JP2014522845A - 抗プロペルジン抗体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
補体系は侵入する病原体に対する最前線の宿主防御を提供する。補体はヒト炎症性疾患において病原性の役割も担う。補体系の活性化は3つの異なる経路である古典的経路(CP)、レクチン経路(LP)、および代替経路(AP)を介して起こる。CPは抗原−抗体結合によって開始される。LPは、マンノース結合レクチン(MBL)が微生物の表面糖分子と相互作用した際に引き起こされる。両経路の活性化はCP C3コンバターゼC4b2aの構築に至るが、MBL関連セリンプロテアーゼによるC3の直接の開裂も起こり得る。APはAP C3コンバターゼであるC3bBbによって駆動される自己増幅ループである。AP活性化はCPまたはLP活性化に対して二次的に起こり得るか、あるいは独立して開始される。後者の場合、低レベルの自然発生性のC3「遊転」が最初のC3bBbを産生して、これが十分な調節の不在下において直ちにAPを増加させる。従って、一般的には、負の調節のないまたは不十分な非自己表面でのAP活性化はデフォルトの過程と考えられることが想定されるが、自己細胞は典型的には複数の膜結合型および液相の補体阻害タンパク質を利用してこの結果を避ける。特定の条件下では、変化した、損傷されたまたはストレスを受けた自己の細胞および組織もAPを活性化して炎症性の損傷を引き起こすことができる。
本発明は、抗プロペルジン抗体、および抗プロペルジン抗体を使用して補体の代替経路(AP)を阻害する方法に関する。
(図1)図1は補体経路の図である。補体は3つの経路を介して活性化されることができる:古典的、レクチン、および代替。古典的経路は、C1qが抗原に接続する抗体に結合すると活性化されて、C4およびC2を開裂するC1rおよびC1sを活性化する。レクチン経路は、マンノース結合レクチン(MBL)が保存された病原性炭水化物モチーフと遭遇すると活性化されて、MBL関連セリンプロテアーゼ(MASP)を活性化して、同じくC4およびC2を開裂する。C4およびC2開裂産物は、古典的およびレクチン経路のC3コンバターゼでありC3をC3bおよびC3aに開裂するC4bC2aを形成する。C3bの第二の分子はC4bC2aと結合して古典的およびレクチン経路のC5コンバターゼであるC4bC2aC3bを形成することができる。代替経路(AP)は、B因子およびD因子の存在下においてC3が自然発生性の加水分解を受けて最初のAP C3コンバターゼであるC3(H2O)Bbを形成すると、活性化されて、さらなるC3の開裂ならびにAP C3コンバターゼ(C3bBb)およびAP C5コンバターゼ(C3bBbC3b)の最終的な形成に至る。プロペルジンはAPコンバターゼを安定化させることによってAP活性化を促進する。3つの経路すべてがコンバターゼの形成に至り、次いで、補体系の主要なエフェクターを産生する:アナフィラトキシン(C4a/C3a/C5a)、細胞膜傷害複合体(MAC)、およびオプソニン(例えば、C3b)。アナフィラトキシンは、C4、C3およびC5の開裂から派生する強力な炎症誘発性分子である。MACは、標的化された表面を直接溶解することができるC5bからC9の補体成分の最終構築物である。C3bはオプソニン化されたターゲットの食作用を誘発して、APを介しての補体活性化の増幅にも役立つ。
(図2)図2は、mAb 19.1、22.1、25および30によるLPS誘発性AP補体活性化の用量依存性の阻害を実証する実験の結果を示す。mAbの4つのクローンすべてが、50%正常ヒト血清(NHS)に5μg/mlの最終濃度で添加された際にAP補体活性化を効果的に阻害した。EDTAを添加された試料(NHSEDTA)は陰性対照とした(EDTAは補体活性化を遮断する)。mAbを添加されていない試料(0 Ab)はAP補体活性化ベースラインとした。実験はGVB-EGTA-Mg++緩衝液中で実施された。ELISAプレートをLPSで一晩、コーティングした。NHSは、プレートへの添加前にmAbと共にプレインキュベートした。AP補体活性化は、プレート上でのC3析出量(OD450)を測定することによって検出した。
(図3)図3は、抗ヒトプロペルジンmAbがfHおよびDAF機能障害によって引き起こされるヒト赤血球(RBC)溶解を阻害することを実証する実験の結果を示す。ヒトRBCはヒト血清の不在下(Ehのみ)では溶解しない。それらは、自己細胞(0fh1920)とのfH相互作用を防ぐ組換え型fHフラグメントであるfH 19-20の不在下ではヒト血清(50%)による溶解に対して抵抗性でもある。しかし、ヒトRBCを30μM fH 19-20および7.5μg/mlの機能遮断抗崩壊促進因子(DAF、膜補体調節因子)mAb(fh1920+抗CD55)の存在下で50%ヒト血清と共にインキュベートすると、RBCの約70%が溶解した。この溶解は、4つの各抗プロペルジンmAb(19.1、22.1、25、30)によって5μg/mlで完全に阻害された。蒸留水(Eh+DDW)で処理されたRBC試料は完全な溶解を引き起こして、陽性対照とした。EDTAで処理した正常ヒト血清(NHSEDTA)中のRBC試料は陰性対照とした(EDTAが補体活性化を遮断するので、溶解なし)。溶解アッセイは、AP補体活性化のみを可能とするために、Mg++-EGTA GVB++緩衝液中で実施された。
(図4)図4は、抗プロペルジンmAbの5μg/mlの不在下または存在下において50%正常ヒト血清(NHS)と共にインキュベートした、抗体に感作させたヒツジRBCについて調べる実験の結果を示す。ヒト血清を添加していない(ShEsのみの)RBC試料は溶解を示さなかった;抗プロペルジンmAbを添加していない50%NHSと共にインキュベートしたRBCは完全な溶解(50%NHS)を示した;50%NHSおよびmAb 19.1、22.1、25または30の5μg/mlと共にインキュベートしたRBCも完全に溶解し、感作させたヒツジRBCの古典的経路に介在される補体溶解に対してmAbは阻害作用を持たないことが実証された。EDTAの存在下での50%NHS(NHSEDTA)と共にインキュベートしたRBCは溶解を示さず、この溶解が補体に介在されることが実証された;蒸留水(Es+DDW)で処理したヒツジRBCは100%溶解対照とした。
(図5A)図5A〜5Cを含む図5は、mAb 19.1および25のエピトープマッピングの結果ならびにヒトプロペルジン(fP)の欠失変異型の産生を示す。図5aはヒトプロペルジンの推定されるアミノ酸配列(SEQ ID NO: 54)を示す。シグナルペプチドに下線を付した。成熟タンパク質は残基28から始まる。
(図5B)図5A〜5Cを含む図5は、mAb 19.1および25のエピトープマッピングの結果ならびにヒトプロペルジン(fP)の欠失変異型の産生を示す。図5bは、ヒトプロペルジンの7つのトロンボスポンジンリピート(TSR)ドメインのアミノ酸配列を示す。それらは次の通りである:TSR0(SEQ ID NO: 55)、TSR1(SEQ ID NO: 56)、TSR2(SEQ ID NO: 57)、TSR3(SEQ ID NO: 58)、TSR4(SEQ ID NO: 59)、TSR5(SEQ ID NO: 60)、TSR6(SEQ ID NO: 61)。
(図5C)図5A〜5Cを含む図5は、mAb 19.1および25のエピトープマッピングの結果ならびにヒトプロペルジン(fP)の欠失変異型の産生を示す。図5cは、mAb 19.1および25におけるエピトープマッピングの結果ならびにヒトプロペルジン(fP)の欠失変異型の産生を示す。ヒトプロペルジン(fP)は、0から6までの番号が振られた7つのトロンボスポンジンリピート(TSR)ドメインから構成される。個々のTSRドメイン(およびいくつかの場合は2つのTSRドメイン)を欠失させて、変異型タンパク質をチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞で発現させた。予想されたサイズよりも実質的に小さいTSR5欠失変異型を除いて、すべてのTSR欠失変異型が予想されたサイズで発現する。TSR5欠失変異型はタンパク質分解を受けた可能性が高い。TSR5欠失のサイズはTSR5+6欠失変異型のそれとほぼ等しく、TSR6がTSR5欠失変異型においてタンパク分解性に除去された可能性があることを示唆する。CHO細胞溶解物を、ポリクローナルヤギ抗ヒトfP抗体を用いてウェスタンブロットにより分析した。M:分子量(MW)マーカー。
(図6)図6は、mAb 19.1および25におけるエピトープマッピング、ならびにヒトプロペルジン欠失変異型に対するmAb 19.1および25の結合に関するELISAアッセイの結果を示す。CHO細胞はELISAプレート上にコーティングしてmAb 19.1または25で検出した。19.1および25とは異なるエピトープに結合する第三のmAb 29.3は、タンパク質発現を確認するための対照として用いた。結果は、mAb 19.1および25の双方が次の欠失変異型と反応したことを示す:dTSR0、dTSR1、dTSR2、dTSR3、dTSR4。従って、mAb 19.1および25のエピトープはTSR 0-4には位置しないと結論付けることができる。さらに、mAb 19.1はdSTR5およびdSTR5+6への結合を失うが、dTSR6への結合は保たれて、そのエピトープがTSR5に位置することが示唆される。mAb 25はdTSR5、dTSR5+6およびdTSR6への結合を失い、そのエピトープがTSR5-6に位置することを示唆する。しかし、dTSR5は想定されるTSR6の除去に至るタンパク分解性の分解を受けているので(図5)、mAb 25のエピトープはTSR6に位置する可能性が高い。HuPは、陽性対照として用いられる完全長ヒトプロペルジン形質移入を指す。Conは、結合の欠除に関する陰性対照として用いられる形質移入されていないCHO細胞溶解物を指す。変異型タンパク質はすべて、C末端に6×Hisタグを含有する。
