ腫瘍細胞の生存能を大いに阻害した１つの特定のＡＥにおいて有意である（円を参照）。これは、得られるＡＥが、本明細書に見られる患者間の変動性を限定するために使用前に試験される必要があり、潜在的にプールされる必要があるということを示している。

実施例６ − 血漿のみ又は血漿＋赤血球でのプールされたＡＥを使用する生存率および増殖
本発明の方法を、ＣＬＬの凍結保存したサンプルにおけるＣＬＬまたは正常なサンプルからのＡＥの異なる成分の効果を評価するために使用した。４つのＣＬＬの冷凍したサンプルを、対照（黒丸）と一緒に１μｇ／ｍｌのＣｐＧ＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２（灰色の丸）で播種し、増殖（Ｘ軸、中央値の増殖＋／−ＳＤ）および生存率（Ｙ軸、および中央値の生存率＋／−ＳＤ）両方を試験した（図６）。丸からの縦および横の線は、両方のパラメータに対するエラーバーを表わす。６つの正常なＰＢ（ＮＰＢ）および６つのＣＬＬのＰＢの培地を、ＡＥ補足のソースとして使用した。高い患者間の変動性を回避するために、前に記載されたように、６つすべてのサンプルに対する血漿およびＲＢＣを、同じリザーバーに一緒に加え、割合（１：１）を維持した。３つの横の列は、９６時間のインキュベーションでの異なるＨＳ５間質細胞株の密度（１：１０、１：１００および無し）を示す。列はそれぞれ異なる細胞培養条件を表わす：
・ 第１の列（ＣＬＬ ＰＢ）：ＣＬＬからの末梢血から得られた血漿および赤血球（ＲＢＣ）から構成されたＡＥ。
・ 第２の列（ＮＰＢ）：正常な末梢血から得られた血漿および赤血球から構成されたＡＥ。
・ 第３の列（血漿ＣＬＬ ＰＢ）：ＣＬＬ ＰＢの血漿分画だけ（ＲＢＣなし）。
・ 第４の列（血漿ＮＰＢ）：ＮＰＢサンプルの血漿分画だけ（ＲＢＣなし）。
・ 第５の列（２ｘ ＣＬＬ ＰＢ）：ＣＬＬ ＰＢから得られた血漿および赤血球から構成されたＡＥの量の倍。
・ 第６の列（２ｘ ＮＰＢ）：ＮＰＢから得られた血漿および赤血球から構成されたＡＥの量の倍。
・ 第７の列（２ｘ 血漿ＣＬＬ ＮＰＢ）：ＣＬＬサンプルの血漿分画の二倍の量。
・ 第８の列（２ｘ 血漿ＮＰＢ）：ＮＰＢサンプルの血漿分画の二倍の量。

これらの条件は、ＣＬＬ ＰＢ（列１）からの血漿および赤血球から構成された加えるＡＥとＮＰＢ（列２）からの血漿および赤血球から構成された加えるＡＥとの間の明確な差を示している。ＣＬＬ ＰＢ＋サイトカインからのＡＥは増殖を増加させ（円を参照）、一方、正常な患者（ＮＰＢ）からのＡＥは、サイトカインの存在下でさえも増殖に対する効果がほとんどなかった。加えた、ＣＬＬ由来のＡＥに関して、血漿だけが使用されたときに、増殖（Ｘ軸）および生存率（Ｙ軸）両方が縮小されるため、血漿分画のみで構成される（列３および列７）よりもむしろ、血漿および赤血球（列１および列５）で構成されたＡＥを加えることに関連性があるようである。同様に加えられるＡＥの量で飽和効果があるように見える。列５−８におけるようにより高い濃度を加えることは、列１−４に見られる改善を超える著しい改善がなかったことを示していた。これらの実験は、特にＣＬＬ ＰＢ由来のＡＥで、増殖および生存率を改善することのＡＥの重要性を実証しており、成分の幾つかは、ＮＰＢと比較して、これらのパラメータを増大させるようである。

実施例７ − ヒト血清対ウシ胎児血清
原発性ＣＬＬ腫瘍細胞がインキュベーション過程の間に維持される培地は、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有している。アッセイ系に対するＦＢＳの効果を判定するために、３つのＣＬＬサンプルを、インキュベーション培地に対して４つの異なる血清条件、１０％のＦＢＳ、２０％のＦＢＳ、１０％のヒト血清（ＨＳ）、または２０％のＨＳにおいて試験した。ＣＬＬ腫瘍サンプルを、ＨＳ−５共培養なしで、または１：１０または１：１００の比率での共培養で試験し、１μｇ／ｍｌのＣｐＧ＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２で刺激した。ＡＥはＣＬＬ患者からの６つのＰＢサンプルに由来するものであった。６つのサンプルからの血漿および赤血球の分画を、１：１の比率で混合し、１μｌ／ウェルでウェルに加えた。結果は、ＨＳが、すべての条件においてＦＢＳよりも腫瘍細胞の生存率を著しく増加させることを示している（図７）。試験された各サンプルに対する中央値が示される。ＨＳおよびＦＢＳ両方を２０％に増加させることは、細胞の生存率の増加に結びつくが、より高い血清中濃度も増殖を阻害する。ＨＳ−５細胞株での共培養は、ＨＳサンプル中の生存率を低下させるが、増殖に必要とされる。生存率および増殖のための全体的な最良の条件は、１０％のＨＳである。

実施例８ − 表２の条件を使用して最良のサイトカインプロトコルを判定するためのＣＬＬＰＢ＋／−ＨＳ−５細胞を使用する生存率および増殖
本実験は、異なる細胞シグナル伝達を網羅する２４のサイトカインの組み合わせ（表２）の生存率および増殖の効果を評価する。使用されるサイトカインは以下の通りであった：ＣｐＧ（１μｇ／ｍｌ）、ＩＬ−２（５０ｎｇ／ｍｌ）、ｓＣＤ４０Ｌ（１μｇ／ｍｌ）、Ｂ細胞活性化因子（ＢＡＦＦ、１０ｎｇ／ｍｌ）、ＩｇＭ＋ＩｇＧ（ＢＣＲ、１０μｇ／ｍｌ）、ＩＬ−２１（インターロイキン−２１、５０ｎｇ／ｍｌ）。間質細胞、ＨＳ−５を、含めたときに１：１００の希釈で使用した。これらの実験のためのＡＥは、ＣＬＬを有する３人の患者のＰＢから得られた血漿および赤血球であった。各サンプルからのＡＥ分画を、培養培地に加える前に等しく分けて混合した。使用される培地は、ＡＥ（１．６％）＋ヒト血清（ＨＳ）１０％を含有していた。２０のＣＬＬの凍結保存した原発腫瘍サンプルを処理し、サイトカインの組み合わせのそれぞれで試験した。増殖（Ｘ軸）および生存率（Ｙ軸）両方を、各々のサイトカインの組み合わせに対して前に記載されたように試験した。表２に示された番号は、図８および図９に表わされる各組み合わせに対応している。

