JP2015166323A - 角膜疾患若しくは角膜損傷の予防、抑制又は治療剤、細胞シート、細胞培養補助剤、並びに細胞培養方法 - Google Patents
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Abstract
Description
現在角膜内皮をターゲットとした薬物治療はなく、唯一水疱性角膜症になった際は全層角膜移植や角膜内皮移植などの角膜移植しか方法がない。現在水疱性角膜症は角膜移植術の原因疾患の第一位を占めている。しかし水疱性角膜症に対する全層角膜移植術は、移植片の寿命が他の疾患と比較して短く、予後不良であることが指摘されている。また本邦ではドナー角膜の供給が不十分であり、現時点で唯一の治療法である角膜移植ですら十分行うことができず、多くの患者が角膜内皮の機能不全によって生じる角膜混濁による視機能低下に苦しんでいる。このような背景から角膜内皮の機能回復や、水疱性角膜症予防を目的とした治療法の開発が望まれているが、全くないのが現状である。
近年、マウス角膜実質より幹細胞の特徴をもつ細胞の分離が報告されている(非特許文献4)。神経堤由来であるこの幹細胞は分化誘導培地を用いることで、神経細胞や脂肪細胞などにも分化する能力を有する。組織幹細胞/前駆細胞を、TGFbを添加した培地中で接着培養することにより、これらの細胞を角膜内皮細胞へと分化誘導し得ることが報告されているが(特許文献4)、角膜内皮細胞としての機能(例えばポンプ機能)の有無については示されていない。
これまでに、角膜内皮細胞を浮遊培養することで得られる凝集体(Sphere)が角膜内皮前駆細胞の性質を有していることが報告されている(特許文献5及び非特許文献3)。しかし、この方法で得られる凝集体は角膜内皮の起源である神経堤幹細胞のマーカーp75を発現しておらず、その未分化性については不明である。
角膜内皮細胞はin vivoでは分裂することはないといわれているが、in vitroではある程度は増殖可能である。角膜内皮細胞をin vitroで増殖させ、これを治療に利用する方法も試みられている(非特許文献1及び特許文献1〜3)。しかし、従来の血清を用いた培養法では、角膜内皮細胞を長期培養するとその細胞が変化して角膜内皮機能が失われ、最終的には増殖は完全に停止してしまい、通常継代数5〜7まで増殖させることしかできない(非特許文献2)
その他にも培養角膜内皮細胞を用いた細胞注入治療の開発、及び遺伝子導入技術やRhoキナーゼ阻害剤の点眼治療等の培養角膜内皮細胞を増殖させる技術があっても、細胞状態が悪い、少量しか生産できない、技術要求レベルが高い、コストが高いなどの理由により、培養角膜内皮細胞の移植は行われておらず、臨床応用には難しいのが現状である。
Sema3Aと角膜との関連については、近年数例の報告がある。非特許文献6にはSema3Aが角膜上皮、角膜実質、角膜内皮のそれぞれに発現することが示されている。また、角膜創傷又は炎症によりSema3Aの発現が増強することが報告されている(非特許文献7及び非特許文献8)。
しかしこれまでに、角膜におけるSema3Aの作用及び機能について明らかにしたという報告はない。
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
(2)前記角膜疾患が、角膜内皮細胞数の減少又は機能不全を伴う障害である前記(1)に記載の角膜疾患若しくは角膜損傷の予防、抑制又は治療剤。
(3)以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドの存在下で培養され、角膜内皮細胞を含むことを特徴とする細胞シート
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
(4)以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドを有効成分として含有することを特徴とする角膜内皮細胞用の細胞培養補助剤
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
(5)角膜内皮細胞を以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドの存在下で培養する工程を有することを特徴とする細胞培養方法