(図7)図7は、mAb 19.1のエピトープがアミノ酸配列:
を伴うTSR5のC末端側1/2にマッピングされることを示すエピトープマッピングの結果を示す。TSR0-4(即ち、dTSR5+6)はmAb 19.1とは反応しないのに対して、TSR0-5(即ち、dTSR6)は19.1と反応するので(図6)、さらなる欠失変異型が産生される:TSR0-4+1/4TSR5、TSR0-4+1/2TSR5およびTSR0-4+3/4TSR5。無傷ではなく変異型プロペルジンタンパク質はそのC末端に6×Hisタグを含有した。抗ヒトfPおよび抗Hisタグ抗体の双方を用いたウェスタンブロット分析は、TSR0-4+3/4TSR5が十分に発現しないことを示した。その他の2つの変異型であるTSR0-4+1/4TSR5およびTSR0-4+1/2TSR5は発現されることが確認されたが、どちらもmAb 19.1によって認識されず、それらがmAb 19.1のためのエピトープを失っていたことを示唆する。従って、mAb 19.1のための重要なエピトープ残基はTSR5のC末端側半分に位置すると結論づけることができる(SEQ ID NO: 52)。
(図8A)図8Aおよび8Bを含む図8はmAb 25のエピトープを示すエピトープマッピングの結果を示す。図8Aでは、アミノ酸配列
を伴うTSR6のC末端側1/4セグメントにマッピングされたエピトープを示す。TSR0-5(即ち、dTSR6)はmAb 25への結合を失っているので、TSR6はmAb 25のエピトープの少なくとも一部を構成すると結論付けられた。TSR6のさらなる変異型は次のように産生された:TSR0-5+1/4TSR6、TSR0-5+1/2TSR6およびTSR0-5+3/4TSR6。無傷ではないが、変異型プロペルジンタンパク質はC末端に6×Hisタグを含有した。抗ヒトfPおよび抗Hisタグ抗体を用いたウェスタンブロットに示される通り、3つのすべての変異型が適切に発現された。ELISA結合実験は、3つのすべての変異型がmAb 25との結合を失っていることを示した。陽性対照として、すべての変異型タンパク質がmAb 19.1と反応した。この結果は、TSR6の最後の1/4セグメント(SEQ ID NO: 53により表される配列を伴う)がmAb 25のエピトープの重要な部分を構成することを示唆する。HuPは、陽性対照である完全長(無傷)ヒトfPを形質移入されたCHO細胞を指す;Con溶解物(ConLysate)は結合に関する陰性対照とである形質移入されていないCHO細胞を指す。
(図8B)図8Aおよび8Bを含む図8はmAb 25のエピトープを示すエピトープマッピングの結果を示す。図8Bでは、データはmAb 25のエピトープがTSR6(SEQ ID NO: 61、図5Bに示す)の2つのシステイン残基に依存することを示す。これらは、TSR6のシステイン62(C62)およびシステイン78(C78)である。完全長ヒトプロペルジンにおけるC62またはC78のいずれかのアラニン(A)への単独の変異はmAb 25結合を無効にしなかったが、C62AおよびC78Aの双方の変異はmAb 25結合を無効にした。変異型タンパク質発現の陽性対照として、mAb 19.1はすべての試料に対して反応性を示した。この結果は、TSR6の最後の1/4セグメント内(SEQ ID NO: 53によって表される配列を伴う)のC78、ならびにSEQ ID NO: 53の外側ではあるがTSR6内に位置するC62(SEQ ID NO: 61)はmAb 25のエピトープの2つの重要な残基を構成することを示唆する。mAb 19.1および25の結合アッセイは、形質移入されたCHO細胞のホモジネートを用いてELISAプレートにて実施された。HuPは、陽性対照である完全長(無傷)ヒトfPを形質移入したCHO細胞を指す;Conは結合の陰性対照である形質移入されていないCHO細胞を指す。その他の試料は、単独または二重のC62AおよびC78A変異を含有する変異型ヒトfP cDNAを形質移入されたCHO細胞である。
(図9)図9は、CDR(VH-CDR1:SEQ ID NO: 3;VH-CDR2:SEQ ID NO: 4;VH-CDR3:SEQ ID NO: 5;VL-CDR1:SEQ ID NO: 8;VL-CDR2:SEQ ID NO: 9;VL-CDR3:SEQ ID NO: 10)を内包する、mAb 19.1の重鎖(SEQ ID NO: 1;SEQ ID NO: 2)および軽鎖(SEQ ID NO: 6;SEQ ID NO: 7)の可変性領域配列のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
(図10)図10は、CDR(VH-CDR1:SEQ ID NO: 13;VH-CDR2:SEQ ID NO: 14;VH-CDR3:SEQ ID NO: 15;VL-CDR1:SEQ ID NO: 18;VL-CDR2:SEQ ID NO: 19;VL-CDR3:SEQ ID NO: 20)を内包する、mAb 25の重鎖(SEQ ID NO: 11;SEQ ID NO: 12)および軽鎖(SEQ ID NO: 16;SEQ ID NO: 17)の可変性領域配列のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
(図11)図11は、CDR(VH-CDR1:SEQ ID NO: 23;VH-CDR2:SEQ ID NO: 24;VH-CDR3:SEQ ID NO: 25;VL-CDR1:SEQ ID NO: 28;VL-CDR2:SEQ ID NO: 29;VL-CDR3:SEQ ID NO: 30)を内包する、mAb 22.1の重鎖(SEQ ID NO: 21;SEQ ID NO: 22)および軽鎖(SEQ ID NO: 26;SEQ ID NO: 27)の可変性領域配列のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
(図12)図12は、CDR(VH-CDR1:SEQ ID NO: 33;VH-CDR2:SEQ ID NO: 34;VH-CDR3:SEQ ID NO: 35;VL-CDR1:SEQ ID NO: 38;VL-CDR2:SEQ ID NO: 39;VL-CDR3:SEQ ID NO: 40)を内包する、mAb 30の重鎖(SEQ ID NO: 31;SEQ ID NO: 32)および軽鎖(SEQ ID NO: 36;SEQ ID NO: 37)の可変性領域配列のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
(図13)図13は、2つのヒト生殖系列VH配列(ヒトVH 4-59-01(SEQ ID NO: 41);ヒトVH 3-66-04(SEQ ID NO: 43))を用いたCDR移植後のmAb 19.1の重鎖の可変性領域のヒト化アミノ酸配列(ヒト化19.1 VH-4-59-01(SEQ ID NO: 42);ヒト化19.1 VH-3-66-04(SEQ ID NO: 44))を示す。
(図14)図14は、ヒト生殖系列VL配列(ヒトVL 4-1-01(SEQ ID NO: 45);ヒトJK2(SEQ ID NO: 46))を用いたCDR移植後のmAb 19.1の軽鎖の可変性領域のヒト化アミノ酸配列(ヒト化19.1 VL-4-1-01(SEQ ID NO: 47))を示す。
(図15)図15は、ヒト生殖系列VH配列(ヒトVH 1-69-06(SEQ ID NO: 48))を用いたCDR移植後のmAb 25の重鎖の可変性領域のヒト化アミノ酸配列(ヒト化25-VH-1-69-06(SEQ ID NO: 49))を示す。
(図16)図16は、ヒト生殖系列VL配列(ヒトVL 1-69-06(SEQ ID NO: 50));ヒトJk3(SEQ ID NO: 62)を用いたCDR移植後のmAb 25の軽鎖の可変性領域のヒト化アミノ酸配列(ヒト化25-VL-1-69-06(SEQ ID NO: 51))を示す。
(図17A)図17Aおよび17Bを含む図17は、組換え型キメラおよびヒト化19.1 mAbを評価する実験の結果を示す。図17Aは、セリン229のプロリンへの変異を伴うヒトIgG4重鎖定常領域(SEQ ID NO: 63)およびヒトκ軽鎖定常領域(SEQ ID NO: 64)のアミノ酸配列を示す。これらの配列はキメラ(マウス可変性領域+ヒト定常領域)およびヒト化(ヒト化マウス可変性領域+ヒト定常領域)抗プロペルジン抗体を構築するために用いられた。
(図17B)図17Aおよび17Bを含む図17は、組換え型キメラおよびヒト化19.1 mAbを評価する実験の結果を示す。図17Bは、組換え型キメラおよびヒト化19.1 mAbの発現を評価する実験の結果を示す。組換え型キメラ19.1 mAbおよび2つのヒト化19.1 mAbのSDS PAGE分析。キメラ19.1重鎖の構築は、19.1のVH領域をヒトIgG4重鎖の定常領域と接合させることによって達成された。キメラ19.1軽鎖の構築は、19.1のVL領域をヒトκ鎖の定常領域と接合させることによって達成された。ヒト化19.1重鎖および軽鎖は同じように構築されて、即ち、ヒト化VH領域をヒトIgG4重鎖の定常領域と接合させて、ヒト化軽鎖はヒトκ鎖の定常領域と接合させた。CHO細胞は重鎖および軽鎖cDNAを同時形質移入して、薬剤セクションにより安定な系統を確立した。2つのヒト化mAbのために、2つの各ヒト化重鎖を形質移入に備えて同一のヒト化軽鎖と対合させた。発現したmAbは、Gタンパク質アフィニティカラムによりCHO細胞培養培地から精製した。
