JP2013543730A - 非複製性プロバイオティクス微生物を含有するスプーナブルヨーグルト調製物 - Google Patents
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Abstract
本発明は、スプーナブルヨーグルト組成物の分野に関する。特に、本発明は、非複製性プロバイオティクス微生物を含むスプーナブルヨーグルト組成物を提供する。これらの非複製性プロバイオティクス微生物は、例えば、生理活性のある熱処理プロバイオティクス微生物である。本発明は、これらの非複製性プロバイオティクス微生物によりもたらされる健康上の利益にも関する。
【選択図】なし
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Description
本発明は、スプーナブル（スプーンで食べるタイプの）ヨーグルト組成物の分野に関する。特に、本発明は、非複製性プロバイオティクス微生物を含むスプーナブルヨーグルト組成物を提供する。これらの非複製性プロバイオティクス微生物は、例えば、生理活性のある熱処理プロバイオティクス微生物である。本発明は、これらの非複製性プロバイオティクス微生物によりもたらされる健康上の利益にも関する。
同時に、プロバイオティクスの健康上の利益は当技術分野において広く認められており、例えば、Ｂｌｕｍらにより、Ｃｕｒｒ Ｉｓｓｕｅｓ Ｉｎｔｅｓｔ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２００３年９月，４（２）：５３〜６０でまとめられている。しばしば、プロバイオティクスは、さらに強化された健康上の利益を有し得る共生的配合物においてプレバイオティクスと一緒に投与される。
プロバイオティクス細菌は、ヒト腸細胞に付着し、ヒト腸細胞上の病原菌を排除できることが知られている。この活性を示すために、プロバイオティクス細菌は、摂取されるまで製品中で生存可能なままでなければならない。これは、産業界にとって課題であり、食品へのプロバイオティクスの添加を困難にしている。
特に、製造の間に加熱される製品及び／又は摂取されるまでに長時間貯蔵され得る製品（例えば常温保存可能な製品）については、通常、プロバイオティクスが摂取されるまで確実に生存可能なまま製品中に残るようにすること、さらに、プロバイオティクスが確実に生存可能な状態で腸管に到着するようにすることは困難であると考えられている。
調製し易いと同時に、プロバイオティクスにとって過酷な条件下での長時間の貯蔵後であってもプロバイオティクスの利益をもたらすことができるスプーナブルヨーグルト組成物を入手可能であることが望ましい。このことは、副作用がなく安全に投与でき、最先端の産業技術を使用してスプーナブルヨーグルト組成物に組み込み易い天然の成分を使用することにより達成することが好ましい。
改善された追加免疫作用を有するプロバイオティクスを含む組成物を提供することも望ましい。
改善された抗炎症作用を有するプロバイオティクスを含む組成物を提供することも望ましい。
本発明者らは、この要求について検討してきた。それ故、本発明の目的は、当技術分野の水準を改善すること及び上記要求を満たすスプーナブルヨーグルト組成物を提供することである。
本発明者らは、驚くべきことに、独立クレームの主題によりこの目的を達成できたことを知見した。従属クレームは、本発明のアイディアをさらに発展させるものである。
したがって、本発明者らは、非複製性プロバイオティクス微生物を含むスプーナブルヨーグルト組成物を提供する。
本発明のスプーナブルヨーグルトは、固形又は攪拌型ヨーグルトとすることができる。攪拌型ヨーグルトは、例えば、プレーン、無糖、加糖又は風味付き調製物の形態である。本発明のスプーナブルヨーグルトは、低脂肪又は無脂肪又はクリームを多く含むものとすることができる。本発明のスプーナブルヨーグルトは果実調製物を含み得る。固形ヨーグルトは、フルーツオンザボトムの形態とすることもできる。
