JP2017529390A - コラーゲンに基づく治療送達系 - Google Patents

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Abstract

コラーゲンに基づく治療送達デバイスは、可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物または例えば、可溶性テロコラーゲンおよび/もしくは可溶性アテロコラーゲンなどの非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む不溶性合成コラーゲン原線維マトリックス、ならびにコラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した活性薬剤を含む。プレマトリックス(pre-matrix)組成物は、可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックを含む水溶液および水溶液中の活性薬剤を含む。可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックは、可溶性オリゴマーコラーゲン、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含む。ビルディングブロックは、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合して巨大分子合成コラーゲン原線維マトリックスを構成するように作動可能である。プレマトリックス組成物およびデバイスを作製するかつ使用する方法も提供される。

Description

関連出願の相互参照
本出願は、その開示が、その全体が本明細書に参照によってはっきりと組み込まれている、「Drug Delivery System」と題され、2014年8月27日に提出された米国特許仮出願第62/042,664号明細書に対する優先権を主張する。
本開示は、一般に、活性薬剤が内部に分散した合成コラーゲン原線維マトリックスを含む治療送達デバイス、送達デバイスを作製するのに作動可能なプレマトリックス溶液および活性薬剤送達のための方法に関する。本開示は、コラーゲン原線維マトリックスのタンパク分解性生分解性性質、コラーゲン原線維マトリックスの微細構造性質、コラーゲン原線維マトリックスの機械的性質およびコラーゲン原線維マトリックスの輸送性質の1つまたは複数を制御することによって送達系をカスタマイズする方法にも関する。
結合組織の主要な細胞外マトリックス(ECM)成分であるコラーゲンは、主にその生体適合性、低免疫原性および生分解性のために、移植可能または注入可能薬物送達ビヒクルとしての使用のための候補材料として多くの注目を集めてきた。細胞外マトリックスは、細胞のための足場を提供することが公知である一方、細胞を三次元的に組織化し、細胞挙動を調節するための必須の情報を提供する。このように、組織工学の分野は、これらの足場の形と機能の両方を模倣して、最適な組織修復および置き換えのための組成物を作り出そうと努力している。コラーゲン、および特にI型コラーゲンは、身体におけるその高い利用能、組織および種にわたる保存、生分解性ならびに生体適合性により、組織工学の分野において使用され得る。実際、コラーゲンは、ECMの最も豊富な分子であるだけでなく、それは、いくつかの組織の構造的および機械的性質の大部分を司る。コラーゲンのin vivo形態は、ランダムに組織化されたテロペプチドによって両方の末端でキャップされているトリプル−ヘリックス中央領域である。これらのコラーゲン分子は、天然の分子架橋を含有する分枝状コラーゲン原線維ネットワークとして集合したECM内に見出される。
コラーゲンに関する天然の生体材料としての多数の利点および広範な研究にもかかわらず、局所的活性薬剤放出を制御するためのビヒクルとしてのその使用は、限定されてきた。さらに、特定の薬剤の予測可能な局在型送達を同時に達成しながら適切な組織再生を誘導する組織移植片としてのその適用は、現在までのところ達成されていない。実際、少数のコラーゲンに基づく活性薬剤送達製剤のみが臨床治験まで進んだ。既存の製剤は、非解離性原線維コラーゲンまたは可溶化コラーゲンとして分類され得る。これらの製剤は、はっきりと定まっていない分子組成、低い機械的完全性、急速な生分解および薬物放出プロファイルに対する限定された制御を含めたいくつかの欠点を有する。
非解離性原線維コラーゲンは、機械的にホモジナイズされ、酸膨潤され、最後に凍結乾燥されて、架橋されていてもされていなくてもよいスポンジを形成する脱細胞化コラーゲン細胞外マトリックス(ECM)粒子状物質を含有する製剤である。可溶性コラーゲンは、対照的に、ペプシンまたは粘性コラーゲン溶液を形成するための哺乳動物組織の酸可溶化から得られ、次いで、これは、凍結乾燥され、架橋もしくは非架橋スポンジまたは注入可能粘性ゲルとして製剤化される。上記のように、以前記載されたコラーゲンに基づく活性薬剤送達プラットフォームは、はっきりと定まっていない分子組成、低い機械的完全性および安定性、急速なタンパク分解ならびに限定された設計制御を含めた多くの限定を有する。化学的および物理的手段を含めた外因的な架橋は、機械的および取扱い性質を改善し、移植時の持続性を増加させるために常法に従って使用されるが、かかるプロセシングは、有害な組織応答および生物活性の喪失を伴う。
これらの今日のコラーゲンに基づく薬物送達製剤がほとんど成功していないのは、これらの重大な限定に原因があるとされ得る。さらに、これらの従来の製剤は、ポアサイズおよびタンパク分解性を含めた材料性質の制御が不十分である無定形な微細構造を示す。これらのパラメーターの大ざっぱな制御は、凍結乾燥条件ならびに/または外因的な化学的および物理的架橋の調節を通してしばしば達成される。架橋なしで形成された材料は、粘性ゲルに相当する。それらは、機械的に不安定で、取扱うには柔らかすぎ、細胞誘導収縮に耐えられず、したがって、組織再生に必要な細胞内殖および移動を支持できないと特徴付けられる。他方、外因的な架橋は、細胞毒性または組織石灰化およびコラーゲン自体の部分的変性などの細胞および組織に有害な効果を有することが示された。アルデヒドに基づく架橋は、最終生成物中にアルデヒドが残存することにつながり得、コラーゲンの生体適合性に影響を及ぼし得る。さらに、脱熱水架橋(de-hydrothermal cross-linking)にはそれ固有の限界があり、十分に改善された性質を有する材料につながらない。
したがって、局所的治療送達系および統合された組織再生の設計および開発におけるさらなる進歩が必要とされている。本明細書で詳細に説明されることになるように、本開示は、この必要性に取り組み、また、既存の技術における欠陥に取り組む関連する組成物、デバイスおよび方法を提供する。
本開示の一態様に従って、不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスおよびコラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した活性薬剤を含む治療送達デバイスが提供される。コラーゲン原線維マトリックスは、可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物または本明細書で非オリゴマー可溶性コラーゲン分子とも称される可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の他の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む。一実施形態では、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子は、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の1つまたは複数を含む。一実施形態では、合成コラーゲン原線維マトリックスは、少なくとも5Paの堅さを示す。オリゴマーコラーゲン、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物は、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合して合成巨大分子コラーゲン原線維マトリックスとなる能力がある。
本開示の別の態様では、(i)可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックのある量を含む水溶液を形成すること;(ii)ビルディングブロックの自己集合による重合を引き起こし、その結果、不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成する;および(iii)(a)水溶液中に活性薬剤のある量を含め、それによって前記引き起こすことが、活性薬剤が内部に分散したコラーゲン原線維マトリックスを形成すること、または(b)合成コラーゲン原線維マトリックスを活性薬剤の量と接触させて、活性薬剤が内部に分散したコラーゲン原線維マトリックスを形成することを含む、治療送達デバイスを作製するための方法が提供される。ビルディングブロックの量は、可溶性オリゴマーコラーゲンを含む。一実施形態では、コラーゲン原線維マトリックスは、少なくとも5Paの堅さを示す。
本開示は、可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックを含む水溶液および活性薬剤を含むプレマトリックス組成物も提供する。可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックは、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合して合成巨大分子コラーゲン原線維マトリックスとなるように作動可能である、可溶性オリゴマーコラーゲン、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含む。一実施形態では、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子は、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の1つまたは複数を含む。一実施形態では、薬剤は、1つまたは複数のコラーゲン原線維ビルディングブロックと会合している。一実施形態では、コラーゲン原線維マトリックスは、少なくとも5Paの堅さを示す。
本開示の別の態様では、(i)可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックを含む水溶液および活性薬剤を含むプレマトリックス組成物;または(ii)不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスおよびコラーゲン原線維マトリックス全体にわたってもしくはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第1の活性薬剤を含む治療送達デバイスをin situ位置で配置することを含む、活性薬剤を送達するための方法が提供される。
本出願のさらに他の実施形態および特色は、添付の図とともに以下の記載された説明から明らかとなろう。
添付の図面と合わせられた本出願の実施形態の以下の説明への参照によって、本出願の様々な態様は、より明らかとなり、本出願自体の教示は、より良く理解されるであろう。
本開示の教示に従ったコラーゲン原線維マトリックスの例の可溶性ビルディングブロックの概略図である。 本開示の実施例1に記載された、48ウェルプレートのウェルにおけるコラーゲンマトリックスに基づく送達系の形成の例示的表示であり、ここで、送達デバイス自体は、その薬剤放出プロファイルを実験的に測定するために、コラゲナーゼの存在または非存在下でリン酸緩衝生理食塩水(PBS)のリザーバー中に置かれる。 本開示の実施例2に記載された、コラーゲン原線維マトリックス送達デバイスのコラーゲン原線維重合動態(A)および物性(B)に対する混合されたFITC−デキストラン(2mg/ml)の効果のグラフ表示である。 実施例3に記載された、拡散に基づく数学的モデルを使用して予測されたサイズ依存性分子放出動態の例示的表示である。 本開示の実施例4に記載された、重合可能なオリゴマーコラーゲンおよび市販のモノマーコラーゲン(BDラット尾(BD rat tail))マトリックスの分子放出を分析することから得られたデータを示す図である。 本開示の実施例4に記載された、コラゲナーゼの存在下でのオリゴマーコラーゲン原線維組成物および市販のモノマーコラーゲン原線維マトリックスの分子放出を分析することから得られたデータを示す図である。 本開示の実施例4に記載された、5000U/mlコラゲナーゼに暴露された重合アテロコラーゲン(四角)、テロコラーゲン(円)またはオリゴマー(三角形)マトリックスでの振動せん断に基づく、および歪み制御時間掃引実験から得られたデータを示す図である。 本開示の実施例4に記載された、10kDaまたは2MDa FITC−デキストラン分子と重合したオリゴマー、テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンマトリックス(3mg/ml)の分子放出を分析することから得られたデータを示す図である。 本開示の実施例6に記載された、コラーゲン原線維マトリックスの重合中に得られた重合プロファイルデータを示す図である。 本開示の実施例7および10に記載された、いろいろなコラーゲン原線維マトリックス内で重合した小(10kDa;パネルAおよびB)および大(2MDa;パネルCおよびD)FITC−デキストラン分子の時間放出プロファイルを示す図である。 本開示の実施例10に記載された、50U/mlコラゲナーゼの存在下での低密度(3mg/ml)および高密度(15.6mg/ml)コラーゲン原線維マトリックスからのFITC−デキストラン放出から得られたデータの要約である。 本開示の教示に従った、いろいろな潜在的活性薬剤と比較した、フルオレセインおよび示されたFITC−デキストラン分子量のサイズを比較する概略図である。 FITC−デキストラン粒径(MW)を流体力学半径(nm)と比較する以前公表されたチャートである。 本開示の実施例9に記載された、拘束圧縮を使用した高密度コラーゲン原線維マトリックスを作り出す方法の概略図である。 本開示の実施例4に記載された、10kDa(左パネル)または2MDa(右パネル)FITC−デキストランで調製され、示されたコラゲナーゼ濃度で処置された低密度(3mg/ml)オリゴマーマトリックスから得られた放出動態データを示す図である。 放出の初速度および様々なコラゲナーゼ濃度に関して図15の放出動態曲線から計算されたT50%曲線を示す例示的グラフである。 本開示の実施例11に記載された、コラゲナーゼの非存在下での広範囲の密度(3から40mg/ml)にわたって調製されたオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスからの10kDa FITCデキストラン−放出に関して得られたデータの要約を示す例示的グラフである。 本開示の実施例11に記載された、コラゲナーゼ(10U/ml)の存在下での広範囲の密度(3から40mg/ml)にわたって調製されたオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスからの10kDa FITC−デキストラン放出に関して得られたデータの要約を示す例示的グラフである。 本開示の実施例11に記載された、コラゲナーゼ(10U/ml)の存在下での広範囲の密度(3から40mg/ml)にわたって調製されたオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスからの2MDa FITC−デキストラン放出に関して得られたデータの要約を示す例示的グラフである。
本明細書で述べられた例証は、いくつかの形で本出願の実施形態を説明するが、以下に開示された実施形態は、網羅的であることまたは本出願の範囲を開示された正確な形に限定すると解釈されることが意図されていない。
本明細書で記載された本開示の実施形態は、網羅的であることまたは本出願の教示を以下の詳細な説明において開示された正確な形に限定することが意図されていない。むしろ、実施形態は、当業者が本開示の原理および実行を正しく認識しかつ理解し得るように選択され、記載されている。
他に定義されない限り、本明細書で使用された全ての技術および科学用語は、本出願が属する分野の当業者によって通例理解されるのと同じ意味を有する。本明細書で記載されたものと類似したまたは同等の方法および材料が本出願の実行または試験において使用され得るが、様々な特定の方法および材料がここで記載される。