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
(a) 配列表の配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aa(「第166番アミノ酸〜第235番アミノ酸」を意味する)の領域を含むポリペプチド。
(b) 配列表の配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド。
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
のように類似の性質を有するものにグループ分けでき、これらの間での置換であればポリペプチドの性質が変化しないことが多いことが知られている。従って、上記(a)又は(b)のポリペプチド中のアミノ酸残基を置換する場合には、これらの各グループの間で置換することにより、有効成分として用いるポリペプチドの結膜における角膜疾患若しくは角膜損傷の予防、抑制又は治療活性を維持できる可能性が高くなる。
角膜疾患としては、角膜内皮細胞の減少又は機能不全を伴う角膜内皮障害であることが好ましい。角膜内皮細胞の減少又は機能不全が生じると、角膜内皮細胞による角膜実質の水分コントロールができなくなり、角膜内皮のみならず角膜全体の障害となり得る。また、角膜内皮細胞の機能を高めることにより角膜全体の障害の予防、抑制又は治療に有効となり得る。
角膜内皮細胞の減少又は機能不全を伴う角膜疾患としては、水疱性角膜症、落屑症候群(PE)、落屑角膜症、偽落屑角膜内皮症、角膜ヘルペス先天性遺伝性角膜内皮ジストロフィーに代表される先天性角膜内皮変性症、滴状角膜、フックス角膜内皮変性症、フックス角膜内皮ジストロフィー、後部多形性角膜ジストロフィー、虹彩角膜内皮症候群等の角膜内皮変性、角膜内皮細胞ジストロフィー、ウイルス感染による角膜内皮炎(サイトメガロウイルス角膜内皮炎、単純ヘルペスウイルス角膜内皮炎)、細菌性角膜感染症、角膜真菌症、アメーバ角膜炎、角膜移植後拒絶反応等を挙げることができる。
角膜内皮損傷を引き起こす恐れのある手術手法としては内眼手術、レーザー治療などが挙げられ、これらに限定されない。具体的な手術の例としては、角膜移植手術、網膜・硝子体手術、白内障手術、PE患者への術後治療、緑内障手術(濾過手術、周辺虹彩切開、レーザー治療)、続発白内障に対するレーザー治療(YAG)、レーザー虹彩切開術(LI)、レーザー隅角形成術(LGP)、隅角癒着解離術(GSL)、レーザー近視手術、エキシマレーザーによる組織の蒸散などを例示できる。
上記に挙げられる原因によって引き起こされた角膜内皮障害により、最終的に至る疾患として水疱性角膜症がある。
上記コンタクトレンズ型では、コンタクトレンズ状の球面を有する透明の膜にセマフォリン3Aを含有させ、膜から放出されたセマフォリン3Aを角膜へと投与することができる。
投与量は、症状、年齢、体重、投与方法等に応じて適宜選択され、特に限定されないが、点眼量の場合、通常、対象動物に対し有効成分量として1日6000〜60000 U程度、好ましくは4000〜40000 U程度である(国際公開第2013/005603参照)。結膜下注射量の場合、通常、対象動物に対し有効成分量として1日500〜5000 U程度、好ましくは500〜5000 U程度であり、1回ないし数回に分けて投与される。例えば、結膜下注射量1日0.001〜10ng程度、0.05〜5ng程度とすることができ、例えば10ng/ml, 100ng/ml, 300ng/ml 1000ng/mlの濃度で各眼2μl、好ましくは、症状の改善の程度に応じ、数日ないし数ヶ月間にわたり、毎日1回若しくは数回、ないしは数日おきに1日若しくは数回、定期的に投与がなされる。
上記眼軟膏剤を例とすると、例えばSema3A/ヒアルロン酸軟膏、Sema3A/ネオメドロールEE軟膏、Sema3A/眼・耳科用リンデロンA軟膏、Sema3A/フラビタン眼軟膏0.1%を例示できる。Sema3A/ヒアルロン酸軟膏はヒアルロン酸眼科手術用製剤として使用することができる。上記ネオメドロールEE軟膏は抗生物質と合成副腎皮質ホルモン剤の配合剤であり、Sema3Aと併用することで高い抗炎症作用が期待できる。これは上記リンデロンA軟膏についても同様である。尚、ネオメドロールEE軟膏中の成分から副腎皮質ホルモンの成分を適宜減らして適用してもよい。
