JP2018525369A - ７−フェニルエチルアミノ−４ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン化合物及び変異体ｉｄｈ１阻害剤としてのそれらの使用 - Google Patents

Abstract

式Ｉのフェニルエチルアミノ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン化合物、それらの化合物を含有する製剤、及び変異体イソクエン酸デヒドロゲナーゼ１酵素阻害剤としてのこれらの使用。

Description

イソクエン酸デヒドロゲナーゼ（ＩＤＨ）タンパク質は、クエン酸（トリカルボン酸またはクレブス）回路において重要な酵素である。クエン酸回路は、多くの生化学的経路にとってとりわけ重要であり、細胞代謝の最も早期に確立した構成要素の１つである。

イソクエン酸デヒドロゲナーゼは、イソクエン酸の酸化脱炭酸を触媒し、α−ケトグルタレート（２−オキソグルタレート）にする。これらの触媒は、２つの特異なサブクラスに属し、その１つは、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ（＋））を、もう１つはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰ（＋））を電子受容体として利用する。５つのイソクエン酸デヒドロゲナーゼが報告されており、３つのＮＡＤ（＋）−依存性イソクエン酸デヒドロゲナーゼは、ミトコンドリアマトリックスに局在化し、２つの（ＮＡＤＰ（＋））−依存性イソクエン酸デヒドロゲナーゼは、その１つがミトコンドリア、もう１つは他の主な細胞質である。各ＮＡＤＰ（＋）−依存性イソチームは二量体である。ＩＤＨ１遺伝子によってコードされたタンパク質は、細胞質及びペルオキシソームに見られるＮＡＤＰ（＋）−依存性イソクエン酸デヒドロゲナーゼである。細胞質の酵素は、細胞質ＮＡＤＰＨの生成において重要な役割を果たしている。ＩＤＨ１は、幅広い種及び完全なクエン酸回路を欠いた有機体において発現される。

近年、ＩＤＨ１、及び関連アイソフォームＩＤＨ２における突然変異が、いくつかの種類の癌において発見された。突然変異は、タンパク質配列に沿って特異的なアミノ酸で発生し、ヘテロ接合体的に発現し、機能獲得と一致することが見出された。これらの突然変異は、機能保存残基で発生し、ＩＤＨ１の変異体形成の生化学研究でＩＤＨ１の正常機能の喪失、イソクエン酸のα−ケトグルタレートへの可逆的変換を実証した。これらの突然変異の結果は、α−ケトグルタレート（αＫＧ）の２−ヒドロキシグルタレート（２ＨＧ）への新たな（または新形態の）変換を可能にする。その結果、ＩＤＨ１またはＩＤＨ２の潜伏変異体形態の癌細胞が、実質的により高い濃度の２ＨＧを形成する。高レベルの２ＨＧにより、変異体ＩＤＨ１またはＩＤＨ２阻害によって反転され得る細胞分化においてブロックが生じる。

様々な癌治療のために、野生型ＩＤＨ２よりも変異体ＩＤＨ１酵素を選択的に抑制する化合物が必要とされている。様々な癌治療のために、野生型ＩＤＨ１よりも新形態活性を示す変異体ＩＤＨ１酵素を選択的に阻害する化合物がさらに必要とされている。

本発明の一態様は、以下の式の変異体ＩＤＨ１酵素阻害剤化合物であって、

式中、
Ｌは、−Ｎ−アゼチジン−３−ＣＨ_２−Ｏ−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−６−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、−７−Ｎ−（２，７−ジアザスピロ［３．５］ノナン）−２−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−及び−Ｎ−２，５−ジヒドロピロール−３−（ＣＨ_２）−Ｏ−からなる群から選択されるリンカーであり、
Ｚは、Ｈ及びＦからなる群から選択され、
Ｒは、Ｃ_１〜Ｃ_４アルキル、−ＣＨ（ＣＨ_３）ＣＨ_２−ＯＨ、−ＣＨ_２ＣＨ_２Ｆ、及び−ＣＨ_２ＣＨＦ_２からなる群から選択される、化合物、またはその薬学的に許容される塩を提供することである。

本発明のさらなる態様は、式Ｉの化合物であって、式中、Ｌは、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、−Ｎ−アゼチジン−３−ＣＨ_２−Ｏ−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、及び−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−からなる群から選択されるリンカーであり、
Ｚは、Ｈであり、
Ｒは、Ｃ_１〜Ｃ_４アルキルである、化合物、またはその薬学的に許容される塩を提供する。

本発明の別の態様は、式Ｉの化合物であって、式中、Ｌは、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、及び−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−からなる群から選択されるリンカーであり、
Ｚは、Ｈであり、
Ｒは、−ＣＨ_２ＣＨ_３、−ＣＨ（ＣＨ_３）_２から選択される、化合物、またはその薬学的に許容される塩を提供する。

本発明のさらなる態様は、１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンの化合物、またはその薬学的に許容される塩である。

本発明の別の態様は、１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンの化合物、またはその薬学的に許容される塩である。

本発明のさらなる態様は、
１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）オキシメチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［２−（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）エチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）メトキシ］−フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［［メチル−（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）アミノ］メチル］−フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンから選択される化合物、またはその薬学的に許容される塩、である。

本発明の別の態様は、式Ｉの変異体ＩＤＨ１阻害剤化合物、またはその薬学的に許容される塩、及び薬学的に許容される担体を含む薬学的組成物を提供する。

本発明のさらなる態様は、患者において、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫（ＡＩＴＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病（Ｂ−ＡＬＬ）、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌を治療する方法であって、それを必要とする患者に式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩の治療上有効な量を投与することを含む方法、を提供する。

本発明の別の態様は、患者において、線維肉腫、急性骨髄性白血病、神経膠腫、または神経膠芽細胞腫である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌を治療する方法であって、それを必要とする患者に式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩の治療上有効な量を投与することを含む方法、を提供する。

本発明のさらなる態様は、治療に使用される、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩を提供する。

本発明の別の態様は、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫（ＡＩＴＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病（Ｂ−ＡＬＬ）、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療に使用される、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩、を提供する。

本発明のさらなる態様は、線維肉腫、急性骨髄性白血病、神経膠腫、または神経膠芽細胞腫である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療に使用される、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩を提供する。

本発明の別の態様は、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫（ＡＩＴＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病（Ｂ−ＡＬＬ）、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または肝内胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌、の治療用薬剤を製造するための、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩の使用を提供する。

本発明のさらなる態様は、線維肉腫、急性骨髄性白血病、神経膠腫、または神経膠芽細胞腫である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療用薬剤を製造するための、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩の使用を提供する。

用語「患者」は哺乳動物を意味し、「哺乳動物」としてはヒトが挙げられるが、これに限定されない。

「治療上有効な量」または「有効量」は、癌患者において変異体ＩＤＨ１を阻害して、分化におけるブロックの解除につながることで腫瘍細胞増殖の阻害をもたらし、患者の癌を排除するか、または進行を遅らせるもしくは阻止するのに必要な式Ｉの化合物、もしくはその薬学的に許容される塩、またはこの化合物、もしくはその薬学的に許容される塩を含有する薬学的組成物の用量を意味する。式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩の予想用量は、２０ｍｇ／患者／１日〜２０００ｍｇ／患者／１日の範囲内である。好ましい用量は、３０ｍｇ／患者／１日〜１８００ｍｇ／患者／１日の範囲内と予想される。最も好ましい用量は、４０ｍｇ／患者／１日〜１６００ｍｇ／患者／１日の範囲内と予想される。患者を治療するのに正確な用量及び治療期間の長さは、疾患のステージ及び重症度と共に、個々の患者の具体的なニーズ及び反応を考慮して、医師によって決定されるだろう。１日当たりが基準の用量で表されるが、投薬投与は調整されてよく、患者により最適な治療的利益を提供し、あらゆる薬物関連毒性を管理または緩和する。毎日の投薬に加えて、１日２回（Ｂ．Ｉ．Ｄ．）の投薬、１日３回（Ｔ．Ｉ．Ｄ．）の投薬、１日おき（Ｑ２Ｄ）の投薬、５日間にわたる１日おきの投薬に続いて２日間の投薬なし（Ｔ．Ｉ．Ｗ．）、または３日に１回（Ｑ３Ｄ）の投薬が適切でよい。

用語「治療」、「治療する」、及び「治療している」は、患者が罹患している癌について、例えば、癌が実際に除去されないとしても、症状のうちの１つ以上を軽減させる、緩徐にする、もしくは回復させるため、または癌の進行を遅らせるための活性化合物の投与などの、全ての範囲の介入を含むことを意味する。

語句「Ｃ_１〜Ｃ_４アルキル」としては、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、及びｔ−ブチルが挙げられる。

式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩は、好ましくは、薬学的に許容される担体を使用して薬学的組成物として製剤化され、様々な経路によって投与される。好ましくは、そのような組成物は、経口投与用である。そのような薬学的組成物及びそれらを調整するプロセスは、当該技術分野において周知である。例えば、ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ：ＴＨＥ ＳＣＩＥＮＣＥ ＡＮＤ ＰＲＡＣＴＩＣＥ ＯＦ ＰＨＡＲＭＡＣＹ（Ａ．Ｇｅｎｎａｒｏ，ｅｔ ａｌ．，ｅｄｓ．，１９ｔｈ ｅｄ．，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，１９９５）を参照のこと。特定の実施形態では、薬学的組成物は、薬学的に許容される担体及び任意選択的に、特に癌全般または特定の癌の種類の治療のための他の治療成分と共に、１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンまたはその薬学的に許容される塩を含む。

式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩は、１つ以上の他の治療剤と同時に、または前に、または後に投与されてよい。１つ以上の他の治療用薬剤と共に投与された場合、式Ｉの化合物、または薬学的に許容される塩は、同じもしくは異なる投与経路で、または同じ薬学的組成物中に他の治療剤として、個別に投与されてよい。１つ以上の追加の治療剤が投与される場合、各治療剤の投与は、同時、個別または連続でよい。

式Ｉの化合物は、多数の無機及び有機酸と反応させることができ、薬学的に許容される酸及び追加の塩を形成する。そのような薬学的に許容される塩及びそれらを調製するための一般的な方法は、当該技術分野において周知である。例えば、Ｐ．Ｓｔａｈｌ，ｅｔ ａｌ．，ＨＡＮＤＢＯＯＫ ＯＦ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬ ＳＡＬＴＳ：ＰＲＯＰＥＲＴＩＥＳ，ＳＥＬＥＣＴＩＯＮ ＡＮＤ ＵＳＥ，（ＶＣＨＡ／Ｗｉｌｅｙ−ＶＣＨ，２００２）；Ｓ．Ｍ．Ｂｅｒｇｅ，ｅｔ ａｌ．，“Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓａｌｔｓ，“Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｖｏｌ．６６，Ｎｏ．１，Ｊａｎｕａｒｙ １９７７を参照のこと。

式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩と同様に、以下に記載のものも、当技術分野において既知の様々な手順によって調製されてよい。特定の合成ステップは、異なる順序で組み合わされてよく、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩を調製する。

式Ｉの化合物は、ＩＵＰＡＣに従って命名され、ＣＡＳに従って命名されてもよく、式Ｉの化合物、またはその薬学的に許容される塩を明確に同定するために他の名称が使用されてよい。

式Ｉの化合物は、単一の立体異性体として描写されてよいと理解されるであろう。２つのジアステレオマーが生じる、及びより置換基に左右される可能性のある不斉ベンジル炭素位置に１つのキラル中心が存在する。本明細書で使用する場合、単一の立体異性体に対する参照は、式Ｉの命名されたまたは描写された化合物を含む立体異性体混合物を含むことも意味する。本明細書で、カーン・インゴルド・プレローグ表記の（Ｒ）−及び（Ｓ）−は、特異的な立体異性体を指すために使用されてよい。特異的な立体異性体は、鏡像異性的に純粋または濃縮出発物質を使用して立体特異的合成によって調製されることができる。式Ｉの化合物を含む出発物質、中間体、またはラセミ混合物のどちらかの特異的な立体異性体は、例えばＳｔｅｒｅｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ，Ｅ．Ｉ．Ｅｌｉｅｌ ａｎｄ Ｓ． Ｈ． Ｗｉｌｅｎ（Ｗｉｌｅｙ １９９４）ａｎｄ Ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒｓ，Ｒａｃｅｍａｔｅｓ，ａｎｄ Ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎｓ，Ｊ．，Ｊａｃｑｕｅｓ，Ａ．Ｃｏｌｌｅｔ，ａｎｄ Ｓ．Ｈ．Ｗｉｌｅｎ（Ｗｉｌｅｙ １９９１）に見出され、キラル固定相、触媒分解能、もしくは部分結晶化を使用するクロマトグラフィー、またはその目的のために形成されるジアステレオマー、例えばジアステレオマー塩のクロマトグラフィーを含む、当該技術分野において周知の技法によって分解されることができる。式Ｉの化合物を含有するジアステレオマー混合物は、本発明内で考えられているが、好ましい実施形態は、式Ｉに示すように（Ｓ）配置である。

式Ｉの化合物の合成において初期の出発物質として用いられる化合物は、周知であり、市販する程度までではないが、当業者によってまたは一般の参照テキストに見出され、商業的に用いられる標準手順によって提供される特異的な参照を使用して速やかに合成される。

既知の手順及び方法の例としては、例えば、Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎｓ，ＶＣＨ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ Ｉｎｃ，１９８９；Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ ｏｆ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｍｅｔｈｏｄｓ，Ｖｏｌｕｍｅｓ １−１０，１９７４−２００２，Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ；Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｒｅａｃｔｉｏｎｓ Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ，ａｎｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ，５ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｍｉｃｈａｅｌ Ｂ．Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｊｅｒｒｙ Ｍａｒｃｈ Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ，２００１；Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ， Ｐａｒｔ Ｂ，Ｒｅａｃｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，Ｆｒａｎｃｉｓ Ａ．Ｃａｒｅｙ ａｎｄ Ｒｉｃｈａｒｄ Ｊ．Ｓｕｎｄｂｅｒｇ，Ｋｌｕｗｅｒ Ａｃａｄｅｍｉｃ／Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，２０００など、一般参照テキスト及びその中で引用されている参考文献に記載されるようなものが挙げられる。

ある特定の立体化学中心は、透明度のために以下のスキームにおいて詳細不明のままでよく、あらゆる意味においてスキームの教示を制限することを意図するものではない。個々の異性体、鏡像異性体、及びジアステレオマーは、当業者によって、本発明の化合物の合成における都合のよい時点で、選択的結晶化技法またはキラルクロマトグラフィーなどの方法によって分離または分解されてよい。

