JP2013544241A - 新規自己組織化ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体およびその使用 - Google Patents
新規自己組織化ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体およびその使用 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本発明によるポリマーは、式(I):
で表されるポリフェノール−キノノイドポリマーである。一つの態様によれば、本発明によるポリマーの薬学的に許容される誘導体は、場合により置換されていてもよい式(I)のポリマー、特に式(II):
で表されるポリマーを含んでなる。一つの実施態様において、mが0である場合にR1はHを表す。
本発明は、医学的疾患、特にウイルスおよび/または細菌感染により引き起こされる疾患、特にレトロウイルスによって引き起こされる状態または疾患を患う被験体、好ましくは哺乳類被験体、最も好ましくはヒト患者を治療するための、組成物としての医薬品または治療薬および方法を提供する。
本発明のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物およびその組成物は、これらに限定されるものではないが、経口的、非経口的、舌下、局所的、特に局所的に上皮へ、経皮的、直腸性、経粘膜的、経膣的、吸入を通して、頬を通して、もしくは鼻腔内投与、またはそれらの組み合わせを含む、いずれの様式によっても投与されてよい。
本発明の一つの実施形態によれば、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物およびその医薬製剤は、単独で、または抗HIV−1療法において有用な共薬剤(co−agent)、または免疫系の修飾因子、またはヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、もしくはHIVプロテアーゼ阻害剤のような、抗感染性または抗ウイルス性化合物と併用して投与することができる。
一つの実施形態によれば、本発明による患者は、ウイルスおよび/または細菌感染により引き起こされる疾病または疾患、特にレトロウイルスによって引き起こされる状態または疾患を患う患者である。
別の実施形態によれば、本発明は、ウイルスおよび/または細菌感染により引き起こされる疾病または疾患、特にレトロウイルスによって引き起こされる状態または疾患の予防および/または治療のための医薬製剤を調製するための、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物またはその医薬組成物の使用を提供する。
本発明はさらに、ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体、特に本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物の新規な調製方法を提供する。一つの実施態様によれば、本発明は、以下の工程を含むポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の合成方法を提供する:
a)(全ての反応物を添加した後で)、再結晶ハイドロキノン、1,4ベンゾキノン、およびフェノールを、予めpHを約12に調整したナノピュアトリプル蒸留水へ、(ハイドロキノン、ベンゾキノン、フェノールの)モル比2.73;0.93;0.13で、暗所にて撹拌しながらゆっくりと連続的に加えること;
b)工程a)で得た混合物を、室温で暗所にて撹拌を続けながら約24時間置くこと;
c)典型的にはHClの添加によって、溶液のpHを約1.5に調整すること;
d)沈殿物を濾過し、氷冷した水で洗浄した後、工程c)で得た固体を乾燥させること。
a)NaOHペレット、再結晶ハイドロキノン、および1,4ベンゾキノンを、ナノピュアトリプル蒸留水またはアルコール(例えばプロパノール、メタノール、もしくはエタノール、またはそれらの混合液)へ、NaOH、ハイドロキノン、ベンゾキノンのモル比3;1;1で、暗所にて撹拌しながらゆっくりと連続的に加えること;
b)工程a)で得た混合物を、室温で暗所にて、または近紫外線を照射して、撹拌を続けながら約24時間置くこと;
c)典型的にはHClの添加によって溶液のpHを約1.0に調整し、紫外線照射下で行った場合には紫外線照射を止め、該溶液を少なくとも4時間、室温にて静置すること;
d)工程c)で形成されたポリマーの大きな分子量画分を含む固体を、典型的には濾過および氷冷した水で洗浄することによって回収し、ポリマーの小さな分子量画分を含む濾過物を回収および乾燥させること。小さな分子量画分は、最初に濾過物を乾燥させ、次に無水エタノール中に溶解し、溶液を冷却した後に沈殿した無機塩を濾過除去することによって精製される。最後にエタノールを蒸発させ、小さな分子量ポリマーを回収する。