本発明の予防、抑制又は治療剤は、アスコルビン酸−2−リン酸、Rock阻害剤又はその類縁物質等の角膜内皮細胞の増殖促進を促すことが知られる物質と併用することができる。
本発明の角膜内皮細胞用の細胞培養補助剤は、セマフォリン3Aを有効成分として含有する。セマフォリン3Aとしては、上述の≪予防、抑制又は治療剤≫で示したものと同一のものを用いることができる。角膜内皮細胞としては、角膜より単離した角膜内皮プライマリ細胞、角膜内皮幹細胞の他、それを継代した継代後の角膜内皮細胞、角膜内皮前駆細胞若しくはその他任意の細胞から分化誘導された角膜内皮細胞、角膜内皮幹細胞、角膜内皮前駆細胞又は角膜内皮細胞と同様の性質を示す角膜内皮様細胞であってもよい。
また、本発明の細胞培養補助剤は上記セマフォリン3Aの他に、栄養成分、成長因子、細胞増殖因子、分化誘導因子、抗菌剤、抗真菌剤等の従来公知の細胞培養補助剤として用いられる成分をさらに含んでもよく、副腎皮質ステロイドホルモン等の抗炎症成分、アスコルビン酸−2−リン酸、Rock阻害剤又はその類縁物質等の角膜内皮細胞の増殖促進を促すことが知られる物質をさらに含んでもよい。
本発明の細胞培養補助剤は、培養対象である角膜内皮細胞の培地に適量を添加して用いてもよく、細胞培養補助剤が培地成分を含有して細胞培養補助剤自体を培地として用いてもよい。細胞培養補助剤が含有するセマフォリン3Aの濃度は、当該補助剤を用いる対象の角膜内皮細胞の種類、状態、量等に応じて適宜選択することが可能であるが、培地あたり1〜3000ng/mLとすることが好ましく、20〜900ng/mLとすることがより好ましく、50〜500ng/mLとすることがさらに好ましい。
上記培地成分としては、通常の動物細胞用の培地に含有される成分、グルコース、塩化ナトリウム、ビタミン・ミネラル類、アミノ酸類等の栄養成分、成長因子、細胞増殖因子、分化誘導因子、抗菌剤、抗真菌剤などを挙げることができる。
本発明の細胞培養補助剤によれば、本来の角膜内皮細胞に近い状態の角膜内皮細胞を、高い生産性で培養することができる。
本発明の細胞培養方法は、角膜内皮細胞をセマフォリン3A存在下で培養する工程を有する。セマフォリン3Aとしては、上述の≪予防、抑制又は治療剤≫で示したものと同一のものを用いることができる。角膜内皮細胞としては、上述の≪細胞培養補助剤≫で示したものと同一のものを用いることができる。
当該培養にあたっては上記セマフォリン3Aの他に、栄養成分、成長因子、細胞増殖因子、分化誘導因子、抗菌剤、抗真菌剤等の従来公知の角膜内皮細胞の培養に用いられる成分をさらに含んでもよい。また、副腎皮質ステロイドホルモン等抗炎症成分、アスコルビン酸−2−リン酸、Rock阻害剤又はその類縁物質等の角膜内皮細胞の増殖を促進させる成分と組み合わせて用いることができる。本発明の細胞培養方法によれば、本来の角膜内皮細胞に近い状態の角膜内皮細胞を、高い生産性で培養することができる。
前記培養基材としては、細胞培養用であれば特に限定されないが、例えば、フィブロネクチン、コラーゲン、ゼラチン、ヒアルロン酸、アルギン酸、ラミニン等の天然物由来の高分子材料、ポリスチレン、ポリエステル、ポリエチレン、ポリプロピレン等の合成高分子材料、ポリ乳酸、ポリグリコール酸等の生分解性高分子材料、ガラス、石英、ハイドロキシアパタイト等の無機材料、羊膜等が挙げられる。
細胞シートにおける角膜内皮細胞密度は、細胞シートを形成可能な程度であれば特に限定されず、前記角膜内皮細胞密度は1.0×104〜5.0×106cells/cm2の範囲であることが好ましく、1.0×105〜1.0×106cells/cm2の範囲であることがより好ましい。角膜内皮細胞が移植先の眼内で良好に機能可能な密度であることが好ましい。
細胞シートは角膜移植に好適に用いることができる。細胞シートの厚みは、特に制限されないが、移植片として用いることができる程度の厚みであることが好ましい。したがって、細胞シートの厚みは角膜の厚みと同程度であることが好ましく、角膜内皮の層の厚みと同程度であることがより好ましい。より具体的には、細胞シートの厚みは10〜200μmの範囲であることが好ましく、10〜100μmの範囲であることが好ましく、15〜50μmの範囲であることが好ましい。
以下のin vitro実験で使用したSema3Aは、Recombinant Human Semaphorin 3A/Fc Chimera(R&D Systems社製)である。
<培養実験1>