(図18)図18は、Biacoreを用いた19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの抗原結合親和性を測定する実験の結果を示す。精製ヒトfPをアミンカップリング法を用いてCM4チップにカップリングさせた。Biacore分析はBiacore-2000装置で実施した。チップは、結合と結合の間に50mM NaOHを用いて再生処理した。
(図19)図19は、Biacore分析により決定される、mAb 25、22.1および30の抗原結合親和性を測定する実験の結果を示す。精製ヒトfPをアミンカップリング法を用いてCM4チップにカップリングさせた。Biacore分析はBiacore-2000装置で実施した。チップは、結合と結合の間に50mM NaOHを用いて再生処理した。
(図20)図20は、LPS誘発性ヒトAP補体活性化の遮断における、19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価する実験の結果を示す。LPSを用いてELISAプレートを一晩、コーティングして、抗C3抗体を用いてのC3析出の検出前に、GVB-Mg++-EGTAで希釈した50%正常ヒト血清(NHS)を加えて37℃で1時間、インキュベートした。抗体を加えないNHSは陽性対照(NHS)として、EDTAを加えたNHSは陰性対照(NHSEDTA)とした。19.1 mAbの場合、5μg/mlおよび10μg/mlの濃度は補体活性化を阻害するために十分であった。キメラおよび2つのヒト化19.1 mAbでは、5μg/mlの濃度は補体活性化を阻害するには十分でなかった。しかし、10μg/mlおよび20μg/mlの濃度はAP補体活性化の遮断に有効であった。
(図21)図21は、fHおよびDAF機能障害の状況において、ヒトAP補体によるヒトRBC溶解の遮断における19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価する実験の結果を示す。ヒトRBCを、fH19-20(30μM)および抗DAF抗体(7.5μg/ml)の存在下で50%正常ヒト血清と共にインキュベートした。ヒト血清をGVB-Mg++-EGTA で希釈して、37℃で1時間、インキュベートを行った。RBCへの添加前に、ヒト血清を19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの漸増濃度(1〜15μg/ml)と共に4℃で1時間、プレインキュベートした。4つのすべてのmAbにおいて、用量依存性のRBC溶解阻害があった。しかし、キメラおよびヒト化19.1 mAbのEC50は19.1 mAbのそれよりも高かった。この結果は図20に示されるデータと一致した。
(図22)図22は、LPS誘発性アカゲザルAP補体活性化の遮断における、19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価する実験の結果を示す。ELISAプレートをLPSで一晩、コーティングして、抗ヒトC3抗体を用いてC3の析出を検出する前に、GVB-Mg++-EGTAで希釈した50%正常アカゲザル血清(NRS)を加えて37℃で1時間、インキュベートした。抗体を加えていないNRSを陽性対照(NRS)として、EDTAを加えたNRSを陰性対照(NRSEDTA)とした。19.1およびキメラ19.1 mAbでは、10〜40μg/mlの濃度はアカゲザルの補体活性化を阻害するために十分であった。2つのヒト化19.1 mAbでは、30または40μg/mlの濃度が補体活性化を阻害するために有効であった。10または20μg/mlの濃度もアカゲザルのAP補体活性化を実質的に阻害した。
(図23)図23は、LPS誘発性カニクイザルAP補体活性化の遮断における、19.1、キメラ19.1およびヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価する実験の結果を示す。ELISAプレートをLPSで一晩、コーティングして、抗ヒトC3抗体を用いてC3の析出を検出する前に、GVB-Mg++-EGTAで希釈した50%正常カニクイザル血清(NCS)を加えて37℃で1時間、インキュベートした。抗体を加えていないNCSは陽性対照(NCS)として、EDTAを加えたNCSは陰性対照(NCSEDTA)とした。19.1 mAbでは、10〜40μg/mlの濃度がカニクイザルAP補体活性化を阻害するために十分であった。キメラ19.1 mAbでは、20〜40μg/mlの濃度がカニクイザルのAP補体活性化を阻害するために十分であったが、10μg/mlの濃度も補体活性化を顕著に阻害した。2つのヒト化19.1 mAbでは、30または40μg/mlの濃度がカニクイザル補体活性化を阻害するために有効であった。しかし、20μg/mlの濃度もカニクイザルAP補体活性化を実質的に阻害した。10μg/mlの濃度もカニクイザルAP補体活性化をある程度、阻害した。
(図24)図24は、mAb 19.1、25およびヒト化19.1によるPNH患者赤血球の酸性化血清溶解の阻害を評価する実験(Ham試験)の結果を示す。発作性夜間血色素尿症(PNH)患者からのRBCをmAbの存在下または不在下においてHamの酸性化血清試験に供した。RBCを自己血清(最終濃度 83%)と共に37℃で2時間、インキュベートして、上清のOD405を測定することによって溶解パーセントを算出して、蒸留水により完全に溶解したRBC(Eh DDW)の試料に対して正規化した。インキュベート混合物は以下から構成された:血清240μl、1/6N HCL 25μl(または陰性対照としての生理食塩液25μl)、50%(v/v)RBC懸濁液 12.5μl、生理食塩液中mAb 10μl。酸性化していない自己血清(NHS)と共にインキュベートしたRBCの試料を陰性対照(バックグラウンド溶解)として用いた。mAbの不在下においてRBCの約50%が酸性化血清により溶解された。この溶解は、8μg/mlおよびこれよりも高い濃度のmAb 19.1により、20μg/mlの濃度のヒト化19.1 mAb(#459)により、また8μg/mlおよびこれよりも高い濃度のmAb 25により完全に阻害された。
(図25)図25A〜25Eを含む図25は、プロペルジンヒト化マウスの作出を示す。ヒトfP発現ベクターは、CVM-IEエンハンサーを伴うニワトリβ-アクチンプロモーターおよび真核細胞におけるcDNAの安定発現のためのウサギβ-グロブリンポリA尾部を用いて、図25Aのスキームに例証する通り構築した。このプラスミドを直線化して、ヒトfPトランスフェニックファウンダーマウスを作るために、C57BL/6マウスの接合子に微量注入した。(ヒトfP
に特異的なプライマーを用いた)PCRスクリーニングによって、(約800bpのヒトfP cDNAフラグメントを示す)陽性ファウンダーマウスを特定した。分析した40匹のマウスの内、5匹(#15、20、24、27および32)が陽性であった(図25B、赤色の矢印)。トランスジェニック陽性マウスにおいてヒトfPを検出するために、ELISAアッセイを実施した(図25C)。プレートをヒトfPに対する非遮断mAbでコーティングした(クローン 8.1)。希釈した血清(10%)と共にインキュベートした後、HRP抱合ヤギ抗ヒトfP抗体を用いてELISAによりヒトfPを検出した。正常ヒト血清(NHS)を陽性対照として用いた。認められる通り、ヒトfPはNHSおよび5匹のトランスジェニックマウスの血清では検出されたが、正常(即ち、非トランスジェニック)マウス血清(NMS)、トランスジェニック陰性(#29)またはfP-/-マウス血清では検出されなかった。ファウンダーマウス#32をWTマウスと交配して、児動物を前記の通り、PCRによってスクリーニングした。1匹のPCR陰性(F1-429)および2匹のPCR陽性(F1-430およびF1-431)の3匹の代表的なF1マウスについて、それらの血清におけるヒトfPの存在に関してELISAで試験した(図25D)。示される通り、ヒトfPは2匹のPCR陽性マウスでは検出されたが、PCR陰性マウスでは検出されなかった。NHSおよびファウンダー親マウス(#32)からの血清を陽性対照として用いた。この結果は、導入遺伝子が安定であり、生殖系列を介して伝達可能であることを示唆した。続いて、fP-/--ヒトfP導入遺伝子+マウスを作出するために、ファウンダーマウス#32をfP-/-マウスと交配した。LPS誘発性AP補体活性化アッセイは、fP-/--ヒトfP導入遺伝子+マウスはWTマウスのそれと識別不能な血清AP補体活性を持つが、fP-/-マウスは持たないことを示して(図25E)、遺伝子導入により発現されたヒトfPがfP-/-マウスの表現型を救出できることが示唆された。EDTAで処理したWT血清を陰性対照として用いた。この結果より、プロペルジンヒト化マウスの系統が作出されたことが確認された。
(図26)図26は、「プロペルジンヒト化」マウスにおけるmAb 25のインビボでの活性およびキネティクスを調べる実験を示す。プロペルジンヒト化マウス(fP-/--ヒトfP導入遺伝子+)にmAb 25の0.5mg(i.p.)を注入した。血清の試料を注入前(0時間)およびその後、注入後の様々な時点で採取して、LPS誘発性AP補体活性化について試験した。示される通り、fP-/-マウス血清またはEDTAで処理したWT血清にAP補体活性は存在しなかった。これに対して、WT血清およびfPヒト化マウスの血清では0時(mAb処理前)の時点でAP補体活性が検出された。ヒト化マウスにおけるAP補体活性はmAb処理後8、24および48時間には検出不能を維持したが、72、96および120時間には検出となった。これらの結果は、mAb 25が0.5mg/マウスの投与量でインビボにおいてAP補体活性を48時間阻害できたことを示唆する。