e)工程d)で得られる産物を、エタノールのような溶媒中に溶解すること;
f)精製カラムにて混合物を溶出すること;
g)溶出産物から溶媒を蒸発させること;
h)工程g)で得た固体から水を除去すること。
i)工程h)で得た産物をナノピュア水に溶解すること;および
f)分子量を1000g/モル以下に保つため、再溶解した固体を限外濾過すること。
以下の研究は、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の高い抗ウイルス活性と低い毒性を裏付けるために実施するものである。
ppm(百万分率)、CCR5(ケモカイン共受容体5)、DDI(ジダノシン)、EPR(電子常磁性共鳴)、FITC(フルオレセインイソチオシアネート)、FIV(ネコ免疫不全ウイルス)、GFP(緑色蛍光タンパク質)、HIV(ヒト免疫不全ウイルス)、MFI(平均蛍光強度)、NMR(核磁気共鳴)、PBS(リン酸緩衝液硫酸塩)、RT(逆転写酵素)、SD(標準偏差)、UV(紫外線)。
本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体を、以下に述べるように、本発明による新規な自己触媒的フリーラジカル反応を通して形成する。
産物の性質決定および確認は、以前に記載された同様の化合物に対する標準的な分光技術を用いて行う(Patai,1989,Chemistry of the Quinonoid Compounds(Wiley,New York),Ariese et al.,2004,Aquatic Sciences,66(1),86−94; Bruccoleri et al.,2000、上記)。同様の化合物におけるこれらの分析技術に対する手順およびプロトコルは当業者に公知であり、文献に詳細に記載されている(Patai,1989、上記)。炭素−13核磁気共鳴(13C NMR)、マススペクトロメトリー、および元素分析のような標準的技術を用いた。また、UV−可視分光法、蛍光およびEPRも用いた。
星状膠細胞(U373細胞)を既述のとおりに培養し(Zhang et al.,2003,J.Virol.,77,6899−912;Boven et al.,2003,J.Immunol.,170,2638−46)、0.01mMから1mMの範囲の濃度の、上で得た本発明によるポリフェノール−キノノイド化合物によって処理した。37℃にて24時間のインキュベーション後、倒立蛍光顕微鏡(Zeiss)を用い、400nmの波長にて細胞の蛍光を試験した。実験により、処理した細胞では、無処理の細胞に比較して、細胞質に濃度依存性の蛍光の蓄積が示された。1000μMでは、細胞生存率においていずれの有害作用も示さず、明るい蛍光が観察された。
HeLa−CD4/CCR5細胞を既述のとおりに(Jones et al.,2005,Virology,334,178−193)50,000細胞/ウェルで96ウェルプレートに播種し、上で得た本発明によるポリフェノール−キノノイド化合物を濃度依存性の様式で培養細胞に加えた。化合物への曝露後6ないし24時間後に、トリパンブルー色素排除によって細胞死を評価した。実験により、10μMでのHeLa−CD4/CCR5における細胞傷害性は最大でおおよそ5%であることが明らかとなったが、その構造がポリマー2に類似する、合成ハイドロキノンフミン酸塩由来の類似体であるHS−1500による50%細胞傷害性(TC50)は約600μg/ml(Schneider et al.,1996、上記)であった(図7)。
ポリマーの安全性を決定するため、マウスを「ポリマー1」により用量依存性の様式(経口で1日あたり2、20、200mg/Kg)で1週間処置した後、動物を安楽死させ、腸、脾臓、肝臓、および心臓の評価を含む細胞傷害の形跡について、組織学的方法によって評価した。ポリマーによって処置した動物由来の肝臓、腸、および脾臓の組織学的分析により、コントロール群からの偏差は示されなかった。「ポリマー1」(200mg/kg)によって経口的に処置したマウス由来の腸、肝臓、および脾臓の切片の組織学的分析によって、動物の1週間の処置に関連する毒性、またはいずれの明らかな病的状態もしくは死亡率についての証拠は示されなかった。