生存可能プロバイオティクスではなく非複製性プロバイオティクス微生物を製品に添加することの１つの利点は、製品中に繊維が存在する場合、非複製性プロバイオティクス微生物が、繊維の質感に影響を及ぼさず、その結果、時間を経ても組成物の口当たりが変わらないことである。
さらに、本発明者らは、非複製性プロバイオティクスがプロバイオティクスの健康上の利益をもたらすことができ、しかも改善された利益をも有し得ることを示すことができた。
それ故、最終製品中でプロバイオティクスを生かしておくため、及びそれらプロバイオティクスが必ず生きたまま腸内に到着するようにするための複雑な手段は不必要であると思われる。さらに、非複製性プロバイオティクスをスプーナブルヨーグルト組成物において使用することにより、スプーナブルヨーグルト組成物が、製品の調製及び貯蔵の間に好ましくない早すぎる繊維の破壊が生じる恐れを伴わずに、プロバイオティクス及びプレバイオティクスを一緒に１つの調製物中に有することも可能となる。
本発明のスプーナブルヨーグルト組成物中の非複製性微生物の量は、１食当たり約１０６〜１０１２ｃｆｕ相当とすることができる。
当然、非複製性微生物はコロニーを形成せず、したがって、この用語は、１０４及び１０１２ｃｆｕ／ｇ複製性細菌から得られる非複製性微生物の量として理解される。この量は、不活性化されている微生物、生存不能若しくは死んでいる微生物、又は例えばＤＮＡ、若しくは細胞壁若しくは細胞質の化合物等の断片として存在している微生物を含む。換言すると、組成物が含有する微生物の量は、例えば、不活性化されている若しくは死んでいる、断片化されている、又はこれらの状態のいずれか若しくはすべての混合状態である等、実際に非複製性であるかどうかにかかわらず、すべての微生物が生きているかのように考えて、その量の微生物のコロニー形成能（ｃｆｕ）で表す。
スプーナブルヨーグルトは、全脱脂乳、部分脱脂乳、濃縮スキムミルク、クリーム及び無脂肪粉乳から標準化されたミックスから作製する。あるいは、乳は、真空釜において約１５％〜約２０％の水を除去することにより部分的に濃縮することができる。無脂乳固形分（ＭＳＮＦ）に無脂肪粉乳を補充することが好ましい。ヨーグルト中の乳脂レベルは、無脂肪ヨーグルトの約０．５％未満から通常のヨーグルトの最低で３．２％までの範囲である。ＭＳＮＦは、少なくとも８．２５％のものであることが好ましい。
ヨーグルトの特定の特性を変更するために、様々な成分を添加することができる。ヨーグルトを甘くするために、スクロース（糖）をおおよそ７％添加することができる。低カロリーヨーグルトについては人工甘味料（例えば、アスパルテーム、サッカリン）を使用する。クリームを添加して滑らかな質感を付与することができる。ヨーグルトの粘稠度及び貯蔵性は、安定剤（例えば、食用デンプン、ゼラチン、イナゴ豆ガム、グアーガム、ペクチン）の包含により改善することができる。スプーナブルヨーグルト組成物は、例えば約０．３〜０．５重量％のペクチンを含むことができる。
スプーナブルヨーグルト組成物は、冷蔵条件下で貯蔵することができる。冷蔵条件は、一般に、２℃〜１５℃、好ましくは４℃〜８℃の温度である。
スプーナブルヨーグルト組成物は、周囲条件下で貯蔵することもできる。周囲条件は、一般に、１６℃〜２５℃、好ましくは１８℃〜２３℃の温度である。周囲条件下でプロバイオティクスを長期間生存可能な状態にしておくことは、特に難しい。それ故、特に周囲条件で貯蔵されるスプーナブルヨーグルト組成物については、非複製性プロバイオティクス微生物の添加が、さらなる健康上の利益を製品に付与すると期待できる方法である。
本発明のスプーナブルヨーグルト組成物はプレバイオティクスを含んでもよい。
「プレバイオティクス」とは、腸内のプロバイオティクスの増殖を促進する食品物質を意味する。プレバイオティクスは、胃及び／又は腸上部で分解されないか、あるいはそれらプレバイオティクスを摂取した人の胃腸管で吸収されないが、胃腸微生物叢及び／又はプロバイオティクスにより発酵する。プレバイオティクスは、例えば、Ｇｌｅｎｎ Ｒ．Ｇｉｂｓｏｎ及びＭａｒｃｅｌ Ｂ．Ｒｏｂｅｒｆｒｏｉｄ，Ｄｉｅｔａｒｙ Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｈｕｍａｎ Ｃｏｌｏｎｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｔａ：Ｉｎｔｒｏｄｕｃｉｎｇ ｔｈｅ Ｃｏｎｃｅｐｔ ｏｆ Ｐｒｅｂｉｏｔｉｃｓ，Ｊ．Ｎｕｔｒ．１９９５ １２５：１４０１〜１４１２により定義されている。