(図27)図27は、抗ヒトプロペルジンmAb 19.1が血管外溶血(EVH)を防ぐことを実証する実験の結果を示す。このEVHモデルでは、プロペルジンヒト化マウス(実験群当たりn=4)にCrry/DAF/C3トリプルノックアウト(TKO)マウスの赤血球(RBC)を輸血した。レシピエントマウス(プロペルジンヒト化マウス)はRBC輸血6時間前にmAb 19.1(2mg/マウス、i.p.)で処理して、または対照マウスはIgG1 mAb(MOPC、MoPC 31Cハイブリドーマから精製、ACTTから)で処理した。RBCは、既報の手順(Miwa et al., 2002, Blood 99: 3707-3716)に従って、ドナーTKOマウスから採取して、PBS中で洗浄処理し、レシピエントマウスへの注入(尾静脈を介して)前にCFSEで標識した。各レシピエントマウスは血液 100μlに相当するRBCを輸血された。RBC輸血後5分、および6、24、48、72、96、120時間の時点で、レシピエントマウスから採血して、循環中に残っているCFSE標識された(即ち、輸血された)RBCの数を決定するためにRBCを分析した。各レシピエントにおけるCFSE標識されたRBCの数を5分の時点で検出された数に対して(%として)正規化した。対照のIgG(MOPC)処理したレシピエントマウスにおいて、TKO RBCは、先行の所見(Miwa et al., 2002, Blood 99: 3707-3716)に一致して、EVHを介して速やかに排出された。しかし、抗ヒトプロペルジン19.1 mAbで処理されたレシピエントマウスでは、EVHは起こらずに輸血されたRBCは存続して、抗プロペルジンmAbがEVHの予防に有効であることを実証している。
(図28)図28は、ヒトプロペルジントランスジェニックマウスを作出するために用いられたヒトプロペルジンcDNAの核酸配列(SEQ ID NO: 67)を示す。
本発明は、抗プロペルジン抗体を用いた補体の代替経路(AP)の阻害に関する。様々な態様において、本発明は、個体を抗プロペルジン抗体に接触させることによって個体におけるAP介在性の病態またはAP介在性の状態を治療するための組成物および方法に方向付けられる。本発明の組成物および方法で治療することができるAP介在性の病態および状態は、黄斑変性、虚血性再灌流障害、関節炎、慢性関節リウマチ、喘息、発作性夜間血色素尿症(PNH)症候群、非定型溶血性尿毒症(aHUS)症候群、敗血症、臓器移植、炎症(心肺バイパス術および腎透析に関連する炎症を非限定的に含む)、糸球体腎炎(抗好中球細胞質抗体(ANCA)介在性糸球体腎炎を非限定的に含む、狼瘡およびその組み合わせを含むが、これらに限定されるものではない。
別途定義される場合を除いて、本明細書で用いられるすべての技術的および科学的用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって広く理解されるものと同一の意味を持つ。本明細書に述べられるものと同等または相当する任意の方法および材料が本発明の実践または試験において用いることができるが、好ましい方法および材料について記載する。
本発明は、抗プロペルジン抗体を用いた補体の代替経路(AP)の阻害に関する。一つの態様において、本発明は、個体を抗プロペルジン抗体に接触させることによって個体におけるAP介在性の病態またはAP介在性の状態を治療する方法に方向付けられる。
いくつかの態様において、本発明はプロペルジンと特異的に結合する抗体を含む組成物を内包する。一つの態様において、抗プロペルジン抗体はポリクローナル抗体である。もう一つの態様において、抗プロペルジン抗体はモノクローナル抗体である。いくつかの態様において、抗プロペルジン抗体はキメラ抗体である。さらなる態様において、抗プロペルジン抗体はヒト化抗体である。好ましい態様において、プロペルジンはヒトプロペルジンである。
の少なくとも一つのアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する。いくつかの態様において、SEQ ID NO: 52の少なくとも一つのアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する抗プロペルジン抗体はmAb 19.1として表されるmAbである。いくつかの態様において、抗プロペルジン抗体は結合に関してmAb 19.1として表される抗体と競合する抗体である。様々な態様において、本発明の抗体が結合することができるエピトープは直鎖状のエピトープまたは立体配座のエピトープである。
の少なくとも一つのアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する。いくつかの態様において、本発明の抗プロペルジン抗体はSEQ ID NO: 61に存在するシステイン62(C62)を含むエピトープに特異的に結合する。いくつかの態様において、本発明の抗プロペルジン抗体はSEQ ID NO: 53に存在するシステイン78(C78)を含むエピトープに特異的に結合する。いくつかの態様において、SEQ ID NO: 53のアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する抗プロペルジン抗体はmAb 25として表されるmAbである。いくつかの態様において、抗プロペルジン抗体は結合に関してmAb 25として表される抗体と競合する抗体である。様々な態様において、本発明の抗体が結合することができるエピトープは直鎖状のエピトープまたは立体配座のエピトープである。
本発明は、抗プロペルジン抗体候補がAPを阻害できるかどうかを決定する工程を内包する、様々なスクリーニングアッセイにおける応用を持つ。
本発明の方法は、少なくとも一つの抗プロペルジン抗体の治療上有効量をAP介在性の病態を有すると指摘された個体に投与する工程を含む。好ましい態様において、個体はAP系を有する哺乳動物である。より好ましい態様において、個体はヒトである。
本発明の治療の方法における抗プロペルジン抗体の投与は当技術分野で公知の方法を用いて多くの異なる方法で達成することができる。従って、本発明の治療および予防の方法は抗プロペルジン抗体を含む薬学的組成物の使用を包含する。本発明の実践において有用な薬学的組成物は1ng/kg/日から100mg/kg/日の間の用量を送達するように投与され得る。一つの態様において、本発明は、個体において本発明の抗プロペルジン抗体の1μMから10μMの間の濃度に至る用量の投与を想定する。もう一つの態様において、本発明は、個体の血漿において本発明の抗プロペルジン抗体の1μMから10μMの間の濃度に至る用量の投与を想定する。
本発明は、ヒトプロペルジンを発現してマウスプロペルジンを発現しないトランスジェニックマウスをさらに内包する。トランスジェニックマウスを作出するために、ヒトプロペルジンタンパク質をコードする核酸を、宿主細胞内でのヒトプロペルジンタンパク質の発現に適切な形で組換え型発現ベクターに組み入れることができる。「宿主細胞内での融合タンパク質の発現に適切な形で」という用語は、組換え型発現ベクターが核酸のmRNAへの転写およびmRNAのヒトプロペルジンタンパク質への翻訳を可能とする方法でヒトプロペルジンタンパク質をコードする核酸に機能的に結合される一つまたは複数の制御配列を内包することを意味することを意図する。「制御配列」という用語は、プロモーター、エンハンサーおよびその他の発現制御エレメント(例えば、ポリアデニル化シグナル)を内包することが当技術分野で認識されていて、意図されている。このような制御配列は当業者に公知であり、1990, Goeddel, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, Calif.において記載されている。発現ベクターのデザインは形質移入される宿主細胞の選択および/または発現されるヒトプロペルジンタンパク質の量のような要因に依存し得ることが理解されるべきである。
本発明は、本発明の抗プロペルジン抗体またはその組み合わせ、および例えば、抗プロペルジン抗体またはその組み合わせを治療的投与としてまたは本明細書の他のところに記載されているような投与以外の使用として個体に投与する工程を記載する説明用材料を含むキットをさらに内包する。一つの態様において、このキットは、例えば、個体への抗体の投与に先立って、本発明の抗プロペルジン抗体またはその組み合わせを含む治療的組成物を溶解または懸濁するために適切な(好ましくは無菌の)薬学的に許容される担体をさらに含む。任意で、該キットは該抗体を投与するためのアプリケーターを含む。
抗ヒトプロペルジンモノクローナル抗体はKohler et al.(1975, Nature, 256:495)によって最初に記載されていくつかの修正が加えられたハイブリドーマ法を用いて作成された。プロペルジンノックアウトマウス(fP-/-)(8週齢)は、Titermaxアジュバント100μl(Sigmaより)で乳化したヒトプロペルジン(Comp Tech Inc)50μg(100μl PBS中)を用いて腹腔内にて免疫した。14日および21日目にマウスを再び、Titermaxアジュバントで乳化した精製ヒトプロペルジン50μgで免疫した。1週間後、マウスの血清中抗プロペルジン力価を調べた。1:10,000またはそれよりも高い抗体価を持つマウスをハイブリドーマ融合実験に使用した。融合実験の2日前にマウスに精製ヒトプロペルジン50μg(100μl PBS中)を再度注入した(i.p.)。機械的破壊による単一細胞懸濁液の調製のために、マウスを頸椎脱臼により屠殺して脾臓を単離した。脾臓細胞懸濁液をHYB-SFM(Invitrogen)+10%FBS培地で1回洗浄処理して、細胞をカウントし、X63-Ag8.653骨髄細胞(ATCC)と2:1の割合で混合した。細胞混合物を再度HYB-SFM培地で洗浄処理して、遠心分離(1000rpm、5分)により細胞沈渣を調製した。細胞沈渣を静かに振盪して緩ませた後、ポリエチレングリコール(PEG 1500)(3x108個の細胞に対して1.5ml PEG)をゆっくりと加えることによって細胞融合を誘発した。細胞を37℃で1分間放置した後、HYB-SFM培地 20mlを3分かけて細胞に加えた(最初の1分に1ml、次の1分に3ml、三番目の1分に16ml)。混合物を1000rpmで5分間、遠心分離して、細胞を24穴プレートにおいてHAT培地(HYB-SFM培地 500ml中、HAT[Sigma H0262]10ml、Pen/Strep 5ml、ゲンタマイシン 500μl、および10%FBS)に接種した。2週間後、視認可能なコロニーを伴うウェルの上清を、ELISAによる精製ヒトプロペルジンとの反応性のスクリーニングのために回収した。陽性のクローンを採取して、ELISAによる2回目のスクリーニング後に単一のクローンを得るために限界希釈法により96穴プレートに接種した。陽性コロニーをHT培地(HYB-SFM培地500ml中、HT 10ml、Pen/Strep 5ml、ゲンタマイシン 500μlおよび10%FBS)中で増殖させた。抗体の採取前にハイブリドーマ細胞を2〜3日間、血清無添加の培地(HYB-SFM)に移した。Gタンパク質アフィニティクロマトグラフィーによるmAb精製のために細胞培養培地を回収した。