図８におけるドットプロットのデータポイントはそれぞれ、番号によって示された１つの特定のサイトカインの組み合わせに対応している。
図８は、各組み合わせのためのすべてのサンプルに対する中央値を反映しており、これは、ＣＬＬ ＰＢ ＡＥおよびＨＳ １０％と一緒にＣｐＧ（１μｇ／ｍｌ）＋ＩＬ２（５０ｎｇ／ｍｌ）＋ＨＳ５（１：１００）のサイトカインの組み合わせが、９６時間のインキュベーションで最大で６０％の生存率および４０％の増殖を提供する、最良の条件であることを示している。これは表内および図８上の組み合わせ２２である。

図９は、すべての前の２４のサイトカインの組み合わせをグ、異なる範囲のＣＬＬ増殖（Ｘ軸）および生存率（Ｙ軸）に改善すると前に報告された、３つの異なる骨格刺激にグループ化している。これらは、ｓＣＤ４０Ｌ＋ＣｐＧ、ｓＣＤ４０Ｌ＋ＩＬ−２１およびＣｐＧ＋ＩＬ−２に対応している。表２からの同じ組み合わせ番号を使用する図９は、各骨格刺激のためのサイトカインの組み合わせに対するすべてのサンプルの中央値を表わしている。図９は、細胞シグナル伝達の組み合わせＣｐＧ＋ＩＬ−２が、他の細胞シグナル伝達経路と比べた対照と比較して、より優れた生存率（７０％）はそのままに、より高い増殖（２０％）を誘発するための最良の経路であることを示している。

実施例９ − ＡＥの存在下での原発性ＣＬＬ細胞上で試験されたイブルチニブおよびイデラリシブの増殖抑制作用
凍結保存された末梢血（ＰＢ）単核細胞は、処置を必要としている１５人のＣＬＬ患者から提供された。これらの実験のためのＡＥは、ＣＬＬを有する３人の患者のＰＢから得られた血漿および赤血球であった。各サンプルからのＡＥ分画を、培養培地に加える前に等しく分けて混合した。試験される凍結保存されたＣＬＬ原発腫瘍細胞を、１．６％のＡＥ、１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のヒト血清、２％のＨＥＰＥＳ、１％の抗生物質、および１％のＬ−グルタミン２００ｍＭを補足したＡＩＭ−Ｖ（ＡＩＭ−Ｖ（登録商標）＋Ａｌｂｕｍａｘ（登録商標）（ＢＳＡ １Ｘ））において、ＨＳ−５細胞株の融合層（ｃｏｎｆｌｕｅｎｔ ｌａｙｅｒｓ）上で１００：１の比率で培養した。細胞を、以下の対のサイトカインの組み合わせで刺激した：５％のＣＯ_２を含有している加湿空気中の３７℃での９６時間の１μｇ／ｍｌのＣｐＧ ＯＤＮ＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−２。ＣＬＬ細胞の生存率（アネキシンＶ染色によって評価された）および増殖（ＣＦＤＡ色素によって評価された）は、患者にわたる作用の範囲を網羅する８濃度のイブルチニブ（Ｎ＝１５）およびイデラリシブ（Ｎ＝２１）で試験される。図１０Ａ−Ｃは、サンプルからの用量反応（ＤＲ）曲線を示し、ここで灰色線はそれぞれ、異なるサンプルを表わしている。Ｂ細胞の生存指数は、１００％で開始してＹ軸に表示され、Ｘ軸は、イブルチニブ（図１０Ａ）またはイデラリシブ（図１０Ｂ）の薬物濃度を表わしている。図１０Ａおよび図１０Ｂにおける左のパネルは、非増殖性（ＮＰ）生存腫瘍細胞における各薬物の効果を示し、右のパネルは、増殖性（ＰＲ）細胞分画における薬物の効果を示している。図１０Ａおよび図１０Ｂは、イブルチニブ（Ａ）およびイデラリシブ（Ｂ）両方がＮＰ分画に対してほとんど効果がないことを実証しており、これは薬物の直接的なアポトーシス促進活性が制限されることを示唆している。対照的に、増殖の強力な阻害が、増殖（ＰＲ）をほぼ完全にブロックする低いｎＭ範囲内で観察される。図１０Ｃは、イブルチニブおよびイデラリシブに対するＮＰ（灰色線）およびＰＲ（暗線）の細胞サブセット両方の中央値を示し、ＮＰ細胞対ＰＲ細胞の感受性の明確な差を反映している。これらの結果は、イブルチニブおよびイデラリシブなどの薬物の効果を予測するためにＡＥ、間質細胞およびサイトカインの追加とともにここで表わされる、ＣＬＬのインビボでの微小環境を再構築する必要性を反映している。

実施例１０ − 異なるテスト条件でのＭＤＳサンプル中の生存率および絶対的なＣＤ３４芽細胞回復
ＡＭＬおよびＭＤＳは両方とも、それらのＣＤ３４＋の発現によって特定され得る多能性造血幹細胞中の悪性腫瘍に関連付けられている。これらの細胞は、エクスビボで生存可能状態を維持することが難しいことが判明し、増殖のレベルは非常に低い。血清、培地またはＡＥの適切なソースは、ＣＤ３４＋細胞死を回避する及び特定のサイトカインでの増殖を可能にするために使用されるべきである。これらの実験では、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）の患者からのＢＭから得られた、凍結保存された初代細胞（単核）を試験した（図１１）。７つの異なる条件を、対照を加えて試験し、これは、対照が１００ｎｇ／ｍｌの幹細胞因子（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ， Ｌｏｎｄｏｎ， Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｎ）＋５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−３を含有しているＭｙｅｌｏＣｕｌｔＨ５１００培地（Ｓｔｅｍｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ， Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ， Ｃａｎａｄａ）を含有していたことを除くすべての条件で、それぞれ３つの時間、２４時間、４８時間および７２時間（各々三通りで）に対して行われた。下記の番号はそれぞれ、サンプルセットに加えられた異なる成分を示し、図１１上の番号にも対応しており、結果を示している：
１．ＨＳ５細胞株の上清の＋１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）。
２．ＨＳ５細胞株の上清の＋２０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）。
３．正常な骨髄（ＮＢＭ）からの＋１．６％のＡＥ（血漿および赤血球分画）。
４．＋１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のヒト血清（ＨＳ）。
５．＋２０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のヒト血清、ＲＰＭＩ＋２０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のウシ胎児血清（ＦＢＳ）。
６．ＨＳ５細胞株＋２０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のウシ胎児血清（ＦＢＳ）の＋高いコンフルエント。
７．ＨＳ５細胞株＋２０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）のウシ胎児血清（ＦＢＳ）の＋低いコンフルエント。

