JP2018503094A - 患者の示差的な栄養所要量の決定方法 - Google Patents
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Abstract
Description
「栄養ステータス」は、個人又は集団群(コホート)について定量可能な身体ステータスに関する。栄養ステータスは、対象らの栄養ステータス(栄養素の消費及び利用)に関する。本発明では、栄養ステータスは、かかる栄養ステータスの指標となるマーカー、特に、生物学的、生化学的、生理学的マーカー、又は被検者のサンプルにおいて決定されるその他のマーカーを使用して定量化される。
本発明は、疾患に罹患している被検者における健常な被検者に対し示差的な栄養所要量により特徴づけられる疾患に罹患している被検者の、疾患関連性の示差的な栄養所要量を決定するための、インビトロ法であって、
a.疾患に罹患している被検者のサンプルにおいて、かかる被検者の栄養プロファイルを示すマーカー(栄養素、微量栄養素及び/又はそれらの代謝産物及び/又はバイオマーカーを含む)のステータスのプロファイルを決定するステップと、
b.健常な被検者のサンプルにおいて、健常な被検者の栄養プロファイルを示すマーカーであって、ステップaで決定されたものと同じマーカーのステータスのプロファイルを決定するステップと、
c.ステップa及びステップbにおいて決定されたプロファイルを比較して、疾患に罹患している被検者における栄養に関して示差的な栄養所要量を決定するステップと、を含む、方法に関する。
被検者より採取したサンプルに対し栄養プロファイルの決定を行う。
栄養プロファイルは、直接的マーカー及び間接的マーカーを包含する。マーカーは、生化学的マーカー、生物学的マーカー、若しくは機能マーカー、又はこれらの組み合わせであってよい。これらのマーカーは被検者の栄養ステータスに関し、したがって栄養素を考慮した栄養所要量を示す。これらのマーカーは、被検者が摂取した栄養によって影響を受け得る。これらのマーカーは、下記の様々な方法により決定できる。
タンパク質マーカーは、タンパク質ステータスのマーカー、又はタンパク質異化のマーカーにより決定され、したがってタンパク質又はアミノ酸、あるいは特定のタンパク質及びアミノ酸を提供する栄養素の栄養所要量が決定され得る。タンパク質ステータスマーカーは、アルブミン、プレアルブミン、又は/及びホスホクレアチン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択され得る。異化のマーカーは、アンモニア、尿素、改質アミノ酸(モノメチル、及びジメチルアルギニン)、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される。
アミノ酸マーカーは、サンプル中の代謝産物/異化生成物を含むアミノ酸又はその誘導体の量をステータスの指標として決定するステップにより決定でき、ひいては、タンパク質若しくはアミノ酸、又は特定のタンパク質及びアミノ酸を提供する栄養素についての栄養所要量を決定できる。
脂肪酸マーカーは、関連ステータスを示す脂肪酸の定量分析をもとに決定でき、したがって、脂肪、リン脂質(ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタノールアミンなど)、又は特定の脂肪酸を提供する栄養素についての栄養所要量が決定され得る。
元素分析による定量、及び/又は鉄のステータスに関してはフェリチン、銅のステータスに関してはセルロプラスミンなどといった、それらの関連するタンパク質若しくは代謝産物の定量により、サンプル中の直接的元素(ミネラルを含む)マーカーが測定される。
ビタミンマーカーは、直接的マーカー又は間接的マーカーのいずれかであり得る。直接的マーカーは、サンプル中のビタミン及び/又はそれらの代謝生成物の定量化を包含する。間接的マーカーは、1つ若しくは複数のビタミン及び/又はそれらの代謝生成物の組み合わせ、並びにビタミンのステータスを示す機能マーカー、例えば、それぞれビタミンB1(チアミン)のステータスに関しては赤血球トランスケトラーゼ活性、及びビタミンB2(リボフラビン)に関しては赤血球グルタチオン還元酵素活性などを包含する。
ヌクレオチドマーカー、及びしたがってヌクレオチドを提供する栄養素の必要所要量が決定され得る。
植物栄養素マーカー、及びしたがって植物栄養素を提供する栄養素の必要所要量が決定され得る。
ペプチドマーカー、及びしたがってペプチドを提供する栄養素の必要所要量が決定され得る。
酸化的ストレスマーカー、及びしたがって酸化的ストレスのステータスを改善する栄養素の必要所要量が決定され得る。
窒素合成酵素活性マーカー、及びしたがって酸化窒素合成酵素活性に影響する栄養素の必要所要量が決定され得る。
浸透圧調節物質のマーカー、及びしたがって浸透圧調節物質のステータスに影響する栄養素の必要所要量が決定され得る。これらのマーカーは機能マーカーである。
栄養ステータスに関係する、サンプル中の上記のマーカーを決定するにあたり、多様な方法が知られている。マーカーの定量化を行う様々な非限定的な方法例について以下に記載する。当該技術分野で既知のその他の方法も、追加的に/代替的に使用され得る。
