JP2017538783A - 医薬組成物、その調製及び使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、(i)少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子と(ii)少なくとも1つの目的の化合物(典型的には少なくとも1つの医薬化合物)を含む少なくとも1つの担体との組み合わせを含む、そのような少なくとも1つの目的の化合物を必要とする被験体に投与されるための医薬組成物であって、当該少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び少なくとも1つの目的の化合物を含む当該少なくとも1つの担体の組み合わせが、当該目的の化合物の効率を高める、医薬組成物に関する。当該生体適合性ナノ粒子の最長の寸法は、典型的には約4nmと約500nmとの間であり、そしてその表面電荷の絶対値は、少なくとも10mV(|10mV|)である。当該担体には、いかなる表面立体的安定化剤(surface sterically stabilizing agent)もない。
より安全でより効率的な方法で治療の及び診断の剤を患者に送達させるためのナノテクノロジーの使用は、過去数十年の間に当該分野における関心の高まりを導いてきた。その生体分布プロファイルの制御により薬物の治療効果を最大にすることが意図された、薬物送達システム、典型的にはリポソーム、エマルジョン又はミセルのような担体が出現した。これらのシステムは、難溶性薬物を封入するか、薬物を破壊又は排出から保護するか、並びに/或いは薬物の血液循環及び分布を改変する可能性を提供する。
本発明は、治療の、予防の又は診断の状況におけるその意図された用途が何であれ、目的の化合物(本明細書中では単に「化合物」としても特定される)の効率を最適化することを可能にする。(i)少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び(ii)少なくとも1つの目的の化合物を含む少なくとも1つの担体の組み合わせである、本明細書中に記載の組成物は、少なくとも1つの目的の化合物の薬物動態パラメータを最適化し、そして結果として、例えば、それらの許容できない毒性が原因で他の方法では開発できなかったであろう医薬化合物の開発を、ここに可能とする。典型的には、生体適合性ナノ粒子は、医薬化合物等として(即ち、治療上の、予防上の又は診断上の化合物として)使用されない。
粒子の形状は、その「生体適合性」に影響を及ぼし得るため、かなり均質な形状を有する粒子が本明細書中では好ましい。したがって、薬物動態的な理由から、本質的に球形の/円形の又は卵形の形状であるナノ粒子が好ましい。また、このような形状は、ナノ粒子が細胞と相互作用したり、又は細胞に取り込まれたりするのに好都合である。球形の/円形の形状が特に好ましい。
少なくとも1つの目的の化合物として(典型的には、少なくとも1つの目的の医薬化合物として)、本教示により様々な分子又は剤が使用され得る。この化合物は、既に説明したとおりの治療上の、予防上の又は診断上の化合物であり得る。これは有機化合物又は無機化合物であり得る。
少なくとも1つの目的の化合物は、当業者には既知の手段により、担体に封入されているか又は担体に含浸されているか、或いはこのような担体に接合(結合)している。少なくとも1つの目的の化合物を含む担体の略図は、図1に提示される。
脂質性フィルム再水和法(re-hydration method)を用いてリポソームを調製する:
a)脂質をクロロホルム中に可溶化する。クロロホルムを窒素流下で最終的にエバポレートする。脂質の濃度が5mMになるように、HEPES 20mM及びNaCl 140mM(pH 7.4)による脂質性フィルムの再水和を50℃で実施する。
荷電したリポソームを調製するために以下の脂質性組成物を使用した。DPPC(ジパルミトイルホスファチジルコリン):86%mol;MPPC(モノパルミトイルホスファチジルコリン):10%mol;DSPE−PEG(ジステアリルホスファチジルエタノールアミン−[メトキシ(ポリエチレングリコール(PolyElthyleneGlycol))−2000]:4%mol。
b)次に、サンプルを液体窒素中に、そして50℃に調節した水浴中に続けて漬けることにより、凍結・融解サイクルを6回実施する。
c)サーモバレル押出機(thermobarrel extruder)(LIPEX(商標)Extruder、Northern Lipids)を使用して、温度及び圧力の制御下でリポソームのサイズを較正した。全ての場合において、押出加工(extrusion)は50℃で10barの圧力下で実施した。
633nm HeNeレーザーを備えるZetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いた動的光散乱法(DLS)(90℃の角度で)によって、このように調製されたリポソームのサイズ分布を決定した。リポソーム懸濁液をHEPES 20mM及びNaCl 140mM(pH 7.4)中に100倍希釈した。リポソームサイズ(即ち、流体力学的直径)は約170nm(強度による分布)に等しく、多分散指数(PDI)は約0.1に等しかった。