。κ軽鎖を増幅するためには次のプライマーを用いた:4つの上流プライマーの混合物:
。PCR単位複製配列をpCR TOPO TA 2.1ベクター(Invitrogen)にクローニングして配列決定した。mAbのシグナルペプチド(リーダー)配列を得るために、5'-RACE法をInvitrogenからのキット(GeneRacer)と共に用いた。5'-RACEおよび最初のシーケンシングデータから決定された特異的プライマーを用いて、完全な可変性領域cDNAを増幅した。
mAb 19.1、22.1、25および30によるLPS誘発性AP補体活性化の用量依存性の阻害について調べた。mAbの4つのすべてのクローンが、50%正常ヒト血清(NHS)に5μg/mlの最終濃度で加えられた際にAP補体活性化を効率的に阻害した(図2参照)。ELISAのプレート(96穴、Nunc)を50μl LPS溶液(リン酸緩衝生理食塩液[PBS]中40μg/ml)を用いて4℃で一晩、コーティングした。翌日、0.05% Tween-20を含有するPBS(PBS-T)で3回洗浄処理して、1〜5μg/ml抗プロペルジンmAbと共に4℃で1時間インキュベートしておいた50%正常ヒト血清(NHS)の50μlを加えた。NHSはGVB-EGTA-Mg++(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有)で希釈した。プレートを37℃で1時間インキュベートするために残して、PBS-Tで3回洗浄処理した後、HRP抱合ヤギ抗ヒトC3抗体(1:4000、Cappel)50μlを加えて、プレートを室温に1時間、置いた。プレートをPBS-Tで3回洗浄処理して、BD Pharmingen A+B試薬を用いて発現させた。反応は5分後に2N H2SO4を用いて停止させた。AP補体活性化は、プレートのC3析出の量(OD450)を測定することによって検出した。EDTAを加えた試料(NHSEDTA)を陰性対照として使用した(EDTAは補体活性化を遮断する)。mAbを加えていない(0Ab)の試料はAP補体活性化ベースラインとして使用した。
抗ヒトプロペルジン抗体mAbがfHおよびDAF機能障害によって引き起こされるヒト赤血球(RBC)の溶解を阻害することを実証する実験が実施された(図3参照)。正常なヒトRBC(5x106個 細胞)を、30μM組換え型fH 19-20および7.5μgマウス抗ヒトDAF(AbD Serotecより)の存在下で50%NHS(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有するGVB-EGTA-Mg++で希釈)100μlを用いて37Cで20分間、インキュベートした(2006, Ferreira et al., J Immunol. 177:6308-6316)。溶解反応は、PBS中20mM 氷冷EDTAの200μlを添加して停止させた。インキュベート混合物を1500gで5分間、遠心分離して、上清を回収してOD420nmを測定した。RBCの添加前に、NHSを0または5μg/mlの抗プロペルジン抗体と共に4Cで1時間、プレインキュベートした。NHSまたはfH19-20を添加していない試料またはEDTAを添加した試料を陰性溶解対照として用いて、蒸留水100μlを用いて完全に溶解したRBCの試料を、それに対してその他の試料の溶解%を正規化する陽性対照(100%溶解)として用いた。
5μg/mlの抗プロペルジンmAbの不在下または存在下において50%正常ヒト血清(NHS)と共にインキュベートした、抗体に感作させたヒツジRBCを調べる実験(図4参照)。抗体に感作させたヒツジRBC(5x106個 細胞、CompTech Incより)を50%NHS(GVB++緩衝液で希釈)100μlと共に37℃で20分間、インキュベートした。ヒツジRBCへの添加前に、NHSは0または5μg/ml抗プロペルジン抗体と共に4Cで1時間、プレインキュベートした。溶解反応は、PBS中20mM氷冷EDTAの200μlを加えることによって停止させた。インキュベート混合物を1500gで5分間、遠心分離して、上清を回収し、OD420nmにおいて測定した。NHSを加えていない試料またはEDTAを加えた試料を陰性溶解対照として用いて、蒸留水 100μlで完全に溶解したヒツジRBCの試料を、それに対してその他の試料における溶解%を正規化する陰性対照(100%溶解)として用いた。
ヒトプロペルジンの欠失変異型の産生およびそれらのCHO細胞での発現についてのウェスタンブロットによる確認(図5参照)。ヒトプロペルジン(fP)は0〜6と番号付けされる7つのトロンボスポンジンリピート(TSR)ドメインから構成される。0〜5の個々のTSRドメイン(SEQ ID NO: 55、56、57、58、59および60を参照)は、pCMVベクター(Origeneから)における完全長ヒトプロペルジンcDNA(SEQ ID NO: 67)を鋳型として用いて逆PCR(1989, Hemsley et al., Nucleic Acid.5 Res. 17:6545)により欠失させた。TSR 6(SEQ ID NO: 61)またはTSR 5〜6を欠失させるためには、通常のPCR法を用いて、続いて、発現ベクター(pCAGGSベクターを用いた)内にクローニングした。Optimem培地中の6穴プレートのリポフェクタミン試薬(Invitrogen)を用いて、欠失変異型をCHO細胞に形質移入した。48時間後、細胞を、150mM NaCl、10%グリセロール、1mM EDTA、ならびにプロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche)および1%Triton X-100を含有する50mM Tris-HCL、ph 7.4(ウェル当たり250μl)で溶解した。溶解物を10,000rpmにて10分間遠心分離して、タンパク質濃度をBCAタンパク質アッセイ法により決定した。各試料から総タンパク質 約100μgをSDS-PAGE分析に使用した。
ヒトプロペルジン欠失変異型に結合するmAb 19.1および25のサンドウィッチELISAアッセイを、mAb 19.1および25のエピトープマッピングのために実施した。(図6参照)。ELISAプレートを、関心のあるmAb 2μg/mlの50μlで4℃にて一晩、コーティングした。プレートをPBS-Tで3回洗浄処理した後、CHO細胞溶解物タンパク質25μg(1%BSAを含有するPBS 50μl中)をウェルに加えて、該プレートを室温で1時間、インキュベートした。該プレートをPBS-Tで3回、洗浄処理して、捕捉されたタンパク質をビオチン化したヤギ抗ヒトプロペルジン抗体およびHRP-アビジン系により検出した。19.1および25とは異なるエピトープに結合する第三のmAb 29.3は、変異型タンパク質の発現を確認するための対照として用いた。
エピトープマッピングは、次のアミノ酸配列を持つTSR5のC末端側半分にマッピングされるmAb 19.1のエピトープを示した:
(図7参照)。TSR0-4+1/4 TSR5、TSR0-4+1/2 TSR5またはTSR0-4+3/4TSR5を含む3つのヒトプロペルジン変異型は従来のPCRによって産生された。それらは、実施例5において記載するように、pCAGGSにクローニングしてCHO細胞内で発現させた。タンパク質の発現はヤギ抗プロペルジン抗体を用いてウェスタン分析により確認した。C末端Hisタグが存在すること(C末端のタンパク質分解がないこと)を確認するために、マウス抗Hisタグ抗体(Qiagen)を用いてブロットをストリップおよびリプローブした。mAb 19.1との反応性を決定するためのサンドウィッチELISAアッセイは実施例6に記載する通りに実施した。19.1とは異なるエピトープに結合するmAb 29.3は変異型タンパク質の発現を確認するための対照として用いた。
エピトープマッピングは次のアミノ酸配列を持つTSR6のC末端側1/4のセグメントにマッピングされるmAb25のエピトープを示した:
