JP2016040245A

JP2016040245A - ヒト化Ｎｏｔｃｈ融合タンパク質の組成物および治療方法

Info

Publication number: JP2016040245A
Application number: JP2015157312A
Authority: JP
Inventors: ジャン・キタジュースキー; Kitajewski Jan; キャリー・ショーバー; Shawber Carrie
Original assignee: Columbia University in the City of New York
Current assignee: Columbia University in the City of New York
Priority date: 2007-08-23
Filing date: 2015-08-07
Publication date: 2016-03-24
Also published as: RU2532830C2; US9127085B2; SG183763A1; US20110008342A1; CN101883786A; NZ618129A; BRPI0815291A2; KR20100076947A; CA2697262A1; AU2008289462A1; JP2010536855A; IL220723A0; EP2193143A2; US20160115217A1; ZA201001427B; NZ583649A; IL204111A; EP2193143B1; WO2009025867A3; EP2193143A4

Abstract

【課題】脈管形成を阻害することのできる治療剤および当該治療剤を用いた腫瘍等の治療方法の提供。【解決手段】Ｎｏｔｃｈ１受容体の細胞外ドメインであるＥＧＦ様反復配列がリンカーを介して抗体Ｆｃ部分と結合している融合蛋白からなる治療剤。上記融合蛋白をＮｏｔｃｈシグナリングにおけるデコイとして作用させることによる腫瘍等の治療方法。【効果】上記融合蛋白は脈管形成を阻害し，卵巣癌等の腫瘍，糖尿病等の代謝疾患，および黄斑変性網膜症等の血管増殖性網膜症等に有効。【選択図】なし

Description

発明の分野

本出願は、２００７年８月２３日に出願された米国仮出願番号60/966,052の優先権を主張するものであり、その内容は引用によりここに組み込まれる。

ここに開示される本発明は、米国保険研究所（National Institutes of Health）からの助成番号R01HL62454号、並びに国防総省からの助成番号DAMRDCW81XWH-04-1-054および助成番号DAMD17-03-1-0218号の米国政府の支援によりなされた。従って、合衆国政府は本発明において一定の権利を有する。

この出願を通して、種々の出版物がカッコ内にアラビア数字により、またはカッコ内に著者および出版データにより引用される。これらの出版物についての全引用は、本明細書の最後に見出すことが可能である。これらの出版物の開示は、これによって引用により本出願に組み込まれ、本発明の属する技術分野をより十分に記載する。

［発明の背景］
脈管の成長
胎芽発生の期間において、脈管系の形成は早期の必須の工程である。胎芽において、脈管の成長は近軸および垂直プレート中胚葉に由来する多能性の血管芽細胞で開始する。当該血管芽細胞（hemangioblast）は、血液前駆体（hematopoietic progenitor）または内皮細胞前駆体の何れにも分化する可能性を有し、血管芽細胞（angioblast）として知られる。

血管の発達は、脈管形性として知られる工程で開始し、それにより血管芽細胞が内皮細胞に分化し、遊走し、それと共に初期の血管網状組織を形成する。この初期の血管ネットワークは、同種の大きさであり、且つ全て内皮細胞で作られている脈管からなる。血管網状組織が、次に、脈管形性を経て再構築される。

脈管形性は新しい血管の発芽、これらの血管の無血管領域への遊走、および付属細胞、周細胞および平滑筋細胞の補充を含む（Gale and Yancopoulos, 1999）。分化し、収縮性のある血管壁を形成する平滑筋細胞は、神経稜細胞（neural crest cells）、間充織細胞（mesenchymal cells）および更に内皮細胞までも含む多数の前駆体から生じる（Owens, 1995）。成人においては、脈管形性は、濾胞性の発達、創傷治癒、並びに腫瘍脈管形性および心疾患などの病理学的過程を必要とする。

NotchファミリーおよびNotchリガンド
ショウジョウバエ（Drosophila）、C.エレガンス（C. Elegans）、ゼブラフィッシュ（zebrafish）および哺乳類の研究は、Notch経路が、多数の細胞運命の決定を調節するために機能する進化的に保存されたシグナリング機構であることを示している。Notchシグナリングは、３つの胚層全てから生ずる細胞の適切なパターニングのために必要とされる。細胞の状況に依存して、Notchシグナリングは、分化を阻害も誘導もし、増殖を誘導し、および細胞生存を促進することが可能である(Artavanis-Tsakonas et al., 1995; Lewis, 1998; Weinmaster, 1997)。ショウジョウバエにおいて、単一のNotchタンパク質が２つのリガンド、セレイト（Serrate）とデルタにより活性化される。哺乳類において、これらのファミリーは４つのNotch遺伝子（Notch1、Notch2、Notch3およびNotch4）と５つのリガンド、２つのセレイト様（Jagged1-2）と３つのデルタ（Dl1、3、4）にまで広がっている(Bettenhausen et al., 1995; Dunwoodie et al., 1997; Gallahan and Callahan, 1997; Lardelli et al., 1994; Lindsell et al., 1995; Shawber et al., 1996a; Shutter et al., 2000a; Uyttendaele et al., 1996; Weinmaster et al., 1992; Weinmaster et al., 1991)。胚発生の間中、Notchレセプターおよびリガンドは、動的な空間的且つ時間的パターンで発現される。しかしながら、全てのリガンドが全てのレセプターを活性化するのかどうかは不明である。

Notchシグナリングと機能
Notchシグナリングは、多くの異なる種類の細胞運命の決定に、環境的な状況に依存する阻害性、誘導性または増殖性のシグナルを供給することによって影響している（以下に総説されている：Artavanis-Tsakonas et al., 1995; Greenwald, 1998; Robey, 1997; Vervoort et al., 1997)。この多面的な機能は、Notchが空間時間的な方法において複数のシグナル経路を調節することを示唆する。

Notchが調節する細胞運命の決定と一致して、当該レセプターとリガンドの両方が、単一の膜貫通ドメインを有する細胞表面タンパク質である（図１）。Notchタンパク質の調節性の細胞外ドメインは、大部分は、リガンド結合のために必要とされる直列に配列したEGF様反復からなる(Artavanis-Tsakonas et al., 1995; Weinmaster, 1998)。EGF様反復までのC末端は、更なる３つのシステインリッチ反復であり、LIN12/Notch反復（LIN12/Notch repeats；(LNR)）と称される(Greenwald, 1994)。LNRの下流に、フーリン様転換酵素（furin-like convertase）により認識されるタンパク分解性の切断配列（RXRR）が位置する。Notch1については、この部位での切断により180キロダルトンの細胞外ペプチドと120キロダルトンの細胞内ペプチドが得られ、これらは共に保持されて細胞表面でヘテロダイマーレセプターを生じる(Blaumueller et al., 1997; Kopan et al., 1996; Logeat et al., 1998).
Notchの細胞内ドメイン(NotchICD、図１)は、この形態のNotchが構成的に信号を出すことを示す機能喪失のNotchの表現型を救う(Fortini and Artavanis-Tsakonas, 1993; Lyman and Young, 1993; Rebay et al., 1993; Struhl et al., 1993)。

Notchの細胞質ドメインは３つの同定可能なドメインを含む：RAMドメインおよびアンキリン反復ドメインおよびC末端PESTドメイン（図１）。リガンド活性化において、Notchは２つの更なるタンパク分解性の切断を受け、その結果、細胞質ドメインの放出が起こる(Weinmaster, 1998)。このNotchペプチドは核に転位置し、CSL(CBF, Su (H), Lag-2)として知られる転写性のリプレッサーと相互作用し、それを転写性のアクチベーターに変える。CSL/Notch相互作用は、NotchのRAMドメインの存在に依存し；一方では、転写性の活性は、アンキリン反復の存在を必要とする(Hsieh et al., 1996; Hsieh et al., 1997; Roehl et al., 1996; Tamura et al., 1995; Wettstein et al., 1997)。インビボおよびインビトロ研究の両方が、HESおよびHey遺伝子がNotch/CSL依存性シグナリングの直接のターゲットであることを示す(Bailey and Posakony, 1995; Eastman et al., 1997; Henderson et al., 2001; Jarriault et al., 1995; Nakagawa et al., 2000; Wettstein et al., 1997)。HESおよびHey遺伝子は、bHLH転写性リプレッサーであり、N-boxでDNAを結合する (Nakagawa et al., 2000; Sasai et al., 1992; Tietze et al., 1992)。Notchはまた、CSL非依存性の経路によりシグナリングすることも提唱されている。実際に、まさにアンキリン反復ドメインの発現はNotchシグナリングの幾つかの形態のために必要十分である(Lieber et al., 1993; Matsuno et al., 1997; Shawber et al., 1996b)。

最終的に、PESTドメインは、SEl-10/ユビキチン依存性経路によるタンパク質ターンオーバーに関連している(Greenwald, 1994; Oberg et al., 2001; Rogers et al., 1986; Wu et al., 1998; Wu et al., 2001)。当該レセプターと同様に、Notchリガンドの細胞外ドメインもまた、直列に配列されるEGF様反復の大部分からなる（図１）。これらの反復の上流は、当該レセプターのリガンド結合と活性化のために必要とされるDSL(Delta, Serrate, Lag-2)として知られる異なるEGF様反復である(Artavanis-Tsakonas et al., 1995)。

［Notchシグナリングおよび血管発生］
血管形成および脈管形成を誘導するために機能する多くの遺伝子が同定されているが、殆どが、血管発生の間にどのように細胞運命決定が特定化されるのかについては知られていない。多くの観察が、Notchシグナリング経路が細胞運命決定と血管系のパターニングにおいて役割を担い得ることを示唆する。

Notch1、Notch4、Jagged1およびDl14は、全て発達中の血管において発現され、一方でNotch３は補助的の平滑筋細胞において発現される(Krebs et al., 2000; Shutter et al., 2000b; Uyttendaele et al., 1996; Villa et al., 2001; Xue et al., 1999)。Jaggel1欠損マウスは、胚芽致死性であり、幾つかの血管性の欠陥を有する(Xue et al., 1999)。Notch1のヌル接合体マウスは、胚芽致死性であり、幾つかの神経細胞の欠陥で死に至るが、脈管形成における欠陥をも有する(Krebs et al., 2000; Swiatek et al., 1994)。Notch4欠損マウスは出産され、正常であるように見えるが、Notch1およびNotch4の両方を欠損した胎芽は、幾つかの出血毒素性および血管パターニング性の欠陥でE9.5で死に至り、これはNotch1およびNotch4が、血管発生の間において機能的に重複性であり得ることを示す (Krebs et al., 2000)。内皮におけるNotch4の活性型の外因性発現もまた、二重のNotch1/Notch4ヌル接合体マウスについて見られるのと同様な血管の欠陥を引き起こし、Notchシグナリングの適切なレベルが、胎芽血管構造の適切な発生のために重要な意味を有することを示唆している(Uyttendaele et al., 2001)。

纏めると、Notch/Notchシグナル成分のためのマウス変異体からのデータは、血管リモデリング、動脈静脈特異化、血管平滑筋細胞補充および心臓/心流出血管発生を含むNotch依存性の幾つかの過程を明らかにする。

最近の実験が、動脈/静脈の内皮細胞特異化にNotchシグナリングを結び付けている。E13.5胎芽（embryos）のインサイチュー分析は、Notch1、Notch3、Notch4、Dl4、Jagged1およびJagged2発現が動脈に限定され、静脈では欠けていることを明らかにした(Villa et al., 2001)。発現データと一致して、ゼブラフィッシュにおけるNotchシグナリングの破損が、動脈性マーカーのエフリンB2（ephrinB2）の減少と付随し、一方では、Notchの活性型の異所性の発現が背動脈範囲内の静脈性細胞マーカーEphB4の減少を導く(Lawson et al., 2001)。これらのデータは、Notchシグナリングが脈管形成の間の動脈性および静脈性の細胞運命の特定化することを助け得ることを示唆する。

纏めると、Notch/Notchシグナル成分のためのマウス変異体からのデータが、血管リモデリング、動脈静脈特異化、血管平滑筋細胞補充および心臓/心流出血管発生を含むNotch依存性の幾つかの過程を明らかにする。

NOTCHシグナリングはまた、成人血管系において機能することも示唆されている。ヒトにおいて、NOTCH3の細胞外ドメインにおけるミスセンス突然変異は退行性の血管性疾患、CADASILの発生に関連する(CARONTI ET AL., 1998; DESMOND ET AL., 1998; JOUTEL ET AL., 2000; JOUTEL ET AL., 1996)。創傷治癒モデルにおいて、Jagged1発現の増加が、再生化している内皮性の創傷縁で観察され、Notchシグナリングが成人の脈管形成の過程において機能している可能性が示唆されている(LINDNER ET AL., 2001)。纏めると、これらのデータは、血管発生；血管形成、血管パターニング/脈管形成、および動脈/静脈特定化の間の重要な意味を持つ多くの工程でのNotchシグナリング機能を支持する。しかしながら、Notchシグナリング経路がこれらの異なる工程に影響するための分子的な機序は更に明らかにされるべきである。

［重要性］
シミズら（J. Biol. Chem. 274(46): 32961-32969 (1999)）は、結合試験におけるNotch1ECD/Fc、Notch2ECD/FcおよびNotch3ECD/Fcの使用を記載する。しかしながら、シミズらは、脈管形成を阻害するためのそれらのタンパク質の使用には言及していない。

キタジュースキーら（Kitajewski et al）に対する2002年4月30日発行の米国特許第6,379,925号は、マウスのNotch4を記述する。しかしながら、それは、問題となる当該出願において明らかにされるNotchに基づく融合タンパク質を記載するものではない。

Notchタンパク質は、脈管構造、造血系および神経系を含む発生上の決定において重要な役割を果たしている。そのために、それらの機能の理解は、細胞運命決定および傾倒が発生期間および成人組織においてどのように制御されているのかを理解するための鍵である。今日までに、NotchまたはNotchリガンド遺伝子の破損についての幾つかの報告は、この経路が血管の発生を導く機構の基礎的な部分であることを強調する血管の表現系を記載している。異常なNotch活性は、癌および血管性疾患（CADASIL）の両方を含むヒトの病理に関連付けられてきた。腫瘍脈管形成におけるNotchの分析は最近になって始まったものであるが、我々のNotchの潜在的な下流のターゲットの発見は、脈管形成に関連する病理学的な過程における役割を示唆する。例えば、VEGFR-3は腫瘍脈管形成および腫瘍リンパ管形成の両方に関連している。幾つかの他の潜在的なNotchターゲットの発現または機能も腫瘍脈管形成に関連している：それらはエフリンB2（ephrinB2）、Id3、アンジオポイエチン1（Angiopoietin 1）およびPDGF-Bを含む。Notch遺伝子機能におけるこれらのターゲットの役割についての洞察は、ヒトの病理学の将来の分析を明らかに促進するであろう。

本発明は、シグナルペプチド、ヒトNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインおよびそれに対して結合する抗体のFc部分を有する融合タンパク質を提供する。

本発明は、腫瘍を有する対象を治療するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与し、それにより腫瘍を有する当該対象を治療することを含む腫瘍を有する対象を治療する方法を提供する。

本発明は、対象における脈管形成を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与し、それにより当該対象において脈管形成を阻害することを含む対象における脈管形成を阻害する方法を提供する。

本発明は、対象を治療するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与し、それにより卵巣癌を有する当該対象を治療することを含む卵巣癌を有する対象を治療する方法を提供する。

本発明は、対象を治療するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与し、それにより代謝性疾患を有する当該対象を治療することを含む代謝性疾患を有する対象を治療する方法を提供する。

本発明は、腫瘍を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、対象における脈管形成を阻害するための薬学的組成物を製造するための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、卵巣癌を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、代謝性疾患を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、対象における生理的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における生理学的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害する方法を提供する。

本発明は、対象における腫瘍転移を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍転移を阻害する方法を提供する。

本発明は、対象における二次的腫瘍の増殖を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における二次的腫瘍の増殖を阻害する方法を提供する。

本発明は、対象における腫瘍による血管取り込み（blood vessel cooption）を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍による血管取り込みを阻害する方法を提供する。

本発明は、対象における癌を治療するために各々有効な量の上記融合タンパク質と血管内皮成長因子（VEGF）、VEGF-A、P1EF、FEGF-B、VEGF-CまたはVEGF-Dの阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法を提供する。

本発明は、対象における癌を治療するために各々有効な量の上記融合タンパク質とVEGFレセプターアンタゴニスト、VEGFR-1アンタゴニスト、VEGFR-2アンタゴニストまたはVEGFR-3アンタゴニストとを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法を提供する。

本発明は、対象における癌を治療するために各々有効な量の上記融合タンパク質と血小板由来成長因子（PDGF）、PDGF-AまたはPDGF-Bの阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法を提供する。

本発明は、対象における癌を治療するために各々有効な量の上記融合タンパク質とPDGFレセプターアンタゴニストとを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法を提供する。

本発明は、対象における癌を治療するために各々有効な量の上記融合タンパク質とHER2/neuの阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法を提供する。

本発明は、血管性の増殖性網膜症の治療に有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む血管性の増殖性網膜症の治療方法を提供する。