ある特定の略称を、以下の通りに定義する。「ＡＣＮ」はアセトニトリルを指し、「αＫＧ」はアルファ−ケトグルタル酸または２−ケタグルタレートを指し、「アロック」はアリルオキシカルボニルを指し、「ＡＴＣＣ」はアメリカ培養細胞系統保存機関を指し、「ＢＣＡ」はビシンコニン酸を指し、「ＢＯＣ」はｔｅｒｔ−ブトキシカルボニルを指し、「ＢＳＡ」はウシ血清アルブミンを指し、「ＣＤＩ」は１−１´−カルボニルジイミダゾールを指し、「ＣＰＭＥ」はシクロペンチルメチルエーテルを指し、「ＤＣＣ」は１，３−ジシクロヘキシルカルボジイミドを指し、「ＤＣＭ」はジクロロメタンを指し、「ＤＥＡＤ」はジエチルアゾジカルボキシレートを指し、「ＤＩＡＤ」はジイソプロピルアゾジカルボキシレートを指し、「ＤＩＣ」はジイソプロピルカルボジイミドを指し、「ＤＩＰＥＡ」はジイソプロピルエチルアミンまたはＮ−エチル−Ｎ−イソプロピル−プロパン−２−アミンを指し、「ＤＭＡ」はジメチルアセトアミドを指し、「ＤＭＡＰ」はジメチルアミノピリジンを指し、「ＤＭＦ」はジメチルホルムアミドを指し、「ＤＭＳＯ」はジメチルスルホキシドを指し、「ＤＴＴ」はジチオスレイトールを指し、「ＥＤＣ」は、ＥＤＡＣ、ＥＤＣＩ、または塩酸１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミドを指し、「ＥＤＴＡ」はエチレンジアミン四酢酸を指し、「ＥＧＴＡ」はエチレングリコール四酢酸を指し、「ＥｔＯＡｃ」は酢酸エチルを指し、「ＥｔＯＨ」はエタノールまたはエチルアルコールを指し、「Ｅｘ」は実施例を指し、「ＨＡＴＵ」は（ジメチルアミノ）−Ｎ，Ｎ−ジメチル（３Ｈ−［１，２，３］トリアゾロ［４，５−ｂ］ピリジン−３−イルオキシ）メタンイミニウムヘキサフルオロリン酸塩を指し、「ＨＢＴＵ」は２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラメチルウロニウムヘキサフルオロリン酸塩を指し、「ＨＥＫ」はヒト胚腎臓を指し、「２ＨＧ」は２−ヒドロキシグルタレートを指し、「ｄ_５−３ＨＧ」は３−ヒドロキシ−１，５−ペンタンジオイック−２，２，３，４，４−ｄ_５酸を指し、「ＨＩＬＩＣ」は親水性相互作用液体クロマトグラフィーを指し、「ＨＯＡｔ」は１−ヒドロキシ−７−アゾベンゾトリアゾールを指し、「ＨＯＢｔ」は１−ヒドロキシベンゾトリアゾール水和物を指し、「ＨＰＬＣ」は高性能液体クロマトグラフィーを指し、「ＩＣ_５０」は、その薬剤にとって可能な最大阻害反応の５０％が生じる薬剤濃度を指し、「ｍＣＰＢＡ」はメタ−クロロ過安息香酸を指し、「Ｍｅ」はメチルまたはＣＨ_３を指し、「ＭｅＯＨ」はメタノールまたはメチルアルコールを指し、「ＭＴＢＥ」はメチルｔｅｒｔ−ブチルエーテルを指し、「ＮＡＤＰ^＋及びＮＡＨＰＨ」はそれぞれニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸の酸化及び還元形態を指し、「ＮＭＰ」はＮ−メチル−２−ピロリドンを指し、「ＰＧ」は保護基を指し、「Ｐｈ」はフェニルを指し、「Ｐｒｅｐ」は調製を指し、「ＰｙＢＯＰ」はベンゾトリアゾール−１−イルオキシトリピロリジノ−ホスホニウムヘキサフルオロリン酸を指し、「ＰｙＢｒｏｐ」は臭素−トリス−ピロリジノホスホニウムヘキサフルオロリン酸を指し、「ｒｐｍ」は毎分の回転を指し、「ＳＣＸ」は強カチオン交換を指し、「Ｓ_ＮＡｒ」は求核芳香族置換を指し、「ＴＥＡ」はトリエチルアミンを指し、「ＴＦＡ」はトリフルオロ酢酸を指し、「ＴＨＦ」はテトラヒドロフランを指し、ＴＨＰはテトラヒドロピラニルを指し、「トリス」はトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンを指し、「ＸＲＤ」はＸ線粉末回折を指す。

本発明の化合物、またはその塩は、当該技術分野において既知の様々な方法によって調製されてよく、そのいくつかが以下のスキーム、調製及び実施例に図示されている。記載される各経路の特異的な合成ステップは、様々な方法で、または異なるスキームからのステップと共に組み合わされてよく、本発明の化合物、またはその塩を調製する。以下のスキームにおける各ステップの生成物は、抽出、蒸発、析出、クロマトグラフィー、濾過、粉砕及び結晶化を含む、当該技術分野において周知の従来方法によって回収されることができる。以下のスキームにおいて、特に指示がない限り、全置換基は予め定義された通りである。試薬及び出発物質を、当業者は容易に入手できる。

スキーム１において、一連の反応により、ステップＥの生成物である１−置換−７−（メチルスルホニル）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンが生じ、式中、Ｒは予め定義される通り、またはＲ＝ＣＨ（ＣＨ_３）−ＣＨ_２−Ｏ−ＰＧである。「ＰＧ」は、アミノ基または酸素基のために生じる保護基、例えばカルバメート、アミドまたはエステルなどである。例えば、ステップＡにおいて、カルボキシル保護−４−クロロ−２−（メチルチオ）ピリミジン−５−カルボキシレートのクロロを、ＴＨＦなどの溶媒中の水酸化アンモニウムを使用してアミンに変換し、ステップＡの置換ピリミジンアミン生成物を得た。ステップＢにおいて、エチルエステルなどのエステルは、ＴＨＦなどの溶媒中のリチウムアルミニウム水素化物などの水素化物源を用いて当該技術分野において周知の条件下でヒドロキシメチルに還元されることができ、ステップＢのヒドロキシメチル生成物を得た。５−ヒドロキシメチル４−アミン−ピリミジンは、標準カルバモイル化条件下で、トリホスゲン及びＤＩＰＥＡまたはＴＥＡなどの有機塩基を使用して、約−３０〜−３５℃の温度でオキサジン−２−オンに環化することができ、ステップＣの生成物を得た。選択的に、ＣＤＩ、ホスゲン、またはジホスゲンなどのジハロゲン化カルボニルまたはジ−擬ハロゲン化カルボニルが、トリホスゲンの代わりに使用され得、カルバモイル化が完了する。オキサジンのアミンは、ＮＭＰなどの溶媒中のヨード試薬などの適切な置換アルキルハロゲン化物及びＫ_２ＣＯ_３などの無機塩基を用いて、約５０〜６５℃の温度でアルキル化されることができ、ステップＤの生成物を得た。選択的に、光延反応により、ＭｅＯＨなどの適切なアルコールを使用してオキサジンのアミンをアルキル化することが達成し得る。光延反応は、当該技術分野において周知であり、トリフェニルホスフィン及びＴＨＦなどの溶媒中のＤＩＡＤまたはＤＥＡＤなどのアゾジカルボキシレートを使用してカルバミン酸塩などの多種多様な求核試薬によって置き換えられたヒドロキシル基を脱離基に変換することができ、ステップＤの生成物を得た。硫化物は、例えば、約１０〜２５℃の温度で、ＡＣＮまたはＣＨ_２Ｃｌ_２などの溶媒中のｍＣＰＢＡまたはペルオキソ一硫酸カリウムなど、当該技術分野において周知の条件下で、スルホンに酸化することができ、ステップＥの生成物を得た。選択的に、ステップＡにおいて、アルコキシアルキルアミン置換生成物は、置換４−クロロピリミジンから３段階法で調製されることができる。例えば、（２Ｒ）−１−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシプロパン−２−アミン及びＤＭＦなどの溶媒中のＤＩＰＥＡなどの塩基を、約６５℃に加熱し、続いて水で急冷し、ＥｔＯＡｃで抽出し、粗中間体シロキシアルキルアミノピリミジンを得た。この中間体は、テトラ−ブチルアンモニウムフッ化物で処理され、濃縮され、次にシリカゲルで精製し、中間体ヒドロキシアルキルアミノピリミジンを得た。中間体ヒドロキシル基は、ｐ−トルエンスルホン酸を使用して３，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピランで保護されることができ、続いて精製によってステップＡのヒドロキシル保護生成物を得た。

スキーム２、ステップＪにおいて、４−エチルアミン−保護−安息香酸は、例えば、ＴＨＦなどの溶媒中のリチウムアルミニウム水素化物など、当該技術分野において周知の条件を使用して還元され、４−エチルアミン−ベンジル−ヒドロキシ化合物を得た。ステップＪのベンジル−ヒドロキシ生成物は、ＣＨ_２Ｃｌ_２などの溶媒中の塩化チオニルまたはＰＯＣｌ_３などの塩素化剤を使用して標準塩素化条件下で塩化物などのハロゲン化物に変換されることができ、ステップＫの生成物を得た。ステップＫの１−フェニルエチルアミン生成物またはステップＪのベンジル−ヒドロキシ生成物は、トリフルオロアセチルなどの保護基を使用してステップＬのサブステップ１において保護されることができる。ステップＬの生成物の塩化物は、ワンポット法の２ステップにおいてリンカー基（Ｌ）の保護アミンと置換され得る。１−フェニルエチルアミンを常に保護する必要はないが、保護が選択された場合、１−フェニルエチルアミンに異なる保護基を使用することは、所望のステップで１つまたは他のＰＧを選択的に脱保護するリンカーアミンよりも有利である。例えば、１−フェニルエチルアミンは、ＣＨ_２Ｃｌ_２などの溶媒中のＴＥＡなどの有機塩基を使用して、約０〜５℃の温度で、トリフルオロ無水酢酸と反応させることができ、ステップＬ、サブステップ１の保護アミン生成物を得た。次に塩化物の置換が、当業者によって周知の条件下で完了され得る。例えば、リンカーがアミンを有する場合、塩化物は、ＡＣＮなどの溶媒中で約６０℃に加熱しながら、Ｋ_２ＣＯ_３などの無機塩基を使用して適切なリンカーアミンによって置換されることができ、ステップＬ、サブステップ２の生成物を得た。選択的に、ＤＭＳＯなどの溶媒中のＤＩＰＥＡなどの有機塩基は、アミンをアルキル化するために使用することができ、ステップＬ、サブステップ２の生成物を得た。エーテル結合を介してリンカーが結合される場合、アルコール前駆体は、ハロゲン化物をＤＭＦなどの溶媒中の水素化ナトリウムなどの塩基と置き換えることができ、ステップＬ、サブステップ２の生成物を得た。ステップＭ、サブステップ１において、１−フェニルエチルアミンは、標準脱保護条件下で予め保護効果があった場合、ＥｔＯＨなどの溶媒中の水酸化ナトリウム水溶液などのアルカリ性状態を使用して脱保護されることができ、ステップＭ、サブステップ１の遊離アミン生成物を得た。選択的に、保護基がカルボキシベンジル基である場合、保護基を除去するために水素分解条件を使用することができ、例えば、水素雰囲気下でＥｔＯＨなどの溶媒中の１０％Ｐｄ／Ｃを使用することで、ステップＭ、サブステップ１の脱保護生成物を得た。次に１−フェニルエチルアミンを、反応を促進するためにＤＩＰＥＡ、ＣｓＦなどの有機塩基、ＤＭＳＯなどの溶媒、及び約７０〜８０℃の温度を使用してＳ_ＮＡｒ反応においてスキーム１、ステップＥの生成物と反応させることができ、ステップＭ、サブステップ２の生成物を得た。ステップＮ、サブステップ１において、ｔｅｒｔ−ブトキシ保護リンカーは、ジオキサン及びＭｅＯＨ中のＨＣｌ、またはＣＨ_２Ｃｌ_２中のＴＦＡなどの酸を使用して脱保護されることができる一方で、アロック保護リンカーは、ＴＨＦなどの溶媒中の触媒テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（０）などのパラジウム源の存在下において、ジメドンなどのソフト求核試薬を使用して脱保護されることができ、ステップＮ、サブステップ１の脱保護リンカーを得た。ステップＮ、サブステップ２において、アミンがＣＨ_２Ｃｌ_２などの溶媒中の酸性塩である場合、リンカーアミンは、約５０〜７５℃の温度で、ＴＥＡなどの有機塩基を使用して塩化アクリロイルとアミド化されることができ、式Ｉの化合物を得た。選択的に、アミドカップリングは、アクリル酸及びＤＭＦなどの溶媒中の適切なアミンと、ＥＤＣなどのカップリング試薬及びＨＯＢｔなどの添加剤とを用いて完了され得る。当業者であれば、カルボン酸とアミンとの反応によって生じるアミド形成のために多数の方法及び試薬が存在することを理解するであろう。例えば、ＤＩＰＥＡまたはＴＥＡなどの有機塩基と共にまたはそれなしで、カップリング試薬の存在下において適切なアミンとアクリル酸との反応により、式Ｉの化合物をもたらすことができる。他のカップリング試薬としては、ＤＣＣ、ＤＩＣなどのカルボジイミド、またはＣＤＩなどのカルボニルジイミダゾールが挙げられる。ＨＯＡｔなどの他のアミドカップリング添加剤は、反応を促進するためにも使用され得る。加えて、ＨＢＴＵ、ＨＡＴＵ、ＰｙＢＯＰ、及びＰｙＢｒｏＰなどの非求核性アニオンのウロニウムまたはホスホニウム塩が、より従来のカップリング試薬の代わりに使用される可能性がある。ＤＭＡＰなどの添加剤は、所望のアミド化反応を加速するために使用されてよい。

選択的に、スキーム３において、所定位置にリンカーのない１−フェニルエチルアミンは、スキーム２、ステップＭに記載されるようにステップＥの生成物と反応することができ、ステップＯの生成物を得た。ステップＯの生成物は、スキーム２、ステップＬ、サブステップ２に記載されるように、Ｋ_２ＣＯ_３及びＡＣＮ中のヨウ化ナトリウムを使用して、保護リンカーと反応することができ、ステップＰの生成物を得た。選択的に、Ｘ＝Ｂｒである場合、臭化物は、炭酸カリウム、ＣｕＢｒ、及びＤＭＳＯなどの溶媒中のヒドロキシプロリンなどの無機塩基を使用してアミンと置き換えることができ、ステップＰの生成物を得た。実施例に関して、Ｌがアルキンを含む場合、Ｂｒは、例えばＳｏｎａｇａｓｈｉｒａ反応におけるパラジウム交差カップリング条件を使用して適切な保護アルキンと反応することができる。テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（０）などの適切なパラジウム触媒、ＣｕＩなどの銅触媒、及びＴＥＡなどの有機塩基と、適切なアルキン及びアリール臭化物とをＴＨＦなどの溶媒中で組み合わせ、ステップＰの生成物を得た。Ｘ＝−ＣＨ_２ＯＨの場合、スキーム２、ステップＫに記載されるように、ＯＨは塩化物に変換することができ、ステップＱの塩素化生成物を得た。ステップＰのアルキンリンカーは、水素下にてＴＨＦなどの溶媒中の１０％Ｐｄ／ＣａＣＯ_３などの触媒で水素化されることができ、還元アルキン生成物を得た。ステップＮにおいて、次にステップＰまたはステップＱの生成物は、スキーム２、ステップＮ、サブステップ１に記載されるように脱保護されることができ、リンカーは、スキーム２、ステップＮ、サブステップ２に記載されるようにアミド化されることができ、式Ｉの化合物を得た。