一例として、必須アミノ酸の特徴的な所要量は、指標アミノ酸酸化(IAAO)法を用い定量できる(Roberts SA,Thorpe JM,Ball RO,Pencharz PB.;Am J Clin Nutr.2001 Feb,73(2):276〜82.;Elango R,Ball RO,Pencharz PB.,J Nutr.2008 Feb;138(2):243〜6.Review)。窒素バランスに制限があることから、ヒトにおける必須アミノ酸の必要所要量の評価にあたり、安定な同位体の炭素酸化をベースとした方法が開発された(Pencharz PB,Ball RO.Different approaches to define individual amino acid requirements.Annu Rev Nutr.2003;23:101〜16)。IAAO法は、アミノ酸の必要所要量の評価に関して、極わずかな事前調節(minimal prior adaptation)を以てその正当性が確認されている(Bross R,Ball RO,Pencharz PB.,J Nutr.1998 Nov;128(11):1913〜9;Thorpe JM,Roberts SA,Ball RO,Pencharz PB.,J Nutr.1999 Feb;129(2):343〜8)。IAAO法−は、タンパク質の合成の際に、ある必須アミノ酸が欠乏していると、いわゆる指標アミノ酸(通常、L−[1−13C]フェニルアラニン)を含むその他の全てのアミノ酸が使用されなくなるために過剰になり、したがって酸化されることになるという概念に基づく(Pencharz and Ball 2003)。これは主に、過剰なアミノ酸の貯蔵は不可能であり、したがって必ずタンパク質への組み込み又は酸化のいずれかが行われることを理由とする。制限アミノ酸の摂取が増加するに伴い、タンパク質への組み込みが増加することを反映して指標アミノ酸の酸化は減少することになる。制限アミノ酸の必要所要量が充足されると、被検アミノ酸の摂取を増加させても指標アミノ酸の酸化はそれ以上変化しなくなる。指標アミノ酸の酸化の減少が止まり、プラトーに達する変曲点は、「ブレイクポイント」と呼ばれる。二相(bi-phase)線形回帰分析により特定されるブレイクポイントは、制限(被検)アミノ酸に関し推定される平均必要所要量を示す。IAAOモデルの具体的な強度は、酸化の絶対レベルを問題とせず、むしろ同じブレークポイント(所要量推定)を生じる、広範な摂取レベルにわたる相対的な酸化を問題とするものである。この方法は、広く受け入れられているアプローチであるものの、重大な制限を示す。必須アミノ酸のみに適用可能であることに加えて、各臨床検査ごとに評価可能な必須アミノ酸は1種のみであり、臨床検査は患者にとって侵襲的であり(トレーサーの動態検査及び経時的な複数回の食事変更)、更には時間もかかってしまう。
栄養素の必要所要量は、栄養素及びその代謝産物の定量的分析、すなわち生物学的サンプルにおける栄養素プロファイルを用い決定できる。高性能液体クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、質量分析、分光測定、又は免疫アッセイなどの分析法をベースとして、分析法を組み合わせて使用することで栄養素プロファイルが得られる。栄養素プロファイルは、幅広い栄養素及び微量栄養素並びにそれらの代謝生成物(代謝産物)に加え、関連するタンパク質である栄養素/微量栄養素輸送体、あるいは栄養素/微量栄養素に特異的な酵素活性などの機能バイオマーカーの濃度を決定するステップを包含する。この栄養素プロファイルによるアプローチは、広範囲の栄養素及び微量栄養素をカバーし、したがって栄養素間の相互作用の評価を可能にするのに加え、動態検査が必要とされないことから、より迅速であり、かつ患者にとって比較的低侵襲性なものとなり得るという利点を有する。
L−スレオニン濃度/2−ケト酪酸濃度比
L−スレオニン濃度/(2−ケト酪酸濃度+2−アミノ酪酸濃度)比
L−スレオニン濃度/(2−ケト酪酸濃度+2−アミノ酪酸濃度+2−アミノ3−ケト酪酸濃度)比
又はこれらの任意の数学的な組み合わせ
又はこれらと、その他のマーカー若しくはタンパク質異化生成物(例えば、循環アンモニア濃度、尿素サイクル中中間体濃度(オルニチン、シトルリン、アルギニン、コハク酸、アルギニン)、対称ジメチルアルギニン濃度、対称ジメチルアルギニン濃度)との任意の数学的な組み合わせ
これらと、酸化的ストレスマーカーである、酸化窒素代謝産物(血漿/血清中酸化窒素レベル、尿中ニトラートレベル)のマーカーとの任意の組み合わせ
これらと、モニターに使用される臨床マーカー、例えば、IBD活動性:CRP、血球数の違い、糞便中カルプロテクチン、鉄ステータス、血液沈降速度、タンパク質の電気泳動、糞便中好中球、及びビタミンB12ステータスなどとの任意の組み合わせ]。
アミノ酸も、被検者から得られたサンプルにおいて直接測定できる。
50μLの血漿又は血清に、10μLの標識内部標準と、タンパク質沈殿用に140μLの冷メタノール(0.1%ギ酸)とを加える。次に、サンプルをボルテックスにより撹拌(5分間)した後、4℃にて10000rpmで10分間遠心分離する。次に上清を回収して誘導体化を行う。