この図は、NotchおよびNotchリガンド：Notch1、Notch2、Notch3、Notch4、Jagged-1、Jagged-2、Delta様1、Delta様3、Delta様4：の模式的な構造を示す。この図は、Notchに基づく融合タンパク質（NotchECD/Fc）の模式的な設計を示す。EGF反復を含むNotch1、Notch2、Notch3またはNotch4の細胞外ドメインは抗体のFc部分に対して融合されている。この図は、Notchに基づく融合タンパク質の活性を試験するための共培養アッセイを示す。NotchおよびNotch応答性転写性レポーターは、「Notch応答性」細胞、HeLaにおいて発現される。Notchリガンド、Jagged-1、Delta様1またはDelta様4は、「リガンド提示」細胞、293において発現される。発現は個々の細胞集合体のトランスフェクションにより媒介され、細胞は共培養され、次にNotch依存性レポーター活性について試験される。この図は、NotchとNotchリガンドとの間の相互作用によるNotchシグナリングの活性化に対するNotchに基づく融合タンパク質の阻害活性を示す。Notchシグナリングの誘導は、Notch1発現細胞および3種類のNotchリガンド発現細胞の両者の共培養により検出され、これらの誘導はNotchに基づく融合タンパク質発現ベクターのNotch1発現細胞への共トランスフェクションにより阻害された。そのため、Notchに基づく融合タンパク質は、NotchとNotchリガンドとの間の相互作用の阻害に基づくNotch阻害剤として使用可能である。この図は、293におけるNotch1に基づく融合タンパク質（Notch1ECD/Fc）の発現を示す。パネルA:細胞溶解物における発現(lys)または培地に分泌された発現(sup)。パネルB:293溶解物におけるNECD/Fcの発現の一覧。この図は、アデノウイルスコーディングVEGF-165に感染させたHUVECにおけるNotchシグナリングの活性化を示す。Notchシグナリングの活性化は、CBF1プロモーター活性を使用して検出される。CBF1プロモーターの転写性活性は、Notch-ICのCBF1への結合により活性化される。我々は、異なるMOIでアデノウイルスコーディングVEGF-165に感染させたHUVECにおけるCBF1プロモーター活性を測定した。CBF1プロモーターの誘導は、MOI依存的な様式でのAd-LacZ感染細胞に比較して、Ad-VEGF感染HUVECにおいて明瞭に検出された。このデータは、VEGFの過剰発現がHUVECにおけるNotchシグナリングを活性化できることを示した。この図は、NotchシグナリングのVEGF誘導性の活性化におけるNotchに基づく融合タンパク質の効果を示す。Ad-Notchに基づく融合タンパク質のAd-VEGFとの重感染は、Ad-VEGF感染単独により誘導されるCBF1プロモーター活性の活性化を明らかに減少した。パネルAにおいて、各アデノウイルスについて40MOIでの感染の場合、レポーター遺伝子のトランスフェクション後の24時間での60％の阻害と48時間での90％の阻害が検出された。このNotchトラップの阻害活性は、Ad-Notchに基づく融合タンパク質のMOIに依存した。この図は、HUVECで過剰発現されたVEGF-165による発芽の誘導におけるNotchに基づく融合タンパク質の効果を我々が評価した実験を示す。Ad-VEGF感染HUVECをタイプコラーゲンゲル上で８日間培養した場合、発芽はコラーゲンゲルの中へ誘導された。過剰発現されたVEGFによる発芽のこの誘導は、アデノウイルスコーディングNotchに基づく融合タンパク質の重感染により明瞭に阻害された。Ad-Notchに基づく融合タンパク質それ自身は、形態学上の影響は少なかった。この図は、顕微鏡下で視野当たりの芽をカウントした結果を示す。HUVECへのAd-VEGF感染は使用されたMOIに依存して芽の数を増加した。Notchに基づく融合タンパク質の半分のMOIが使用された場合でさえも、Ad-VEGFに比較して、Ad-VEGF誘導性の発芽は明瞭に阻害された。これらのデータは、VEGFがHUVECの発芽をNotchシグナリングの活性化を介して誘導し、Notchに基づく融合タンパク質がVEGF誘導性発芽を阻害できたことを示唆した。この図は、ラットNotch1タンパク質の細胞外ドメイン（配列番号１）とリンカー配列（配列番号２）のアミノ酸配列を示す。この図は、ラットNotch2タンパク質の細胞外ドメイン（配列番号３）とリンカー配列（配列番号２）のアミノ酸配列を示す。この図は、マウスNotch3タンパク質の細胞外ドメイン（配列番号４）のアミノ酸配列を示す。この図は、マウスNotch4タンパク質の細胞外ドメイン（配列番号５）とリンカー配列（配列番号２）のアミノ酸配列を示す。この図は、ラットNotch1遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号６）を示す。この図は、ラットNotch1遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号６）を示す。この図は、ラットNotch2遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号７）を示す。この図は、ラットNotch2遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号７）を示す。この図は、マウスNotch3遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号８）を示す。この図は、マウスNotch3遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号８）を示す。この図は、マウスNotch4遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号９）、並びにリンカー配列の核酸配列（配列番号１０）およびアミノ酸配列（配列番号２）を示す。この図は、マウスNotch4遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号９）、並びにリンカー配列の核酸配列（配列番号１０）およびアミノ酸配列（配列番号２）を示す。この図は、ヒトNotch1遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１１）を示す。この図は、ヒトNotch1遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１１）を示す。この図は、ヒトNotch2遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１２）を示す。この図は、ヒトNotch2遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１２）を示す。この図は、ヒトNotch3遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１３）を示す。この図は、ヒトNotch3遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１３）を示す。この図は、ヒトNotch4遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１４）を示す。この図は、ヒトNotch4遺伝子の細胞外ドメインの核酸配列（配列番号１４）を示す。図22A - 22I これらの図は、VEGFがNotchシグナリングを活性化してHUVECの発芽を誘導することを示す。HUVECは、40MOI（図２２Ａ、２２Ｈ、２２Ｉ）または２０MOIでAd-VEGFを形質導入された。Ad-LacZをHUVECに対して同時形質導入して、同様の総量のアデノウイルス60MOI（図２２Ｇ）、80MOI（図２２Ａ）および100MOI（図２２Ｈ、２２Ｉ）ととした。図２２ＡはNotchおよびNotchリガンド発現のRT-PCR分析を示す。番号はPCRサイクルを示す。図２２Ｂは、CSLレポーター活性における形質導入VEGFの効果を示す。図２２Ｃは、Ad-VEGFを形質導入されたCSLレポーター活性におけるSU5416の効果を示す。図２２ＤはNotchデコイ（N1ECDFc）の構成物を示す。図２２ＥはAd-N1ECDFcを形質導入されたHUVECからのN1ECDFcの分泌を示す。図２２Ｆは共培養アッセイでのリガンド誘導性CSLレポーター活性に対するN1ECDFcの効果を示す（白四角：（-）；黒四角：0.33 ng pHyTC-N1ECDFc; 黒四角：0.67 ng pHyTC-N1ECDFc）。図２２Ｇ−Ｉは、Ad-VEGF形質導入HUVECに対するN1ECDFcの効果を示す。Notchシグナリングは、表示された用量でのAd-N1ECDFcの共伝達の存在または不在におけるHUVECへのAd-VEGFの形質導入により活性化された。図２２Ｇは、Ad-VEGFによりトランス活性化されたCSLレポーター活性におけるN1ECDFcの効果を示す。図２２Ｈは、40MOIのAd-N1ECDFcの同時形質導入によるAd-VEGF形質導入HUVECの発芽の阻害を示す。図２２ＩはAd-VEGF形質導入HUVECの発芽におけるN1ECDFcの効果の定量化を示す（白四角：芽；黒四角：細胞数）。記載なし。記載なし。図23A - 23J これらの図は、NotchシグナリングがFlt1発現を上方制御してHUVECの発芽を誘導することを示す。HUVECは、40MOIでのAd-LacZまたはAd-NlICの何れかを形質導入された。図２３Ａ−２３ＣはNotch誘導性HUVEC発芽におけるレセプターチロシンキナーゼの阻害剤の効果を示す。図２３Ａは、PD166866、ZD1893の1μMおよびSU5416の0.5μMで処理されたAd-N1IC形質導入HUVECの発芽の写真である。図２３Ｂは、1μMの阻害剤の効果の定量化を示す（白四角：芽；黒四角：細胞数）。図２３cはSU5416の効果の用量依存性を示す（白四角：芽；黒四角：細胞数）。図２３Ｄ−ＥはAd-N1IC形質導入HUVECにおけるFlt-1発現の誘導を示す。図２３ＤはRlt-1mRNA発現のRT-PCR分析を示す。図２３ＥはFlt-1タンパク質発現のW.B.分析を示す。図２３Ｆ−ＧはNotch誘導性HUVEC発芽のPlGF刺激による促進を示す。Ad-N1IC形質導入HUVECは、完全培地の代わりに、50 ng/ml PlGFの不在または存在においてSFMと共にコラーゲンゲル上で培養された。図２３Ｆは、Ad-N1IC形質導入HUVECのPLGF誘導性の発芽を示す（矢印（arrow head）：単一の糸状仮足を伴う芽；矢（arrow）：複数の糸状仮足を伴う芽）。図２３ＧはAd-N1IC形質導入HUVECの発芽におけるPlGFの効果の定量化を示す（白四角：複数の；黒四角：全体の）。図２３Ｈ−ＩはFlt1発現におけるFlt-1 siRNAトランスフェクションの効果を示す。Ad-N1IC形質導入HUVECは、コントロール（CT）またはFlt-1 siRNAの何れかの200pmolでトランスフェクションされた。図２３Ｈは、Flt-1mRNA発現の減少を示す。図２３ＩはFlt-1タンパク質発現の減少を示す。図２３ＪはNotch誘導性HUVECの発芽におけるflt-1 siRNAトランスフェクションの効果を示す。Ad-N1IC形質導入HUVECは、100または200pmolの何れかのsiRNAをトランスフェクションされ、コラーゲンゲル上で２日間培養された。記載なし。記載なし。これらの図は、VEGFがNotchシグナリングを介したMMP-9およびMT1-MMPの両方の上方制御によるゼラチナーゼ活性を制御することを示す。図２４Ａ−Ｂは、HUVECにおいてVEGFにより刺激されたMMP-9およびMMP-2活性のゼラチン酵素電気泳動分析を示す。図２４Ａは、MM-P-9活性におけるN1ECDFcの効果を示す。形質導入HUVECを記載された日数で（即ち、D2、D4、D6、D8）フィブリンゲル上で培養した。同様な結果が、コラーゲンゲルを用いることにより得られたが、MMP-9の誘導は、コラーゲンゲルよりもフィブリンゲルにおいてより強いものであった（データには示さず）。図２４Ｂは、MMP-2活性におけるN1ECDFcの効果を示す。HUVECを記載された用量でAd-N1ECDFcを形質導入し、コラーゲンゲル上で培養したHUVECから4日目に培養上清を採取した。図２４Ｃ−Ｄは、NotchシグナリングでのMMP-9およびMT1-MMPの上方制御を示す。HUVECをAd-LacZまたはAd-N1ICの何れかで形質導入した。番号はPCRサイクルを示す。図２４Ｃは、MMP-9およびMMP-2の発現におけるNotchシグナリングの効果のRT-PCR分析を示す。図２４ＤはNotchシグナリングを伴う転写物およびタンパク質の両方のNT1-MMP発現の誘導を示す。図２４Ｅは、Ad-N1ECDFcの同時形質導入を伴うAd-VEGF-HUVECにおけるMMP-9およびMT1-MMP発現のRT-PCR分析を示す。HUVECは、各々40MOIで、Ad-N1ECDFcの同時形質導入の不在または存在においてAd-VEGFで形質導入された。Ad-LacZが同時形質導入されて、80MOIの同様な総量のアデノウイルスとした。図25A - 25D これらの図は、VEGF依存性インビボ脈管形成におけるNotchシグナリングの役割を示す。図２５Ａ−２５ＤはマウスDASアッセイにおけるVEGF誘導性脈管形成のN1ECDFcによる阻害を示す。代表的な写真を示す。図２５Ａは、293/VEGFトランスフェクションでの、対Notchデコイ（Notchに基づく融合タンパク質）N1ECDFcも発現している293/VEGFでの皮下の誘導性脈管形成を示す。図２５Ｂはコントロールにおける293/VEGF、対Notchデコイ（Notchに基づく融合タンパク質）-N1ECDFc発現293における293/VEGFにより誘導される血管新生の程度の定量化を示す。図２５ＣはAD-LacZ感染MDA-MB-231細胞、対Ad-N1ECDFc（Notchに基づく融合タンパク質）感染MDA-MB-231細胞での皮下誘導性脈管形成を示す。MDA-MB-231乳癌細胞はVEGFを産生する（データに示さず）。図２５Ｄは、Ad-LacZ感染MDA-MB-231細胞、対Ad-N1ECDFc（Notchに基づく融合タンパク質）感染MDA-MB-231細胞により誘導される血管新生の程度の定量化を示す。記載なし。これらの図は、Ad-VEGF165形質導入HUVECの増殖を示す。HUVECは記載された用量のAd-VEGF165で形質導入された。Ad-LacZも同時形質導入されて、細胞当たり40PfuのMOIで同様の総量のアデノウイルスとした。HUVECを1％FBSを補充したSFM中に懸濁し、次に、0.4mlの培地と共に1ウェル当たり1 x 10⁴細胞で24ウェルマルチウェルプレートに播種した。4日後、細胞数をCCK-8キットを用いて測定し、その結果を、細胞当たり40pfuのMOIでAd-GFPを形質導入したコントロール細胞の数に対して決定した細胞数の比で示した。図２６は、増殖における形質導入されたVEGFの効果を示す。図２６Ｂは、SU5416の阻害効果を示す。Ad-VEGF形質導入HUVECを記載された用量のSU5416で処理した。これらの図は、Ｉ型コラーゲンゲル上でのHUVECの発芽の誘導を示す。HUVECは、記載された用量でのAd-VEGF165またはAD-N1ICの何れかで形質導入された。Ad-LacZも同時形質導入されて、アデノウイルスの同様な総量を細胞当たり40pfuのMOIとした。形質導入HUVECは完全培地を用いてコラーゲンゲル上で培養された。発芽の量は、７日目に顕微鏡下で評価された。これらの図は、細胞増殖におけるNotchシグナリングの変化の影響を示す。細胞を記載されたアデノウイルスで形質導入した。Ad-GFPも同時形質導入して、アデノウイルスの同様な総量を細胞当たり60pfuのMOIとした。4日後、細胞数をCCK-8キットを使用して決定し、結果を、細胞当たり60pfuのMOIでのAd-GFPで形質導入されたコントロール細胞の数に対して決定された細胞数の比として示す。図２８Ａは、HUVECの増殖における形質導入されたN1ICおよびNotch融合タンパク質の影響を示す。形質導入HUVECを完全培地に懸濁し、次に１ウェル当たり1 x 10⁴ 細胞で２４ウェルマルチウェルプレートに0.4mlの記載された培地と共に播種した（白四角：Ad-N1IC；黒四角：Ad-N1ECDFc）。図２８Ｂは、HP1/VEGF形質移入体の増殖におけるNotch誘導タンパク質の効果を示す。形質導入されたKP1/VEGF形質移入体をRPMI1640に懸濁し、次に24ウェルマルチウェルプレートに１ウェル当たり2ｘ10⁴細胞で0.5mlの培地と共に播種した。この図は、AD-N1IC-形質導入HUVECにおけるPIGF発現の誘導のRT-PCR分析を示す。HUVECは、細胞当たり40pfuのMOIでのAd-LacZまたはAd-N1ICの何れかで感染させた。全RNAを、コラーゲンゲル上で５日間に亘り完全培地で培養された形質導入HUVECから単離した。これらの図は、Ad-N1IC-またはAd-VEGF-形質導入HUVECの何れかの発芽のFlk-1 siRNAトランスフェクションによる阻害を示す。図３０Ａは、Ad-VEGF-HUVECにおけるFlk-1mRNAおよびタンパク質の発現の200pmolのFlk-1 siRNAのトランスフェクションによる減少を示す。細胞当たり40pfuのMOIでのAd-VEGF-HUVECをコントロール（CT）またはFlk-1 siRNAの何れかの200pmolでトランスフェクトした。総RNAをトランスフェクションの48時間後に単離した。トランスフェクションの48時間に亘りSFMで血清を枯渇された細胞から収集した。図３０Ｂおよび３０Ｃは、VEGFまたはNotchの何れかの誘導性HUVEC発芽におけるFlk-1 siRNAトランスフェクションの阻害効果を示す。細胞当たり40 pfuのMOIでのVEGFまたはNotchの何れかの誘導性HUVECを記載された通りの200pmolのsiRNAでトランスフェクトし、５日間コラーゲンゲル上で培養した。図３０ＢはHUVEC発芽におけるFlk-1 siRNAトランスフェクションの効果を示す（白四角：Ad-VEGF；黒四角：Ad-N1IC）。図３０ＣはＦｌｋ-1 siRNAトランスフェクションの阻害効果の定量化を示す。これらの図は、Ad-N1IC-形質導入HUVECの発芽のマトリックスメタロプロテイン阻害剤GM6001の処理での阻害を示す。細胞当たり40pfuでのAd-LacZまたはAd-N1IC-HUVECの何れも、50μmでのGM6001の不在または存在において５日間コラーゲンゲル上で培養した。図３１Ａは、Notch誘導性HUVEC発芽におけるGM6001の効果を示す。図３１ＢはGM6001の阻害効果の定量化を示す。図 32A - 32D これらの図は、NotchデコイがNotchリガンドにより刺激されたNotchシグナリングの活性化を阻害することを示す。図３２Ａは、Notchデコイ（N1ECDFc）の概要と、培養上清中に分泌されたNotch1デコイを検出するためのウェスタンブロットを示す。Notch1デコイをコードするアデノウイルス（Ad-N1ECDFc）を記載された通りのm.o.i.で形質導入されたHUVEC。図３２Ｂは、Notch1デコイが共培養シグナリングアッセイにおいてリガンド誘導性CSLレポーター活性を阻害することを示す。Notchシグナリングの活性化は、Notchリガンドを発現する293細胞と共培養されたNotch1を発現するHeLa細胞において測定した。データは、平均値±SDとして示す。図３２Ｃは、Notch4の異所性発現がフィブリンゲル上で培養されたHUVECの形態形成を誘導することを示す。HUVECは、30m.o.i.でNotch4をコードするアデノウイルス（Ad-Notch4）と、感染細胞を標識するための10m.o.iのAd-GFPで形質導入した。2日後、HUVECを安定なHUVECトランスフェクタントとフィブリンゲル上で共培養し、形態学的変化を蛍光顕微鏡を使用して記録した。Notch4は細胞伸展（cell extensions）を誘導し（上段左、白色矢印）、200nMの化合物Eの処理はNotch4誘導性進展を阻害した（上段右）。Notch1デコイ発現はNotch4誘導性細胞伸展を阻害した。アデノウイルス形質導入HUVECを、Fc（下段左）またはNotch1デコイ（下段右）の何れかを発現している安定したHUVECトランスフェクタントとフィブリンゲル上で共培養し、２日後に写真を撮った。線（Bar）＝200μm。図３２ＤはNotch4誘導性伸展におけるNotchシグナル阻害の効果の定量化を示す。発芽の減少は、化合物Eでの処理およびN1ECDFcの形質導入後に統計学的に有意であった(共にp<0.0001；データは平均値±SDで示す)。図33A - 33D これらの図は、FGF4がマウス乳癌Mm5MT細胞におけるNotchリガンドの発現を誘導することを示す。レトロウイルスの遺伝子移入により産生された安定したMm5MTトランスフェクタント。図３３Ａは、偽トランスフェクタント（Mm5MT-X）と比較しての、FGF4を発現するMm5MTトランスフェクタント（Mm5MT-FGF4）におけるJagged1およびDll1の誘導を示すNotchリガンドの発現のRT-PCR分析の定量化を示す。図３３Ｂは、Japped1タンパク質は、対Mm5MT-XでのMm5MT-FGF4において、ウェスタンブロットにより測定することにより評価された。図３３Ｃは、FGFレセプターキナーゼの阻害剤であるPD166866による、Mm5MT-FGF4細胞におけるNotchリガンド発現の減少を示す。図３３Ｄは、Mm5MTトランスフェクタントにおけるJapped1染色の免疫組織化学的分析を示す。線＝50μm。図34A - 34C これらの図は、Notch1デコイが、マウスにおけるMm5MT-FGF4腫瘍の脈管形成および皮下腫瘍増殖を阻害することを示す。図３４Ａは、マウスにおいて、Mm5MT-FGF4-XとMm5MT-FGF4-Fcの腫瘍体積が、Mm5MT-FGF4-N1ECDFcトランスフェクタントとは有意に異なることを示す（21日目、P=0.037およびP=0.008,Mm5MT-FGF4-XおよびMm5MT-FGF4-Fc、それぞれ対Mm5MT-FGF4-N1ECDFc; データは平均値±SDで示す）。図３４Ｂは、Mm5MT-FGF4トランスフェクタントの腫瘍内のCD31染色を用いた新生血管の免疫組織化学的分析を示す。上段パネル、線=100μm、下段パネル、線＝50μm。図３４Ｃは、定量分析が、Fcまたは偽トランフクト腫瘍と比較したときの、Mm5MT-FGF4-N1ECDFcトランスフェクタントにおけるCD31(+)新生血管の減少を示すことを示す(Mm5MT-FGF4-N1ECDFcに対して、Mm5MT-FGF4-XおよびMm5MT-FGF4-Fcについて共にP<0.001; データは平均値±SDで示す)。異種移植はインキュベーション（inoculation）の22日後に採取し、抗CD31抗体で染色した。図35A - 35D これらの図は、Notch1デコイ発現がヒトNGP異種移植における脈管形成を崩壊し、腫瘍生存度を障害することを示す。我々は以前、これらのヒト神経芽細胞種の異種移植が、成熟した階層的な脈管構造を有し、これはVEGF阻害に対して相対的に抵抗性であることを報告している(16)。Notchレセプター活性が、NGP脈管形成に寄与するのか否かを決定するために、我々は、NGP細胞を、Notch1デコイ構成物でトランスフェクトしたが、これは培養におけるそれらの増殖能には影響しなかった（データには示さず）。しかしながら、インビボでの腫瘍生存度における顕著な減少があり（図３５Ａ）（TUNEL=赤色蛍光、赤血球=緑色蛍光、線=100μm）、腫瘍細胞アポトーシスの有意な増加（図３５Ｂ、P=0.0002、NGP-LacZ腫瘍に対するNGP-N1ECDFcにおけるTUNEL-陽性細胞）と、腫瘍内出血（図３５Ｃ、p<0.0001、実質性赤血球シグナルの定量化）を伴った。加えて、NGP-N1ECDFc異種移植における腫瘍血管ネットワークは、NGP-LacZコントロールに比べて、物理的に崩壊しているように見え、（抗CD31およびαSMA抗体をそれぞれ使用する）ECおよびVMCのための免疫染色がこれらの血管細胞層の連続性の欠如を示していた（図３５Ｄ、線＝50μm）。個々の血管性細胞は、互いに剥離しているように見えた。纏めると、これらの結果は、Notch1デコイ発現が、ECおよびVMCの安定した脈管性導管（vascular conduits）を形成する能力を崩壊し、それにより血管崩壊、出血および腫瘍組織の虚血を引き起こすことを示唆する。この図は、Notch1デコイを発現するようにプログラムされたSKOV3腫瘍細胞が卵巣癌異種移植の増殖を阻害することを示す。この図は、FoxoおよびNotchによる筋芽細胞分化の調節を示す。C2C12細胞を抗ミオシン抗体（緑色）およびDAPI（青色）で免疫染色した。パネルの記載についてのテキストを参照されたい。各実験は６回または６回以上繰り返した。図38A-38C これらの図は、C2C12分化の定量的な分析を示す。図３８ＡはC2C12細胞におけるミオシン発現のウェスタンブロット分析を示す。図３８Ｂはミオシン陽性細胞の形態計測分析を示す。分化実験からの結果は、全てのDAPI陽性細胞に対するパーセンテージとしてミオシン免疫染色細胞の数をスコアリングすることにより分析した。図３８Ｃは、DBD-Foxo1ADAレポーター遺伝子アッセイを示す。我々は、Foxo1-ADAまたはDBD-Foxo1ADAを共トランスフェクトされた細胞における正準のFoxo1応答Igfbp1プロモーター（左のパネル）とHes1プロモーター（右のパネル）を使用する遺伝子アッセイを行った。ウェスタンブロット（挿入）は、２つのタンパク質の発現レベルが同様であることを示す。星印はANOVAによるP<0.01を示す。これらの図は、Foxo1がCslと共免疫沈降することを示す。a)LacZ-（符号「-」で示す）またはJagged1-発現HEK293細胞(符号「+」で示す)と共培養されたC2C12細胞における内在性Foxo1およびCslの共免疫沈降。b-c) FLAG-CslおよびHA-Foxo1で共トランスフェクトされたC2C12細胞における共免疫沈降実験。d-e) FLAG-Cslおよび切断型ミュータントMyc-またはHA-タグ付δ256Foxo1と共トランスフェクトされたC2C12細胞における共免疫沈降実験。図40A-40D これらの図は、Foxo1がCslに対して直接に結合することを示す。A)HEK293細胞からの免疫沈降されたCslとのGST-Foxo1融合タンパク質のGSTプルダウンアッセイ。b-c)無細胞系におけるGST-Foxo1およびGST-FLAG-Cslの結合、並びにCsl相互作用ドメインのマッピング。全長および切断型フラグメントのGST-Foxo1およびGST-FLAG/Cslを、細菌から精製して共インキュベートした。その後、Cslを抗FLAG抗体を使用して単離し、免疫沈降物を抗Foxo1または抗FLAG抗体でイムノブロットにより分析した。d)筋芽細胞分化中の内在性Foxo1、CslおよびNotch1（Endog）、または続くFoxo1-ADA（Foxo1-ADA）での形質導入を検出するためのC2C12細胞におけるHes1プロモーターChIPスパンニングCsl結合部位。インプットは、免疫沈降前にクロマチンから抽出されたDNAを表す。各時点に対応するHes1(準定量的なRT-PCR)およびミオシン(ウェスタンブロット)発現が示される。０日目は、筋芽細胞融合を誘導するために、細胞を血清欠乏とした時点と定義した。略語：IP:免疫沈降; IB:イムノブロット; TCL:全細胞溶解物。図41A - 41B これらの図は、Foxo1がNotch誘導性Hes1、Hes5およびHey1発現を制御することを示す。a)Foxo1-ADAまたはNotch1-ICで形質導入され、続いて記載された通りのGfp、Foxo1またはCsl siRNAでトランスフェクトされたC2C12における準定量的なRT-PCRにより測定されたHes1、Hes5およびHey1発現。B)Foxo1-ADA、Notch1-IC、Foxo1 siRNA、GFP siRNAまたはコントロールプラスミドで形質導入されたHEK293細胞におけるHes1レポーター遺伝子アッセイ。我々はフシフェラーゼ活性を測定し、それをβ-ガラクトシダーゼ活性により正規化した。データは、コントロールベクターに対して相対的な任意のユニットで表す。図42A - 42F これらの図は、Foxo1が、Hes1プロモーターに対するNotchの結合と、Hes1ターゲット遺伝子の活性化のために必要とされることを示す。A)Csl siRNAの不在（レーン1-2）および存在（レーン3-4）においてLacZ-（符号「-」で示す）またはJagged1-（符号「＋」で示す）発現HEK293細胞と共培養されたC2C12細胞における内在性Foxo1とNotch1ChIPアッセイ。B)Foxo1 siRNAの不在（レーン1-2）と存在（レーン3-4）での共培養系での内在性Notch1のChIPアッセイ。c)Notch1またはGfp siRNAの不在および存在における共培養に続くHes1プロモーターアッセイ。d)Foxo1 siRNAの不在（レーン1-2）および存在(レーン3-4)での共培養系でのHes1に対して結合するNcorおよびSmrtおよびMaml1ChIPアッセイ。e)準定量的なRT-PCRによるC2C12細胞におけるMyoD、Myf5およびβ-アクチンの発現。f)Hes1プロモーターのFoxo1およびNotch調節のモデル。図43A - 43D これらの図は、骨格筋におけるFoxo1の条件的な消失（conditional ablation）を示す。

A）種々の種類の筋におけるFoxo1およびFoxo4発現レベルのウェスタンブロット。b) Myog-Foxo1マウスおよびコントロール（lox/lox）同腹仔からのヒラメ筋および足底筋の異染性および免疫組織化学的分析。c) Myog-Foxo1(黒棒（sold bars))とコントロールマウス（白棒（empty bars））の遺伝子発現分析;TropC:トロポニン-C; TropT: トロポニン-T; Mlc: ミオシン軽鎖; Myog: ミオゲニン(Myogenin); Mck: 筋型クレアチンキナーゼ。データは３つの独立した測定値の平均値±SEMである(n=6、各遺伝子型について)。星印はANOVAによるP<0.05を示す。d)8週齢Myog-Foxo1マウスおよびlox/lox同腹仔におけるトレッドミルパフォーマンス試験(Treadmill performance test)(n=6、各遺伝子型について)。星印はANOVAによるP<0.05を示す。
この図は、C2C12細胞におけるアデノウイルス形質導入の効果を示す。我々は、細胞にHA-Foxo1-ADAまたはHA-Notch1-ICアデノウイルスを形質導入し、抗HA抗体（赤色）およびDAPI（青色）で免疫組織化学法を行った。この図は、トランスフェクトされたFoxo1発現の阻害を示す。我々は、アデノウイルスの形質導入に続き、内在性（左のパネル）およびトランスフェクトされた（右のパネル）Foxo1の発現を阻害するFoxo1 siRNAの能力を試験した。この図は、Foxo1 siRNAの特異性を示す。Foxo1 siRNAでトランスフェクトされたC2C12細胞におけるFoxo1、Foxo3およびFoxo4発現のウェスタンブロット分析。この図は、Foxo1-ADAおよびNotch1-ICが細胞増殖に影響しないことを示す。我々はC2C12細胞にLacZ、Foxo1-ADAまたはNotch1-ICアデノウイルスを形質導入し、抗Ki67抗体およびDAPIで、免疫組織化学法を行い、少なくとも1000細胞をカウントすることにより、Ki67陽性細胞に対するパーセンテージとして、Ki67標識インデックスを定量化した。この図は、siRNA抵抗性Foxo1-ADAを示す。Foxo1 siRNAでトランスフェクトされた細胞におけるFoxo1-ADAとsiRNA抵抗性Foxo1-ADAのウェスタンブロット。この図は、Foxo1-CSl共免疫沈降の特異性を示す。Foxo3またはFoxo4発現ベクターの共トランスフェクションに続いて、我々はCslとの共免疫沈降実験を行った。この図は、Hes1プロモーターアッセイを示す。我々は、４タンデム型反復のCsl結合部位を含む合成Hes1レポーター遺伝子をC2C12細胞中のFoxo1およびNotch1-ICでのプロモーターアッセイにおいて使用した。この図は、siRNAによるCsl発現の阻害を示す。我々は、異なる濃度のCsl siRNAでのC2C12細胞のトランスフェクションに続くウェスタンブロットによりCslレベルを測定した。この図は、図式化されたヒトNotch1デコイの11の構築物を示す。この図は、Notch1シグナルペプチド末端を決定するためのNotch1のシグナル配列分析を示す。デンマーク工業大学（the Technical Univeristy of Denmark）によりオンラインで提供されるSignalI 3.0 Server（the SignalI 3.0 Server）を使用する分析の予測結果を示す。結果は、アラニン１８（A19）とA19の間に位置する切断のメジャー部位とA19とアルギニン20（R20）との間のマイナー部位を予測する。これらの２つの切断部位はヒトNotch１のアミノ酸配列1-20において「/」により示した：MPPLLAPLLCLALLPALA/A/R (配列番号１５)。ヒトNotch1のアミノ酸1-23をコードするヌクレオチド配列はatgccgccgc tcctggcgcc cctgctctgc ctggcgctgc tgcccgcgct cgccgcacga ggcccgcga (配列番号１６)である。この図は、ヒトHcシグナルペプチド末端を決定するためのヒトHcのシグナル配列分析を示す。MWGWKCLLFWAVLVTATLCTA/R (配列番号１７)。デンマーク工業大学によるオンライン提供されるSignalIP 3.0 Serverを使用する分析の予測結果を上に示す。これらの結果は、アラニン２１（A21）とアルギニン２２（R22）の間に位置する切断のメジャー部位を予測する。この切断部位は、上で提供されたヒトHc（配列番号１７）のアミノ酸配列１−２２において「/」により示す。ヒトHcのアミノ酸１−２２をコードするヌクレオチド配列はatgtggggct ggaagtgcct cctcttctgg gctgtgctgg tcacagccac tctctgcact gccagg(配列番号１８)である。この図は、ヒトNotch1のEGF反復36の後で終止する全ての構成物についてのヒトNotch1/Fc融合配列を示す。この図は、ヒトNotch1のEGF反復13の後で終止する全ての構成物についてのヒトNotch1/Fc融合配列を示す。この図は、ヒトNotch1のEGF反復23の後で終止する全ての構成物についてのヒトNotch1/Fc融合配列を示す。この図は、ヒトNotch1のEGF反復24の後を終止する全ての構成物についてのヒトNotch1/Fc融合配列を示す。図５９Ａおよび５９Ｂこの図は、ヒトNotch1の完全長アミノ酸（aa）配列を示し、aa残基１（M=メチオニン）からaa残基2555（K=リジン）からなる（配列番号５２）。シグナルペプチドおよび最初の３６EGF様反復ドメインがこの配列のaa1-1433に存在する。アミノ酸1-1433、またはこれらのaaの部分集合は、次のセクションにおいて記載されるヒトNotch1デコイタンパク質の設計のために利用される。EGF反復1-36を含むアミノ酸に下線を付す。記載なし。この図は、Notch1デコイタンパク質におけるFcタグを産生するために利用できるヒトFcアミノ酸配列を示す(配列番号５３)。ヒトFcの２３７アミノ酸は、Notch1のEGF様反復のまさに下流の、全てのNotch1デコイ構成物のＣ末端で融合される。ヒトFcのこの領域が検出およびNotchデコイの精製を可能にし、分泌されるヒトNotch1-ヒトFc融合タンパク質の安定化に役立つ。この図は、h-Notch^(1-36)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５４）を示す。h-Notch1^(1-36)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF様反復1-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-1433からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸1434-1670。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1670アミノ酸を含む。この図は、h-Notch1^(1-13)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５５）を示す。h-Notch1^(1-13)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1−23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF様反復1-13をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-531からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸532-768。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は768アミノ酸を含む。この図は、h-Notch1^(1-24)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５６）を示す。h-Notch1^(1-24)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復 1-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-948からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸949-1185。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は768アミノ酸を含む。この図は、h-Notch1^(9-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５７）を示す。h-Notch1^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-594からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸595-831。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は829アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch1^(9-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５８）を示す。h-sp^HCNotch1^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-593からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸594-830。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は829アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch1^(9-36)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号５９）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch1^(9-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-1118からなる配列；これに続く（３）ヒトFCタグを含むアミノ酸1119-1355。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1355アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch1^(9-36)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号６０）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch1^(9-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-1117からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸1118-1354。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1354アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch1^(13-24)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号６１）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch1^(13-24)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復13-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-478からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸479-715。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は715アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号６２）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復13-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-477からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸478-714。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は714アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch1^(25-36)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号６３）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch1^(25-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復25-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-508からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸509-745。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は745アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch1^(25-36)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号６４）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch1^(25-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復25-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-507からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸508-744。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は744アミノ酸を含む。この図は、図６１において示されるh-Notch1^(1-36)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号６５）。記載なし。この図は、図６２において示されるh-Notch1^(1-13)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号６６）。この図は、図６３において示されるh-Notch1^(1-24)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号６７）。記載なし。この図は、図６４において示されるh-sp^NNotch1^(9-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号６８）。この図は、図６５において示されるh-sp^HCNotch1^(9-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号６９）。この図は、図６６において示されるh-sp^NNotch1^(9-36)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７０）。記載なし。この図は、図６７において示されるh-sp^HcNotch1^(9-36)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７１）。記載なし。この図は、図６８において示されるh-sp^NNotch1^(13-24)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７２）。この図は、図６９において示されるh-sp^HcNotch1^(13-24)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７３）。この図は、図７０において示されるh-sp^NNotch1^(25-36)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７４）。この図は、図７１において示されるh-sp^HcNotch1^(25-36)デコイタンパク質をコードする核酸配列を示す（配列番号７５）。この図は、ヒトNotch4の全長アミノ酸(aa)配列を示し、aa 1 (M =メシオニン)からaa 2003 (K =リシン)からなる（配列番号７６）。シグナルペプチドおよび第１の29EGF-様反復ドメインはこの配列のaa 1-1174に存在する。アミノ酸1-1174またはこれらaaの部分集合はヒトNotch4デコイタンパク質の設計に利用され、次のセクションで説明される。EGF-反復を取り囲むアミノ酸は下線を付す。この図は、Notch4デコイタンパク質におけるFcタグを産生するために利用できるヒトFc配列を示す(配列番号７７)。ここで示されるヒトFcの237アミノ酸はNotch4のEGF様反復のまさに下流の、全てのNotch4デコイ構成物のＣ末端で融合される。ヒトFcのこの領域が検出およびNotchデコイの精製を可能にし、分泌されるヒトNotch4-ヒトFc融合タンパク質の安定化に役立つ。この図は、h-Notch4^(1-29)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号７８）を示す。h-Notch4^(1-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-1173からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸1174-1410。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1410アミノ酸を含む。この図は、h-Notch4^(1-13)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号７９）を示す。h-Notch4^(1-13)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-13をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-554からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸555-791。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は791アミノ酸を含む。この図は、h-Notch4^(1-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８０）を示す。h-Notch4^(1-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-933からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸934-1170。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1170アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch4^(9-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８１）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch4^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-602からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸603-839。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は839アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８２）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-597からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸598-834。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は834アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch4^(9-29)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８３）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch4^(9-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-843からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸844-1080。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1080アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８４）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-838からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸839-1075。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1075アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch4^(13-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８５）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch4^(13-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復13-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-444からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸445-681。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は681アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８６）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復13-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-439からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸440-676。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は676アミノ酸を含む。この図は、h-sp^NNotch4^(21-29)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８７）を示す。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^NNotch4^(21-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復21-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-392からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸393-629。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は629アミノ酸を含む。この図は、h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイタンパク質のアミノ酸配列（配列番号８６）を示す。略語sp^HCは、ヒトHCシグナルペプチドがこの形成物で用いられることを意味する。h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復21-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-387からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸388-624。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は624アミノ酸を含む。この図は、ヒトNotch4の核酸配列(配列番号８９)を示す。記載なし。この図は、ヒトNotch4シグナルペプチド配列(配列番号90)を示す。下線を付した配列がシグナルペプチドをコードする。この図は、ヒトHCシグナルペプチド(nt 1-66)の核酸配列（配列番号９１）を示す。この図は、ヒトFCタグの核酸配列(配列番号９２)を示す。この図は、h-Notch4^(1-29)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９３）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復1-29)[nt 1-3522]。記載なし。この図は、h-Notch4^(1-13)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９４）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復1-13)[nt 1-1662]。この図は、h-Notch4^(1-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９５）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復1-23)[nt 1-2799]。この図は、h-Notch4^(1-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９５）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復1-23)[nt 1-2799]。この図は、h-sp^NNotch4^(9-29)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９６）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復9-29)[nt 1-81, 1075-3522]。この図は、h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９７）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復9-29)[nt 1075-3522]およびHCシグナルペプチド[nt 1-66]。この図は、h-sp^NNotch4^(9-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９８）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復9-23)[nt 1-81, 1075-2799]。この図は、h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号９９）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復9-23)[nt 1075-2799]およびHCシグナルペプチド[nt 1-66]。この図は、h-sp^NNotch4^(13-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号１００）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復13-23) [nt 1-81, 1549-2799]。この図は、h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号１０１）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復13-23) [nt 1549-2799]およびHCシグナルペプチド[nt 1-66]。この図は、h-sp^NNotch4^(21-29)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号１０２）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復21-29) [nt 1-81, 2428-3522]。この図は、h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイタンパク質をコードする核酸配列（配列番号１０３）を示す。ヒトNotch4デコイ(EGF様反復21-29) [nt 2428-3522]およびHCシグナルペプチド[nt 1-66]。図は、ヒトNotch4デコイの１１形成物の組織的配列を示す。図は、Notch4シグナルペプチドが末端であることを決定するためのNotch 4のシグナル配列分析を示す。図は、ヒトNotch4のEGF反復２９後の末端である全ての構造に対するヒトNotch4/Fc融合配列を示す。図は、ヒトNotch4のEGF反復１３後の末端である全ての構造に対するヒトNotch4/Fc融合配列を示す。図は、ヒトNotch4のEGF反復２３後の末端である全ての構造に対するヒトNotch4/Fc融合配列を示す。図は、循環グルコースおよびインスリンレベルを下げるNotch4不足を示す。我々は、Notch4 (N4)突然変異マウスの血液グルコースおよびインスリンレベルを最近分析している。離乳（P21）で、N4+/-交尾から発生される複数の同腹子は通常餌または脂肪の４５％カロリからなる高脂肪食のいずれかが供される。５ヶ月の歳のときに、血液を引き出し、かつグルコースおよびインシュリンレベルが無作為に肥育されたマウスまたは６時間の空腹後のマウスから測定される。雌において、N4アレルの低下は食に依存する循環グルコースレベルの十分な減少に関連する。これに対し、N4不足は通常食で肥育された雄のみにグルコースレベルの減少と付随した。すべての雌のインシュリンレベルは影響さらなかった（データなし）。これは、雌マウスがインシュリン耐性に対して遺伝的に保護され、かつ従って代謝性異常が精巧に穏やかであることによるかもしれない。通常食において、雌マウスのインシュリンレベルに相違がなかった。しかしながら、N4のアバレーション（abalation）は高脂肪食で飼育される雄マウスのインシュリンレベルに無作為に与える十分な減少に関連する。同様な傾向は、６時間絶食したN4ノックアウト雌に観察される。したがって、N4損失は通常食で飼育される両方の雄およぶ雌の血液グルコースレベルの十分な減少に関連する。雌において、グルコースレベル、しかしインシュリンレベルではなく、のこの減少は高脂肪食で飼育されるN4マウス雌に観察された。これに対し、グルコースレベルはN4ノックアウト雄で変化せず、一方インシュリンレベルが減少した。これらの結果は、混乱したインシュリンシグナルによる高血糖の遺伝的かつ環境形態に対して保護するNotch4不足と矛盾しない。図は、高脂肪食を供したマウスの重量利得を抑えたNotch4発現損失を示す。図は、マウス血清に存在するラットNotch1デコイを示す。哺乳類血流中のラットNotch1デコイ系生物の安定性を試験した。ウエスタンブロッド分析は全長たんぱく質がマウスで発現でき、かつ変質の僅かな形跡で検出可能なレベルにて存在されることを証明する。図は、ヒトNotch 1 デコイ (n-Notch(1-36)デコイ)およびラットNotch1デコイブロックマウス乳房腫瘍増殖を示す。ここで表される増殖曲線はラットNotch1デコイまたはヒトNotch1デコイのいずれかがヌードマウスの腫瘍異種移植の増殖を低減することを証明する。図は、肺組織へのSKNEP1転移を抑制するラットNotch1デコイを示す。SKNEP1ユーイング肉腫細胞は、制御Fcタンパク質またはラットNotch1デコイs1 (sort 2)またはラットNotch1デコイs4 (sort 4)を発現するためにプログラムされた。これらのSKNEP1細胞ラインはヌードマウスの肝臓に同所性で移植される。腫瘍増殖の６週間後に、肺への転移は組織学的に評価した。僅かな肺に示されるラットNotch1デコイに発現するSKNEP1細胞は転移に対して陽性である。我々は、ヌードマウスのラットNotch1デコイの発現が肺に転移するためにSKNEP1細胞の容量を減少すると結論付ける。図は、マウス皮膚のリンパでVEGFR-3およびLYVE-1を共発現するNotch1およびNotch4を示す。Notch1およびNotch4のこれらの発現は、マウスP4背部皮膚の脈管構造で分析した。この時点で、経皮リンパ管は表面近くのリンパキャピラリーに活発に再造形し、かつ低経皮層の管に集まる。皮膚の５μｍ断面はNotch1またはNotch4（赤）およびPECAM, VEGFR-3またはLYVE-1（緑）に対する抗体で共染色された。Notch1およびNotch4は、血液およびリンパ管内皮細胞マーカ、PECAM (上部パネル)での重複するパターンの発現を共有する。Notch1およびNotch4は、両方のVEGFR-3 （中間パネル）および経皮脈管構造のLYVE-1（下部パネル）で共発現された。この発現パターンはNotch1およびNotch4が発現され、かつ新生児新皮のリンパ管で機能するかもしれないことを証明する。図は、Notch4同型接合性ノックアウトマウスで変化する経皮リンパキャピラリーを示す。我々は、P4マウスの経皮リンパを試験した。野生型セクションおよびNotch4ヌル接合体はPECAMおよびLYVE-1（緑）に対する抗体で免疫染色される。PECAM染色の分析は変異体と野生型皮膚（上部パネル）の間に同様に見られた。これに対し、Notch4変異体の新皮のLYVE-1-陽性管はしばしば拡張され、かつLYVE-1染色は不連続であった（下部パネル）。これらの結果は、Notch4シグナルがリンパ血管網状組織の再造形に関与してもよいことを提案する。この図は、マウス経皮リンパの減少LYVE1発現に関連するNotch4の損失を示す。Notch4異型接合性（N4+/-）マウスは交尾され、結果として得られた子の背部皮膚は取り除かれ、かつ出生後１４日に包理される。皮膚の断面は、内皮細胞マーカ、PECAM（データなし）、またはリンパ内皮細胞マーカ、LYVE1 (A)に免疫染色される。それぞれに対して５つの領域は顕微鏡によって捕捉され、かつPECAMおよびLYVE1染色は画像ソフトウェア(B, C)を用いて定量される。PECAM発現は野生型(WT)新皮(B)に比べてN4-/-新皮で約25%に減少する。LYVE-1染色は、WTマウス(C)に比べてN4-/-で約50%減少されるLYVE1染色でPECAMより影響を受けた。WT (A)に比べてN4-/-リンパでLYVE1 染色の強度での減少であった。図は、ヒト乳がんリンパ管を発現されるNotch1およびNotch4を示す。我々は、ヒト乳がんのVEGFR-3またはLYVE-1 (緑)およびNotch1またはNotch4 (赤)に対する抗体で二重免疫組織化学をなした。Notch1およびNotch4は腫瘍外血液およびヒト微小乳頭乳がんのリンパ内皮で表される。測定するために、もしNotch1情報伝達が腫瘍リンパ内皮内で活性化されるならば、我々はポドプレニン（podoplanin） (緑)およびN1Val (赤; 細胞シグナル)に対する抗体で二重染色し、抗体は活性化Notch1ペプチドを特別に検出する。活性化Notch1ペプチドの発現は、殆ど（白矢印）観測されるが、リンパ内皮核（下部パネル）の全て（黄色矢印）ではない。これらの結果は、Notch1が病理学的なリンパ管で活発に情報伝達する。

発明の詳細な説明

［用語］
本出願において使用されるとき、ここに明確な他の記載がある場合を除き、次の各用語は以下に示す意味を有する。

「投与すること」は当業者に公知の何れかの方法を使用して達成または実行されればよい。当該方法は、例えば、病巣内、筋肉内、皮下、静脈内、腹腔内、リポソーム媒介、経粘膜、経腸、局所的、経鼻、経口、経肛門、経眼、経耳の送達手段を含む。

「付着された」は、何れかの手段により接続されることを意味するべきである。１つの態様において、付着されたことは、共有結合により接続されたことを意味する。もう１つの態様において、付着されたことは、非共有結合性に接着されたことを意味する。

「アミノ酸」、「アミノ酸残基」および「残基」は、ここでは交換可能にタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドに組み込まれたアミノ酸を指す。アミノ酸は、例えば、天然に発生しているアミノ酸または天然に発生しているアミノ酸と同様の様式で作動できる天然のアミノ酸の類似体であってよい。

「抗体」は、これに制限するものではないが、（a）２つの重鎖と２つの軽鎖を含み、抗原を認識するイムノグロブリン分子；（ｂ）ポリクローナルまたはモノクローナルイムノグロブリン分子；および（ｃ）その一価または２価のフラグメント；を含むであろう。イムノグロブリン分子は何れかの一般的に知られる種類に由来してよく、これらに限定するものではないが、IgA、分泌性のIgA、IgG、IgEおよびIgMを含む。IgGのサブクラスは当業者に周知であり、これらに限定するものではないが、ヒトIgG1, IgG2、IgG3およびIgG4を含む。抗体は、天然に発生しているものと非天然に発生しているものの両方であってよい。更に、抗体は、キメラ抗体、完全な合成抗体、単一鎖抗体およびそのフラグメントを含む。抗体は、ヒトまたは非ヒトであってよい。非ヒト抗体は、組み換え法によりヒト化されて、ヒトにおけるそれらの免疫原性を減少してもよい。抗体フラグメントは、これらに限定するものではないが、FabおよびFｃフラグメントを含む。１つの態様において、「抗体のFc部分」は、ジスルフィド結合により連結された２つの重鎖のC末端の半分からなるイムノグロブリンのパパイン消化により得られる結晶性フラグメントであり、イムノグロブリンの「エフェクター領域」として知られている。もう１つの態様において、「抗体のFc部分」は重鎖の１つのC末端の半分の全て、実質的に全てを意味する。

抗体に関しての「ヒト化」は、CDR領域の外側の幾つか、殆どまたは全てのアミノ酸がヒトイムノグロブリン分子に由来する対応するアミノ酸で置換された抗体を意味する。アミノ酸の少量の付加、欠失、挿入、置換または修飾は、それらが問題とする抗原への抗体の結合能を抑制しない限りにおいて差支えない。適切なヒトイムノグロブリン分子は、これらに限定されるものではないが、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgAおよびIgM分子を含む。種々の刊行物が、抗体のヒト化をどのように作成するのかを記載しており、例えば、米国特許第4,816,567号、5,225,539、5,585,089および5,693,761、並びにPCT国際公開番号WO 90/07861に記載される。

ここにおいて使用されるとき、薬学的組成物における場合の用語「組成物」は、（単数または複数の）活性成分および担体を形成する（単数または複数の）不活性成分を含む生産物、並びに当該成分の何れかの２若しくは２以上の組み合わせ、複合若しくは集合により、または当該成分の１若しくは１以上の分離により、または当該成分の１若しくは１以上の他の種類の反応若しくは相互作用により、直接的または間接的に結果として生じる何れかの生産物を包含することを意図する。

ここにおいて使用されるとき「有効な量」は、腫瘍、疾患または障害を有する対象を治療することが可能な量をいう。従って、有効な量は、治療しようとする患者および治療されるべき状態によって変わるだろう。当業者は、そのような十分な量を決定するために慣例的な滴定実験を行うことが可能である。化合物の有効な量は、対象および使用される特定の投与経路に依存して変化するだろう。化合物に基づいて、当該量が、連続したポンプなどによって連続して、または断続的な間隔で（例えば、１または１以上の独立した時に）送達される。所望の時間間隔での特定の化合物の複数の量が、当業者による過度の実験もなく決定される。1つの態様において、有効な量は約1μg/kg〜10 mg/kgである。もう１つの態様において、有効な量は、10μg/kg〜1 mg/kgである。更なる態様において、有効な量は100μg/kgである。

Notchレセプタータンパク質に関連して使用されるとき、「細胞外ドメイン」は、全てのまたは一部分のNotchであり、これは（ｉ）細胞外に存在する（即ち、膜貫通部分または細胞内部分のどちらとしても存在しない）、および（ii）インタクトのNotchレセプタータンパク質が結合する細胞外リガンドに対して結合していることを意味する。Notchの細胞外ドメインは任意にシグナルペプチドを含んでよい。「細胞外ドメイン」、「ECD」および「外部ドメイン」は同義である。

「半減期を増大する成分（Half-life-increasing moiety）」は、第２の成分に対して稼働可能に付着されたとき、当該第２の成分のインビボの半減期を増大する成分を意味する。半減期を増大する成分は、例えば、抗体のFc部分、グリコシル化タグ（即ち、グリコシル化されたポリペプチド）、ポリエチレングリコール（PEG）、それに対して付着されたPEGを有するポリペプチドおよび脂質修飾化ポリペプチドなどを含む。

疾患または望ましくない生物学的な過程の開始を「阻害する」は、疾患または過程の開始の可能性を減少すること、または完全に疾患または過程の開始を抑制することのどちらも意味するべきである。好ましい態様において、疾患または過程の開始を阻害することは、完全にその開始を抑制することを意味する。

「Notch」、「Notchタンパク質」および「Notchレセプタータンパク質」は同義である。加えて、用語「Notchに基づく融合タンパク質」および「Notchデコイ」は同義である。以下のNotchアミノ酸配列が公知であり、引用することによりここに組み込まれる；Notch1 (Genbank accession no. S18188 (ラット)); Notch2 (Genbank accession no. NP 077334 (ラット)); Notch3 (Genbank accession no. Q61982 (マウス)); およびNotch4 (Genbank accession no. T09059 (マウス))。以下のNotch核酸配列が公知であり、引用することによりここに組み込まれる；Notch1 (Genbank accession no. XM 342392 (ラット)およびNM 017617 (ヒト)); Notch2 (Genbank accession no. NM 024358 (ラット), M99437 (human and AF308601 (ヒト)); Notch3 (Genbank accession no. NM 008716 (マウス)およびXM 009303 (ヒト));およびNotch4 (Genbank accession no. NM 010929 (マウス)およびNM 004557 (ヒト))。

用語「核酸」、「ポリヌクレオチド」および「核酸配列」は、ここにおいて交換可能に使用され、各々デオキシリボヌクレオチドおよび／またはリボヌクレオチドをいう。デオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチドは、天然に発生している、またはその合成的な類似体であってよい。「核酸」は何れかの核酸を意味し、これらに限定するものではないが、DNA、RNAおよびそのハイブリッドを含む。核酸分子を形成する核酸塩基は、塩基A、C、G、TおよびU、並びにその誘導体であってよい。これらの塩基の誘導体は当該技術分野において周知であり、PCR系、試薬および消耗品において例示される(PCR Systems, Reagents and Consumables, Perkin Elmer Catalogue 1996-1997, Roche Molecular Systems, Inc., Branchburg, New Jersey, USA)。核酸は、これらに限定するものではないが、アンチセンス分子および触媒的な核酸分子、例えば、リボザイムおよびDNAzymeなどを含む。核酸はまた、ペプチド類似体、フラグメントまたは誘導体をコードする核酸を含み、それらは１または１以上のアミノ酸残基の同一性の観点から天然に発生している形態とは異なり（特定された残基の全体よりも少ない残基を含む欠失類似体；１または１以上の残基が１または１以上の残基により置換されている置換類似体；および１または１以上の残基が当該ペプチドの末端または内側の部分に対して加えられている付加類似体）、当該天然に発生している形態の性質の一部分または全部を共有するものである。

第２の成分に対して付着している第１の成分に関しての「稼働可能に付着している」は、それがそのように付着されていない場合に、第１の成分を（例えば、結合特性などの）機能可能にする様式において付着されることをいう。

用語「ポリペプチド」、「ペプチド」および「タンパク質」はここにおいて交換可能に使用され、各々アミノ残基のポリマーを意味する。アミノ酸残基は、天然に発生しているものであっても、その化学的類似体であってもよい。ポリペプチド、ペプチドおよびタンパク質はまた、グリコシル化、脂質付着、硫酸化、ヒドロキシル化およびADPリボース化などの修飾を含んでもよい。

ここで使用されるとき、「薬学的に許容される担体」は、担体が製剤の他の成分と適合性であり、且つその受給者に対して有害ではないことを意味し、標準的な薬学的に許容される何れの担体をも包含する。そのような担体は、例えば、0.01〜0.1M、好ましくは0.05Mのリン酸バッファーまたは0.8％の生理食塩水を含む。或いは、そのような薬学的に許容される担体は、水性または非水性溶液、懸濁液および乳濁液を含む。非水溶性溶液の例は、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油、例えば、オリーブ油および注射用有機性エステル、例えば、オレイン酸エチルなどである。水性担体は、水、アルコール性／水性溶液、乳濁液および懸濁液を含み、これらは塩水および緩衝化媒体を含む。非経口ベヒクルは、塩化ナトリウム溶液、リンゲルデキストロース、デキストロースおよび塩化ナトリウム、乳酸化リンゲルおよび固定油を含む。静脈内用ベヒクルは、流体および栄養分補充液、電解質補充液、例えば、リンゲルデキストロースなどに基づく液などを含む。保存剤および他の添加物、例えば、抗微生物剤、抗酸化剤、キレート剤、不活性ガスなどが存在してもよい。

「対象」は何れかの有機体を意味し、これらに限定するものではないが、哺乳類、例えば、マウス、ラット、イヌ、モルモット、フェレット、ウサギおよび霊長類などを含む。好ましい態様において、対象はヒトである。

「治療すること」は、疾患または障害の進行を遅くする、止めるまたは後退することの何れかを意味する。ここにおいて使用されるとき、「治療する」はまた、疾患または障害に関連する症状の寛解をも意味する。疾患は、これらに限定するものではないが、腫瘍脈管形性、アテローム性動脈硬化、創傷治癒、黄斑性変性、未熟児網膜症、子癇前症、子癇前症、糖尿病性網膜症、虚血、脳卒中、循環器病、乾癬、リンパ浮腫、腫瘍形成および腫瘍リンパ管形成を含む。

脈管形性は、創傷治癒過程、雌性月経周期および子宮内膜リモデリングの間、並びに胚芽発生および臓器発達の間に遭遇される。病理学的な設定において、脈管形性は、関節リウマチ、黄斑性変性、糖尿病性網膜症および腫瘍増殖などの異なる疾患において重要な役割を演じている。

臨床的な知見を含むインビボにおいては相当なエビデンスが証拠が存在し、異常な脈管形成が多くの疾患状態に関連し、それらは関節リウマチ、炎症、癌、乾癬、退行性の眼科的状態などを含む。

Notch融合タンパク質を使用するための他の疾患は、代謝性疾患、これらに限定するものではないが、例えば、糖尿病、肥満、前糖尿病状態、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中、循環器病、インスリンの発現の調節およびインスリン機能の調節である。

Notch融合タンパク質の使用はまた、ヒトに対して循環器病および糖尿病の危険性を増加する医学上の障害の組み合わせを指す代謝性症候群に適応する。そのような症候群を指す他に知られた名称は、症候群Ｘ、インスリン抵抗性症候群、リーベン症候群（Reaven’ s syndrome）である。当該症候群の幾つかの特徴は以下を含む：空腹時高血糖、高血圧、中心性肥満（内臓肥満としても知られる）、高密度リポタンパク質（ＬＤＬ）の減少、トリグリセリドの上昇、尿酸値の上昇。上記で列記された空腹時高血糖は、二型糖尿病または障害性空腹時グルコースおよび障害性グルコース耐性またはインスリン抵抗性を含む。代謝性症候群に加えて、Notchデコイは前糖尿病状態のための効能を有する。

ユニット、プレフィックスおよびシンボルは、それらのＳＩ公認の形態において表示されてよい。他の記載がない限り、核酸配列は、左から右に５’から３’の配向で記載され、アミノ酸配列は左から右に、アミノ末端からカルボキシ末端の配向で記載される。アミノ酸は、それらの一般的に知られる３文字記号か、１文字記号の何れかによりここにおいて示されてよく、これらはIUPAC-IUB生化学命名法委員会により推奨される。ヌクレオチドは同様に、それらの一般的に受容される単一文字コードにより示されてよい。

以下の略語がここにおいて使用される：ECD: 細胞外ドメイン; IC: 細胞内ドメイン; NECD/Fc: Notch-に基づく融合タンパク質; N1: Notch1; N2: Notch2; N3: Notch3; N4: Notch4; Dll: Delta-様; EC: 内皮細胞; FGF: 繊維芽細胞成長因子; FGFR: 繊維芽細胞成長因子レセプター; HUVEC: ヒト臍帯静脈内皮細胞; m.o.i.: 感染の多重度; VMC:血管壁細胞; VEGF: 血管内皮細胞成長因子; VEGFR: 血管内皮細胞成長因子レセプター; sp: シグナルペプチド; PDGF: 血小板由来成長因子; PDGFR: 血小板由来成長因子レセプター; P1GF: 胎盤性成長因子。

［発明の態様］
本発明は、シグナルペプチド、ヒトNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメイン、およびそれに対して結合する抗体のFc部分を含む融合タンパク質を提供する。

当該融合タンパク質の第1の態様において、Notchレセプタータンパク質は、Notch1レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復1-36を含む。もう１つの態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復1-13を含む。もう１つの態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復1-24を含む。もう１つの態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復9-23を含む。もう１つの態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復9-36を含む。もう１つの態様においてNotch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復13-24を含む。更なる態様において、Notch1レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復25-36を含む。

融合タンパク質の第2の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch2レセプタータンパク質である。

融合タンパク質の第3の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch3レセプタータンパク質である。

融合タンパク質の第4の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch4レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインは、EGF-様反復1-29を含む。もう１つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復1-13を含む。もう１つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復1-23を含む。もう１つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復9-23を含む。もう１つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復9-29を含む。もう１つの態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復13-23を含む。更なる態様において、Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインはEGF-様反復21-29を含む。

融合タンパク質の１つの態様において、抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。

融合タンパク質の１つの態様において、シグナルペプチドはthe signal peptide of Notch1、Notch2、Notch3、Notch4のシグナルペプチドまたは抗体のHc(HC; 重鎖)部分である。

1つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸（consecutive amino acids））を含み、その配列は配列番号５４で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号５５で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号５６で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号５７で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号５８で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号５９で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号６０で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号６１で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号６２で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号６３で示される。更なる態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号６４で示される。

1つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド（consecutive nucleotides））によりコードされ、その配列は配列番号６５で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号６６で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号６７で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号６８で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号６９で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７０で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７１で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７２で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７３で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７４で示される。更なる態様において、融合タンパク質連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号７５で示される。

1つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号７８で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号７９で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８０で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８１で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８２で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８３で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８４で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８５で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８６で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８７で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したアミノ酸（継続性のアミノ酸）を含み、その配列は配列番号８８で示される。

1つの態様において、融合タンパク質連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号８９で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９０で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９１で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９２で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９３で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９４で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９５で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９６で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９７で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９８で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号９９で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号１００で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号１０１で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号１０２で示される。もう１つの態様において、融合タンパク質は連続したヌクレオチド（継続性のヌクレオチド）によりコードされ、その配列は配列番号１０３で示される。

本発明は、上記の融合タンパク質の対象を治療するために有効な量を前記対象に対して投与し、それにより腫瘍を有する前記対象を治療することを含む、腫瘍を有する対象を治療する方法を提供する。

本発明は、対象において脈管形成を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与し、それにより当該対象における脈管形成を阻害することを含む、対象において脈管形成を阻害する方法を提供する。

本発明は、当該患者の治療ために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与し、それにより卵巣癌を有する当該対象を治療することを含む、卵巣癌を有する対象を治療する方法を提供する
本発明は、当該対象を治療するために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与し、それにより代謝性疾患を有する当該対象を治療することを含む、代謝性疾患を有する対象を治療する方法を提供する。1つの態様において、代謝性疾患は糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中または循環器病である。

本発明は、腫瘍を有する対象を治療するための医薬阻害剤の製造のための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、対象における脈管形成を阻害するするための医薬阻害剤の製造のための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、卵巣癌を有する対象を治療するための医薬阻害剤の製造のための上記融合タンパク質の使用を提供する。

本発明は、代謝性疾患を有する対象を治療するための医薬阻害剤の製造のための上記融合タンパク質の使用を提供する。1つの態様において、代謝性疾患は糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中または循環器病である。

本発明は、対象において生理的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与することを含む、当該対象における生理的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害するための方法を提供する。

本発明は、対象において腫瘍転移を阻害するために有効な量の上記融合物を当該対象に投与することを含む、当該対象における腫瘍転移を阻害する方法を提供する。態様において、当該転移は、血管、リンパ性脈管構造またはリンパ節を介して生じる。腫瘍転移とは、１つの臓器から他の非隣接的な臓器に癌が広がることである。

本発明は、対象における二次的腫瘍の増殖を阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与することを含む、当該対象において二次的腫瘍の増殖を阻害する方法を提供する。阻害はまた、二次的または転移性腫瘍に関連する腫瘍脈管形成についてのものでもあってよい。１つの態様において、当該二次的腫瘍増殖は、二次的腫瘍に関連する脈管形成の阻害により阻害される。

本発明は、対象における腫瘍による血管取り込みを阻害するために有効な量の上記融合タンパク質を前記対象に投与することを含む当該対象における腫瘍による血管取り込みを阻害する方法を提供する。血管取り込みの過程は、腫瘍細胞は既存の血管と、吸収される血管の補助による増殖とに関連する過程である。吸収された血管における腫瘍のこの増殖は、腫瘍脈管形成の不在において存在しても、腫瘍脈管形成に先行して存在しても、または腫瘍脈管形成との組み合わせで存在してもよい。

本発明は、それぞれ対象において癌を治療するために有効な量の上記融合タンパク質と血管内皮成長因子(VEGF)の阻害剤とを対象に投与することを含む前記対象において癌を治療する方法を提供する。１つの態様において、VEGFの阻害剤は、VEGF-Aの阻害剤、P1GFの阻害剤、VEGF-Bの阻害剤、VEGF-Cの阻害剤、VEGF-Dの阻害剤である。VEGF阻害剤の例は、これらに制限するものではないが、ベバシズマブ(bevacizumab)、PTK787、Bay43-9006、SU11248、AG013676、ZD6474、VEGF-trapおよび抗VEGFR2を含む。そのような阻害剤の例は更に以下に十分に記載される；Ferrara et al., (2004) Nature Reviews Drug Discovery, Vol.3:391-400 and Ellis et al. (2008) Nature Reviews Cancer Vol8:579-591；これらのそれぞれの内容は引用によりここに組み込まれる。

本発明は、それぞれ対象において癌を治療するために有効な量の上記融合タンパク質とVEGFR-1、VEGFR-2またはVEGFR-3の阻害剤とを対象に投与することを含む前記対象において癌を治療する方法を提供する。1つの態様において、当該阻害剤は１以上のVEGFRを標的とする。

本発明は、それぞれ対象において癌を治療するために有効な量の上記融合タンパク質と血小板由来増殖因子(PDGF)の阻害剤とを対象に投与することを含む前記対象において癌を治療する方法を提供する。１つの態様において、血小板由来増殖因子の阻害剤は、PDGF-Aの阻害剤またはPDGF-Bの阻害剤である。

本発明は、それぞれ対象において癌を治療するために有効な量の上記融合タンパク質とPDGFレセプターアンタゴニストとを対象に投与することを含む前記対象において癌を治療する方法を提供する。１つの態様において、PDGFレセプターアンタゴニストは、PDGFレセプターBアンタゴニストである。

本発明は、それぞれ対象において癌を治療するために有効な量の上記融合タンパク質とHER2/neuの阻害剤を対象に投与することを含む前記対象において癌を治療する方法を提供する。

本発明は、血管性増殖性網膜症を治療するために有効な量の上記融合タンパク質を対象に投与することを含む血管増殖性網膜症を治療する方法を提供する
101. 前記血管性の増殖性網膜症が、糖尿病性網膜症、黄斑変性（macular defernation）または未熟児網膜症である請求項１００の方法。

本発明はまた、半減期を増大する成分（half-life-increasing moiety）に対して稼働可能に付着されたNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインを含む物質の組成物の有効量を当該対象に投与し、それにより当該対象を治療することを含む、腫瘍を有する対象を治療するための第１の方法も提供する。

本発明はまた、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインを含む物質の組成物の有効量を当該対象に投与し、それにより当該対象における脈管形成を阻害することを含む、対象において脈管形成を阻害する第２の方法も提供する。

上記方法の第１の態様において、Notchレセプタータンパク質は、Notch1レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch1レセプタータンパク質はヒトNotch1レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は、同じポリペプチド鎖の範囲内にある。

上記の方法の第２の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch2レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch2レセプタータンパク質はヒトNotch2レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は、同じポリペプチド鎖の範囲内にある。

上記方法の第３の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch3レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch3レセプタータンパク質はヒトNotch3レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は、同じポリペプチド鎖の範囲内にある。

上記方法の第４の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch4レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch4レセプタータンパク質はヒトNotch4レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は、同じポリペプチド鎖の範囲内にある。

上記方法の第５の態様において、対象は哺乳類である。1つの態様において、哺乳類はヒトである。

上記方法の第６の態様において、脈管形性は腫瘍脈管形性である。

当該第２の方法の更なる態様において、対象は腫瘍を有する。もう１つの態様において、対象は病態的な血管過形成に罹患している。1つの態様において、病態的な血管過形成は、良性のヘマジオーマ（benign hemagioma）である。更なる態様において、対象はリンパ管増殖性疾患に罹患する。

本発明は、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインを含む物質の第１の組成物を提供する。1つの態様において、細胞外ドメインは、半減期を増大する成分に対して共有結合されている。もう１つの態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は同じポリペプチド鎖の範囲内にある。

本発明はまた、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインと薬学的に許容された担体とを含む物質の第２の組成物も提供する。

本発明は更に、（i）半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインを含む物質の組成物をその中に有するパッキング物質、および（ii）当該組成物が、腫瘍または当該対象における脈管形成を阻害することにより治療可能な他の疾患を有する対象の治療において使用することに向けられることを指示する表示を含む製品を提供する。

上記の製品の第１の態様において、Notchレセプタータンパク質は、Notch1レセプタータンパク質である。１つの態様において、Notch1レセプタータンパク質は、ヒトNotch1レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において、抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は同じポリペプチド鎖に含まれる。

上記製品の第２の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch2レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch2レセプタータンパク質はヒトNotch2レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において、抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は同じポリペプチド鎖に含まれる。

上記製品の第３の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch3レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch3レセプタータンパク質はヒトNotch3レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において、抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は同じポリペプチド鎖に含まれる。

上記製品の第４の態様において、Notchレセプタータンパク質はNotch4レセプタータンパク質である。1つの態様において、Notch4レセプタータンパク質はヒトNotch4レセプタータンパク質である。もう１つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において、抗体のFc部分はヒト抗体のFc部分である。更なる態様において、細胞外ドメインおよび半減期を増大する成分は同じポリペプチド鎖に含まれる。

上記製品のもう１つの態様において、当該組成物は、薬学的担体と混合される。最後の態様において、対象はヒトである。

本発明は、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインを含むポリペプチドをコードする複製可能なベクターを提供する。

1つの態様において、半減期を増大する成分は抗体のFc部分である。もう１つの態様において、ベクターは、これらに限定するものではないが、プラスミド、コスミド、レトロウイルス、アデノウイルス、ラムダファージまたはYACを含む。

本発明はまた、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインを含むポリペプチドをコードする複製可能なベクターおよび適切なホスト細胞を含む宿主ベクター系を提供する。1つの態様において、ホスト細胞は、真核細胞である。もう１つの態様において、真核細胞はCHO細胞である。もう１つの態様において、真核細胞はHeLa細胞である。更なる態様において、ホスト細胞は細菌性細胞である。

最後に、本発明は、半減期を増大する成分に対して稼働可能に付着されたNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインを含むポリペプチドをコードする複製可能なベクターと、適切なホスト細胞とを具備するホストベクター系を、当該ポリペプチドの産生を可能にする条件下で増殖させること、並びにそのように産生されたポリペプチドを回収することとを具備する当該ポリペプチドを産生する第３の方法を提供する。

本発明を、続く実験の詳細のセクションにおいて説明する。このセクションは、本発明を理解するのを助けるために記載されるものであるが、その後に続く特許請求の範囲に記載される本発明を何れの方向にも制限することを目的とするものではなく、またそのように解釈されるべきではない。

［実験の詳細］
［第１のシリーズの実験］
ヒトNotch1融合タンパク質（Notchデコイ）
Notch1デコイはシグナルペプチド, 全て含むNotch1細胞外ドメイン部分またはEGF-様反復ドメインのサブセット,およびヒトFcタンパク質(アミノ酸1-237)部分をコードする配列を用いて組み立てる。ヒトNotch1の完全な全長配列を図５９に供する。

利用されるシグナルペプチドは天然Notch1シグナルペプチドか、またはヒトHcシグナルペプチドかいずれかであり、それぞれNotch1領域で融合される。シグナルペプチドはNotchデコイタンパク質の分泌をなす。
使用されるNotch1細胞外ドメインは、Notch配位子を結合するために設計され、かつヒトNotch1タンパク質の36 EGF-様反復ドメインの全てまたはサブセットからなる。

Fcタグは所望のヒトNotch1の所望EGF-様反復のC-終端で融合し、かつNotch1デコイタンパク質の精製、検出および安定化をなすために貢献する。

ヒトNotch1デコイの全てに亘る設計、１１形成物、は（１）Notch1デコイタンパク質の分泌をタンパク質を生成するために用いられる真核細胞の細胞外媒体に対してなすためのシグナルペプチド、（２）Notch配位子と関連させるための全ての細胞外ドメイン部分またはヒトNotch1のEGF-様反復部分、および（３）検出させるためのヒトFcタンパク質部分に対してコード化するためである。

ヒトNotch1デコイの次の１１の形成物は説明され、かつ図５２に図示される。

1) h-Notch1^(1-36) デコイ(図５２のN1-1)
2) h-Notch1^(1-13) デコイ(図５２のN1-2)
3) h-Notch1^(1-24) デコイ(図５２のN1-3)
4) h-sp^NNotch1^(9-23) デコイ(図５２のN1-4)
5) h-sp^HCNotch1^(9-23) デコイ(図５２のN1-5)
6) h-sp^NNotch1^(9-36) デコイ(図５２のN1-6)
7) h-sp^HCNotch1^(9-36) デコイ(図５２のN1-7)
8) h-sp^NNotch1^(13-24) デコイ(図５２のN1-8)
9) h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイ(図５２のN1-9)
10)h-sp^NNotch1^(25-36) デコイ(図５２のN1-10)
11)h-sp^HCNotch1^(25-36) デコイ (図５２のN1-11)ヒトNotch1配列
aa残基2555(K =リシン)に対してaa残基1 (M =メチオニン)からなるヒトNotch1全長アミノ酸配列は図５９に示す。シグナルペプチドおよび第１の36 EGF-様反復ドメインはこの配列のaa 1-1433に表す。アミノ酸1-1433、またはこれらのaaサブセットはヒトNotch1デコイタンパク質の設計に利用し、次のセクションで説明する。

Notch1デコイタンパク質上のFcタグを生成するために利用されるヒトFc配列
図６０に示される、ヒトFc の237アミノ酸はまさにNotch1EGF-様反復の下流で、全てのNotch1デコイのＣ−終端で融合した。ヒトFcのこの領域はNotchデコイの検出および精製をなし、かつ分泌ヒトNotch1-ヒトFc融合タンパク質を安定化するために貢献する。

Notch1デコイタンパク質に利用されるシグナルペプチド
２つの特異なシグナルペプチド配列はヒトNotch1デコイタンパク質の設計に組み込まれる。第１はヒトNotch1のアミノ酸1-20を含むために予測するシグナルペプチドである。この測定は、デンマークのTechnical Universityによって提供されるシグナルIP 3.0サーバプログラムを用いてなされた。第２はヒトIgG重鎖（HC）シグナルペプチドのアミノ酸1-22を含むために予測されるヒトHcシグナルペプチドである。

１．ヒトNotch1シグナルペプチド（aa 1-20）
MPPLLAPLLCLALLPALA/A/R (配列番号16)
予測されるヒトNotch1シグナルペプチドのアミノ酸配列は図５３に図示される。デンマークのTechnical Universityによってオンラインで提供されるシグナルIP 3.0サーバを利用する分析の予測結果は図５３に示される。これらの結果は、アラニン18 (A18)およびアラニン19 (A19)の間に位置される開裂の多数サイトとA19およびアルギニン20 (R20)の間に位置される開裂の少数サイトとを予測する。これら２つの開裂サイトは上に供される、ヒトNotch1のアミノ酸配列1-20に“／”によって示す。

２．このシグナル配列に利用されるNotch1デコイに利用されるヒトNotch1シグナルペプチド融合ペプチド(aa 1-23)
Notch1シグナルペプチドが十分に利用されることを確かめるために、開裂の予測少数サイトを越える３つの付加アミノ酸がヒトNotch1デコイに提供される。したがって、Notch1 シグナルペプチドを組み込むヒトNotch1デコイ形成物で利用されるアミノ酸配列は以下に示すように予測シグナルペプチド開裂のサイトとNotch1 EGF-様反復の間のグリシン−プロリン−アルギニン(GPR-太字／下線引き)を含む。

MPPLLAPLLCLALLPALAARGPR (配列番号130) 3. ヒト HC シグナルペプチド (aa 1-22)
予測ヒトHcシグナルペプチドのアミノ酸配列は、MWGWKCLLFWAVLVTATLCTA/R (配列番号18)である。

デンマークのTechnical Universityによってオンラインで提供されるシグナルIP 3.0サーバを利用する予測結果は、以下に示す。これらの結果は、アラニン21 (A21)およびアルゲニン22 (22)間に位置する開裂の多数サイトを予測する。この開裂サイトは、以下に供されるヒトHcのアミノ酸配列1-22に“／”によって示される。

h-Notch1^(1-36)デコイ
h-Notch1^(1-36)デコイはNotch1 (図52のN1-1)のEGF-様反復1-36を含むヒトNotch1デコイを意味する。

図61に示すh-Notch1^(1-36)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF様反復1-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-1433からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸1434-1670。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1670アミノ酸を含む。

h-Notch1^(1-13)デコイ
h-Notch1^(1-13)デコイはNotch1 (図52のN1-2)のEGF-様反復 1-13を含むヒトNotch1デコイを意味する。

図62に示すh-Notch1^(1-13)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1−23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF様反復1-13をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-531からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸532-768。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は768アミノ酸を含む。

h-Notch1^(1-24)デコイ
h-Notch1^(1-24)デコイはNotch1 (図52のN1-3)のEGF-様反復 1-24を含むヒトNotch1デコイを意味する。

図63で示されるh-Notch1^(1-24)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復 1-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-948からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸949-1185。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1185アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch1^(9-23)デコイ
h-sp^NNotch1^(9-23)デコイはNotch1 (図52のN1-4)のEGF-様反復 9-23を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^NはヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図64に示されるh-sp^NNotch1^(9-23)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-593からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸595-830。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は830アミノ酸を含む。 h-sp^HCNotch1^(9-23)デコイ
h-sp^HCNotch1^(9-23)デコイはNotch1 (図52のN1-5)のEGF-様反復9-23を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^HCはヒトHcシグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。
図65に示されるh-sp^HCNotch1^(9-23)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-592からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸593-829。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は829アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch1^(9-36)デコイ
h-sp^NNotch1^(9-36)デコイはNotch1 (図52のN1-6)のEGF-様反復9-36を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^NはヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図66に示されるh-sp^NNotch1^(9-36)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-1118からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸1119-1355。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1355アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch1^(9-36)デコイ
h-sp^HCNotch1^(9-36)デコイはNotch1 (図52のN1-7)のEGF-様反復9-36を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^HCはヒトHcシグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図６７に示されるh-sp^HCNotch1^(9-36)デコイタンパク質は、以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復9-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-1117からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸1118-1354。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1354アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch1^(13-24)デコイ
h-sp^NNotch1^(13-24)デコイはNotch1 (図52のN1-8)のEGF-様反復13-24を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^NはヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図６８に示されるh-sp^NNotch1^(13-24)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復13-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-478からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸479-715。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は715アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイ
h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイはNotch1 (図52のN1-9)のEGF-様反復13-24を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^HC はヒトHcシグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図６９に示されるh-sp^HCNotch1^(13-24)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復13-24をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-477からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸478-714。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は714アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch1^(25-36)デコイ
h-sp^NNotch1^(25-36)デコイはNotch1 (図52のN1-10)のEGF-様反復25-36を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^NはヒトNotch1シグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図７０で示されるh-sp^NNotch1^(25-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch1シグナル配列であり、ヒトNotch1のアミノ酸1-23からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復25-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸24-508からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸509-745。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は745アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch1^(25-36)デコイ
h-sp^HCNotch1^(25-36)デコイはNotch1 (図52のN1-11)のEGF-様反復25-36を含むヒトNotch1デコイを意味する。略語sp^HC はヒトHcシグナルペプチドがこの形成物に用いられることを意味する。

図７１に示されるh-sp^HCNotch1^(25-36)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch1のEGF-様反復25-36をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-507からなる配列；これに続く（３）ヒトHCタグを含むアミノ酸508-744。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は744アミノ酸を含む。

方法ヒトNotch1デコイ構造
臍静脈内皮細胞(HUVEC)からの総RNAは、ヒトNotch1デコイ変異体を生成するために用いた。総RNAはM-MLV逆転写酵素および無作為六量体プライマーまたはNotch1デコイ特異的プライマーのいずれかで逆転写した。合成されたCdnaはそれからNotch1デコイ特異的上流（センス）および下流（アンチセンス）を使って増幅した。

下流プライマーはフレームヒトNotch1/Fcキメラを生成するためにFC配列のBglIIサイトで結合するであろう５’終端でBamHIまたはBglII選択サイトのいずれかをコード化する。

ヌクレチド配列がEGF-様反復36をコード化した後に融合を発生するNotch1デコイの場合において、BglIIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch1、図４）に供するであろう。これは、形成物；h-Notch1^(1-36)デコイ、h-sp^NNotch1^(9-36)デコイ、h-sp^HCNotch1^(9-36)デコイ、h-sp^NNotch1^(25-36)デコイ,h-sp^HCNotch1^(25-36)デコイに適用する。

ヌクレチドがEGF-様反復13にコード化した後に融合を発生するNotch1デコイの場合において、BamHIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch1、図５）に供するであろう。これは形成物h-Notch1^(1-13)デコイに適用する。

ヌクレチドがEGF-様反復23にコード化した後に融合を発生するNotch1デコイの場合において、BglIIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch1、図６）に供するであろう。これは形成物h-sp^NNotch1^(9-23)デコイ、h-sp^HCNotch1^(9-23)デコイに適用する。

ヌクレチドがEGF-様反復24にコード化した後に融合を発生するNotch1デコイの場合において、BglIIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch1、図７）に供するであろう。これは形成物h-Notch1^(1-24)デコイ、h-sp^NNotch1^(13-24)デコイ、h-sp^HCNotch1^(13-24)デコイに適用する。

増幅されたPCR生成物は異なるヒトNotch1/Fcキメラを生成するためにpBluescript SK II Fcにサブルコーン（sublconed）する。Notch1/Fcデコイ配列はそれから発現およびヒトNotch1デコイタンパク質の精製のために哺乳類発現ベクター(pAd-lox, pCCL, pcDNA3)を往復する。

ヒトNotch4Fusionタンパク質 (Notchデコイ)
Notch4デコイはシグナルペプチド, 全て含むNotch4細胞外ドメイン部分またはEGF-様反復ドメインのサブセット,およびヒトFcタンパク質 (アミノ酸1-237)部分をコードする配列を用いて組み立てる。ヒトNotch4の完全な全長配列を図８３に供する。

利用されるシグナルペプチドは天然Notch4シグナルペプチドか、またはヒトHcシグナルペプチドかいずれかであり、それぞれNotch4領域で融合される。シグナルペプチドはNotchデコイタンパク質の分泌をなす。

使用されるNotch4細胞外ドメインはNotch配位子を結合するために設計され、かつヒトNotch4タンパク質の29EGF-様反復ドメインの全てまたはサブセットからなる。

Fcタグは所望のヒトNotch4の所望EGF-様反復のC-終端で融合し、かつNotch4デコイタンパク質の精製、検出および安定化をなすために貢献する。

ヒトNotch4デコイの全てに亘る設計、１１の形成物、は（１）Notch4デコイタンパク質の分泌をタンパク質を生産するために用いられる真核細胞の細胞外媒体に対してなすためのシグナルペプチド、（２）Notch 配位子と関連させるための全ての細胞外ドメイン部分またはヒトNotch4のEGF-様反復部分、および（３）検出させるためのヒトFcタンパク質部分に対してコード化するためである。

ヒトNotch4デコイの次の１１の形成物は説明され、かつ図１１１に図示される。

1) h-Notch4^(1-29)デコイ (図111のN4-1)
2) h-Notch4^(1-13)デコイ (図111のN4-2)
3) h-Notch4^(1-23)デコイ (図111のN4-3)
4) h-sp^NNotch4^(9-23)デコイ (図111のN4-4)
5) h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイ(図111のN4-5)
6) h-sp^NNotch4^(9-29)デコイ (図111のN4-6)
7) h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイ(図111のN4-7)
8) h-sp^NNotch4^(13-23)デコイ (図111のN4-8)
9) h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイ (図111のN4-9)
10)h-sp^NNotch4^(21-29)デコイ (図111のN4-10)
11)h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイ (図111のN4-11)ヒトNotch4配列
aa残基2003(K =リシン)に対してaa残基1 (M =メチオニン)からなるヒトNotch4全長アミノ酸配列は図８３に示す。シグナルペプチドおよび第１の29EGF-様反復ドメインはこの配列のaa 1-1174に表す。アミノ酸1-1174、またはこれらのaaサブセットはヒトNotch4デコイタンパク質の設計に利用し、次のセクションで説明する。EGF-反復1-29を含むアミノ酸は下線を引く。

Notch4デコイタンパク質上のFcタグを生成するために利用されるヒトFc配列
図８４に示される、ヒトFc の237アミノ酸はまさにNotch4EGF-様反復の下流で、全てのNotch4デコイのＣ−終端で融合した。ヒトFcのこの領域はNotchデコイの検出および精製をなし、かつ分泌ヒトNotch4-ヒトFc融合タンパク質を安定化するために貢献する。

Notch4デコイタンパク質に利用されるシグナルペプチド
２つの特異なシグナルペプチド配列はヒトNotch4デコイタンパク質の設計に組み込まれる。第１はヒトNotch4のアミノ酸1-24を含むために予測するシグナルペプチドである。この測定は、デンマークのTechnical Universityによって提供されるシグナルIP 3.0サーバプログラムを用いてなされた。第２はヒトHCシグナルペプチドのアミノ酸1-22を含むために予測されるヒトHcシグナルペプチドである。

1.ヒトNotch4シグナルペプチド (aa 1-24)
MQPPSLLLLLLLLLLLCVSVVRP/R (配列番号104)
予測されるヒトNotch4シグナルペプチドのアミノ酸配列は図１１２に図示される。デンマークのTechnical Universityによってオンラインで提供されるシグナルIP 3.0サーバを利用する分析の予測結果は図１１２に示される。これらの結果は、プロリン23 (A23)およびアルギニン24 (R24)の間に位置される開裂の多数サイトを予測する。開裂サイトは上に供される、ヒトNotch4のアミノ酸配列1-24に“／”によって示す。

２．このシグナル配列に利用されるNotch4デコイに利用されるヒトNotch4シグナルペプチド融合ペプチド(aa 1-27)
Notch4シグナルペプチドが十分に利用されることを確かめるために、開裂の予測される少数サイトを越える３つの付加アミノ酸がヒトNotch4デコイに提供される。したがって、Notch4シグナルペプチドを組み込むヒトNotch4デコイ形成物で利用されるアミノ酸配列は以下に示すように予測シグナルペプチド開裂のサイトとNotch4 EGF-様反復の間のグリシン−プロリン−アルギニン(GPR-太字／下線引き)を含む。

MQPPSLLLLLLLLLLLCVSVVRPRGLL (配列番号131) 3.ヒト HC シグナルペプチド (aa 1-22)
予測ヒトHcシグナルペプチドのアミノ酸配列は、MWGWKCLLFWAVLVTATLCTA/R (配列番号17)である。

h-Notch4^(1-29)デコイ
h-Notch4^(1-29)デコイはNotch1 (図111のN4-1)のEGF-様反復1-29を含むヒトNotch4デコイを意味する。

h-Notch4^(1-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-1173からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸1174-1410。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1410アミノ酸を含む。

h-Notch4^(1-13)デコイ
h-Notch4^(1-13)デコイはNotch1 (図111のN4-2)のEGF-様反復1-13を含むヒトNotch4デコイを意味する。

h-Notch4^(1-13)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-13をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-554からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸555-791。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は791アミノ酸を含む。

h-Notch4^(1-23)デコイ
h-Notch4^(1-23)デコイはNotch1 (図111のN4-3)のEGF-様反復1-23を含むヒトNotch4デコイを意味する。

h-Notch4^(1-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復1-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-933からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸934-1170。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1170アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch4^(9-23)デコイ
h-sp^NNotch4^(9-23)デコイはNotch1 (図111のN4-4)のEGF-様反復9-23を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^NNotch4^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-602からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸603-839。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は839アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイh-sp^HCNotch4^(9-23)デコイはNotch1 (図111のN4-5)のEGF-様反復9-23を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^HCは、ヒトHcシグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-597からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸598-834。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は834アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch4^(9-29)デコイh-sp^NNotch4^(9-29)デコイはNotch1 (図111のN4-6)のEGF-様反復9-29を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^NNotch4^(9-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-843からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸844-1080。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1080アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイ
h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイはNotch1 (図111のN4-7)のEGF-様反復9-29を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^HCは、ヒトHcシグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復9-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-838からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸839-1075。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は1075アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch4^(13-23)デコイ
h-sp^NNotch4^(13-23)デコイはNotch1 (図111のN4-8)のEGF-様反復13-23を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^NNotch4^(13-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復13-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-444からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸445-681。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は681アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイ
h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイはNotch1 (図111のN4-9)のEGF-様反復13-23を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^HCは、ヒトHcシグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復13-23をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-439からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸440-676。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は676アミノ酸を含む。

h-sp^NNotch4^(21-29)デコイ
h-sp^NNotch4^(21-29)デコイはNotch1 (図111のN4-10)のEGF-様反復21-29を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^Nは、ヒトNotch4シグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^NNotch4^(21-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトNotch4シグナル配列であり、ヒトNotch4のアミノ酸1-27からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復21-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸28-392からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸393-629。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は629アミノ酸を含む。

h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイ
h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイはNotch1 (図111のN4-11)のEGF-様反復21-29を含むヒトNotch4デコイを意味する。略語sp^HCは、ヒトHcシグナルペプチドがこの形成物を用いることを意味する。

h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイタンパク質は以下の３つの成分からなる：（１）ヒトHCシグナル配列であり、ヒトHCのアミノ酸1-22からなる配列；これに続く（２）ヒトNotch4のEGF-様反復21-29をコードするアミノ酸であり、アミノ酸23-387からなる配列；これに続く（３）ヒトFcタグを含むアミノ酸388-624。予測されるシグナルペプチド配列に下線を付し、ヒトFcタグに下線を付してイタリックで示す。この形成物は624アミノ酸を含む。

方法ヒト Notch4デコイ構造
臍静脈内皮細胞(HUVEC)からの総RNAは、ヒトNotch4デコイ変異体を生成するために用いた。総RNAはM-MLV逆転写酵素および無作為六量体プライマーまたはNotch4デコイ特異的プライマーのいずれかで逆転写した。合成されたcDNAはそれからNotch4デコイ特異的上流（センス）および下流（アンチセンス）を使って増幅した。

下流プライマーはフレームヒトNotch4/Fcキメラを生成するためにFC配列のBglIIサイトで結合するであろう５’終端でBamHIまたはBglII選択サイトのいずれかをコード化する。

ヌクレチド配列がEGF-様反復29をコード化した後に融合を発生するNotch4デコイの場合において、BglIIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch4、図１１３）に供するであろう。これは、形成物；h-Notch4^(1-29)デコイ,h-sp^NNotch4^(9-29)デコイ,h-sp^HCNotch4^(9-29)デコイ,h-sp^NNotch4^(21-29)デコイ,h-sp^HCNotch4^(21-29)デコイに適用する。

ヌクレチドがEGF-様反復13にコード化した後に融合を発生するNotch4デコイの場合において、BamHIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch4、図１１４）に供するであろう。これは形成物h-Notch4^(1-13)デコイに適用する。

ヌクレチドがEGF-様反復23にコード化した後に融合を発生するNotch4デコイの場合において、BglIIサイトは融合サイトを創るために生成され、かつこの融合配列を（Notch4、図１１５）に供するであろう。これは形成物h-Notch4^(1-23)デコイ,h-sp^NNotch4^(9-23)デコイ,h-sp^HCNotch4^(9-23)デコイ,h-sp^NNotch4^(13-23)デコイ,h-sp^HCNotch4^(13-23)デコイに適用する。

増幅されたPCR生成物は異なるヒトNotch4/Fcキメラを生成するためにpBluescript SK II Fcにサブクローン（sublconed）する。Notch4/Fcデコイ配列はそれから発現およびヒトNotch4デコイタンパク質の精製のために哺乳類発現ベクター(pAd-lox, pCCL, pcDNA3)を往復する。

［第２のシリーズの実験］
材料および方法
プラスミド構成物
LacZ、完全長Notch4、または活性型Notch4/int3をコードするアデノウイルス構成物は以前に記載されている(Shawber et al., 2003)。6mycタグ(Kopan et al., 1994)を有するフレームに融合された活性型Notch1 cDNAをアデノウイルス発現ベクターであるpAd-loxにクローニングした。VEGF165およびN1ECDFcの両方もまた、当該pAd-loxにクローニングした。アデノウイルスストックを作成し、以前の記載の通り力価を求め (Hardy et al., 1997)。LacZ、活性型Notch4/int3、J1、Dll1およびDll4の何れかをコードするレトロウイルス発現ベクターpHyTcは以前に記載されている(Uyttendaele et al., 2000, Shawber et al., 2003, Das et al., 2004 in print)。Myc/Hisタグを有するフレームに融合されたNotch1（bp 5479-7833, Genbank accession# X57405）の細胞内ドメインおよびDll4の細胞外ドメイン（bp 1-1545, Genbank accession# AF253468, provided by Chiron）をコードするプラスミドをpHyTcに操作した。

Clin. Exp. Immunol. (1992) 87(1):105-110に記載される方法を使用して、Notch1ECD、Notch2ECD、Notch3ECDおよびNotch4ECDを、プラスミドpCMX- sFR1-IgGに含まれるFc配列を使用して操作して、Notchに基づく融合タンパク質、即ち、Notch1ECD/Fc、Notch2ECD/Fc、Notch3ECD/FcおよびNotch4ECD/Fcを作成する。

アデノウイルス遺伝子導入
アデノウイルス感染の前日に、３代目の7.5x10⁵ 細胞のHUVECをI型コラーゲンコーティング６ウェルプレートに播種した。Ad-LacZ、Ad-VEGF165またはAd-N1ECDFcでのアデノウイルス感染を記載されるm.o.i.で行い、37℃で１時間、時々プレートを回旋しながらインキュベートした。

ルシフェラーゼレポーターアッセイ
リガンド誘導性Notchシグナリングを決定するために、Helaおよび293由来Bosc細胞を使用する共培養アッセイを行った。一過性のトランスフェクションをリン酸カルシウム沈殿により行った。１日前に10cmプレートに1.5x10⁶で播種されたHela細胞を、333ngのpBOSNotch1、333ngのpGA981-6、および83ngのpLNC lacZを用いて、666ngのpCMV-FcまたはpHyTC-N1ECDFcの何れかと共にトランスフェクトした（x1には333ng、x2には666ng）。１日前に10cmプレートに4x10⁶で播種されたBosc細胞を、680ngのpHyTc-Jagged1、pHyTc-Dll1、pHyTc-Cll4またはpHyTc-x（空ベクター）の何れかでトランスフェクトした。トランスフェクションの１日目に、細胞を、12ウェルプレートで24時間に亘りトリプリケートで共培養した(HeLa:Bosc, 1:2)。細胞を採取し、トランスフェクション後２日目をエンハンスドルシフェラーゼアッセイキット（the Enhanced Luciferase assay kit (BD PharMingen)）を使用してルシフェラーゼ活性を測定し、β-ガラクトシダーゼ活性をガラクトライトプライスキット（the Galacto-Light Plus kit (PE Biosystems)）を用いて測定した。全てのアッセイは、バースオールド・デュアル-インジェクション・ルミノメーター（Berthold dual-injection luminometer）において行った。

VEGF誘導性Notchシグナリングの決定のために、アデノウイルスで感染させたHUVECを使用した。１日前に６ウェルプレートに8.0x10⁵で播種されたHUVECを、記載されるとおりのm.o.i.でコントロールとしてのAd-LacZまたはAd-VEGFの何れかで、Ad-N1ECD/Fcの存在または不在において感染させた。感染後２日目、感染させたHUVECを２４ウェルプレートにトリプリケートで1.5 x 10⁵細胞で再播種し、２４時間に亘り培養し、次に12.5ngのpRL-SV40（Promega）および137.5ngのpGA981-6をエフェクテン・トランスフェクション・試薬（Effectene transfection reagent (Qiagen)）を用いてトランスフェクトした。細胞をトランスフェクションの１日後または２日後の何れかで採取し、ルシフェラーゼ活性を、デュアル-ルシフェラーゼ（登録商標）レポーターアッセイシステム（Dual-Luciferase Reporter Assay System (Promega)）を使用して測定した。

発芽アッセイ
コラーゲンゲルを作るために、ブタI型コラーゲン（Nitta gelatin, Tokyo, Japan）の氷冷溶液を10xTPMI1640培地および中和バッファーと、8:1:1で混合した。400μＬアリコートのコラーゲンゲルを次に24ウェルプレートに加え、少なくとも１時間に亘り37℃でゲル化した。（上記の）アデノウイルス感染に続いて、HUVECを採取し、１ウェル当たり1.3x10⁵細胞で、0.8mLのEGM2培地中で24ウェルプレート中のコラーゲンゲルの上から播種した。HUVECは、播種後48時間で殆どコンフルエントになった。播種後、培地を１週間に亘り2日毎に交換した。発芽を観察し、顕微鏡に搭載されたオリンパスデジタルカメラで８日後に写真を撮影した。発芽の数を定量化するために、各ウェル当たり5視野を無作為に選択し、二人の研究者により盲検法で顕微鏡下で発芽をカウントした。

結果および考察
NOTCHECD/FC融合タンパク質
Notchのアンタゴニストとしての機能
Notchアンタゴニスト-NotchECD/Fc融合タンパク質
我々は、幾つかのNotchアンタゴニストを作成した（図２）。我々の戦略は、ヒトまたはマウスFcドメインに対して細胞外ドメイン（ECD）中のNotchEGF反復をコードする配列を融合するためのものである。この設計は、シグナリング機能は伴わないが、リガンド結合ドメインを保持し、従って、リガンドに結合してリガンド機能を阻害する分泌タンパク質を作る。我々は、これらのタンパク質を「NotchECD/Fc」と呼び、４つ全てのNotch-4ECD/Fcを作成している。Fcドメインは、イムノブロットまたは免疫組織化学によるアフィニティ精製とタンパク質検出を容易にする。

Notchアンタゴニストの試験
１つの細胞において発現されたリガンドともう１つの細胞において得られたNotchレセプター活性化とを有するインビトロ共培養系（図３）を使用して、Notch経路の転写性活性化を測定した。我々は、この共培養アッセイを使用して、Notch1ECD/Fc機能がリガンド依存性Notchシグナリングを阻害することを示した（図４）。N1ECD/Fc発現ベクターを、HeLa細胞中で異なる比率で完全長Notch1とCSL-ルシフェラーゼレポーターと共トランスフェクトし、次にリガンド発現293細胞と共培養した。我々は、NotchリガンドによるNotch1シグナリングの活性化がN1ECD/Fc発現により減少したことを観察した。この効果は、濃度依存性を示した；N1ECD/FcのNotch1に対して2:1の比率は、1:1の比率よりもシグナリングの阻害においてより効果的であった。Notch1ECD/Fcは、Jagged1、Delta1様1またはDelta様4により媒介されるシグナリングを阻害できた。

Notchアンタゴニストの発現および精製
我々は、タンパク質精製の目的のためにレトロウイルスベクターを使用してNotchECD/FCを発現するCHOおよびHeLa細胞株を作成した。HeLa-NotchECD/Fc株から回収された上清において示される通り、N1ECD/Fcタンパク質が分泌され（図５）、タンパク質A(pA)アガロースで精製される。pA精製サンプル（Sup）および全細胞溶解物（Lys）をα-Fc抗体とイムノブロットし（図５、パネルA）、N1ECD/Fcが培地に分泌されることを示した。NotchECD/Fcのためのアデノウイルスベクターを使用してHeLa細胞を感染し、これらの細胞からの溶解物をα-Fc抗体とイムノブロッティングし、それらがNotchECD/Fc（1、2、3、4）タンパク質を発現していることを示した(図5、パネルB)。我々は、現在、pAアフィニティクロマトグラフィを使用してCHO細胞培養上清からN1ECD/Fcを精製している。

Notch融合タンパク質を使用した脈管形成の阻害の定義
Notchシグナリングの活性化はCBF1プロモーター活性を用いることにより検出できる。Notchシグナリング機能を、CBF1プロモーターの転写性活性を測定することにより測定でき、これはNotch-ICのCBF1への結合により活性化される。我々は、異なるMOIでVEGF-165をコードするアデノウイルスで感染されたHUVECにおけるCBF1プロモーター活性を測定した(図6)。CBF1プロモーターの導入は、MOIに依存する様式で、Ad-LacZ感染細胞に比較して、Ad-VEGF感染HUVECにおいてはっきりと検出された。このデータはVEGFの過剰発現がHUVECにおけるNotchシグナリングを活性化できたことを示した。従って、VEGFはNotchシグナリング活性を誘導した。

我々は、Notch融合タンパク質がNotchシグナリングのVEGF誘導性の活性化を阻害できるか否かを求めた。Ad-Notch融合タンパク質とAd-VEGFとの重感染は、Ad-VEGF感染単独により誘導されるCBF1プロモーター活性の活性化を明らかに低下した（図７）。図７において各アデノウイルスについて40MOIでの感染の場合において、レポーター遺伝子のトランスフェクション後24時間では60％阻害、48時間では90％の阻害が検出され、また、Notchデコイの阻害活性はAd-Notch融合タンパク質のMOIに依存した。

Notch融合タンパク質はVEGFにより誘導された血管形成性の発芽の開始を阻害する
この実験において、我々は、HUVECにおいて過剰発現したVEGFによる発芽の誘導（発芽の開始）におけるNotchデコイの効果を評価した。Ad-VEGF感染HUVECを型コラーゲンゲルにおいて8日間培養した場合、発芽がコラーゲンゲル中に誘導された。過剰発現されたVEGFによるこの発芽の誘導は、Notch融合タンパク質をコードするアデノウイルスの重感染により明らかに阻害された（図８）。Ad-Notch融合タンパク質自身は形態学上の小さな影響を有していた。

図９において、我々は顕微鏡を使用して視野当たりの芽をカウントした。HUVECへのAd-VEGF感染は、使用したMOIに依存して芽の数を増加した。Ad-VEGF誘導性発芽は明らかに阻害された。これらのデータは、VEGFがNotchシグナリングの活性化によりHUVECの発芽を誘導したこと、およびNotch融合タンパク質がVEGF誘導性の発芽を阻害できたことを示唆する。

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［第３のシリーズの実験］
VEGFは、Notchシグナリングを介して脈管形性を阻害する
VEGFとNotchシグナリング経路の両方が血管の発生のためには重要である。ここで、我々はVEGFがNotchシグナリングを活性化して脈管形成を開始することを示す。VEGFは、Delta4およびNotch4の発現を増大し、Notchシグナリング活性化を生じ、培養された初代内皮細胞における糸状仮足を誘導する。VEGFレセプター阻害剤を使用する研究は、Notchシグナリング活性が、VEGF-1（Flt-1）発現を誘導することにより次々にVEGFの作用を増強することを示す。VEGF作用の他の成分は、MMP-9およびMT1-MMPの誘導を含み、Notchにより媒介される。VEGF誘導性皮膚新血管新生のモデルのためのインビボアッセイを用いて、我々は分泌されたNotch阻害剤（Notchに基づく融合タンパク質）がVEGF誘導性新血管新生とVEGFR-1発現の誘導をを阻害することを発見した。このように、Notchシグナリングは、恐らく開始の段階で、VEGFにより調節される脈管形成のためになくてはならない。

VEGFは、ECMの分解、発芽（糸状仮足の形成）、増殖、生存および内皮細胞の遊走などの複数の過程からなる脈管形成発達の重要な制御因子である。殆どの段階は、VEGFシグナリングの下流の分子と協同しているのだろうが、これらの段階が、どのような経緯で調節されて、血管原性の発芽などのより複雑な形態形成の現象を起こすのかは知られていない。Notchシグナリングは、進化的に保存された細胞運命決定を制御するために機能するシグナリング機構である（１）。Jagged1およびDelta様などのリガンドによる結合において、Notch（NotchIC）の細胞質内のドメインはプレセニリン/γ-セクレターゼにより放出され、核に転位置し、転写性のリプレッサーCSL（CBF1/Su(H)/lag2）と相互作用し、それを転写性のアクチベーターに変換する（１）。Notchシグナリングの血管発生における役割は、標的変異を有するマウスの研究により示唆された（２）。内皮におけるNotch活性化はまた血管リモデリングを崩壊することから、適切なNotchシグナリングは血管発生のために必須である（３）。NotchのVEGFシグナリングに対する関連性は示唆されているが（4-6）、NotchシグナリングがVEGF調節性の脈管形成においてどのような役割を有しているのか、Notchシグナリングが成人の脈管構造における生理的および病理学的な脈管形に関係しているのか否かは、成未だにはっきりしない。

HUVEC（ヒト臍帯静脈内皮細胞）の増殖は、VEGF（図２６Aおよび２６B）および発芽などの分化関連性の生物応答に依存しており、初期の段階で評価できる（７）。最初に、我々は、報告（５）通り、アデノウイルスで形質導入されたVEGFが、bFGFを含む完全培地で培養されたHUVECにおいてNotchおよびNotchリガンド発現の両方を誘導するのか否かを試験した（図２）。RT-PCR分析は、Dl4およびNotch4 mRNAの両々が、アデノウイルスで形質導入されたVEGF HUVEC（Ad-VEGF-HUVEC）において、アデノウイルスで形質導入されたLacZ HUVECに比べて上方制御されたことを示した（図２２A）。形質導入されたVEGFは、Jagged1およびNotch1を誘導しているようには見えなかった。CSLルシフェラーゼレポーター活性で、形質導入されたVEGFはまた、Notchシグナリングを用量依存性に活性化し（図22B）、これはNotchシグナリングでトランス活性化された（８）。Notchシグナリングは、増殖に比べて、より高い用量のAd-VEGFで活性化された（図２６A）。VEGFRキナーゼの阻害剤であるSU5416がVEGF誘導性CSLルシフェラーゼレセプター活性を低減したことから（図２２C）、VEGFはNotchシグナリングをレセプターキナーゼの活性化により誘導した。膜貫通および細胞質内ドメインの両方を欠失しているNotch変異体が、Notchシグナリングに対するドメイン陰性阻害剤として機能したことから（９）、我々はNotchシグナリングを阻害するためのNotchに基づく融合タンパク質またはデコイ（N1ECDFc）を作成した（図２２D）。Ad-N1ECDFc形質導入性HUVECの培養上清のウェスタンブロット分析は、N1ECDFcが発現されてウェルに分泌されたことを示した（図２２E）。そこにおいてNotchリガンド（J1、Dl1またはDl4の何れか）を発現しているBosc細胞が、Notch1を発現しているHeLa細胞において、コントロールBosc細胞と比較してNotchシグナリングを活性化している共培養アッセイ使用することにより、我々は、N1ECDFc発現プラスミドのトランスフェクションでのNotchシグナリングの阻害を測定した（図２２F）。次に、我々は、N1ECDFcが、HUVECに形質導入されたVEGFによるNotchシグナリングの活性化を阻害するか否かを試験した（図２２G）。HUVECへのAd-VEGFとのAd-N1ECDFcの同時形質導入は、VEGFにより誘導されるCSLルシフェラーゼ活性を明らかに減少した。Gerhardtら（Gerhardt et al.）は、VEGFが、血管性発芽の先端での糸状仮足伸展を導くことによって初期の出生後網膜における脈管形成を制御したことを報告した（１０）。血管原性の発芽の間に、静止状態の内皮細胞の間に糸状仮足の突出を起こす分化した内皮細胞の形成が、１つの初期の現象であるかもしれない。ここで、我々は、糸状仮足突出を起こしている単一の内皮細胞の形成を発芽という。初代内皮細胞の発芽は、それらをフィブリンまたはコラーゲンゲル上で３次元で培養することにより誘導される（１１）。Ad-VEGF-HUVECが完全培地と共にコラーゲンゲル上で培養される場合に、形質導入性HUVECは5日間でコラーゲンゲルに糸状仮足の伸展を起こし（図２２H）、芽の数は用量依存性に増加した（図２７A）。活性型Notch4をコードするアデノウイルス(Ad-Notch4/int3)によるNotchシグナリングの活性化は、HUVECの発芽を誘導し（１２）、またNotch1のそれは(Ad-N1IC)もまた、HUVECの発芽を誘導した（図２３Aおよび２７B）。VEGFおよびNotchシグナリングの両方がHUVECの発芽を誘導することから、我々は、N1ECDFcがVEGF誘導性HUVECの発芽を阻害したのか否かを試験した（図２２H-I）。Ad-VEGF-HUVECの発芽は、Ad-N1ECDFcの同時形質導入により明らかに阻害された。Ad-LacZまたはAd-N1ECDFc形質導入性HUVECは、何れも芽を形成しなかった（図２２H）。N1ECDFcは、細胞数に影響することなくVEGF誘導性HUVECの発芽を阻害した（図２２I）。形質導入されたN1ECDFcは、HUVECの増殖を明らかには変化させない一方で、Ad-N1IC形質導入性HUVECのそれは用量依存性に阻害され（図２８A）、内皮増殖に対するNotchシグナリングの阻害効果と一致する（１３）。

NotchシグナリングがVEGFの下流であるのか否かを試験するために、我々は、N1IC誘導性HUVECの発芽においてVEGFRを含むチロシンキナーゼレセプターのための３つの異なる阻害剤を評価したが、これは３つの成長因子が完全培地に存在するからである（図２３A-C）。１μMの濃度で、各化合物は、各キナーゼに対する選択的阻害を示した（データに示さず）。PD166866またはZD1893の何れもAd-N1IC-HUVECの発芽には影響を示さなかったが、SU5416は明らかにそれを阻害した（図２３A-B）。SU5416は、より低い濃度で生存度をより減少すると共にAd-N1IC-HUVECの発芽を選択的に阻害した（図２３C）。Taylorら（Taylor et al.）が、NotchはFlk1/KDR/VEGFR2発現を下方制御することを報告していることから（１４）、NotchはFlk1と協同して発芽を促進することはなさそうである。従って、我々は、Notchシグナリングの活性化が、HUVECにおけるFlt1/VEGFR1発現に影響するのか否かを試験したが、これはSU5416がFlt1およびFlk1キナーゼ活性を阻害するからである（15）。RT-PCR分析は、Flt1 mRNAの発現がAd-N1IC-HUVECにおいて下方制御されることを示したが、一方で、内皮細胞メーカー（endothelial cell maker）であるCD31 mRNAの発現は、Ad-LacZ-HUVECにおけるそれには匹敵しなかった（図２３D）。ウェスタンブロット分析も、Flt1タンパク質の発現がAd-N1IC-HUVECにおいて上方制御されたことを示した（図２３E）。従って、我々は、Flt1のための選択的リガンドであるPlGFが、Notchシグナリングの活性化を介してFLt1の上方制御されているHUVECの発芽を促進するか否かを試験した(図23F-G)。PlGFは、Ad-N1IC-HUVECの芽の数を、PlGFの不在する場合に比較して150％に増大した（図２３F）。更に、PlGFは複数の糸状仮足を含むHUVECの芽を250％に増加した（図２３G）。Flt1のための小型干渉RNA（siRNA）を用いたFlt1発現の減少がAd-N1IC-HUVECの発芽を阻害する一方で(図23J)、そのトランスフェクションは選択的にFlt1 mRNAの発現とFlt1タンパク質の発現を減少した(図23I)。Flk1 siRNAでのFlk1発現の減少もAd-N1IC-HUVECの発芽を抑制したが(図30B)、Flk1 siRNAの阻害効果はFlt1 siRNAのそれよりも小さかった（図２３J）。Flk1 siRNAの効果は、Ad-N1IC-HUVECのそれよりもAd-VEGF-HUVECの発芽においてより効果的であった（図３０B-C）Flt1 siRNAでのトランスフェクションは、Ad-N1IC-およびAd-VEGF-HUVECの両方の発芽を同じ程度まで阻害した(データには示さず)。幾つかの研究は、VEGFが、内皮細胞におけるゼラチナーゼ活性を調節し、MMP-2およびMMP-9のような有意なゼラチナーゼ活性がしっかりと確立されて血管原性の発芽を誘導したことを示した（１６）。我々はVEGFがHUVECにおいてNotchシグナリングを介するゼラチナーゼ活性を制御するか否かを試験した。

ゼラチン酵素電気泳動法において、Ad-VEGF-HUVECの培養上清は、MMP9の誘導および活性化の両方を示し、これは６日目で検出され始め（図２４A）、MMP2の活性は４日目で検出され（図２４B）、これらをAd-LacZ-HUVECの結果と比較した。Ad-N1ECDFcとAd-VEGFの同時形質導入は、MM9の誘導および活性の両方について阻害を示し（図２４A）、並びにMMP2の活性についても阻害した（図２４B）。RT-PCR分析は、MMP9 mRNAの発明がAd-N1IC-HUVECにおいて上方制御されたが、MM2 ｍRNAはAd-N1IC-HUVECにおいて減少したことを示した（図２４C）。MMP2活性の誘導は、ゼラチン酵素電気泳動法で検出されなかったので（図２４B）、この結果はおそらく結論であろう。一方で、細胞表面でMMP2を活性化できる（17）MT1-MMPの発現は、Ad-N1IC-HUVECにおける転写性およびタンパク質レベルの両方で上方制御された（図２４D）。VEGFはゼラチナーゼおよびMT1-MMP発現の両方を調節できることから（１６）、RT-PCR分析は、MMP9およびMT1-MMPの両方がAd-VEGF-HUVECにおいて、Ad-LacZ-HUVECと比較して上方制御され、この誘導はAd-N1ECDFcの同時形質導入で阻害されたことを示した（図２４E）。Ad-N1ECDFc感染単独は、Ad-LacZ感染性HUVECにおけるMMP9またはMT1-MMPの何れの発現にも影響しなかった（データには示さず）。脈管原性の発芽のためのMMPの要求性は合成MMP阻害剤によって確立された(16)。GM6001は、MMP2、MMP9およびMT1-MMPを含むMMPに対する1つの広い阻害剤である。GM6001は、明白にコラーゲン(図31A-B)およびフィブリンゲル(データには示さず)の両方においてAd-N1IC-HUVECの出芽を減少させた。

マウス背部気嚢(Dorsa Air Sac；DAS)アッセイにおいて（19）、VEGF121(293/VEGF)を過剰発現する293細胞の安定したトランスフェクタントは、インビボの脈管形成を有意に誘導した(図25A、左側パネル)。このVEGF誘導性脈管形成は、293/VEGF単独に(図25A)比較して、N1ECDFcの同時発現によって明らかに阻害された。血管密度を測定し、図25Bの中で示された脈管形成のインデックスは、293/VEGF誘導性脈管形成を、293/N1ECDFcの共発現により阻害することを示す(図25B)。

また、マウス背部気嚢(Dorsa Air Sac；DAS)アッセイにおいて（19）、ヒト乳癌細胞株、MDA-MB-231は、恐らくVEGFの分泌によって有意にインビボの脈管形成を誘導した(図25C、左側パネル)。このVEGF誘導性脈管形成は、LacZを発現するアデノウイルスと比較して、N1ECDFcのアデノウイルスを媒介とした発現によって明らかに阻害された(図25C)。血管密度が測定され、図25Dの中で示された脈管形成のインデックスは、MDA-MB-231誘導性脈管形成がN1ECDFcの発現によって阻害することを示す。

Flk1は、胎芽におけるその強いチロシンキナーゼ活動による脈管形成のための主な陽性シグナルトランスデューサーであり、その一方で、Flt1は、脈管形成の陰性シグナルトランスデューサーであると考えられている。しかしながら、PlGF2を過剰発現するLLCのインビボの成長が、細胞質のFlt-1キナーゼドメインを欠失するマウスにおける厳しく損なわれたので、Flt-1についての陽性の役割は成体マウスにおいて示された（２０）。PlGF/Flt-1シグナリングがFlk-1のリン酸化部位を変更し、虚血の心筋の脈管形成を強めたので（２１）、Notchは、糸状仮足の伸張を誘導するか、または脈管原性の発芽を強めるかの何れかのためにFlt-1シグナリングを誘導すること、およびFlk-1シグナリングを和らげることにより、VEGFシグナリングを変えるために機能するのかもしれない。興味深いことに、Notchシグナリングは、PlGF発現を上方制御した(図29)。しかしながら、以前に(22)を報告された通り、Notchシグナリングの連続的な活性化は、脈管原性の発芽を含む多細胞ルーメンの形成を阻害する。Notchシグナリングは、出芽/糸状仮足形成の後に切られるべきであり、Notch経路の一時的な活性化が要求される。

腫瘍脈管形成がVEGF依存性である膵臓のβ細胞発癌(Rip1Tag2マウス)のトランスジェニックマウスモデルにおいて、VEGF発現のレベルは増加しないが、VEGFレセプターへのマトリックスに蓄えられた細胞外VEGFの動員が生じる。MMP-9はこの動員の原因であり、腫瘍発生はRip1Tag23MMP-9-ヌルダブル-トランスジェニックマウスにおいて阻害された(23)。NotchはMMP-9発現を上方制御し、血管原性の発芽のための部位での局所的なVEGFレベルを増加するかもしれない。NotchはさらにMT1-MMP発現を上方制御しているが、細胞外MMP-2はNotch活性化ないHeLa細胞の細胞膜に対するターゲットとされている可能性がある。Notchは、ゼラチナーゼ活動およびVEGF濃度の調節による脈管原性の発芽のための部位を決定するかもしれない。内皮のMMP-9が肺特異的転移（２０）においてFlt-1によって調節されたので、Flt-1は、MMP-9の誘導に間接的に関与するかもしれない。

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［第４のシリーズの実験］
Notch1外部ドメイン由来の新規構成物はNotchシグナリング、内皮形態形成および腫瘍脈管形成を阻害する
Notchシグナリングは血管発生のために必要であり、腫瘍脈管形成においても機能する。血管内皮成長因子(VEGF)の抑制は、有効になった抗脈管形成治療法であり、VEGFは、内皮細胞（EC）におけるNotchおよびNotchリガンドDeltay様4（Dll4）発現の両方を誘導できる。Dll4の阻害は、腫瘍増殖を制限し、新生血管を崩壊することができるが、腫瘍脈管形成におけるNotchレセプター機能を阻害する効果はまだ明らかにされていない。この研究において、我々は、この経路を阻害するためにNotch1レセプターの可溶性融合タンパク質(N1ECDFcまたはNotch1デコイ)を生成し、インビトロおよびインビボでの脈管形成におけるその効果を評価した。Notch1デコイ発現は、3つの異なるNotchリガンドのNotch1に対する結合により刺激されたシグナリングを減少し、更にNotch4を過剰発現するECの形態形成を阻害した。我々は、2つのモデル：繊維芽細胞増殖因子4を過剰発現するマウスの乳腫瘍Mm5MT細胞(Mm5MTFGF4)およびNGPヒト神経芽細胞腫細胞：を使用して、腫瘍脈管形成におけるNotch1デコイ発現の影響を試験した。外因的に発現されたFGF4は、Mm5MT-FGF4細胞においてNotchリガンドJagged1およびDelta様1(Dll1)の発現を誘導し、Jagged1はMm5MT-FGF4異種移植片において発現された。Notch1デコイの過剰発現は、Mm5MT-FGF4細胞の腫瘍形成性にインビトロで影響しなかったが、マウスにおけるMm5MT-FGF4異種移植片の増殖を制限したが、一方で、著しく新脈管形性を損なった。同様に、Notch1デコイ発現はインビトロのNGP細胞に影響せず、しかし血管を崩壊し、NGP異種移植片における腫瘍生存能力を減少した。これらの結果は、Notchレセプターシグナリングが腫瘍新脈管形成のために必要であること、腫瘍治療のための新しい標的を提供することを強く示唆する。

脈管形成は、VEGF、繊維芽細胞増殖因子(FGF)および肝細胞成長因子(HGF)を含む多数のシグナル経路によって精巧に調節される。これらの中で、VEGFは、内皮増殖、生存およびチューブ形成を含む脈管形成の段階ほとんどすべてに臨界的に影響を及ぼす(1)。この変化し続ける役割と一致して、VEGF阻害剤は、前臨床のモデルにおける脈管形成を低減し、癌治療として臨床的に有効になった(2)。この確立された効能にもかかわらず、異なる腫瘍タイプは、VEGF遮断に広い感受性の変化を示す(2)。この可変性の根本的な理由は明らかではない。1つの可能性は、代替のシグナルがVEGF阻害にもかかわらず灌流を可能にして、腫瘍血管を救済するということである。従って、そのような経路の検証が明らかに治療上の重要性である。

高度に保存されたNotch遺伝子ファミリーは膜貫通レセプター(Notch1、-2、-3、-4)およびリガンド(Jagged1、-2;デルタ様またはDll1、-3、-4)、および膜貫通型タンパク質をコードする。リガンド結合に際して、Notchの細胞質ドメイン(NotchIC)はプレセニリン/γセクレターゼによって放出される(3)。Notchシグナリングは、致命傷を引き起こすDll4のハプロ不全と共に、胎芽の重篤な血管の欠陥を生ずる(4)。腫瘍脈管形成におけるNotchシグナリングの潜在的な役割はこのように多くの新しい興味を起こさせる。Dll4リポーター構成物のためのトランスジェニックマウスは、腫瘍内皮細胞(EC)において発現を示し(5)、増加したDll4発現は、ヒト癌において検出されている(6、7)。Dll4遮断が実験的腫瘍における増殖と灌流を抑制する(8と9)ことを示していることによりこの役割が重要であることを最近の2つの報告は確証する。興味をそそるのは、これらの研究において、Dll4阻害は、単に血管増殖を防ぐだけではなく、腫瘍血管を混乱させ、Dll4が機能的な血管アッセンブリのために必要であることを示唆する。

最近のデータは、Notchレセプターが腫瘍血管においても機能することを示す。例えば、頭頸部扁平上皮癌(HNSCC)において、最近、HGFが内皮ではなく腫瘍細胞上のJagged1の発現を上方制御すると示された。増加したJagged1発現は、マウスにおける近隣のECにおけるNotchシグナリングを活性化し、腫瘍脈管形成と増殖を刺激する(10)。従って、これらのデータは、腫瘍ECにおけるNotchシグナリングの活性化のための少なくとも2つの異なる機序があることを示唆する。

これらの研究において、我々は、Notch1の細胞外ドメインに基づいた新しい可溶性構成物(N1ECDFc、またはNotch1デコイ)を使用して、脈管形成におけるNotchレセプター活性化の役割を評価した。インビトロで、Notch1デコイは、Notchシグナリングのリガンド誘導性活性化と、アデノウイルスによりNotch4を過剰発現するECの形態形成との両方を阻害した。インビボで、Notch1デコイ発現は、Jagged1発現がFGF4の形質導入によって上方制御されたマウスMm5MT異種移植片の増殖を遅らせ、NGP神経芽細胞腫腫瘍における血管と腫瘍生存能力を崩壊した。これらのデータは、腫瘍新脈管形成中のNotchレセプター機能の必要性を支持し、この経路の阻害が有効な新しい抗腫瘍戦略を提供するかもしれないことを示唆する。

［材料と方法］
試薬と発現ベクター
化合物EはCalbiochem(San Diego, CA)から、PD166866はエーザイ(東京(日本))から購入した。Notch1デコイ(N1ECDFc)は、ヒトIgG Fcへのフレーム中で融合されたラットNotch1エクトドメイン(bp 241-4229、Genbank accession ＃X57405)をコードする。レトロウイルスのpHyTC-Jagged1、-Dll1、-Dll4およびpBos-Notch1は記述されている(11)。Notch1デコイおよびFcを、レトロウイルスベクターpHyTCXへ操作し、マウスFGF4はpQNCXへ操作した。LacZおよびマウスNotch4をコードするアデノウイルスの構成物およびpAdlox-GFPは記述されている(12)(13)。

HUVEC、アデノウイルスおよびレトロウイルス感染
HUVECを記述された通りに単離し(14)、マウス乳癌Mm5MTを入手した(ATCC, Manassas, VA)。我々は、示された感染の多重度(m.o.i.)でのアデノウイルスと、感染のためのGP2-293細胞(BD Biosciences, Bedford, MA)からのレトロウイルス上清を使用した。HUVECは300g/mlのhygromycinB(Invitrogen, Carlsbad, CA)を使用して選択し、Mm5MT-FGF4は、ダブルのトランスフェクタントを伴い、1mg/ml G418 (Gibco-Invitrogen, Grand Island, NY)において選択した。

ウェスタンブロット
Ad-N1ECDFc-形質導入HUVECは、内皮無血清培地(GIBCO-Invitrogen)で48h、およびDMEMでMm5MT-FGF4トランスフェクタントを培養した。ウェスタンブロットは抗ヒトFc(Pierce, Rockford, IL)を使用して行なった。

定量的なRT-PCR
Mm5MTトランスフェクタントを、ベヒクルまたは1μMのPD166866(FGFレセプターキナーゼの阻害剤)と共に7日培養し、総RNAを単離し(RNeasy mini-kit, Qiagen, Valencia, CA)、第１の鎖のcDNAを合成した(SuperScript^TM First-Strand Synthesis System, Invitrogen)。

βアクチン、FGF4、Jagged1、Dll1およびDll4のための定量的なRT-PCR(SYBER Green PCR Master Mix, 7300 Real Time PCR; Applied Biosystems, Foster City, CA)をトリプリケートで行い、値をβ-アクチンについて標準化した。値はコントロールに比較した倍数で示す(プライマー配列は要求により入手可能)。

共培養シグナリング分析
リガンド誘導性シグナリングのNotch1デコイ阻害は記述された通りに行った(11)。HeLa細胞は、666ngのpCMV-FcまたはpHyTC-N1ECDFc(x1のために333ng、x2のために666ng)の何れかと、333ngのpBOS-Notch1、333ngのpGA981-6および83ngのpLNC-LacZでトランスフェクトした。293細胞を、680ngのpHyTc-Jagged1、pHyTc-Dll1、pHyTc-Dll4またはpHyTc-X(空のベクター)でトランスフェクトした。細胞を採取し、トランスフェクションの48h後にルシフェラーゼ活性（Enhanced Luciferase assay kit, BD PharMingen, San Diego, CA）と、β-ガラクトシダーゼ活性（Galacto-Light Plus kit, Applied Biosystems）を測定した。アッセイはトリプリケートで行なった。

内皮共培養形態形成アッセイ
HUVEC形態形成は、Ad-Notch4形質導入HUVECとNotch1デコイHUVECまたはFc-HUVECトランスフェクタントとの共培養をすることを加えたことにより変更して、既述された通りに（１１）評価した。10m.o.iのAd--GFPを30m.o.iのAd-LacZまたはAd-Notch4と共にHUVECに重形質導入し、４８時間後、フィブリンゲル（24ウェルプレート、1.5x10⁴ cells/well）に播種した。安定したHUVEC-偽(HUVEC-X)、HUVEC-Fc、またはHUVEC-N1ECDFcトランスフェクタントを1.35x10⁵ cells/wellで播種し、ベヒクルまたは200nMの化合物Eを３時間後に添加した。7日後に、HUVEC形態形成を、視野当たりの総GFP陽性細胞と比較する方法で、GFP陽性細胞の数として計算した。

Mm5MT腫瘍モデル
6-8週齢の雌性C3Hマウス(Taconic, Hudson, NY)を、10⁶Mm5MT トランスフェクタント(各N=10)で皮下移植した。腫瘍直径は、ノギスで測定し、体積を算出した(長さ(mm)x幅(mm)²／２)。腫瘍は２２日目に採取して分析した。実験は3度行った。

免疫組織化学
5μmの新鮮な凍ったMm5MT組織セクションを免疫染色した(15)(抗体リストの補足のデータを参照)。CD31定量化は、Eclipse E800顕微鏡およびImagePro Plus v.4.01 (Silver Spring, MD)を使用して行った。20の異なる視野をスライド毎に測定し、密度比を(特異的染色の領域）)/(全領域、各視野)として計算した。データは、Mm5MT偽トランスフェクタントに対する各Mm5MTトランスフェクタントの平均密度比の平均の比として示す。

NGP腫瘍モデル
NGP腫瘍モデルは以前に詳細に記述されている（１６）。NGP細胞を、上記の通りにLacZまたはN1ECDFcでトランスフェクトし、4-6週齢のNCRヌードマウス(Taconic、ジャーマンタウン、NY)に腎臓内に106 NGP-LacZまたはNGP-N1ECDFc 細胞を移植した(NGP-LacZ n=11、NGP-N1ECDFc n=13)。6週で、腫瘍を分析のために採取した。5uMのパラフィン抱埋切片をCD-31/PECAMとα平滑筋アクチン(αSMA)について免疫染色した。アポトーシスを検出するために(TUNEL分析)、我々はアポタグ・レッド・インサイチュー・キット（Apoptag Red in suitu kit(Chemicon)）を使用した。シグナルを、正常な腎領域を除いた各組織の任意に選択された２０〜２３視野を写真に写すことにより定量化した。各フレームは、それぞれ赤色(TUNELシグナル)および緑色チャンネルの両方で撮影した。アドビ・フォトショップを使用して、赤血球自己蛍光を除去するために緑色チャンネルシグナルを差し引いた。一定の赤色チャンネル閾値を任意に選択し、総シグナル領域を4 NGP-N1ECDFcおよび3NGP-LacZ腫瘍において測定した。赤血球定量化を同様に行った。

統計解析
定量分析における有意性は、チューキー-クレイマーテスト(Tukey-Kramer tests、CD31定量化)およびクラスカル-ヴァリス解析(Kruskal-Wallis analysis、他の全て)を使用して評価した。

結果
Notchデコイは、Notch1を発現している細胞においてリガンド誘導性Notchシグナリングを阻害する
Notch1デコイは、ヒトIgG Fcに対して融合されたNotch1のエクトドメインに基づいており、アデノウイルスNotch1デコイ(Ad-N1ECDFc)感染HUVECにより調整された培地のブロッティングにより特定された通り、分泌された(図32A)。我々は、共培養シグナリングアッセイを使用してNotch1デコイ活性を評価した(11)。Notchリガンド（Jagged1、Dll1、Dll4）を発現する293細胞はNotch1を発現するHeLa細胞と培養したときに、Notchシグナリングを活性化し、これはCSLルシフェラーゼリポーター活性により測定された(図32B)。HeLa（図32B）または293細胞(データには示さず)の何れかにおけるNotch1デコイの発現は、共培養アッセイにおけるNotch1シグナリングを阻害し、これはNotch1デコイがJagged1、Dll1またはDll4による活性化を阻害したことを示す。

Notch1デコイはNotch4により誘導されたHUVECの形態形成を阻害する
Notch4発現は、フィブリンゲルにおいて培養されたHUVECからの細胞伸展を誘導し（図32c）、これはVEGF and FGF2により誘導される形態学的な変化に似ている(17、18)。フィブリンは、ECにおけるJagged1を誘導する(19)。我々は、そのような伸展が、HUVECに形質導入されたNotch4の内因性Notchリガンド活性化を反映するという仮設について、化合物E(CE)、(-セクレターゼ阻害剤(GSI)またはNotch1デコイの何れかを用いて試験した。ベヒクルと比較して、200nM CEでの処理は、明らかにNotch4HUVECにおける伸展を阻害した(図32Cの上パネル、32D)。発芽の減少は有意であった(図32D、p＜0.0001、化合物E処理とN1ECDFc形質導入の両方について；データは平均値±SDで示す)。HUVECにおけるNotch4+Notch1デコイ共同発現は、同様にNotch4+Fcコントロールに比べて内皮の伸展を阻害した(図32C、下パネル; 32D)。まとめると、これらのデータは、Notchレセプター活性化が、このアッセイにおけるHUVEC伸張を誘導するのに必要十分であり、Notch1デコイは同様にGSIに対して機能し、更に、Notchレセプター阻害剤としてのその活性が妥当であることを示す。

FGF4は、マウス乳腫瘍Mm5MT細胞において、Notchリガンド、Jagged1およびDll1の発現を誘導した
FGF4のMm5MT細胞における過剰発現は、クローン原性および異種移植アッセイにおいて腫瘍形成能を促進した（データには示さず）。HGF/MAPKシグナリングがHNSCCにおけるJagged1発現を誘導したので(10)、我々はFGF4がMm5MT細胞のNotchリガンドの発現を刺激するかどうかを検討した。我々は、定量的PCRを使用して、Mm5MT-FGF4トランスフェクタントのJagged1とDll1の上方制御を検出した(Dll4発現は不変だった)(図33A)。FGFRキナーゼ阻害剤PD166866は、Mm5MT-FGF4トランスフェクタントにおけるJagged1およびDll1の両方の誘導を抑制し(図33C)、これはFGF4誘導性Jagged1およびDll1発現がFGFRシグナリングを必要とすることを示す。イムノブロッティングにより、Mm5MT-FGF4細胞におけるJagged1タンパク質の上方制御が確認され(図33B)、免疫染色により、Mm5MT-FGF4腫瘍におけるJagged1の著しい増加が示された(図33D)。更に、Notch4がMm5MT-FGF4腫瘍内皮で検出された(データには示さず)。

Notch1デコイ発現はマウスにおけるMm5MT-FGF4腫瘍の脈管形成および増殖を阻害した
我々は、内皮のNotchレセプターによるシグナリングにより、Jagged1発現Mm5MT-FGF4腫瘍が脈管形成を促進すると仮定した。従って、我々は、マウスにおけるMm5MT-FGF4異種移植片増殖に対するNotch1デコイ発現の効果を評価した。安定してFcまたはNotch1デコイの何れかを過剰発現するMm5MT-FGF4の腫瘍形成能は、クローン原性アッセイによって不変であった（データには示さず）。しかしながら、両方のMm5MT-FGF4偽トランスフェクタントおよびFcトランスフェクタントと比較して、Mm5MT-FGF4-N1ECDFc異種移植片増殖は有意に遅延し、これはNotch阻害が腫瘍形成における重大な要素を障害したことを示唆する(図34A)。内皮マーカーCD31/PECAMについての免疫染色は、Mm5MTFGF4-N1ECDFc腫瘍における脈管形成を顕著に阻害したことを示した(図34B)。血管アッセンブリにおけるNotchの必要性と一致して、ECは、剥離した孤立した細胞または小さなクラスタとして見え、それと共にわずかな組織された血管が検出された。抗CD31染色の定量分析は、Notch1のデコイ発現腫瘍において微細血管密度の58％の減少を示した(P<0.001、Mm5MT-FGF4-XおよびMm5MT-FGF4-Fcの両方について、対Mm5MT-FGF4-N1ECDFc; データは平均値±SDで示す; 図34C)。

Notch1デコイ発現はヒトNGP神経芽細胞腫異種移植において脈管形成を崩壊した
マウスにおける、NGP異種移植は、VEGF阻害に対して比較的に抵抗性である成熟した階層的血管を形成した（１６）。Notchレセプター活性化がNGP脈管形成に寄与したかどうか判断するために、我々は、上記のように、N1ECDFcでNGP細胞をトランスフェクトした。Mm5MTFGF4-N1ECDFc細胞で観察された結果と同様に、培養中のNGP-N1ECDFc細胞の増殖はトランスフェクションに影響されなかった(データには示さず)。しかしながら、異種移植片生存能は、有意に増加した腫瘍細胞アポトーシスを伴って(P=0.0002, TUNEL-陽性細胞についてNGP-N1ECDFc対NGP-LacZ腫瘍、図35B)、著しく損なわれた(図35A)。腫瘍内の出血は、血管が物理的に崩壊したことを示唆し、NGP-N1ECDFc腫瘍において有意に増加した(P<0.0001、図36C)。滑らかでインタクトに見えるコラーゲンスリーブが残ったが、血管基底膜の構成成分コラーゲンIVの免疫染色により、小さくなった分岐と共に、血管の全面的な減少が示された（データには示さず）。しかしながら、ECおよび血管壁細胞（VMC）の免疫染色(それぞれ抗CD31および抗-αSMA抗体を使用)は、これらの正常に隣接する細胞層の障害を示した。個々の血管の細胞は不規則に見えて、血管連続性が損失されると共に、互いに不安定に引き離されていた(図35D)。纏めると、これらの結果は、Notch1デコイ発現が腫瘍血管中の内皮とVMC相互作用を崩壊し、腫瘍組織の不安定、出血および不完全な灌流を導いたことを示唆する。

考察
最近の報告書は、脈管形成におけるNotchリガンドDll4の重大な役割を確認し、血管を崩壊することにより、Dll4阻害が有効に腫瘍増殖を抑制することができることを示す(8、9)。本研究では、我々は、血管に対するその影響は異なるが、Notch1エクトドメインに由来する新規構成物を使用するNotchレセプター機能の阻害もまた、有効に腫瘍灌流を低減することを示す。Notch1デコイは、Notch1へのリガンドJagged1、Dll1およびDll4の結合により誘導されたシグナリングを阻害した。血管新生におけるNotchレセプター活性化の役割と一致し、Notch4の過剰発現は内皮細胞伸展を誘導し、これはNotch1デコイまたはGSIの何れかによるNotchシグナリングの阻害によって防ぐことができた。Notch1デコイは腫瘍細胞増殖をインビトロで阻害しなかったが、Notch1デコイの発現はMm5MT-FGF4異種移植片の増殖および脈管形成を阻害し、そこにおいてJagged1発現は上方制御された。同様に、Notch1デコイ発現は、NGP腫瘍細胞増殖における効果はインビトロではなかったが、腫瘍血管および生存能をインビボでは崩壊した。

HUVECにおけるNotch4過剰発現は、Notchリガンドの外因性の発現なしにフィブリンゲルにおける内皮伸展を誘導するのに十分であった。フィブリンがECにおけるJagged1発現を誘導することが知られており、従って、このアッセイにおけるJagged1のHUVEC発現を促進するために機能したのかもしれず、我々は、これがNotch4の活性化を引き起こしたと推測しする。HeLa共培養シグナリングアッセイにおいて、Notch1デコイはリガンド-Notch1レセプター相互作用によってシグナリングを阻害した。Notch4がHeLa細胞において不十分に処理されて示された通り、我々はNotch4活動を同様に評価することができなかった(データには示さず)。しかしながら、処理されたNotch4は、アデノウイルスのNotch4形質導入後にHUVECにおいて見られ（示さず）、これはNotch1デコイがリガンド誘導性Notch4活性化を阻害することができることを示す。

腫瘍形成におけるNotchシグナリングのために最近示された多数の役割は、癌治療の潜在的な目標としてのこの経路の魅力を増加させるものである。Notch活性化はヒト癌における悪性変化において直接に機能している可能性もあるが(20、21)、それはまた脈管形成のためにも必要とされ得る(8と9)。興味深いことには、Notchリガンド誘導は成長因子シグナルによって調節される。例えば、Jagged1は、HGFによって腫瘍細胞において誘導され (10)、Dll4はVEGFによってECにおいて誘導される(22)。ここで、我々は、FGF4がマウスMm5MT細胞のJagged1およびDll1発現を同様に刺激することができることを示す。Notch1デコイはインビボでMm5MT-FGF4腫瘍増殖および脈管形成を低減したが、腫瘍形成性に対してインビトロでは影響しなかった。従って、これらの結果は、腫瘍細胞ではなくMm5MT血管中のNotchレセプター活性化がこのシステムにおける新生物の増殖のために必要であることを示唆する。

Mm5MTFGF4およびNGP異種移植片の両方はNotch1デコイ発現の後に腫瘍血管の著しい障害を示したが、これらのモデルにおいて観察された血管の表現型の違いは、Notch機能の腫瘍特異的なパターンが血管アッセンブリを微調節する可能性を示唆する。Mm5MT-FGF4腫瘍は急速に増殖し、補充されるVMCの比較的欠けた密集した不規則な内皮ネットワークを発達する。これらの未熟な血管床はDll4を発現し(データには示さず)、Notch1デコイ発現によって広範囲に除去され、腫瘍実質組織において小さなクラスタまたは単離された個々のECを分離する。血管ネットワークを形成するこの初期の障害と一致し、デコイ発現腫瘍の残りは壊死性でなく、コントロールよりも有意に小さい。対照的に、NGP腫瘍はVMCによる内皮の一様に近い被覆と共に、成熟した脈管叢を発生する。NGP血管はNotch1を発現し、Dll4を相対的にほとんど発現しない(示さず)。NGP腫瘍におけるNotch1デコイ発現は血管連続性の損失と共に、腫瘍内の出血および壊死を引き起こし、ある程度の腫瘍増殖が生じた後で、潅流された血管が不安定になることを示唆する。

纏めると、これらのデータは、Notchシグナリングが腫瘍脈管形成の多数の側面を制御するモデルについての支持を提供する。Notch活性化は血管新生のために広く必要とされる一方で、個々のNotchタンパク質は差次的に血管リモデリングを調節する可能性がある。我々の結果は、腫瘍血管におけるNotchリガンドレセプター相互作用の重要性を確認し、Notchレセプター機能を乱すことが、腫瘍脈管形成を崩壊する新しい有効な手段を提供するかもしれないことを示唆する。

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［第５のシリーズの実験］
卵巣癌における治療学的ターゲットとしてのNotch
上皮の卵巣癌は、米国の患者における婦人科医学的癌による死亡の主な原因である。初期段階でこの疾患を診断することができないこと、およびこの腫瘍に向けられた新しい治療法の不足に患者は苦しんでいる。血管内皮成長因子(VEGF)は悪性上皮卵巣癌細胞によって生産され、それは次に、腫瘍を育てる腫瘍脈管形成を促進する[1]。最近の臨床試験は、幾つかのケースにおいて治療学的な処置のためのVEGFターゲティングが結果を改善することを示している[2]。従って、抗脈管形成の治療法が、卵巣癌を治療するためのアプローチとして確認されているが、これらの利益を確立するためにはより多くの研究が必要である。我々は、Notchシグナリング経路が生理学および病理学の両方における脈管形成における新しい脈管形成の経路であることを確認した[3、4]。Notchは、細胞運命決定、細胞生存および増殖を促進する細胞表面レセプタ(図1-Notch1)である。我々の研究室は、Notchデコイ(図1に図式化する)と呼ばれるNotch阻害剤を開発し、それは、リガンド依存性Notchシグナリングを阻害することができ(データには示さず)、Fcタグに対して融合したNotch1細胞外ドメインを含む融合タンパク質である(N1ECDFc)。我々は、Notchデコイがウィルムス腫瘍マウスモデルにおいてVEGFに誘導された脈管形成および腫瘍脈管形成を阻害できることを示している（データには示さず）。我々はヒト卵巣癌細胞SKOV3を生成したが、これはNotchデコイ、SKOV3-N1ECDFcを過剰発現する。我々は、マウスに異種移植された場合、SKOV3細胞のNotchデコイの発現が腫瘍の増殖を有意に阻害することを明らかにした(図36)。従って、Notchデコイは卵巣癌増殖を阻害する。我々は、この阻害が腫瘍脈管形成をターゲットとしていると仮定した。更に、我々はヒト卵巣癌サンプルを調査し、幾つかのNotchリガンドおよびNotchレセプターが卵巣癌に関連した腫瘍血管において高度に発現されることを明らかにし、それにより、１つはヒト卵巣腫瘍血管においてNotchをターゲットにできること、その結果、それらの増殖が阻害できるという仮説を立証する。

この研究は、Notchシグナリングが卵巣癌中の腫瘍脈管形成を促進するという仮説を検討する。さらに、我々は「Notchデコイ」を利用するNotchの阻害が腫瘍増殖を阻害するだろうと仮定している。我々は、Notchデコイ作用が、腫瘍血管または腫瘍細胞の増殖、またはその両方に対するものであるかどうかを判断する。全面的な目的はNotchデコイを確立し、卵巣癌の治療のための治療薬としてNotchデコイを確立することである。

特異的な目的:
特異的な目標1:
Notchデコイ発現がSKOV3またはOVCAR3の細胞の腫瘍異種移植片増殖を阻害するかどうか判断して、Notchデコイが腫瘍脈管形成をターゲットとしているかどうかを明白にすること。

特異的な目標2:
効能/安定性の増加したバージョンを作るためにNotchデコイ設計を修正すること。

特異的な目標3:
マウスにおける卵巣癌腫瘍異種移植片を阻害するために、更に標準的な化学療法剤と組み合わせにおいて精製されたNotchデコイを使用すること。

研究戦略:
特異的な目標1:
NotchデコイがSKOV3またはOVCAR3の細胞の腫瘍異種移植片増殖を阻害するかどうか判断して、Notchデコイが腫瘍脈管形成をターゲットとしているかどうか明白にすること。

我々の予備的な結果は、Notch1デコイの発現をプログラムされたSKOV3腫瘍細胞が卵巣癌異種移植片の増殖を阻害することを示す(図36)。この発見は別の卵巣癌細胞株OVCAR3においても再現されるだろう。Notchデコイは、腫瘍細胞、腫瘍血管または両方の増殖を阻害し得る。Notchデコイが腫瘍細胞をターゲットしているか否かを決定するために、我々はNotchデコイを発現する卵巣癌株が柔軟な寒天アッセイにおいてより不十分な増殖であるかどうか測定する。デコイが腫瘍脈管形成をターゲットとしているかどうか判断するために、我々は、そのような阻害の証拠となる異種移植された腫瘍の評価を行う。コントロール異種移植片の腫瘍脈管形成の評価は、微細血管密度評価、腫瘍内皮細胞の増殖のインデックスおよびレクチン灌流による腫瘍血管イメージングを含む。Notchデコイを発現する異種移植片について腫瘍脈管形成の阻害の測定は、アポトーシス性内皮細胞、腫瘍微小血管系の減少および腹水蓄積の減少の評価を含む。

特異的な目標2:
効能/安定性の増加したバージョンを作るためにNotchデコイ設計を修正すること
現在のNotchデコイは、Notch阻害剤としての効果はあるが、それが比較的大きなタンパク質であるので、容易に適用可能な精製はされていない。我々は、細胞外ドメインのより小さな部分を含むNotch1デコイの変異体を開発することを目的とする。これらの変異体は細胞培養に基づいたアッセイにおいてNotchシグナリングの阻害剤としてスクリーニングされる。阻害性の変異体は次についてスクリーニングされる:産生される細胞からの分泌効率、分泌後の安定性、それらの溶解性、およびFcアフィニティータグによる精製の容易さ。精製された変異体は、潜在的な毒性ついて評価するためにマウスに注射される。

特異的な目標3:
マウスにおける卵巣癌腫瘍異種移植片を阻害するために、更に標準的な化学療法剤と組み合わせにおいて精製されたNotchデコイを使用すること
特異的な目標2から精製されたデコイは、卵巣癌異種移植片(SKOV3/OVCAR3)に対する効能を評価するために単一の薬剤として、または化学療法と組み合わせて使用される。単一の薬剤として精製されたNotchデコイを使用して、我々は、特異的な目標1の実験内に見られた腫瘍異種移植片増殖への阻害を再現し、阻害のために最適な濃度を決定することを目的とした。この目的を達成するために、我々は、マウスにおけるSKOV3/OVCAR3異種移植片増殖を阻害するために必要とされる治療上の最適な服用量、服薬スケジュールおよび期間を決定する。次に、我々はパクリタキソールと組み合わせてNotchデコイを使用する。異種移植片増殖を阻害する際の効能を決定するために、Notchデコイの最適な服用量を、パクリタキソールと共に、またはパクリタキソールなしで使用する。

インパクト:
この研究は直接的に卵巣癌の治療を進歩させることを目指す。臨床研究は、VEGF阻害剤により卵巣癌を成功裏に治療することを最近確立した。化学療法による治療を補足するために開発されている新しい治療薬はほとんどない。この成功にもかかわらず、VEGFを腫瘍成長を阻害するためのターゲットとすることは、単に腫瘍増殖をある程度に抑制するだけかもしれない。それはまた、VEGF阻害に耐性のある新しい腫瘍血管増殖を導くかもしれない。我々は、卵巣癌に関係する代替的な腫瘍脈管形成の経路、Notchシグナル経路をターゲットとすることを目的とする。この研究は、新しい治療の実体であるNotchデコイの開発により治療を前進させるであろう。我々の予備的研究は、Notchデコイがマウスモデルにおいて卵巣癌成長を阻害することができると既に立証している。従って、治療の実体としてのNotchデコイの開発のインパクトは高度に重要であり得る。

革新:
Notchデコイの我々の最近の開発は、卵巣癌を治療するために新しい以前に試験されていないパラダイムを示す。他の公表された研究は、卵巣癌の治療にまだこの経路を密接に結び付けてはいない。しかし、我々の予備証拠はこれを調査の重要分野として定義付ける。卵巣癌の治療のための新しい治療のアプローチとしてのVEGF阻害の最近の成功にもかかわらず、我々は、Notchなどの他の脈管形成の経路を阻害することによりこのアプローチが補われる必要があると考える。

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［第６のシリーズの実験］
Foxo/Notch経路は筋原性を制御する
分化および繊維タイプ特異化
Foxo転写調節因子は代謝および細胞の分化を調節する。Foxo依存性の代謝経路および目標遺伝子と異なり、これらのタンパク質が分化を調節する機序は調査されていない。Notchシグナリングの活性化は、細胞の分化における機能獲得型のFoxoの影響を模倣する。モデル系として筋肉分化を使用して、我々は、Notch目標遺伝子の活性化に関連し、NotchエフェクターCslからのコリプレッサークリアランスの促進により、Foxoが物理的に機能的にNotchと相互に作用することを示す。構成的に活性型のFoxo1による筋芽細胞分化の阻害は、Notchシグナリングの阻害によって部分的に救済され、一方で、Foxo1機能欠損は、筋形成のNotch阻害を妨げ、MyoD発現を増加する。従って、骨格筋における条件的なFoxo1アブレーションは、ミオゲニン含有(緩徐攣縮)ファイバーを犠牲にして、MyoD含有(速攣縮)筋繊維の形成および変更された繊維型分布を増加することに帰着する。前駆体細胞の維持および分化を調節するために、Notch/Foxo1の協調は、Notchによって環境上の合図にFoxo1による代謝性の合図を統合するのかもしれない。

再生医療における主要な問題は、特定化する細胞の種類が未分化幹または前駆体細胞からどれくらい高度に発生するかを理解することである(1)。この問題に密接な関係し、微環境により生じる生化学的なシグナルがどのようなものであるか、内分泌腺/栄養上の合図はどのように細胞の分化プロセスを活性化するために転写的調節されるのかが問題となる。フォックスヘッド(Fox)タンパク質のOサブファミリーは、細胞生存および代謝を促進するホルモン、栄養素およびストレス応答を調節する。Foxo転写を微調節する能力は、これらの細胞の機能をコントロールするのに不可欠であり、リン酸化およびアセチル化を含む転写後修飾に大部分は依存性である(2)。最終分化細胞のそれらの役割に加えて、Foxoタンパク質も、筋芽細胞(3)、前脂肪細胞(4)および内皮細胞分化(5)に関連する。更に、Foxo4はミオカルジン（Myocardin）との相互作用によって血管平滑筋細胞分化を調節する(6)。Foxo3ノックアウトマウスは未成熟卵巣不全を示し、これは卵胞成熟におけるこの遺伝子の役割と一致する(7)。Foxoタンパク質が細胞の分化をコントロールするメカニズムは不明瞭ままであり、また、最近の条件付きのアブレーション研究は、造血性系統における3つのFoxoアイソフォーム中の著しい程度の機能的なオーバーラップと一致する(8、9)

Notch経路は胚形成の間において、神経、血管、筋肉および内分泌腺の分化に重要な役割を果たしている(10)。リガンド誘導性の分裂において、Notchレセプターの細胞内ドメインが核に移動し、サプレッサーから転写性のアクチベーターにまでその転写特性を変更し、それがDNA結合蛋白質Cslと相互に作用する（１１）。CslターゲットはHairy and Enhancer of Split (Hes, Hey)遺伝子を含む。Hes1は腸内胚葉(gut endoderm 、12)、前脂肪細胞(13)および神経性の分化(14)を調節する。活性型Notchシグナリング、またはNotch1レセプター機能の獲得は、MyoD転写を抑制することによりC2C12および10T/2の筋芽細胞の分化を阻害する(15-21)。

全ての細胞の分化コンテキストにおいて、Foxo1の機能獲得型(3-5)はNotch1活性化を表現模写すること(13、17、22、23)は注目すべきことである。さらにマウスにおいてもFoxo1アブレーション(24)はNotch1アブレーションを表現模写する(25)。興味をそそる類似性にも拘らず、FoxoおよびNotchシグナルは2つの表面上別個のメカニズムにより、ホスファチジルイノシトール-3-キナーゼ経路(Foxo)、そしてその、Hes/Hey経路(Notch)を経る。
この研究において、我々は、Cslからのコリプレッサークリアランスの促進により、Foxoが物理的に機能的にNotchと相互に作用することを示し、それにより、筋形成のプログラムをコントロールすることを示す。筋原性の先駆体は中胚葉の幹細胞(26)から発生し、MRFファミリー(MyoD、Myogenin、MRF4およびMyf5)(27)の筋原性の転写調節因子の発現内でピークに達する多段階過程によって筋管に変わる。筋原性の転写調節因子はEタンパク質でヘテロ二量体化し、ミオサイトに特有のMEF2エンハンサー因子(28)を備えた綿密な調節に作用して、筋肉に特有の遺伝子の発現を促進する。

成人の筋肉はその筋繊維コンテントによって主に定義される異種混合の組織である(29)。異なるミオシン重鎖(MyHC)サブタイプは異なる筋繊維を特徴付ける。I型ファイバーは主として緩徐攣縮MyHCを発現し、II型ファイバーは速攣縮MyHCを発現する(29)。繊維型特異化のプロセスは多数のステップでコントロールされる。最初に、筋原性の前駆細胞には異種性があるようであり、鳥類の胎芽クロス移植実験からの証拠は、初期の先駆体が主として遅筋繊維および後の先駆体が速筋繊維に寄与することを示す(29)。誕生後、繊維型特異化はまた神経および内分泌腺/栄養上の合図を含む細胞自律因子により影響を受ける(28)。Foxo共活性剤Pgc1αは遅筋線維の形成を促進する際に重大な役割を果たす(30)。また、最近のデータはこのプロセスにさらにFoxo deacetylase Sirt1を密接に結び付けた(31)。マウスにおいて条件付きの突然変異生成を使用して、我々は、C2C12細胞におけるMyoD依存性筋形成の抑制におけるFoxo1の役割が、Foxo1欠損骨格筋におけるMyoD含有筋原線維の増加によって反映されることは、筋芽細胞系統特異化における主要な機能と一致することを指摘する。

結果
C2C12分化におけるFoxo1およびNotchシグナリングの相互作用
NotchとFoxoが筋肉発生をコントロールするために相互に作用いているか否かを理解するために、我々は細胞分化モデルを使用した。C2C12細胞は、成長因子撤回、Foxo1の核転位置に関連したプロセスにおける筋原性の転換および筋管融合を生じる(3)。それにより、筋芽細胞融合の抑制によって反映されるよう(図37a-c)に、構成的に活性型のFoxo1突然変異体(Foxo1ADA) (4)をコード化するアデノウイルスの形質導入はC2C12分化を誘導するために血清撤回の影響を阻害した。反対に、siRNAによるFoxo1抑制はこれらのプロセスに影響しなかった(図37d)。同様に、構成的に活性型Notch(Notch1-IC)は筋芽細胞分化を阻害する際にFoxo1ADAを表現型模写した(図37e)。事実上、細胞はすべて、アデノウイルスで形質導入されるようになった(図44)。Foxo1 siRNAは、制御蛋白質または他のFoxoアイソフォームに影響せずに(図46)、用量依存的な様式で内在性のFoxo1およびトランスフェクトされたFLAG-Foxo1の両方の発現を有効に抑えた(図45)。Foxo1-ADAもNotch1-ICもC2C12増殖に影響しなかった(図47)。

我々は、内在性のNotchシグナリングの抑制によりFoxo1ADAの影響を阻害することができるかどうかを試験した。この目的のために、我々は、膜貫通アンカーおよび細胞内ドメインを欠失するトランケイテットなNotch1レセプターを使用した。それは、結合力のあるNotchリガンドによってデコイレセプターとして働く(32、33)(Y.F.およびJ.K.(出版されていない観察))。デコイは、成長因子撤回(図37f)に応じて分化を被るC2C12の能力ではなく筋芽細胞分化(図37g)の部分的に救済されたFoxo1ADA抑制に影響した。Notchシグナリングを阻害する代替プローブとして、プレセニリン阻害剤(PSI)化合物E(34)は、さらに筋芽細胞分化のFoxo1ADA抑制を救済した(図37h)。

Notchシグナリングに対するFoxo1の影響を検討するために、我々はFoxo1 siRNAおよびNotch-ICを共同トランスフェクトした。Foxo1 siRNAは、Notch1-IC(図37i)によって筋芽細胞分化およびミオシン発現の抑制を救済した。一方、コントロールsiRNAは効果がなかった（データには示さず）。筋芽細胞分化に対するFoxo1 siRNAの非特異性の影響を除外するために、我々は耐siRNA性のFoxo1ADAを生成した(図48)。Foxo1 siRNAは、Foxo1ADAの影響を逆にしたが(図37j)、耐siRNA性のFoxo1ADAによって引き起こされたC2C12分化の抑制を救済しなかった(図37k)。我々は、Foxo1およびNotch1-ICがミオシンレベルを>80％減少させ、その一方でNotchデコイおよびFoxo1 siRNAが完全に分化された細胞の〜70%にそれらを戻したことを示し、図38aにおいてこれらのデータの定量分析を示す。我々は、ミオシン陽性細胞の形態測定の分析を行なうことにより、同様のデータを得た(図38b)。これらのデータは、Foxo1が筋芽細胞分化に対するNotchの影響のために必要であることを示す。

我々は、次にFoxo1がその転写の機能によって分化に影響するかどうかテストした。この目的のために、我々は、N208AおよびH212Rの置換によって、ADA突然変異体のバックボーンにおいてDNA結合欠損突然変異体(DBD-Foxo1ADA)を生成した（6、35）。我々は、Igfbp1プロモーター活性(標準的なFoxo1目標)の測定により、この突然変異体がDNAを結合することができないことを確認した。Foxo1-ADAはIgfbp1プロモーター活性を10倍増加した。しかし、DBD-Foxo1ADAはそのような増加はなかった(図38c、左パネル)。驚いたことに、この突然変異体は、分化を阻害することについて、DNA結合成分Foxo1ADAと同じくらい有効であった(図37l)。これらのデータは、配列特異的な様式でDNAに結合する能力と無関係に、Foxo1が分化をコントロールすることを示す。

Foxo1はCslに結合し、Hes1プロモーターに補充される
Notch1-ICはCslに結合して共活性化し、HesおよびHeyの発現をプロモートする(11)。DBD-Foxo1ADA突然変異体を使用した結果に基づいて、我々は、NotchリガンドJagged1を発現するHEK293細胞(符号「+」によって表示された)またはネガティブコントロールとしてのLacZ(符号「-」で示す)と、Notch1レセプターを発現するC2C12細胞との共培養を使用して、Notch依存性様式でFoxo1がCslと相互に作用するかどうかを試験した。我々は、Foxo1とCslが培養細胞において相互作用するという証拠のいくつかの系を提供する。我々は、内在性のCsl免疫沈降において内在性のFoxo1を検出した。また、免疫共沈降は、Notchシグナリングの活性化によって有意に増強された(図39a)。相互作用の特異性を確認するために、我々は、C2C12細胞のHAタグを付与したFoxo1およびFLAGタグを付したCslを発現した。抗HA(Foxo1)抗血清での免疫沈降についで、我々は、免疫ブロットにFLAG-Cslを検出した(図39b)。反対に、抗FLAG(Csl)抗血清での免疫沈降についで、我々は、免疫ブロットにHA-Foxo1を検出した(図39c)。我々はCsl免疫沈降において他のFoxoアイソフォームを検出できなかった(図42)ので、Cslによる共免疫沈降の能力はFoxo1に特有であるように見える。トランケイテットなFoxo1突然変異体(δ256、アミノ酸1-256をコード化する)(36)は、Cslと相互に作用する能力を保持した。我々は、Myc-Δ256免疫沈降(図39d)にFLAG-Cslを、FLAG-Csl免疫沈降(図39e)にHA-Δ256を検出し、これによりCslがFoxo1のN-ターミナルドメインと相互に作用することが示される。
これが直接のタンパク質間の相互作用であるかどうかを判断し、相互作用ドメイン（単数または複数）をマッピングするために、我々は、バクテリア内で産生されたGST-Foxo1と、HEK293細胞において発現されたFLAG-Cslをアフィニティ精製し、プルダウンアッセイを行った。我々は、C-末端のFoxo1(aa.290-655)またはGSTを持たず、N-末端Foxo1(アミノ酸1-300)と完全長とを持つCslアソシエーションを検出した(図40a)。次に我々は菌培養・精
製したGSTフラグ/CslおよびGST-Foxo1を含む無細胞系を使用して、Foxo1と相互に作用するCslドメインをマッピングした。再度、我々は、Csl免疫沈降中の、C-ターミナル(290-655)Foxo1を除く完全長(1-655)とＮ末端（1-300）を回収した。逆に、N-末端のFoxo1はN-末端Cslと相互に作用する(図40b)。我々は、Cslの中のFoxo1を結合するドメインをマッピングするためにCsl欠損変異株を使用した。これらの研究は、アミノ酸172-279を含むドメインに対してFoxo1が結合することを示し(図40c)、これはCsl NTDドメイン内に含まれる(37)(図40c、図形)。興味深いことには、このドメインはDNAおよびコレプレッサー結合のために必要であるが、Notch結合には寄与しない(38と39)。

CslはHes1プロモーターの中の共通配列に結合し(40)、それは、このようにFoxo/Csl相互作用の有用な読み出し分析を提供する。もし後者がC2C12分化を調節するために要求されるのであれば、3つの予測が得られる:(a) Foxo1は、Hes1プロモーターの中のCsl成分にかかる染色質免疫沈降分析(ChIP)で検出される。(b)相互作用は分化依存である。(c)Foxo1ADAによる分化の抑制はHes1プロモーターにおけるCsl成分への構成的な結合に付随する。図40dは、予測がすべて満たされたことを示す。最初に、我々は、C2C12細胞を分化する際にHes1のCsl結合部位にかかるプライマーを使用してChIPsを行った。我々は、未分化細胞からの免疫沈降において内在性のFoxo1、Notch1およびCslを検出した(図40d Endogレーン(0日))。PCRで増幅された配列がフォックスヘッド結合部位を含んでいなかったので、我々はFoxo1がCslによってこのDNA断片に結合するとの結論を下した。さらに、細胞が分化すると共に、Foxo1とNotch1の両方の結合は減少した(１日目および2日目)。我々が、構成的な核Foxo1ADAで細胞を形質導入したときに、分化は阻害された(図37c)。また、CslおよびNotch1と同様に、突然変異体Foxo1はHes1プロモーターに持続して結合した（図40d、Foxo1-ADAレーン）。

私たちは次にHes1発現を分析した。予測は、Hes1レベルがFoxo1とNotch1によるHes1プロモーターの占有と関連するということである。実際には、Foxo1およびNotch1のCslに対する結合が減少すると、Hes1 mRNA発現は減少した。その一方でミオシンタンパク質レベルは増加した(図40d)。Csl転写でFoxo1の直接効果を除外するために、我々はCslプロモーターを用いてレポーター遺伝子分析を実行した。Cslプロモーターにおけるフォークヘッド結合部位に10反復が存在するにも拘らず、Foxo1はCslレポーター遺伝子の発現を活性化しなかった(41)（データには示さず）。さらに、Csl発現はFoxo1ADAを発現するC2C12細胞において影響されなかった(示されない)。これらのデータは、Foxo1がCslとのタンパク質/タンパク質相互作用によってNotch依存性分化を調節することを示す。

CslによるHesおよびHey遺伝子のNotch誘導のためにFoxo1が必要である
我々は、C2C12細胞の内在性のHes1、Hes5およびHey1の発現を促進するFoxo1ADAの能力を検討した。Foxo1-ADAおよびNotch1-ICの両方は、3つの遺伝子の発現を増加させた。その一方でFoxo1 siRNAは、Notch1-ICによって誘導されたHes1、Hes5およびHey1発現を阻害した(図41a)。Foxo1 siRNAは成長因子欠乏細胞においてHes1、Hes5およびHey1発現に効果がなかった(図41a)。

我々は、プロトタイプのNotchターゲット遺伝子として、Hes1における実験に注目した。我々は、Hes1発現の測定と同様にHes1プロモーターでのリポーター分析を使用して、Hes1転写を調節するFoxo1の能力を分析した。Foxo1-ADAおよびNotch1-ICは、1.8および2.5倍にHes1プロモーター活性をそれぞれ誘導した。Notch1-ICとFoxo1ADAの同時トランスフェクションは2.5倍の増加を引き起こした(図41b)。Foxo1 siRNAの同時トランスフェクションは用量依存的な様式でNotchに誘導されたHes1活性を抑制した。一方で、コントロールsiRNAは効果がなかった(図41b)。Csl結合モチーフである4つのタンデム反復を含む合成のHes1リポーターについても同様の結果を得た(図50)。さらに、DBD-Foxo1ADAは、Hes1のFoxo1活性化のために直接のDNA結合が必要ではないことを確認し、Foxo1ADAよりさらに大きな程度までHes1レポーター遺伝子活性を誘導した(図38c、右パネル)。

Notch1-ICがFoxo1 siRNAを発現する細胞においてHes1発現を誘導しないということは、Csl/Notch相互作用のためにFoxo1が必要であることを示唆する。したがって、我々は、共培養システムにおけるHes1プロモーターへのFoxo1およびNotch1の結合を試験した。我々は、内在性のNotchシグナリングの活性化を誘導するためにNotchリガンドJagged1を発現するHEK293細胞とNotch1を発現するC2C12細胞を共培養した。Jagged1を発現する細胞が存在下での共培養は、ChIP分析においてHes1プロモーターに結合する内在性のFoxo1(図42a(レーン1-2))およびNotch1を増加した(図42a、b、レーン1-2)(42)。これらのデータは、CslとのFoxo1共免疫沈降が共培養で増加したという観察と一致する(図39a)。Hes1プロモーターに結合するFoxo1がCsl依存性かどうかテストするために、我々はsiRNAでCsl発現を阻害した(図51)。Csl siRNAのトランスフェクションは、Hes1プロモーターに結合するFoxo1とNotch1の両方を阻害し、それらがCsl依存性であることを示した(図42a(レーン3-4))。
さらに、Foxo1-ADAは、Csl siRNAが存在下においてHes1発現を誘導しなかった(図41a(レーン5))。ChIP実験の結果はHes1プロモーター分析によって確証された。Jagged1またはNotch1だけの発現はHes1活性に効果がなかった。しかし、共培養することにより、Hes1レポーター遺伝子活性の3.7倍の増加を産出した(図42c)。ChIP分析において、Foxo1 siRNAは、NotchのHes1プロモーターへの結合(図42b(レーン3-4))と、Hes1プロモーター活性の誘導を消失した(図42c)。これらの結果は、Hes1プロモーターにNotch1を結合するために、Foxo1が必要であることを示唆し、それによってFoxo1発現の抑制がNotch1-ICを発現する筋芽細胞の分化を回復するメカニズムを提供する。共培養システムにおけるHes1のNotch誘導を阻害するFoxo1 siRNAの能力は、Notch1-ICでの分化実験において観察された効果がトランケイテッドな細胞内のNotch1突然変異体(15)によるNotchシグナリングの非生理学的な活性化によるという可能性を排除する。

Foxo1は、コリプレッサークリアランスとMaml1のCslへの結合する促進する
Hes1発現のFoxo1依存の活性化の分子のメカニズムを明確にするために、我々はHes1プロモーターでコリプレッサー/コアクチベーター交換を調査した。Notchの活性化はコリプレッサーNcorおよびSmrt(43)を取り除き、Hes1プロモーターへのコアクチベーターMaml1(42)を補充した。Foxo1 siRNAはNotchに誘導されたコリプレッサー交換(図42d)を抑制した。これらのデータは、Foxo1がCsl(図40c)の領域172-279に結び付けるという観察と一致する。それはNcor/Smrt結合部位(38と39)を含むことを示した。転写の複合体の観察された変化がHes1活動の変化に帰着することを示すために、我々は、筋形成に含まれるHes1標的遺伝子の発現を調査した。Hes1はMyf5(16、17)に影響せずに、bHLH転写調節因子MyoDを阻害することにより筋芽細胞分化を抑えた。発現分析は、Myf5が影響されなかった間、Notch1-ICまたはFoxo1-ADAがMyoDを抑えることを明らかにした。NotchデコイまたはFoxo1 siRNAは部分的にMyoD発現をリストアした（図42e）。

Foxo1を欠損した骨格筋における変更された繊維型の組成物
細胞のデータに基づいて、我々は、インビボで条件付きの遺伝子不活性化を使用して、筋肉分化におけるFoxo1機能を調査することを試みた。この実験の予測された結果は、Myf5含有筋芽細胞ではなくMyoD含有細胞の加速された分化である。ミオゲニンが遅筋繊維(44)の優勢な因子である一方で、MyoDは速筋繊維の優勢な筋原性の因子であるので、MyoD発現におけるFoxo/Notch抑制の除去は潜在的に遅筋繊維を犠牲にして速筋繊維の増加した形成に帰着する。
マウスには3つのFoxoアイソフォームがある:Foxo1、3および4(8、9)。後者はひらめ筋以外のほとんどの筋肉種類(45)において優勢であり、Foxo1が最も豊富である(図43a)。偶然の一致で、ひらめ筋も、生理学上遅筋線維の中で豊かであり、従って我々が容易に我々の仮説を分析することを可能にした。我々は、ミオゲニン-cre遺伝子組み換えとフロックス（floxed）されたFoxo1対立遺伝子についての同型接合体のマウスとの交差により、骨格筋中のFoxo1発現を不活性化した。mRNA分析は、計画通りノックアウトを生じることを示した(データには示さず)。

組織学の分析はMyog-Foxo1マウスのひらめ筋のI型(遅筋)繊維の減縮を明らかにしたが、II型の繊維が豊富な筋肉が影響されなかった(図43b)。組織学の発見と一致して、I型ファイバーマーカーの発現は減少し、一方でII型ファイバーマーカーはMyog-Foxo1マウスにおいて増加した(図43c)。その後、我々は筋原性の転写調節因子MyoD、Myf5およびミオゲニンの発現を分析した。MyoDは、速筋繊維の優勢な因子であり、ミオゲニンは遅筋繊維の優勢な因子である(44)。組織病理学と一致して、Myf5発現が不変だったのに対して、我々はMyoD発現において２倍の増加、およびミオゲニンにおいて〜80％減少を見出した(図43c)。さらに、I型ファイバー決定（30）を調節する発現、Foxo1コアクチベーターPgc1αは不変であり、これは減少したFoxo1依存のPgc1α転写によってMyog-Foxo1マウスの表現型を説明することができないことを示す(図43c)(46)。観察された繊維タイプのスイッチの機能的な相関として、トレッドミルにおけるランニング性能を検討した。実際は、I型(耐久性)ファイバーの減縮から予言されるように、Myog-Foxo1マウスは低減されたランニング性能を表示した(図43d)。

最後に、適応または細胞非自律因子に対立するものとして、これらの変更が繊維型特異化の発生的変化を反映したかどうか判断するために、我々はE9.5によりFoxo1(24)およびNotch1ノックアウト(25)胚の中のMyoD発現を測定した。Foxo1-/-胚において、MyoDレベルは3.1±1.1倍、Notch1-/-胚においては7.3±2.9倍に、コントロールと比較して増加した(P<0.05、両方の突然変異体対野生体、n=4)。インビボで観察されたMyoD発現の増加は、筋芽細胞分化におけるこの重要なシグナルネクサスでのFoxo1とNotchとの間の物理的、機能的な相互作用と一致しいる。したがって、我々は、Myog-Foxo1マウスにおける繊維タイプのスイッチが胚発生の間のMyoDを含んでいる筋芽細胞の加速された分化の結果であることを提唱する。

考察
この研究は、FoxoとNotchの経路が筋肉分化の調節に協力するという生化学、細胞、遺伝証拠を提供する。データは、Csl NTD領域(図42f)へ直接の結合によってHes1プロモーターでコリプレッサー交換を促進するためのFoxo1作用の新しい方法を明らかする。我々は、このドメインへ結合するFoxo1がNotch/Csl複合体を安定させてコリプレッサークリアランスおよびMaml1リクルーターを促進することを提案し、これは構造の研究(37)からのNTDの提案された役割と一致する。発見はさらにメカニズムを提供し、それによって、2つの主な生化学プロセス、ホスホイノシトール-3-キナーゼ/Akt経路およびNotch/Hes経路は、細胞の分化をインビボでコントロールする相乗効果の様式に集まる。
Foxo1のための提案された役割は、その転写の機能に依存せず、Cslで直接の相互作用を含んでいる。我々の研究はNotch1シグナリングの原型のエフェクターとしてHes-1に注目するが、我々のデータはHes-1がNotch/Foxo相互作用のただ１つの媒介物であることを示すと解されるべきではない。例えば、我々は、前脂肪細胞、PC-12およびHUVECの分化中の同様のFoxo/Notchエピスタシスを観察し、これはFoxoが複数の細胞コンテキストにおいてNotchと相互作用することを示唆する(データには示さず)。

我々は、Notch/Foxo協力が、前駆細胞の維持および分化を調節するために、Foxo1を介する代謝的な合図とNotchを介する環境的な合図を統合することを提案する。この2層をなしたメカニズムは、Foxo1が活性なときに、発生的な合図(Notch)に応じて分化を回避する様々な組織において、即ち、成長因子の非存在において、傾倒した前駆細胞を可能にする。その後、これらの細胞は、成人の組織中の休止状態を続ける。ここでそれらは、Foxo1抑制に結びつくNotchリガンドおよびホルモン/栄養上の合図のコンビネーションに応じて最終的に分化することが可能になる。この解釈は、Foxo1欠損の筋肉において観察された繊維タイプスイッチ、筋原性のプログラムの誘導物質に対立するものとして、筋原性の血統内の運命決定物としてのFoxo1の位置を決めるように見える観察と一致する。他のFoxoとNotchのアイソフォームも相互作用するかどうか、それらがどのようにこのプロセスに寄与するかは今のところ不明である。

Foxo1が遺伝子発現の共同調整装置であるという実証は、この転写調節因子の変化し続ける機能の潜在的な説明を提供する。私たちの研究から出現する興味ある質問は、1つの機能から別の機能までのスイッチがどのように達成されるか、また、成長因子、ホルモンおよび栄養素に応じたFoxo1の複雑な翻訳後修飾が、どのようにこのプロセスに影響を与えるかである。発見はFoxo1シグナリングを含んでいる疾病プロセスの病態生理学にとって広い意味合いを持つ。我々の観察の潜在的な含意は、過度のFoxo機能(48)によって特徴づけられた代謝異常の治療としてNotchシグナリング(47)を阻害する薬剤の使用を調査する能力である。

材料と方法
動物産生および分析
ミオゲニン-cre(49)およびFoxo1floxマウスは記述される(9)。野生型、ヌルおよびFoxo1flox対立遺伝子が、5’-GCT TAG AGC AGA GAT GTT CTC ACA TT-3’, 5’-CCA GAG TCT TTG TAT CAG GCA AAT AA-3’ and 5’-CAA GTC CAT TAA TTC AGC ACA TTG A-3’のプライマーを用いたPCRで検知された。トレッドミルパフォーマンステストに先立って、マウスを2日間訓練した(Columbus Instruments)。そのテストは、消耗するまで10minの間隔で1m/minの増加を後に続けて、第1の30minのために15m/minで行なった。骨格筋サンプルは、オクタ・マトリックス中で急速に凍結し、7μmの連続切片が得られた。筋繊維は、異染性のATPアーゼ(50)を使用し、抗骨格スローミオシン(シグマ)で免疫染色して分類した。胚の研究については、我々は、ヘテロ接合のFoxo1(24)またはNotch1(25)マウスの時間が計られた交配およびE9.5で回収された胚をセットアップした。mRNAは全体の胚から分離した。また、下記に述べられるように、リアルタイムRT-PCRを行った。

ウイルスの発現研究
記述される(3と4)ように、C2C12細胞を分化した。Foxo1-ADA、Notch1-IC、Jagged1、CslおよびNotchデコイのアデノウイルスおよび哺乳類の発現ベクターは記述されている(36、51)。我々は、pQCXIHべクターを使用するFoxo1ADAおよびNotch1-ICを発現するレトロウイルスを生成した。Notchデコイ(pAdlox Notch1ECD-Fc)を生成するために、Notch1(bp 241-4229、GenBank accession# X57405)の細胞外ドメインはヒトIgG Fcタグを備えたフレームに融合され、pAdloxへクローニングした。レトロウイルスの上清は、pVSV-Gべクターと指定されたpQCXIHべクターとをGP2-293細胞(BDバイオサイエンス)に一時的に共トランスフェクトされた細胞から生産した。へDNA結合欠損Foxo1を生成するために、私たちは、QuikChange突然変異生成キット(Stratagene)を使用して、N208とH212をアラニンとアルギニンにそれぞれ置換した。その後、変異体をFoxo1ADA突然変異体のバックボーンにおいてクローンを作成した。

ルシフェラーゼ分析および共培養アッセイ
我々は、HEK293細胞をHes1ルシフェラーゼ(転写スタート部位からの-194〜160)(Hes1/pGL2基礎)、合成のHes1-ルシフェラーゼ（4x Csl 結合部位, 4 x Csl/pGL2基礎を含む）、またはCslルシフェラーゼ(-1536〜22および基礎的なCsl/pGL2)レポーター遺伝子をpCMV5、pCMV5-Foxo1-ADA、pQNC-Notch1-IC、pHyTc NotchデコイまたはFoxo1 siRNAと共にトランスフェクトした。私たちはプラスミドpRSV-β-ガラクトシダーゼをトランスフェクション効率のコントロールとして用いた(51)。共培養分析について、我々は、トランスフェクションによってC2C12細胞においてNotch1を発現し、HEK293細胞においてJagged1またはのLacZを発現した。その後、我々はHEK293細胞を回収し、C2C12細胞にそれらに播した。1時間のインキュベーション後、我々は共培養細胞を実験に使用した。

ウェスタンブロットと免疫沈降
我々は、抗ミオシン(MF-20)、抗HA(12CA5, Boehringer Mannheim)、抗FLAG(M2、シグマ)、抗Foxo1(H128およびN20、Santa-Cruz)、抗Notch1(C-20、Santa-Cruz))、抗Csl(Chemicon and Santa-Cruz)、抗NcoR(Santa-Cruz)、抗SMRT(サンタクルーズ)または抗MAML1(Chemicon)抗体を使用して、標準技術によってこれらの分析を行った。Foxo/Csl免疫共沈降については、我々は精製した核フラクションを使用した(52)。SDS-PAGEにおいてCslがIgG重鎖に接近して移動するため、私たちはプロテインAビーズに対する架橋抗体に対してジメチルピリミデート（dimethylpyrimilidate、DMP from Pierce))を使用し、溶出されたタンパク質複合体のIgG汚染を回避した(52)。

染色質免疫沈降アッセイ
私たちは、以前に記述されるようなC2C12細胞(4)およびFryerによって記述される(42)ような共培養細胞においてChIP分析を行なった。Hes1プロモーターのCsl結合部位を増幅するために使用されたプライマー・ペアは次の通りである: 5'-GCAAAGCCCAGAGGAAAGAGTTAG-3'および 5'-AGGAGAGAGGTAGACAGGGGATTC-3'。

siRNAトランスフェクションおよびsiRNA耐性Foxo1
Foxo1に特有のsiRNAシーケンスは5'-ACGGAGGATTGAACCAGTATA-3'である。Cslの特異的なsiRNAシーケンスは5'-TAGGGAAGCTATGCGAAATTA-3'である。

siRNAはリポフェクタミン-プラス試薬(Invitrogen)を使用してトランスフェクトした。我々は、配列5'-ACGGCGGTCTGAACCAGTATA-3'に3つの残基(下線強調)を置き換えることにより、siRNA耐性のFoxo1を生成した。リアルタイムRT-PCR研究のために使用されたプライマー配列は要求に応じて入手可能である。

組換え型タンパク質と相互作用アッセイ
私たちはpGEX6P-1へのクローニングによりアミノ酸1-527、1-279、1-172および279-527断片を含むGST-FLAG-Cslを生成した。GST-Foxo1構成物は記述された通りである(53)。細菌培養およびIPTG誘導に続いて、私たちはGST融合タンパク質を精製し、それらを一緒にインキュベートした。その後、我々は抗FLAG抗体での免疫沈降によりGST-FLAG/Cslを単離し、免疫のペレットを広範囲に洗浄し、抗Foxo1抗血清で免疫ブロットを行った。

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第７のシリーズの実験
糖尿病患者はしばしば肥満および血管の病理を開発する。糖尿病の合併症に寄与する分子のメカニズムはこれから解明する。過去2年内に、私は出生後の欠陥に対するNotch4ノックアウトマウスを評価した。これらの分析は、Notch4突然変異体マウスが糖尿病の特徴を開発することを明らかにした:1)皮下脂肪の劇的な増加に見られるような初期の開始肥満および２）糖尿病性網膜症の網膜脈間構造暗示における減少周細胞含有量。我々は、NotchおよびFoxo1(インシュリンシグナリングの転写調整、が脂肪生成と脈管形成を調節するように協力することを見出した。Notch1、Notch1/Notch4またはFoxo1に対するマウス欠乏は、脈管原性の欠陥にて子宮内で死亡する。これらのデータは、調節異常のNotchシグナルが糖尿病の肥満および血管病理学に寄与すると我々に仮定させる。提案目的は、この仮説について考察し、かつ脂肪生成と脈管形成におけるNotchとインシュリンシグナル相互作用の役割を定義する。マウスモデルは遺伝子操作を経由してNotch、Foxo1およびインシュリン受容体活性を変更するために使用されるであろう。脂肪生成および代謝性機能障害は、これらのマウスに由来したNotch4とインシュリン受容体ノックアウトマウスおよび胚の繊維芽細胞において評価されるであろう。胚・網膜の脈管形成は、Notch1、Notch4および/またはFoxo1のためのマウスハプロ不全において評価されるであろう。最後に、増殖性網膜症におけるNotchおよびFoxo1シグナルの機能は低酸素症誘導網膜脈管形成マウスモデル中で評価されるであろう。私の経歴ゴールは、糖尿病研究の分野で独立した科学研究者になることである。

新陳代謝におけるNotch機能の評価
我々は、細胞運命決定を調節するためにNotchおよびFoxo1、インシュリンシグナル転写調整、がCSLを備えた転写の複合体を形成することを見出した。Foxo1の1つの対立遺伝子の損失は、インシュリン受容体ハプロ不全マウスにおける高血糖および高インスリン血症を救う。同様に、野生型同腹仔と比較して、マウスのNotch4の損害はより低い血糖レベルと関連した。Foxo1とNotch4は、成人ネズミ膵臓のβ-細胞におけるオーバーラップ発現パターンを共有し、Notch1が両方のα-またはβ-細胞で発現される。この目標において、我々がさらにNotch突然変異体マウスの新陳代謝を特徴づけるであろう。さらに、我々は欠陥がNotchおよびNotch/Foxo1の突然変異体マウスの膵臓の中にあるかどうか判断するであろう。

脂肪生成におけるNotch4機能の評価
我々は、Notch4ノックアウトマウスがより大きな脂肪組織貯蔵物を持っていることを見出した。皮膚において、Notch4が脂肪細胞と血管の両方で発現される。Notch4は細胞自律神経または細胞非自律神経機構のいずれかによって脂肪生成を調節するかもしれない。細胞自律神経モデルにおいて、脂肪細胞中のNotch機能は基質無血管画分における関連付ける前脂肪細胞からの分化を調節する。択一的に、Notch、脂肪組織内の脈管形成を調節するできる。その後、それは脂肪生成に影響する。我々はそのNotchとFoxo1が培養された繊維芽細胞のホルモン誘導脂肪生成を阻害するように協力することを確立した。インシュリン受容体突然変異体マウスにおいて、脂肪生成が乱され、かつ分化はFoxo1を阻害することにより部分的に救在された。しかしながら、Notch機能の異常がインシュリン依存の脂肪細胞分化および機能に生体内で影響する場合があるかどうかは未知である。この質問に取り組み始めるために、我々はさらに皮下・内臓の脂肪の部への焦点を備えたNotch突然変異体マウス中の脂肪の表現型を特徴づけるであろう。我々はそれから、もしNotch4不足がInsr突然変異体マウス中の皮下の脂肪の表現型を救うならば決定する。最後に、我々はNotch4とInsrの欠陥のあるマウスに由来した胚の繊維芽細胞の脂肪細胞分化におけるNotch機能を評価するであろう。我々のゴールは、脂肪細胞分化におけるNotchとインシュリン相互作用の役割を決定することである。