スキーム４において、１−フェニルエチルアミンは、スキーム２、ステップＬに記載されるように、トリフルオロアセチルなどの保護基またはカルボキシベンジルなどの他の保護基で保護されることができる。例えば、カルボキシベンジルが所望のＰＧである場合、ベンジルクロロホルメートを、ＴＨＦ及び水などの溶媒の混合物中のＮａＨＣＯ_３などの無機塩基を有する１−（４−ヒドロキシフェニル）エチルアミンに添加することができ、カルボキシベンジル保護アミンを得た。リンカーＬがエーテル結合を介してアリール環に結合する場合、光延反応は、保護１−（４−ヒドロキシフェニル）エチルアミンで完了されることができる。光延反応は、当該技術分野において周知であり、ヒドロキシル基を、トリフェニルホスフィン及びＴＨＦなどの溶媒中のＤＩＡＤまたはＤＥＡＤなどのアゾジカルボキシレートを使用してフェノールなどの多種多様の求核試薬によって置き換えることが可能な強力な脱離基に変換することができ、ステップＲのアリールエーテル生成物を得た。次にステップＲの生成物は、スキーム２、ステップＭ、サブステップ１に記載されるように、１−フェニルエチルアミン機能で脱保護されることができ、続いてスキーム２、ステップＭ、サブステップ２に記載されるように、Ｓ_ＮＡｒアルキル化により、スキーム４、ステップＭの生成物を得た。次いで、スキーム２、ステップＮ、サブステップ１及び２に記載されるように、ステップＮの式Ｉの生成物が形成され得る。

任意のステップにおいて、式Ｉの化合物の薬学的に許容される塩は、標準条件下で、式Ｉの適切な遊離塩基と適切な溶媒中の適切な薬学的に許容される酸との反応によって形成され得る。加えて、そのような塩の形成は、窒素保護基の脱保護と同時に起こり得る。そのような塩の形成は、当該技術分野において周知であり理解されている。例えば、Ｇｏｕｌｄ，Ｐ．Ｌ．，“Ｓａｌｔ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｆｏｒ ｂａｓｉｃ ｄｒｕｇｓ，”Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，３３：２０１−２１７（１９８６）；Ｂａｓｔｉｎ，Ｒ．Ｊ．，ｅｔ ａｌ．“Ｓａｌｔ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ ｆｏｒ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｎｅｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｅｎｔｉｔｉｅｓ，”Ｏｒｇａｎｉｃ Ｐｒｏｃｅｓｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，４：４２７−４３５（２０００）；及びＢｅｒｇｅ，Ｓ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．，“Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓａｌｔｓ，”Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，６６：１−１９，（１９７７）を参照のこと。式Ｉの化合物は、速やかに変換され、薬学的に許容される塩として分離されてよいと当業者は理解するであろう。

調製１
エチル４−アミノ−２−メチルスルファニル−ピリミジン−５−カルボキシレート

スキーム１、ステップＡ：水酸化アンモニウム（８．４Ｌ、１７重量％、６．８６モル）を、室温で、１時間にわたってエチル４−クロロ−２−（メチルチオ）ピリミジン−５−カルボキシレート（４ｋｇ、１０．７４モル）のＴＨＦ（３４．４Ｌ）溶液に添加した。４時間撹拌した後、水を添加し、混合物をＭＴＢＥで抽出した。有機相をブラインで洗浄し、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濾過し、濃縮した。粗生成物を、石油エーテル（３Ｌ）を用いてスラリーにし、濾過し、真空下で乾燥させ、さらに精製を行うことなく、白色固体（３．５ｋｇ、純度８９％、収率９５％）として表題化合物をもたらした。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２１４（Ｍ＋Ｈ）。

調製２
２−メチルスルファニル−４−［［（１Ｒ）−１−メチル−２−テトラヒドロピラン−２−イルオキシ−エチル］アミノ］−ピリミジン−５−カルボキシレート

スキーム１、ステップＦ：ＤＩＰＥＡ（９．１ｍＬ、５２ｍモル）及び（２Ｒ）−１−（ｔｅｒｔ−ブチルシリル）オキシプロパン−２−アミン（５．８２ｇ、３０．７ｍモル）を、室温で、エチル４−クロロ−２−（メチルチオ）ピリミジン−５−カルボキシレート（６ｇ、２５．８ｍモル）のＤＭＦ（５０ｍＬ）溶液に添加した。室温で１０分間撹拌した後、混合物を６５℃に１．５時間加熱し、室温に冷却し、水で処理し、ＥｔＯＡｃで（２×）抽出した。有機抽出物を、５％水性ＬｉＣｌで（３×）洗浄し、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濾過し、濃縮した。粗物質（８．６４ｇ、２２．４ｍモル）をＴＨＦ（１００ｍＬ）中に溶解させ、テトラ−ブチルアンモニウムフッ化物（３４ｍＬ、３４ｍモル、ＴＨＦ中１Ｍ）で処理した。室温で３０分間撹拌した後、反応物を濃縮し、乾燥させ、天然第一級アルコールをクロマトグラフィー（２０〜４０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、白色固体（４．９４ｇ、８１％）として中間体アルコールを得た。この中間体アルコール（２．０５ｇ、７．５６ｍモル）の一部を、ＣＨ_２Ｃｌ_２（４０ｍＬ）中に懸濁させ、ｐ−トルエン−スルホン酸一水和物（２．１６ｇ、１１．４ｍモル）及び３，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピラン（５．８１ｍＬ、６０．５ｍモル）で処理した。室温で１時間撹拌した後、混合液を、飽和水性ＮａＨＣＯ_３で急冷し、水相を追加のＣＨ_２Ｃｌ_２で（２×）抽出した。組み合わせた有機抽出物をＮａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濃縮し、所望の生成物をシリカゲルクロマトグラフィー（０〜１５％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、無色油（このステップの場合２．６０ｇ、収率９７％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３５６（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製２の方法によって実際に調製した。

調製４
（４−アミノ−２−メチルスルファニル−ピリミジン−５−イル）メタノール

スキーム１、ステップＢ：ＬｉＡｌＨ_４（１３．９Ｌ、１４モル、ＴＨＦ中１Ｍ）を、−５℃で１．５時間にわたってエチル４−アミノ−２−スルファニル−ピリミジン−５−カルボキシレート（３．５ｋｇ、１６．４モル）のＴＨＦ（４５Ｌ）溶液に添加した。−５〜０℃で１時間撹拌した後、氷水（５２５ｍＬ）及び１５％水性ＮａＯＨ（５２５ｍＬ）を添加し、続いて追加の氷水（１．６Ｌ）を添加した。０℃で３０分間急冷した後、反応混合物を濾過し、濾塊をＴＨＦ（１Ｌ）で洗浄した。組み合わせたＴＨＦの洗浄物を（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮し、得られた粗生成物を、石油エーテル／ＥｔＯＡｃ（３：１、２Ｌ）の混合物中でスラリーにし、濾過し、再度乾燥させ、さらに精製することなく、黄色固体（２．１ｋｇ、純度８２％、収率７５％）として表題化合物をもたらした。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１７２（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製４の方法によって実際に調製した。

調製７
７−メチルスルファニル−１，４−ジヒドロピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム１、ステップＣ：トリホスゲン（８５９ｇ、２．９モル）を、−３０℃で、１５分にわたって（４−アミノ−２−メチルスルファニル−ピリミジン−５−イル）メタノール（９００ｇ、５．２６モル）のＴＨＦ（２２．５Ｌ）溶液に添加した。反応温度を−３５〜−３０℃に維持しながら、ＤＩＰＥＡ（２．４４９ｇ、１８．９２モル）を１時間にわたって添加した。次に、反応混合物を氷水（３０Ｌ）に注ぎ、２−メチルテトラヒドロフラン（１０Ｌ）を添加した。有機相を水及びブラインで洗浄した。有機相を、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。粗生成物を、石油エーテル／ＥｔＯＡｃ（１：１）を用いてスラリーにし、濾過し、濃縮して、さらに精製を行うことなく、黄色固体を得た（８９０．５ｇ、１．６２モル、純度８３％、収率８６％）。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１９８（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製７の方法によって実際に調製した。

調製１０
１−エチル−７−（メチルチオ）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム１、ステップＤ：７−メチルスルファニル−１，４−ジヒドロピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（２８０ｇ、１．４２モル）のＮＭＰ（２．２４Ｌ）溶液に、室温で、Ｋ_２ＣＯ_３（２９４．２ｇ、２．１３モル）及びヨウ化エチル（３３６．３ｇ、１．９９モル）を添加した。混合物を、５０℃で１６時間撹拌し、次にＣＨ_２Ｃｌ_２（３Ｌ）及び水（６Ｌ）で希釈した。有機相を分離し、水及びブラインで洗浄し、濃縮し、乾燥させ、粗表題化合物（２８６ｇ、１．２７モル、純度８３％、収率９１％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２２６（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製１０の方法によって実際に調製した。

代替調製１０
１−エチル−７−（メチルチオ）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

窒素雰囲気下にて、７−メチルスルファニル−１，４−ジヒドロピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（３２５ｇ、１６４８．０ｍモル）とＤＭＦ（２．４Ｌ）とを共に添加した。次に、この透明溶液に、炭酸セシウム（６６０ｇ、２０２５．６１ｍモル）を添加し、混合物を３０分間撹拌した。ヨードエタン（１７０ｍＬ、２１２０ｍモル）を、２０℃で３０分にわたって滴下添加した。反応混合物を、その温度で２．５時間撹拌した。反応混合物を、氷水とブライン（１：１、１２Ｌ）にゆっくりと注いだ。得られたスラリーを、２時間撹拌した。固体を濾過し、水で（２×２Ｌ）洗浄し、気流による真空下、３日にわたって乾燥させ、黄色固体（３１８ｇ、純度９９％、８７％）として化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２２６（Ｍ＋Ｈ）。

調製１３
１−メチル−７−メチルスルファニル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム１、ステップＤ：トリフェニルホスフィン（１．６１ｇ、６．０８ｍモル）及び７−メチルスルファニル−１，４−ジヒドロピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（１．００ｇ、５．０７ｍモル）のＴＨＦ（２５ｍＬ）溶液に、室温で、ＭｅＯＨ（０．２４８ｍＬ、６．０８ｍモル）を添加し、続いてＤＩＡＤ（１．２１ｍＬ、６．０８ｍモル）を、周囲温度にて滴下添加した。一晩撹拌した後、減圧下で溶媒を除去し、得られた黄色油を、シリカゲルクロマトグラフィー（４０〜５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、白色固体（１．０８ｇ、５．１１ｍモル、定量）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２１２（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製１３の方法によって実際に調製した。

調製１５
１−エチル−７−（メチルスルホニル）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム１、ステップＥ：撹拌した１−エチル−７−（メチルチオ）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（２８６ｇ、１．２４モル）のＡＣＮ（２．８Ｌ）溶液及び水（１．４Ｌ）中に、固体としてペルオキソ一硫酸カリウム（１５２６ｇ、２．４８モル）を添加し、得られた混合物を、１０〜２０℃で１６時間撹拌した。反応混合物を濾過し、得られた濾塊をＣＨ_２Ｃｌ_２で洗浄した。組み合わせた濾液及びＣＨ_２Ｃｌ_２を、５％Ｎａ_２ＳＯ_３、水、及びブラインで洗浄した。有機相を、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濃縮し、表題化合物（１１３．８ｇ、純度９３％、収率４１％）をもたらした。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２５８（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製１５の方法によって実際に調製した。

代替調製１５
１−エチル−７−（メチルスルホニル）−１，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

１−エチル−７−メチルスルファニル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（５５０ｇ、２．４４モル）を、ＡＣＮ（７Ｌ）及び水（３Ｌ）と組み合わせた。この溶液に、１２．５℃で、ペルオキソ一硫酸カリウム（３０７０ｇ、４．９モル）を、１０回に分けて１００分にわたって添加した。この温度で３時間撹拌した後、固体を濾過し、ＤＣＭ（４Ｌ）で洗浄した。層を分離し、有機層を、５％Ｎａ_２ＳＯ_３（３Ｌ）、水（２Ｌ）、ブライン（２Ｌ）で連続して洗浄し、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させた。有機層を濾過し、組み合わせ、減圧下にて濃縮した。溶媒の９５％を濃縮した後、沈殿した固体を濾過し、いくつかの色のついた不純物を除去した。濾過した固体を２回ＡＣＮで（２×５００ｍＬ）洗浄し、気流による真空下で乾燥させ、最初のロットとして生成物３４０ｇを得た。母液を減圧下にて濃縮し、乾燥させた。次に残留物を、最少量のＡＣＮで粉砕し、固体を濾過し、二番物３４ｇを得た。組み合わせたロットにより、オフホワイト固体として表題化合物（３７４ｇ、６０％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２５８（Ｍ＋Ｈ）。

調製１７
７−メチルスルホニル−１−［（１Ｒ）−１−メチル−２−テトラヒドロピラン−２−イルオキシ−エチル］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム１、ステップＩ：７−メチルスルファニル−１−［（１Ｒ）−１−メチル−２−テトラヒドロピラン−２−イルオキシ−エチル］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３」オキサジン−２−オン（７００ｍｇ、２．０６ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（１０ｍＬ）懸濁液を、室温で、ｍＣＰＢＡ（１．０７ｇ、４．５ｍモル、７０〜７５％試薬等級）で処理した。２０分後、固体を濾過し、追加のＣＨ_２Ｃｌ_２で洗浄した。有機濾液を組み合わせ、ＮａＨＣＯ_３飽和水溶液（２×）及びブラインで洗浄し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して乾燥させた。物質をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、無色油（５８９ｍｇ、７７％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３７２（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製１７の方法によって実際に調製した。

調製２２
（Ｓ）−（４−（１−アミノエチル）フェニル）メタノール

スキーム２、ステップＪ：反応の温度を３０℃未満に維持しながら、撹拌したメチル（Ｓ）−４−（１−アミノエチル）ベンゾエート（１００ｇ、５５８ｍモル）のＴＨＦ（２．２Ｌ）溶液に、ＬｉＡｌＨ_４（５６０ｍＬ、５６０ｍモル、ＴＨＦ中１Ｍ）を１時間にわたって添加した。反応混合物を２時間撹拌し、次いで０℃に冷却した。水（１００ｍＬ）を滴下添加し、続いて無水Ｎａ_２ＳＯ_４（１ｋｇ）を添加し、得られた混合物を一晩撹拌した。混合物を、珪藻土を通して濾過し、得られた白色固体を真空下で乾燥させ、表題化合物（８１．８ｇ、９７％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１３５（Ｍ＋ＮＨ_２）。

調製２３
（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］塩酸エタンアミン

スキーム２、ステップＫ：反応温度を２５℃未満に維持しながら、（Ｓ）−（４−（１−アミノエチル）フェニル）メタノール（８１．８ｇ、５４１ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（２．５Ｌ）溶液に、ＳＯＣｌ_２（８０ｍＬ、１．１ｍモル）を、３０分にわたって滴下して添加した。形成された厚い沈殿物を、反応にわたって溶解させた。４時間撹拌した後、混合物を濃縮して黄色固体を得た。ＡＣＮ（１Ｌ）を添加し、混合物を５００ｍＬに濃縮し、得られた固体を濾過し、真空下で乾燥させたオフホワイト固体を得た。生成物を、乾燥後にオフホワイト固体として得、母液も濃縮して、黄色固体として純度がより低い生成物（約２０ｇ）をもたらした。２つの生成物のロットを組み合わせ、表題化合物（１１１ｇ、７８％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１７０（Ｍ＋Ｈ）。

調製２４
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（２，２，２−トリフルオロアセチル）アミノ］エチル］フェニル］−メチル］−ピペラジン−１−カルボキシレート

