JP2017530955A - 頭蓋内圧上昇の治療 - Google Patents
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Abstract
Description
CSF動態の乱れは、IIHの病因の基礎となっている。CSFの脈絡叢(CP)分泌は、ICP調節において鍵となる要因であり、いくつかのイオンチャネル、主に、CP上皮内へのナトリウム輸送(Na+)を駆動し、Na+を脳室内に送り出す頂端のNa+K+ATPアーゼポンプについての律速段階である、基底のNa+H+交換輸送体(10)によって調節され、水をCSF中に移動させるための浸透勾配を生じさせる(11、12)。CSF分泌は、Na+K+ATPアーゼ阻害剤であるウアバインによって全体的に阻害され、Na+H+交換輸送体の阻害によって著しく低下される(10;13〜15)。CSF分泌を制御する機構についての研究は不足している。
本研究において、本発明者らは、in vitroモデルを使用して、脈絡叢におけるGLP-1Rの局在および分布を評価し、CSF分泌に対するGLP-1R刺激の効果を決定した。さらに、本発明者らは、ICPに対するGLP-1アゴニストの効果を評価するためのin vivoでの研究を行った。ICP調節におけるGLP-1の役割を探索することにより、本発明者らは、IIH、およびICP上昇を特徴とする他の状態の治療のための、新規な治療標的を決定し得る。
材料および方法
エキセンディン-4(GLP-1Rアゴニスト)、エキセンディン断片(エキセンディン-9、GLP-1Rアンタゴニスト)、ウアバイン(特異的なNa+ K+ ATPアーゼ阻害剤)、3-イソブチル-1-メチルキサンチン(IBMX;ホスホジエステラーゼ阻害剤)およびフォルスコリン(アデニル酸シクラーゼ活性化因子)は、Sigma-Aldrichから購入した。ミリストイル化されたプロテインキナーゼ阻害剤(PKI)-(14-22)-アミド(プロテインキナーゼA[PKA]阻害剤)は、Merck Chemicalsから購入した。GLP-1Rタンパク質の検出および局在、ならびに脈絡叢上皮(CPe)細胞特徴付けのための一次抗体としては、GLP-1Rに対する抗体(ウサギ、ab39072、Abcam)、トランスサイレチン(TTR;ヒツジ、ab9015、Abcam)、Na+ K+ ATPアーゼ(ウサギ、ab76020、Abcam)、zona occludens-1(ZO-1;ウサギ、61-7300、Life Technologies)、アクアポリン1(AQP1;ウサギ、AB3065、Abcam)およびβ-アクチン(マウス、A5441、Sigma Aldrich)が含まれていた。免疫組織化学のために、Alexa Fluor(登録商標)標識二次抗体をLife Technologiesから購入し、ウエスタンブロットのために、HRP結合二次抗体をCell Signalling Technologyから購入した。細胞培養試薬は、Life TechnologiesまたはSigma-Aldrichからであって、明記がない限り、他のすべての化学物質は、Sigma-Aldrichから購入された。外科的な手法のために、ミダゾラムをB. Braunから購入し、フルアニソンおよびクエン酸フェンタニルをDanish pharmacy supplyから購入した。
in vitroでの研究には、150〜200gの雌のSprague-Dawleyラット(Charles River)を、University of Birminghamにおいて、UK Home Officeによって認可され、University of Birmingham Ethics Committeeによって承認された、Animals and Scientific Procedures Act 1986に従って使用した。Rigshospitalet-Glostrupにおいて行われた、in vivoでの研究には、200〜300gの雌のSprague-Dawleyラット(Taconic)を4つの群で収容し、食物および水の自由な摂取での12時間の明/暗サイクルの下で飼育した。すべての実験手法は、Danish Animal Experiments Inspectorateによって承認された(認可番号2014-15-0201-00256)。処置および外科的な手法の後に、ラットをあらゆる有害作用 (すなわち、起毛、重症の体重減少、眼の周りのポルフィリン環および異常行動) について毎日モニターした。1匹のラットだけ、術後のCNS感染が原因で安楽死させなければならなかった(生理食塩水群)。