当業者によって理解されるとおり、選択された脂質組成物により所望の表面電荷が得られ、その値は、Zetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いたゼータ電位測定により確認される。
リポソームを水に100倍希釈して、得られた懸濁液のpHをpH 7.4に調整した。リポソームの表面電荷は、pH 7.4で約−14mVに等しかった。
脂質フィルム再水和法を用いてリポソームを調製する:
a)脂質をクロロホルム中に可溶化する。クロロホルムを窒素流下で最終的にエバポレートする。脂質濃度が25mMになるように、HEPES 20mM及びNaCl 140mM(pH 7.4)による脂質性フィルムの再水和を65℃で実施する。
リポソームを調製するために以下の脂質組成物を使用した。7:2:1のモル比でのDSPC(ジステアロイルホスファチジルコリン):DSPG(ジステアロイルホスファチジルグリセロール):CHOL(コレステロール)。
b)次に、サンプルを液体窒素中に、そして65℃に調節した水浴中に続けて漬けることにより、凍結・融解サイクルを6回実施する。
c)サーモバレル押出機(LIPEX(商標)Extruder、Northern Lipids)を使用して、温度及び圧力の制御下でリポソームのサイズを較正した。最初に、5barで孔径0.45μmのポリエーテルスルホン(PES)膜へ5回通し、次に10barで孔径0.22μmのPES膜に10回通し、そして最後に15barで孔径0.1μmのポリフッ化ビニリデン(PVDF)膜に10回通すことを行った。
633nm HeNeレーザーを備えるZetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いた動的光散乱法(DLS)(90℃の角度で)によって、このように調製されたリポソームのサイズ分布を決定した。リポソーム懸濁液をHEPES 20mM及びNaCl 140mM(pH 7.4)中に100倍希釈した。リポソームサイズ(即ち、流体力学的直径)は約145nm(強度による分布)に等しく、多分散指数(PDI)は約0.1に等しかった。
選択された脂質組成物により所望の表面電荷(典型的には−10mV未満)が得られ、その値は、Zetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いたゼータ電位測定により確認される。
(i)少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び(ii)ドキソルビシンを含む少なくとも1つの担体の組み合わせを含む請求項1記載の医薬組成物を、MDA-MB-231-lucD3H2LN異種移植腫瘍を有するヌードマウスに以下のように投与する:
a)−Dox-NP(登録商標)(ドキソルビシンのPEG化リポソーム製剤)をヌードマウスの第1群に(静脈内注射により)投与する;
−ドキソルビシンをヌードマウスの第2群に(静脈内注射により)投与する;
−生体適合性ナノ粒子をヌードマウスの第3群に(静脈内注射により)投与する;
−生体適合性ナノ粒子をヌードマウスの第4群に(静脈内注射により)投与し、生体適合性ナノ粒子をヌードマウスの第4群に投与した後の5分超と72時間との間で、ドキソルビシンを含む担体(ここで、担体には、いかなる立体的安定化剤もない)を当該ヌードマウスの第4群に(静脈内注射により)投与する;
b)Dox-NP(登録商標)(第1群)、ドキソルビシン(第2群)、生体適合性ナノ粒子(第3群)及び医薬組成物(第4群)を投与した後のヌードマウスにおいて、任意の毒性の臨床徴候を評価する;そして
c)Dox-NP(登録商標)(第1群)、ドキソルビシン(第2群)、生体適合性ナノ粒子(第3群)及び医薬組成物(第4群)を投与した後に腫瘍再増殖の遅延を測定する。
脂質フィルム再水和法を用いてリポソームを調製する:
a)脂質をクロロホルム中に可溶化する。クロロホルムを窒素流下で最終的にエバポレートすることにより、Pyrexチューブの壁上に脂質性フィルムを形成する。脂質濃度が50mMになるように、HEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)による脂質フィルムの再水和を60℃で実施する。
荷電したリポソームを調製するために以下の脂質組成物を使用した。DPPC(ジパルミトイルホスファチジルコリン) 58%mol;HSPC(水素添加ダイズホスファチジルコリン) 21%mol;CHOL(コレステロール) 16%mol;POPS(1−パルミトイル−2−オレオイルホスファチジルセリン 5%mol。
b)次に、サンプルを液体窒素中に、そして60℃に調節した水浴中に続けて漬けることにより、凍結・融解サイクルを6回実施する。凍結・融解の3サイクル毎に及び押出加工直前に、リポソーム溶液の超音波処理を30秒間実施する。
c)サーモバレル押出機(LIPEX(商標)Extruder、Northern Lipids)を使用して、温度及び圧力の制御下でリポソームのサイズを較正する。押出加工は60℃で実施する。10barの圧力下で孔径0.1μmのポリフッ化ビニリデン(PVDF)膜に10回通すことを行った。