製造元による手順にしたがって、AccQ−Tag Ultra Derivatization Kit Amino Acid Analysis(Waters Corp.)を使用して誘導体化を実施する:10μLの標準アミノ酸混合溶液又はサンプルの上清を70μLのAccQ−Tag Ultraボレート緩衝液(pH=8.8)と混合する。緩衝化した混合物に20μLの再構成したAccQ−Tag Ultra試薬(3mg/mLの、アセトニトリル中6−アミノキノリル−N−ヒドロキシスクシンイミジルカルバマート、すなわちAQC)を加え、誘導体化を実施する。次に、サンプルを直接ボルテックスにかけた後、55℃で15分間インキュベートする。
エレクトロスプレーイオン化(ESI)プローブによりWaters Xevo TQ質量分析計とオンラインで連結させたWaters Acquity UPLCシステムでUPLC−MS/MS分析を実施した。クロマトグラフ分離は、溶離液A及びBの二相システムを使用してWaters AccQ−Tag Ultraカラム(2.1mm内径×100mm、粒子径1.7μm)を用い実施する。溶離液Aは、市販のAccQ−Tag Ultra溶離液A濃縮液(Waters Corp.)10%と、水90%とを含有する。溶離液Bは、市販のAccQ−Tag Ultra溶離液B(Waters Corp.)とする。使用する分離勾配は、0〜0.54分間(99.9% A)、5.74分間(90.9% A)、7.74分間(78.8% A)、8.04(40.4% A)、8.05〜8.64(10% A)、8.73〜10.0(99.9% A)とする。オートサンプラー温度は20℃に設定し、カラム温度は55℃に設定する。サンプルの注入容量は2μLとする。Waters IntelliStartルーチンを使用して、測定する各アミノ酸に対し、コーン電圧及び衝突エネルギーの値を決定する。衝突により全てのAQC付加体から解離される、共通の主要な生成物(common main product)を表すイオンm/z 171を各アミノ酸の定量化に使用した。アミノ酸の保持時間は、標準アミノ酸溶液をUPLC−ESI−MS/MSシステムに注入することにより決定する。イオン源の設定には以下を使用した:キャピラリー電圧2.5kV(ESI+);脱溶媒温度600℃;脱溶媒ガス流量1000 L/h;イオン源温度150℃。
薄層クロマトグラフィー又はガスクロマトグラフィーなどの任意の好適な方法により脂肪酸の濃度を決定できる。
酸性条件下で血漿及び赤血球細胞(RBC)脂肪酸の誘導体化を行う。簡潔に、ネジ蓋付きガラスチューブ内で、200μLのサンプルを、メタノール、塩酸メタノール、ヘキサン、及び内部標準液と混合する。チューブに蓋をして、血漿については100℃で60分間、RBCについては90分間加熱した後、室温への冷却を行い、水を加えて反応を停止する。次に、チューブを1200gで5分間遠心分離して、上側の有機相を回収し、ガスクロマトグラフィー(GC)で分析する。
全てのFAME分析を、フューズドシリカBPX−70キャピラリーカラム(10m×0.1mm内径、膜厚0.2m;SGE,Melbourne,Australia)を取り付けた7890 Agilentガスクロマトグラフ(Agilent Technologies,Palo Alto,CA,USA)で実施する。分割インジェクタ(35:1)及び炎イオン化検出(FID)システムをそれぞれ250℃及び300℃で操作した。オーブンの容量は、Agilentから市販の装置を使用しておよそ5400cm3に低減した。オーブン温度のプログラム設定は、45℃で0.5分間等温、100℃/分で180℃に上昇、この温度で0.5分間等温、9℃/分で220℃まで上昇させ、この温度で0.5分間等温の後、50℃/分で250℃に上昇させた(合計操作時間7.9分)。キャリアガス(H2)流を0.7mL/分で一定に維持し、FIDシグナルを50Hzで取得した。
標準FAMEの混合物を使用して、脂肪酸の識別を確認した。この混合物は、次のメチルエステルを含有する:酪酸(4:0)、カプロン酸(6:0)、カプリル酸(8:0)、カプリン酸(10:0)、ウンデカン酸(11:0)、ラウリン酸(12:0)、トリデカン酸(13:0)、ミリスチン酸(14:0)、ミリストレイン酸(14:1 n−5)、ペンタデカン酸(15:0)、ペンタデセン酸(15:1 n−5)、パルミチン酸(16:0)、パルミトレイン酸(16:1 n−7)、ヘプタデカン酸(17:0)、ヘプタデセン酸(17:1 n−7)、ステアリン酸(18:0)、エライジン酸(trans−18:1 n−9)、オレイン酸(18:1 n−9)、リノールエライジン酸(all trans−18:2 n−6)、リノレン酸(18:2 n−6)、アラキジン酸(20:0)、γ−リノレン酸(18:3 n−6)、エイコセン酸(20:1 n−9)、リノレン酸(18:3 n−3)、ヘンイコサノン酸(21:0)、エイコサジエン酸(20:2 n−6)、ベヘン酸(22:0)、エイコサトリエン酸(20:3 n−6)、エルカ酸(22:1 n−9)、エイコサトリエン酸(20:3 n−3)、アラキドン酸(20:4 n−6)、ドコサジエン酸(22:2 n−6)、リグノセリン酸(24:0)、エイコサペンタン酸(eicosapentanoic acid)(20:5 n−3)、ネルボン酸(24:1 n−9)、及びドコサヘキサエン酸(22:6 n−3)。