本開示の一態様は、活性薬剤が内部に分散した不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを含むコラーゲンに基づく治療送達デバイスを対象とする。別の態様では、本開示は、プレマトリックス組成物を対象とする。さらに他の態様では、本開示は、治療送達デバイスおよびプレマトリックス組成物を作製しかつ使用する方法を提供する。本開示のある特定の実施形態に従って、例示的治療送達デバイスは、水溶液から、組成が分かっているコラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックの混合物を重合させることによって調製される。コラーゲンに基づく治療送達デバイスは、移植可能または注入可能であってよい。開示された系は、バースト、持続的および標的放出を含めた、本明細書で活性薬剤と称される1つまたは複数の治療薬に関して広範囲のカスタマイズ可能な時空間的分子放出プロファイルを可能にする。
本明細書では、「コラーゲン原線維マトリックス」または「コラーゲン原線維材料」という用語は、コラーゲン原線維を含み、可溶化コラーゲンビルディングブロックから制御された条件下で形成されたI型コラーゲン組成物を表す。一実施形態では、コラーゲン原線維マトリックス中の少なくとも1%のコラーゲンは、オリゴマーから構成される。他の実施形態では、コラーゲン原線維マトリックス中の少なくとも2%、少なくとも3%、少なくとも4%または少なくとも5%のコラーゲンは、オリゴマーから構成される。一実施形態では、コラーゲン原線維マトリックス材料は、少なくとも5Paの堅さを有する。他の実施形態では、コラーゲン原線維マトリックス材料は、少なくとも10Pa、少なくとも15Pa、少なくとも20Paまたは少なくとも25Paの堅さを有する。
本明細書では、「コラーゲン」という用語は、主に構造的な機能を果たし、アルファ鎖として公知の3つのポリペプチド単位のユニークなトリプルヘリックス構造立体配置を有する少なくとも20の遺伝的に異なる分泌タンパク質のファミリーを表す。3つのアルファ鎖(2つのα1(I)および1つのα2(I)鎖)は、(Gly−X−Y)反復単位によって特徴付けられ、ここで、XおよびY位置は、プロリンおよびヒドロキシプロリンによってしばしば占められ、各末端で非ヘリックステロペプチド末端が隣接する約300nm長のトリプルヘリックスコラーゲン分子を形成する。モノマーとしても公知であるこれらのコラーゲン分子は、階層的様式で自己集合して、次いで、組み合わさって、身体の組織のECMを形成する微細線維、原線維、ファイバーおよびファイバー束の組織特異的ネットワークを形成する基本的なビルディングブロックである。リジルオキシダーゼは、ねじれ型コラーゲン分子(モノマーと呼ばれる)のプレ原線維凝集物(prefibrillar aggregate)に結合し、これらの間の架橋形成を触媒して、共有結合的に架橋されたダイマーまたはトリマー(オリゴマーと呼ばれる)を作り出す。種々のオリゴマー前駆体は、最終的に組織特異的原線維構造およびマトリックス機能をもたらす進行性分子パッキングおよび集合を調節する。モノマー製剤とオリゴマー製剤の両方は、インタクトなテロペプチド領域を有し、酸不安定性、中間架橋から産出される反応性アルデヒドを含有する。コラーゲンのタンパク分解酵素処置は、末端テロペプチド領域を除去して、アテロコラーゲン製剤をもたらす一方、アミノおよびカルボキシル−テロペプチドの除去は、再構成された生成物におけるコラーゲン分子の無定形な配置およびバンド形成された原線維パターンの喪失をもたらす。
本明細書では、「オリゴマー」という用語は、2つ以上のトロポコラーゲン分子が自然発生の分子内架橋を介して互いに共有結合しており、水性流体に可溶性である分子を表す。
本明細書では、「テロコラーゲン」(「トロポコラーゲン」、「テロマー」、「コラーゲンモノマー」または「モノマーコラーゲン」とも称される)という用語は、カルボキシおよびアミノ末端非ヘリックステロペプチド末端がインタクトであり;原線維マトリックスへの自己集合を経ることができ、分子間共有結合架橋を欠く個々のコラーゲン分子を表す。
本明細書では、「テロペプチド」という用語は、原線維形成、重合およびリジルオキシダーゼ媒介性分子間架橋形成に重要であることが公知であるトロポコラーゲン鎖のアミノおよびカルボキシ末端非トリプルヘリックスドメインを表す。
本明細書では、「アテロコラーゲン」という用語は、テロペプチド領域がトロポコラーゲンから部分的または完全に除去されているトリプルヘリックス分子を表す。かかるアテロコラーゲン調製物は、典型的に、組織からの酵素に基づく(例えば、ペプシンに基づく)コラーゲン抽出手順の結果である。
本明細書では、「コラーゲン模倣ペプチド」という用語は、コラーゲンのトリプルヘリックスポーションを表す特定のアミノ酸配列、しばしば−(Pro−Hyp−Gly)−を有する化学的に合成されたコラーゲンビルディングブロックを表し、天然のコラーゲンにおいて見出されるものに似たトリプルヘリックス高次構造を形成する。
本明細書では、「マトリックス」という用語は、細胞が埋め込まれているもしくは埋め込まれ得る緩い網目構造または接続されたものの配置を表す。コラーゲンの文脈では、マトリックスは、間隙液相によって囲まれた不溶性コラーゲン原線維ネットワークまたは無定形なナノ構造から構成される複合材料を表す。
オリゴマーは、コラーゲン分子の小さい凝集物(例えば、ダイマーまたはトリマー)を含み、これは、コラーゲンの組織特異的、共有結合分子間架橋を保持する一方、テロコラーゲン(またはモノマー)は、これらの分子間共有結合架橋を欠く個々のコラーゲン分子であることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。テロコラーゲンおよびオリゴマーは、インタクトなテロペプチド領域を有し、酸不安定性、中間架橋から産出された反応性アルデヒドを含有する。コラーゲン原線維が集合して原線維ポリマーネットワークを形成するプロセスである、天然のin vivo重合時に、これらの反応性アルデヒドは、原線維形成プロセスの一部として共有結合、中間架橋を自発的に再編成する。コラーゲンが末端テロペプチド領域を除去するタンパク分解酵素で処置された場合、ペプシン−可溶化(テロペプチド−欠乏性)アテロマー(atelomer)(またはアテロコラーゲン)製剤が作り出される。アミノ(N)−テロペプチドとカルボキシル(C)−テロペプチドの両方は、架橋および原線維形成において重要な役割を果たすので、それらの完全な除去は、再構成された生成物におけるコラーゲン分子の無定形な配置およびバンド形成された原線維パターンの結果的な喪失をもたらす。
オリゴマー、テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンを含めたコラーゲンマトリックスビルディングブロックは、ウシ、ブタおよびウマの皮および腱、ならびにヒトの腱などの哺乳動物組織を含むが、これらに限定されない当技術分野で公知の多種多様の未加工のコラーゲン供給源から得られ得る。代わりに、ビルディングブロックは、組換えテクノロジーを使用して作製されたコラーゲン模倣ペプチドまたは可溶性コラーゲン分子とすることができる。本開示において記載されたこれらのビルディングブロックから形成されたマトリックスは、市販のコラーゲン製剤と比較して、優れたメカノバイオロジー的性質を示す。本明細書で記載されたマトリックスは、未加工のまたは天然のコラーゲンとは異なる性質も示す。オリゴマー形でのI型コラーゲンポリマーは、本明細書で記載された不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスの主要なビルディングブロックである。本明細書でさらに記載されるように、オリゴマーの、例えば、アテロコラーゲンおよび/またはテロコラーゲンなどの非オリゴマー可溶性コラーゲン分子との比は、形成されたコラーゲン原線維マトリックスの様々な性質を調節するために変動され得、これにより、デバイスの意図された目的、位置および設置に依存した、本明細書で開示されたコラーゲンに基づく治療送達デバイスのカスタマイゼーションが可能になる。
上記のように、コラーゲン原線維マトリックスに加えて、コラーゲンに基づく治療送達デバイスは、活性薬剤または、任意選択で、1つを超える活性薬剤も含む。デバイスに含まれた1つまたは複数の活性薬剤はまた、デバイスの意図された目的、位置および設置に依存して変動し得る。本明細書では、「活性薬剤」という用語は、生物系における活性を有する任意の化合物、薬剤、分子、生体分子、薬物、治療剤、ナノ粒子、ペプチド、タンパク質、ポリペプチド、抗体、リガンド、部分抗体、ステロイド、増殖因子、転写因子、DNA、RNA、ウイルス、細菌、脂質、ビタミン、小分子、または大分子を表す。活性薬剤は、「生体分子」、「薬物」、銀アミン錯体、界面活性剤、ポリヘキサメチレンビグアニジン、ベタイン、抗菌薬、殺菌活性を有する線状ポリマービグアニジン、生理活性添加剤、ヘパリン、グリコサミノグリカン、細胞外マトリックスタンパク質、抗生物質、増殖因子、上皮増殖因子(EGF)、血小板由来増殖因子(PDGF)、繊維芽細胞増殖因子(FGF)、コラーゲン結合性ペプチドまたは因子、結合組織活性化ペプチド(CTAP)、形質転換増殖因子(TGF)、抗がん剤、免疫調節物質、免疫調節剤、抗炎症剤、骨形成剤、造血剤、造血調節物質、骨誘導剤、TGF−β1、TGF−β2、TGFα、インスリン様増殖因子(IGF)、腫瘍壊死因子(TNF)、インターロイキン、IL−1、IL−2、コロニー刺激因子(CSF)、G−CSF、GM−CSF、エリスロポエチン、神経増殖因子(NGF)、インターフェロン(IFN)、IFN−α、IFN−β、IFN−γ、防腐剤、色素、非生理活性薬剤、ホルモンおよび上記の合成類似体を含むが、これらに限定されない。「生体分子」は、ステロイド、増殖因子、転写因子、DNA、RNA(siRNA、mRNAなどを含めた)、ペプチド(天然および合成)、タンパク質、部分または全抗体、リガンド、ウイルス、細菌、脂質、またはビタミンを含むが、これらに限定されない。「薬物」は、化学療法薬、阻害剤、刺激薬、プロテアーゼ、抗生物質、抗ウイルス薬を含むが、これらに限定されない「小分子」;「生体分子」、「大分子」またはその組合せを含むが、これらに限定されず、ここで、薬物は、標的タンパク質、細胞または組織に対して有益または否定的な効果を有するように使用される。界面活性剤は、グリシン誘導体、スルホサクシネート、および分枝していない脂肪酸に基づくアミドを含み得るが、これらに限定されない。
本明細書では、「免疫調節量」という用語は、対象の免疫系に対して実証可能な効果を示すのに十分な特定の薬剤または因子の量を表す。免疫調節は、開業医が望むように免疫系を抑制または増強し得る。免疫系を抑制することは、対象が臓器移植レシピエントである場合またはループス、自己免疫性関節炎、自己免疫性糖尿病を含むが、これらに限定されない自己免疫疾患の処置にとって望ましい場合があり;免疫系の抑制が望ましい追加の診断は、当業者に公知である。代わりに、免疫調節は、例えば、がん、重症感染症または創傷治癒の処置において免疫系を増強し得;免疫系の増強が望ましい追加の診断は、当業者に公知である。
本明細書では、「オンコスタティカリーに(oncostatically)効果的な量」という用語は、選択された薬剤に感受性の腫瘍細胞を有する対象において腫瘍細胞増殖を阻害する能力がある薬剤の量である。
本明細書では、「造血調節量」という用語は、血液細胞の生成および/または成熟を増強するまたは阻害する薬剤の量である。
本明細書では、「骨誘導量」という用語は、骨増殖または骨増殖の速度の測定可能な増加を引き起こすまたはこれに貢献する薬剤の量である。
本明細書で記載されたコラーゲン組成物を構築するために使用されるコラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックは、例えば、ブタの皮膚を含めたいくつかの供給源から得られ得る。本明細書で記載されたコラーゲン組成物を作製するためのコラーゲンまたはコラーゲン成分を単離するためのコラーゲン含有供給源材料として有用な適した組織は、温血脊椎動物の粘膜下組織または任意の他の細胞外マトリックス含有組織を含む。粘膜下組織を調製する適した方法は、その開示が、その全体が参照によって本明細書にそれぞれ組み込まれている米国特許第4,902,508号明細書;第5,281,422号明細書および第5,275,826号明細書に記載されている。粘膜下組織以外の細胞外マトリックス材料含有組織は、本明細書で開示されたさらに他の実施形態に従ってコラーゲンを得るために使用され得る。精製コラーゲンまたは部分的に精製された細胞外マトリックス成分を得ることにおける使用のための他の細胞外マトリックス材料由来組織を調製する方法は、当業者に告知である。例えば、参照によって本明細書にそれぞれ組み込まれている、米国特許第5,163,955号明細書(心臓周囲組織);第5,554,389号明細書(膀胱粘膜下組織);第6,099,567号明細書(胃粘膜下組織);第6,576,265号明細書(一般に、細胞外マトリックス組織);第6,793,939号明細書(肝基底膜組織);および第7,919,121号明細書(肝基底膜組織);および国際公開第2001/45765号パンフレット(一般に、細胞外マトリックス組織)を参照されたい。様々な他の実施形態では、コラーゲン含有供給源材料は、胎盤組織、卵巣組織、子宮組織、動物尾組織、皮膚組織、骨、腱および軟骨組織からなる群から選択され得る。一部の実施形態では、コラーゲンは、ブタ皮膚コラーゲン、ウシコラーゲンおよびヒトコラーゲンから選択される;しかしながら、任意の適した細胞外マトリックス含有組織が本教示に従って精製コラーゲンまたは部分的に精製された細胞外マトリックス成分を単離するためのコラーゲン含有供給源材料として使用され得ることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。
精製コラーゲンまたは部分的に精製された細胞外マトリックス成分の供給源としての粘膜下組織を調製するための例示的調製方法は、その開示が参照によって本明細書に組み込まれている米国特許第4,902,508号明細書に記載されている。一実施形態では、例えば、他の種を排除することなく、ブタ、ヒツジまたはウシ種から好ましくは収集された脊椎動物の腸のセグメントは、細胞を除去するための縦のぬぐい運動を使用した剥離に供される、または細胞除去は、低張もしくは高張溶解によって達成される。一実施形態では、粘膜下組織は、水でまたは低張条件下の生理食塩水でなどの低張条件下ですすがれ、任意選択で殺菌される。別の例示的実施形態では、かかる組成物は、粘膜および表在筋層の管腔ポーションを機械的に除去することおよび/または水もしくは生理食塩水でなどの低張もしくは高張洗浄で常在細胞を溶解させることによって調製され得る。これらの実施形態では、粘膜下組織は、精製コラーゲンまたは部分的に精製された細胞外マトリックス成分の単離前に、水和または脱水状態で保管され得る。様々な態様では、粘膜下組織は、温血脊椎動物の粘膜の筋層と少なくとも管腔ポーションの両方から離層された粘膜下組織を含めた任意の層剥離実施形態を含み得る。
上記のように、コラーゲン原線維マトリックスを調製するために使用される1つのビルディングブロックは、オリゴマーコラーゲンである。オリゴマーコラーゲンの存在は、コラーゲン原線維マトリックスへのビルディングブロックの自己集合を可能にし、集合速度を増加させ、明瞭な原線維微細構造および優れた機械的完全性(例えば、堅さ)を有するコラーゲン組成物をもたらす。
一部の実施形態では、コラーゲン原線維マトリックスに関するビルディングブロックは、様々な割合の非オリゴマー可溶性コラーゲン分子も含む。一実施形態では、ビルディングブロックは、テロコラーゲンおよび/またはアテロコラーゲンの一方または両方を含む。ある特定の実施形態では、ビルディングブロックは、オリゴマーコラーゲンおよびアテロコラーゲンを含む。他の実施形態では、ビルディングブロックは、オリゴマーコラーゲンおよびテロコラーゲンを含む。さらに他の実施形態では、ビルディングブロックは、オリゴマーコラーゲン、テロコラーゲン、およびアテロコラーゲンを含む。オリゴマーコラーゲン、テロコラーゲン、アテロコラーゲンおよび/または他の非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の量は、例えば、堅さ、強度、流体および質量輸送、タンパク分解ならびに/または適合性を含めた結果として生じる合成コラーゲン原線維マトリックスの1つまたは複数の性質を調節するために重合の開始前に溶液中で製剤化され得る。特定の活性薬剤との使用に関するオリゴマーと非オリゴマー可溶性コラーゲン分子との所定の比は、異なる活性薬剤との使用に適したものとは異なり得ることが認識される。