(図8参照)。TSR0-5+1/4 TSR6、TSR0-5+1/2 TSR6またはTSR0-5+3/4 TSR6を含む3つのヒトプロペルジン変異型が従来のPCRによって産生された。それらは、実施例5において記載するように、pCAGGSにクローニングしてCHO細胞内で発現させた。タンパク質の発現はヤギ抗プロペルジン抗体を用いてウェスタン分析により確認した。C末端Hisタグが存在すること(C末端のタンパク質分解がないこと)を確認するために、マウス抗Hisタグ抗体(Qiagen)を用いてブロットをストリップおよびリプローブした。mAb 25との反応性を決定するためのサンドウィッチELISAアッセイは実施例6に記載する通りに実施した。25とは異なるエピトープに結合するmAb 19.1は変異型タンパク質の発現を確認するための対照として用いられた。エピトープのマッピングは、mAb 25のエピトープがTSR6の2つのシステイン残基に依存することも示した(SEQ ID NO: 61、図5Bに示す)。これらはTSR6のシステイン62(C62)およびシステイン78(C78)である。完全長ヒトプロペルジンのC62またはC78のいずれかのアラニン(A)への単独の変異がmAb 25の結合を無効にすることはないが、C62AおよびC78Aの二重の変異はmAb 25の結合を無効にした。変異型タンパク質発現のための陽性対照として、mAb 19.1はすべての試料に対して反応性を示した。この結果は、TSR6の最後の1/4セグメント内のC78(SEQ ID NO: 53によって表される配列を伴う)、ならびにSEQ ID NO: 53の外側ではあるがTSR6(SEQ ID NO: 61)内に位置するC62はmAb25のエピトープの2つの重要な残基を構成することを示唆する。mAb 19.1および25の結合アッセイは、形質移入されたCHO細胞のホモジネートを用いてELISAプレートにて実施された。HuPは、陽性対照である完全長(無傷)のヒトfPを形質移入したCHO細胞を指す;Conは結合の陰性対照である形質移入されていないCHO細胞を指す。その他の試料は、単独または二重のC62AおよびC78A突然変異を含有する変異型ヒトfP cDNAを形質移入されたCHO細胞である。
CHO細胞における組換え型キメラおよびヒト化19.1 mAbの発現を評価する実験が実施された(図17参照)。キメラの19.1重鎖cDNAは、EcoRI/NheI部位を用いて、mAb 19.1(SEQ ID NO: 1)の可変性領域をpFUSE-CHIg-hG4ベクター(InvivoGenより、セリン229がプロリンに変異したヒトIgG4重鎖定常領域を含有)にクローニングすることによって構築された。キメラ19.1軽鎖cDNAは、AgeI/BsiWI位置を用いてmAb 19.1の可変性領域(SEQ ID NO: 6)をpFUSE2-CLIg-hkベクター(InvivoGenより、ヒトκ軽鎖定常領域を含有)にクローニングすることによって構築された。ヒト化19.1重鎖cDNAは、EcoRI/NheI部位を用いて19.1のヒト化重鎖可変性領域(SEQ ID NO: 42およびSEQ ID NO: 44をコードするcDNA、Genescriptにより合成)をpFUSE-CHIg-hG4 ベクター(InvivoGenより、セリン229がプロリンに変異したヒトIgG4重鎖定常領域を含有)にクローニングすることによって構築された。ヒト化19.1軽鎖cDNAは、AgeI/BsiWI部位を用いて19.1のヒト化軽鎖可変性領域(SEQ ID NO: 47をコードするcDNA、Genescriptによって合成)をpFUSE2-CLIg-hkベクター(InvivoGenより、ヒトκ軽鎖定常領域を含有)にクローニングすることによって構築された。リポフェクタミン試薬を用いて、CHO細胞に19.1のキメラの重鎖および軽鎖または19.1のヒト化重鎖および軽鎖(2つのヒト化重鎖は同一ヒト化軽鎖と対合した)を同時に形質移入した。形質移入後、CHO細胞をジオシン(Geocine)(1mg/ml)およびブラストサイジン(10μg/ml)を用いて約7日間、選択した。薬剤耐性細胞コロニーを拾って、トリプシン処理して、同一の選択薬剤の存在下において96穴プレートを用いて限界希釈培養に供した。96穴プレートにおいて細胞を稠密とした後、ELISAにより培地をヒトプロペルジンとの反応性に関して試験して、陽性コロニーを増殖させた。抗体産生のため、形質移入されたCHO細胞の安定株を150cm培養フラスコにおいて10%FBSを伴うDMEM:F12培地で生育させて、稠密とした後、血清非含有のCD-CHO培地(Invitrogen)に移した。3日後、培地を回収して、mAbをGタンパク質クロマトグラフィーにより精製した。精製されたmAbの画分をSDS-PAGEにより分析した。
mAb 19.1、キメラmAb 19.1、ヒト化mAb 19.1、mAb 25、mAb 22.1およびmAb 30の抗原結合親和性を測定する実験が実施された(図18および19参照)。抗ヒトプロペルジンmAbの固定化ヒトプロペルジンに対する結合の結合および解離速度定数を測定するために、BIAcore 2000装置(Biacore AB, Uppsala, Sweden)を用いて表面プラスモン共鳴分析を用いた。Biacoreの実験は25℃で実施した。200RU表面密度を得るために、CM4センサーチップのカルボキシル化デキストランマトリックスを、アミンカップリング化学により精製ヒトプロペルジンをカップリングするために使用した。mAbをHBSET(EDTAおよびTween 20を伴うHEPES緩衝生理食塩液)緩衝液中150、75、35.5、17.75、8.87および0nMに希釈して、試料をプロペルジン表面に30μl/分(60μl注入)で120秒間注入して、結合分解物の解離を900秒間、進行させた。データは、二価の結合モデルを仮定してBIA評価ソフトウェア3.2により分析した。表面の再生は50mM NaOHの50μl注入(50μl/分)で達成した。
LPS誘発性ヒトAP補体活性化の遮断における19.1、キメラ19.1および2つのヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価するための実験が実施された(図20参照)。ELISAのプレート(96穴、Nunc)をLPS溶液 50μl(PBS中40μg/ml、4℃で一晩)でコーティングした。翌日、プレートを0.05%PBS-Tを含有するPBSで3回洗浄処理して、0、5、10または20μg/ml抗プロペルジンmAbと共に4℃で1時間インキュベートしておいた50μlの50%NHSを加えた。NHSはGVB-EGTA-Mg++(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有)で希釈した。プレートを37℃で1時間インキュベートして、PBS-Tで3回、洗浄処理した後、HRP抱合ヤギ抗ヒトC3抗体(1:4000、Cappel)50μlを加えて、プレートを室温に1時間、置いた。プレートをPBS-Tで3回、洗浄処理した後、BD Pharmingen A+B試薬を用いて発現させた。反応は2N H2SO4を用いて5分後に停止させた。AP補体活性化はプレート上のC3析出の量(OD450)を測定することによって検出した。EDTAを加えた試料(NHSEDTA)を陰性対照とした(EDTAは補体活性化を遮断する)。mAbを加えていない試料(NHS)はAP補体活性化のベースラインとして用いた。
fHおよびDAF機能障害の状況下でのヒトAP補体によるヒトRBC溶解の遮断における19.1、キメラ19.1および2つのヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価するための実験が実施された(図21参照)。正常なヒトRBC(5x106個 細胞)を、30μM組換え型fH 19-20および7.5μgマウス抗ヒトDAF(ADB Serotecから)の存在下において50%NHS(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有するGVB-EGTA-Mg++で希釈)100μlと共に37℃で20分間、インキュベートした(2006, Ferrelra et al., J Immunol. 177:6308-6316)。RBCへの添加前に、NHSは1〜15μg/mlの様々な抗プロペルジンmAbと共に4℃で1時間、プレインキュベートした。溶解反応はPBS中20mM 氷冷EDTAの200μlの添加により停止させた。インキュベート混合物を1500gで5分間、遠心分離して、上清を回収してOD420nmを測定した。NHSもしくはfH19-20を添加していない試料、またはEDTAを添加した試料の陰性溶解対照として用いて、蒸留水 100μlで完全に溶解したRBCの試料は、それに対してその他の試料中の溶解%を正規化する陽性対照(100%溶解)として用いた。
LPS誘発性アカゲザルおよびカニクイザルAP補体活性化の遮断における19.1、キメラ19.1および2つのヒト化19.1 mAbの相対的な活性を評価するための実験が実施された(図22および23を参照)。ELISAのプレート(96穴、Nunc)を50μlのLPS溶液(PBS中40μg/ml、4℃で一晩)でコーティングした。翌日、プレートを0.05% PBS-Tを含有するPBSで3回、洗浄処理して、0、10、20、30または40μg/mlの抗プロペルジンmAbと共に4℃で1時間プレインキュベートしておいた50%正常アカゲザル血清(NRS)または正常カニクイザル血清(NCS)の50μlを加えた。NRSまたはNCSはGVB-EGTA-Mg++(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有)で希釈した。プレートを37℃で1時間インキュベートして、PBS-Tで3回、洗浄処理した後、50μl HRP抱合ヤギ抗ヒトC3抗体(1:4000、Cappel、サルC3と交差反応)を加えて、プレートを室温に1時間、置いた。プレートをPBS-Tで3回、洗浄処理した後、BD Pharmingen A+B試薬を用いて発現させた。反応は2N H2SO4を用いて5分後に停止させた。AP補体活性化はプレート上のC3析出の量(OD450)を測定することによって検出した。EDTAを加えた試料(NRSEDTAまたはNCSEDTA)を陰性対照とした(EDTAは補体活性化を遮断する)。mAbを加えていない試料(NRSまたはNCS)はAP補体活性化のベースラインとした。