硫黄含有分子は、アミノ、及び誘導体(ホモシステイン、システイン、γ−グルタミル−システイン、システイニル−グリシン、ホモシスチン、システイン、シスタチオニン、メチオニンスルホキシド、セレノメチオニン、メチオニンスルホキシミン、セレノシステイン、セレノシスチン、エルゴチオネイン、N−ホルミル−L−メチオニン、S−アデノシルホモシステイン、S−アデノシルメチオニンアミン)、ペプチド(還元型グルタチオン及び酸化型グルタチオン)、及びリポ酸を含有する。
血漿、血清又は赤血球細胞サンプル(50μL)を、50μLの内部標準グルタチオンエチルエステル(GSHee)と混合した後、10mM重炭酸アンモニウム及びアンモニアの水溶液(0.5%v/v、pH9.5)中に10mMヨード酢酸を含む100μLの誘導体化溶液で処理する。この混合物を室温で15分間保管する。反応を停止させ、50μLの冷スルホサリチル酸溶液(10%w/v)を加えてタンパク質を沈殿させる。次に、この混合物を4℃にて16000 x gで15分間遠心分離する。上清(200μL)をガラス製バイアルに写し、及び2μLを注入した。
エレクトロスプレーイオン化(ESI)プローブによりWaters Xevo TQ質量分析計とオンラインで連結させたWaters Acquity UPLCシステムでUPLC−MS/MS分析を実施する。Waters HSS T3 2.1mm + 100mm、1.7μmカラムを使用して、クロマトグラフ分離を実施する。溶媒A(0.1%ギ酸水溶液)及び溶媒B(0.1%ギ酸を添加したアセトニトリル/水20:80、v/v)から構成された勾配を使用して0.25mL/分の流量で溶出を行う。勾配は次の通りとした:100%溶媒A 0〜2分間、1%溶媒A 2〜7分間、99%溶媒A 7.1〜10分間。質量分析計は、次の条件下で操作する:キャピラリー電圧:2.5KV;イオン源温度:150℃;脱溶媒温度:600℃;脱溶媒ガス流速:1000L/Hr。第1四重極に関しては、低質量分解能及び高質量分解能は、イオンエネルギーを0.1とすると、それぞれ2.95及び14.35になる。第2四重極に関しては、低質量分解能及び高質量分解能は、イオンエネルギーを0.3とすると、それぞれ2.95及び14.40になる。アルゴンを衝突ガスとして、0.15mL/分の流量で使用した。それぞれコーン電圧及び衝突エネルギー値を最適化して、Waters IntelliStartソフトウェアを使用して各代謝産物についてMRM遷移を決定した。これらの条件を使用して、各硫黄含有分子をUPLC−MS/MSシステムに注入して保持時間を決定する。1つの遷移チャネルのみを監視するため、MRM関数(function)ごとにMRM−MS法を構築する。Waters Corporation MassLynxTMソフトウェアによりUPLC−ESI−MS/MSシステムの管理及びデータ取得を実施した。TargetLynxTMソフトウェア(Waters Corporation)によりデータ分析を実施した。
当該技術分野で既知の任意の好適な方法により元素(ミネラルを含む)を定量化できる。実施例を以下に提供する。
5%1−ブタノール、0.05%EDTA、0.05%Trition X−100、及び1%水酸化アンモニウムを含有する希釈液で容量150μLの生体液(血漿、血清、尿など)を1:10希釈する。
8800 ICP−MS/MS質量分析計(Agilent Technologies,Tokyo,Japan)を低マトリックスプラズマモードで動作させて元素分析を実施する。ICP−MSシステムには、サンプルを直接導入するため一体化型オートサンプラーを取り付ける。同軸型ネブライザー及びScott型のダブルパススプレーチャンバから構成されたサンプル導入部に、一体型ぜん動式ポンプにより0.35mL/分の流量でサンプルを送り込む。プラズマによるイオン化後、分析種のイオンを質量分析計に送り込む。ICP−MSシステムには、MS/MS分析モードの適用を可能にする三連四重極プラズマ質量分析計を取り付けた。外部較正法により各ミネラルの定量化を行った。プラズマ揺動及びマトリックス効果を補正又は低減するため、オンライン希釈を適用してサンプルを多元素混合内部標準液と混合した。品質管理に関し、各分析試行中に、ヒトの認証標準物質(Sero,NorwayのSeronorm Trace Elements Serum L−1)を分析した。測定した元素を別表1に掲載する。
全てのクロマトグラフ実験に関し、1290 Infinity dual−piston UHPLCポンプ(Agilent Technologies,Tokio,Japan)を使用する。アイソクラティック溶出モードで、移動相として50mM酢酸アンモニウム(pH7.4)を適用し、ICP−MSに連結したサイズ排除クロマトグラフィーにより、生体分子に弱く結合しているミネラル種の分析を行う。安定種の分析に関し、0.4mL/分の流量で勾配溶出を適用し、逆相(RP)HPLC−ICP−MSを使用する。移動相Aは2%アセトニトリル(ACN)、0.05%TFA(トリフルオロ酢酸)から構成され、移動相Bは98%ACN、0.05%TFAから構成される。典型的な勾配は、30分間のうちにアセトニトリルを5%から80%に線形増加させることから構成される。生体液の分析に関し、注入容量3〜20μLを適用する。検出したクロマトグラフピークに対応する画分を回収することにより、ミネラル種の識別を達成する。最後に、回収した画分を予備濃縮し、脱塩し、生体分子の識別のため分子MSにより分析する。ポストカラム同位体希釈分析により定量化を行う。ここに、同位体濃縮した元素を2%硝酸に溶解し、0.2mL/分の一定流量を維持しながらぜん動ポンプにより注入した。