側脳室および第四脳室からの脈絡叢組織を切り出し、0.25%のトリプシン溶液と共に4℃で2.5時間、その後、37℃で30分間インキュベートした。トリプシン消化を新生仔ウシ血清の添加によって停止し、細胞懸濁液を20gで10分間遠心分離した。細胞を10%のFBS、1%のペニシリン/ストレプトマイシン、4mMのL-グルタミン、200ng/mlのヒドロコルチゾン、5ng/mlの亜セレン酸ナトリウムおよび10ng/mlのEGFを補充したDMEM/F12中に再懸濁した。培養において最初の4日間、線維芽細胞の増殖を制限するために、20μMのシトシンアラビノシドを使用した(Gathら、1997)。最初に、細胞を、ラミニンでコーティングされた6ウェルプレート上に播種して、そのまま2日間増殖させ、その後、ラミニンでコーティングされた96ウェルプレートまたは12ウェルインサート(Greiner Bio-One Ltd)に移した。4日目に、培地を10%のFBSおよび1%のペニシリン/ストレプトマイシンを補充したDMEM/F12と交換し、その後、2〜3日目毎に交換した。集密化した後、研究の開始の3日前(10〜14日目の間)にCPe細胞を血清枯渇状態にした。
側脳室からの脈絡叢を切り出し、人工CSF(aCSF;118mM NaCl、22mM NaHCO3、1.45mM K2HPO4、1mM MgSO4、1mM CaCl2および10mMグルコース)中に入れた。細胞内のGLP-1R局在に対するエキセンディン-4の効果を評価するために、外植片を、100nMのエキセンディン-9を含むaCSFと共に15分間、または100nMのエキセンディン-4を含むaCSFと共に15分間および30分間インキュベートした。次いで外植片を、以下に記載のプロトコールに従って固定および染色した。GLP-1RのmRNA発現およびタンパク質レベルに対するエキセンディン-4の効果を決定するために、外植片を、100nMのエキセンディン-4を含むaCSFと共に3時間および6時間インキュベートして、液体窒素中で直ちに凍結し、-80℃で保存した。
ラット脳組織切片の染色のために、ラットを殺し、直ちに10mMのPBS、pH7.4(PBS)で、その後、PBS中に4%のパラホルムアルデヒド(Alfa Aesar)によって、経心的に潅流した。脳を、4℃で一晩後固定し、PBS中に10%、20%および30%のスクロース中における4℃での連続した浸漬によって凍結保護し、OCT(Fisher Scientific)中に包埋し、クリオスタット(Bright Instruments)上で15μmの厚い冠状切片に切断し、荷電顕微鏡スライド上に載置して、使用まで-20℃で保存した。切片を最初にPBST(0.3%のTween20を含むPBS)中で洗浄し、2%のウシ血清アルブミン(BSA)および15%の標準ヤギ血清(NGS)を含むPBST中で室温で20分間ブロッキングし、次いで一次抗体(2%のBSAを含むPBST)と共に4℃で一晩インキュベートした。PBST中での洗浄後に、切片を、2%のBSAおよび1.5%のNGSを含むPBST中に希釈された適切なAlexa Fluor 488標識二次抗体と共に暗所で室温で1時間インキュベートした。最後に、切片をPBST中で洗浄し、その後、核染色剤DAPIを含むVectashield(Vector Laboratories)中に載置した。
qPCR調査のために、視床下部、下垂体前葉および脈絡叢を切り出し、液体窒素中で直ちに凍結し、-80℃で保存した。CPe細胞の初代培養物を、12ウェルインサート上で集密化するまで培養した。全RNAを、GenElute哺乳動物全RNA抽出キット(Sigma-Aldrich)を使用して抽出して、製造業者の説明書に従って行った。RNAを、高能力逆転写キットを製造業者のプロトコール(Life Technologies)に従って使用して相補的DNA(cDNA)に逆転写した。Taqman Gene Expression Assays(Life Technologies)を使用して、GLP-1Rの発現を評価した(アッセイ番号Rn00562406_m1)。内因性の参照として18Sリボゾームサブユニットを使用し(4319413E)、試料を3つの重複実験に付した。遺伝子発現レベルを決定するために、特定の試料がその閾値と交差したところにおけるサイクル番号(Ct)を使用し、ΔCtを、Ct(目的の遺伝子)とCt(内因性の参照)との間の差として算出した。