本発明に従って使用可能なプレバイオティクスは特に限定されておらず、腸内のプロバイオティクスの増殖を促進するすべての食品物質が挙げられる。プレバイオティクスは、場合によりフルクトース、ガラクトース、マンノースを含有するオリゴ糖；食物繊維、特に可溶性繊維、ダイズ繊維；イヌリン；又はそれらの混合物からなる群から選択できることが好ましい。好ましいプレバイオティクスは、フラクト−オリゴ糖（ＦＯＳ）、ガラクト−オリゴ糖（ＩＯＳ）、イソマルト−オリゴ糖、キシロ−オリゴ糖、ダイズのオリゴ糖、グリコシルスクロース（ＧＳ）、ラクトスクロース（ＬＳ）、ラクツロース（ＬＡ）、パラチノース−オリゴ糖（ＰＡＯ）、マルト−オリゴ糖（ＭＯＳ）、ガム及び／又はそれらの加水分解物、ペクチン及び／又はそれらの加水分解物である。
プレバイオティクスの典型例はオリゴフルクトース及びイヌリンである。
本発明のスプーナブルヨーグルト組成物中のプレバイオティクスの量は、乳酸菌の発育を促進するそれらの能力によって異なる。
本発明のスプーナブルヨーグルト組成物は、例えば、プレバイオティクス１ｇ当たり少なくとも１０３ｃｆｕ、好ましくは１０４〜１０７ｃｆｕ／ｇプレバイオティクスの量に相当する量のプロバイオティクスを含み得る。
本発明者らは、驚くべきことに、例えば、追加免疫作用の観点から及び／又は抗炎症作用の観点から、非複製性プロバイオティクス微生物が複製性プロバイオティクス微生物より効果的であり得ることを見出した。
プロバイオティクスは、「十分な量で投与されると健康上の利益を宿主に付与する生きた微生物」（ＦＡＯ／ＷＨＯガイドライン）として定義されることが多いので、これは驚くべきことである。公表されている文献の圧倒的多数は、生きたプロバイオティクスを扱っている。さらに、複数の研究は、非複製性細菌により付与される健康上の利益を調査しており、それらの研究の大部分は、例えば、熱処理によるプロバイオティクスの不活性化が、主張されているプロバイオティクスの健康上の利益の低下につながることを示していた（Ｒａｃｈｍｉｌｅｗｉｔｚ，Ｄ．ら，２００４，Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １２６：５２０〜５２８；Ｃａｓｔａｇｌｉｕｏｌｏら，２００５，ＦＥＭＳ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｄ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４３：１９７〜２０４；Ｇｉｌｌ，Ｈ．Ｓ．及びＫ．Ｊ．Ｒｕｔｈｅｒｆｕｒｄ，２００１，Ｂｒ．Ｊ．Ｎｕｔｒ．８６：２８５〜２８９；Ｋａｉｌａ，Ｍ．ら，１９９５，Ａｒｃｈ．Ｄｉｓ．Ｃｈｉｌｄ ７２：５１〜５３）。一部の研究は、死滅したプロバイオティクスが、一部の健康作用を保持し得ることを示していた（Ｒａｃｈｍｉｌｅｗｉｔｚ，Ｄ．ら，２００４，Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １２６：５２０〜５２８；Ｇｉｌｌ，Ｈ．Ｓ．及びＫ．Ｊ．Ｒｕｔｈｅｒｆｕｒｄ，２００１，Ｂｒ．Ｊ．Ｎｕｔｒ．８６：２８５〜２８９）が、明らかに、当技術分野において、今までのところ、生きたプロバイオティクスのほうが能力が高いと見なされていた。
「非複製性」プロバイオティクス微生物としては、熱処理されたプロバイオティクス細菌が挙げられる。「非複製性」プロバイオティクス微生物としては、不活性化された微生物、死んだ微生物、生存不能な微生物、並びに／又は、例えば、ＤＮＡ、代謝産物、細胞質の化合物及び／若しくは細胞壁材料等の断片として存在している微生物が挙げられる。