スキーム２、ステップＬ：（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］塩酸エタンアミン（１０ｇ、４８．５ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（１６０ｍＬ）溶液に、０℃で、トリフルオロ無水酢酸（８．２ｍＬ、５８ｍモル）を添加した。添加温度を５℃未満に維持しながら、ＴＥＡ（１５ｍＬ、１０８ｍモル）を添加した。０℃で１時間撹拌した後、反応混合物を濃縮し、乾燥させ、ＡＣＮ（１２０ｍＬ）を添加し、続いてｔｅｒｔ−ブチルピペラジン−１−イルカルボネート（１３．５ｇ、７２．５ｍモル）を添加した。Ｋ_２ＣＯ_３（２０ｇ、１４４．７ｍモル）を添加し、混合物を６０℃に加熱し、１７時間撹拌した。溶媒を真空で除去し、ＥｔＯＡｃ（１Ｌ）を添加した。固体を濾過除去し、ＥｔＯＡｃを水及びブラインで洗浄した。有機相をＮａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濾過し、濃縮して乾燥させた。得られた粗生成物を、シリカゲルクロマトグラフィー（１０〜５０％アセトン／ＣＨ_２Ｃｌ_２）によって精製し、白色泡（１５．８ｇ、７８％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４１６（Ｍ＋Ｈ）。

調製２５
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート

スキーム２、ステップＭ、サブステップ１：ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（２，２，２−トリフルオロアセチル）アミノ］エチル］フェニル］−メチル］−ピペラジン−１−カルボキシレート（２０３ｇ、０．４８９モル）のＥｔＯＨ（２．４Ｌ）溶液に、室温で、５Ｍの水性ＮａＯＨ（４８０ｍＬ、２．４０モル）を添加した。室温で３．５時間撹拌した後、反応混合物を濃縮し、ＥｔＯＨの大部分を除去した。ＥｔＯＡｃ（２Ｌ）を添加し、残留物を溶解し、溶液を水及びブラインで洗浄した。組み合わせた水相を、ＥｔＯＡｃで（２×）抽出した。組み合わせた有機抽出物をＮａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濾過し、濃縮して乾燥させ、さらに精製を行うことなく、黄色粘性油（１５６ｇ、９３％）として粗表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３２０（Ｍ＋Ｈ）。

調製２６
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソプロピル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート

スキーム２、ステップＭ、サブステップ２：ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（４６．７ｇ、１３６ｍモル）及び１−イソプロピル−７−メチルスルホニル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（４０．６ｇ、１５０ｍモル）のＤＭＳＯ（２７２ｍＬ）溶液に、ＣｓＦ（２０．７ｇ、１３６ｍモル）及びＤＩＰＥＡ（２３．７ｍＬ、１３６ｍモル）を添加した。混合物を、７５〜８０℃で１７時間、撹拌した。次に、混合物を室温に冷却し、水（１．２Ｌ）で希釈し、ＥｔＯＡｃで（３×）抽出し、ブラインで洗浄し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して乾燥させた。得られた粗生成物を、シリカゲルクロマトグラフィー（３０〜６０％のアセトン／ＣＨ_２Ｃｌ_２）によって精製し、白色泡（５４ｇ、７８％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：５１１（Ｍ＋Ｈ）。

調製２７
１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン塩酸塩

スキーム２、ステップＮ、サブステップ１：内部温度を３５℃未満に維持しながら、ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソプロピル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（５４ｇ、１０６ｍモル）のジオキサン（２７０ｍＬ）溶液に、ＨＣｌ（２６４ｍＬ、ジオキサン中４Ｍ）を添加した。次に、ＭｅＯＨ（１００ｍＬ）を添加し、撹拌を促進した。混合物を、３０℃で２時間撹拌し、次に濃縮し、真空下で乾燥させた白色固体を得た。乾燥後、さらに精製を行うことなく、淡黄色固体（６０ｇ、定量）として表題生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４１１（Ｍ＋Ｈ）。

調製２８
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート

スキーム２、ステップＮ、サブステップ１：ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（５２ｇ、１５１．４ｍモル）及び１−エチル−７−メチルスルホニル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（４２．８ｇ、１６６ｍモル）のＤＭＳＯ（３００ｍＬ）溶液に、ＣｓＦ（２３ｇ、１５１．４ｍモル）及びＤＩＰＥＡ（２６．５ｍＬ、１５２ｍモル）を添加した。混合物を、７５〜８０℃で４時間、撹拌した。混合物を室温に冷却し、水（１．２Ｌ）で希釈し、ＥｔＯＡｃで（３×）抽出し、ブラインで洗浄し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮した。粗生成物を、シリカゲルクロマトグラフィー（５０〜７５％［１０％ＥｔＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２］／ヘキサン）によって精製し、白色泡（５３．３ｇ、７１％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４９７（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製２８の方法によって実際に調製した。

代替調製２８
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート

ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（４００ｇ、１２５２ｍモル）とＤＭＳＯ（２．２Ｌ）とを、共に加えた。次に、この溶液に、１−エチル−７−メチルスルホニル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（３２５ｇ、１２００．１ｍモル）、ＣｓＦ（２００ｇ、１３１６．５９ｍモル）及びＤＩＰＥＡ（２４０ｍＬ、１３８０ｍモル）を連続して添加した。次いで、反応混合物を７５℃で５時間加熱し、室温に暖め、一晩穏やかに撹拌した。反応混合物を、氷冷水／ブライン（１：１）にゆっくりと注いだ。沈殿した固体を濾過し、水で（２×１．５Ｌ）洗浄し、一晩、気流による真空下で乾燥させた。得られた湿塊（８００ｇ）を、さらに精製することなく先に進めた。

調製４６
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン塩酸塩

スキーム２、ステップＮ、サブステップ１：内部温度を３０℃未満に維持しながら、ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（４８．３ｇ、９７．３ｍモル）のジオキサン（１４０ｍＬ）とＭｅＯＨ（１００ｍＬ）との混合物溶液に、２０分にわたって、ＨＣｌ（ジオキサン中４Ｍ、２４３ｍＬ）を添加した。混合物を、３０℃で１時間撹拌し、次にそれを濃縮して乾燥させ、真空下で一晩乾燥させ、白色固体をもたらし、表題化合物（５４ｇ、定量）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３９７（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製４６の方法によって実際に調製した。

代替調製４６
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

粗湿ｔｅｒｔ−ブチル−４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル］アミノ］エチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（８００ｇ、理論上１２５２ｍモル）を、１，４−ジオキサン（２Ｌ）中に溶解させた。ＨＣｌ（３．６Ｌ、２９．２モル、水性８モル／Ｌ）を、約３０分にわたって１５℃で冷却しながら添加し、続いてＤＣＭ（１Ｌ）を添加した。層を分離し、酸性溶液をＤＣＭで（２×５００ｍＬ）洗浄した。室温で、水相に２０％Ｎａ_２ＣＯ_３を添加し、ｐＨ９．５〜１０にした。ＤＣＭ（１Ｌ）を添加し、層を分離し、水層をＤＣＭで（２×５００ｍＬ）抽出した。組み合わせた有機抽出物を、ブラインで洗浄し、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させ、濃縮し、黄色発泡性油になるまで乾燥させ、それを９０：９：１〜７０：２９：１のヘキサン、ＤＣＭ、ＥｔＯＨで溶出するシリカゲル濾過により精製し、黄色泡性固体として表題化合物（２１９ｇ、２ステップで５３％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３９７（Ｍ＋Ｈ）。

調製４９
アリル４−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレートジヒドロクロリド

スキーム２、ステップＬ、サブステップ２：圧力容器に、（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］塩酸エタンアミン（８５０ｍｇ、４．１２ｍモル）、アロック−Ｎ−ピペラジン（１．４３ｇ、８．２５ｍモル）、Ｋ_２ＣＯ_３（１．７１ｇ、１２．４ｍモル）及びＡＣＮ（２０．６ｍＬ）を備え付けた。得られた懸濁液に覆いをし、６０℃で２４時間加熱し、次に濃縮した。粗白色固体を、ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２中の０〜１０％７Ｎ−ＮＨ_３を使用してシリカゲルクロマトグラフィーによって精製し、所望の生成物と未反応のアロック−Ｎ−ピペラジンとの混合物をもたらした。この物質を、逆相クロマトグラフィー（０〜１００％ＡＣＮ／水性１０ｍＭ ＮａＨＣＯ_３）によって再精製し、無色油（９００ｍｇ、７１％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１７１（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製４９の方法によって実際に調製した。

調製５２
１−イソブチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム２、ステップＮ、サブステップ１、アリル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソブチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］−フェニル］メチル］ピペラジン−１−カルボキシレート（１．１５ｇ、２．２６ｍモル）を、ＴＨＦ（２２．６ｍＬ）中に溶解させた。ジメドン（３．２７ｇ、２２．６ｍモル）及びＰｄ（ＰＰｈ_３）_４（１３１ｍｇ、０．１１３ｍモル、５モル％）を連続して添加し、混合物を、室温で３０分間撹拌した。反応混合物を、ＭｅＯＨで予め洗浄したＳＣＸカートリッジに送った。不要な試薬をＭｅＯＨで溶出し、所望の生成物をＭｅＯＨ中の２Ｎ ＮＨ_３で溶出した。アンモニア化溶出液を濃縮して、白色固体（９８０ｍｇ、定量）として表題化合物を得た。

調製５３
ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェニル］メトキシ］アゼチジン−１−カルボキシレート

スキーム２、ステップＬ、サブステップ２：ｔｅｒｔ−ブチル３−ヒドロキシアゼチジン−１−カルボキシレート（４．１９ｇ、２３．７ｍモル）を、ＤＭＡ（２３．７ｍＬ）中に溶解させ、ＮａＨ（１．４ｇ、３５．６ｍモル、６０重量％）を、室温で添加した。３分間撹拌した後、（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］塩酸エタンアミン（２．４４ｇ、１１．９ｍモル）を、最少量のＤＭＡ中に添加し、反応物を１時間撹拌した。混合物を、半飽和ブラインで希釈し、ＥｔＯＡｃで（３×）抽出した。有機抽出物を組み合わせ、（ＭｇＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して、残留ＤＭＡを含有する黄色油として粗生成物をもたらした。生成物にはさらに精製を行わなかった（収率１００％と想定）：ＭＳ（ｍ／ｚ）：３０７（Ｍ＋Ｈ）。

調製５４
７−［［（１Ｓ）−１−［４−（アゼチジン−３−イルオキシメチル）フェニル］エチル］アミノ］−１−エチル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム２、ステップＮ、サブステップ１：ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メトキシ］アゼチジン−１−カルボキシレート（１．８５ｇ、３．８３ｍモル）をＣＨ_２Ｃｌ_２（２９ｍＬ）中に溶解させ、ＴＦＡ（２．８９ｍＬ、３８．３ｍモル）を０℃で添加し、冷浴が室温へと効力を失う間に６時間撹拌した。溶媒及び酸を真空によって除去し、淡黄色油（３．６６ｇ、９９％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３８４（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製５４の方法によって実際に調製した。

調製７２
７−［［（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］エチル］アミノ］−１−イソブチル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム３、ステップＱ：ＳＯＣｌ_２（２．１ｍＬ、４．２ｍモル）を、シリンジによって、Ｋ_２ＣＯ_３（７７６ｍｇ、５．６１ｍモル）及び７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ヒドロキシメチル）フェニル］エチル］アミノ］−１−イソブチル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（５００ｍｇ、１．４０ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（１４ｍＬ）懸濁液に添加した。５時間後、溶媒を真空によって除去し、Ｋ_２ＣＯ_３との共混合物（収率１００％と想定）として粗ベンジル塩化物をもたらした。この混合物にはさらに精製を行わなかった。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３７５（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製７２の方法によって実際に調製した。

調製７５
ｔｅｒｔ−ブチル６−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソブチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］−２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−２−カルボキシレート

スキーム３、ステップＱ：７−［［（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］エチル］アミノ］−１−イソブチル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（５２０ｍｇ、１．４ｍモル）、Ｋ_２ＣＯ_３（５８０ｍｇ、４．２モル）及びｔｅｒｔ−ブチル２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−２−カルボキシレートシュウ酸塩（５５０ｍｇ、１．８ｍモル）を、ＡＣＮ（７ｍＬ）中に懸濁させ、５０℃に１６時間加熱し、次に７０℃に２時間加熱した。ヨウ化ナトリウム（２１０ｍｇ、１．４ｍモル）を添加し、反応物を７０℃で２時間加熱し、次に３時間還流状態にした。混合物を室温に冷却し、溶媒を蒸発させた。得られた残留物を、ＣＨ_２Ｃｌ_２中にすくい上げ、飽和水性ＮａＨＣＯ_３飽和水溶液で洗浄した。水層を、ＣＨ_２Ｃｌ_２で（３×）抽出した。組み合わせた有機抽出物を、ブラインで洗浄し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して黄色固体として粗生成物をもたらした。粗生成物には、さらに精製を行うことなく（収率１００％と想定）次のステップを行った。ＭＳ（ｍ／ｚ）：５３７（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製７５の方法によって実際に調製した。

調製７９
ｔｅｒｔ−ブチル４−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソプロピル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］ピペラジン−１−カルボキシレート

スキーム３、ステップＰ：７−［［（１Ｓ）−１−（４−ブロモフェニル）エチル］アミノ］−１−イソプロピル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（６００ｍｇ、１．５３ｍモル）、ｔｅｒｔ−ブチル３−（ヒドロキシメチル）アゼチジン−１−カルボキシレート（４００ｍｇ、２．１ｍモル）、ＣｕＢｒ（１００ｍｇ、０．７０ｍモル）、Ｋ_２ＣＯ_３（４５０ｍｇ、３．２ｍモル）、及びＬ−ヒドロキシプロリン（５００ｍｇ、４ｍモル）を、ＤＭＳＯ（１５ｍＬ）中に溶解させ、８０℃で一晩加熱した。反応混合物を室温に冷却し、水に注ぎ、ＥｔＯＡｃに抽出し、濃縮した。粗生成物を、クロマトグラフィー（５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、黄褐色泡（７６１ｍｇ、４６％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４９７（Ｍ＋Ｈ）。

以下の化合物を、調製７９の方法によって実際に調製した。

調製８１
ｔｅｒｔ−ブチル３−エチニルアゼチジン−１−カルボキシレート

アジ化ナトリウム（２．４ｇ、３７ｍモル）を、ＡＣＮ（１４ｍＬ）中に懸濁し、塩化メタンスルホニル（２．７ｍＬ、３５ｍモル）を、４５秒にわたって添加した。得られた混合物を、室温で一晩撹拌し、次いで０℃に冷却し、その時点で、ジメチル（２−オキソプロピル）ホスホン酸塩（４．３ｍＬ、３１ｍモル）を、３０秒にわたって添加し、続いてＣｓ_２ＣＯ_３（１１Ｇ、３４ｍモル）を添加した。この混合物を、０℃で３０分間撹拌し、次に室温で２．５時間撹拌した。この混合物を、０℃に再冷却し、ＭｅＯＨ（１５．５ｍＬ）を添加した。１時間後、ｔｅｒｔ−ブチル３−ホルミルアゼチジン−１−カルボキシレート（３．０ｇ、１６ｍモル）を添加し、続いてＣｓ_２ＣＯ_３（９．１ｇ、２８ｍモル）を添加し、２５分後に、氷水浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。減圧下にて溶媒を除去し、５０％ＭＴＢＥ／ヘキサンを使用したシリカゲルクロマトグラフィーによって精製し、橙色油を得た。淡黄色油（２．６８ｇ、９３％）として表題化合物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：１８１（Ｍ＋Ｈ）。