別の合成手順を用いて、同じポリマー混合物が誘導されることを明らかにした。本発明による別の方法に従ってポリマー混合物を合成した。ここではNaOHを再結晶ハイドロキノンに加え、1,4 ベンゾキノンをナノピュア水または化学量論量のアルコールに加えるが、NaOH、ハイドロキノン、ベンゾキノンのモル比は3:1:1であった。溶液は、室温で暗所にて撹拌を続けながら24時間置いた。全ての出発物質は反応の最初の数分内に使い切るが、重合反応は継続し、長時間置くこと、および/またはさらに濃縮した条件下、および/または紫外光付近を用いた場合、大きなポリマー画分がもたらされる。濃HClを滴下して加え、pHを1.0に調整することによって反応を停止させる。次に上記のようにポリマーを回収する。抗菌試験での使用準備が整ったとき、材料を必用に応じて単にナノピュア水に溶解する。大きく、より不溶性の画分は、さらに効率よく溶解させるため、生物学的に有意なpH(例えばpH7.4)に調整する必要がある。得られた溶液は使用準備が整っている。あるいは、化合物は、最初に水中でのpHを調整することなく経口投与されてもよい。紫外線スペクトル、元素分析、およびマススペクトロメトリーの結果は、上記の予想される分子構造に一致する。例えばマススペクトロメトリーでは、542、390、および266g/molにおいて予想される分子量画分を表すピークが見出された。
HIV−1 RT活性部位と相互作用するこれらの化合物の分子モデル化予想を行う。分子モデル化研究によって、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマーがHIV−1 RT酵素の幾つかの決定的な構成要素に結合し得ることが示されている。分子量が434g/molである、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー(n=2)の代表的構造の、半経験的な幾何学的最適化PM3レベルの計算は、高電子密度(「ホット」)および低電子密度(「コールド」)の領域によって電子密度表面における静電ポテンシャルマッピングを示すことを可能にする。これらのホットおよびコールド交互領域の電子密度は、自己会合性、自己組織化の分子に典型的であり、相補的な相互作用の発生を可能にする(例えば「ホット」領域は「コールド」領域と共に二量体を形成する)。Sybyl力場下での0.5時間の反復後、モデル化の結果は、アミノ酸残基Tyr441に近いHIV−1 RT RNase H活性部位における結合相互作用による構造変化を示している。金属イオン補助因子であるMg2+原子は、Tyr441の直上に出現する。
本発明によるポリフェノール−キノノイド混合物の抗ウイルス活性を評価するため、以下のアッセイを行ってRT活性に対するその効果を試験した。
HIV−1 p24タンパク質発現における本発明によるポリフェノール−キノノイド化合物による処理の効果を決定するため、様々なアッセイを行った。以下に述べるように、フローサイトメトリーのアプローチを用いて、「ポリマー1」(20μM)で処理したHIV−1感染CEM−GFP細胞におけるp24のレベルを調べた。
培養PBL(1×104)を、抗ネコCD4および抗ネコCD8モノクローナル抗体によって標識した。一次抗体による標識後、FITC結合ヤギ抗ウサギIgG AbおよびPE結合ヤギ抗マウスIgG1抗体を加えた。一次抗体を加えていないものを、コントロールとした。p24の発現における「ポリマー1」の効果を試験するため、HIV−1を感染させた8E5細胞(Achkar et al.,2000,J.Acquir.Immune Defic.Syndr.,24,203−10)またはHIV−1 LTRプロモーターの下にあるGFPを安定的に形質移入したCEM−GFP細胞(Gervaix et al.,1997,Proc.Natl.Acad.Sci U.S.A.,94,4653−8)をフローサイトメトリーアッセイに用いた。
HeLa−CD4/CCR5細胞における合胞体形成を、以前に報告されたように(Garg et al.,2004,Virology,330,424−36)、合胞体形成ウイルス(NL4−3)の感染後に定量した。HeLa−CD4/CCR5細胞は、以前に記載されたように培養した(Zhang et al.,2003、上記;Boven et al.,2003、上記)。おおよそ2×105の標的細胞(HeLa−CD4/CCR5)にHIVウイルスを感染させると共に「ポリマー1」および「ポリマー2」で処理し、24時間後に接着細胞をPBS中の0.5%グルタルアルデヒドで固定した。合胞体形成は、倒立Zeiss(オーバーコッヘン、独国)Axioskop2光学顕微鏡を用いた観察により、×20の倍率下でスコア化した。
env−不活性化HIV−1クローン内にホタルルシフェラーゼを発現するプラスミド(pNL−Luc−E−R−)およびHIV−1 JRFL env配列を含む発現ベクター(pCMV)(Jones et al.,2005、上記)を293T細胞に共形質移入し、形質移入後2日目に得られた上清中のHIV−JRFL−env偽型ウイルスを回収し、低速遠心分離によって細胞片を除去し、HeLa−CD4/CCR5細胞を感染させるために用いた。偽型ウイルスによる標的細胞の感染はルシフェラーゼの発現を誘導するため、これをウイルス添加後2日目の細胞ライセートを用いてルシフェラーゼアッセイキット(PharMingen)により定量し、感染性を相対発光量で表した(Zhang et al.,2003、上記)。