コラーゲン濃度は、質量/体積または質量/質量で表され得る。コラーゲン含有量は、シリウスレッドおよびヒドロキシプロリンに関するアミノ酸分析などの較正比色アッセイを含むが、これらに限定されない、当技術分野で公知の任意の手段によって測定され得る。コラーゲンポリマー製剤の粘度は、溶液または分散液/懸濁液、濃度、分子組成、分子サイズ、温度および操作条件を含み得るが、これらに限定されないいくつかの因子に影響される。粘度測定値は、粘度計またはレオメーターを含むが、これらに限定されない当技術分野で公知の任意の手段によって得られ得る。
合成コラーゲン原線維マトリックスを作製するために使用される水性プレマトリックス組成物に存在する可溶性コラーゲンの濃度は、変動し得る。一部の実施形態では、コラーゲンは、約0.5mg/mlから約500mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約0.5mg/mlから約400mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約0.5mg/mlから約300mg/mlの濃度で存在する。一部の実施形態では、コラーゲンは、約0.5mg/mlから約200mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約0.5mg/mlから約100mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約1mg/mlから約5mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約2mg/mlから約5mg/mlの濃度で存在する。一部の実施形態では、コラーゲンは、約3.5mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約4mg/mlから約10mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約5mg/mlの濃度で存在する。一部の実施形態では、コラーゲンは、約10mg/mlから約20mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約12mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約20mg/mlから約30mg/mlの濃度で存在する。一部の実施形態では、コラーゲンは、約24mg/mlの濃度で存在する。一部の実施形態では、コラーゲンは、約500mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約400mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約300mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約200mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約100mg/mlの濃度で存在する。他の実施形態では、コラーゲンは、約75mg/mlの濃度で存在する。さらに他の実施形態では、コラーゲンは、約50mg/mlの濃度で存在する。
本明細書で記載された実施形態では、合成コラーゲン原線維マトリックスは、平均ポリマー分子量(AMW)によって定量化されるオリゴマー含有量を有し得る。本明細書で記載されたように、AMWの調節は、マトリックスの重合動態、原線維微細構造、分子性質、および原線維構造、例えば、原線維間分枝、ポアサイズ、および機械的完全性(例えば、マトリックス堅さ)に影響し得る。別の実施形態では、平均ポリマー分子量によって定量化されるプレマトリックス組成物のオリゴマー含有量は、マトリックス堅さと正に相関する。
一部の実施形態では、プレマトリックス組成物に含まれる非オリゴマー可溶性コラーゲンは、還元型コラーゲンである。本明細書では、「還元型コラーゲン」は、反応性アルデヒドを除くまたは実質的に減少させるためにin vitroで還元されたコラーゲンを意味する。例えば、コラーゲンは、還元剤(例えば、水素化ホウ素ナトリウム)でのコラーゲンの処置によってin vitroで還元され得る。
本開示のある特定の態様に従って、コラーゲンに基づく治療送達デバイスは、活性薬剤の送達に適応された合成コラーゲン原線維マトリックスを含む。活性薬剤の組込みは、重合前にプレマトリックス組成物中で薬剤を可溶性コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックと混合すること、既に形成された合成コラーゲン原線維材料を重合後に活性薬剤に暴露すること、および活性薬剤を可溶性コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックに共有結合させ、修飾コラーゲンビルディングブロックを単独または無修飾コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックの存在下で重合させることを含むが、必ずしもこれらに限定されないいくつかの方法によって達成され得る。活性薬剤を合成コラーゲン原線維マトリックスに組み込む方法は、活性薬剤に基づいて変動し得ることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。第1の活性薬剤をコラーゲン原線維マトリックスに組み込む方法は、第2の活性薬剤をコラーゲン原線維マトリックスに組み込む方法と同じかまたは異なり得ることがさらに認識される。活性薬剤に適用される「第1の」、「第2の」、および「第3の」という用語は、種々の活性薬剤間の区別を可能にすることが意図されており、必須の経時的特徴または順序を必ずしも伝達しないことも本明細書で理解され、正しく認識されよう。
本開示の教示に従ったコラーゲン原線維マトリックスの純度は、直接的にコラーゲンポリマー上でまたは特異的酵素(細菌性コラゲナーゼ)もしくは化学的(ブロモシアン)切断後のSDS−PAGE、ペプチドマッピング、アミノ末端配列決定、および非コラーゲン不純物アッセイを含むが、これらに限定されない当技術分野で公知の任意の手段によって評価され得る。コラーゲン原線維マトリックスの特徴を特徴付ける方法は、陽イオン交換HPLC、自然蛍光、LC/MS、MS、動的光散乱、分子ふるいクロマトグラフィー、粘度測定、円偏光二色性、示差走査熱量測定、トリプシン感受性、不純物プロファイリング、TEM、SEM、cryo−SEM、共焦点顕微鏡法、多光子顕微鏡法および原子間力顕微鏡法を含むが、これらに限定されない。
本明細書でのある特定の態様に従って、コラーゲン原線維マトリックスの定性的および定量的微細構造特徴が環境またはクライオステージ走査電子顕微鏡(environmental or cryostage scanning electron microscopy)、透過型電子顕微鏡法、共焦点顕微鏡法、第二次高調波発生多光子顕微鏡法によって決定され得る。引張り、圧縮および粘弾性性質は、レオメトリーまたは引張り試験によって決定され得る。これらの方法の全ては、当技術分野で公知である、またはその開示が、その全体が参照によって本明細書にそれぞれ組み込まれている、米国特許出願第11/435,635号明細書(米国特許出願公開第2007/0269476号明細書として2007年11月22日に公開された)、米国特許出願第11/914,606号明細書(米国特許出願公開第2009/0011021号明細書として2009年1月8日に公開された)、米国特許出願第12/300,951号明細書(米国特許出願公開第2009/0175922号明細書として2009年7月9日に公開された)、米国特許出願第13/192,276号明細書(米国特許出願公開第2012/0027732号明細書として2012年2月2日に公開された)、米国特許出願第13/383,796号明細書(米国特許出願公開第2012/0115222号明細書として2012年5月10日に公開された)にさらに記載されている、またはRoeder et al., J. Biomech. Eng., vol. 124, pp. 214-222 (2002)、Pizzo et al., J. Appl. Physiol., vol. 98, pp. 1-13 (2004)、Fulzele et al., Eur. J. Pharm. Sci., vol. 20, pp. 53-61 (2003)、Griffey et al., J. Biomed. Mater. Res., vol. 58, pp. 10-15 (2001)、Hunt et al., Am. J. Surg., vol. 114, pp. 302-307 (1967)、およびSchilling et al., Surgery, vol. 46, pp. 702-710 (1959)に記載されている。コラーゲン特徴およびコラーゲン特徴を特徴付ける方法は、その開示が、その全体が参照によって本明細書に組み込まれているASTM International F3089-14, 2014 West Conshohocken PAにおいて考察されている。
本開示のある特定の態様では、合成コラーゲン原線維マトリックスは、少なくとも5Paの堅さを示す。別の実施形態では、合成コラーゲン原線維マトリックスは、5Paから100GPaの間の堅さを示す。堅さは、弾性または線形率(linear modulus)とも称され得る。
一部の実施形態では、コラーゲン原線維マトリックスは、コポリマーを含み、かかるコラーゲン原線維マトリックスは、「ハイブリッドコラーゲン原線維」マトリックスと本明細書で称される。一実施形態では、コポリマーは、異なるまたは同じであり得る個々の化学部分からなる1つまたは複数の合成または天然の非コラーゲン分子との可溶性コラーゲンビルディングブロックの1つまたは複数の型の混合物の重合生成物を含む。本明細書では、「コポリマー」という用語は、末端と末端で(end-to-end)連結されて、線状分子を形成する個々の化学部分、および分枝(例えば、「多重腕」または「星形」)構造の形で一緒に連結された個々の化学部分を表す。代替の実施形態では、コポリマーは、2つのモノマー種の共重合によって得られる、3つのモノマー種から得られる(「ターポリマー」)、4つのモノマー種から得られる(「クオーターポリマー(quaterpolymer)」)または4つを超えるモノマー種から得られるコポリマーを含む。本開示は、マトリックスの原線維内で非コラーゲン分子と会合しているコラーゲンビルディングブロック(「ハイブリッド原線維」と本明細書で称される)を含むハイブリッドコラーゲン原線維マトリックスの実施形態およびハイブリッドコラーゲン原線維マトリックス内で非コラーゲン分子がコラーゲン原線維とは別に重合して、別々のコラーゲン原線維および非コラーゲンポリマーを生成するハイブリッドコラーゲン原線維マトリックスの実施形態も企図する。別の実施形態では、ハイブリッドコラーゲン原線維マトリックスは、ポアおよび間隙空間を規定する重合非コラーゲンポリマーまたはコポリマーを提供し、可溶性コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックを含む水性流体を間隙空間に導入し、ビルディングブロックを重合させて、間隙空間内でコラーゲン原線維マトリックスを形成することによって形成される。
別の態様では、本開示は、後の重合のために製剤化されて、不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスおよび/またはコラーゲンに基づく治療送達デバイスを提供するプレマトリックス組成物を対象とする。コラーゲン原線維マトリックスを形成するためのプレマトリックス組成物の重合は、制御された条件下で達成され得、ここで、制御された条件は、pH、リン酸濃度、温度、緩衝液組成、イオン強度、ならびにコラーゲン分子と非コラーゲン分子の両方を含み得る所与のプレマトリックス組成物中に存在するビルディングブロックおよび他の任意選択の分子の組成および濃度を含むが、これらに限定されない。
本明細書では、「プレマトリックス組成物」という用語は、可溶性コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックを含む水性流体を表し、ビルディングブロックは、オリゴマーおよび任意選択で、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の型を含み、そのビルディングブロックは、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合または重合して高次構造(巨大分子集合体)となる能力を実証する。一実施形態では、ビルディングブロックは、それらの分子組成および原線維形成能力に基づいて選択される。一実施形態では、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子は、テロコラーゲン分子およびアテロコラーゲン分子の一方または両方を含む。
本開示の例示的実施形態に従って、プレマトリックス組成物は、オリゴマー、モノマー/テロコラーゲン(テロマーとも称される)およびアテロコラーゲン(アテロマーとも称される)を含むが、これらに限定されないコラーゲンポリマービルディングブロックの種々の型を含むコラーゲンポリマー溶液を含む。これらのビルディングブロックは、図1に示されたように、それらの分子間架橋含有量、組成および架橋化学的性質に基づいて異なる。図1を参照すると、(A)は、オリゴマーを描写し、(B)は、テロコラーゲンを描写し、(C)は、アテロコラーゲンを描写する。図1中の灰色の棒は、安定な、成熟共有結合架橋を表す。
一部の実施形態では、ビルディングブロックは、組織からコラーゲンを可溶化し、可溶性コラーゲンを精製することによって得られる。例えば、ビルディングブロックは、酸−可溶化コラーゲンならびに例えば、その全体が参照によって本明細書にそれぞれ組み込まれている米国特許出願第11/435,635号明細書(米国特許出願公開第2007/0269476号明細書として2007年11月22日に公開された)および第11/903,326号明細書(米国特許第8,084,055号明細書として2011年12月27日に授与された)に記載されている一連の制御された集合動態(例えば、重合半減時間)、分子組成、および原線維微細構造−機械的性質を有する三次元コラーゲンマトリックスをもたらすために制御された規定の重合条件を利用することによって調製され得る。一実施形態では、コラーゲンは、I型コラーゲンである。本開示のある特定の態様では、コラーゲン原線維マトリックスビルディングブロックは、供給源組織から除去されている。任意選択で、ビルディングブロックは、組織供給源から可溶化され得る一方、さらに他の実施形態では、ビルディングブロックは、合成コラーゲンを含む。さらに他の実施形態では、ビルディングブロックは、組換えコラーゲンを含む。
本明細書で記載された様々な実施形態のいずれかでは、本開示のコラーゲン組成物は、重合前、中、または後に、ミネラル、アミノ酸、糖、ペプチド、タンパク質、ビタミン(アスコルビン酸などの)、もしくはラミニンおよびフィブロネクチンなどの造血幹細胞培養を促進する糖タンパク質を含めた栄養素、ヒアルロン酸、または血小板由来増殖因子、もしくは形質転換増殖因子ベータなどの増殖因子、ならびにデキサメタゾンなどのグルココルチコイドと組み合わせられ得る。他の例示的実施形態では、グリセロール、グルコース、またはポリヒドロキシル化化合物などの原線維形成阻害剤が重合前または中に加えられ得る。一実施形態に従って、細胞がコラーゲン組成物の重合前または重合後の最後のステップとしてコラーゲンまたは細胞外マトリックス成分に加えられ得る。他の例示的実施形態では、カルボジイミド、アルデヒド、リジルオキシダーゼ、N−ヒドロキシスクシンイミドエステル、イミドエステル、ヒドラジド、およびマレイミドなどの架橋剤が重合前、中、または後に加えられ得る。
いろいろな技法が、本明細書で記載されたコラーゲンに基づく治療送達系の治療放出プロファイル(分子放出プロファイルとも称される)を制御するために使用され得る。本開示の一態様では、プレマトリックス組成物は、オリゴマーおよび非オリゴマービルディングブロックの様々な割合の選択によって広範囲の調整可能またはカスタマイズ可能な原線維微細構造、機械的性質、およびタンパク分解性を有する合成コラーゲン原線維材料を達成するために調節される。合成コラーゲン−ファイバーマトリックス組成および自己集合反応条件の調節は、原線維微細構造および関連する間隙液粘度、機械的性質ならびにタンパク分解が調節されるのを可能にする。合成コラーゲン原線維マトリックスの設計特異性は、機械物理的制約およびバイオインストラクティブ(bioinstructive)能力の選択を可能にする。