視床下部、下垂体および脈絡叢を切り出し、液体窒素中で直ちに凍結して、-80℃で保存した。組織は、氷冷された溶解バッファー(20mM Tris-HCl pH7.4、150mM NaCl、1mM EDTA、0.5mM EGTA、プロテアーゼ阻害剤を含む1% NP-40)中でホモジナイズし、細胞残渣を除去するために13,000gで遠心分離した。CPe細胞を、12ウェルインサート上で集密化するまで培養した。細胞および組織の溶解液(3μgのタンパク質)を8%のSDS-PAGEゲルで分離した。タンパク質を二フッ化ポリビニリデン(PVDF)メンブレン上に転写し、次いでTBST(0.5%のTween20を含むTBS pH7.4)中に5%のスキムミルク粉末で室温で1時間ブロッキングし、その後、ミルク/TBST中に希釈したGLP-1Rまたはβ-アクチンの抗体と共に4℃で一晩インキュベートした。TBST中での洗浄後、メンブレンをミルク/TBST中に希釈されたHRP結合二次抗体と共に室温で1時間インキュベートした。ECL試薬(Amersham)を使用してバンドを検出し、フィルム上に現像した。
下流のGLP-1Rシグナル伝達経路に対するエキセンディン-4の効果を、Amersham cAMP Biotrak Enzyme immunoassay(EIA)System(RPN 225、GE Healthcare Life Sciences)を使用してCPe細胞におけるcAMPのレベルを測定することによって評価した。CPe細胞を96ウェルプレート上で培養し、実験の当日に、100nMのエキセンディン-4(n=8)または100nMのフォルスコリン(陽性対照;n=5)を含む1mM IBMXを補充したaCSF中で37℃で30分間インキュベートした。次いでこれらの細胞を溶解させ、製造業者の説明書に従ってcAMPを検出した。
脈絡叢におけるNa+ K+ ATPアーゼ活性に対するエキセンディン-4の効果を、リン酸アッセイキット(ab65622、Abcam)を使用して、ATPから放出されるリン酸の比色測定によって評価した。Na+ K+ ATPアーゼ活性は、生成されるリン酸のうちウアバインに感受性である部分として定義された。CPe細胞をaCSFと共に37℃で1時間インキュベートし、その後、1mMのウアバインの存在下および非存在下において、100nMのエキセンディン-4(n=7)、5μMのPKI-16-22-アミド(n=8)、100nMのエキセンディン-4+5μMのPKI-16-22-アミド(n=8)を含むaCSF中で37℃で30分間インキュベートした。次いでこれらの細胞を氷上で溶解し、細胞残渣を除去するために13,000gで遠心分離した。リン酸を、製造業者の説明書に従って測定した。簡単に説明すると、試料を反応混合物に添加し、室温で60分間インキュベートし、その後プレートを690nmで読み取った。Na+ K+ ATPアーゼ活性は、各処理についてウアバインの存在下および非存在下において生成したリン酸の量の間の差として算出した。
この手法およびその検証は、方法論的な研究として最近公表されており、すべての技術的および外科的な詳細を含む(Uldallら、2014)。簡単に説明すると、ラットを麻酔した(1.25mg/mlのミダゾラム、2.5mg/mlのフルアニソンおよび0.079mg/mlのクエン酸フェンタニルを含む2.7ml/kgの皮下注射)。ラットを定位枠(David Kopf Instruments)内に入れ、頭蓋の最上部上で2cmの正中切開を行い、皮膚および軟組織を収縮させることによって骨を露出させた。頭蓋において4つのバーホールを導入するために歯科用ドリルを使用した。1つの大きなホールは、硬膜を露出させて硬膜外圧力ボルト(C313G-3UP、PlasticsOne)の配置を可能にするために注意深く穿孔され、カニューレは、台座の基礎と同じ高さまで切断された。より小さな他の3つのホールは、係留ねじを頭蓋に適合させるために使用した。硬膜外圧力ボルトおよび係留ねじは、頭蓋の内部表面に設置および整列配置され、歯科用レジン-セメント(Clearfil SA Cement、RH Dental)を使用して固定された。次いで硬膜外圧力ボルトおよびトランスデューサ(DTX-Plus(商標)、Argon Medical Devices)を、滅菌水を充填して確実に気泡を除いたポリエチレンチューブで連結した。