Sema3A存在下でのヒト角膜内皮細胞の培養を行った。
(Sema3A群)
6cmウェル底面に150個(7.5/cm2)の角膜内皮プライマリ細胞を、Sema3Aを含むDMEM Low Glucoseメディウム入りのウェル底面に播種し、37℃インキュベーター内で25日間培養した。メディウムはSema3Aを100 ng/mLの濃度で含むよう作製した。角膜内皮プライマリ細胞はSight Life 又は Rocky Mountain Lions Eye Bankから入手した。
(コントロール群)
Sema3Aを含まないメディウムを用いた以外は、上記Sema3A群と同様にしてヒト角膜内皮細胞を25日間培養した。
従来用いられている角膜内皮細胞培養補助剤とSema3Aとの、ヒト角膜内皮細胞に対する効果について比較した。
(Sema3A-10 群)
1mLあたり10ngのSema3Aを含むDMEM Low Glucoseメディウム入りの6ウェルプレート底面に、細胞密度4000/cm2で3〜4回継代後の角膜内皮細胞を播種し、37℃インキュベーター内で培養した。
(Sema3A-100 群)
1mLあたり100ngのSema3Aを含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-10 群)と同様して培養を行った。
(Sema3A-1000 群)
1mLあたり1000ngのSema3Aを含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-10 群)と同様にして培養を行った。
(ROCK阻害剤群)
Sema3Aに代えて、メディウムあたり10μMのROCK阻害剤(Y-27632)を胞培養補助剤として用いた以外は、前記(Sema3A-10 群)と同様にして培養を行った。
(ASC群)
Sema3Aに代えてメディウムあたり0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を胞培養補助剤として用いた以外は、前記(Sema3A-10 群)と同様にして培養を行った。
(コントロール群)
Sema3A及び他の細胞培養補助剤を含まないメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-10 群)と同様にして培養を行った。
従来用いられている角膜内皮細胞培養補助剤とSema3Aとの、ヒト角膜内皮細胞に対する細胞増殖促進効果について比較した。
(Sema3A-100 群)
1mLあたり100ngのSema3Aを含むDMEM Low Glucoseメディウム入りの12ウェルプレート底面に、細胞密度4000/cm2で3〜4回継代後の角膜内皮細胞を播種し、37℃インキュベーター内で培養した。
(Sema3A-300 群)
1mLあたり300ngのSema3Aを含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A 100 群)と同様して培養を行った。
(Sema3A-1000 群)
1mLあたり1000ngのSema3Aを含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-100 群)と同様して培養を行った。
(ASC 群)
Sema3Aに代えてメディウムあたり0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を細胞培養補助剤として用いた以外は、前記(Sema3A-100 群)と同様にして培養を行った。
(Sema3A-100 + ASC群)
1mLあたり100ngのSema3A及び0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-100 群)と同様して培養を行った。
(Sema3A-1000 + ASC群)
1mLあたり1000ngのSema3A及び0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-100 群)と同様して培養を行った。
(コントロール群)
Sema3A及び他の細胞培養補助剤を含まないメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A-100 群)と同様にして培養を行った。