水溶性ビタミンは、被検者から得られたサンプル中で直接定量化できる。
ビタミン標準、ギ酸、酢酸をSigma−Aldrich(St.Louis,MO)から購入し、Millipore水はWater(Milford,MA)から購入し、アセトニトリルはVWR(Radnor,PA)から購入した。標識されたビタミン標準は、Cambridge Isotope Laboratories(Tewksbury,MA)から購入する。
血漿/血清は−80℃で保存し、解凍してすぐ氷上に置いた。血漿/血清には標識した内部標準混合物を添加し、10分間置く。100μLの血漿/血清を100μLの10%TCA酸と混合して、タンパク質を沈殿させる。ビタミンB1、ビタミンB2、ビタミンB3、ビタミンB6、ビタミンB7、及び代謝産物の分析のため、サンプルを10分間氷上で抽出し、4℃にて17000rpmで10分間遠心分離した。ビタミンB9の分析に際しては、100μLの血清/血漿を、酢酸及びアスコルビン酸を含有している200μL90%メタノール/水溶液と混合する。サンプルを20分間撹拌し、遠心分離し、上清を窒素流下で乾燥させる。サンプルを水に再懸濁し、上述のUPLC条件を用いて注入した。
エレクトロスプレーイオン化(ESI)プローブによりWaters Xevo TQ質量分析計とオンラインで連結させたWaters Acquity UPLCシステムに10μLの上清を注入した。Waters Acquity UPLC(登録商標)HSS T3 2.1×100mmカラム、0.6mL流速、溶媒A−0.1%ギ酸水溶液、溶媒B−0.1%ギ酸のアセトニトリル溶液を使用して、クロマトグラフ分離を達成した。勾配のプログラム設定は、9分間のうちに100%のAから100%のBへと勾配させるものとする。ビタミンごとに2遷移についてMRMモードを設定して、Waters XEVO TQS質量分析計でビタミンの検出を実施した。Waters Corporation MassLynxTMソフトウェアによりUPLC−MS/MSシステムの管理及びデータ取得を実施した。TargetLynxTMソフトウェア(Waters Corporation)によりデータ分析を実施した。
脂溶性ビタミンは、被検者から得たサンプル中で直接定量化できる。
ヘキサン、メタノール、エタノール、脱イオン水及びアセトニトリルはVWR(Radnor,PE)internationalから購入する。ビタミンの標準はSigma Aldrich(St.Louis,MO)から購入する。分析用カラム(HSS C18,1.7□m 3x100mm)及び固相抽出(SPE)プレートは、Waters(Milford,MA)から購入する。
ビタミンを光による分解から保護するため、研究室に適切に設置されたフィルターを利用した紫外線(UV)保護下でサンプルの調製工程を実施した。液−液抽出法と組み合わせてタンパク質沈殿を用い、脂溶性ビタミンを抽出する。簡潔に、200□Lのブチル化ヒドロキシルトルエン(BHT)のエタノール溶液に200□Lのヒト血清を加えてタンパク質沈殿を実施し、サンプルを酸化から保護した。次にサンプルを2.5mLのn−ヘキサンで抽出し、超音波処理し、遠心分離するのを3回繰り返した。回収した上清を併せて窒素流下で乾燥させて、最終的に、n−ヘキサン/イソプロパノール9:1で再構成する。
Xevo TQS質量分析計(Waters Corporation)を取り付けたWaters Acquity超性能コンバージェンスクロマトグラフィー(UPC2)システムでUPC2−MS/MS分析を行う。HSS C18分析カラムを使用して、ポンプA(移動相、CO2)及びポンプB(移動相、10mM酢酸アンモニウムメタノール溶液)を接続してクロマトグラフ分離を実施する。適用する勾配は、2%有機溶媒から開始し、14分間の合計実施時間のうち40%までの間、流量1.2mLで用いた。MS分析は以下の通りとする:キャピラリー電圧:2.6kV、脱溶媒温度:500℃、コーンガス流量:150L/hr、脱溶媒ガス流量:500L/hr。この分析を実施するにあたり、多重反応モニタリング(MRM)を適用する。Waters Corporation MassLynxTMソフトウェアによりUPLC−MS/MSシステムの管理及びデータ取得を実施した。データ分析はTargetLynxTMソフトウェア(Waters Corporation)で実施した。
ビタミン又はミネラル/微量元素ステータスは、以下の方法例を用い実施できる。
アンモニア及び尿素の定量化のため、血漿/血清にはCobas(登録商標)C111(Roche Diagnostics)を使用して更なる分析を行う。測定は分光測定法により実施する。アンモニア濃度は、340nm(波長A)及び629nm(波長B)で計算されたエンドポイント低下である。尿素濃度は、340nm(波長A)及び409nm(波長B)での速度論的低下に依る計算モードを使用して決定する。