覚醒動物において記録を行うために、ラットをミダゾラム(2.5mg/kgの皮下注射)で鎮静させ、硬膜外圧力ボルトにトランスデューサを連結した。次いでラットを注入ケージ(Instech Laboratories)内に入れ、これは、制約のない移動を確実にするための旋回レバーアームを有していた。ここでも上記のように頸静脈圧迫によってICPシグナルを確認した。安定なベースラインのICPの読み取りを30分間記録した後に、ラットに生理食塩水(n=6)またはエキセンディン-4(20μg/kg;n=7)のいずれかの0.5mlの皮下注射を行った。さらに60分間ICPを記録した。
値は、平均値、および平均値の標準誤差(SEM)として表された。このデータを、GraphPad Prismソフトウェアを使用して解析した。3つ以上の群の間の比較のためにノンパラメトリッククラスカル-ウォリス検定を使用し(qPCR実験、ウエスタンブロット解析、cAMPレベル、リン酸アッセイ)、その後、多重比較のための適切な調整をして(Bonferroni)、ノンパラメトリックマン-ホイットニー検定(両側)を行った。一定時間にわたる2群間のICP比較のために二元配置ANOVAを使用した。値は、P値が、*P<0.05、**P<0.01、***P<0.001、****P<0.0001であったときに、統計的に有意であるとみなされた。
脈絡叢におけるGLP-1RのmRNA発現およびタンパク質レベル
脈絡叢外植片においてGLP-1RのmRNA発現およびタンパク質レベルを決定し、GLP-1R陽性の脳組織と比較した。予想通り、GLP-1RのmRNA発現は、視床下部では高レベルで存在し、下垂体では低レベルだけであった(図7A)。GLP-1RのmRNAは、脈絡叢において発現されていた。脈絡叢外植片のウエスタンブロット解析からの結果は、これらの所見を支持しており、GLP-1Rについての予想される分子量と一致する単一の53kDaのバンドの存在が実証された(図7B)。
脈絡叢におけるGLP-1Rの細胞分布ならびにエキセンディン-4(GLP-1Rアゴニスト)およびエキセンディン-9(GLP-1Rの内部移行を制限するGLP-1R競合的アンタゴニスト)処理の効果を決定するために、GLP-1Rに対する特異的抗体で脈絡叢外植片を免疫染色した。GLP-1R陽性染色は、大部分は細胞質内、ならびに頂端表面上およびCPe細胞の細胞と細胞の接触部に局在していた。エキセンディン-9およびエキセンディン-4の両方の15分間の処理後、受容体は、大部分はCPe細胞の頂端表面に限定され、きわめて少ない細胞質染色が検出された。さらに、エキセンディン-4処理の30分後に、ほとんどのGLP-1R陽性染色は、細胞質に転位して戻っており、CPe細胞の基底側上でも観察され得た。
脈絡叢におけるGLP-1Rの役割をさらに調査するために、CPe細胞を単離および培養した。初代CPe細胞のアイデンティティーを確認するために、それらを、CPe細胞において存在することが公知の特異的なタンパク質に対する抗体を使用して特徴付けし、次いで、in vivoのCPe細胞と比較した。CPe細胞に特異的に局在する、チロキシンおよびレチノールAの輸送体であるトランスサイレチン(TTR)を、脈絡叢および培養CPe細胞の両方において検出した。TTRは、細胞質内に存在し、核周囲の領域においてより強く染色された。CPe細胞からCSF中へのNa+輸送の主要な駆動体であるNa+ K+ATPアーゼは、脈絡叢および培養CPe細胞の頂端表面に局在していた。タイトジャンクションタンパク質、ZO-1は、脈絡叢組織の上皮細胞において検出され、in vitroで細胞と細胞の接触部において明白に検出された。AQP1陽性染色は、in vivoでCPe細胞の頂端表面上に存在し、Na+ K+ATPアーゼのものと同様のパターンであった。in vitroにおいて、細胞表面AQP1免疫染色の強度は均質ではなく、他の細胞と比較してより高い強度の染色を示す細胞があったことが注目されるのは興味深い。GLP-1Rは、in vivoおよびin vitroでCPe細胞の主に細胞質および頂端表面において観察された。GLP-1RのmRNAおよびタンパク質は、CPe細胞においても発現され、全組織脈絡叢外植片におけるよりも高かった(図9)。
脈絡叢におけるGLP-1R活性化に対するエキセンディン-4の効果を調査するために、CPe細胞培養物においてcAMPのレベルを評価した。エキセンディン-4での処理は、cAMPにおいて2倍の上昇をもたらし、これは、ベースラインと比較して有意に異なった(P<0.01)(図10A)。
エキセンディン-4処理は、覚醒ラットにおいてICPを低下させる