633nm HeNeレーザーを備えるZetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いた動的光散乱法(DLS)(173℃の角度で)によって、このように調製されたリポソームのサイズ分布を決定する。リポソーム溶液をHEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)中に200倍希釈する。リポソームサイズ(即ち、流体力学的直径)は約170nm(強度による分布)に等しく、多分散指数(PdI)は約0.2に等しい。
当業者によって理解されるとおり、選択された脂質組成物により所望の表面電荷が得られ、その値は、Zetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いたゼータ電位測定により確認される。リポソームを1mMの塩化ナトリウム溶液中に200倍希釈して、溶液のpHをpH 7に調整する。リポソームの表面電荷は、pH 7、NaCl 1mMで約−40mVに等しい。
リポソーム溶液の最終脂質濃度を比色アッセイ(Bartlett法)により測定する。この方法は、リン脂質の酸分解による総リンの決定に基づく。放出される無機リン酸は、モリブデン酸アンモニウムと反応し、複合体が強い青色を呈する。脂質濃度は、約50mMに等しい。
脂質性フィルム再水和法を用いてリポソームを調製する:
a)脂質をクロロホルム中に可溶化する。クロロホルムを窒素流下で最終的にエバポレートすることにより、Pyrexチューブの壁上に脂質性フィルムを形成する。脂質濃度が50mMになるように、HEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)による脂質性フィルムの再水和を60℃で実施する。
荷電したリポソームを調製するために以下の脂質組成物を使用した。DPPC(ジパルミトイルホスファチジルコリン) 45.15%mol;CHOL(コレステロール) 45.15%mol;DSPE−PEG(ジステアリルホスファチジルエタノールアミン−[メトキシ(ポリエチレングリコール)−2000]) 0.60%mol;L−グルタミン酸N−(3−カルボキシ−1−オキソプロピル)−1,5−ジヘキサデシルエステル(SA−脂質) 9.10%mol。SA−脂質は、リポソーム表面にCOOH基をもたらす。
b)次に、サンプルを液体窒素中に、そして60℃に調節した水浴中に続けて漬けることにより、凍結・融解サイクルを6回実施する。
c)サーモバレル押出機(LIPEX(商標)Extruder、Northern Lipids)を使用して、温度及び圧力の制御下でリポソームのサイズを較正する。押出加工は60℃で実施する。3barの圧力下で孔径0.45μmのポリフッ化ビニリデン(PVDF)膜に7回通し、そして10barの圧力下で孔径0.22μmのポリフッ化ビニリデン(PVDF)膜に10回通すことを行った。633nm HeNeレーザーを備えたZetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いた動的光散乱法(DLS)(173℃の角度で)によって、このように調製されたリポソームのサイズ分布を決定する。リポソーム溶液をHEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)中に200倍希釈する。リポソームサイズ(即ち、流体力学的直径)は約230nm(強度による分布)に等しく、多分散指数(PdI)は約0.2に等しい。
当業者によって理解されるとおり、選択された脂質組成物により所望の表面電荷が得られ、その値は、Zetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いたゼータ電位測定により確認される。リポソーム溶液を1mMの塩化ナトリウム溶液中に200倍希釈して、溶液のpHをpH 7に調整する。リポソームの表面電荷は、pH 7、NaCl 1mMで約−60mVに等しい。
リポソーム溶液の最終脂質濃度を比色アッセイ(Bartlett法)により測定する。この方法は、リン脂質の酸分解による総リンの決定に基づく。放出される無機リン酸は、モリブデン酸アンモニウムと反応し、複合体が強い青色を呈する。脂質濃度は、約50mMに等しい。
脂質性フィルム再水和法を用いてリポソームを調製する:
a)脂質をクロロホルム中に可溶化する。クロロホルムを窒素流下で最終的にエバポレートすることにより、Pyrexチューブの壁上に脂質性フィルムを形成する。HEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)での脂質性フィルムの再水和を60℃で実施して、脂質濃度は50mMである。荷電したリポソームを調製するために以下の脂質組成物を使用した。DSPC(1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン) 60%mol、CHOL(コレステロール) 35%mol;及びスクシニルPE(1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−スクシニル) 5%mol。