ネコ免疫不全ウイルス(FIV)は、イエネコに、ウイルスの特性および病原作用の点からHIV−1−AIDSに対して明らかな類似性を有するAIDS様症候群を引き起こす。ネコにおけるFIVの血清転換は、典型的には熱性エピソード、リンパ節腫脹、好中球減少、および体重減少により特徴付けられる、一過性の急性期症候群として現れる(de Rozieres et al.,2004,J.Virol.,78,8971−82)。この初期症状の後に、CD4+Tリンパ球が次第に減少する長期の無症状期間、および日和見感染への屈服により特徴付けられるAIDSの末期が続く。それ故このモデルは、特定の抗HIV−1剤をin vivoで試験するために受け入れられる動物モデルに相当する。従って、本発明によるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の抗HIV活性を支持するため、以下のように、このようなモデルにおいて「ポリマー1」を試験した。
フローサイトメトリーによって定量化を行った。
疾病の様々な段階においてもなお、血漿ウイルスRNA量はHIV−1に感染した個体の転帰を予測する最も強力なものであるが、ウイルスRNAの抑制はどのような治療上のアプローチにおいても必要とされる。従って以下のように、実験期間を通して一定の間隔で血漿ウイルスRNA量を測定することにより、「ポリマー1」によって処置したかまたはしていないネコにおけるウイルス量の変化を評価した。0、1、2、3、4週間処置した(「ポリマー1」処置)動物および5、6、7週間(休薬期間)の動物の全血から遠心分離によって血漿を分離し、−80℃に保管した。Trizol LS試薬(Invitrogen)を製造者の指示に従って用いることで、ウイルスRNAを抽出した。得られたRNAを分光光度分析によって定量し、相補DNA(cDNA)の調製に供した。全量50μlの反応に、5μgのRNAを用いた。以前に記載されたように(Kennedy et al.,2004、上記)、複数の株からFIV pol遺伝子を検出するプライマーを用い、リアルタイム逆転写酵素(RT−PCR)プロトコルによって血漿中のウイルスRNAのコピー数/mlを決定した。
グループ間でのリンパ球数およびウイルス量の比較は、ウェルチの独立t検定を用いて行った。統計解析はインスタットグラフパッド3.01(サンディエゴ、カリフォルニア州、米国)を用いて行い、0.05未満のP値を有意であるとみなした。
実施例1の記載に従って得た本発明によるポリマー混合物の、グラム陽性菌およびグラム陰性菌の範囲、すなわち大腸菌、枯草菌、緑膿菌、およびプチダ菌に対する抗菌力について試験した。最初に、最小発育阻止濃度(MIC)アッセイ(Mouton,J.W.and Vinks,A.A.,(2005)Clinical Pharmacokinetics,Volume 44,Number 2,201−210頁の記載に従った)を、可能性のある抗菌活性を試験するために用いた。ポリマー混合物は、10mg/mlから0.1mg/mlの範囲の濃度で試験した。MIC値は以下の表2に示されるとおりであった。
繊維における抗菌作用は、Hee et al.,2001,Textile Research Journal,71(4),318−323およびSun,2005,J.Chem.Educ.,82,60−64に記載されるように、アメリカ繊維化学技術・染色技術協会(AATCC)のプロトコルに従ってよい。
Claims (26)
- 以下の工程:
a)NaOHペレット、再結晶ハイドロキノン、および1,4ベンゾキノンを、ナノピュアトリプル蒸留水またはアルコールに、NaOH、ハイドロキノン、ベンゾキノンのモル比3;1;1で、暗所にて撹拌しながらゆっくりと連続的に加えること;
b)工程a)で得た混合物を、室温で暗所にて、または近紫外線照射下に、撹拌を続けながら約24時間置くこと;
c)溶液のpHを約1.5に調整し、紫外線照射下で行っていた場合には紫外線照射を止め、該溶液を少なくとも4時間、室温にて静置すること;
d)工程c)で形成されたポリマーの大きな分子量画分を含む固体を、典型的には濾過および氷冷した水で洗浄することによって回収し、ポリマーの小さな分子量画分を含む濾過物を回収および乾燥すること
を含んでなる、ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の合成方法。 - 工程a)において、1%以下の化学量論量のフェノールを反応物に加える、請求項3に記載の方法。
- 以下の工程:
e)請求項3に記載の方法の工程d)で得られた産物を、エタノールのような溶媒中に溶解すること;
f)当該混合物から無機塩を濾過除去すること;
g)溶出産物から溶媒を蒸発させること