「非複製性」とは、生存可能な細胞及び／又はコロニー形成単位を古典的な平板分離法により検出できないことを意味する。そのような古典的な平板分離法は、微生物学の本：Ｊａｍｅｓ Ｍｏｎｒｏｅ Ｊａｙ，Ｍａｒｔｉｎ Ｊ．Ｌｏｅｓｓｎｅｒ，Ｄａｖｉｄ Ａ．Ｇｏｌｄｅｎ，２００５，Ｍｏｄｅｒｎ ｆｏｏｄ ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，第７版，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ．７９０頁にまとめられている。一般に、生存可能な細胞の不存在は、以下の通り示すことができる：様々な濃度の細菌調製物（「非複製性」試料）の接種及び適切な条件（好気性及び／又は嫌気性雰囲気で少なくとも２４時間）下でのインキュベーション後に、寒天プレートに可視コロニーが存在していないか、又は液体増殖培地において混濁度が増大していない。
本発明の目的のためのプロバイオティクスは、「宿主の健康又は福祉に対して有益な作用を有する微生物細胞調製物又は微生物細胞の構成要素」として定義する（Ｓａｌｍｉｎｅｎ Ｓ．，Ｏｕｗｅｈａｎｄ Ａ．，Ｂｅｎｎｏ Ｙ．ら，Ｐｒｏｂｉｏｔｉｃｓ：ｈｏｗ ｓｈｏｕｌｄ ｔｈｅｙ ｂｅ ｄｅｆｉｎｅｄ，Ｔｒｅｎｄｓ Ｆｏｏｄ Ｓｃｉ．Ｔｅｃｈｎｏｌ．１９９９：１０ １０７〜１０）。
本発明の組成物は、少なくとも部分的に健康上の利益をもたらすのに十分な量でプロバイオティクス微生物及び／又は非複製性プロバイオティクス微生物を含む。これを達成するのに十分な量は、「治療有効量」として定義する。この目的のために効果的な量は、当業者に知られている多数の要因、例えば、個体の重量及び全身の健康状態、並びに食品基材の作用によって異なり得る。
予防的適用において、本発明の組成物は、ある障害に罹患しやすいか、罹患する危険性がある個体に、その障害を発症する危険性を少なくとも部分的に低減させるのに十分な量で投与する。そのような量は、「予防有効量」と定義する。やはり、正確な量は、多数の要因、例えば、個体の健康状態及び重量、並びに食品基材の作用によって異なる。
当業者は、治療有効量及び／又は予防有効量を適切に調整することができる。
一般に、本発明の組成物は、非複製性プロバイオティクス微生物を治療有効量及び／又は予防有効量で含有する。
一般に、治療有効量及び／又は予防有効量は、１日量当たり約０．００５ｍｇ〜１０００ｍｇの非複製性のプロバイオティクス微生物である。
好ましくは、非複製性微生物は、乾燥した組成物１グラム当たり１０４〜１０９ｃｆｕに相当する量で、さらにより好ましくは、乾燥した組成物１グラム当たり１０５〜１０９ｃｆｕに相当する量で存在する。
プロバイオティクスは、当技術分野において知られている任意の方法により非複製性にすることができる。
プロバイオティクス菌株を非複製性にするのに今日利用可能な技術は、通常、熱処理、γ線照射、ＵＶ光、又は化学物質（ホルマリン、パラホルムアルデヒド）の使用である。
数量の観点から、例えば、「短時間高温」処理された非複製性微生物は、乾燥した組成物１グラム当たり１０４〜１０１２ｃｆｕ当量に相当する量で組成物中に存在し得る。
プロバイオティクスを非複製性にするために、食品産業における工業的環境下で相対的に適用し易い技術を使用することが好ましい。
例えば、プロバイオティクスは非複製性にすることができ、非複製性プロバイオティクスとしてスプーナブルヨーグルト組成物に添加することができる。
今日市場に出回っているプロバイオティクスを含有する製品の大部分は、それらの製造の間に熱処理されている。それ故、製造された製品と共に又は少なくとも同様の方法で、プロバイオティクスを熱処理でき、それと同時に、プロバイオティクスがそれらの有益な特性を保持若しくは改善するか、又は個体にとって新しい有益な特性をさらに得られると、好都合である。
それ故、プロバイオティクスは、生存可能な形態でスプーナブルヨーグルト組成物に添加することもでき、スプーナブルヨーグルトの通常の製造プロセスにおける熱処理ステップの間に非複製性にすることができる。