b)次に、サンプルを液体窒素中に、そして60℃に調節した水浴中に続けて漬けることにより、凍結・融解サイクルを6回実施する。凍結・融解の3サイクル毎に及び押出加工直前に、リポソーム溶液の超音波処理を30秒間実施する。
c)サーモバレル押出機(LIPEX(商標)Extruder、Northern Lipids)を使用して、温度及び圧力の制御下でリポソームのサイズを較正する。押出加工は60℃で実施する。12barの圧力下で孔径0.22μmのポリフッ化ビニリデン(PVDF)膜に12回通すことを行った。
d)スクシニルPEリポソームとp−アミノフェニル−α−D−マンノピラノシド(MAN)との複合化:
カルボジイミドカップリングを用いて、スクシニルPEリポソーム表面をマンノース由来のリガンドであるp−アミノフェニル−α−D−マンノピラノシド(MAN)で修飾することにより、マンノース複合リポソームに発展させる。MANは、そのアミノ基により、予め形成されたスクシニルPEリポソームの表面上に存在するスクシニルPEのカルボン酸基に共有結合する。簡単に述べると、予め形成されたスクシニルPEリポソーム溶液に、EDC(1−エチル−3−[3−ジメチルアミノプロピル]カルボジイミド塩酸塩)(スクシニルPE/EDC 1:10モル比)及びN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)(NHS/EDC 1:2.5モル比)を加える。次に、懸濁液のpHをNaOH 1Mで6に調整して、得られた懸濁液を室温で15分間撹拌する。続いて、溶液のpHをNaOH 1Mで7に調整して、MAN水溶液を当該溶液に加える(スクシニルPE/MAN モル比1:2)。NaOH 1Mを用いてpHを7に再調整して、懸濁液を室温で更に2時間撹拌する。50kDaセルロース膜を用いて(×500;×500;×500)の希釈率で3工程の透析を行うことにより、過剰の未結合のMAN、EDC及びNHS分子を除去する。
注目すべきことに、透析により希釈が可能であるため、リポソーム溶液は、Vivaspin濃縮機での膜限外濾過(カットオフ300kDaのポリエチレンスルホン(PES)膜を用いる)を用いて遠心分離(典型的にはSigma 3-15K遠心分離機(5℃;1,200rpm))によって濃縮され得る。
633nm HeNeレーザーを備えるZetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いた動的光散乱法(DLS)(173℃の角度で)によって、このように調製されたリポソームのサイズ分布を決定する。リポソーム溶液をHEPES 25mM及びNaCl 150mM(pH 7.4)中に200倍希釈する。リポソームサイズ(即ち、流体力学的直径)は約230nm(強度による分布)であり、多分散指数(PDI)はおよそ0.2である。当業者によって理解されるとおり、選択された脂質組成物により所望の表面電荷が得られ、その値は、Zetasizer NanoZS(Malvern instrument)を用いたゼータ電位測定により確認される。リポソーム溶液を1mMの塩化ナトリウム溶液(pH 7)中に200倍希釈する。リポソームの表面電荷は、NaCl 1mM、pH 7でおよそ−70mVである。リポソーム溶液の最終脂質濃度を比色アッセイ(Bartlett法)により測定する。この方法は、リン脂質の酸分解による総リンの決定に基づく。放出される無機リン酸は、モリブデン酸アンモニウムと反応し、複合体が強い青色を呈する。脂質濃度は、約50mMに等しい。
Claims (20)
- (i)少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び(ii)少なくとも1つの医薬化合物を含む少なくとも1つの担体の組み合わせを含む、該少なくとも1つの医薬化合物を必要とする被験体における治療的、予防的又は診断的方法において使用するための医薬組成物であって、該生体適合性ナノ粒子の最長の寸法は約4nmと約500nmとの間であり、該生体適合性ナノ粒子の表面電荷の絶対値は少なくとも|10mV|であり、そして、該担体にはいかなる表面立体的安定化剤もなく、該治療的、予防的又は診断的方法は、少なくとも1つの医薬化合物を含む該少なくとも1つの担体を該被験体に投与する工程と、該少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子を投与する別個の工程とを含み、該少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子は、少なくとも1つの医薬化合物を含む該少なくとも1つの担体の前又は後の5分超と約72時間との間で該被験体に投与され、そして該生体適合性ナノ粒子は医薬化合物等として使用されない、医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、|10mV|を超える表面電荷の絶対値を有しており、該電荷が負電荷である、請求項1記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