対照（ＣＯＮ）を、ＲＰＭＩ＋２０％のＦＢＳにおいてインキュベートした。生存率を、我々のＥｘｖｉＴｅｃｈ（登録商標）プラットフォームによるアネキシンＶおよび絶対的なＣＤ３４＋細胞数によって評価した。解析するべく、抗体ＣＤ４５−ＡＰＣ（Ｃｌｏｎ ＨＩ３０， Ｉｍｍｕｎｏｓｔｅｐ）およびＣＤ３４−ＰｅｒＣＰ（Ｃｌｏｎ５８１， Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ）が、原発性ＣＤ３４＋細胞を特定するために使用される。図１１における上のパネルは生存率を示し、下のパネルは絶対的なＣＤ３４＋芽細胞数である。ＡＥの追加を含む異なる条件は、両方のパラメータに影響する。これらの条件の多くは、対照と比較可能である細胞培養後の生存率と類似したパターンを示し、これは、ＣＤ３４＋数対ベースラインに対しても同じである。しかしながら、この特定のＭＤＳサンプルに関して興味深いことに、１つのみのＮＢＭ（番号３）からのＡＥの追加およびＨＳ５間質細胞株（高い及び低いコンフルエンス、番号６および７）での共培養は、ＣＤ３４＋生存率を減少させる。

実施例１１ ― 正常なＢＭに由来する異なるサイトカイン混合物およびＡＥを含む、４つのＢ−ＮＨＬ一次サンプルにおける生存率および増殖
ＣＬＬサンプルが示すように、異なるサイトカインの組み合わせおよび／またはＡＥを加えることで、Ｂ−非ホジキンリンパ腫（Ｂ−ＮＨＬ）一次サンプルの生存率または増殖を改善しうる（図１２ＡおよびＢ）。本実験では、アネキシンＶおよびＣＦＤＡを用い、２つの異なる時間、７２時間と９６時間、異なる条件で、前述したように生存率（Ｙ軸）と増殖（Ｘ軸）の両方をテストした。凍結保存された４つのＢ−ＮＨＬ原発腫瘍サンプルが含まれた。すなわち、２つの濾胞性リンパ腫（ＦＬ）および２つの脾辺縁帯リンパ腫（ＳＭＺＬ）である。表３に示されるように、生存率と増殖の最適化のために１５の異なる条件がテストされた。表３の各条件の数字は、図１２のサンプルに対応する。本実施例に使用された該ＡＥは、濃度１．６％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）の血漿と赤血球分画より成る。

分析に用いられる抗体は、ＣＤ１９−ＰＥ（クローン ＨＩＢ１９、ｅ−Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）、ＣＤ１０−ＰＥ−Ｃｙａ７（クローン ＨＩ１０ａ、Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ）、ＣＤ４５ＰＯ（クローン ＨＩ３０、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）およびＣＤ２０ ＡＰＣ（クローン Ｌ２７、Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）であり、初代リンパ腫細胞を特定するために使用される。４つのＢ−ＮＨＬサンプルに対する中央値の応答が、テストされた各条件ごとに示され、ドットプロットにおける各データポイントは、表３に示された組み合わせを表す。７２時間のインキュベーションの結果は図１２Ａに、また９６時間のインキュベーシについては図１２Ｂに示される。グラフのＹ軸は生存率を示し、Ｘ軸は増殖を示す。黒い正方形はＣＤ４０Ｌを含む組み合わせ、白い正方形はＩＬ２を含む組み合わせであり、円はサイトカインを含まない。ＣＬＬが示すように、様々な条件において生存率が保持されるが、最大の増殖を誘導するためにはＣｐＧ＋ｓＣＤ４０Ｌ（黒い正方形）が必要である。最良の全般的条件は、ＮＢＭのＡＥを含む（あるいは含まない）ＣｐＧ＋ｓＣＤ４０Ｌ＋ＨＳ １０％と共に９６時間インキュベーションした場合であった（図１２Ｂの右側の２つのデータポイント８と９）。双方ともに６０％を超えるレベルの生存率と増殖を示す。

実施例１２ ― ＭＭ一次サンプルの生存率および増殖
ＭＭ患者から得られた骨髄サンプルは、生存率と増殖速度を維持するための最良の条件を判定することを目的として評価された。様々なサンプルの処理が、腫瘍細胞の生存率および／または増殖にどのように影響するかを判定するために分析された。さらに、各サンプルはアッセイでの使用に先立ち、異なる処理を施された。条件は以下のとおりである：
Ａ．ＭＭ患者の骨髄全体＋ＦＢＳ（２０％）。
Ｂ．フィコール・ハイパック遠心法によって該ＭＭサンプルより分離された骨髄単核細胞＋自己由来血漿（５、１０、２０および５０％）および赤血球。
Ｃ．（塩化アンモニウム溶液とＢｕｌｋＬｙｓｉｓ Ｃｙｔｏｇｎｏｓによって）溶解された赤血球を含む骨髄全体＋自己由来血漿（２０％）。

ＲＰＭＩ１６４０、ＡＩＭＶ、ＤＭＥＭおよびＩＭＤＭを含む４種の培地がテストされた。２つのヒト間質細胞株（ＨＳ２７ａおよびＨＳ５）が、様々な比率（１：１、１：１０および１：１００）で加えられ、同様にテストされた。

患者のＢＭ全体は、各サンプル種別のために、前記のように得られ、調製された。Ｖｙｂｒａｎｔ（登録商標） ＣＦＤＡ ＳＥ Ｃｅｌｌ Ｔｒａｃｅｒ Ｋｉｔ（分子プローブ）が、実施例３において開示される細胞増殖を測定するために用いられた。該ＣＦＤＡプロトコルの後、全てのサンプルは、培地＋Ｚｅｌｌ Ｓｈｉｅｌｄ（Ｌａｂｃｌｉｎｉｃｓ）＋Ｌ−Ｇｌｕ（Ｌｏｎｚａ）＋２０％ＦＢＳにおいて再懸濁された。条件Ａのサンプルに変化はなく、条件Ｂのサンプルは自己由来ＭＭ血漿＋ＲＢＣが加えられた異なる濃度を有し、条件Ｃのサンプルは２０％の自己由来血漿を受け入れた。最終的な細胞濃度は２０ ｃｅｌｌｓ／μｌ〜７０ ｃｅｌｌｓ／μｌに及んだ。代替として、自己由来血漿は３つのＭＭ血漿のプールに置き換えることができる。

ＣＦＤＡ標識血漿細胞は、９６ウェルプレート（６０μｌ／ウェル）に分注され、３７℃で、５％のＣＯ_２において７２時間あるいは９６時間、インキュベートされた。分析のために、ＭＭ細胞（モノクローナル抗体による評価）は、生存率（アネキシンＶ染色）および増殖（ＣＦＤＡ）の両方についてテストされた。

９６時間のインキュベーシの後、イムノフェノタイピングを伴ったＣＦＤＡ染色が、ＶｉｖｉａのＥｘｖｉＴｅｃｈプラットフォームを使用する前述の方法に従い、血漿細胞の生存率（アネキシンＶ陰性）および増殖（ＣＦＤＡピーク）の両方の分析を許容した。