調製８２
ｔｅｒｔ−ブチル３−［２−［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］エチル］アゼチジン−１−カルボキシレート

スキーム３、ステップＰ：窒素を、５分間、７−［［（１Ｓ）−１−（４−ブロモフェニル）エチル］アミノ］−１−エチル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（１．８ｇ、４．７７ｍモル）及びＴＥＡ（９．９８ｍＬ、７１．６ｍモル）のＴＨＦ（２４ｍＬ）溶液を通してバブリングした。テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（０）（４５５ｍｇ、０．３８２ｍモル、８モル％）及びＣｕＩ（１８ｍｇ、０．０９５ｍモル、２モル％）を添加し、さらに５分間、脱ガスを続けた。ｔｅｒｔ−ブチル３−エチニルアゼチジン−１−カルボキシレート（１．２６ｇ、６．６８ｍモル）を添加し、２０秒間、脱ガスを繰り返した。反応物を６０℃に加熱し、約２４時間撹拌し、次に熱を除去し、さらに２４時間撹拌を続けた。混合物を水で希釈し、ＣＨ_２Ｃｌ_２で（３×）抽出し、（ＭｇＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して粗生成物を得、それを２５〜８５％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンで溶出して、シリカゲルクロマトグラフィーによって精製し、黄色泡（１．１４ｇ、５０％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４７８（Ｍ＋Ｈ）。

調製８３
ｔｅｒｔ−ブチル３−［２−［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］エチル］アゼチジン−１−カルボキシレート

スキーム３、ステップＰ：ｔｅｒｔ−ブチル３−［２−［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］エチニル］アゼチジン−１−カルボキシレート（１．１４ｇ、２．３９ｍモル）及びＰｄ／ＣａＣＯ_３（１．６７ｍｇ、１０重量％Ｐｄ、０．１５７ｍモル）を、水素雰囲気下で１７時間にわたって、ＴＨＦ（２４ｍＬ）中で撹拌した。反応混合物を、珪藻土を通して濾過し、固体を熱ＥｔＯＡｃ／ＭｅＯＨで洗浄した。粗生成物を、２５〜１００％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンで溶出し、シリカゲルを通してクロマトグラフ処理し、淡黄色泡（８９０ｍｇ、７７％）として表題生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４８２（Ｍ＋Ｈ）。

調製８４
ベンジルＮ−［（１Ｓ）−１−（４−ヒドロキシフェニル）エチル］カルバミン酸塩

スキーム４：クロロギ酸ベンジル（３．２０ｍＬ、２０．６ｍモル）を、（Ｓ）−４−（１−アミノエチル）フェノール（２．７５ｇ、１９．６ｍモル）とＮａＨＣＯ_３（２．０６ｇ、２４．６ｍモル）との混合物の、ＴＨＦ（２０ｍＬ）と水（２０ｍＬ）との混合液中に、０℃で滴下添加した。３０分後、氷水浴を除去し、反応混合物を室温で７２時間撹拌した。混合物をＥｔＯＡｃで希釈し、有機相を分離し、０．１Ｎの水性ＨＣｌ及びブラインで洗浄した。有機相を（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮し、得られた粗物質を、シリカゲル（０〜５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）を通して精製し、白色固体（３．８４ｇ、７１％）として表題生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２７２（Ｍ＋Ｈ）。

調製８５
ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−（ベンジルオキシカルボニルアミノ）エチル］フェノキシ］−メチル］アゼチジン−１−カルボキシレート

スキーム４、ステップＲ：０℃で、ＤＩＡＤ（９８０ｍＬ、５ｍモル）を、ｔｅｒｔ−ブチル３−（ヒドロキシメチル）アゼチジン−１−カルボキシレート（７５０ｍｇ、４ｍモル）、ＰＰｈ_３（１．３ｇ、５ｍモル）、及びベンジルＮ−［（１Ｓ）−１−（４−ヒドロキシフェニル）エチル］カルボキシレート（１．４ｇ、１．２５ｍモル）のＴＨＦ（１６ｍＬ）溶液に、１５分にわたって滴下添加した。添加が完了した後、氷水浴を除去し、反応物を、室温で４．５時間撹拌した。次に、反応物をＥｔＯＡｃで希釈し、水、０．５Ｎの水性ＮａＯＨ、及びブラインで洗浄し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮した。生成物を、０〜５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いたシリカゲル溶出を通して精製し、２４％出発フェノールで汚染された生成物を得た。上記のプロトコルを、この混合物を使用して繰り返し、油（１．１２ｇ、６４％）として所望の生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：３４１（Ｍ−ＢＯＣ＋Ｈ）、４６３（Ｍ＋Ｎａ）。

調製８６
ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−アミノエチル］フェノキシ］メチル］アゼチジン−１−カルボキシレート

スキーム４、ステップＭ、サブステップ１：ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−（ベンジルオキシカルボニルアミノ）エチル］フェノキシ］−メチル］アゼチジン−１−カルボキシレート（１．１２ｇ、２．５４ｍモル）及び１０％Ｐｄ／Ｃ（３３５ｍｇ、０．３１５ｍモル）を、水素下（１３８ｋＰａ）にて４５分間、ＥｔＯＨ（６０ｍＬ）中で撹拌した。反応混合物を濾過し、濃縮して、さらに精製を行うことなく（収率１００％と想定）油をもたらした。ＭＳ（ｍ／ｚ）：２９０（Ｍ−ＮＨ_２）。

調製８７
ｔｅｒｔ−ブチル３−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−エチル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェノキシ］メチル］−２，５−ジヒドロピロール−１−カルボキシレート

スキーム３、ステップＰ：１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−（４−ヒドロキシフェニル）エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（０．３３０ｇ、１．０５ｍモル）、ｔｅｒｔ−ブチル３−（クロロメチル）−２，５−ジヒドロピロール−１−カルボキシレート（２００ｍｇ、０．９ｍモル）、及びＫ_２ＣＯ_３（４００ｍｇ、３ｍモル）のアセトン（７ｍＬ）溶液を、密封したチューブ内で１６時間、６０℃で加熱し、次に室温で７２時間撹拌した。溶液を水で希釈し、ＤＣＭで２回抽出した。組み合わせた有機層を（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、減圧下にて濃縮した。粗生成物を、逆相クロマトグラフィー（０〜１００％ＣＨ_３ＣＮ／水）によって精製し、橙色固体（２５０ｍｇ、０．５０４ｍモル、４８％）として表題化合物をもたらした。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４９６（Ｍ＋Ｈ）。

調製８８
ｔｅｒｔ−ブチル６−［［４−［（１Ｓ）−１−［（１−イソプロピル−２−オキソ−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−７−イル）アミノ］エチル］フェニル］メチル］−２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−２−カルボキシレート

スキーム３、ステップＰ：ＤＩＰＥＡ（０．７５ｍＬ、４．３ｍモル）を、７−［［（１Ｓ）−１−［４−（クロロメチル）フェニル］エチル］アミノ］−１−イソプロピル−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（１ｇ、２．８ｍモル）及びｔｅｒｔ−ブチル２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−２−カルボキシレート（８２０ｍｇ、４．１ｍモル）のＤＭＳＯ（１４ｍＬ）溶液に添加し、得られた混合物を、５０℃で１６時間加熱し、次いで室温で７２時間撹拌した。混合物を水に注ぎ、ＥｔＯＡｃで抽出し、（ＭｇＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮した。粗生成物を、シリカゲル（ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２中５〜７％の７Ｎ ＮＨ_３）を通して精製し、表題化合物（９７８ｍｇ、６８％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：５２３（Ｍ＋Ｈ）。

実施例１
１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム２、ステップＮ：１−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン塩酸塩（５９．６ｇ、１１３ｍモル）及びＴＥＡ（４７．５ｍＬ、３４１ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（１．１３Ｌ）溶液に、−７５℃で１５分にわたって、塩化アクリロイル（８０ｍＬのＣＨ_２Ｃｌ_２中１１．１ｍＬ、１３６ｍモル）を添加した。この添加中、反応温度を−７０℃未満に維持した。３０分後、反応物をＮａＨＣＯ_３飽和水溶液（１００ｍＬ）で急冷し、混合物を周囲温度に温めた。水（２００ｍＬ）を添加し、混合物をＣＨ_２Ｃｌ_２で（３×）抽出し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して黄色泡を得た。粗生成物を、シリカゲルクロマトグラフィー（６〜１０％［１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２］／ＥｔＯＡｃ）によって精製し、白色泡（４２．５ｇ、８１％）として表題生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４６５（Ｍ＋Ｈ）。

実施例２
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン

スキーム２、ステップＮ：１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン塩酸塩（５３．６ｇ、１２４ｍモル）及びＴＥＡ（５２ｍＬ、３７３ｍモル）のＣＨ_２Ｃｌ_２（１．２Ｌ）溶液に、−７５℃で１５分にわたって、塩化アクリロイル（８０ｍＬのＣＨ_２Ｃｌ_２中１２．１ｍＬ、１４９ｍモル）を添加した。この添加中、反応温度を−７０℃未満に維持した。１時間後、反応物を、ＮａＨＣＯ_３飽和水溶液（１００ｍＬ）で急冷し、それに続き混合物を周囲温度に温めた。水（２００ｍＬ）を添加し、混合物をＣＨ_２Ｃｌ_２で（３×）抽出し、（Ｎａ_２ＳＯ_４）で乾燥させ、濾過し、濃縮して黄色泡を得た。粗生成物を、リカゲルクロマトグラフィー（６〜１０％［１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２］／ＥｔＯＡｃ）によって精製し、淡黄色泡（３０．２ｇ、５４％）として表題生成物を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４５１（Ｍ＋Ｈ）。

以下の実施例を、実施例２の方法によって実際に調製した。

実施例２３
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン４−ヒドロキシ安息香酸塩

１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（ピペラジン−１−イルメチル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（３７６ｇ、７５８．６ｍモル）のＤＣＭ（６７００ｍＬ）溶液に、ＴＥＡ（１１６ｍＬ、８３２ｍモル）を添加した。混合物を−７０℃未満に冷却した。−６８℃未満の温度で２時間にわたって、塩化アクリロイル（６４．８ｍＬ、７９６ｍモル）のＤＣＭ（７５０ｍＬ）溶液を添加した。添加後、反応物を、−６８℃未満で１５分撹拌した。水（１５００ｍＬ）を添加し、溶液を室温に温めた。層を分離した。有機層を、水（２×１Ｌ）、５０％飽和ＮａＨＣＯ_３（１Ｌ）及びブライン（１Ｌ）で洗浄し、Ｎａ_２ＳＯ_４上で乾燥させた。この溶液を、４−ヒドロキシ安息香酸（１１５ｇ、８３２．６１ｍモル）のＣＰＭＥ（１８００ｍＬ）溶液に添加した。得られた濁った混合物を、３５〜４０℃に加熱し、黄色溶液を得、それを珪藻土に通して濾過し、ＤＣＭとＣＰＭＥ（１：１）との混合液で洗浄した。濾液及び洗浄物を組み合わせ、１／４の容量に濃縮した。得られたスラリーを、ヘプタンと（２×１Ｌ）共蒸発させ、濾過し、ヘプタンで洗浄し、窒素下、真空で一晩乾燥させ、表題化合物（３８２．７ｇ、８１％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４５１（Ｍ＋Ｈ）。粗１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イウム−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、４−ヒドロキシ安息香酸（６２４ｇ、１０６０ｍモル）を、アセトン（９．４Ｌ）とヘプタン（９．４Ｌ）とを予混合した溶媒中に懸濁させ、スラリーを室温で５時間撹拌した。固体を濾過し、１：１のヘプタン／アセトンで（３×５００ｍＬ）洗浄した。濾液及び洗浄物を蒸発させた。残留物に、ヘプタン（２Ｌ）を添加し、濾過し、集収した固体を５０℃で真空下にて乾燥させ、淡黄色固体（３５７ｇ、５５％）として表題化合物を得た。

代替調製実施例２３
結晶性１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン４−ヒドロキシ安息香酸塩
１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（２８．５ｇ、６３．３ｍモル）のＣＰＭＥ（４３０ｍＬ）溶液に、６０℃で窒素下にて、ＣＰＭＥ（１１５ｍＬ）中に溶解した４−ヒドロキシ安息香酸（８．７４ｇ、６３．３ｍモル）を添加した。６０℃で、３００ｒｐｍにて数分撹拌した後、撹拌を５０ｒｐｍに減速し、試料を２時間撹拌した。この時点で、温度を４５℃に上げ、試料を２００ｒｐｍで４時間撹拌した。次に、試料を室温にした。フラスコの壁をこすり、固体を除去し、その固体を濾過により収集し、空気乾燥させて第一物を得た。濾液を減圧下にて減少させ、約半分の容量にし、氷浴中で撹拌しながら冷却し、さらなる固体をもたらした。この固体を収集し、第一物に添加した。生成物を、７０℃の真空オーブン内で一晩乾燥させ、表題化合物（３３．４ｇ、５６．７ｍモル、８９．７％）を得た。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４５１（Ｍ＋Ｈ）。

Ｘ線粉末回折（ＸＲＤ）
結晶性固体のＸＲＤパターンを、ＣｕＫａ源λ＝１．５４０６０Å）を装備したＢｒｕｋｅｒ Ｄ４ ＥｎｄｅａｖｏｒのＸ線粉末回折計、及び３５ｋＶ及び５０ｍＡで操作するＶａｎｔｅｃ検出器を使用して得た。試料を、２θにおいて０．００９°のステップサイズ及び０．５秒／ステップの走査速度、ならびに０．６ｍｍ発散、５．２８固定散乱防止、及び９．５ｍｍ検出器スリットを用いて、２θにおいて４〜４０°で走査した。乾燥粉末を、石英試料ホルダーに充填し、スライドガラスを使用して平滑表面を得た。結晶形態回折パターンを、周囲温度及び相対湿度で収集した。任意の所与の結晶形態の回折ピークの相対強度は、結晶形態及び晶癖などの要素から生じる好ましい配向により、変化する可能性があることは、結晶学の分野において周知である。好ましい配向の効果が存在する場合、ピーク強度は変化するが、多形体の特有なピーク位置は変化しない。例えば、Ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ Ｐｈａｒｍａｃｏｐｅｉａ＃２３，Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｆｏｒｍｕｌａｒｙ＃１８，ｐａｇｅｓ １８４３−１８４４，１９９５を参照のこと。さらに、任意の所与の結晶形態の角度ピーク位置は、わずかに変化する可能性があることも、結晶学の分野において周知である。例えば、ピーク位置は、試料が分析される温度または湿度、試料の変位、または内部標準が存在するかしないかの変化により、変化し得る。本件の場合、２θにおける±０．２のピーク位置変動性は、示した結晶形態の明確な識別を妨げることなくこれらの潜在的変化を考慮するだろう。結晶形態の確認は、（°２θの単位における）識別ピーク、典型的には、より突出したピークの任意の独自の組み合わせに基づきなされてよい。周囲温度及び相対湿度にて収集された結晶形態回折パターンは、８．８５３及び２６．７７４°２θで、ＮＩＳＴ６７５標準ピークに基づき調整する。