、有機ナノ粒子である、請求項1又は2記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、脂質系ナノ粒子、タンパク質系ナノ粒子、ポリマー系ナノ粒子、コポリマー系ナノ粒子、炭素系ナノ粒子及びウイルス様ナノ粒子から選択される、請求項3記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、無機ナノ粒子であり、そして、該ナノ粒子の最長の寸法が、約7nm未満である、請求項1又は2記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、無機ナノ粒子であり、該ナノ粒子の最長の寸法が、少なくとも10nmであり、そして該ナノ粒子の無機材料が、(i)例えばMg、Ca、Ba及びSrから選択される1つ以上の二価の金属元素、(ii)例えばFe及びAlから選択される1つ以上の三価の金属元素、並びに(iii)Siを含む1つ以上の四価の金属元素から選択される、請求項1又は2記載の医薬組成物。
- 前記無機材料が、炭酸カルシウム(CaCO3)、炭酸マグネシウム(MgCO3)、水酸化マグネシウム(Mg(OH)2)、水酸化鉄(Fe(OH)2)、オキシ水酸化鉄(FeOOH)、酸化鉄(Fe3O4又はFe2O3)、酸化アルミニウム(Al3O4)、水酸化アルミニウム(Al(OH)3)、オキシ水酸化アルミニウム(AlOOH)及び酸化ケイ素(SiO2)から選択される、請求項6記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、更に、生体適合性コーティングで覆われている、請求項1〜7のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記担体が、プレーン担体である、請求項1記載の医薬組成物。
- 前記担体が、中空担体である、請求項1記載の医薬組成物。
- 前記担体の表面には、いかなる親水性ポリマーもない、請求項1〜10のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記担体の表面には、いかなるポリエチレングリコール(PEG)ポリマーもない、請求項1〜11のいずれか一項記載の医薬組成物。
- いかなる生体適合性ナノ粒子及び/又は担体も存在しないで前記化合物の標準的な治療用量によりもたらされる治療上の有益性及び毒性と比較した場合、前記少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び該医薬化合物を含む前記少なくとも1つの担体の併用投与が、前記被験体に対して、低減される毒性について該医薬化合物の治療上の有益性を維持するか、或いは、同等の又は低減される毒性について該医薬化合物の治療上の有益性を増大する、請求項1〜12のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記少なくとも1つの生体適合性ナノ粒子の及び該医薬化合物を含む前記少なくとも1つの担体の併用投与が、前記化合物の標準的な治療用量と比較した場合に該投与される医薬化合物の治療用量を少なくとも10%低減することを可能にしつつも、前記被験体に対して、同等の毒性又は低減される毒性について同じ治療上の有益性を維持するか、或いは、いかなる生体適合性ナノ粒子及び/又は担体も存在しない該被験体に対して、同等の又は低減される毒性について治療上の有益性を増大する、請求項1〜13のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記ナノ粒子が、請求項1で引用される前記少なくとも1つの医薬化合物を必要とする被験体にそれを投与した後、1時間〜6週間以内に、それが投与された該被験体から消失する、請求項1〜14のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記医薬化合物が、低分子の、特に標的化される低分子の、細胞傷害性の化合物及び遷移金属の配位錯体から選択される、請求項1〜15のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記医薬化合物が、前記担体に封入されているか、該担体に含浸されているか又は該担体に結合されている、請求項1〜16のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記医薬化合物が、時間的に制御された拡散、担体のエロージョン及び/又は担体の分解によって前記担体から放出される、請求項1〜17のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記医薬化合物が、細胞内の又は細胞外の刺激に反応して前記担体から放出される、請求項1〜17のいずれか一項記載の医薬組成物。
- 前記担体が電磁放射線、超音波及び磁場に曝されたときに、前記医薬化合物が該担体から放出される、請求項1〜17のいずれか一項記載の医薬組成物。
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