治療送達デバイスのある特定の態様では、コラーゲン原線維マトリックスは、所定のオリゴマー:非オリゴマー可溶性コラーゲン分子比が活性薬剤のバースト放出、徐放または可変性放出を支持するように、調整され得る。バースト放出は、薬剤の急速投与型量を標的エリアに送達する短い時間枠内の活性薬剤の急速な放出である。徐放は、所定の期間、一様の速度での活性薬剤の継続的放出を提供する。治療送達系は、活性薬剤の初期、中間期または後期バースト放出を提供するために製剤化され得ることが想像される。種々の活性薬剤または活性薬剤の種々の濃度が種々の時期に放出され得ることがさらに認識される。第1の活性薬剤が徐放で放出され得る一方、第2の活性薬剤がバースト放出で放出され得ることも認識される。
ある特定の態様では、治療送達デバイスは、合成コラーゲン原線維マトリックスの1つを超える層を含み、それぞれ、少なくとも1つの物性または活性薬剤によって区別される。層は、例えば、球状様式、円柱状様式、平面状様式または他の三次元様式で産出され得、ここで、合成コラーゲン原線維マトリックスの1つの層は、合成コラーゲン原線維マトリックスの少なくとも第2の層によって完全にまたはほぼ完全に囲まれており、コラーゲンマトリックスの第2の層は、第1のコラーゲン原線維マトリックス層とは異なる少なくとも1つの物性または活性薬剤を含む。さらに、コラーゲン原線維マトリックス層は、所定のオリゴマー:非オリゴマー可溶性コラーゲン分子比の選択によって、種々の活性薬剤の選択によって、または活性薬剤の種々の濃度によって異なり得る。別の実施形態では、治療送達デバイスは、物性、可溶性コラーゲン分子および活性薬剤の1つまたは複数の勾配を含む。
さらに、重合による合成コラーゲン原線維マトリックスの形成後、マトリックスは、組織様一貫性、取扱いおよび機械的性質を有するより高密度材料を達成するために、例えば、非拘束または拘束圧縮によってさらにプロセシングされ得る。圧縮プロセシング選択肢の例は、その内容が参照によって本明細書により組み込まれている米国特許出願公開第2015/0105323号明細書に記載されている。
本開示のある特定の態様に従って、合成コラーゲン原線維マトリックスは、少なくとも1つの物性の勾配を形成するために圧縮され得る。本明細書では、「圧縮された」という用語は、力がコラーゲン原線維マトリックスに適用された場合、サイズの減少または密度の増加を表し得る。例えば、圧縮は、拘束圧縮、可変圧縮、物理的圧縮、遠心分離、超遠心分離、蒸発または吸引などであるが、これらに限定されない力を適用する様々な方法を通して達成され得る。さらに、本明細書でのある特定の例示的態様に従って、コラーゲン原線維マトリックスを圧縮することは、組成物における少なくとも1つの物性の勾配を形成し得ることが理解され、正しく認識されよう。本明細書では、「物性」という用語は、構造的、機械的、化学的、および動態学的性質を含めたコラーゲン組成物の任意の性質を表し得る。
ある特定の実施形態に従って、勾配は、圧縮誘導勾配である。本明細書では、「圧縮誘導勾配」という表現は、コラーゲン原線維マトリックスが供される圧縮の結果として提供されるコラーゲン原線維マトリックスにおける勾配を表す。
一部の実施形態では、圧縮は、物理的圧縮である。本明細書では、「物理的圧縮」という表現は、物理的手段によって力を適用することによるコラーゲン原線維マトリックスの圧縮を表す。
他の実施形態では、圧縮は、拘束圧縮である。本明細書では、「拘束圧縮」という表現は、それが圧縮を経る、コラーゲン原線維マトリックスの拘束を表す。
さらに他の実施形態では、圧縮は、可変圧縮である。本明細書では、「可変圧縮」という表現は、非線形様式で力を適用することによるコラーゲン原線維マトリックスの圧縮を表す。
さらに他の実施形態では、圧縮は、遠心分離である。一部の実施形態では、圧縮は、超遠心分離である。さらに他の実施形態では、圧縮は、蒸発である。一部の実施形態では、圧縮は、吸引である。ある特定の実施形態では、吸引は、真空吸引である。選択された実施形態では、圧縮は、塑性圧縮ではない。なぜなら塑性圧縮は、コラーゲン組成物から除去可能な流体のほとんど全てが排出される極端なプロセスである可能性があり、足場の細胞生存能力を減少させ、天然のマトリックス構造を損傷し得るからである。
圧縮が物理的圧縮である実施形態に関して、物理的圧縮は、調節可能な鋳型およびプラテンを含むチャンバーにおいて行われ得る。典型的に、コラーゲン原線維マトリックスは、鋳型に挿入され、次いで、圧縮に供され得る。
さらに、物理的圧縮は、鋳型内の多孔性プラテンの位置に依存して変動され得る。例えば、鋳型は、多孔性ポリエチレンがプラテンの一部としてかつ/または試料鋳型の壁もしくは底に沿って配置されるように調節可能であり得る。多孔性ポリエチレンの位置は、コラーゲン原線維マトリックスにおける結果としての材料勾配を規定し得る。一部の実施形態では、圧縮は、少なくとも1つの方向からの物理的力である。他の実施形態では、圧縮は、2つ以上の方向からの物理的力である。さらに他の実施形態では、圧縮は、3つ以上の方向からの物理的力である。一部の実施形態では、圧縮は、4つ以上の方向からの物理的力である。
本開示のある特定の態様に従って、本明細書に記載の合成コラーゲン原線維マトリックスは、特定の物性を得るための制御された条件下で作製され得る。例えば、コラーゲン原線維マトリックスは、望ましいコラーゲン原線維密度、ポアサイズ(原線維−原線維分枝)、弾性率、引張り歪み、引張り応力、線形率、圧縮率、損失弾性率、原線維面積率、原線維体積率、コラーゲン濃度、細胞播種密度、せん断貯蔵弾性率(G’または弾性(固体様)挙動)、および位相角デルタ(δまたは流体(粘性)−から固体(弾性)−様挙動の測定値;δは、フック固体に関して0°、ニュートン流体に関して90°に等しい)を有し得る。
本明細書では、「率」は、弾性または線形率(従来の機械的試験プロトコールを使用して得られた応力−歪み曲線の線状領域の傾斜によって規定される;すなわち、堅さ)、圧縮率、損失弾性率、またはせん断貯蔵弾性率(例えば、貯蔵弾性率)とすることができる。これらの用語は、当業者に周知である。本明細書では、「原線維体積率」(すなわち、原線維密度)は、三次元で原線維によって占められた総面積のパーセント面積として定義される。
本明細書に記載のコラーゲンに基づく治療送達デバイスは、例えば、組織移植片材料としてなど、患者への後の移植のために形成され得る、または後の重合のためにプレマトリックス組成物をin situである位置に注入して、in situでコラーゲンに基づく治療送達材料を形成することによってin situで形成され得る。
一部の実施形態では、コラーゲンに基づく治療送達デバイスは、医学的移植片である。医学的移植片、特に、軟部組織移植片に関して重要な考慮すべきことは、移植片血管新生を促進する移植片、特に、細胞共移植(co-implantation)および細胞浸潤を可能にし、細胞増殖を構造的かつ機能的に支持し、組織と生理学的に完全に統合することができるものの設計である。追加の重要な考慮すべきことは、移植片が再生組織の増殖を妨害するべきではないこと、およびその分解が組織再生に関与する細胞に悪影響を与えるであろういかなる副産物も後に残すべきではないことを含む。本明細書で記載されたコラーゲンに基づく治療送達系は、細胞浸潤および増殖に適した強い多孔性枠組みを提供することによって細胞共移植および細胞浸潤を可能にし、細胞増殖を構造的かつ機能的に支持し、生理学的に組織と完全に統合することができるだけでなく、それらは、移植後に血管新生を増強するための移植片の部位への血管新生促進活性薬剤の送達を可能にもする。コラーゲン原線維マトリックスは、望ましい形状およびサイズを有する鋳型において重合を行うことによってならびに/または後重合プロセシングによって、任意のニまたは三次元形状で形成され得る。
他の実施形態では、コラーゲンに基づく治療送達系は、in vitroで使用され得る。例えば、本開示のコラーゲンに基づく治療送達系のin vitro使用は、細胞組織培養、創薬、および化学的毒性試験などの研究目的に利用され得る。他の実施形態では、コラーゲンに基づく治療送達系は、損傷されたもしくは機能障害性臓器または組織の修復のための、血管新生を含めた複合組織および臓器構築物を産出するためにin vitroで使用され得る。
本明細書でのある特定の態様に従って、コラーゲン原線維マトリックスは、低密度原線維マトリックスおよび高密度原線維マトリックスを含み得るが、これらに限定されない。低密度原線維マトリックスは、約10mg/ml、9mg/ml、8mg/ml、7mg/ml、6mg/ml、5mg/ml、4mg/ml、3mg/ml、2mg/mlまたは1mg/ml未満のコラーゲン濃度を有し得る。高密度原線維マトリックスは、10mg/ml、20mg/ml、30mg/ml、および40mg/ml超またはそれ超のコラーゲン濃度を有し得る。低密度原線維マトリックスに適した適用は、in vitro 3D細胞培養、注入可能治療送達、および移植可能治療送達を含み得るが、これらに限定されない。高密度原線維マトリックスまたは組織構築物に適した適用は、外科的移植片、シート、原線維材料、生体弁、組織勾配、関節軟骨および再生医療製品を含み得るが、これらに限定されない。
本開示の例示的なコラーゲンに基づく治療送達系は、実験条件とin vivo条件の両方でヒトおよび獣医学において使用され得ることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。本開示の教示に従った例示的治療送達系の想像される使用は、止血剤として、欠損した組織代替物または置換物として、皮膚同等物として、および組織増大のためのマトリックスとして含むが、これらに限定されない。種々の適用における使用のためのコラーゲン−ファイバーマトリックスの望ましい物理的特徴は、適用および活性薬剤に依存して異なり得る。
本開示の組成物の調製および試験、プロセスならびに方法を実証する様々な例は、以下の例において記載されている。これらの例は、例示的のみであり、限定するまたは本開示の他の実施形態を排除することは意図されていない。さらに、コラゲナーゼの存在および非存在下での様々なコラーゲン原線維材料からの分子放出動態を測定しかつ比較するために、in vitroモデル系が、混合されたFITC−デキストラン分子を有する重合3Dコラーゲンマトリックス系をコラゲナーゼまたは1×PBSに供することによって、コラーゲン原線維材料からの放出動態を測定するように設計されたことが本明細書で理解され、正しく認識されよう。特に、in vitroモデル系は、重合可能なコラーゲン内で10kDaから2MDaの範囲の様々なサイズのFITC−デキストランを混合すること、次いで、オリゴマーマトリックスに関する公知の拡散係数に基づいて様々なサイズの分子に関する放出動態を予測するための計算モデルを確立することを伴った。次いで、設計された実験モデル系は、標準化コラーゲンオリゴマーおよび市販のモノマーコラーゲンで調製された低密度マトリックス内でのFITC−デキストランに関してサイズ依存性分子放出動態を定め比較するために使用された。
本明細書では、「哺乳動物」という用語は、ヒト、ウシ、ブタ、イヌ、ウマまたはネコを含むが、これらに限定されない哺乳綱に属する任意の種を表す。
本明細書では、「哺乳動物組織」という用語は、哺乳動物に見出される皮膚、筋肉、腱または線維性結合組織を含むが、これらに限定されない任意の組織を表す。
本明細書では、「拡散」という用語は、気体、液体、およびいくつかの固体における原子、分子、原子の集団などのランダムな熱運動を表す。
本明細書では、「原線維形成」という用語は、トロポコラーゲンモノマーが集合して成熟原線維および関連する原線維−ネットワーク構造体を構築するプロセスを表す。
本明細書では、「ゲル」という用語は、分子間ポリマー鎖相互作用から生じる三次元ネットワーク構造体を表す。
本明細書では、「透過性」という用語は、多孔性材料が流体を透過させる能力の測定値;多孔性材料を通る液体の流れの速度を表す。
本明細書では、「組換えコラーゲンタンパク質/ペプチド」という用語は、微生物、昆虫、植物または動物宿主におけるタンパク質またはペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現によってなどであるが、これに限定されない組換え方法によって生成されたコラーゲンまたはコラーゲン様ポリペプチドを表す。かかる組成物は、Gly−X−Yトリプレットをしばしば含み、ここで、Glyは、アミノ酸グリシンであり、XおよびYは、同じかまたは異なり得、しばしばプロリンまたはヒドロキシプロリンであるが、任意の公知のアミノ酸とすることができる。
本明細書では、「自己集合」という用語は、それによって複合巨大分子(例えば、コラーゲン)または超分子系(例えば、ウイルス)がその成分からそれ自体を自発的に集合させるプロセスを表す。
本明細書では、「溶液」という用語は、唯一の相から構成される均質な混合物の型を表す。かかる混合物では、「溶質」は、「溶媒」として公知の別の物質に溶解した物質である。
本明細書では、「堅さ」という用語は、材料が適用された力に応答して変形に耐える程度を説明する一般用語であり;堅さの特定の測定値は、材料負荷フォーマット(例えば、張力、圧縮、せん断、屈曲)に依存する。
本明細書では、「分解」という用語は、材料の化学的、物理的もしくは分子的構造または外観(例えば、肉眼形態)の変化を表し;生理学的条件下でのコラーゲンの分解は、コラゲナーゼとして公知のタンパク分解酵素による中央のトリプルヘリックス領域内の部位特異的切断に関与する。コラゲナーゼは、マトリックスメタロプロテアーゼとして公知のプロテアーゼのより大きいファミリーのメンバーである。
本明細書では、「可溶性」という用語は、材料が溶解され得る程度の測定値を表し;コラーゲンポリマーの文脈では、可溶性は、溶液中のコラーゲン分子(部分的、全体または複数)またはペプチドを表し;可溶性のさらなる資格は、それぞれ、希酸および中性塩溶液に可溶性である組成物を説明する「酸可溶性」および「中性塩可溶性」を含み得る。
上記の説明から正しく認識されるように、以下に提供された実施例とまとめると、本明細書は、多種多様の形および実施形態を開示しており、そのいくつかの例が以下のように記載されている:
1つの形では、本開示は、可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む不溶性合成コラーゲン原線維マトリックス;およびコラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第1の活性薬剤を含むコラーゲンに基づく治療送達デバイスを提供する。以下の実施形態も提供される:
(1)コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(2)コラーゲン原線維マトリックスが、I型コラーゲンを含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(3)非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の他の型が、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の一方または両方を含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(4)コラーゲンに基づく治療送達デバイスが、組織移植片である、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(5)コラーゲンに基づく治療送達デバイスが、凍結乾燥されている、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(6)コラーゲン原線維マトリックスが、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含み、オリゴマーコラーゲンおよび非オリゴマー可溶性コラーゲン分子が、0:100から5:95、5:95から10:90、10:90から15:85、15:85から20:80、20:80から25:75、25:75から50:50、50:50から75:25および75:25から100:0からなる群から選択される範囲内の比にある、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(7)コラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第2の活性薬剤をさらに含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(8)第1および第2の活性薬剤のそれぞれが、増殖因子または薬物である、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(9)コラーゲン原線維マトリックスが、第1の密度を有する第1のポーションおよび第2の密度を有する第2のポーションを含み;第1の密度が、第2の密度とは異なっている、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(10)コラーゲン原線維マトリックスが、第1の活性薬剤が内部に分散した第1のポーションおよび第2の活性薬剤が内部に分散した第2のポーションを含み、治療送達デバイスが、第1の活性薬剤に関して第1の放出プロファイルおよび第2の活性薬剤に関して第2の放出プロファイルを示し、第1の放出プロファイルが、第2の放出プロファイルとは異なっている、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