実施例２３で調製された試料は、以下の表１６に記載されるように、回折ピーク（２シータ値）を有する、特に１５．８、１３．９、及び１３．４からなる群から選択されるピークの１つ以上と組み合わせて１６．８でピークを有するため、ＣｕＫａ方射線を使用したＸＲＤパターンによって特徴付けられ、０．２度の回折角度の範囲を有する。

実施例２４
結晶性１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンビス（２，５−ジヒドロキシ安息香酸）塩

１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（３．９４ｇ、８．７３ｍモル）のＥｔＯＨ（７ｍＬ）溶液に、４８℃で、１０００ｒｐｍにて撹拌しながら、ＥｔＯＨ（８ｍＬ）中に溶解した２，５−ジヒドロキシ安息香酸（３５０ｍｇ、１７．８ｍモル）を添加し、暗黄色溶液を得た。試料を周囲温度に冷却し、撹拌を３００ｒｐｍに減速した。真空濾過によって分離され、白色固体が生じた。バイアルをＥｔＯＨ（１０ｍＬ）ですすぎ、それを塊に添加した。塊を、窒素流下の位置で１０分間、次に一晩周囲真空オーブン（６．３４ｇ、８．３５ｍモル、９５．６２％）内で乾燥させた。ＭＳ（ｍ／ｚ）：４５１（Ｍ＋Ｈ）。

実施例２４で調製された試料は、以下の表１７に記載されるように、回折ピーク（２シータ値）を有する、特に１７．０、２４．０、及び１９．８からなる群から選択されるピークの１つ以上と組み合わせて２４．７でピークを有するため、ＣｕＫａ方射線を使用したＸＲＤパターンによって特徴付けられ、０．２度の回折角度の範囲を有する。

実施例２５
結晶性１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンビス（サッカリン）塩

１−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン（９５５ｍｇ、２．１２ｍモル）のＥｔＯＨ（３ｍＬ）溶液に、７０℃で、１０００ｒｐｍにて撹拌しながら、ＥｔＯＨ（７ｍＬ）中のサッカリン（８６２ｍｇ、４．６６ｍモル）を添加し、白色不透明スラリーを得た。白色ゴムが形成され、さらにＥｔＯＨ（１０ｍＬ）を添加した。．試料を３０分間撹拌し、ゴムが白色固体のスラリーに変化した。試料を室温にし、真空濾過によって白色固体を分離した（１．６１ｇ、１．９７ｍモル、９３．０％）。

実施例２５で調製された試料は、以下の表１８に記載されるように、回折ピーク（２シータ値）を有する、特に２２．０、１６．８、及び２３．７からなる群から選択されるピークの１つ以上と組み合わせて１９．１でピークを有するため、ＣｕＫａ方射線を使用したＸＲＤパターンによって特徴付けられ、０．２度の回折角度の範囲を有する。

癌は、その開始及び進行が、細胞及び組織の微環境におけるＤＮＡ修復、ゲノム安定性、細胞増殖、細胞死、癒着、脈管形成、浸潤、及び転移を調整する１つ以上の遺伝子の異常機能によって誘発される疾患の異種集合として次第に認識されている。「癌」遺伝子の変異体または異常機能は、ゲノムの複写数の変化（増幅、抹消、染色体消失、または重複による）自然発生したＤＮＡ多型、（無秩序な遺伝子発現を引き起こす染色体転座、転移、または他の再構成による）遺伝子及び染色体構造の変化及び点突然変異に起因する可能性がある。癌腫瘍は、１つの異常遺伝子機能によって誘発され、同じ異常遺伝子機能によって保持される、またはさらなる異常遺伝子機能によって保持及び進行する可能性がある。

上記の遺伝的染色体異常以外に、それぞれの癌は、アセチル化、メチル化、またはリン酸化によるＤＮＡメチル化、ゲノム刷り込み、及びヒストン修飾を含むゲノムの後成的修飾も含む可能性がある。後成的修飾は、悪性腫瘍の誘発及び／または保持に関与する可能性がある。

ヒト癌における細胞遺伝学的異常の広範なカタログは、蓄積され、保持され、定期的にオンラインにアップデートされている（ＵＳ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ（ＮＣＩ）Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｔｏｍｙ Ｐｒｏｊｅｃｔ（ＣＧＡＰ）のウェブサイトで、Ｔｈｅ Ｍｉｔｅｌｍａｎ Ｄａｔａｂａｓｅ ｏｆ Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ Ａｂｅｒｒａｔｉｏｎｓを参照のこと）。Ｔｈｅ Ｗｅｌｌｃｏｍｅ Ｔｒｕｓｔ Ｓａｎｇｅｒ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｏｍｅ Ｐｒｏｊｅｃｔと同様にＣＯＳＭＩＣ（Ｃａｔａｌｏｇｕｅ ｏｆ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｍｕｔａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ）のヒト癌における体細胞突然変異のデータベースも、腫瘍形成の原因となる全ヒト遺伝子の「癌遺伝子調査」の詳細を保持している。様々な癌の原因となる細胞遺伝学的変化に関する豊富な情報を含むさらなる情報源は、Ａｔｌａｓ ｏｆ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｉｎ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｙである。

生検による癌性悪性腫瘍の診断は、免疫表現型検査及び他の試験が知られており、定期的に使用される。高解像度染色体分染法及び高度染色体画像技術に加えて、癌が疑われる場合の染色体染異常は、蛍光ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）、核型分析、スペクトル型分析（ＳＫＹ）、多重ＦＩＳＨ（Ｍ−ＦＩＳＨ）、比較ゲノムハイブリダイゼーション（ＣＧＨ）、一塩基多型アレイ（ＳＮＰチップ）などの細胞遺伝学的分析、ならびに当業者によって使用される他の診断法及び既知の分析試験から測定することができる。

複数の癌腫瘍型において確認されているＩＤＨ１における突然変異としては、神経膠腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病（Ｂ−ＡＬＬ）、甲状腺、結腸直腸、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、Ｄａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒｅｎｄｓ Ｍｏｌ．Ｍｅｄ．，２０１０，１６：３８７−３９７；Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．，Ｏｎｃｏｇｅｎｅ，２０１２，３１（１９）：２４９１−２４９８；ｍｅｌａｎｏｍａ，Ｓｈｉｂａｔａ ｅｔ ａｌ．，Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，２０１０，１７８（３）：１３９５−１４０２；ｐｒｏｓｔａｔｅ，Ｆｌａｈｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．，２０１４，３２（ｓｕｐｐｌ．４；Ａｂｓｔｒａｃｔ ２１３）；Ｃａｉｒｎｓ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ，２０１３，３：７３０−７４１；ｃｈｏｎｄｒｏｓａｒｃｏｍａ ａｎｄ ｃｈｏｌａｎｇｉｏｃａｒｃｉｎｏｍａ，Ｂａｌｓｓ ｅｔ ａｌ．，Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．，２０１２，１２４：８８３−８９１；Ｃａｉｒｎｓ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ，２０１３，３：７３０−７４１；ａｎｇｉｏｉｍｍｕｎｏｂｌａｓｔｉｃ Ｔ−ｃｅｌｌ ｌｙｍｐｈｏｍａ（ＡＩＴＬ），Ｃａｉｒｎｓ ｅｔ ａｌ．Ｂｌｏｏｄ，２０１２．１１９（８）：１９０１−１９０３、が挙げられるが、これらに限定されない。突然変異は、活性部位の特定の残基または付近に見られる：ＩＤＨ１のＧ９７Ｄ、Ｒ１００、Ｒ１３２Ｈ、Ｒ１３２Ｃ、Ｒ１３２Ｓ、Ｒ１３２Ｖ、Ｒ１３２Ｇ、Ｖ７１Ｉ、Ｒ１３２Ｌ、及びＧ１２３Ｒ、Ｄａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒｅｎｄｓ Ｍｏｌ．Ｍｅｄ．，２０１０，１６：３８７−３９７；Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．，２０１２及び補足表２。

ＩＤＨ１の変異形態は、α−ケトグルタレートを２−ヒドロキシグルタレートに還元する新形態活性（機能獲得）を有することを示している。２−ヒドロキシグルタレートの内因性生成は、エナンチオ特異的であり、Ｄ−エナンチオマー（（Ｒ）エナンチオマーとも称される）の生成をもたらす。通常、細胞の２−ヒドロキシグルタレートは低レベルを有するが、ＩＤＨ１の突然変異が隠れている細胞の２−ヒドロキシグルタレートは著しく上昇したレベルを明示する。２−ヒドロキシグルタレートの著しく上昇したレベルは、突然変異が隠れている腫瘍、及び変異体ＩＤＨ１を有する患者の血漿中で検出される。高レベル２−ヒドロキシグルタレートは、高度腫瘍形成につながる分化においてブロックをもたらす高メチル化表現型と関連する。

特異的な不可逆共有阻害剤の活性は、Ｋ_Ｉで定義される標的（ＩＤＨ１）へのその結合によって定義され、Ｋ_{ｉｎａｃｔ}で定義される共有結合形成の最大潜在速度によって定義される。これらの２つの要素は、分離したものではなく、むしろ共有結合形成の所望の効果を生むために共に作用する。このことを、以下の３点で図示した。

第１に、求電子体物質、例えばアクリルアミドが、求核試薬、例えばシステインに対して適切に配置されなければならないという事実は、有機化学において共有結合形成の基本要素である。共有結合を形成するために、求核試薬が求電子剤に近づかなければならない正確な角度及び距離がある。求核試薬近くの求電子剤の単純配置は、共有結合形成には十分ではない。

第２に、触媒への阻害剤の結合を安定化するために水素結合部分を含むコア、例えば配向コアに反応性基を組み込む場合、当業者は、どのように配向コアを標的に結合し、上記の最適角度及び距離を考慮して求核試薬に対して求電子剤を配置するかを検討しなくてはならない。繰り返すが、求核試薬近くの求電子剤の単純配置は、共有結合形成には十分ではない。配向コアの変更は、共有結合を形成するための阻害剤化合物の能力に影響する可能性がある。

第３に、上記の２つの点を共に考えると、配向コアに求電子剤部分がわずかに存在することでは、共有結合が形成されることを示唆するのに十分ではない。

以下の生体外及び生体内研究は、変異体ＩＤＨ１タンパク質阻害活性及び様々な特異的な癌細胞株に対する式Ｉの試験化合物の有効性を実証している。これらのアッセイは、ヒト臨床治療作用を表すとして、一般に当業者によって認識されている。開示された研究における変異体ＩＤＨ１新形態タンパク質の阻害は、さらなる変異体ＩＤＨ１新形態タンパク質に対して効果的となるであろうと考えられる。変異体ＩＤＨ１阻害活性及び有効性を明示するアッセイは、実質的に以下の通りに、または同様のデータをもたらす同様のアッセイによって実施されてよい。

以下のアッセイの結果は、例示され、試験された化合物がＩＤＨ１変異体阻害剤として有用であることを実証し、変異体ＩＤＨ１を発現する癌治療において有用である可能性がある。

ＩＤＨ１及びＩＤＨ２変異体酵素の生化学的アッセイ
ＩＤＨ１−Ｒ１３２Ｈ、ＩＤＨ１−Ｒ１３２Ｃ、ＩＤＨ２−Ｒ１７２Ｋ及びＩＤＨ２−Ｒ１４０Ｑ変異体酵素は、αＫＧから２ＨＧへの変換を触媒する。２ＨＧを、インライン固相抽出及び質量分析を使用して分析した。この分析は、６４６０三連四重極質量分析計（Ｇ６４６０Ａ Ａｇｉｌｅｎｔ）と結合したＲａｐｉｄＦｉｒｅ（登録商標）機器において実施された。

Ｎ−末端Ｈｉｓ−タグを含有するＩＤＨ１変異体（Ｒ１３２Ｈ及びＲ１３２Ｃ）ならびにＩＤＨ２変異体（Ｒ１４０Ｑ及びＲ１７２Ｋ）タンパク質を、大腸菌で発現し、ニッケル親和性クロマトグラフィーを使用して精製した。酵素アッセイを、１００ｍＭのトリス−ＨＣｌ緩衝剤、１ｍＭのＤＴＴ、０．００５％ＴＲＩＴＯＮ（商標）Ｘ−１００、１２０ｍＭのＮａＣｌを含有するＶ底９６ウェルポリプロピレンプレートで実施した。ＩＤＨ１ Ｒ１３２Ｈの場合、α−ケトグルタレート、ＮＡＤＰＨ及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ３００μＭ、２．５μＭ及び３００μＭの最終濃度で含ませた。ＩＤＨ１ Ｒ１３２Ｃの場合、α−ケトグルタレート、ＮＡＤＰＨ及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ１００μＭ、１０μＭ及び１００μＭの最終濃度で含ませた。ＩＤＨ２ Ｒ１７２Ｋの場合、α−ケトグルタレート、ＮＡＤＰＨ及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ１５０μＭ、１０μＭ及び１５０μＭの最終濃度で含ませた。ＩＤＨ２ Ｒ１４０Ｑの場合、α−ケトグルタレート、ＮＡＤＰＨ及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ３０００μＭ、１０μＭ及び１００μＭの最終濃度で含ませた。最終ｐＨ＝７．０。ＤＭＳＯ原料中に溶解させた試験化合物を、４％の最終ＤＭＳＯ濃度で、反応混合物中に希釈した。化合物を、用量応答形式で試験した。酵素を添加することによりアッセイを開始した。以下の最終濃度後で酵素を使用した：ＩＤＨ１ Ｒ１３２Ｈ、２ｎＭ；ＩＤＨ１ Ｒ１３２Ｃ、０．５ｎＭ；ＩＤＨ２ Ｒ１７２Ｋ、１．２ｎＭ；ＩＤＨ２ Ｒ１４０Ｑ、１．２ｎＭ。９０分後、反応物を、質量分析法分析及び反応生成物の定量化のための内部基準として、３−ヒドロキシ−１，５−ペンタンジオイック−２，２，３，４，４−ｄ_５酸（５ｄ_５−３ＨＧ）を含有するＡＣＮ（５０：５０）を添加することによって急冷した。急冷試料中の２−ヒドロキシグルタレート（２ＨＧ）を、強力アニオン交換カラムクロマトグラフィー（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｓｔｒａｔａ−Ｘ−Ａ ＳｅｃｕｒｉｔｙＧｕａｒｄ）を使用して分離し、６４６０三連四重極質量分析計（Ｇ６４６０Ａ Ａｇｉｌｅｎｔ）における質量分析によって分析した。検出された２ＨＧ信号を、既知の２ＨＧ濃度を使用して発生させた検量曲線を使用して、分析対象濃度に変換した。試験した各化合物の％阻害を、ＤＭＳＯ対照試料を０％阻害として、触媒なしの対照を１００％阻害として使用し、計算した。ＩＣ_５０値を、４−パラメータ計算式を使用した異なる化合物濃度で、個々の％阻害値から得た。これらの計算を、Ａｃｔｉｖｉｔｙ Ｂａｓｅ（ＩＤＢＳ）またはＳｃｒｅｅｎｅｒ（Ｇｅｎｅｄａｔａ）データ分析プログラムを使用して実施した。