９６時間のインキュベーションの後に検知されたＭＭ細胞の数が、単一のウェルだけではあまりにも少なかったため、プールされたウェルのアッセイは、同一の手法で処理された４つのウェルからサンプルを得て行なわれた。したがって、大幅に多くの数の細胞を評価することができ、データの信頼度は増した。これに従って、また原始細胞計算に基づいて、各ウェルにつき１０００〜４０００の生病理学的ＭＭ細胞を蒔くためのサンプル量の計算が行われた。取得中に、４つのウェルのサンプルは、各処置のために得られ、それによって最小４０００および最大１６０００の生血漿細胞を得た。これらの実験の結果は、２０％の自己由来血漿を加えた患者の骨髄全体、あるいは少なくとも３つのＭＭ血漿（上記の条件Ｃ）のプールの使用、およびＩＭＤＭ培地の使用が、より良好なＭＭ細胞生存率とより高い増殖速度（データなし）を達成するための、最良の条件を提供したことを示す。さらに、２つのヒト間質細胞株（ＨＳ２７ａおよびＨＳ５）のいずれかの存在が、生存率と増殖の双方に負の効果を持つことが明らかになった。

フォローアップ実験が、本実験の設定条件における２つのサイトカイン、ＩＬ−６（インターロイキン６）およびＣｐＧの効果を分析するために行なわれた。表４は、各サンプルでアッセイされた特定の条件を示す。実験手順は上述のとおりである。サイトカインが含まれる場合（ｘとしてマークされる）、それはインキュベーションのはじめに加えられた。

サンプル種別は、本実施例のはじめに概説された異なるサンプルの処理を指す。全てのサンプルは、複製してアッセイされた（サンプル５を除く）。数字は図１３のサンプルに対応する。結果は、非増殖（ＮＰ）生腫瘍細胞（白い円）、および増殖（ＰＲ）細胞分画（灰色の円）の両方に対して示される。

前記結果は、前記サイトカインの存在が、細胞の生存率と細胞の増殖のパーセンテージに関して何の利点ももたらさないことを示す。サンプル１は、ＩＬ−６およびＣｐＧのない状態でもより高い水準の生存率を示しさえした。間質細胞を含まないサンプル７は、最も高いレベルの生存率と増殖を示し、これは前述の結果と一致する。ここにおいても、サイトカインは前記結果に何の影響も与えなかった。エクスビボアッセイでは、ＩＬ−６およびＣｐＧがＭＭ細胞の生存率と増殖に影響するようには思われないと結論付けられる。間質細胞およびＩＬ−６のない自己由来血漿の存在は、ＭＭ細胞にとってこれまでで最良の条件を提供する。他のサイトカインは異なる結果を示すかもしれない。

実施例１３ ― ＡＥ（血漿のみ）の存在下における初代ＭＭ細胞上でテストされたレナリドミドの増殖抑制作用
腫瘍細胞の処置に使用されるいくつかの薬物は、活発に増殖する細胞を優先的に標的とし、抗増殖剤として作用する。この一例は、ＭＭを診断された患者を処置するためのレナリドミドの使用である。レナリドミドの効能を、ＭＭ原発腫瘍細胞に対するエクスビボアッセイで評価するのは難しい。なぜなら、従来、使用されてきた条件下では、これらの細胞の増殖のレベルは極めて低いからである。本実施例では、ＭＭを診断された１０人の患者から得たＢＭサンプルを、エクスビボアッセイでテストした。ＡＥ（血漿のみ）は、増殖のレベルを増大させるために培地に加えられ、レナリドミドは０．０３〜３０μＭの濃縮範囲に渡ってテストされた。

１０人のＭＭ患者から得たＢＭ全体は、１％の抗生物質、１％のＬ−グルタミン、さらに２０％の自己由来血漿（ＡＥ）を補足されたＩＭＤＭ培地において、９６時間、培養された。サンプルは、実施例１２に概説されるように処理され分析された。ＭＭ細胞の生存率（アネキシンＶ）および増殖（ＣＦＤＡ）は４の濃度のレナリドミドに対してテストされた。

図１４は、４つの標準サンプルから得た結果を示す。サンプル１、３、６および７における非増殖（ＮＰ、灰色）と増殖（ＰＲ、黒色）双方の集団中の生細胞数が図１４Ａに示される。ＡＥの存在は、全てのサンプルにおける集団の増殖を誘導する。レナリドミドに反応するこれら４つのサンプルから得られた用量反応（ＤＲ）曲線（図１４Ｂ）は、ＮＰ ＭＭ細胞（灰色の正方形）およびＰＲ ＭＭ細胞（黒丸）に対する結果を示す。該ＭＭ細胞の生存指数はＹ軸に示され、Ｘ軸はレナリドミド薬物濃度を表す。この図は、ＮＰ ＭＭ細胞集団とＰＲ ＭＭ細胞集団との間には、レナリドミドの感受性に明確な違いがあることを実証する。さらに、かなりのレベルの患者間の変動性があることを示す。サンプル１（図１４Ｂの左上）では、レナリドミドはＰＲおよびＮＰ細胞のいずれにも何の効果も示さない。右上のグラフは、レナリドミドがサンプル３のＰＲ集団に対して非常に効力を発揮することを示し、低濃度で効力を発揮するが、該ＰＲ細胞の約６０％を除去するのみである。より高い濃度では、レナリドミドはさらにＮＰ細胞の約２０％を除去する。サンプル６（図１４Ｂの左下）では、ＰＲ集団に対する効力はないが、ＮＰ集団にわずかな効力がある。他方サンプル７（右下）では、レナリドミドは非常に効力があり、該ＰＲ細胞に対して非常に有効であり、より高い濃度においても該ＮＰ細胞に効果があることがわかる。これらの結果は、レナリドミドの有効性が、臨床患者間と同様、エクスビボアッセイにおける患者のサンプル間でも、大幅に変動しうることを示す。さらに、それは抗増殖と細胞毒性の両方を有すると思われる。なぜならいくつかの実施例においては、増殖抑制効果はより強力であり、より低い濃度において前記細胞毒性が生じるからである。

培地へＡＥを追加することによって、エクスビボ環境において、薬物に対する細胞の反応の仕方を変化させることができると結論付けられる。これは最終的に、レナリドミドのような薬物のエクスビボにおける効果を、具体的に特定の患者それぞれに対する臨床結果に関連づける手助けとなりうる。

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２． Ｓｏｕｎｎｉ， Ｎ． Ｅ．， ａｎｄ Ｎｏｅｌ， Ａ． （２０１３） Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｔｈｅ ｔｕｍｏｒ ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔｈｅｒａｐｙ， Ｃｌｉｎ Ｃｈｅｍ ５９， ８５−９３．
３． Ｂｕｇｇｉｎｓ， Ａ． Ｇ．， Ｐｅｐｐｅｒ， Ｃ．， Ｐａｔｔｅｎ， Ｐ． Ｅ．， Ｈｅｗａｍａｎａ， Ｓ．， Ｇｏｈｉｌ， Ｓ．， Ｍｏｏｒｈｅａｄ， Ｊ．， Ｆｏｌａｒｉｎ， Ｎ．， Ｙａｌｌｏｐ， Ｄ．， Ｔｈｏｍａｓ， Ｎ． Ｓ．， Ｍｕｆｔｉ， Ｇ． Ｊ．， Ｆｅｇａｎ， Ｃ．， ａｎｄ Ｄｅｖｅｒｅｕｘ， Ｓ． （２０１０） Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉｕｍ ｅｎｈａｎｃｅｓ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｉｎ ｐｒｉｍａｒｙ ｃｈｒｏｎｉｃ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｃｅｌｌｓ ｖｉａ ＮＦ−ｋａｐｐａＢ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｅ ｎｏｖｏ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ７０， ７５２３−７５３３．
４． Ｄｉｎｇ， Ｗ．， Ｎｏｗａｋｏｗｓｋｉ， Ｇ． Ｓ．， Ｋｎｏｘ， Ｔ． Ｒ．， Ｂｏｙｓｅｎ， Ｊ． Ｃ．， Ｍａａｓ， Ｍ． Ｌ．， Ｓｃｈｗａｇｅｒ， Ｓ． Ｍ．， Ｗｕ， Ｗ．， Ｗｅｌｌｉｋ， Ｌ． Ｅ．， Ｄｉｅｔｚ， Ａ． Ｂ．， Ｇｈｏｓｈ， Ａ． Ｋ．， Ｓｅｃｒｅｔｏ， Ｃ． Ｒ．， Ｍｅｄｉｎａ， Ｋ． Ｌ．， Ｓｈａｎａｆｅｌｔ， Ｔ． Ｄ．， Ｚｅｎｔ， Ｃ． Ｓ．， Ｃａｌｌ， Ｔ． Ｇ．， ａｎｄ Ｋａｙ， Ｎ． Ｅ． （２００９） Ｂｉ−ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ ａｎｄ ＣＬＬ Ｂ−ｃｅｌｌｓ： ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｆｏｒ ＣＬＬ ｄｉｓｅａｓｅ ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ， Ｂｒ Ｊ Ｈａｅｍａｔｏｌ １４７， ４７１−４８３．
５． Ｋｕｒｔｏｖａ， Ａ． Ｖ．， Ｂａｌａｋｒｉｓｈｎａｎ， Ｋ．， Ｃｈｅｎ， Ｒ．， Ｄｉｎｇ， Ｗ．， Ｓｃｈｎａｂｌ， Ｓ．， Ｑｕｉｒｏｇａ， Ｍ． Ｐ．， Ｓｉｖｉｎａ， Ｍ．， Ｗｉｅｒｄａ， Ｗ． Ｇ．， Ｅｓｔｒｏｖ， Ｚ．， Ｋｅａｔｉｎｇ， Ｍ． Ｊ．， Ｓｈｅｈａｔａ， Ｍ．， Ｊａｇｅｒ， Ｕ．， Ｇａｎｄｈｉ， Ｖ．， Ｋａｙ， Ｎ． Ｅ．， Ｐｌｕｎｋｅｔｔ， Ｗ．， ａｎｄ Ｂｕｒｇｅｒ， Ｊ． Ａ． （２００９） Ｄｉｖｅｒｓｅ ｍａｒｒｏｗ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ ｐｒｏｔｅｃｔ ＣＬＬ ｃｅｌｌｓ ｆｒｏｍ ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ａｎｄ ｄｒｕｇ−ｉｎｄｕｃｅｄ ａｐｏｐｔｏｓｉｓ： ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ ｒｅｌｉａｂｌｅ ａｎｄ ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ ｓｙｓｔｅｍ ｔｏ ａｓｓｅｓｓ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌ ａｄｈｅｓｉｏｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｄｒｕｇ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ， Ｂｌｏｏｄ １１４， ４４４１−４４５０．
６． Ｇｉｌｌ， Ｂ． Ｊ．， ａｎｄ Ｗｅｓｔ， Ｊ． Ｌ． （２０１４） Ｍｏｄｅｌｉｎｇ ｔｈｅ ｔｕｍｏｒ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ： Ｔｉｓｓｕｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｔｏｏｌｓ ｒｅｐｕｒｐｏｓｅｄ ｔｏｗａｒｄｓ ｎｅｗ ｆｒｏｎｔｉｅｒｓ ｉｎ ｃａｎｃｅｒ ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊ Ｂｉｏｍｅｃｈ ４７， １９６９−１９７８．
７． Ｍａｌｌｉｋａｒｊｕｎ Ｓｕｎｄａｒａｍ， Ｐ． Ｍ．， Ｍｉｓｔｉ Ｊａｉｎ， Ｓａｒａｖａｎａｎ Ｔｈｉａｇａｒａｊａｎ， Ｄｅｎｃｙ Ｐｉｎｔｏ， Ｐａｄｈｍａ Ｒａｄｈａｋｒｉｓｈｎａｎ． （２０１４） ＥＣＭ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ， Ｔｕｍｏｒ Ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ Ｐｌａｔｆｏｒｍ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｔｈｅｒｅｏｆ． （ＵＤＰＴＯ， Ｅｄ．）， Ｍｉｔｒａ Ｂｉｏｔｅｃｈ， Ｉｎｄｉａ．
８． Ｍｏｎｇｉｎｉ， Ｐ． Ｋ．， Ｇｕｐｔａ， Ｒ．， Ｂｏｙｌｅ， Ｅ．， Ｎｉｅｔｏ， Ｊ．， Ｌｅｅ， Ｈ．， Ｓｔｅｉｎ， Ｊ．， Ｂａｎｄｏｖｉｃ， Ｊ．， Ｓｔａｎｋｏｖｉｃ， Ｔ．， Ｂａｒｒｉｅｎｔｏｓ， Ｊ．， Ｋｏｌｉｔｚ， Ｊ． Ｅ．， Ａｌｌｅｎ， Ｓ． Ｌ．， Ｒａｉ， Ｋ．， Ｃｈｕ， Ｃ． Ｃ．， ａｎｄ Ｃｈｉｏｒａｚｚｉ， Ｎ． （２０１５） ＴＬＲ−９ ａｎｄ ＩＬ−１５ Ｓｙｎｅｒｇｙ Ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｔｈｅ Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ Ｃｌｏｎａｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｒｏｎｉｃ Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｂ Ｃｅｌｌｓ， Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １９５， ９０１−９２３．
９． Ｐａｓｃｕｔｔｉ， Ｍ． Ｆ．， Ｊａｋ， Ｍ．， Ｔｒｏｍｐ， Ｊ． Ｍ．， Ｄｅｒｋｓ， Ｉ． Ａ．， Ｒｅｍｍｅｒｓｗａａｌ， Ｅ． Ｂ．， Ｔｈｉｊｓｓｅｎ， Ｒ．， ｖａｎ Ａｔｔｅｋｕｍ， Ｍ． Ｈ．， ｖａｎ Ｂｏｃｈｏｖｅ， Ｇ． Ｇ．， Ｌｕｉｊｋｓ， Ｄ． Ｍ．， Ｐａｌｓ， Ｓ． Ｔ．， ｖａｎ Ｌｉｅｒ， Ｒ． Ａ．， Ｋａｔｅｒ， Ａ． Ｐ．， ｖａｎ Ｏｅｒｓ， Ｍ． Ｈ．， ａｎｄ Ｅｌｄｅｒｉｎｇ， Ｅ． （２０１３） ＩＬ−２１ ａｎｄ ＣＤ４０Ｌ ｓｉｇｎａｌｓ ｆｒｏｍ ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ Ｔ ｃｅｌｌｓ ｃａｎ ｉｎｄｕｃｅ ａｎｔｉｇｅｎ−ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ＣＬＬ ｃｅｌｌｓ， Ｂｌｏｏｄ １２２， ３０１０−３０１９．
１０． Ｎａｂｈａｎ， Ｃ．， ａｎｄ Ｒｏｓｅｎ， Ｓ． Ｔ． （２０１４） Ｃｈｒｏｎｉｃ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ ｌｅｕｋｅｍｉａ： ａ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｒｅｖｉｅｗ， ＪＡＭＡ ３１２， ２２６５−２２７６．
１１． Ｍｉｔｔａｌ， Ａ． Ｋ．， Ｃｈａｔｕｒｖｅｄｉ， Ｎ． Ｋ．， Ｒａｉ， Ｋ． Ｊ．， Ｇｉｌｌｉｎｇ−Ｃｕｔｕｃａｃｈｅ， Ｃ． Ｅ．， Ｎｏｒｄｇｒｅｎ， Ｔ． Ｍ．， Ｍｏｒａｇｕｅｓ， Ｍ．， Ｌｕ， Ｒ．， Ｏｐａｖｓｋｙ， Ｒ．， Ｂｏｃｉｅｋ， Ｇ． Ｒ．， Ｗｅｉｓｅｎｂｕｒｇｅｒ， Ｄ． Ｄ．， Ｉｑｂａｌ， Ｊ．， ａｎｄ Ｊｏｓｈｉ， Ｓ． Ｓ． （２０１４） Ｃｈｒｏｎｉｃ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｃｅｌｌｓ ｉｎ ａ ｌｙｍｐｈ ｎｏｄｅ ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ｄｅｐｉｃｔ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｉｇｎａｔｕｒｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ａｇｇｒｅｓｓｉｖｅ ｄｉｓｅａｓｅ， Ｍｏｌ Ｍｅｄ ２０， ２９０−３０１．
１２． Ｂｕｒｇｅｒ， Ｊ． Ａ．， ａｎｄ Ｂｕｇｇｙ， Ｊ． Ｊ． （２０１３） Ｂｒｕｔｏｎ ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｋｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｉｂｒｕｔｉｎｉｂ （ＰＣＩ−３２７６５）， Ｌｅｕｋ Ｌｙｍｐｈｏｍａ ５４， ２３８５−２３９１．
１３． Ｃｈｕｎｇ， Ｃ．， ａｎｄ Ｌｅｅ， Ｒ． （２０１４） Ｉｂｒｕｔｉｎｉｂ， ｏｂｉｎｕｔｕｚｕｍａｂ， ｉｄｅｌａｌｉｓｉｂ， ａｎｄ ｂｅｙｏｎｄ： ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｎｏｖｅｌ ａｎｄ ｅｖｏｌｖｉｎｇ ｔｈｅｒａｐｉｅｓ ｆｏｒ ｃｈｒｏｎｉｃ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ ｌｅｕｋｅｍｉａ， Ｐｈａｒｍａｃｏｔｈｅｒａｐｙ ３４， １２９８−１３１６．
１４． Ｐｕｒｒｏｙ， Ｎ．， Ａｂｒｉｓｑｕｅｔａ， Ｐ．， Ｃａｒａｂｉａ， Ｊ．， Ｃａｒｐｉｏ， Ｃ．， Ｐａｌａｃｉｏ， Ｃ．， Ｂｏｓｃｈ， Ｆ．， ａｎｄ Ｃｒｅｓｐｏ， Ｍ． （２０１５） Ｃｏ−ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ ｐｒｉｍａｒｙ ＣＬＬ ｃｅｌｌｓ ｗｉｔｈ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｃｅｌｌｓ， ＣＤ４０ ｌｉｇａｎｄ ａｎｄ ＣｐＧ ＯＤＮ ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｈｅｍｏｒｅｓｉｓｔａｎｔ ＣＬＬ ｃｅｌｌｓ ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃａｌｌｙ ｃｏｍｐａｒａｂｌｅ ｔｏ ｔｈｏｓｅ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｎｇ ｉｎ ｖｉｖｏ， Ｏｎｃｏｔａｒｇｅｔ ６， ７６３２−７６４３．
１５． Ｂｅｎｎｅｔｔ， Ｔ． Ａ．， Ｍｏｎｔｅｓｉｎｏｓ， Ｐ．， Ｍｏｓｃａｒｄｏ， Ｆ．， Ｍａｒｔｉｎｅｚ−Ｃｕａｄｒｏｎ， Ｄ．， Ｍａｒｔｉｎｅｚ， Ｊ．， Ｓｉｅｒｒａ， Ｊ．， Ｇａｒｃｉａ， Ｒ．， ｄｅ Ｏｔｅｙｚａ， Ｊ． Ｐ．， Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ， Ｐ．， Ｓｅｒｒａｎｏ， Ｊ．， Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ， Ａ．， Ｈｅｒｒｅｒａ， Ｐ．， Ｇｏｎｚａｌｅｚ， Ａ．， Ｂｅｔｈａｎｃｏｕｒｔ， Ｃ．， Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｍａｃｉａｓ， Ｇ．， Ａｌｏｎｓｏ， Ａ．， Ｖｅｒａ， Ｊ． Ａ．， Ｎａｖａｓ， Ｂ．， Ｌａｖｉｌｌａ， Ｅ．， Ｌｏｐｅｚ， Ｊ． Ａ．， Ｊｉｍｅｎｅｚ， Ｓ．， Ｓｉｍｉｅｌｅ， Ａ．， Ｖｉｄｒｉａｌｅｓ， Ｂ．， Ｇｏｎｚａｌｅｚ， Ｂ． Ｊ．， Ｂｕｒｇａｌｅｔａ， Ｃ．， Ｈｅｒｎａｎｄｅｚ Ｒｉｖａｓ， Ｊ． Ａ．