別の形では、本開示は、(i)可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液を形成すること;(ii)ビルディングブロックの自己集合による重合を引き起こし、その結果、不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成すること;および(iii)(a)水溶液中に活性薬剤の第2の量を含め、それによって前記引き起こすことが、活性薬剤が内部に分散した不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成すること、または(b)不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを活性薬剤の第2の量と接触させて、活性薬剤が内部に分散したコラーゲン原線維マトリックスを形成することを含む、治療送達デバイスを作製するための方法であって;ビルディングブロックの第1の量が可溶性オリゴマーコラーゲン分子を含む、方法を提供する。以下の実施形態も提供される:
(1)コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(2)ビルディングブロックの第1の量が、可溶性非オリゴマーコラーゲン分子をさらに含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(3)不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを圧縮して、凝縮された不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成することをさらに含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(4)前記圧縮することが不溶性合成−コラーゲン原線維マトリックスを拘束圧縮に供することを含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(5)前記引き起こすことの後に、不溶性合成−コラーゲン原線維マトリックスを凍結乾燥することをさらに含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
さらに別の形では、本開示は、可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液および水溶液中の活性薬剤の第2の量を含むプレマトリックス組成物であって、可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量が、可溶性オリゴマーコラーゲン、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の他の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含み、ビルディングブロックが、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合して少なくとも5Paの堅さを有する巨大分子不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスとなるように作動可能である、プレマトリックス組成物を提供する。以下の実施形態も提供される:
(1)非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の他の型が、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の一方または両方を含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(2)オリゴマーコラーゲンが、I型コラーゲンを含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(3)活性薬剤が、増殖因子または薬物である、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(4)活性薬剤が、ビルディングブロックの1つまたは複数に共有結合している、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(5)プレマトリックス組成物が、0:100から5:95、5:95から10:90、10:90から15:85、15:85から20:80、20:80から25:75、25:75から50:50、50:50から75:25および75:25から100:0からなる群から選択される範囲内の比でオリゴマーコラーゲンおよび非オリゴマー可溶性コラーゲン分子を含む、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
(6)プレマトリックス組成物が、活性薬剤に関して最適化活性薬剤放出プロファイルを示す非可溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを達成するために調節される能力がある、本明細書で開示された実施形態のいずれか。
さらに別の形では、本開示は、活性薬剤を送達するための方法であって、(i)可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液および水溶液中の活性薬剤の第2の量を含むプレマトリックス組成物であって、可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量が、可溶性オリゴマーコラーゲン、または可溶性非オリゴマーコラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含み、ビルディングブロックが外因的な架橋剤の非存在下で自己集合してin situで少なくとも5Paの堅さを有する不溶性合成巨大分子コラーゲン原線維マトリックスとなるように作動可能である、プレマトリックス組成物;あるいは(ii)可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物または可溶性非オリゴマーコラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む不溶性合成コラーゲン原線維マトリックス;およびコラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたはコラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第1の活性薬剤を含むコラーゲンに基づく治療送達デバイスであって;コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、治療送達デバイスをin situ位置で配置することを含む方法を提供する。
(実施例)
コラーゲン原線維送達デバイスの製剤化
オリゴマー、テロコラーゲン、およびアテロコラーゲン(またはオリゴマー、テロマー、およびアテロマー)を含む可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックを市場体重のブタ(market weight pig)の真皮から得た。オリゴマー製剤を天然の分子間架橋によって共有結合により連結したコラーゲン分子の凝集物(例えば、トリマー)を表すオリゴマーを優先的に抽出する酸可溶化法を使用して調製した。テロマー製剤を酸可溶化、それに続く塩析技法を使用して調製した。塩溶液を使用して、コラーゲン分子を選択的に単離し、特に、テロマーおよびオリゴマー製剤は、テロペプチド末端に反応性アルデヒド基を含有するので、これらは、架橋されていないまたは未熟な酸に不安定な架橋を含有した。最後に、アテロコラーゲン製剤を、ペプシンがコラーゲン分子のNおよびC末端からテロペプチド末端を酵素的に切断する消化技法を通して調製した。これらの可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックをそれらの分子組成および重合(コラーゲン原線維形成)能力に基づいて標準化し、品質管理する。商用銘柄コラーゲンとの比較のために、ラット尾から収集された酸可溶化I型コラーゲンをBD Biosciences(Bedford、MA、BD−ラット尾コラーゲン、BD−RTCとして参照される)から購入した。
様々な酸可溶化コラーゲン溶液からのコラーゲン原線維送達デバイスの調製のために、コラーゲンを0.01N HClにさらに希釈し、リン酸緩衝生理食塩水(PBS、10×、pH7.4)および0.1N水酸化ナトリウム(NaOH)でさらに中和して、中性pH(7.4)および3mg/mlの最終コラーゲン濃度を達成した。その中で自由に混合された分子を有するマトリックスを製剤化するために、4つの異なるサイズ(すなわち、10、40、500および2MDa)のFITC−デキストランをロードして、異なるサイズの治療分子を模倣した。ここで、FITC−デキストラン(10kDa、40kDa、500kDa、または2MDa、Invitrogen、Eugene、OR製)を10×PBSに可溶化して、重合マトリックス内の望ましい最終濃度を得た。FITC−デキストランは、コラーゲンマトリックス系の上の上清からの蛍光レベル検出に基づく放出動態の直接の定量化を可能にする。全ての中和された溶液を、図2に示すように、48ウェルプレート(Corning、USA)において0.25ml体積で重合させた。系は、コラゲナーゼ(IV型、Worthington Biochemical Corporation、USA製)の非存在または存在下での1×PBS(pH7.4)であった0.75mlトップ緩衝液(top buffer)中への分子放出動態を可能にした。
FITC−デキストランを混合しても、コラーゲン原線維重合動態にもコラーゲン原線維マトリックス粘弾性性質にも効果はない
FITC−デキストランの追加がコラーゲン原線維重合動態およびコラーゲン原線維送達デバイス物性に対して効果を有さなかったことを確認するために、オリゴマーマトリックス(3mg/ml)を、上記の手順において記載されたように、FITC−デキストラン(10KDaおよび2MDa、それぞれ1.0mg/mlの最終濃度で)の非存在または存在下で中和した。各中和された溶液をスチールプレートと接触した重合のためにステンレススチール40mm直径平行プレート形状(TA Instruments、New Castle、DE)で適応されたAR2000レオメーター上に置いた。重合中の粘弾性性質(せん断貯蔵弾性率(G’)、せん断損失弾性率(G”)、および位相変位デルタの正接(δ))の時間依存性変化を時間掃引手順を使用して、振動せん断を通してモニターした。レオメータープレートの温度を4℃で5分間維持して、重合前にFITC−デキストランを有するまたは有さない中和されたコラーゲン溶液の貯蔵弾性率のベースラインを得た。次いで、温度を37℃まで上げて、マトリックスの重合を誘導した。FITC−デキストランありまたはなしで調製されたマトリックスの重合動態および粘弾性性質を比較した。重合半減時間(Thalf)を各試料に関して重合曲線の傾斜として定義された重合の速度とともに計算した。各製剤を三連で試験した。
結果は、図3に示したように、1mg/mlでFITC−デキストランを混合しても、結果としてのコラーゲン原線維マトリックスに関してコラーゲン原線維重合動態にも粘弾性性質にも有意に影響しなかった(p>0.05)ことを示した。特に、図3Aは、G’の時間依存性変化によって測定された重合動態を示す一方、図3Bは、10KDaおよび2000KDa FITC−デキストラン(1mg/ml)の非存在または存在下で調製された3mg/mlオリゴマーマトリックスに関して関連する最終G’値を示している。
コラーゲン原線維材料からの様々なサイズのFITC−デキストラン分子の拡散に基づく放出に必要な時間を予測する
コラーゲン原線維マトリックスからの様々なサイズのFITC−デキストランの拡散に基づく放出動態を予測しかつリザーバーサンプリング時間を定めるために、モノリシックマトリックスに関して確立された数学的モデルを適応した。数学的モデルは、コラーゲンマトリックス系および関連する上清「シンク」内の均一な初期薬物分布を有するスラブマトリックス形状に関し、拡散のフィックの第二法則に基づくものとした。
短期および長期放出の予測モデリングに使用した等式は、以下の通りであった:
短期:
長期:
ここで、MおよびMは、それぞれ、時間tおよび無限時間で放出された薬物の累積量を表し;Dは、系内の薬物の拡散係数であり、Lは、マトリックスの総厚さを表す。コラーゲン原線維マトリックスに関する長さ値は、発明者らの実験系によって定められた2.61mmとした。10KDa、40KDa、500KDaおよび2MDa FITC−デキストランに使用した拡散係数値(D)は、3mg/mlオリゴマーコラーゲンマトリックスに関して以前の公開された値に基づいて1.09E−10、4.8E−11、2.52E−11、および1.76E−11(m/秒)とした。
得られた結果は、図4に実証されたように、放出速度が減少した一方、放出のT50%(累積放出の50%に必要な時間)は、FITC−デキストランサイズが増加するにつれて増加したことを示した。かかるサイズ依存性放出動態は、増加する分子サイズに伴うFITC−デキストラン減少の拡散係数(D)として予期され得る。
コラゲナーゼの存在または非存在下での低密度(3mg/ml)オリゴマーおよび市販のモノマーコラーゲン原線維マトリックスに関するサイズ依存性分子放出動態の比較
コラーゲン原線維マトリックスの分子放出動態を定めるための設計された実験モデルの有用性をさらに検証し実証するために、10KDa、40KDa、500KDaおよび2MDa FITC−デキストランをオリゴマーおよび市販のモノマーマトリックスにおいて混合し、それらの放出を、設計されたin vitro実験モデル系で比較した。マトリックス(各250μl)を48ウェルプレートにおいて調製し、上部にPBS(1×、pH7.4)の750μlリザーバーを載せて、拡散に基づく放出を誘導した。コラーゲン−マトリックスの拡散とタンパク分解の両方に基づく放出動態をシミュレートするために、実験のサブセットをクロストリジウム・ヒストリチクム(Clostridium Histolyticum)(Worthington Biochem Corporation、USA)からの125U/mlコラゲナーゼの存在下で行った。本系に従って行われたリザーバー緩衝液選択により、以下のもの1)1×PBSを使用した場合(コラゲナーゼ条件の非存在)、分子放出に対するコラーゲン微細構造単独の効果;および2)125U/mlコラゲナーゼを使用した場合(コラゲナーゼ条件の存在)、分子放出に対するそのタンパク分解性とともにコラーゲン微細構造の効果が調査されることが可能になったことに留意されたい。
様々な時点で、上清を除去し、新鮮PBSまたは系によるコラゲナーゼと交換した。次いで、上清内のFITC−デキストランをそれぞれ、493および530nmの励起および放射波長で分光蛍光分析的に決定した(Molecular Devices Spectramax M5)。このプロセスを、FITC−デキストラン放出の完了を示す、ウェルの上清からの相対蛍光単位がベースライン蛍光(FITC−デキストランを含有しないPBSプラス/マイナスコラゲナーゼ)と一致するまで繰り返した。全ての蛍光値を最大総蛍光強度に基準化し、%累積放出を時間に対してプロットした。10KDaおよび2MDa FITC−デキストランに関する放出動態曲線に対するコラゲナーゼレベルの追加の効果は、図15のグラフ表示に見られ得る。特に、10KDaまたは2MDa FITC−デキストランを含有する低密度重合オリゴマーマトリックス(3mg/ml)を様々なコラゲナーゼレベルに供し、放出動態を測定した。さらに、図16は、様々なコラゲナーゼ濃度に関して放出動態曲線から計算された放出の初速度およびT50%曲線を示す例示的グラフを描写している。