このアッセイの結果は、例示され、試験された化合物が、ＩＨＤ１／Ｒ１３２Ｈ及びＩＤＨ１／Ｒ１３２Ｃに対する変異体ＩＤＨ１活性を阻害することを実証した。

以下の実施例は、実際に上記の通りに試験された、以下の表１９に示されるように、変異体ＩＤＨ１に対する活性を示し、変異体ＩＤＨ２よりも変異体ＩＤＨ１に対して選択的であった。

野生型ＩＤＨ１及びＩＤＨ２酵素の生化学的アッセイ
ＩＤＨ１及びＩＤＨ２酵素は、イソクエン酸のαＫＧへの変換を触媒する。
Ｎ−末端Ｈｉｓ−タグを含有する野生型ＩＤＨ１（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ，Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ：ＮＰ＿００１２６９３１６．１）及びＩＤＨ２（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ，Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ：ＥＡＸ０２０８２．１）タンパク質は、大腸菌に発現し、ニッケル親和性クロマトグラフィーを使用して精製した。酵素アッセイを、ｐＨ７．５で１００ｍＭのトリス−ＨＣｌ緩衝剤、１ｍＭのＤＴＴ、０．００５％ＴＲＩＴＯＮ（商標）Ｘ−１００、１２０ｍＭのＮａＣｌを含有するＶ底９６ウェルポリプロピレンプレートで実施した。ＩＤＨ１野生型アッセイイソクエン酸の場合、ＮＡＤＰ^＋及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ８５μＭ、５０μｕＭ及び２０μＭの濃度で含ませた。ＩＤＨ_２野生型アッセイイソクエン酸の場合、ＮＡＤＰ^＋及びＭｎＣｌ_２を、それぞれ３０μＭ、５０μＭ及び１０μＭの濃度で含ませた。ＤＭＳＯ原液中に溶解された阻害剤を、４％の最終ＤＭＳＯ濃度で、反応混合物中に希釈した。酵素アッセイを、質量分析法分析のために内部基準としてｄ６−２−ケトペンタン二酸（ｄ６−αＫＧ）を含有するＡＣＮ（５０：５０）を添加することによって終了（急冷）した。反応混合物の１０マイクロリットルと、水１００μＬ、ピリジン緩衝剤（８．６％ピリジン、ｐＨ５）中１ＭのＯ−ベンジルヒドロキシアミン５０μＬ、及びピリジン緩衝剤中１ＭのＮ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）５０μＬとを組み合わせた。室温で１時間、誘導体化した後、試料を６００μＬのＥｔＯＡｃで抽出した。上層の４００μＬを除去し、加熱窒素下にて乾燥させ、１００μＬのＭｅＯＨ／水（１：１）で還元した。誘導体化試料１０μＬを、Ｓｈｉｍａｄｚｕ Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ ２０Ａ ＨＰＬＣ及びＴｈｅ Ｔｈｅｒｍｏ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ（商標）三連四重極質量分析計からなるＬＣ−ＭＳシステムに注入した。分析対象を、０．６ｍＬ／分の流速を用いてＷａｔｅｒｓ ＸＢｒｉｄｇｅ（商標）Ｃ１８カラムで（２．１×５０ｍｍ、３．５μｍ）分離した。移動相Ａは０．１％ギ酸水であり、移動相ＢはＭｅＯＨである。検出されたαＫＧ信号を、既知のＫＧ濃度を使用して発生させた検量曲線を使用して、α分析対象濃度に変換した。試験した各化合物の％阻害を、ＤＭＳＯ対照試料を０％阻害として、触媒なしの対照を１００％阻害として使用し、計算した。ＩＣ_５０値を、４−パラメータ計算式を使用した異なる化合物濃度で、個々の％阻害値から得た。これらの計算を、Ａｃｔｉｖｉｔｙ Ｂａｓｅ（ＩＤＢＳ）またはＳｃｒｅｅｎｅｒ（Ｇｅｎｅｄａｔａ）データ分析プログラムを使用して実施した。

このアッセイの結果は、例示され、試験された化合物が、ＩＤＨ１ Ｒ１３２ＨまたはＲ１３２Ｃ変異体酵素と比較して、ＩＤＨ１野生型酵素の阻害で活性がより少ないことを実証した。

表２０における以下の実施例は、実際に上記の通りに試験され、ＩＤＨ１ Ｒ１３２ＨまたはＲ１３２Ｃ変異体酵素と比較して、ＩＤＨ１野生型酵素の阻害で活性がより少なかった。

ＩＤＨ１（Ｒ１３２Ｈ）生化学的ジャンプ希釈アッセイ
凍結乾燥した実施例の化合物を、１００％ＤＭＳＯで１０ｍＭまたは１００ｍＭに還元し、室温で試験まで保管した。ＩＤＨ１（Ｒ１３２Ｈ）−Ｈｉｓタンパク質が発現し、当業者に周知で、一般に使用される方法によって精製した。アッセイ試薬は以下を含む：α−ケトグルタル酸（Ｓｉｇｍａ Ｃａｔ番号Ｋ１８７５）、ＭｎＣｌ_２−Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｃａｔ番号Ｍ８７−１００、ＮＡＤＰＨ−Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃａｔ番号Ｎ７５０５、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｔ番号１５５６７−０２７）、ＮａＣｌ（Ｓｉｇｍａ、Ｓ３０１４）、ジチオスレイトール（Ｓｉｇｍａ、Ｄ５５４５）、及びＴｒｉｔｏｎＸ１００（Ｐｅｉｒｃｅ、２８３１４）。Ｐｒｏｍｅｇａ（Ｇ９０６１）のＮＡＤ（Ｐ）Ｈ−Ｇｌｏ（商標）キット。

全体を通して使用したアッセイ緩衝剤は、ｐＨ７．０、１００ｍＭのトリス−ＨＣｌ、１２０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＤＴＴ、０．００５％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、及び（試験化合物の添加による）２％のＤＭＳＯを含む。各化合物のＩＣ_５０を、Ｅｃｈｏ５５５で調製され、アッセイ緩衝剤中に１．５ｎＭのＩＤＨ１（Ｒ１３２Ｈ）、１ｍＭのα−ケトグルタレート、１ｍＭのＭｎＣｌ_２、及び１５μＭのＮＡＤＰＨを有する化合物の反応の用量をインキュベーションすることによって測定した。反応物を、室温で２時間インキュベーションし、次に６−シクロプロピル−５−（イソキノリン−５−イル）−２−［（３Ｒ）−４−（３−メトキシプロパノイル）−３−メチルピペラジン−１−イル］ピリジン−３−カルボニトリル（１０μＭ）を使用して停止した。ＮＡＤＰＨ濃度を、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ−Ｇｌｏ（商標）キットを使用して、製造業者によって明記された通りに測定した。発光信号を、Ｅｎｖｉｓｉｏｎ（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ；０．１秒／Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓｅ Ｍｉｒｒｏｒ／Ｌｕｍ７００ ＷＬ４００−７００フィルター）上で読み取った。それに続くジャンプ希釈実験において、１０×ＩＣ_５０に相当する化合物濃度を、１００ｎＭのＩＤＨ１（Ｒ１３２Ｈ）で予めインクベーションした。化合物の濃度は、常に酵素濃度以上であった。室温で２時間後、この混合物を、α−ケトグルタレート（１０ｍＭ）、ＭｎＣｌ_２（１０ｍＭ）、及びＮＡＤＰＨ（１５μＭ）を含有する溶液に希釈した（１：１００）。この最終酵素反応は、１ｎＭのＩＤＨ１（Ｒ１３２Ｈ）及び０．１×［ＩＣ_５０］を含有する。室温で２時間インキュベーションした後、ＮＡＤＰＨ濃度を、６−シクロプロピル−５−（イソキノリン−５−イル）−２−［（３Ｒ）−４−（３−メトキシプロパノイル）−３−メチルピペラジン−１−イル］ピリジン−３−カルボニトリル及びＮＡＤ（Ｐ）Ｈ−Ｇｌｏ（商標）キットを使用して、上記で特定したように測定した。３つの対照を含む：１）１ｍＭのα−ケトグルタレート、１ｍＭのＭｎＣｌ_２、及び１５μＭのＮＡＤＰＨが、酵素活性を測定する最終アッセイにおいて使用されることを除き、プレインキュベーション及び酵素アッセイにおいて１０×ＩＣ_５０の化合物を含有する「１０×対照」、２）プレインキュベーション及び酵素アッセイの両方の化合物の代わりにＤＭＳＯを含有する「最大活性対照」、３）プレインキュベーションにおける化合物及び酵素アッセイにおける０．１×ＩＣ_５０の化合物の代わりにＤＭＳＯを含有する「０．１×対照」。「最少活性対照」は酵素を欠くが、それ以外は「最大活性対照」に相当する、に含まれる。最大及び最少活性対照の第２セットを、１ｍＭのα−ケトグルタレート、１ｍＭのＭｎＣｌ_２、及び１５μＭのＮＡＤＰＨを使用して実施した。各アッセイ条件を３回試験し、最大活性対照（１０ｍＭ）及び最少活性対照（１０ｍＭ）用に３２の複製を実施する一方で、最大活性対照（１ｍＭ）及び最少活性対照（１ｍＭ）用に１６の複製を実施した。

各実験／対照において生成されたＮＡＤＰ（生成物）の濃度を、１５μＭのＮＡＤＰＨを含有する、最少活性対照に対して観察された信号におけるパーセント減少を使用して測定した。最少活性対照（１ｍＭ及び１０ｍＭ）ならびに、最大活性対照（１ｍＭ及び１０ｍＭ）を平均化し、それぞれの標準偏差を計算した。各ジャンプ希釈及び０．１×対照の信号に１５を掛け、次に最少活性対照（１０ｍＭ）ウェルの平均数で割った。１５からこの数を引き、ＮＡＤＰ（μＭ生成物）を計算した。１０×対照に同じ計算を使用したが、最少活性対照（１ｍＭ）を使用した。最大活性対照（１ｍＭ及び１０ｍＭ）の生成物のμモルを、平均数に１５を掛け、次にそれぞれの最少活性対照（１ｍＭ及び１０ｍＭ）で割り、計算した。化合物のジャンプ希釈、１０×対照、及び０．１×対照の％ＩＤＨ活性を、各ウェルのμＭ ＮＡＤＰを平均最大活性対照（１ｍＭまたは１０ｍＭ）で割り、次に１００を掛けて算出した。合格する化合物は、プレインキュベーション濃度が化合物で酵素を飽和するのに十分であることを示す、１０×対照の＜３０％活性を示さなければならない。加えて、化合物は、０．１×／希釈化合物濃度で阻害のないことを立証する、０．１×対照の７０〜８０％＞活性を示さなければならない。

実施例の化合物は、実際に上記の通りに試験され、このアッセイにおけるＩＤＨ１／Ｒ１３２Ｈの％回復データを示す。希釈２時間後に％回復を有し、酵素を阻害しなかった人工化合物とは対照的に、本発明の例示され、試験された化合物は、希釈２時間後に酵素を阻害した。この活性からのデータは、本発明の試験化合物が、阻害剤の希釈が酵素活性の回復を生じさせないことから、変異体ＩＤＨ１の共有結合阻害と一致する方法で作用することを実証した。

ＩＤＨ１変異体阻害剤の細胞系アッセイ
ＩＤＨ１変異体Ｒ１３２Ｃの細胞阻害を試験するために、線維肉腫細胞株ＨＴ１０８０（ＡＴＣＣから購入）を、使用した。Ｒ１３２Ｈ突然変異の細胞系阻害を試験するために、Ｕ８７ＭＧ神経膠腫細胞株（ＡＴＣＣ）を、Ｒ１３２Ｈ変異体酵素を発現するＤＮＡ構築物で安定的に導入した。

ＨＴ１０８０細胞アッセイ：
化合物で処理する１８〜２４時間前に、１５，０００個の細胞を、ポリ−Ｄ−ｌｙｓコーティング９６ウェルプレート（１５，０００細胞／ウェル）に蒔いた。化合物処理の４時間前に、細胞を、通常培地から除去し、グルタミンなしの培地に置き換えることによってグルタミン欠乏にした。欠乏に続き、次に細胞を、０．２％の最終濃度で、ＤＭＳＯを含有するグルタミンなしの培地に溶解した、異なる濃度の試験化合物（２０μＭ〜１ｎＭ）で処理した。初期の化合物インキュベーションは、３７℃／５％ＣＯ_２で１時間であった。１時間後、最終の２ｍＭ濃度にグルタミンを添加し、次に処理細胞をさらに３７℃／５％ＣＯ_２でさらに１８時間インキュベーションした。１８時間インキュベーションした後、細胞溶解物で細胞内２ＨＧ及びαＫＧを分析した。培地から取り出した後、ｐＨ７．５、２５ｍＭのトリス−ＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＥＤＴＡ、１ｍＭのＥＧＴＡ／１％ Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００を含有する緩衝剤を細胞に加えて溶解物を調製した。溶解物のアリコートを、ｄ_６−αＫＧとｄ_５−３ＨＧとの混合物に内部標準として添加し、混合物を、Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ´−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）及びピリジンの存在下においてＯ−ベンジルヒドロキシルアミンで処理した。次に、分析対象誘導体を、ＥｔＯＡｃで抽出し、乾燥させ、次いで５０％ＭｅＯＨ水で還元した。記載された通りに調製した試料を、ＨＰＬＣに注入し、Ｃ１８カラムにおける逆相クロマトグラフィーを使用して、２ＨＧとαＫＧ誘導体（及び対応する内部標準）とを分離した。試料の分析を、６４６０三連四重極質量分析計（Ｇ６４６０Ａ Ａｇｉｌｅｎｔ）を使用して実施した。検出された２ＨＧ及びαＫＧの信号を、検量曲線内で外挿したαＫＧ／ｄ_６−αＫＧの比率、及び２ＨＧ／ｄ_５−３ＨＧの比率を使用して分析対象の濃度へと変換した。各々についての試料のパーセント阻害は、化合物で細胞処理中にグルタミンの存在下及び欠如下で得た最大基準及び最小基準に、計算した２ＨＧまたはａＫＧ濃度を正規化した後に得た。ＩＣ_５０値を、Ｓ字型用量応答４−パラメータ計算式を使用して個々の％阻害から得た。これらの計算を、Ａｃｔｉｖｉｔｙ Ｂａｓｅ（ＩＤＢＳ）またはＳｃｒｅｅｎｅｒ（Ｇｅｎｅｄａｔａ）データ分析プログラムを使用して、自動的に実施した。

このアッセイの結果は、このアッセイの細胞において、表２１の試験実施例が、２−ヒドロキシグルタレートの生成を阻害し、変異体ＩＤＨ１ Ｒ１３２Ｃの阻害を示していることを実証した。このアッセイの細胞において、野生型ＩＤＨ１によって生成された代謝物質αＫＧが、阻害剤によって影響されず、化合物が、野生型ＩＤＨ１よりも変異体ＩＤＨ１に対して選択的であることを示している。以下の実施例で得られたＩＣ_５０値を、表２１に示す。