糖尿病と肥満
肥満は、インスリン抵抗性、高血糖および種類2糖尿病{Eckel、2005年の#769}の発生のための主要な危険因子である。それは心血管の機能障害にもまた関係する。脂肪組織は、エネルギー超過のうちにトリアシルグリセロールを蓄えて、エネルギー剥奪のうちに遊離脂肪酸およびグリセリンを放出する際に重要な代謝機能を有する。さらに、脂肪細胞は脂肪動態と名付けられて、多くの生物活性の物質を生むことにより同化作用のホメオスタシスを調節する。脂肪動態はホルモン細胞分裂、増殖因子および他の生物活性の合成物からなる。命題はレプチン、腫瘍壊死因子アルファ、アンギオテンシンII、インターロイキン6、インターロイキン1、adiponectin、resistinおよびプロスタグランジンを含む。分泌された要因は、同化作用管の生物学を調節する際に主な役割を果たし、インスリン抵抗性と心疾患の間の接続であるためにそういうものとして提案された。肥満の発生は、インシュリンシグナルによって調節され、かつ脈管形成に依存性のように見える。脂肪細胞において、インシュリンシグナルが血管内皮増殖因子(VEGF){ミック(2002年の#767})を誘導する。VEGFは、血管壁漏れやすさ{Yancopoulos(2000年の#65})と同様に内皮細胞増殖、移植および分化も促進することができる脈管形成の有力な誘導物質である。肥満のマウスモデルににおいて、VEGFのアンタゴニストが脈管形性だけでなく脂肪生成{Rupnick、2002年#766を防ぐ;Fukumura(2003年の#768})も崩壊する。したがって、脂肪組織において脂肪細胞分化および脈管形成の相互のパラクリン調節がある。

脂肪生成の中のNotch機能
脂肪細胞分化につけたNotchの役割はちょうど解明され始める。インビトロの分析を使用して、Notchシグナルは繊維芽細胞のホルモンに誘導された脂肪生成を促進し阻害することに示した。ストロマの細胞株には、Notchがその後、脂肪細胞分化{Sciaudone、2003年の#772}の増加に結びついた骨芽細胞分化を乱した。これに対し、両方のリガンド媒介Notchシグナル、または本質的に活発なNotch1の異所的発現は、3T3-L1繊維芽細胞{ガルセス(1997年#177)の脂肪生成を阻害した;ロス(2004年の#773})。同様に、Notch目標遺伝子の過剰発現、HES1は、繊維芽細胞{ロス(2004年の#773})の脂肪細胞分化を阻害した。siRNAを備えたHES1発現を崩壊することはさらに繊維芽細胞脂肪細胞分化を阻害した。したがって、Notchの抑制および活性化の両方は、脂肪生成がNotchシグナルに敏感な投薬であることを示唆する脂肪生成を乱す。

脂肪細胞に特有の遺伝子C/EBPαおよびPPARγの損失で関連繊維芽細胞脂肪生成のNotchを媒介とした抑制した。Notchシグナルが活性化された繊維芽細胞の脂肪細胞分化も発現によって救在した。C/EBPαまたはPPARγ、そのNotchの示唆は、これらの2つの遺伝子の発現を抑えることにより脂肪生成を阻害する。繊維芽細胞データと一致しているので、レチノイン酸に誘導された脂肪生成は、Notch1ノックアウト胎様体身体{ニコルズ(2004年の#770})の中でわずかに増強された。最後に、Notch1発現は、糖尿病につけたNotchの役割が脂肪細胞分化{ヤン(2003年の#777})を関連づけたことを示唆するインシュリン微妙な対象に関する耐インシュリン性の患者から分離された脂肪組織中で低減されると分かった。

糖尿病における管の合併症
糖尿病患者は、主要な高血圧症、卒中、乏血、網膜症、アテローム性動脈硬化症および心臓発作を含む多数の管の合併症を表示する。しかしながら、糖尿病の管の合併症に寄与する分子のメカニズムに関してほとんど知られていない。盲目はそのような合併症のうちの1つで、それは管の起源を持っているが、よく理解されていない。20年間の診断内で、糖尿病患者の4分の1は盲目に結びつく増殖の網膜症になる。糖尿病性網膜症は、管の浸透性、基底膜の厚化、および新血管新生{の増殖期が後続する網膜の微小血管系のpericytesの損害の増加でCukiernik(2004年の#749})を始める。管の成長因子(VEGF)は糖尿病の増殖の網膜症の進行に巻き込まれる。VEGFシグナリングは内皮細胞増殖、移住、分化および血管壁漏れやすさ{Yancopoulos(2000年の#65})を促進することができる。種類Iおよび種類II糖尿病のマウスモデルには、転写調節因子を感じる低酸素症、HIF1αおよびVEGFが目{近藤(低酸素症が糖尿病性網膜症の進行における開始の事象であることを示唆する2004年の#744})内に増加させられることが分かった。VEGFがHIF1α{Yancopoulos、2000年の#65}の直接の転写の目標であるので、VEGFの誘導は恐らくHIF1αによって調停する。糖尿病性網膜症内にVEGFのための役割を支援して、霊長動物目の中のVEGFの異所的発現は、増殖の網膜症および黄斑の浮腫{Lebherz(2005年の#748})の急速現像に結びつく。糖尿病のネズミモデルには、VEGFレセプタシグナル阻害剤SU5416の皮下注射がVEGFを抑え、網膜の微小血管の浸透性および血管収縮{Cukiernik(2004年の#749})を誘導した。最後に、3つのすべてのVEGFRの阻害剤の内因性注入、PTK/ZKは低酸素症のマウスモデル{マイエル(2005年の#750})の中の網膜新生血管を低減する。したがって、VEGF信号の調節異常は増殖の網膜症の進行に重大な役割を果たし、さらに他の糖尿病の管の合併症に寄与することができる。

新陳代謝におけるNotch機能の評価
我々は、NotchおよびFoxo1、インシュリンシグナルの転写調整がCSLを持つ転写複合体を形成し、細胞運命決定を調節することを見出した。Foxo1の1つの対立遺伝子の損失は、インシュリンシグナル欠陥のあるマウス(Nakae 2002年ng)において高血糖および高インスリン血症を救出する。マウスにおいて、血糖レベルの著しい減少に関連するN4の損失は、野生体同腹児に匹敵する。Foxo1のようにNotch4は新陳代謝を調節する際にインシュリンシグナルに反対するかもしれない。グルコースとインシュリンのレベルを循環させることは、肝臓のように組織を生産するグルコース、および島状β細胞を生産するインシュリンの両方によって調節される。膵臓の細胞β細胞およびFoxo1遺伝子組換えにおける増加したFoxo1シグナルは、β細胞失敗および糖尿病(Nakea 2002年ng)導く。Foxo1とNotch4は、Notch1が両方のαおよびβ細胞を発現しながら、成人マウス膵臓のβ細胞におけるオーバーラップする発現パターンを共有する。したがって、Notch4および／またはNotch1は膵臓島の内分泌腺の細胞に機能を持っているかもしれない。この目標には、我々がさらにNotch突然変異体マウスの新陳代謝および膵臓を特徴づける。Notch突然変異体マウスは交差されるL2、Ttr-Insr-/-マウス(図21)、かつN4および(または)N1不足がこのInsrの不十分な背景の中で観察された糖尿病・膵臓の欠陥を抑えるかどうか判断するために使用される。

脂肪生成におけるNotch機能の評価
我々は、N4ノックアウトマウスが皮膚の脂肪異常発達を持っていることを見出した。N4突然変異体マウス中のこの脂肪組織表現型は、脂肪細胞の細胞の自律の欠陥、または非細胞の自律の脈管原性の欠陥から発生するかもしれない。N4のハプロ不全マウスとは対照的にInsr欠陥のあるマウスは脂肪組織発育不全になる{Cinti、1998年#774を表示します;北村、2004年の#745}(岡本JCI 2004)。支配的な陰性のFoxo1の異所的発現は脂肪生成を回復するInsr-/―胚の繊維芽細胞{Nakae(2003年の#765})。我々は、NotchとFoxo1が繊維芽細胞のホルモンに誘導された脂肪生成を阻害するように協力することを見出した。インシュリンシグナル(図3)を備えた停止中のFoxo1機能以来、Notchはさらに脂肪生成にインシュリンシグナルに対して反対する機能を持っているかもしれない。脂肪細胞と一致している、Notch4のための自律の機能はNotch4は皮下の脂肪細胞内に発現される。したがって、我々はNotchとNotchに由来した胚の繊維芽細胞のNotch機能脂肪生成をInsr欠陥のあるマウスに対して評価する。我々はさらに皮下脂肪欠陥を特徴づけて、Notch突然変異体マウス中の内臓の脂肪組織を評価する。最後に、我々はNotch4不足がInsr突然変異体マウスの皮膚の脂肪組織欠陥を救う場合、測定する。

肥満のマウス・モデルにおいて、VEGFのアンタゴニストが脈管形成および脂肪生成{Rupnick(2002年#766)の両方を阻害し;Fukumura、2003年の#768}、脈管形成と脂肪生成の相互の調節があることを示す。N4のハプロ不全マウスがさらに網膜の脈管形成の欠陥を表示するので、皮下脂肪の観察された増加は内皮細胞機能障害から発生するかもしれない。したがって、我々は、さらに違いがNotch突然変異体マウスの脂肪組織血管にあるかどうか判断するであろう。

［第８のシリーズの実験］
［マウス血漿に存在するラットNotch１デコイ］マウス血清に存在されるラットNotch1デコイ
哺乳類血流におけるラットNotch1デコイ系生物の安定性を試験した。図１１８に示すようにNotchデコイは哺乳類循環システムで安定である。

ヌードマウスは、制御アデノウイルスまたはラットNotch1デコイ(rN1デコイ)を発現するアデノウイルスで注入された。注入後２週間において、リンパ液は収集され、かつ４マイクロリットルがウエスタンブロット分析で評価された。この分析は、全長ラットNotch1デコイタンパク質（図１１８の矢印参照）がマウスにおいて発現でき、かつ分解の僅かな証拠で検出レベルにて現れることを証明する。
［第９のシリーズの実験］
ヒトNotch1デコイ (h-Notch (1-36)デコイ)およびラットNotch1デコイブロックマウス乳房腫瘍増殖
ヒトNotch1デコイおよびラットNotch1デコイの活性は、乳房腫瘍細胞株、Mm5MT-FGF4、の増殖に対して比較される。図１１９に示すように両方のhNotch1デコイおよびrNaotch1デコイはMm5Mt-FGF4の増殖速度を減少する。

我々は、ヌードマウスでMm5MT-FGF4細胞増殖に利用する腫瘍モードを開発した。この実験で、2×10⁵ Mm5MT-FGF4細胞はヌードマウスに移植し、かつ４日間後のアデノウイルスをFC制御にコードし、ラットNotch1デコイまたはヒトNotch1デコイは眼球静脈に注入した。Notchデコイはマウス肝臓に感染され、かつ血流に分泌されるアデノウイルスによって生産される（図１１８の例）。図１１９に表される増殖曲線は、ラットNotch1デコイまたはヒトNotch1デコイがヌードマウスの腫瘍異種移植の増殖を減少することを証明する。

ラットNotch1デコイが肺組織へのSKNEP1 転移を阻害する
Notch1デコイはマウスモードで転移をブロックできる。我々は、腫瘍増殖およびユーイング肉腫細胞株、SKNEP、の転移に対するラットNotch1デコイの活性を試験した。この腫瘍モデルにおいて、SKNEP腫瘍細胞は腫瘍が増殖し、それから肺に転移された子に同所性に移植する。SKNEP腫瘍細胞のラットNotch1デコイの発現は、図１２０に示すように腫瘍増殖および肺への繊維を減少する。

SKNEP1ユーイング肉腫細胞は、制御FCタンパク質またはラットNotch1デコイs1 (sort 2)またはラットNotch1デコイs4 (sort 4)を発現するためにプログラムされる。６週間の腫瘍増殖後に、肺への転移は組織学的に評価した。ラットNotch1デコイを発現するSKNEP1細胞は、転移に対して陽性であった僅かな肺を示した。我々は、ヌードマウスのラットNotch1デコイの発現がSKNEP1細胞の容量を減少し、肺に転移することを結論する。

［第１０のシリーズの実験］
Notch1およびNotch4はマウス皮膚のリンパ管中でVEGFR-3およびLYVE-1で共発現する
Notch1およびNotch4はマウス皮膚のリンパ管で発現する
我々は、マウスP4背部皮膚の脈管構造でのNotch1およびNotch4の発現を分析した。この時点で、経皮リンパ管は表面近くのリンパキャピラリーに活発に再造形し、かつ低経皮層の管に集まる。皮膚の５μｍ断面はNotch1またはNotch4（赤）およびPECAM, VEGFR-3またはLYVE-1（緑）に対する抗体で共染色された。Notch1およびNotch4は、血液およびリンパ管内皮細胞マーカ、PECAM (上部パネル、図１２１)での重複するパターンの発現を共有する。Notch1およびNotch4は、両方のVEGFR-3 （中間パネル、図１２１）および経皮脈管構造のLYVE-1（下部パネル、図１２１）で共発現された。この発現パターンはNotch1およびNotch4が発現され、かつ新生児新皮のリンパ管で機能するかもしれないことを証明する。

真皮リンパキャピラリーはNotch4変異体マウスで変化する
我々は、P4マウスの経皮リンパを試験した。野生型セクションおよびNotch4ヌル接合体はPECAMおよびLYVE-1（緑）に対する抗体で免疫染色される。PECAM染色の分析は変異体と野生型皮膚（上部パネル、図122）の間に同様に見られた。これに対し、Notch4マウスの皮膚のLYVE-1-陽性管は野生型のそれより異なる形態学を有する（中間パネル、図122）。Notch4マウスLYVE-1管はしばしば拡張され、かつLYVE-1染色は不連続であった（下部パネル、図122）。これらの結果は、Notch4シグナルがリンパ血管網状組織の再造形に関与してもよいことを提案する。

Notch4損失は減少されたLYVE-1陽性管を結果として生じる
Notch4異型接合性（N4+/-）マウスは交尾され、結果として得られた子の背部皮膚は取り除かれ、かつ出生後１４日に包理される。結果は図123に示す。皮膚の断面は、内皮細胞マーカ、PECAM（データ示さず）、またはリンパ内皮細胞マーカ、LYVE1 (A)に免疫染色される。それぞれに対して５つの領域は顕微鏡によって捕捉され、かつPECAMおよびLYVE1染色は画像ソフトウェア(B, C)を用いて定量される。PECAM発現は野生型(WT)新皮(B)に比べてN4-/-新皮で約25%に減少する。LYVE-1染色は、WTマウス(C)に比べてN4-/-で約50%減少されるLYVE1染色でPECAMより影響を受けた。WT (A)に比べてN4-/-リンパでLYVE1 染色の強度での減少であった。

マウスのNotch4機能の損失はリンパ管形成における役割を示唆する皮膚リンパの発達を崩壊する。

Notch1およびNotch4はヒト乳がんで発現する
我々は、ヒト乳がんのVEGFR-3またはLYVE-1 (緑)およびNotch1またはNotch4 (赤)に対する抗体で二重免疫組織化学をなした。結果は図124に示す。Notch1およびNotch4は腫瘍外血液およびヒト微小乳頭乳がんのリンパ内皮で発現される。測定するために、もしNotch1情報伝達が腫瘍リンパ内皮内で活性化されるならば、我々はポドプレニン（podoplanin） (緑)およびN1Val (赤; 細胞シグナル)に対する抗体で二重染色し、抗体は活性化Notch1ペプチドを特別に検出する。活性化Notch1ペプチドの発現は、殆ど（白矢印）観測されるが、リンパ内皮核（下部パネル）の全て（黄色矢印）ではない。これらの結果は、Notch1が病理学的なリンパ管で活発に情報伝達することを証明する。これらの結果は、またNotch1およびNotch4が腫瘍リンパ管形成に機能するかもしれないことを証明する。

Notch1およびNotch4はヒト乳がんで発現する
我々は、ヒト乳がんのVEGFR-3またはLYVE-1 (緑)およびNotch1またはNotch4 (赤)に対する抗体で二重免疫組織化学をなした。結果は図124に示す。Notch1およびNotch4は腫瘍外血液およびヒト微小乳頭乳がんのリンパ内皮で発現される。測定するために、もしNotch1情報伝達が腫瘍リンパ内皮内で活性化されるならば、我々はポドプレニン（podoplanin） (緑)およびN1Val (赤; 細胞シグナル)に対する抗体で二重染色し、抗体は活性化Notch1ペプチドを特別に検出する。活性化Notch1ペプチドの発現は、殆ど（白矢印）観測されるが、リンパ内皮核（下部パネル）の全て（黄色矢印）ではない。これらの結果は、Notch1が病理学的なリンパ管で活発に情報伝達することを証明する。これらの結果は、またNotch1およびNotch4が腫瘍リンパ管形成に機能するかもしれないことを証明する。
以下に、本願の出願当初の請求項を実施の態様として付記する。
［１］シグナルペプチド、ヒトNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインおよびそれに対して結合する抗体のFc部分を有する融合タンパク質。
［２］当該Notch受容体タンパク質がNotch１レセプタータンパク質である［１］の融合タンパク質。
［３］当該Notchレセプタータンパク質がNotch２レセプタータンパク質である［１］の融合タンパク質。
［４］当該Notchレセプタータンパク質がNotch３レセプタータンパク質である［１］の融合タンパク質。
［５］当該Notchレセプタータンパク質がNotch４レセプタータンパク質である［１］の融合タンパク質。
［６］当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である［１］の融合タンパク質。
［７］当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である［２］の融合タンパク質。
［８］当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である［３］の融合タンパク質。
［９］当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である［４］の融合タンパク質。
［１０］当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である［５］の融合タンパク質。
［１１］当該シグナルペプチドがNotch１、Notch２、Notch３、Notch４またはIgG重鎖である［１］の融合タンパク質。
［１２］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−36を含む［２］の融合タンパク質。
［１３］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−13を含む［２］の融合タンパク質。
［１４］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−24を含む［２］の融合タンパク質。
［１５］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復9−23を含む［２］の融合タンパク質。
［１６］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復9−36を含む［２］の融合タンパク質。
［１７］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復13−24を含む［２］の融合タンパク質。
［１８］当該Notch１レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復25−36を含む［２］の融合タンパク質。
［１９］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−29を含む［５］の融合タンパク質。
［２０］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−13を含む［５］の融合タンパク質。
［２１］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復1−23を含む［５］の融合タンパク質。
［２２］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復9−23を含む［５］の融合タンパク質。
［２３］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復9−29を含む［５］の融合タンパク質。
［２４］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復13−23を含む［５］の融合タンパク質。
［２５］当該Notch4レセプタータンパク質の細胞ガイドメインが、EGF様反復21−29を含む［５］の融合タンパク質。
［２６］配列番号５４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［２７］配列番号５５に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［２８］配列番号５６に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［２９］配列番号５７に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３０］配列番号５８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３１］配列番号５９に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３２］配列番号６０に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３３］配列番号６１に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３４］配列番号６２に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３５］配列番号６３に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３６］配列番号６４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［２］の融合タンパク質。
［３７］配列番号６５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［３８］配列番号６６に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［３９］配列番号６７に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４０］配列番号６８に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４１］配列番号６９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４２］配列番号７０に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４３］配列番号７１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４４］配列番号７２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４５］配列番号７３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４６］配列番号７４に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４７］配列番号７５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［２］の融合タンパク質。
［４８］配列番号７８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［４９］配列番号７９に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５０］配列番号８０に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５１］配列番号８１に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５２］配列番号８２に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５３］配列番号８３に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５４］配列番号８４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５５］配列番号８５に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５６］配列番号８６に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５７］配列番号８７に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５８］配列番号８８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む［５］の融合タンパク質。
［５９］配列番号８９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６０］配列番号９０に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６１］配列番号９１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６２］配列番号９２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６３］配列番号９３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６４］配列番号９４に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６５］配列番号９５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６６］配列番号９６に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６７］配列番号９７に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６８］配列番号９８に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［６９］配列番号９９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［７０］配列番号１００に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［７１］配列番号１０１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［７２］配列番号１０２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［７３］配列番号１０３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる［５］の融合タンパク質。
［７４］腫瘍を有する対象を治療するために有効な量の［１］−［７３］の融合タンパク質を対象に投与し、それにより腫瘍を有する当該対象を治療することを含む腫瘍を有する対象を治療する方法。
［７５］対象における脈管形成を阻害するために有効な量の［１］−［７３］の融合タンパク質を対象に投与し、それにより当該対象において脈管形成を阻害することを含む対象における脈管形成を阻害する方法。
［７６］対象を治療するために有効な量の［１］−［７３］の融合タンパク質を対象に投与し、それにより卵巣癌を有する当該対象を治療することを含む卵巣癌を有する対象を治療する方法。
［７７］対象を治療するために有効な量の［１］−［７３］の融合タンパク質を対象に投与し、それにより代謝性疾患を有する当該対象を治療することを含む代謝性疾患を有する対象を治療する方法。
［７８］当該代謝性疾患が、糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中、または循環器病である［７７］の方法。
［７９］腫瘍を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための［１］〜［７３］の融合タンパク質の使用。
［８０］対象における脈管形成を阻害するための薬学的組成物を製造するための［１］〜［７３］の融合タンパク質の使用。
［８１］卵巣癌を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための［１］〜［７３］の融合タンパク質の使用。
［８２］代謝性疾患を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための［１］〜［７３］の融合タンパク質の使用。
［８３］当該代謝性疾患が、糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中、または循環器病である［８２］の使用。
［８４］対象における生理的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害するために有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における生理学的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害する方法。
［８５］当該病理学的なリンパ管形成が腫瘍リンパ管形成またはリンパ節転移である［８４］の方法。
［８６］対象における腫瘍リンパ節転移を阻害するために有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍リンパ節転移を阻害する方法。
［８７］当該転移が血管、リンパ性脈管構造またはリンパ節を介して生じる［８６］の方法。
［８８］対象における二次的腫瘍の増殖を阻害するために有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における二次的腫瘍の増殖を阻害する方法。
［８９］当該二次的腫瘍の増殖が、二次的腫瘍に関連する脈管形成の阻害により阻害される［８８］の方法。
［９０］対象における腫瘍による血管取り込みを阻害するために有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍による血管取り込みを阻害する方法。
［９１］対象における癌を治療するために各々有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質と血管内皮成長因子（VEGF）の阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
［９２］前記VEGFの阻害剤が、VEGF-A、PGEF、FEGF-B、VEGF-CまたはVEGF-Dの阻害剤である［９１］の方法。
［９３］対象における癌を治療するために各々有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質とVEGFレセプター阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
［９４］当該VEGFレセプター阻害剤が、VEGFR-1阻害剤、VEGFR-2阻害剤またはVEGFR-3阻害剤である［９３］の方法。
［９５］対象における癌を治療するために各々有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質と血小板由来成長因子（PDGF）の阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
［９６］血小板由来成長因子の阻害剤が、PDGF-Aの阻害剤またはPDGF-Bの阻害剤である［９５］の方法。
［９７］対象における癌を治療するために各々有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質とPDGFレセプターアンタゴニストとを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
［９８］当該PDGFレセプターアンタゴニストがPDGFレセプター-B-アンタゴニストである［９７］の方法。
［９９］対象における癌を治療するために各々有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質とHER2/neuの阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
［１００］血管性の増殖性網膜症の治療に有効な量の［１］〜［７３］の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む血管性の増殖性網膜症の治療方法。
［１０１］前記血管性の増殖性網膜症が、糖尿病性網膜症、黄斑変性（macular defernation）または未熟児網膜症である［１００］の方法。

Claims

シグナルペプチド、ヒトNotchレセプタータンパク質の細胞外ドメインおよびそれに対して結合する抗体のFc部分を有する融合タンパク質。
当該Notch受容体タンパク質がNotch１レセプタータンパク質である請求項１の融合タンパク質。
当該Notchレセプタータンパク質がNotch２レセプタータンパク質である請求項１の融合タンパク質。
当該Notchレセプタータンパク質がNotch３レセプタータンパク質である請求項１の融合タンパク質。
当該Notchレセプタータンパク質がNotch４レセプタータンパク質である請求項１の融合タンパク質。
当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である請求項１の融合タンパク質。
当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である請求項２の融合タンパク質。
当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である請求項３の融合タンパク質。
当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である請求項４の融合タンパク質。
当該抗体のFc部分がヒト抗体のFc部分である請求項５の融合タンパク質。
当該シグナルペプチドがNotch１、Notch２、Notch３、Notch４またはIgG重鎖である請求項１の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−36を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−13を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−24を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復9−23を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復9−36を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復13−24を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch１レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復25−36を含む請求項２の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−29を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−13を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復1−23を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復9−23を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復9−29を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復13−23を含む請求項５の融合タンパク質。
当該Notch4レセプタータンパク質の細胞外ドメインが、EGF様反復21−29を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号５４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号５５に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号５６に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号５７に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号５８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号５９に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６０に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６１に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６２に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６３に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項２の融合タンパク質。
配列番号６５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号６６に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号６７に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号６８に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号６９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７０に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７４に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項２の融合タンパク質。
配列番号７８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号７９に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８０に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８１に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８２に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８３に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８４に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８５に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８６に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８７に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８８に記載の配列である連続したアミノ酸を含む請求項５の融合タンパク質。
配列番号８９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９０に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９４に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９５に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９６に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９７に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９８に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号９９に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号１００に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号１０１に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号１０２に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
配列番号１０３に記載の配列である連続したヌクレオチドによりコードされる請求項５の融合タンパク質。
腫瘍を有する対象を治療するために有効な量の請求項１−７３の融合タンパク質を対象に投与し、それにより腫瘍を有する当該対象を治療することを含む腫瘍を有する対象を治療する方法。
対象における脈管形成を阻害するために有効な量の請求項１−７３の融合タンパク質を対象に投与し、それにより当該対象において脈管形成を阻害することを含む対象における脈管形成を阻害する方法。
対象を治療するために有効な量の請求項１−７３の融合タンパク質を対象に投与し、それにより卵巣癌を有する当該対象を治療することを含む卵巣癌を有する対象を治療する方法。
対象を治療するために有効な量の請求項１−７３の融合タンパク質を対象に投与し、それにより代謝性疾患を有する当該対象を治療することを含む代謝性疾患を有する対象を治療する方法。
当該代謝性疾患が、糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中、または循環器病である請求項７７の方法。
腫瘍を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための請求項１〜７３の融合タンパク質の使用。
対象における脈管形成を阻害するための薬学的組成物を製造するための請求項１〜７３の融合タンパク質の使用。
卵巣癌を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための請求項１〜７３の融合タンパク質の使用。
代謝性疾患を有する対象の治療のための薬学的組成物を製造するための請求項１〜７３の融合タンパク質の使用。
当該代謝性疾患が、糖尿病、肥満、アテローム性動脈硬化、虚血、脳卒中、または循環器病である請求項８２の使用。
対象における生理的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害するために有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における生理学的なリンパ管形成または病理学的なリンパ管形成を阻害する方法。
当該病理学的なリンパ管形成が腫瘍リンパ管形成またはリンパ節転移である請求項８４の方法。
対象における腫瘍リンパ節転移を阻害するために有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍リンパ節転移を阻害する方法。
当該転移が血管、リンパ性脈管構造またはリンパ節を介して生じる請求項８６の方法。
対象における二次的腫瘍の増殖を阻害するために有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における二次的腫瘍の増殖を阻害する方法。
当該二次的腫瘍の増殖が、二次的腫瘍に関連する脈管形成の阻害により阻害される請求項８８の方法。
対象における腫瘍による血管取り込みを阻害するために有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む、対象における腫瘍による血管取り込みを阻害する方法。
対象における癌を治療するために各々有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質と血管内皮成長因子（VEGF）の阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
前記VEGFの阻害剤が、VEGF-A、PGEF、FEGF-B、VEGF-CまたはVEGF-Dの阻害剤である請求項９１の方法。
対象における癌を治療するために各々有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質とVEGFレセプター阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
当該VEGFレセプター阻害剤が、VEGFR-1阻害剤、VEGFR-2阻害剤またはVEGFR-3阻害剤である請求項９３の方法。
対象における癌を治療するために各々有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質と血小板由来成長因子（PDGF）の阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
血小板由来成長因子の阻害剤が、PDGF-Aの阻害剤またはPDGF-Bの阻害剤である請求項９５の方法。
対象における癌を治療するために各々有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質とPDGFレセプターアンタゴニストとを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
当該PDGFレセプターアンタゴニストがPDGFレセプター-B-アンタゴニストである請求項９７の方法。
対象における癌を治療するために各々有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質とHER2/neuの阻害剤とを対象に投与することを含む対象における癌を治療する方法。
血管性の増殖性網膜症の治療に有効な量の請求項１〜７３の何れか１項に記載の融合タンパク質を対象に投与することを含む血管性の増殖性網膜症の治療方法。
前記血管性の増殖性網膜症が、糖尿病性網膜症、黄斑変性（macular defernation）または未熟児網膜症である請求項１００の方法。