ここで、図5を参照すると、サイズ依存性分子放出が重合可能なオリゴマーマトリックスで観察されたが、市販のBDラット尾マトリックスでは観察されなかった。より詳細には、10kDa(×)、40kDa(□)、500kDa(△)、および2MDa(○)の分子サイズを有するFITC−デキストランをオリゴマーおよび市販のモノマー(BDラット尾)マトリックス(3mg/ml)内で0.5mg/mlで重合させた。オリゴマー(A)および市販のモノマー(D)コラーゲンマトリックスに関して、時間依存性放出プロファイルを分光蛍光分析的にモニターし、初期放出速度(平均値±SD;n=3;B、E)およびT50%(平均値±SD;n=3;C、F)を定量化した。各パネルに関して、文字は、テューキー−クレーマー範囲検定によって決定された統計的に異なる実験群を示す(p<0.05)。1×PBS緩衝液を使用して、分子放出に対するコラーゲン微細構造の効果を調査した場合、オリゴマーマトリックスがFITC−デキストランのサイズに依存した放出プロファイルを示したことを結果は示した(図5A)。対照的に、かかるサイズ依存性分子放出は、同じ濃度で調製された市販のモノマーマトリックスで観察されなかった(図5D)。オリゴマー(B)からの初期放出速度の定量化は、FITC−デキストランサイズが大きくなるにつれて(10KDaから2MDa)減少する放出速度の傾向およびT50%(C)に関して増加する傾向を示した。これらの傾向は、計算モデルによって予測されたものと一貫していた。かかるサイズ依存性傾向は、市販のモノマーマトリックスに関して放出速度でもT50%においても観察されなかった。結果は、提供されたオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスの微細構造が、市販のBDラット尾コラーゲンモノマーマトリックスのものと比較して、FITC−デキストラン放出動態の制御を改善したことを示した。
図6を参照すると、コラゲナーゼの存在下でのオリゴマーマトリックスは、サイズ依存性および徐放性傾向を維持することが見出されたが、市販のモノマー(BDラット尾)マトリックスは、そのような傾向を維持していなかった。特に、10kDa(×)、40kDa(□)、500kDa(△)、および2MDa(○)の分子サイズを有するFITC−デキストランをオリゴマーおよび市販のモノマーマトリックス(3mg/ml)内で0.5mg/mlで重合させた。オリゴマー(A)および市販のモノマー(D)マトリックスに関して、時間依存性放出プロファイルをコラゲナーゼ(125U/ml)の存在下で分光蛍光分析的にモニターし、初期放出速度(平均値±SD;n=3;B、E)およびT50%(平均値±SD;n=3;C、F)を定量化した。各パネルに関して、文字は、テューキー−クレーマー範囲検定によって決定される統計的に異なる実験群を示す(p<0.05)。125U/mlコラゲナーゼを使用して、FITC−デキストラン放出動態に対してコラーゲン微細構造に加えてタンパク分解性の効果を調査した場合、オリゴマーマトリックスは、サイズ依存性および徐放プロファイルを維持した(図6A)一方、市販のモノマーコラーゲンマトリックスは、所与の期間において、試験された全ての分子サイズに関してより急速な「バースト」放出を示した(図6D)。放出プロファイルの初期傾斜の定量化は、オリゴマーマトリックスと比較して市販のモノマーマトリックスに関して放出の有意に高い速度および有意に少ないT50%(p<0.05)をもたらし、これは、市販のモノマーマトリックスでは急速なタンパク分解が起き、長期間、分子放出を支持することができないことを示している。
したがって、結果は、in vitroでの様々なサイズのFITC−デキストラン分子の放出に関して実験的に試験された多機能性生移植片材料の上首尾の形成を示した。設計された実験モデルは、分子放出に及ぼすコラーゲン原線維微細構造およびコラーゲン原線維微細構造とタンパク分解性の両方の効果が単独で調査されるのを可能にした。
FITC−デキストラン分子の種々のサイズの送達に関して例示的コラーゲン原線維マトリックス系の機能性および頑健性を確立した後、次いで、コラーゲン生移植片系を調節して、放出に関してそれを調整可能にすることができる。分子放出は、2つの主要なパラメーター、すなわち、1)コラーゲン原線維微細構造、および2)そのタンパク分解性によって影響され得ることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。したがって、これらの2つのパラメーターを調節するための手法を組み込んで、コラーゲン原線維材料からの放出動態をカスタマイズすることが目的であった。コラーゲンビルディングブロックの異なる原線維間分枝能力を使用することによっておよびコラーゲン原線維密度を改変することによって、集合の超原線維レベルでの分子放出動態が調整され得ると考えられた。
低密度(3mg/ml)コラーゲン原線維材料からの分子放出を特徴付け、次いで、コラーゲン原線維マトリックスにおけるビルディングブロックの2つの型を組み合わせることによってこれらのコラーゲン原線維材料からの分子放出を調節することが提唱された。その後、コラーゲン原線維−密度を増加させて、長期間の分子放出を提供することおよびこれらの高密度材料からの放出を特徴付けることが提唱された。これらの高密度コラーゲン原線維材料からの分子放出をさらに調節するために、タンパク分解性を調節するための手段としてオリゴマーとテロコラーゲン;およびオリゴマーとアテロコラーゲンブロックを種々の比で組み合わせることが提唱された。
低密度コラーゲン原線維材料からの分子放出を特徴付けることに関して、コラーゲン前駆体、テロコラーゲン、オリゴマーおよびアテロコラーゲンは、それらの分子間架橋組成の点で異なることが本明細書で理解され、正しく認識されよう。コラーゲン前駆体は、コラーゲンマトリックスの機械的および輸送性質の独立的制御を提供することが以前示された。このことから、したがって、これらの前駆体から形成されたマトリックスは、対応する濃度でそれらの変動する原線維微細構造、および変動するタンパク分解性に基づいて異なる放出動態を示すことが仮定される。これを試験するために、マトリックスのタンパク分解性を最初に研究し、その後、コラゲナーゼの非存在下と存在下の両方でのそれらからの分子放出を特徴付けた。ワイブル関数を分子放出データに当てはめることによって、マトリックスの放出機構に対する微細構造およびタンパク分解性の効果を確認することも提唱された。
オリゴマー対テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンマトリックスのタンパク分解性差違を確認するために、実験を行い、ここで、3mg/mlオリゴマー、テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンマトリックスを4℃で5分間、レオメータープレート上で重合させて、ベースラインを得、次いで、温度を重合のために37℃まで上げた。30分間の重合後、形成されたマトリックスを振動せん断に基づく、および歪み制御時間掃引実験において5000U/mlコラゲナーゼに暴露し、位相変位角デルタの正接を図7に示したように時間に関して追跡した。絶対正接(absolute tan)デルタを時間の関数としてプロットし、マトリックスの各型の代表試料をこの図に示す。正接デルタ値≧1の上昇は、固体から液体への相変化を示し、これは、材料の完全なタンパク分解を示している。次いで、正接デルタの一次導関数を時間に対してプロットして、屈曲ピークを得、これを使用して、重合時間の最初の30分間を減算した後、マトリックスに関して総分解時間を計算した。データ分析は、マトリックスに必要な分解時間がオリゴマー、テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンマトリックスによって有意に異なっていたことを示した(p<0.05;N=3)。マトリックスは、アテロコラーゲン(138.0分)、その後のテロコラーゲン(186.7分)、その後のオリゴマー(219.5分)マトリックスの順で分解し、これは、アテロコラーゲンおよびオリゴマーマトリックスが得られたタンパク分解スペクトルの両極端を表したことを示している。結果は、コラーゲンビルディングブロックとしてのアテロコラーゲン、テロコラーゲン、およびオリゴマーの使用が、種々のタンパク分解性および種々の原線維微細構造性質のおかげで含有された薬物分子の放出動態を調整する機会を提供し得ることを示唆した。
以前報告されたように、様々なコラーゲンビルディングブロック間の原線維微細構造とタンパク分解差違に基づいて、種々のコラーゲン前駆体から形成されたマトリックスは、種々の放出動態で分子を送達することが仮定された。この仮説を試験するために、0.25mg/ml最終濃度で10kDaおよび2MDa FITC−デキストランを含有する、オリゴマー、テロコラーゲンおよびアテロコラーゲンビルディングブロックからの3mg/ml重合マトリックスを製剤化した。製剤化をコラーゲン原線維送達デバイスの製剤化に関して上で記載された手順(実施例1)に従って行った。次いで、製剤化送達系からの放出動態を2つの条件下で測定した:1)放出動態に対する微細構造(拡散のみ)の効果を調査するためのコラゲナーゼの非存在下;および2)放出動態に対する微細構造とタンパク分解性の両方(拡散+分解)の効果を調査するための125U/mlコラゲナーゼの存在下。
ここで、図8を参照すると、分子放出プロファイルがコラーゲンポリマービルディングブロックに依存していることを例証するグラフ表示が示されている。特に、10kDaおよび2MDaの分子サイズを有するFITC−デキストランをオリゴマー、テロコラーゲン、およびアテロコラーゲンマトリックス(3mg/ml)内で重合させた。時間依存性放出プロファイルをコラゲナーゼ(125U/ml)の非存在(A、B)および存在(C、D)下で分光蛍光分析的にモニターし、初期放出速度(平均値±SD;n=3;A、C)およびT50%(平均値±SD;n=3;B、D)を定量化した。各パネルに関して、文字は、テューキー−クレーマー範囲検定によって決定される統計的に異なる実験群を示す。結果は、コラゲナーゼの非存在下で、オリゴマー、テロコラーゲン、およびアテロコラーゲンにおける微細構造に基づく差違は、放出動態パラメーターに影響したことを示した(図8Aおよび8B)。アテロコラーゲンおよびオリゴマーは、得られた放出スペクトルの極端な末端を再び形成したビルディングブロックであったことが明らかであった。
コラゲナーゼの存在下で、放出の速度は、どちらも分子放出に寄与する、コラーゲン微細構造に基づく拡散に加えてタンパク分解性により増強された。興味深いことに、コラゲナーゼの存在下で測定されたタンパク分解は、オリゴマーとアテロコラーゲンマトリックス間のものに加えてテロコラーゲンおよびオリゴマーマトリックスにおける差違を強調した。図8Cおよび8Dに見られるように、初期放出速度の進行性の増加およびT50%値の進行性の減少(p<0.05)がコラゲナーゼの存在下でオリゴマー、テロコラーゲン、およびアテロコラーゲンマトリックスに関して得られた。
この実験は、種々のビルディングブロックから構成されるコラーゲン原線維マトリックスが、マトリックスの異なる原線維微細構造および異なるタンパク分解により、種々の分子放出プロファイルを呈したことを示した。
ワイブル−関数の使用による種々のコラーゲンビルディングブロックの分子放出機構解明効果
ポリマーマトリックスからの薬物放出をシミュレートするために利用可能ないくつかの経験的モデルがある。べき法則モデルが広範に使用されてきたが、それは、放出曲線の最初の60%の説明に制限される。当てはめの質は、累積放出が約60%を超えるより長い時点で貧弱であることが観察された。ワイブル関数は、等式によって記載されたワイブル関数の経験的使用に基づく放出プロファイルの説明に使用することができる別の選択肢である:
は、時間tで放出された薬物の質量であり、Mは、無限時間で放出された薬物の質量(加えられた薬物の量に等しいと仮定される)であり、aは、時間依存性のスケールパラメーターを意味する一方、bは、溶解曲線の進行の形状を説明している。Papadopoulou et al.は、以下の表1に示したように、形状パラメーターbと放出の拡散機構間の強力な関連を提供した(Papadopoulou V, Kosmidis K, Vlachou M, Macheras P: On the use of the Weibull function for the discernment of drug release mechanisms. International journal of pharmaceutics (2006) 309(1-2):44-50を参照されたい)。
ワイブル関数を種々の可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックで得られた、実験的に得られた放出曲線に当てはめることによって、根底にある放出機構が解明されるであろうと仮定された。さらに、コラゲナーゼの非存在条件における放出動態のワイブル関数に基づくシミュレーションを使用することによって、どのようにコラーゲンビルディングブロックの異なる原線維間分枝能力によって引き起こされる微細構造に基づく差違が単独で、それらの分子放出動態に影響するかが検証されるはずである。
この目的のために、ワイブル関数を様々なFITC−デキストラン分子と混合された市販のモノマーコラーゲン(BDラット尾)、アテロコラーゲン、テロコラーゲン、およびオリゴマーマトリックスから得られた実験放出動態に組み込んだ。ワイブル関数は、実験データによく当てはまり、適合度からパラメーターaおよびbに関して決定されたRおよび信頼区間とともにパラメーター値aおよびbを以下の表2に示す。
結果は、市販のモノマー(BDラット尾)マトリックスが拡散に基づく放出機構を与えた一方、オリゴマーおよびテロコラーゲンコラーゲン原線維マトリックスは、それらと関連している複合の放出機構(フィックの拡散およびケースII輸送)を示したことを示している。アテロコラーゲンは、パラメーターbの完全に異なる値を示し、これは、高度に無秩序な空間におけるような拡散放出機構をおそらく示している。したがって、ワイブル関数は、コラゲナーゼの非存在下での放出動態に単独で当てはまったので、この結果は、コラーゲン原線維微細構造が分子放出に影響することを裏付けた。
重合動態のオリゴマー:アテロコラーゲン比の効果
オリゴマー:アテロコラーゲン比がコラーゲン原線維マトリックス重合動態に対して効果を有したかどうかを決定するために、マトリックスを実施例2に記載した手順を使用してAR2000レオメーター上でFITC−デキストランなしで重合させた。5つの異なるマトリックス組合せを重合前に0:100、25:75、50:50、75:25、および100:0の比で可溶性オリゴマーおよびアテロコラーゲンビルディングブロックを組み合わせることによって調製した。結果としての重合曲線ならびに計算された重合速度およびT50%を図9に示す。特に、コラーゲン製剤が、4℃から37℃への温度の上昇後に溶液からマトリックスへの転移を示したので、せん断−貯蔵弾性率の時間依存性変化をモニターした。重合プロファイル(A)を使用して、各マトリックス型のN=3に関して重合の初速度(平均値±SD、B)および半減重合時間(平均値±SD、C)を定量化した。
異なるマトリックス組合せが異なる重合プロファイルを示した(p<0.05、N=3)ことが図9から観察された。形成されたマトリックスの堅さ値は、オリゴマーの百分率が増加するにつれて増加した(図9A)。重合の速度は、増加するオリゴマー含有量とともに増加し(図9B)、T50%は、減少した(図9C)。急速な重合時間(T50%<5分間)が0:100を除く全てのオリゴマー:アテロコラーゲン比に関して観察された。
興味深いことに、全てのマトリックス組合せは、0:100オリゴマー:アテロコラーゲン比(純アテロコラーゲン)マトリックス以外は、急速な重合(T50%<5分間)を示した(図9C)。急速なコラーゲン原線維重合は、重要な設計特色である。臨床適用では、注入されたコラーゲン溶液が急速に重合して、多くの従来のコラーゲン製剤によっては示されない特色である、in situでの適切なマトリックス設置および分子送達を可能にする固体マトリックスを作り出すことが必要である。これらの結果は、オリゴマーおよびアテロコラーゲンビルディングブロックの種々の組合せの使用で、5分(例外:100%アテロコラーゲンマトリックス)以内に重合するそれらの潜在性を保持しながら種々の堅さを有するマトリックスが調製され得ることを示した。
分子ビルディングブロックオリゴマーおよびアテロコラーゲンの組成比を変動させることによるマトリックス放出動態の調節