熱処理によるプロバイオティクス微生物の不活性化は、文字通り、一般に、少なくとも部分的なプロバイオティクス活性の低下を伴うが、今や、本発明者らは、驚くべきことに、プロバイオティクス微生物を、例えば熱処理により非複製性にすることが、結果としてプロバイオティクスの健康上の利益の低下につながらず、反対に、既存の健康上の利益を強化し、さらには、新しい健康上の利益を生み出すことができることを見出した。
それ故、本発明の一実施形態は、非複製性プロバイオティクス微生物が熱処理により非複製性にされたスプーナブルヨーグルト組成物である。
そのような熱処理は、少なくとも７１．５℃で少なくとも１秒実施することができる。
長時間の熱処理又は短時間の熱処理を使用することができる。
今日、工業規模において、通常、短時間熱処理（例えばＵＨＴ様熱処理）が好ましい。この種の熱処理により、細菌負荷が低減し、加工時間が低減し、それにより栄養素の損傷が低減する。
本発明者らは、初めて、高温で短時間熱処理されたプロバイオティクス微生物が、それらの最初の特性に関係なく抗炎症性免疫プロファイルを示すことを証明する。特に、この熱処理により、新しい抗炎症性プロファイルが生じるか、又は既存の抗炎症性プロファイルが強化される。
したがって、今や、生きた対応物が抗炎症性菌株ではなくても、一般的な工業的に適用可能な熱処理に対応する特定の熱処理パラメーターを使用することにより、抗炎症性免疫プロファイルを有する非複製性プロバイオティクス微生物を生成することが可能である。
それ故、例えば、熱処理は、約７１．５〜１５０℃、約１〜１２０秒の高温処理とすることができる。高温処理は、高温／短時間（ＨＴＳＴ）処理又は超高温（ＵＨＴ）処理とすることができる。
プロバイオティクス微生物は、約７１．５〜１５０℃、約１〜１２０秒の短時間の高温処理に付すことができる。
より好ましくは、微生物は、約９０〜１４０℃（例えば９０〜１２０℃）、約１〜３０秒の短時間の高温処理に付すことができる。
この高温処理により、微生物は少なくとも部分的に非複製性となる。
高温処理は、通常の大気圧で実施することができるが、高圧下で実施することもできる。一般的な圧力範囲は、１〜５０バール、好ましくは１〜１０バール、さらにより好ましくは２〜５バールである。当然、熱を適用する場合、プロバイオティクスを液体又は固形の媒体中で熱処理することが好ましい。したがって、適用する理想的な圧力は、微生物が供給される組成物の特性及び使用する温度によって異なる。
高温処理は、約７１．５〜１５０℃、好ましくは約９０〜１２０℃、さらにより好ましくは約１２０〜１４０℃で実施することができる。
高温処理は、約１〜１２０秒、好ましくは約１〜３０秒、さらにより好ましくは約５〜１５秒の短時間実施することができる。
この所与の時間枠は、プロバイオティクス微生物が所与の温度に曝露される時間を指す。微生物が供給される組成物の特性及び量に応じて、並びに使用する加熱装置の構成に応じて、加熱時間が異なり得ることに留意されたい。
しかし、一般に、本発明の組成物及び／又は微生物は、高温短時間（ＨＴＳＴ）処理、瞬間低温殺菌又は超高温（ＵＨＴ）処理により処理する。
ＵＨＴ処理は、短時間、約１〜１０秒、乳中の細菌胞子を死滅させるのに必要とされる温度である１３５℃（２７５°Ｆ）を上回る温度で加熱することにより、組成物が少なくとも部分的に滅菌されることを伴う超高温加工又は超高温処理（いずれもＵＨＴと略される）である。例えば、１３５℃を上回る温度を使用してこの方法で乳を加工することにより、必要な滞留時間（２〜５秒）で細菌負荷の低下が可能となり、連続流れ操作が可能となる。
２つの主要なタイプのＵＨＴシステム：直接及び間接システムが存在する。直接システムにおいて、製品は、スチームインジェクション又はスチームインフュージョンにより処理され、一方、間接システムにおいて、製品は、平板熱交換器、多管型熱交換器又はかき取り表面熱交換器を使用して熱処理される。ＵＨＴシステムの組み合わせは、製品調製プロセスの任意のステップ又は複数のステップで適用することができる。