， Ｍａｓｃｕｎａｎｏ， Ｒ． Ｃ．， Ｂａｕｔｉｓｔａ， Ｇ．， Ｐｅｒｅｚ Ｓｉｍｏｎ， Ｊ． Ａ．， Ｆｕｅｎｔｅ Ａｄｅ， Ｌ．， Ｒａｙｏｎ， Ｃ．， Ｔｒｏｃｏｎｉｚ， Ｉ． Ｆ．， Ｊａｎｄａ， Ａ．， Ｂｏｓａｎｑｕｅｔ， Ａ． Ｇ．， Ｈｅｒｎａｎｄｅｚ−Ｃａｍｐｏ， Ｐ．， Ｐｒｉｍｏ， Ｄ．， Ｌｏｐｅｚ， Ｒ．， Ｌｉｅｂａｎａ， Ｂ．， Ｒｏｊａｓ， Ｊ． Ｌ．， Ｇｏｒｒｏｃｈａｔｅｇｕｉ， Ｊ．， Ｓａｎｚ， Ｍ． Ａ．， ａｎｄ Ｂａｌｌｅｓｔｅｒｏｓ， Ｊ． （２０１４） Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｐｒｏｆｉｌｅｓ ｏｆ ａｃｕｔｅ ｍｙｅｌｏｉｄ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔ ｓａｍｐｌｅｓ ｂｙ ａｕｔｏｍａｔｅｄ ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ： ａ ｂｒｉｄｇｅ ｔｏ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｉｚｅｄ ｍｅｄｉｃｉｎｅ， Ｃｌｉｎ Ｌｙｍｐｈｏｍａ Ｍｙｅｌｏｍａ Ｌｅｕｋ １４， ３０５−３１８．
１６． Ｇｈａｍｌｏｕｃｈ， Ｈ．， Ｏｕｌｅｄ−Ｈａｄｄｏｕ， Ｈ．， Ｄａｍａｊ， Ｇ．， Ｒｏｙｅｒ， Ｂ．， Ｇｕｂｌｅｒ， Ｂ．， ａｎｄ Ｍａｒｏｌｌｅａｕ， Ｊ． Ｐ． （２０１３） Ａ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｙｔｏｋｉｎｅｓ ｒｅｓｃｕｅｓ ｈｉｇｈｌｙ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｌｅｕｋｅｍｉｃ ＣＬＬ Ｂ−ｃｅｌｌｓ ｆｒｏｍ ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ ａｐｏｐｔｏｓｉｓ ｉｎ ｖｉｔｒｏ， ＰＬｏＳ Ｏｎｅ ８， ｅ６０３７０．
１７． Ｂｒｉｎｔｏｎ， Ｌ． Ｔ．， Ｓｌｏａｎｅ， Ｈ． Ｓ．， Ｋｅｓｔｅｒ， Ｍ．， ａｎｄ Ｋｅｌｌｙ， Ｋ． Ａ． （２０１５） Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｎｄ ｒｏｌｅ ｏｆ ｅｘｏｓｏｍｅｓ ｉｎ ｃａｎｃｅｒ， Ｃｅｌｌ Ｍｏｌ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ ７２， ６５９−６７１．
１８． Ｂｅｎｉｅｎ， Ｐ．， ａｎｄ Ｓｗａｍｉ， Ａ． （２０１４） ３Ｄ ｔｕｍｏｒ ｍｏｄｅｌｓ： ｈｉｓｔｏｒｙ， ａｄｖａｎｃｅｓ ａｎｄ ｆｕｔｕｒｅ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ， Ｆｕｔｕｒｅ Ｏｎｃｏｌ １０， １３１１−１３２７．
１９． Ｆｅｎｎｅｍａ， Ｅ．， Ｒｉｖｒｏｎ， Ｎ．， Ｒｏｕｗｋｅｍａ， Ｊ．， ｖａｎ Ｂｌｉｔｔｅｒｓｗｉｊｋ， Ｃ．， ａｎｄ ｄｅ Ｂｏｅｒ， Ｊ． （２０１３） Ｓｐｈｅｒｏｉｄ ｃｕｌｔｕｒｅ ａｓ ａ ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｃｒｅａｔｉｎｇ ３Ｄ ｃｏｍｐｌｅｘ ｔｉｓｓｕｅｓ， Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ３１， １０８−１１５．
２０． Ｎａｍ， Ｋ． Ｈ．， Ｓｍｉｔｈ， Ａ． Ｓ．， Ｌｏｎｅ， Ｓ．， Ｋｗｏｎ， Ｓ．， ａｎｄ Ｋｉｍ， Ｄ． Ｈ． （２０１５） Ｂｉｏｍｉｍｅｔｉｃ ３Ｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｍｏｄｅｌｓ ｆｏｒ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｈｉｇｈ−Ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ Ｄｒｕｇ Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ， Ｊ Ｌａｂ Ａｕｔｏｍ ２０， ２０１−２１５．
２１． Ｋｕｃｅｒｏｖａ， Ｌ．， ａｎｄ Ｓｋｏｌｅｋｏｖａ， Ｓ． （２０１３） Ｔｕｍｏｒ ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ａｎｄ ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ， Ｎｅｏｐｌａｓｍａ ６０， １−１０．
２２． Ｇｈｉａ， Ｐ．， Ｃｉｒｃｏｓｔａ， Ｐ．， Ｓｃｉｅｌｚｏ， Ｃ．， Ｖａｌｌａｒｉｏ， Ａ．， Ｃａｍｐｏｒｅａｌｅ， Ａ．， Ｇｒａｎｚｉｅｒｏ， Ｌ．， ａｎｄ Ｃａｌｉｇａｒｉｓ−Ｃａｐｐｉｏ， Ｆ． （２００５） Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＣＬＬ ｃｅｌｌ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｅｘｅｒｔｅｄ ｂｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｅｌｅｍｅｎｔｓ， Ｃｕｒｒ Ｔｏｐ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ ２９４， １３５−４５．
２３． Ｒｏｅｃｋｌｅｉｎ， Ｂ． Ａ．， ａｎｄ Ｔｏｒｏｋ−Ｓｔｏｒｂ， Ｂ． （１９９５） Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｌｙ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｈｕｍａｎ ｍａｒｒｏｗ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅｓ ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚｅｄ ｂｙ ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｐａｐｉｌｌｏｍａ ｖｉｒｕｓ Ｅ６／Ｅ７ ｇｅｎｅｓ， Ｂｌｏｏｄ ８５， ９９７−１００５．