PNH赤血球の酸性化血清溶解(Ham試験)のmAb 19.1、25およびヒト化19.1-459による阻害を評価するための実験が実施された(図24参照)。発作性夜間血色素尿症(PNH)患者からのRBCをmAbの存在下または不在下においてHamの酸性化血清試験に供した。RBCを自己血清(最終濃度 83%)と共に37℃で2時間、インキュベートして、上清のOD405を測定することによって溶解パーセントを算出して、蒸留水により完全に溶解したRBCの試料に対して正規化した(Eh DDW)。インキュベート混合物は次から構成された:血清 240μl、1/6N HCL 25μl(または陰性対照としての生理食塩液 25μl)、50%(v/v)RBC懸濁液 12.5μl、生理食塩液中mAb 10μl。酸性化していない自己血清(NHS)と共にインキュベートしたRBCの試料を陰性対照として用いた(バックグラウンドの溶解)。mAbの不在下ではRBCの約50%が酸性化血清によって溶解された。この溶解は、8μg/mlおよびこれよりも高い濃度のmAb 19.1により、20μg/mlの濃度のヒト化19.1 mAb(#459)により、また8μg/mlおよびこれよりも高い濃度のmAb 25により完全に阻害された。
プロペルジンヒト化マウスは次の通り作出された(図25参照)。ヒトfP発現ベクターは、CVM-IEエンハンサーを伴うニワトリβ-アクチンプロモーターおよび真核細胞におけるcDNAの安定的発現のためにウサギβ-グロビンポリA尾部を用いて、図25Aの図解に例証する通り、pACGGSプラスミド内で構築された。発現ベクターの構築に用いられるヒトプロペルジンcDNA配列およびそのコードするタンパク質配列をSEQ ID NO: 67およびSEQ ID NO: 68に示す。プラスミドを制限酵素による消化によって直線化して、ヒトfPトランスジェニックファウンダーマウスを作るために、C57BL/6マウスの接合子に微量注入した。(ヒトfP
およびマウス尾部から単離されたゲノムDNAに特異的なプライマーを用いた)PCRスクリーニングによって、陽性ファウンダーマウス(約800bpのヒトfP cDNAフラグメントを示す)を特定することができる。分析した40匹のマウスの内、5匹(#15、20、24、27および32)が陽性であった(図25B、赤色の矢印)。トランスジェニック陽性マウスにおけるヒトfPを検出するため、サンドウィッチELISAアッセイを実施した(図25C)。プレートをヒトfP(クローン8.1)に対するノンブロッキングmAbでコーティングした。希釈したマウス血清(10%)と共にインキュベートした後、HRP抱合ヤギ抗ヒトfP抗体を用いてヒトfPを検出した。正常ヒト血清(NHS)を陽性対照として用いた。この方法により、NHSおよび導入遺伝子陽性マウス(例えば、15、20、24、27、32)の血清ではヒトfPが検出されるが、正常(即ち、非トランスジェニック、例えば、29)マウスまたはfP-/-マウスの血清では検出されない。続いて、生殖系列の移行を確立するために、トランスジェニック陽性ファウンダーマウスをWTマウスと交配した。このような交配からのF1マウスのスクリーニングは、導入遺伝子を検出するための尾部DNAのPCRによって、および前記のようなそれらの血清中のヒトプロペルジンを検出するためのサンドウィッチELISAによって達成された。生殖系列移行の確認後、fP-/--ヒトfP導入遺伝子+マウスを作製するために、ファウンダーマウスをfP-/-マウスと交配した。fP-/--ヒトfP導入遺伝子+マウスにおけるAP補体活性の回復を、実施例2に記載する通り、LPS誘発性AP活性化アッセイによって評価した。このアッセイでは、AP補体活性は、WTマウス血清中およびヒトfP導入遺伝子陽性であるfP-/-マウスの血清中では検出されるが、fP-/-マウスの血清中では検出されない。このアッセイでは、EDTAで処理されたWTマウス血清がAP補体活性化における陰性対照として用いられる。
mAb 25の「プロペルジンヒト化」マウスにおけるインビボでの活性およびキネティクスについて調べるための実験を実施した(図26)。プロペルジンヒト化マウス(fP-/--ヒトfP導入遺伝子+)にmAb 25の0.5mg(i.p.)を注入した。血液試料(50〜75μl)を注入前(0時)およびその後、注入後の様々な時期に後眼窩からの採血によって採取して、血清を分離した。血清試料について、LPS誘発性AP補体活性化について試験した。このアッセイに備えて、ELISAのプレート(96穴、Nunc)をLPS溶液 50μl(PBS中40μg/ml、4℃で一晩)でコーティングした。翌日、プレートを0.05% Tween-20を含有するPBS(PBS-T)で3回、洗浄処理して、各ウェルに階段希釈(1:10から開始)した50μlのマウス血清を加えた。マウス血清をGVB-EGTA-Mg++(10mM EGTAおよび2.5mM Mg++の最終濃度を含有)で希釈した。プレートを37℃で1時間インキュベートして、PBS-Tで3回、洗浄処理した後、HRP抱合ウサギ抗マウスC3抗体(1:2000、Cappel)50μlを加えて、プレートを室温に1時間、置いた。プレートをPBS-Tで3回、洗浄処理した後、BD Pharmingen A+B試薬を用いて発現させた。2N H2SO4を用いて5分後に反応を停止させた。AP補体活性化はプレート上のC3析出の量(OD450)を測定することによって検出した。例証されるこの実施例では、fP-/-マウス血清またはEDTAで処理したWT血清にAP補体活性は存在しなかった。これに対して、WT血清およびfPヒト化マウスの血清では0時(mAb 25投与前)の時点でAP補体活性が検出された。ヒト化マウスにおけるAP補体活性はmAb 25投与後8、24および48時間に抑制されたままであったが、72、96および120時間の時点では検出となった。これらの結果は、0.5mg/マウスの投与量において、mAb 25はインビボにおいてAP補体活性を少なくとも48時間阻害できたことを実証する。
抗ヒトプロペルジンmAb 19.1の血管外溶血(EVH)に対する影響について評価するための実験を実施した。このEVHモデルでは、プロペルジンヒト化マウス(実験群当たりn=4)にCrry/DAF/C3トリプルノックアウト(TKO)マウスの赤血球(RBC)を輸血した。レシピエントマウス(プロペルジンヒト化マウス)はRBC輸血6時間前にmAb 19.1(2mg/マウス、i.p.)を投与して、または対照マウスはIgG1 mAb(MOPC、MoPC 31Cハイブリドーマから精製、ACTTから)を投与した。RBCは、既報の手順(Miwa et al., 2002, Blood 99: 3707-3716)に従って、ドナーTKOマウスから採取して、PBS中で洗浄処理し、レシピエントマウスへの注入(尾静脈を介して)前にCFSEで標識した。各レシピエントマウスに血液 100μlに相当するRBCを輸血した。RBC輸血後5分、および6、24、48、72、96、120時間の時点で、レシピエントマウスから採血して、循環中に残っているCFSE標識された(即ち、輸血された)RBCの数を決定するためにRBCを分析した。各レシピエントにおけるCFSE標識されたRBCの数を5分の時点で検出された数に対して(%として)正規化した。対照のIgG(MOPC)投与されたレシピエントマウスでは、TKO RBCは、先行の所見(Miwa et al., 2002, Biood 99: 3707-3716)に一致して、EVHを介して速やかに排出された。しかし、抗ヒトプロペルジン19.1 mAbを投与されたレシピエントマウスでは、EVHは起こらずに輸血されたRBCは存続して、抗プロペルジンmAbがEVHの予防に有効であったことを実証している(図27)。
Claims (58)
- プロペルジンに特異的に結合する抗体を含む組成物。
- プロペルジンがヒトプロペルジンである、請求項1記載の組成物。
- 抗体がモノクローナル抗体である、請求項1記載の組成物。
- 抗体がヒト化抗体である、請求項1記載の組成物。
- 抗体がキメラ抗体である、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 3;VH-CDR2:SEQ ID NO: 4;VH-CDR3:SEQ ID NO: 5;VL-CDR1:SEQ ID NO: 8;VL-CDR2:SEQ ID NO: 9;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 10からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID NO: 3;VH-CDR2:SEQ ID NO: 4;VH-CDR3:SEQ ID NO: 5;VL-CDR1:SEQ ID NO: 8;VL-CDR2:SEQ ID NO: 9;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 10のCDRを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 2のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 7のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 2のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 7のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 52の少なくとも一つのアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 13;VH-CDR2:SEQ ID NO: 14;VH-CDR3:SEQ ID NO: 15;VL-CDR1:SEQ ID NO: 18;VL-CDR2:SEQ ID NO: 