GLP-1Rアゴニストであるエキセンディン-4が覚醒ラットにおいてICPを低下させることができることが初めて実証された。上記の結果により、エキセンディン-4のICP低下特性は、CPe細胞におけるNa+ K+ATPアーゼ活性における低下によって実証された、脈絡叢における低下されたCSF分泌を通して生じることが示唆される。CSF産生のエキセンディン-4による変調は、GLP-1R/cAMP/PKAシグナル伝達経路を通して作用すると考えられる。
Claims (15)
- 対象において頭蓋内圧上昇(ICP)を低下させる方法で使用するための、インクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- ICP上昇を患う対象において上昇したICPを低下させる方法であって、対象において上昇したICPにおける低下を引き起こすことにより対象を治療するのに十分な量で、インクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せを投与することを含む、方法。
- 治療されるICP上昇が、特発性頭蓋内圧亢進症(IIH)、続発性偽脳腫瘍、水頭症、正常圧水頭症、脳腫瘍に続発する頭蓋内圧上昇、髄膜炎、脳外傷、脳損傷、および静脈洞血栓症から選択される、請求項1または2に記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- インクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せが、血液から脈絡叢上皮細胞内へのNa+輸送における低下、およびCSFの産生における低下をもたらす、請求項1から3のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- インクレチン、またはそのアナログが、GLP-1またはそのアナログである、請求項1から4のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- GLP-1アナログが、GLP-1(7-36)アミドおよびGLP-1(7-37)またはそれらのバリアントもしくは誘導体である、請求項5に記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- GLP-1アナログが、GLP-1よりも長い半減期を有し、および/またはDDP IV分解に抵抗性である、請求項1から6のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- インクレチンアゴニストが、例えばエキセンディンまたはそのアナログのような、GLP-1模倣体である、請求項1から7のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- エキセンディンが、エキセンディン3もしくはエキセンディン4またはそれらの誘導体もしくはバリアントである、請求項8に記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- インクレチンエンハンサーが、DPP IV阻害剤である、請求項1から9のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- DPP IV阻害剤が、ジペプチド誘導体またはジペプチド模倣体である、請求項10に記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- インクレチンエンハンサーが、DPP IV阻害剤である、請求項1から11のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- 方法が、経鼻または頬側の投与を含む、請求項1から12のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- 方法が、例えば頸動脈および/もしくは腹部動脈を介した動脈内投与、または脳室へのもしくは腰椎穿刺を介した脳室内および/もしくは髄腔内投与などによる、注射投与を含む、請求項1から12のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
- 方法が、1から10μg/kgまでの用量で、インクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せを投与することを含む、請求項1から14のいずれかに記載の方法で使用するためのインクレチン、もしくはそのアナログ、インクレチン受容体アゴニスト、インクレチンエンハンサー、またはそれらの任意の組合せ。
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