Claims (28)

1. 薬物又は薬物の組み合わせに対する初代細胞集団の細胞応答性を試験するためのエクスビボの方法であって、
   ｉ）末梢血（ＰＢ）、骨髄（ＢＮ）、又はリンパ節（ＬＮ）から選択される被験体の全体のサンプルを、血漿分画、赤血球分画、又はそれらの組み合わせから成る、白血球の無い人工環境（ＡＥ）を分離させるための分離プロセスに送る工程、
   ｉｉ）前の工程で得た白血球の無いＡＥを初代細胞集団と混合する工程、
   ｉｉｉ）工程ｉｉ）の混合物に、少なくとも１つの試験される薬物を加える工程、
   ｉｖ）試験される薬物が初代細胞集団上で活性を及ぼすことを可能にするために、工程ｉｉｉ）で得た混合物を２時間から１４日間までにわたりインキュベートする工程、
   ｖ）試験された薬物がある状態又は無い状態で初代細胞集団の生存率及び／又は増殖を評価する工程、
   ｖｉ）試験される薬物がある状態及び無い状態で行われる評価の間に原発腫瘍細胞集団の生存率及び／又は増殖に関する比較データを生成し、得られたデータを初代細胞集団の生存率及び／又は増殖の減少／増大のための薬物活性を示す値に関連づける、工程
   を含む、エクスビボの方法。
2. 血漿分画及び赤血球分画の組み合わせは１：１の比率である、ことを特徴とする請求項１に記載のエクスビボの方法。
3. 初代細胞集団は原発腫瘍細胞集団である、ことを特徴とする請求項１又は２に記載のエクスビボの方法。
4. 全体のサンプルはヒト由来である、ことを特徴とする請求項１乃至３の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
5. 白血球の無いＡＥは、健康なドナー、又は癌に悩んでいた或いは悩んでいるドナー由来である、ことを特徴とする請求項１乃至４の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
6. 白血球の無いＡＥは、数人のドナーから得られ、初代細胞集団及び／又は試験される薬物と混合される前に共にプールされる、ことを特徴とする請求項１乃至５の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
7. 白血球の無いＡＥは、初代細胞集団が得られる患者と同じ疾患に悩むドナー、又は初代細胞集団を提供する患者とは異なる疾患に悩むドナーから得られ、或いは代替的に、白血球の無いＡＥは健康なドナーから得られる、ことを特徴とする請求項１乃至６の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
8. 白血球の無いＡＥは初代細胞集団を提供する同じ被験体から得られる、ことを特徴とする請求項７に記載のエクスビボの方法。
9. インキュベーション混合物はまた、少なくとも１つの可溶性因子、及び／又は、インビボの主要微小環境細胞集団に見出される細胞型の少なくとも１つの追加の細胞集団を含む、ことを特徴とする請求項１乃至８の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
10. 少なくとも１つの可溶性因子は、腫瘍由来エキソソーム、シグナル分子、成長因子、ケモカイン、サイトカイン、インターロイキン、及び腫瘍細胞又は非腫瘍細胞由来の任意の可溶性の分子から選択される腫瘍内微小環境の非細胞成分である、ことを特徴とする請求項９に記載のエクスビボの方法。
11. 少なくとも１つの可溶性因子は、インターロイキン（ＩＬ）−２、ＩＬ−４、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＩＬ−１３、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１、分化（ｓＣＤ）４０リガンドの可溶性クラスタ、免疫グロブリン（Ｉｇ）Ｍ、ＣｐＧ、被メチル化ＣｐＧジヌクレオチドモチーフを含む短い合成一本鎖ＤＮＡ分子、Ｂ細胞活性化因子（ＢＡＦＦ）、及び増殖誘導リガンド（ＡＰＲＩＬ）から選択される、ことを特徴とする請求項１０に記載のエクスビボの方法。
12. 少なくとも１つの追加の細胞集団は、繊維芽細胞の細網細胞、ナース様細胞、間葉系幹細胞、濾胞樹状細胞、内皮細胞、周皮細胞、及び初代間質細胞由来の細胞株から選択される、ことを特徴とする請求項９に記載のエクスビボの方法。
13. 初代間質細胞由来の細胞株は、ＨＳ−５、ＨＳ２７ａ、ＵＥ６Ｅ７Ｔ−２、ＮＫ−Ｔｅｒｔ、ＨＭＥＣ−１、ＫＵＳＡ−Ｈ１、Ｍ２１０Ｂ４、ＳＴ−２、及びＫＵＭ−４から選択される、ことを特徴とする請求項１２に記載のエクスビボの方法。
14. 少なくとも１つの可溶性因子及び／又は追加の細胞集団は、ヒト以外の他の種に由来する、ことを特徴とする請求項９乃至１３の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
15. 初代細胞集団は、それらの使用の前に新鮮に抽出され、或いは凍結保存され、使用前に解凍される、ことを特徴とする請求項１乃至１４の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
16. 凍結保存された初代細胞集団はＡＥと共に解凍される、ことを特徴とする請求項１５に記載のエクスビボの方法。
17. 原発腫瘍細胞集団は、癌のための前処置を受けなかった患者から抽出され、或いは、前記癌のための１以上の前処置を受けた癌患者から抽出され、又は、原発腫瘍細胞集団は微小残存病変（ＭＲＤ）を持つ患者から抽出される、ことを特徴とする請求項１乃至１６の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
18. 原発腫瘍細胞集団は固形腫瘍から得られる、ことを特徴とする請求項１乃至１７の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
19. 固形腫瘍は、卵巣癌、直腸癌、肛門部の癌、胃癌、精巣癌、子宮癌、結腸癌、直腸癌、腎細胞癌、肝臓癌、肺非小細胞癌、小腸の癌、食道癌、黒色腫、内分泌系の癌、甲状腺の癌、副甲状腺の癌、副腎の癌、骨癌、膵癌、皮膚癌、頭頸部癌、皮膚又は眼内の悪性黒色腫、子宮癌、ファロピウス管の細胞腫、脳幹神経膠腫、下垂体腺腫、カポジ肉腫、類表皮癌、扁平上皮癌、子宮内膜の細胞腫、頚部の細胞腫、膣癌、外陰癌、軟組織の肉腫、尿道癌、陰茎癌、膀胱癌、腎臓癌若しくは尿管癌、腎盂癌、中枢神経系（ＣＮＳ）の腫瘍、中枢神経原発リンパ腫、腫瘍血管新生、脊椎軸腫瘍、前記癌の転移巣、又はそれらの組み合わせを含むリストから選択される、ことを特徴とする請求項１８に記載のエクスビボの方法。
20. 前記方法は、スフェロイド、細胞外マトリックスゲル、合成スキャフォールド、回転式細胞培養システム、又は低/非接着性培養プラスチックから選択される、固形腫瘍の微小環境構造を模倣するために構築された、３Ｄ細胞培養構築物を含む、ことを特徴とする請求項１７乃至１９の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
21. 初代細胞集団は、血液学的疾患、自己免疫疾患、血液凝固異常、又は貧血から得られる、ことを特徴とする請求項１乃至２０の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
22. 血液学的疾患は、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫（例えばＢ細胞リンパ腫、びまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、マントル細胞リンパ腫、辺縁帯Ｂ細胞リンパ腫、バーキットリンパ腫、リンパ形質細胞性リンパ腫、ヘアリー細胞白血病）、慢性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、又は急性リンパ性白血病を含むリストから選択される、ことを特徴とする請求項２１に記載のエクスビボの方法。
23. 試験される少なくとも１つの薬物は、化学療法薬物、標的化された抗癌療法薬物、腫瘍溶解性の薬物、細胞毒性薬、免疫療法薬物、サイトカイン、微小環境を標的とする薬物、副刺激分子の活性剤、抑制分子の阻害剤、又は細胞免疫療法剤を含むリストから選択される少なくとも１つの薬剤を含む、ことを特徴とする請求項１乃至２２の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
24. 初代細胞集団の細胞応答の評価は、パラメータとして、生存率、増殖、アポトーシス、細胞不足、表面マーカーの発現における変化、サイトカイン／ケモカインの生産における変化の少なくとも１つを測定することを含む、ことを特徴とする請求項１乃至２３の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
25. 初代細胞集団はプールされたウェルに由来する、ことを特徴とする請求項１乃至２４の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
26. 処置を開始した後、被験体に処方された処置の効力を判定するために使用される、請求項１乃至２５の何れか１つに記載のエクスビボの方法。
27. 効力の判定は、処置を開始して少なくとも７日後である、ことを特徴とする請求項２６に記載のエクスビボの方法。
28. 請求項１乃至２７の何れか１つに記載のエクスビボの方法における、富化された血漿分画、赤血球分画、又はそれらの組み合わせから成る、白血球の無いＡＥの使用。