オリゴマー:アテロコラーゲン比の異なる組合せを有するマトリックスで、異なる微細構造およびタンパク分解が得られたことから、マトリックス組成物の調節が異なる薬剤放出プロファイルを生ずるであろうことが暗示された。オリゴマーおよびアテロコラーゲンビルディングブロックを使用してマトリックス組成物を調節することにより、低原線維密度マトリックス(3mg/ml)の分子放出動態が調整され得ると仮定された。これを試験するために、コラーゲン原線維マトリックスを0:100、5:95、10:90、15:85、20:80、25:75、50:50、75:25および100:0%の比でのオリゴマー:アテロコラーゲンの組合せで製剤化した。これらのマトリックスを0.5mg/mlの1)一方のサブセットにおける10KDa FITC−デキストラン分子および2)他方のサブセットにおける2MDa FITC−デキストラン分子と混合し、それらの放出を10U/mlコラゲナーゼの非存在または存在下で研究した。
結果は、低原線維−密度(3mg/ml)コラーゲンマトリックスが類似した拡散放出プロファイル(10kDaに関して図10A、および2MDaに関して10C)だが、種々のコラゲナーゼ−依存性放出プロファイル(10kDaに関して図10B、および2MDaに関して10D)を与えたことを示した。放出プロファイルは、10KDa FITC−デキストラン分子と比較して、2MDa FITC−デキストランの完全な放出に関して増強された時間(図10CおよびD)も示した。これは、マトリックスがより小さいサイズの分子よりも、それら内でより長い時間、より大きいサイズの分子を保持する傾向を暗示した。
高密度コラーゲン原線維材料からの分子放出
可溶性コラーゲンビルディングブロック濃度が増加すると、コラーゲン原線維密度が増加し、ポアサイズが減少することが以前確立された。コラーゲン原線維密度が増加すると、分子拡散およびタンパク分解が減少することも公知である。したがって、合成コラーゲン原線維マトリックスからの放出が予混された可溶性コラーゲンビルディングブロックの濃度を増加させることによって延長されると仮定された。これを試験するために、オリゴマーコラーゲン原線維マトリックスを低(3mg/ml)および高密度(15.6mg/ml)で調製した。低密度マトリックスを前に記載したように調製した。高密度マトリックスを、3mg/mlコラーゲン原線維マトリックスを拘束圧縮に供して、5.2×体積減少を達成することによって調製した。直径1.1(厚さ2.6mm)のシリンダーを各マトリックス型から調製し、放出動態を比較した。
高密度コラーゲン原線維送達デバイスの作製
それらが細胞浸潤および組織再生を支持し、誘導する能力を損なうことなく、増加した原線維密度を有するコラーゲンマトリックスを作り出すことが望ましかった。この目的のために、オリゴマーマトリックスが、多孔度を細胞がそれに浸潤することができない程度まで減少させることなく、組織様材料を作り出す点において利点を有することを示した。したがって、概念証明研究としてオリゴマーコラーゲンマトリックスの密度を高めた。特に、原線維密度になる、重合マトリックスの効果的なオリゴマー濃度をHarbin研究室によって開発された拘束圧縮の方法によって増加させた。本発明の教示に従って拘束圧縮を介して高原線維密度マトリックスを作り出すためのプロセスの概略図を図14に示す。簡潔に述べると、2MDaまたは10kDa FITC−デキストランと混合された10.82mlの可溶性オリゴマーコラーゲン(3mg/ml)を圧縮鋳型(2cm幅、4cm長さ)中にピペットで移した。溶液を37℃で終夜重合させて、13.52mmの厚さを有するコラーゲン原線維マトリックスを作り出した。次いで、混合されたFITC−デキストランを有する重合マトリックスを6mm/分で多孔性ポリエチレンプラテン(50ミクロンポア)を使用して最終厚さ2.6mm(2cm幅、4cm長さ)まで拘束圧縮に供した。圧縮されたコラーゲンマトリックスの最終濃度は、15.6mg/ml(5.2×圧縮)であった。直径1.1(厚さ2.6mm)のシリンダーを低密度(3mg/ml)および高密度(15.6mg/ml)マトリックスから調製した。分子放出プロファイルを各マトリックス製剤の三連試料に関して50U/mlコラゲナーゼの存在下で測定した。
高密度化オリゴマーコラーゲンからの分子放出の拡張を検証する
改変された密度(3mg/ml=低;および15.6mg/ml=高)の製剤化されたコラーゲンマトリックスを、図11に示したように、それぞれ、10kDaおよび2MDa FITC−デキストランの分子放出に関して比較した。特に、10kDaおよび2MDa FITC−デキストランを3mg/mlおよび15.6mg/mlオリゴマーマトリックスで混合した。両方のマトリックスに関して放出動態を50U/mlコラゲナーゼへの暴露時に測定した。予期したように、低密度および高密度マトリックス製剤によって示された放出プロファイル間の差違は、10kDa FITC−デキストラン(A)と比較して2MDa FITC−デキストラン(D)で増強される。放出の初速度は、10KDa(B)と2MDa(E)FITC−デキストランの両方に関して、低密度マトリックスと比較して、高密度マトリックスにおいて有意に低い。放出のT50%は、図10Eおよび10Fに見られるように、より小さいサイズFITC−デキストラン(10kDa)とより大きいサイズ(2MDa)の両方に関して、低密度マトリックスにおけるよりも高密度マトリックスにおいて有意に高い。結果は、圧縮されたマトリックスからのFITC−デキストラン放出が、10KDa(図11A)と2MDa(図11D)FITC−デキストランの両方に関して、圧縮されていない試料と比較して有意により延長されたことを示した。放出の初速度の減少およびT50%値の増加も10KDa(図11B、C)と2MDa(図11E、F)FITC−デキストランの両方に関してより高いコラーゲン原線維密度で観察された。したがって、コラーゲンマトリックスの密度を高くすることにより、コラーゲン原線維マトリックスからの分子放出が調節されることがこの実験から結論づけられた。
10kDaおよび2MDa FITC−デキストラン放出の対するオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスの密度の効果
どのようにオリゴマーコラーゲン原線維マトリックスの密度が薬剤放出に影響するかをさらに明確にするために、10kDaおよび2MDa FITC−デキストランを3mg/mlから40mg/mlの密度範囲にわたって調製されたマトリックス内で0.25mg/mlの濃度で混合した。3mg/mlで調製されたオリゴマーマトリックスを拘束圧縮の非存在下で前に記載したように調製した一方、20mg/mlおよび40mg/mlマトリックスを4.05mg/mlマトリックスへの拘束圧縮の適用によって調製した。簡潔に述べると、10.39mlおよび20.78mlの中和されたオリゴマーコラーゲン(4.05mg/ml)を10kDaまたは2MDa FITC−デキストラン(0.25mg/ml)と混合し、圧縮鋳型(2cm幅、4cm長さ)中にピペットで移した。溶液を37℃で終夜重合させて、それぞれ、1.3cmおよび2.6cm厚さのマトリックスを形成した。次いで、これらのマトリックスを多孔性ポリエチレンプラテンを使用して0.26cmの最終厚さまで拘束圧縮に供して、4.84×(20mg/ml)および9.88×(40mg/ml)高密度化を達成した。直径1.1(厚さ0.263cm)のシリンダーを全てのマトリックスから調製し、これを使用して、コラゲナーゼ(10U/ml)の存在または非存在下で放出動態を測定した。全ての測定を三連試料上で行った。放出プロファイルをプロットし、ワイブルを当てはめることに基づいて計算した50%累積放出(T50%)に必要な時間に関して分析した。結果としてのワイブルパラメーターを使用して、放出機構を定めた。
オリゴマーコラーゲン原線維マトリックスは、図17および19に示したように、50U/mlコラゲナーゼの存在下で10kDaと2MDa FITC−デキストランの両方の分子放出に対して密度−依存性効果を示した。両方のFITC−デキストランに関して、T50%の増加が増加した密度とともに観察された。予期したように、密度−依存性放出のダイナミックレンジは、2MDa FITC−デキストランに関して最も大きかった。さらに、10kDa FITC−デキストランは、試験した全てのマトリックスに関して、2MDa FITC−デキストランと比較して減少したT50%値を示した。興味深いことに、ワイブル分析は、3mg/mlと20mg/mlオリゴマーマトリックスの両方に関して、10kDa放出機構が拡散と分解の両方に関与したことを示した。他方、40mg/mlオリゴマーマトリックスによって実証されたコラゲナーゼ分解に対する増加した耐性は、拡散のみの10kDa放出機構をもたらした。対照的に、試験した全てのマトリックス製剤は、拡散と分解の両方によって支配された2MDa FITC−デキストラン放出機構を示した。
コラゲナーゼの非存在下での10kDa FITC−デキストランの密度依存性放出の評価も、図18に示したように、オリゴマー濃度またはマトリックス密度との関数としてのT50%値の進行性の増加を示した。予期したように、コラゲナーゼの非存在下で得られたT50%値は、コラゲナーゼの存在下で測定されたもの未満であった(図17)。ワイブルパラメーターは、10kDa FITC−デキストラン放出が3mg/mlおよび20mg/mlに関しては主に拡散が関与する一方、40mg/mlマトリックスからの放出では、拡散およびいくつかの他の機構が関与したことを示した。この実験は、コラーゲンマトリックスの密度を高くすることにより、どのようにコラーゲン原線維マトリックスからの分子放出が調節されるかをさらに検証し、定めた。
コラーゲンポリマーの調製および特徴付け
市場体重のブタの皮をPurdue University Animal Care and Use Committee(PACUC)ガイドラインに従って市販の食肉加工源から得た。オリゴマーコラーゲンを、以前記載されたように(参照によって本明細書に組み込まれているKreger et al, (2010) Biopolymers 93:690-707)真皮から抽出した。モノマーに富む(テロコラーゲン)コラーゲンを0.5M酢酸でブタ皮膚を抽出し、その後塩析することによって調製した。分子間架橋部位を含有するコラーゲン分子内のテロペプチド領域を完全なペプシン消化によって酵素的に除去した。全てのコラーゲンを0.1M酢酸に対して徹底的に透析し、次いで、凍結乾燥した。使用前に、凍結乾燥されたコラーゲンを0.01N HClに溶解した。全てのコラーゲンを4℃で終夜のクロロホルムへの暴露によって無菌にした。コラーゲン濃度をシリウスレッド(Direct Red 80)アッセイを使用して決定した。コラーゲン製剤を純度および重合能力に基づいて標準化した。ここで、重合能力を重合マトリックスのせん断貯蔵弾性率(G’)と重合反応のコラーゲン含有量との間の関係として定義する。市販のモノマーコラーゲン、ラット尾から収集された酸可溶化I型コラーゲンをBD Biosciences(Bedford、MA、BD−ラット尾コラーゲン、BD−RTCとして参照される)から購入した。
コラーゲン原線維マトリックスの調製
3Dコラーゲン原線維マトリックスの調製のために、コラーゲンを0.01N HClで希釈し、リン酸緩衝生理食塩水(PBS、10×、pH7.4)および0.1N水酸化ナトリウム(NaOH)でさらに中和して、中性pH(7.4)および3mg/mlの最終コラーゲン濃度を達成した。FITC−デキストランを有するマトリックスを製剤化するために、類似した重合プロセスを適用し、FITC−デキストラン(10kDa、40kDa、500kDa、または2MDa Invitrogen、Eugene、OR)を10×PBSにプレ溶解して(predissolve)、重合マトリックス内で0.5mg/mlの最終濃度を得た。多様なオリゴマー:モノマー比を有するマトリックスの調製は、0.5mg/ml FITC−デキストランとの3mg/mlでの各成分の中和、次いで、体積比を変動させて、重合前に0:100、25:75、50:50、75:25、および100:0を達成することを伴った。
中和されたコラーゲン溶液を、37℃まで加温することによる重合の誘導前に氷上で維持した。他の実験では、レオメータープレートの温度を10℃未満で5分間維持して、非重合マトリックスのベースライン貯蔵弾性率を得、次いで、37℃まで増加させた。コラーゲン溶液の増加した粘度のために、容積式ピペット(Microman、Gilson、Middleton、WI)を使用して、全てのコラーゲン溶液を正確にピペットで移した。FITC−デキストランの追加がコラーゲン重合動態およびマトリックス物性に対して効果を有さなかったことを確認するために、マトリックスをFITC−デキストラン(10KDaおよび2MDa、0.5mg/m1)の非存在および存在下で調製した。重合中の粘弾性性質(せん断貯蔵弾性率(G’)、せん断損失弾性率(G”)、および位相変位デルタ(/5))の時間依存性変化をステンレススチール40mm直径平行プレートを用いたAR2000レオメーター(TA Instruments、New Castle、DE)を使用して振動せん断において測定した。次いで、FITC−デキストランの存在および非存在下で調製されたマトリックスに関して重合動態および粘弾性性質を比較した。
放出動態の測定
0.5mg/mlの濃度で様々なサイズのFITC−デキストランを含有するコラーゲンマトリックス(3mg/ml)を48−ウェルプレート(250 J.lllwell)において重合させた。次いで、試料を、コラゲナーゼを含有しないまたは125U/ml細菌クロストリジウム・ヒストリチクム(Clostridium histolyticum)コラゲナーゼ(CLS4、Worthington Biomchemical Corporation、Lakewood、NJ)を含有する750μl PBS、pH7.4で覆った。プレートをFisher Scientific Clinical Rotator上で60rpmでのゆっくりとした回転に供した。各試料からの上清を特定の時間間隔で回収し、新鮮溶液と交換した。サンプリング間隔を、Siepmann et alによって与えられた拡散等式を使用してモデル化した、各分子サイズに関してシミュレートされた放出曲線に基づいて予測した。蛍光光度計(Molecular Devices Spectramax M5)を使用して、それぞれ、493および530nmの励起および放射波長で蛍光を測定した。このプロセスを、FITC−デキストラン放出の完了を示す、ウェルの上清からの相対蛍光単位がベースライン蛍光(FITC−デキストランを含有しないPBSプラス/マイナスコラゲナーゼ)と一致するまで繰り返した。
収集されたデータを使用して、%累積放出対分での時間をプロットした。2つのパラメーターを使用して、放出曲線−放出の速度および放出のT50%を定めた。放出の初速度をMicrosoft Excelでの線形トレンドラインの当てはめを使用して得られた、累積放出の25%に達するのに必要な経時的に分析された放出曲線の傾斜として定義した。累積放出の50%を得るために必要な時間として定義された放出のT50%を、Matlab(Mathworks)における放出曲線のパワー最適当てはめ(power best fit)から得た。
全ての統計的分析をMiniTabにおいて行った。コラゲナーゼとPBSとの間の比較を95%の信頼区間で2−試料スチューデントt検定で行った。薬物サイズとマトリックス組成との間の比較を95%信頼区間のANOVAおよび事後Tukey検定で行った。
本発明を図面および前述の説明において詳細に例証し、記載したが、これらはその本質において例示的であり、制限的ではないと考えられる。ある特定の実施形態のみが示され、記載されていること、ならびに本発明の精神内にある全ての変更および変更形態が保護されることが望ましいことが理解される。

Claims (25)

  1. 可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む不溶性合成コラーゲン原線維マトリックス;および
    前記コラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたは前記コラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第1の活性薬剤
    を含むコラーゲンに基づく治療送達デバイスであって、
    前記コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、治療送達デバイス。