ＨＴＳＴ処理は、以下の通り定義する（高温／短時間）：乳中の生存可能な微生物の数の９９．９９９９％を死滅させる、５対数減少を達成するように設計された低温殺菌法。ＨＴＳＴ処理は、ほとんどすべての酵母菌、カビ及び一般の腐敗細菌を破壊し、さらには一般の病原性の耐熱性菌を確実に破壊するのに十分であると見なされる。ＨＴＳＴプロセスにおいて、乳を７１．７℃（１６１°Ｆ）まで１５〜２０秒加熱する。
瞬間低温殺菌は、果実及び野菜ジュース、ビール並びに乳製品の様な腐敗し易い飲料の熱低温殺菌の方法である。瞬間低温殺菌は、腐敗微生物を死滅させるために容器への充填の前に実施して、製品をより安全にし、それらの貯蔵寿命を延長する。液体は、７１．５℃（１６０°Ｆ）〜７４℃（１６５°Ｆ）の温度に約１５〜３０秒曝露される間、制御された連続流れで移動する。
本発明の目的のために、「短時間高温処理」という用語は、例えば、高温短時間（ＨＴＳＴ）処理、ＵＨＴ処理、及び瞬間低温殺菌を含む。
そのような熱処理により、改善された抗炎症性プロファイルを有する非複製性プロバイオティクスが提供されるので、本発明の組成物は、炎症性障害の予防又は治療のためのものとすることができる。
本発明の組成物により治療又は予防することができる炎症性障害は、特に限定されていない。例えば、それら炎症性障害は、急性炎症、例えば敗血症；熱傷；及び慢性炎症、例えば炎症性腸疾患（例えば、クローン病、潰瘍性大腸炎、回腸嚢炎）；壊死性腸炎；皮膚炎、例えば、ＵＶ又は化学物質誘発性の皮膚炎、湿疹、反応性皮膚；過敏性腸症候群；眼の炎症；アレルギー、喘息；並びにそれらの組み合わせからなる群から選択することができる。
長時間熱処理を使用してプロバイオティクス微生物を非複製性にする場合、そのような熱処理は、約７０〜１５０℃で約３分〜２時間、好ましくは８０〜１４０℃で５分〜４０分実施することができる。
先行技術は、一般に、長時間の熱処理により非複製性にされた細菌が、それらのプロバイオティクス特性を発揮する観点から、通常、生菌体ほど効率的ではないことを教示しているが、本発明者らは、熱処理されたプロバイオティクスが、それらの生きた対応物と比較して免疫系の刺激において優れていることを証明することができた。
本発明は、少なくとも約７０℃、少なくとも約３分の熱処理により非複製性にされたプロバイオティクス微生物を含む組成物にも関する。
非複製性プロバイオティクスの追加免疫作用は、ｉｎ ｖｉｔｒｏの免疫プロファイルにより確認した。使用したｉｎ ｖｉｔｒｏモデルは、ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）からのサイトカインのプロファイルを使用するものであり、免疫調節性化合物の試験用の標準的モデルとして当技術分野において広く認められている（Ｓｃｈｕｌｔｚら，２００３，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｄａｉｒｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，７０， １６５〜１７３；Ｔａｙｌｏｒら，２００６，Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｌｌｅｒｇｙ，３６， １２２７〜１２３５；Ｋｅｋｋｏｎｅｎら，２００８，Ｗｏｒｌｄ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，１４， １１９２〜１２０３）。
ｉｎ ｖｉｔｒｏのＰＢＭＣアッセイは、複数の著者／研究チームにより、例えば、プロバイオティクスをそれらの免疫プロファイル（すなわち、それらの抗炎症性又は炎症誘発性の特徴）に応じて分類するために使用されてきた（Ｋｅｋｋｏｎｅｎら，２００８，Ｗｏｒｌｄ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，１４， １１９２〜１２０３）。例えば、このアッセイは、腸大腸炎のマウスモデルにおけるプロバイオティクス候補の抗炎症作用の予測を可能にすることが示されてきた（Ｆｏｌｉｇｎｅ，Ｂ．ら，２００７，Ｗｏｒｌｄ Ