JP2015065943A - 色調安定性を有するケルセチン配糖体飲料 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】ケルセチン配糖体を配合する飲料に300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤を配合し、かつ飲料の彩度が26〜45となるように調製する。上記抗酸化剤が茶抽出物である、ケルセチン配糖体配合容器詰め飲料。
【選択図】なし
Description
本明細書でいう「ケルセチン配糖体」とは、特に記載した場合を除き、下式で表されるフラボノイドの一種であるケルセチン(クエルセチンとも呼ばれる)の配糖体を指す。
ここで、ケルセチンにグリコシド結合するXで表される糖鎖を構成する糖は、例えば、グルコース、ラムノース、ガラクトース、グルクロン酸であり、好ましくはグルコース、ラムノースである。また、nは1以上であれば、特に制限されないが、好ましくは1〜16、さらに好ましくは1〜8である。nが2以上であるとき、X部分は1種類の糖鎖からなっていてもよく、複数の糖鎖からなっていてもよい。
本発明の飲料は、上記のケルセチン配糖体と、300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤とを含有する。抗酸化剤は、300〜420nmの波長領域に吸収を有するものであれば特に制限ないが、例えばローズマリー等のハーブ系抽出物、カテキン等の茶抽出物、アントシアニン等のブルーベリー抽出物、プロアントシアニン等のブドウ種子物、リンゴ抽出物などが挙げられる。中でも、茶抽出物が好ましい。
本発明の飲料は、彩度Cが26〜45となるように調製する。28〜43が好ましく、30〜40がより好ましい。ここで、本発明でいう彩度とは、L*a*b*表色系におけるa、b、L値を用いて次式により求められる値を表す。
飲料の彩度を特定の範囲に調製することで、300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤と効果と相乗的に作用して、長期間にわたって保存しても色調が変化し難く、外観が保持されるケルセチン配糖体配合飲料となる。一般に、色調の変化はL*a*b*表色系で次式に基づくΔEで表される。
式中、L,a,b及びL’,a’,b’は、それぞれL*a*b*表色系における保存前または保存後の値を示すものである。このようなL*a*b*表色系で示す値は、測色色差計ZE−2000(日本電子工業株式会社製)を用いた反射測定で得ることができる。その測定方法を以下に示す。まず、測色色差計の試料台に黒色のキャップをかぶせ、試料台を完全に遮光した状態でゼロ合わせを行う。次いで、試料台に標準白版をおいて標準合わせを行う。その後、専用の丸形セルに試料を7ml正確に秤り入れ、そのセルを黒色キャップで遮光して反射測定を行う。
本発明の飲料は、ケルセチン配糖体と300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤を配合した液を、その彩度Cが26〜45となるように必要に応じて色素成分を配合して調合液とし、加熱殺菌して得られる。加熱殺菌は、常温で長期保存可能な条件で行われる。具体的には、高温で短時間殺菌した後、無菌条件下で殺菌処理された保存容器に充填する方法(UHT殺菌法)と、調合液を缶等の保存容器に充填した後、レトルト処理を行うレトルト殺菌法が挙げられる。高温殺菌の条件は、乳入り飲料の調合液の特性や使用する保存容器に応じて適宜選択すればよいが、UHT殺菌法の場合、通常120〜150℃で1〜120秒間程度、好ましくは130〜145℃で30〜120秒間程度の条件であり、レトルト殺菌法の場合、通常110〜130℃で10〜30分程度、好ましくは120〜125℃で10〜20分間程度の条件である。
1-1.試薬
・アセトニトリル:高速液体クロマトグラフ用 純度99.8%(ナカライテスク株式会社製)
・水:高速液体クロマトグラフ用 不純物0.001%以下(ナカライテスク株式会社製)
・トリフルオロ酢酸:純度99%(ナカライテスク株式会社製)
・イソクエルシトリン(Quercetin 3-O- glucoside: 以下QG1とする): SSX1327S、純度93.8% (フナコシ株式会社製)
・エタノール:高速液体クロマトグラフ用 純度99.8%(ナカライテスク株式会社製)
・ジメチルスルホキシド(dimethyl sulfoxide: 以下DMSOとする):純度99.0%(ナカライテスク株式会社製)
1-2.分析機器
・高速液体クロマトグラフ(以下HPLCとする)
・ポンプ:LC-10ADvp
・検出器: SPD-M10Avp検出器
・解析ソフト:Class LCsolution (以上、株式会社島津製作所)
1-3.分析試料の調製
・当該飲料を20%エタノール/水で5倍希釈し、0.45 μmフィルター(マイレクスLH-4:ミリポア社製)でろ過したものを分析試料としてHPLCに供する。
標準物質であるQuercetin 3-O- glucoside (フナコシ株式会社製:SSX 1327S、純度93.8%)を1.0 mg正確に秤量し、5 mlメスフラスコ中で0.5 mlのジメチルスルホキシド(DMSO:ナカライテスク株式会社製 純度99.0%)に溶解し、20%エタノール(ナカライテスク株式会社製 純度99.8% 高速液体クロマトグラフ用特製試薬)/水により5 mlにフィルアップする。この200 μg/mlの溶液を20%エタノール/水で順次希釈し、10、25、50、100 μg/mlの溶液を作成する。各濃度の溶液を10 μl、 HPLCに供する。このときに検出されるピークの溶出保持時間は約14.5分である。このときの紫外部吸光度350 nmにおける面積と濃度により検量線を作成する。
・定性試験:分析試料を標準品と同一条件下でHPLC分析を行い、QG1標準品の溶出保持時間と一致するピークをQG1とする。QG1はケルセチンにグルコースが1個結合したケルセチン配糖体である。
・定量試験: QG1のピークより前に検出される6つのピークは、QG1にさらにグルコース結合したケルセチンの配糖体である。HPLC分析では、QG1およびQ G1にさらにグルコースが1〜6個結合した化合物が検出可能であり、これら(QG1からQG7)を関与成分と設定した。また、ケルセチン配糖体は、小腸でケルセチンに加水分解されることから、QG1からQG7は生理活性的に同等であると考え、ケルセチン配糖体の主要な構成成分であり、標準品が入手可能なQG1を指標成分と設定し、QG1換算での量を算出する。ケルセチン配糖体の7つの溶出ピークについてのピーク面積を測定し、QG1標準品のピーク面積に基づいて作成した検量線から分析試料中のケルセチン配糖体含量を算出する。イソクエルシトリン(QG1)は、ケルセチンの3位に1分子のグルコースがβ結合した化合物である。QG2〜QG7はQG1にさらに 0 〜6個のグルコースがα-1,4結合した化合物群で、QG1およびQG2〜QG7の7成分を、関与成分とする。ケルセチンの3位配糖体は糖鎖の長さに関らず、すべて350nmに極大吸収を持ち、その吸光度はアグリコン部分であるケルセチンが寄与する。従って、分子量は異なるが、モル吸光度ではQG1からQG7は等しくなると考え、QG1換算で関与成分を定量することとした。
2-1.試薬
・アセトニトリル:高速液体クロマトグラフ用 純度99.8%(ナカライテスク株式会社製)
・水:高速液体クロマトグラフ用 不純物0.001%以下(ナカライテスク株式会社製)
・トリフルオロ酢酸:純度99%(ナカライテスク株式会社製)
・カテキン(カテキン、エピカテキン、ガロカテキン、エピガロカテキン、カテキンガレート、エピカテキンガレート、ガロカテキンガレート、エピガロカテキンガレート):(栗田リサーチセンター製)
2-2.分析機器
・HPLC
・カラム:TSK-gel ODS-80TsQA(4.6mmφx150mm、東ソー株式会社)
・移動相: A:水:アセトニトリル:トリフルオロ酢酸=900:100:0.5
B:水:アセトニトリル:トリフルオロ酢酸=200:800:0.5
・流速: 1.0ml/min
・カラム温度: 40℃
・グラジエント条件; 分析開始から5分後まではB液0%、
5分から11分まででB液8%、
11分から21分まででB液10%、
21分から22分まででB液100%、
22分から30分まで100%保持、
30分から31分までで0%
・検出: A280nm (データ採取時間は30分)、ピーク面積で定量
・注入量: 10μL
2-3.分析試料の調製
・当該飲料を0.45 μmフィルター(マイレクスLH-4:ミリポア社製)でろ過したものを分析試料としてHPLCに供する。
3-1.分析機器
・測色色差計ZE−2000(日本電子工業株式会社製)を用いた反射測定
[実施例1]
(1)緑茶抽出物の製造
抽出原料として、焙じ茶葉を含む複数の緑茶葉を用いた。1種又は複数を混合した茶葉の乾燥重量に対して30重量部の温水(70〜80℃)を抽出溶媒として用い、約5分間抽出した後、茶葉を分離し、さらに遠心分離処理(6000rpm、5分)して不溶性固形分を除去して緑茶抽出物を得た(抽出物A〜C)。抽出物A〜Cは、いずれも300〜420nmの波長領域に吸収を有していた。
ケルセチン配糖体として、サンエミックP15(三栄源エフ・エフ・アイ株式会社)0.4重量%を用いた。サンエミックP15及び緑茶抽出物(抽出物A〜C)を配合して、表2に示すケルセチン配糖体と、抗酸化剤(抽出物A〜C)を配合した調合液を加熱殺菌し、500mLずつをPETボトルに充填してケルセチン配糖体配合の容器詰め飲料を製造した。
また、純水を対照とした場合の色調(Lw値、aw値、bw値)を測定し、次式により純水との色差Eを算出した。
表3に結果を示す。
上記(2)で製造した1〜9の飲料について、保存試験(55℃で5日間の加速度劣化試験)を実施した。保存後の飲料の色調(L’値、a’値、b’値)を測定し、保存前の飲料の色調との色差ΔEを次式により算出し、保存前から変化した割合ΔE/E(%)を求めた。
結果を表4に示す。ΔE/Eの数値が大きくなるほど目で見た違いがわかり、ΔE/Eの値が30%以上となる飲料は長期保存に適さない飲料と判断した。ΔE/Eの値が30%未満となる飲料、すなわち300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤である茶抽出物を含有し、飲料の彩度Cが26〜45となるように調製されたケルセチン配糖体配合飲料は、色調の変化が少なく、長期間にわたって保存しても色調が変化がし難い飲料であった。
Claims (2)
- 100〜1000ppmのケルセチン配糖体と、300〜420nmの波長領域に吸収を有する抗酸化剤とを配合し、飲料の彩度が26〜45となるように調製された、容器詰め飲料。
- 抗酸化剤が茶抽出物である、請求項1に記載の飲料。
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