  2. 前記コラーゲン原線維マトリックスが、I型コラーゲンを含む、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  3. 前記非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の他の型が、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の一方または両方を含む、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  4. 前記コラーゲンに基づく治療送達デバイスが、組織移植片である、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  5. 前記コラーゲンに基づく治療送達デバイスが、凍結乾燥されている、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  6. 前記コラーゲン原線維マトリックスが、非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含み、前記オリゴマーコラーゲンおよび非オリゴマー可溶性コラーゲン分子が、0:100から5:95、5:95から10:90、10:90から15:85、15:85から20:80、20:80から25:75、25:75から50:50、50:50から75:25および75:25から100:0からなる群から選択される範囲内の比にある、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  7. 前記コラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたは前記コラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第2の活性薬剤をさらに含む、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  8. 前記第1および第2の活性薬剤のそれぞれが、増殖因子または薬物である、請求項7に記載の治療送達デバイス。
  9. 前記コラーゲン原線維マトリックスが、第1の密度を有する第1のポーションおよび第2の密度を有する第2のポーションを含み;前記第1の密度が、前記第2の密度とは異なっている、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  10. 前記コラーゲン原線維マトリックスが、前記第1の活性薬剤が内部に分散した第1のポーションおよび第2の活性薬剤が内部に分散した第2のポーションを含み、前記治療送達デバイスが、前記第1の活性薬剤に関して第1の放出プロファイルおよび前記第2の活性薬剤に関して第2の放出プロファイルを示し、前記第1の放出プロファイルが、前記第2の放出プロファイルとは異なっている、請求項1に記載の治療送達デバイス。
  11. 可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液を形成すること;
    前記ビルディングブロックの自己集合による重合を引き起こし、その結果、不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成すること;および
    前記水溶液中に活性薬剤の第2の量を含め、それによって前記引き起こすことが、前記活性薬剤が内部に分散した前記不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成すること、または前記不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを前記活性薬剤の前記第2の量と接触させて、前記活性薬剤が内部に分散したコラーゲン原線維マトリックスを形成すること
    を含む、治療送達デバイスを作製するための方法であって、
    前記ビルディングブロックの第1の量が、可溶性オリゴマーコラーゲン分子を含み;
    前記コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、方法。
  12. 前記ビルディングブロックの第1の量が、可溶性非オリゴマーコラーゲン分子をさらに含む、請求項11に記載の方法。
  13. 前記不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを圧縮して、凝縮された不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを形成することをさらに含む、請求項11に記載の方法。
  14. 前記圧縮することが、前記不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを拘束圧縮に供することを含む、請求項13に記載の方法。
  15. 前記引き起こすことの後に、前記不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを凍結乾燥することをさらに含む、請求項11に記載の方法。
  16. 可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液および前記水溶液中の活性薬剤の第2の量を含むプレマトリックス組成物であって、前記可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量が、可溶性オリゴマーコラーゲン、または非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つもしくは複数の他の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含み、前記ビルディングブロックが、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合して少なくとも5Paの堅さを有する巨大分子不溶性合成コラーゲン原線維マトリックスとなるように作動可能である、プレマトリックス組成物。
  17. 前記非オリゴマー可溶性コラーゲン分子の1つまたは複数の他の型が、可溶性テロコラーゲン分子および可溶性アテロコラーゲン分子の一方または両方を含む、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  18. 前記オリゴマーコラーゲンが、I型コラーゲンを含む、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  19. 前記活性薬剤が、増殖因子または薬物である、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  20. 前記活性薬剤が、前記ビルディングブロックの1つまたは複数に共有結合している、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  21. 0:100から5:95、5:95から10:90、10:90から15:85、15:85から20:80、20:80から25:75、25:75から50:50、50:50から75:25および75:25から100:0からなる群から選択される範囲内の比で前記オリゴマーコラーゲンおよび非オリゴマー可溶性コラーゲン分子を含む、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  22. 前記活性薬剤に関して最適化活性薬剤放出プロファイルを示す非可溶性合成コラーゲン原線維マトリックスを達成するために調節される能力がある、請求項16に記載のプレマトリックス組成物。
  23. 活性薬剤を送達するための方法であって、
    可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量を含む水溶液および前記水溶液中の活性薬剤の第2の量を含むプレマトリックス組成物であって、前記可溶性コラーゲン原線維ビルディングブロックの第1の量が、可溶性オリゴマーコラーゲン、または可溶性非オリゴマーコラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物を含み、前記ビルディングブロックが、外因的な架橋剤の非存在下で自己集合してin situで少なくとも5Paの堅さを有する不溶性合成巨大分子コラーゲン原線維マトリックスとなるように作動可能である、プレマトリックス組成物;あるいは
    可溶性オリゴマーコラーゲンの重合生成物または可溶性非オリゴマーコラーゲン分子の1つもしくは複数の型との可溶性オリゴマーコラーゲンの混合物の重合生成物を含む不溶性合成コラーゲン原線維マトリックス;および前記コラーゲン原線維マトリックス全体にわたってまたは前記コラーゲン原線維マトリックスの部分内に分散した第1の活性薬剤を含むコラーゲンに基づく治療送達デバイスであって、前記コラーゲン原線維マトリックスが、少なくとも5Paの堅さを示す、治療送達デバイス
    をin situ位置で配置することを含む方法。
  24. 前記プレマトリックス組成物が、注入によってin situで配置される、請求項23に記載の方法。
  25. 前記コラーゲンに基づく治療送達デバイスが、組織移植片である、請求項23に記載の方法。
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Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9878071B2 (en) 2013-10-16 2018-01-30 Purdue Research Foundation Collagen compositions and methods of use
US11919941B2 (en) 2015-04-21 2024-03-05 Purdue Research Foundation Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same
WO2018200750A1 (en) 2017-04-25 2018-11-01 Purdue Research Foundation 3-dimensional (3d) tissue-engineered muscle for tissue restoration
WO2019023266A1 (en) * 2017-07-25 2019-01-31 Purdue Research Foundation ENCAPSULATION OF COLLAGEN OF CELLS PRODUCING INSULIN
CN110398514B (zh) * 2018-04-24 2023-04-28 恒天纤维集团有限公司 一种快速判断纤维素胶液中金属杂质含量的方法
WO2020140111A1 (en) * 2018-12-28 2020-07-02 Excel Med, Llc Biological scaffold and method for fabricating the same
GB201917246D0 (en) 2019-11-27 2020-01-08 Royal College Surgeons Ireland A collagen scaffold
EP4096635A4 (en) * 2020-01-27 2024-02-21 Geniphys Inc BIOLOGICAL FILLER FOR TISSUE RESTORATION AND REGENERATION

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08336583A (ja) * 1995-06-07 1996-12-24 Collagn Corp 硬組織の修復および増強用の成形可能なコラーゲン組成物
JP2006131648A (ja) * 1994-02-09 2006-05-25 Angiotech Biomaterials Corp コラーゲンベースの注入可能な薬剤送達製剤およびその使用
JP2009544400A (ja) * 2006-07-27 2009-12-17 コルバー・ライフサイエンス・リミテツド 骨再生及び増大を促進するための複合埋植物ならびにそれらの製造及び使用方法。
WO2012004564A1 (en) * 2010-07-07 2012-01-12 Ucl Business Plc Plastic compaction of a collagen gel
US20120027732A1 (en) * 2010-07-27 2012-02-02 Voytik-Harbin Sherry L Thermoreversible collagen
US20140193473A1 (en) * 2011-06-02 2014-07-10 Indiana University Research And Technology Corp. Materials and methods for controlling vasculogenesis from endothelial colony forming cells

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070269476A1 (en) * 2006-05-16 2007-11-22 Voytik-Harbin Sherry L Engineered extracellular matrices control stem cell behavior
WO2007136634A1 (en) * 2006-05-16 2007-11-29 Purdue Research Foundation Three dimensional purified collagen matrices
GB2455041B (en) * 2006-09-21 2012-03-07 Purdue Research Foundation Collagen preparation and method of isolation
GB2468102B (en) * 2007-12-10 2012-12-05 Purdue Research Foundation Collagen-based matrices with stem cells
US20100119578A1 (en) * 2008-11-07 2010-05-13 Specialized Vascular Technologies, Inc. Extracellular matrix modulating coatings for medical devices
US8652500B2 (en) * 2009-07-22 2014-02-18 Acell, Inc. Particulate tissue graft with components of differing density and methods of making and using the same
FR2975922B1 (fr) 2011-06-06 2013-05-31 Arkema France Reacteur a plaques avec injection in situ
EP2951193A4 (en) * 2013-02-01 2017-03-01 Children's Medical Center Corporation Collagen scaffolds

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006131648A (ja) * 1994-02-09 2006-05-25 Angiotech Biomaterials Corp コラーゲンベースの注入可能な薬剤送達製剤およびその使用
JPH08336583A (ja) * 1995-06-07 1996-12-24 Collagn Corp 硬組織の修復および増強用の成形可能なコラーゲン組成物
JP2009544400A (ja) * 2006-07-27 2009-12-17 コルバー・ライフサイエンス・リミテツド 骨再生及び増大を促進するための複合埋植物ならびにそれらの製造及び使用方法。
WO2012004564A1 (en) * 2010-07-07 2012-01-12 Ucl Business Plc Plastic compaction of a collagen gel
US20120027732A1 (en) * 2010-07-27 2012-02-02 Voytik-Harbin Sherry L Thermoreversible collagen
US20140193473A1 (en) * 2011-06-02 2014-07-10 Indiana University Research And Technology Corp. Materials and methods for controlling vasculogenesis from endothelial colony forming cells

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MICROSC. MICROANAL., vol. Vol.19(5), JPN6019019085, 2013, pages 1323 - 1333, ISSN: 0004256025 *

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