本発明の組成物は、疾患に罹患しているヒトにおいて、健常なヒト又は健常なコホートの栄養プロファイル又はステータスとの代謝的、生理的及び機能的等価性を回復する量で栄養素を含む。
上記の組成物は、液体又は固体形態で製剤化することができる。
本明細書で使用するとき、用語「栄養組成物」には、完全栄養組成物、部分的な又は不完全な栄養組成物、及び疾患又は状態に合わせた栄養組成物が含まれ得るがこれらに限定されない。完全栄養組成物(すなわち、要求される必須主要栄養素及び必須微量栄養素を全て含有する組成物)を患者の唯一の栄養源として使用できる。患者は、その栄養所要量の100%をそのような完全栄養組成物から得ることができる。部分的又は不完全栄養組成物は、必須の主要及び微量栄養素を全て含有するわけではなく、患者のための唯一の栄養供給源として使用することはできない。部分又は不完全栄養組成物は、栄養補給剤として使用することができ、すなわち、患者の食事に追加して使用することができる。経口補給用栄養組成物は、本発明の方法により識別される通り、健常なヒトと比較して疾患に罹患しているヒトにおいて要求性が増大しているこれらの栄養素を含有する。
一実施形態では、栄養組成物は、栄養補給組成物、完全栄養組成物、ヨーグルト製品、発酵乳、フルーツジュース、サシェに入った形態の乾燥粉末、又はシリアルバーからなる群から選択される。
栄養組成物が液体である場合、かかる液体の粘度は150mPa・s未満、好ましくは100mPa・s未満、より好ましくは80mPa・s未満、更により好ましくは70mPa・s未満である。この粘度は、コーンプレート構造を使用して、20℃にて50 1/sの剪断速度で回転レオメーターで測定される。
本発明の組成物は、疾患の治療又は予防に使用でき、あるいは疾患に罹患している被検者における、健常な被検者の栄養ステータスとは異なる栄養ステータスと関連付けられる疾患の治療方法又は予防方法に使用できる。
上記の組成物の製造方法が提供され、かかる方法は、上記の栄養素のうち少なくとも1つを準備するステップと、場合により、例えば、1種以上のアミノ酸、脂肪、又は炭水化物からなる群から選択される少なくとも1つの更なる栄養素を加えるステップと、場合により、キャリア又は/及び水を加えるステップと、を含む。
Claims (30)
- 疾患に罹患している被検者における健常な被検者に対し示差的な栄養所要量により特徴づけられる疾患に罹患している被検者の、疾患関連性の示差的な栄養所要量を決定するための、インビトロ法であって、
a.疾患に罹患している被検者のサンプルにおいて、前記被検者の栄養プロファイルを示すマーカーのステータスのプロファイルを決定するステップと、
b.健常な被検者のサンプルにおいて、前記ステップaにおいて決定されたものと同じマーカーのステータスのプロファイルを決定するステップと、
c.ステップa及びステップbにおいて決定されたプロファイルを比較して、疾患に罹患している被検者における栄養に関して示差的な栄養所要量を決定するステップと、を含む、方法。 - 前記疾患が炎症性腸疾患である、請求項1又は2に記載の方法。
- 栄養素が、タンパク質、アミノ酸、脂肪、又は炭水化物からなる群から選択され、微量栄養素が、ビタミン又は元素の群から選択される、請求項1又は2に記載の方法。
- ステップ1a)において、前記マーカーの前記ステータスが被検者のコホートにおいて決定され、場合により、前記コホートにおける前記被検者が同じ重症度の疾患を示しており、場合により、前記コホートにおける前記被検者が再発しており、又は場合により、前記コホートにおける前記被検者が寛解している、請求項1に記載の方法。
- ステップ1b)において、前記マーカーの前記ステータスが、健常な被検者のコホートにおいて決定される、請求項1に記載の方法。
- 前記サンプルが、全血、血漿、血清、赤血球細胞、尿、又は組織生検からなる群から選択されるサンプルである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーの前記ステータスが、前記マーカーを直接定量することにより、又は前記最初のマーカーの前記ステータスを示す更なる1つのマーカー又は複数のマーカーを定量することにより間接的に、評価される、請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 少なくとも10、25、50、100、250個のマーカーの前記ステータスが決定される、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが、タンパク質ステータス及び又は異化のマーカーであり、場合により、前記タンパク質ステータスマーカーが、アルブミン、プレアルブミン、又は/及びホスホクレアチン及びこれらの組み合わせからなる群から選択され、場合により、異化についての前記ステータス指標が、アンモニア、尿素、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが、酸化的ストレスステータスについてのマーカーであり、場合により、前記酸化的ストレスのマーカーが、4−ヒドロキシノネナール、マロンアルデヒド、ニトロチロシン、カルボニル化タンパク質、トータルグルタチオン、還元型グルタチオン、酸化型グルタチオン、グルタチオンペルオキシダーゼ活性、グルタチオン還元酵素活性、スーパーオキシドジスムターゼ活性、カタラーゼ活性、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが、窒素合成酵素ステータスについてのマーカーであり、場合により、前記窒素合成酵素ステータスについてのマーカーが、ニトリト、ニトラート、尿素サイクルにおける中間体(オルニチン、シトルリン、アルギニノコハク酸(arginine succinic acid)、アルギニン)、モノメチルアルギニン、対称ジメチルアルギニン、非対称ジメチルアルギニン、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーがアミノ酸ステータスについてのマーカーであり、及び前記マーカーが、アミノアラニン、β−アラニン、サルコシン、アルギニン、モノメチルアルギニン、非対称−ジメチルアルギニン、対称ジメチルアルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、シトルリン、グルタミン酸、グルタミン、グリシン、ヒスチジン、1−メチルヒスチジン、3−メチルヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、オルニチン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、タウリン、スレオニン、トリプトファン、チロシン、バリン、ヒドロキシプロリン、エタノールアミン、α−アミノ酪酸、β−アミノイソ酪酸、γ−アミノ酪酸、ホモシステイン、システイン、γ−グルタミル−システイン、システイニル−グリシン、ホモシスチン、システイン、シスタチオニン、メチオニン スルホキシド、セレノメチオニン、メチオニンスルホキシミン、セレノシステイン、セレノシスチン、エルゴチオネイン、N−ホルミル−L−メチオニン、S−アデノシルホモシステイン、又はS−アデノシルメチオニンアミン、α−ケト酪酸、2−アミノ酪酸、2−アミノ−3−ケト酪酸、α−ケト−β−メチル酪酸(又はα−ケトイソ甘草酸)、α−ケトイソカプロン酸、又はα−ケト−β−メチル甘草酸、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが、スレオニン、セリン、又はプロリンからなる群から選択され、好ましくはスレオニンである、請求項12に記載の方法。
- 前記マーカーがスレオニンマーカーであり、場合により、前記マーカーがスレオニン又はスレオニンの代謝産物であり、場合により、前記スレオニンの代謝産物が、プロピオン酸、2−アミノ酪酸、2−ケト酪酸、2−アミノ−3−ケト酪酸、アミノアセトン、アセチルCoA、グリシン、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項12に記載の方法。
- 前記マーカーがイソロイシンマーカーであり、場合により、前記マーカーがイソロイシン又はイソロイシンの代謝産物であり、場合により、前記イソロイシンの代謝産物が2−ケト−3−メチル甘草酸である、請求項12に記載の方法。
- 前記マーカーが脂肪酸マーカーであり、場合により、前記脂肪酸が、酪酸C4:0、カプロン酸C6:0、カプリル酸C8:0、カプリン酸C10:0、ウンデカン酸C11:0、ラウリン酸C12:0、トリデカン酸C13:0、ミリスチン酸C14:0、ペンタデカン酸C15:0、パルミチン酸C16:0、ヘプタデカン酸C17:0、ステアリン酸C18:0、アラキジン酸C20:0、ヘンイコサノン酸C21:0、ベヘン酸C22:0、リグノセリン酸C24:0、ミリストレイン酸C14:1 n−5、cis−10−ペンタデセン酸C15:1 n−5、パルミトレイン酸C16:1 n−7、cis−10−ヘプタデセン酸C17:1 n−7、エライジン酸C18:1 n−9 trans、オレイン酸C18:1 n−9 cis、cis−11−エイコセン酸C20:1 n−9、エルカ酸C22:1 n−9、ネルボン酸C24:1 n−9、リノールエライジン酸C18:2 n−6 trans、リノレン酸C18:2 n−6 cis、γ−リノレン酸C18:3 n−6、α−リノレン酸C18:3 n−3、cis−11,14−エイコサジエン酸C20:2 n−6、cis−8,11,14−エイコサトリエン酸C20:3 n−6、cis−11,14,17−エイコサトリエン酸20:3 n−3、アラキドン酸C20:4 n−6、cis−13,16−ドコサジエン酸22:2 n−6、cis−5,8,11,14,17−エイコサペンタエン酸(eicosapentanoic)(EPA)C20:5 n−3、cis−4,7,10,13,16,19−ドコサヘキサエン酸(DHA)C22:6 