を含んでなる、ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の合成方法。 - 請求項3〜5のいずれか一項に記載の方法によって得ることができるポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体混合物およびいずれかの薬学的に許容されるその塩またはプロドラッグ。
- 薬剤として使用するための、請求項1または2または6に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物。
- 請求項1または2または6に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物の少なくとも一つ、および少なくとも一つの薬学的に許容される担体を含んでなる、医薬製剤。
- 該製剤が経口用製剤である、請求項8に記載の医薬製剤。
- 該製剤が外用製剤である、請求項8に記載の医薬製剤。
- 該製剤がクリーム、フォーム、またはゲルの形態である、請求項10に記載の医薬製剤。
- ウイルス感染により引き起こされる疾病または疾患を、予防および/または治療もしくは抑制するための、請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤。
- 該疾病または疾患が、レトロウイルス感染により引き起こされる、請求項12に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または製剤。
- 該レトロウイルスがHIV−1である、請求項13に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または製剤。
- 該ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体が経口的に投与される、請求項11〜14のいずれか一項に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物。
- 該ポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体が局所的に投与される、請求項11〜14のいずれか一項に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物。
- 細菌感染により引き起こされる疾病または疾患を、予防および/または治療もしくは抑制するための、請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤。
- 有効量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤がコートされてなることを特徴とする、物品。
- 請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を含んでなる、多機能性抗菌組成物。
- 請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を含んでなる、染色用組成物。
- 血液製剤のウイルス感染性を除去する方法であって、前記血液製剤と有効量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤とを接触させることを特徴とする、方法。
- 細菌感染により引き起こされる疾病を予防する方法であって、有効量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を、医療において用いられる材料の表面に塗布することを特徴とする、方法。
- ウイルス感染により引き起こされる疾病または疾患を予防および/または治療もしくは抑制する方法であって、被験体に、その必要に応じて治療上有効な量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を投与することを特徴とする、方法。
- レトロウイルスに感染したホストにおいて逆転写酵素を阻害する方法であって、ホストに、その必要に応じて治療上有効な量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を投与することを特徴とする、方法。
- 細菌感染により引き起こされる疾病または疾患を予防および/または治療もしくは抑制する方法であって、被験体に、その必要に応じて治療上有効な量の請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤を投与することを特徴とする、方法。
- 組織サンプルを染色する方法であって、顕微鏡または蛍光光度法による観察前に、前記組織サンプルと請求項1または2または5に記載のポリフェノール−キノノイドポリマー誘導体の混合物または請求項8〜11のいずれか一項に記載の製剤とを接触させる工程を含むことを特徴とする、方法。
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