19;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 20からなる群より選択されるCDRの少なくとも一つを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 13;VH-CDR2:SEQ ID NO: 14;VH-CDR3:SEQ ID NO: 15;VL-CDR1:SEQ ID NO: 18;VL-CDR2:SEQ ID NO: 19;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 20のCDRを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 12のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 17のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 12のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 17のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 53の少なくとも一つのアミノ酸を含むエピトープに特異的に結合する、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 23;VH-CDR2:SEQ ID NO: 24;VH-CDR3:SEQ ID NO: 25;VL-CDR1:SEQ ID NO: 28;VL-CDR2:SEQ ID NO: 29;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 30からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 23;VH-CDR2:SEQ ID NO: 24;VH-CDR3:SEQ ID NO: 25;VL-CDR1:SEQ ID NO: 28;VL-CDR2:SEQ ID NO: 29;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 30のCDRを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 22のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 27のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 22のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 27のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID N0: 33;VH-CDR2:SEQ ID NO: 34;VH-CDR3:SEQ ID NO: 35;VL-CDR1:SEQ ID NO: 38;VL-CDR2:SEQ ID NO: 39;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 40からなる群より選択されるCDRの少なくとも1つを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、VH-CDR1:SEQ ID NO: 33;VH-CDR2:SEQ ID NO: 34;VH-CDR3:SEQ ID NO: 35;VL-CDR1:SEQ ID NO: 38;VL-CDR2:SEQ ID NO: 39;およびVL-CDR3:SEQ ID NO: 40のCDRを含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 32のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 37のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 32のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 37のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 42のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 44のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 47のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 42のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 47のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 44のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 47のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 49のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 51のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 49のアミノ酸配列を含む重鎖およびSEQ ID NO: 51のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 2およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 7およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 2およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖ならびにSEQ ID NO: 7およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 12およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 17およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 12およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖ならびにSEQ ID NO: 17およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 22およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 27およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 22およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖ならびにSEQ ID NO: 27およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 32およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 37およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗体が、SEQ ID NO: 32およびSEQ ID NO: 63のアミノ酸配列を含む重鎖ならびにSEQ ID NO: 37およびSEQ ID NO: 64のアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1記載の組成物。
- プロペルジンに結合して、請求項1記載の抗体のプロペルジンへの結合と競合する抗体を含む、組成物。
- プロペルジンに結合して、mAb 19.1と表される抗体のプロペルジンへの結合と競合する抗体を含む、組成物。
- プロペルジンに結合して、mAb 25と表される抗体のプロペルジンへの結合と競合する抗体を含む、組成物。
- プロペルジンに結合して、mAb 22.1と表される抗体のプロペルジンへの結合と競合する抗体を含む、組成物。
- プロペルジンに結合して、mAb 30と表される抗体のプロペルジンへの結合と競合する抗体を含む、組成物。
- 個体における代替経路(AP)介在性の病態を治療する方法であって、該個体に請求項1記載の抗プロペルジン抗体を投与する工程を含む、方法。
- 病態が、黄斑変性、虚血性再灌流障害、関節炎、慢性関節リウマチ、発作性夜間血色素尿症(PNH)症候群、非定型溶血性尿毒症(aHUS)症候群、喘息、臓器移植敗血症、炎症、糸球体腎炎、狼瘡、およびその組み合わせからなる群より少なくとも選択される、請求項53記載の方法。
- 抗プロペルジン抗体が代替経路を選択的に阻害するが、古典的経路およびレクチン経路を阻害しない、請求項53記載の方法。
- 抗プロペルジン抗体が古典的経路およびレクチン経路のAP増幅ループに影響を及ぼさない、請求項53記載の方法。
- 抗プロペルジン抗体の投与がC3bBbタンパク質の産生を阻害する、請求項53記載の方法。
- ヒトプロペルジンの核酸配列がSEQ ID NO: 67であり、ヒトプロペルジンのアミノ酸配列がSEQ ID NO: 54であるヒトプロペルジンを発現するトランスジェニックマウスであって、マウスプロペルジンを発現しないトランスジェニックマウス。
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