Ｕ８７ＭＧ／ＩＤＨ１Ｒ１３２Ｈの細胞アッセイ
化合物で処理する１８〜２４時間前に、細胞をポリ−Ｄ−ｌｙｓコーティング９６ウェルプレート（１２，０００細胞／ウェル）に蒔いた。化合物処理の４時間前に、細胞を、通常培地から除去し、グルタミンなしの培地に置き換えることによってグルタミン欠乏にした。欠乏に続き、次に細胞を、０．２％の最終濃度で、ＤＭＳＯを含有するグルタミンなしの培地に溶解した、異なる濃度の試験化合物（２０μＭ〜１ｎＭ）で処理した。初期の化合物インキュベーションは、３７℃／５％ＣＯ_２で１時間であった。１時間後、最終の２ｍＭ濃度にグルタミンを添加し、次に処理した細胞をさらに３７℃／５％ＣＯ_２でさらに１８時間インキュベーションした。細胞内の２ＨＧを、培地から取り出し、溶解緩衝剤（ｐＨ７．５、２５ｍＭのトリス−ＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＥＤＴＡ、１ｍＭのＥＧＴＡ／１％ Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００）で処理後に得られた細胞溶解物で分析した。細胞溶解物を、処理するまで−８０℃で保存した。分析対象抽出用に、解凍溶解物のアリコートを、深い９６ウェルプレートに移し、内部標準としてｄ_５−３ＨＧを含有する冷ＭｅＯＨ、続いてクロロホルム及びＨ_２Ｏ（１：４：３：２）で処理した。分離後に上部相を収集し、ＨＰＬＣに注入し、６４６０三連四重極質量分析計においてＭＳ／ＭＳ検出と結合した親水性相互作用（ＨＩＬＩＣ）クロマトグラフィーを使用して、２ＨＧ（及び内部標準）を分離した。各々についての試料のパーセント阻害は、計算した２ＨＧ濃度を、化合物で細胞処理中にグルタミンの存在下及び欠如下で得た最大基準及び最小基準に正規化した後に得た。ＩＣ_５０値を、Ｓ字型用量応答４−パラメータ計算式を使用して個々の％阻害から得た。これらの計算を、Ａｃｔｉｖｉｔｙ Ｂａｓｅ（ＩＤＢＳ）またはＳｃｒｅｅｎｅｒ（Ｇｅｎｅｄａｔａ）データ分析プログラムを使用して、自動的に実施した。

以下の実施例は、実際に上記の通りに試験され、以下の表２２に示されるようにこのアッセイにおいて、Ｕ８７ＭＧ細胞中の変異体ＩＤＨ１／Ｒ１３２Ｈに対して阻害活性を示した。

生体内２−ヒドロキシグルタレートのアッセイ
ＩＤＨ１阻害剤の生体内試験用に、皮下異種移植腫瘍を胸腺欠損ヌードマウス（２０〜２２ｇ、Ｈａｒｌａｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）に発生させ、ＨＴ１０８０細胞（線維肉腫保有Ｒ１３２Ｃ変異体ＩＤＨ１）またはＴＢ０８細胞（副次的な神経膠芽細胞腫保有Ｒ１３２Ｈ変異体ＩＤＨ１）のいずれかの移植を続けた。細胞移植の前に、マウスに自由に餌と水を与え１週間順応させた。腫瘍細胞（ＨＴ１０８０）または腫瘍片（ＴＢ０８）を、右後ろ脇腹に移植した。ＨＴ１０８０の場合、０．２ｍｌの最終容量で、５．０×１０^６の細胞とマトリゲルとの１：１の混合物で移植した。ＴＢ０８の場合、外植腫瘍試料から発生させた腫瘍片を、後部脇腹に直接移植した。腫瘍の大きさを、カリパスで週に２回測定し、腫瘍の大きさを、０．５３６×Ｌ×Ｗ^２を使用して計算した（式中、Ｌ＝長さ、Ｗ＝幅）。腫瘍の大きさが、１５０〜４００ｍｍ^３に達した時点で、動物を無作為化し、グループに分類し（１グループ当たりｎ＝３〜６）、ＩＤＨ１阻害剤または賦形剤対照を投与した。ＩＤＨ１阻害剤の場合、化合物を、１％のヒドロキシエチルセルロース／０．２５％のＴｗｅｅｎ８０／０．０５％のＡｎｔｉｆｏａｍまたはＨＣｌの１．１モル当量を有する１０％のＡｃａｃｉａのどちらかを含有する賦形剤に製剤化した。化合物を浴超音波処理し、懸濁液を得た。化合物を、１キロクラム当たり１ミリグラム（ｍｐｋ）を基準に、０．２ｍｌの最終容量で経口強制飼養により投与した。２ＨＧの阻害を測定するために、化合物を、１日に２回（ＢＩＤ）で３日間（合計投与回数＝６）投与した。化合物処理に続き、マウスをイソフルオレン麻酔及び頸部脱臼で安楽死させた。腫瘍を切除し、ラベルを貼ったチューブに入れ、直ちに液体窒素で冷凍した。腫瘍を、処理するまで−８０℃で保存した。

腫瘍溶解物の調製
ＸＹ Ｌｉｔｅ緩衝剤を、分子グレード水において調製し、以下の構成成分を含ませた：ｐＨ７．５、２５ｍＭのトリス、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、１ｍＭのＥＤＴＡ、１ｍＭのＥＧＴＡ。ＸＹ Ｌｉｔｅ（４０ｍｌ）に、Ｈａｌｔ ＰｒｏｔｅａｓｅとＰｈｏｓｐｈａｔａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓとの組み合わせ（Ｈａｌｔ（商標）Ｐｒｏｔｅａｓｅ及びＰｈｏｓｐｈａｔａｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ Ｃｏｃｋｔａｉｌ、ＥＤＴＡ−Ｆｒｅｅ Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｃａｔ番号７８４４１）８００μｌを添加した。試料をボルテックスし、次に氷上で冷却した。橙色キャップの溶解−Ａチューブにラベルを貼り、氷上の棚に置いた。セラミックモルタル及び乳棒をドライアイスに置き、冷却させた。２×２インチ正方形のアルミフォイルを、モルタルの底に置いた。腫瘍試料を、予め冷却したモルタルの正方形のフォイル上に移した。液体窒素（約５ｍｌ）を添加し、蒸発させ、腫瘍を超冷凍した。フォイルの別片を、腫瘍の上に置き、腫瘍を粉砕し、セラミック乳棒を用いて小片にした。粉砕した腫瘍を、素早く溶解チューブに移した。氷冷ＸＹ Ｌｉｔｅ（５００μＬ）を、各チューブに添加し、キャップを閉めた。次に腫瘍を、ＭＰ ＢｉｏｍｅｄｉｃａｌｓのＦａｓｔＰｒｅｐ−２４を使用して、速度を５に設定し、それぞれ３５秒で２回、回転させることによって処理した。次に試料を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｍｉｃｒｏｆｕｇｅ Ｒにおいて、４℃で、１４，０００ｒｐｍにて３０分間遠心分離した。上澄みを、予め冷却された９６の深いウェルプレートに移した。ペレットを廃棄した。

タンパク質のアッセイ
タンパク質のアッセイ希釈プレートをまず、ＸＹ緩衝剤（１４５μｌ）を非滅菌９６ウェル丸底Ｃｏｒｎｉｎｇプレートに添加することによって作製した。ここに、腫瘍溶解物（５μＬ）を添加し、緩やかに混合した。プレートを氷上で保持した。ＢＳＡ開始（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ｃａｔ．２３２０９ ２ｍｇ／ｍＬ）の連続希釈を、以下のように設定した：５つの０．５ｍＬチューブを棚に置き、各自にＸＹ緩衝剤（６０μＬ）を添加した。原料のＢＳＡ（６０μＬ）を第１のチューブに添加し、ボルテックスした。第１のチューブから６０μＬを次のチューブに移し、ボルテックスするなど、希釈系列が終了するまでは、以下の通りである：チューブ１＝原料ＢＳＡ、チューブ２〜５は１：２連続希釈、チューブ６＝ＸＹ緩衝剤のみ。熱ＢＣＡタンパク質アッセイ試薬を、製造業者の指示に従って混合した。混合ＢＣＡ試薬（２００μＬ）を、各試料に添加し、１５分間インキュベーションした。タンパク質アッセイの結果を、ＳＯＦＴｍａｘ Ｐｒｏ Ｐｌａｔｅ Ｒｅａｄｅｒ上で読み取った。タンパク質アッセイの結果に基づき、適切な量のＸＹ緩衝剤を、各腫瘍溶解物に添加し、５ｍｇ／ｍＬの最終タンパク質濃度が生じた。全試料にラベルを貼り、−８０℃で保存した。

腫瘍溶解物中の代謝物質分析
２ＨＧ及びαＫＧの合計濃度でのＩＤＨ１阻害の生体内効果を、腫瘍異種移植の液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ−ＭＳ）分析によって測定した。本方法を、ＬＣ−ＭＳによる分析より前に、Ｏ−ベンジルヒドロキシルアミンを用いる誘導体化に利用した。各腫瘍溶解物１０マイクロリットルを、深いウェルの９６ウェルプレートに置き、１０μＭのｄ_５−３ＨＧ及び１０μＭのｄ６−αＫＧを含有する内部標準溶液１００μＬと組み合わせた。ピリジン緩衝剤（８．６％ピリジン、ｐＨ５）中１ＭのＯ−ベンジルヒドロキシルアミン５０μＬと、ピリジン緩衝剤中１ＭのＮ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）５０μＬとを、各試料に添加した。誘導体化反応を、室温で１時間進めた。Ｂｅｃｋｍａｎ Ｂｉｏｍｅｋ ＦＸの液体処理器を使用して、６００μＬのＥｔＯＡｃを各試料に添加した。プレートを密封し、５分間ボルテックし、次にそれらをＥｐｐｅｎｄｏｒｆ ５８１０Ｒ遠心器において、４０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。上層の４００μＬを、新たな９６ウェルプレートに移した。試料を、５０℃で、加熱窒素下にて乾燥させ、１００μＬのＭｅＯＨ／水（１：１）で還元した。誘導体化試料１マイクロリットルを、Ｓｈｉｍａｄｚｕ Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ ２０Ａ ＨＰＬＣシステム及びＴｈｅｒｍｏ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ（商標）三連四重極質量分析計からなるＬＣ−ＭＳシステムに注入した。分析対象を、Ｗａｔｅｒ ＸＢｒｉｄｇｅ（商標）Ｃ１８カラム（２．１×５０ｍｍ、３．５μｍ）を使用して、０．６ｍＬ／分の流速で分離した。移動相Ａは０．１％ギ酸水であり、移動相ＢはＭｅＯＨである。勾配プロファイル：０分、５％Ｂ；３分、１００％Ｂ；４．００分、１００％Ｂ；４．１分、５％Ｂ；５．５０分、停止である。質量分析計は、ＨＥＳＩ−ＩＩプローブを利用し、陽イオン選択反応モニタリングモードで操作した。検量曲線を、分析対象濃度の、分析対象／内部標準に対するピーク面積比をプロットすること、Ｘｃａｌｉｂｕｒ（商標）ソフトウェアで計量した１／濃度を使用してデータの二次適合を実施することによって描いた。未知の分析対象濃度を、検量曲線から逆算した。ＬＣＭＳアッセイからの代謝物質データを、ｎモル／ｍｇタンパク質で表した。賦形剤処理グループにおける平均２ＨＧレベルを使用して、０％阻害対照を測定した。次に賦形剤対照に対する、各阻害剤処理動物における％阻害を測定した。データをＪＭＰソフトウェアにおいて分析し、各投与グループにおける平均％阻害、標準偏差、及び標準誤差を測定した。

例示され、試験された化合物によって、ＩＤＨ１変異体異種移植マウスにおける２−ヒドロキシグルタレートの生体内阻害を実証するデータを、以下の表２３に示す。

Claims (14)

1. 以下の式の化合物であって、
   

   

   式中、
   Ｌは、−Ｎ−アゼチジン−３−ＣＨ_２−Ｏ−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−２，６−ジアザスピロ［３．３］ヘプタン−６−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、−７−Ｎ−（２，７−ジアザスピロ［３．５］ノナン）−２−（ＣＨ_２）、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、Ｎ−２，５−ジヒドロピロール−３−（ＣＨ_２）−Ｏ−からなる群から選択されるリンカーであり、
   Ｚは、ＨもしくはＦからなる群から選択され、
   Ｒは、Ｃ_１〜Ｃ_４アルキル、−ＣＨ（ＣＨ_３）ＣＨ_２−ＯＨ、−ＣＨ_２ＣＨ_２Ｆ、−ＣＨ_２ＣＨＦ_２からなる群から選択される、化合物、または
   その薬学的に許容される塩。
2. Ｌは、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、−Ｎ−アゼチジン−３−ＣＨ_２−Ｏ−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、及び−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−からなる群から選択されるリンカーであり、
   Ｚは、Ｈであり、
   Ｒは、Ｃ_１〜Ｃ_４アルキルである、請求項１に記載の化合物、または
   その薬学的に許容される塩。
3. Ｌは、−Ｎ−ピペラジン−４−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−ピペラジン−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−、−Ｎ−アゼチジン−３−Ｏ−（ＣＨ_２）−、−Ｎ−アゼチジン−３−（ＣＨ_２ＣＨ_２）−、及び−Ｎ−ピペリジン−４−（ＮＭｅ）ＣＨ_２−からなる群から選択されるリンカーであり、
   Ｚは、Ｈであり
   Ｒは、ＣＨ_２ＣＨ_３、ＣＨ（ＣＨ_３）_２から選択される、請求項１もしくは２に記載の化合物、または
   その薬学的に許容される塩。
4. １−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩。
5. １−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）メチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オンである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩。
6. １−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、もしくはその薬学的に許容される塩、
   １−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−（４−プロプ−２−エノイルピペラジン−１−イル）フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、もしくはその薬学的に許容される塩、
   １−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）オキシメチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、もしくはその薬学的に許容される塩、
   １−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［２−（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）エチル］フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、またはその薬学的に許容される塩、
   １−イソプロピル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）メトキシ］−フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、もしくはその薬学的に許容される塩、または
   １−エチル−７−［［（１Ｓ）−１−［４−［［メチル−（１−プロプ−２−エノイルアゼチジン−３−イル）アミノ］メチル］−フェニル］エチル］アミノ］−４Ｈ−ピリミド［４，５−ｄ］［１，３］オキサジン−２−オン、もしくはその薬学的に許容される塩である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の化合物。
7. 請求項１〜６のいずれか一項に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩、及び薬学的に許容される担体を含む、薬学的組成物。
8. 患者において、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫、骨髄異形成症候群、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌を治療する方法であって、それを必要とする患者に請求項１〜６のいずれか一項に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩の治療上有効な量を投与することを含む、方法。
9. 前記変異体ＩＤＨ１を発現する癌が、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、急性骨髄性白血病、または線維肉腫である、請求項８に記載の方法。
10. 治療に使用される、請求項１〜６のいずれか一項に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩。
11. 神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫、骨髄異形成症候群、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療に使用される、請求項１〜６のいずれか一項に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩。
12. 前記変異体ＩＤＨ１を発現する癌が、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、急性骨髄性白血病、または線維肉腫である、請求項１１に記載の使用。
13. 神経膠腫、神経膠芽細胞腫、多形性神経膠芽細胞腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、傍神経節腫、線維肉腫、血管免疫芽球性Ｔ細胞リンパ腫、骨髄異形成症候群、Ｂ細胞急性リンパ芽球性白血病、甲状腺癌、結腸直腸癌、急性骨髄性白血病、黒色腫、前立腺癌、軟骨肉腫、または胆管癌である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療用薬剤を製造するための、請求項１に記載の化合物、またはその薬学的に許容される塩の使用。
14. 前記薬剤が、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、急性骨髄性白血病、または線維肉腫である、変異体ＩＤＨ１を発現する癌の治療用である、請求項１３に記載の使用。