次に、<細胞培養実験2−1>でのコントロール群、ASC群、Sema3A-100 群、Rock阻害剤群における培養12時間後の角膜内皮細胞の様子を図4に示す。
Rock阻害剤群及びASC群では、角膜内皮細胞の形態及び大きさが不規則であり、偽足を形成している細胞も多く見られた。また、タイトジャンクションの形成状態、細胞接着状態はやや不良であった。
一方、Sema3A-100 群では、角膜内皮細胞の形態及び大きは敷石状であって規則性に優れ、偽足を形成している細胞は少なく細胞形態も良好であった。また、細胞同士の接着状態も良好であった。
Sema3A-100 群の角膜内皮細胞の形態は、今回検討した従来用いられている角膜内皮細胞培養補助剤を使用した群と比較して、本来の角膜内皮細胞の状態に最も近い形態を示していた。また、タイトジャンクションの形成が良好であることから、角膜内皮細胞の重要な機能であるバリアー機能とポンプ機能にも優れることが推察される。
Sema3A存在下でのヒト角膜内皮細胞のWound healing(創傷治癒)実験を行った。
(Sema3A群)
3〜4回継代後の角膜内皮細胞を、4000/cm2の細胞密度でSema3Aを含むDMEM Low Glucoseメディウム入りのウェル底面に播種し、37℃インキュベーター内で5日間培養した。メディウムは、Sema3Aを1mLあたり100ng/mlの濃度で含むよう作製した。ウェル底面から円状に細胞を削り取り、底面を露出させた(図5(a))。その後培養を継続し、底面を露出させてから3日後の細胞の状態を観察した。
(コントロール群)
Sema3A及び他の細胞培養補助剤を含まないメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A群)と同様にして培養を行った。
Sema3A群のヒト角膜内皮細胞の様子を図5(c)に示す。図5(c)に示されるように、底面を円状に露出させた領域全体がヒト角膜内皮細胞で覆われていた。
このことから、Sema3Aを用いることで、ヒト角膜内皮細胞の増殖及び遊走が促進されることが明らかとなった。
さらに、角膜内皮細胞培養補助剤とSema3Aとで、ヒト角膜内皮細胞のWound healing(創傷治癒)の比較実験を行った。
(Sema3A群)
3〜4回継代後の角膜内皮細胞を、4000/cm2の細胞密度でSema3Aを含むDMEM Low Glucoseメディウム入りのウェル底面に播種し、37℃インキュベーター内で24時間培養した。メディウムは、Sema3Aを1mLあたり100ng/mlの濃度で含むよう作製した。培養後、ウェル底面から帯状に細胞を削り取り、底面を露出させた(図6(Wound healing))。その後培養を継続し、底面を露出させてから24時間後の細胞の状態を観察した。
(ROCK阻害剤群)
Sema3Aに代えて、メディウムあたり10μMのROCK阻害剤(Y-27632)を胞培養補助剤として用いた以外は、前記(Sema3A群)と同様にして培養を行った。
(ASC群)
Sema3Aに代えてメディウムあたり0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を胞培養補助剤として用いた以外は、前記(Sema3A群)と同様にして培養を行った。
(Sema3A+ ASC群)
1mLあたり100ngのSema3A及び0.3mMのアスコルビン酸−2−リン酸を含むメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A群)と同様して培養を行った。(コントロール群)
Sema3A及び他の胞培養補助剤を含まないメディウムを用いた以外は、前記(Sema3A群)と同様にして培養を行った。
ROCK阻害剤群のヒト角膜内皮細胞の様子を図6(ROCK阻害剤)に示す。底面を帯状に露出させた領域内では細胞密度が低く、特に領域の中央部分では、底面が露出したままであった。
ASC群のヒト角膜内皮細胞の様子を図6(ASC)に示す。底面を帯状に露出させた領域全体がヒト角膜内皮細胞で覆われていた。ただし、細胞の形態及び大きさにばらつきが見られた。
Sema3A群のヒト角膜内皮細胞の様子を図6(Sema3A)に示す。底面を帯状に露出させた領域全体がヒト角膜内皮細胞で覆われていた。細胞の形態及び大きさは均一であった。
Sema3A+ASC群のヒト角膜内皮細胞の様子を図6(Sema3A+ASC)に示す。底面を帯状に露出させた領域全体がヒト角膜内皮細胞で覆われていた。細胞の形態及び大きさは均一であった。