n−3、リポ酸、又はリン脂質(ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び/又はホスファチジルエタノールアミンを含む)からなる群から選択される、請求項1〜15のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが元素マーカー(ミネラルマーカーを含む)であり、前記元素(ミネラルを含む)が、リチウム(Li)、ボロン(B)、マグネシウム(Mg)、アルミニウム(Al)、ケイ素(Si)、リン(P)、硫黄(S)、カリウム(K)、カルシウム(Ca)、バナジウム(V)、クロム(Cr)、マンガン(Mn)、鉄(Fe)、コバルト(Co)、ニッケル(Ni)、銅(Cu)、亜鉛(Zn)、ヒ素(As)、セレニウム(Se)、臭素(Br)、ルビジウム(Rb)、ストロンチウム(Sr)、モリブデン(Mo)、スズ(Sn)、ヨウ素(I)、バリウム(Ba)、チタニウム(Ti)、ナトリウム(Na)、塩素(Cl)、フッ素(F)からなる群から選択される、請求項1〜16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーがビタミンマーカーであり、場合により、前記ビタミンが、水溶性ビタミン又は脂溶性ビタミンからなる群から選択される、請求項1〜17のいずれか一項に記載の方法。
- 前記水溶性ビタミンが、ビタミンB1(チアミン)、ビタミンB2(リボフラビン)、ビタミンB3(ニコチン酸又はナイアシン)、ビタミンB3ニコチンアミド、ビタミンB3メチルニコチンアミド、ビタミンB3ニコチン尿酸、ビタミンB4(コリン)、ビタミンB5(パントテン酸)、ビタミンB6(ピリドキシン、ビタミンB6ピリドキサール、ピリドキサミン)、ビタミンB6ピリドキサールホスフェート、ビタミンB6ピリドキサミン、ビタミンB6ピリドキシン酸、ビタミンB8(ビオチン)、ビタミンB9(葉酸)、ビタミンB9メチルテトラヒドロ葉酸、ビタミンB12(シアノコバラミン、メチルコバラミン)、又はビタミンB12ヒドロキシコバラミン、アデノシルコバラミンからなる群から選択される、請求項18に記載の方法。
- 前記脂溶性ビタミンが、ビタミンA(レチノール)、ビタミンK2(メナキノン)、ビタミンK1(フィロキノン)、ビタミンE(α−トコフェロール、δ−トコフェロール)、ビタミンD(25−OHビタミンD2、ビタミンD 25−OH D3、ビタミンD2、ビタミンD3、1α−25−(OH)2ビタミンD3)からなる群から選択される、請求項18に記載の方法。
- 前記マーカーがヌクレオチドマーカーであり、場合により、前記ヌクレオチドが、イノシン5’モノホスフェート、アデノシン5’モノホスフェート、シチジン5’モノホスフェート、グアノシン5’−モノホスフェート、イノシン5’モノホスフェート、ウリジン5’モノホスフェート、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜20のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが浸透圧調節物質マーカーであり、場合により、前記浸透圧調節物質が、トリメチルアミンN−オキシド、ジメチルスルホニオプロピオナート、トリメチルグリシン、サルコシン、ベタイン、グリセロホスホリルコリン、myo−イノシトール、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜21のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーが植物栄養素マーカーであり、場合により、前記植物栄養素が、カロテノイド、エラグ酸、フラボノイド、クロロゲン酸、レスベラトロル、グルコシノレート、植物エストロゲン、又はこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜22のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーがペプチドマーカーであり、場合により、前記ペプチドが、還元型グルタチオン又は酸化型グルタチオンからなる群から選択される、請求項1〜23のいずれか一項に記載の方法。
- a.請求項1〜24に記載の方法により、疾患に罹患している被検者に関し前記示差的な栄養所要量を決定するステップと、
b.前記疾患に罹患している前記被検者において、前記栄養素及び主要栄養素の前記栄養プロファイルを、請求項1のステップbにおいて決定された健常な被検者の栄養プロファイルに対して、又は該プロファイルへと、回復させる量で栄養素を含む組成物を製造するステップと、を含む、疾患に罹患している被検者に投与するのに好適な栄養組成物の製造方法。 - 請求項25に記載の方法により製造された組成物。
- 液体又は粉末の形態の請求項26に記載の組成物。
- 前記疾患に罹患している被検者における健常な被検者に対し示差的な栄養所要量により特徴づけられる疾患の治療に使用し、場合により前記疾患はIBDである、請求項26又は27に記載の組成物。
- 前記組成物が、前記少なくとも1つの栄養素を、前記疾患に罹患している被検者の1日所要量を充足する量で含む、請求項28に記載の使用のための組成物。
- a)請求項26又は27に記載の組成物を準備するステップと、
b)前記疾患に罹患している被検者における健常な被検者に対し示差的な栄養所要量により特徴づけられる疾患に罹患している被検者に、前記組成物を投与するステップと、を含み、場合により前記疾患はIBDである、疾患に罹患しているヒト被検者の治療方法。
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