図7のグラフから、Sema3A、アスコルビン酸−2−リン酸、並びにSema3A及びアスコルビン酸−2−リン酸を用いることで、ヒト角膜内皮細胞の増殖及び遊走が促進されることが明らかとなった。従来の培養細胞補助剤とSema3Aとを比較すると、Sema3AのWound healing速度が最も優れていた。
以下のin vivo実験で使用したSema3Aは、Recombinant Mouse Semaphorin 3A/Fc Chimera(R&D Systems社製)である。
<紫外線角膜炎の予防及び/又は治療実験>
(Sema3A投与群)
対象動物として、C57BL6マウス(白色、4週齢オス、各群N=8)を用いて実験を行った。紫外線角膜炎症を誘起させるため、麻酔後のマウスの眼に、UVランプでUV−A 3.9 Jを1回/2日(計5回、第0,2,4,6,8日目)照射した。各UV−A照射後にSema3A(100ng/ml又は300ng/ml)を含むPBS2μlを結膜下注射した。10日目に前眼部写真撮影、眼球摘出を行った。
(コントロール群)
Sema3Aを含まないPBSを結膜下注射した以外は、前記Sema3A投与群と同様にして実験を行った。
実験開始後10日目のマウス前眼部の写真を図8に示す。コントロール群では新生血管の形成が確認され、瘢痕面積は>100ng/ml群であった。対して、Sema3A投与群では、新生血管の形成及び瘢痕は確認されず、角膜透明性も良好であった。
まず、アリザリンレッド染色を行い、角膜内皮細胞を観察した。写真を図9に示す。コントロール群では新生血管の形成及び細胞脱落が確認された。Sema3A投与群では細胞配列の状態は良好であった。新生血管の形成及び細胞脱落はほとんど観察されなかった。
同様にDAPIによる核染色の結果、Sema3A投与群の角膜組織では、コントロール群に比べて明確な蛍光シグナルが観察され、角膜内皮組織の修復が確認された。
配列番号1は、ヒトのセマフォリン3A遺伝子のDNA配列を示す。
<配列番号2>
配列番号2は、ヒトのセマフォリン3Aのアミノ酸配列を示す。
<配列番号3>
配列番号3は、ニワトリのセマフォリン3A遺伝子のDNA配列を示す。
<配列番号4>
配列番号4は、ニワトリのセマフォリン3Aのアミノ酸配列を示す。
Claims (5)
- 以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドを有効成分として含有することを特徴とする角膜疾患若しくは角膜損傷の予防、抑制又は治療剤
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。 - 前記角膜疾患が、角膜内皮細胞数の減少又は機能不全を伴う障害である請求項1に記載の角膜疾患若しくは角膜損傷の予防、抑制又は治療剤。
- 以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドの存在下で培養され、角膜内皮細胞を含むことを特徴とする細胞シート
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。 - 以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドを有効成分として含有することを特徴とする角膜内皮細胞用の細胞培養補助剤
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。 - 角膜内皮細胞を以下の(a)〜(c)からなる群から選ばれるいずれか一つのポリペプチドからなる領域を含むポリペプチドの存在下で培養する工程を有することを特徴とする細胞培養方法
(a) 配列番号4に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号4中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(b) 配列番号2に示されるアミノ酸配列中の連続する70個以上のアミノ酸から成り、配列番号2中の166aa〜235aaの領域を含むポリペプチド、
(c) (a)又は(b)のポリペプチドと80%以上の配列相同性を有するポリペプチド。
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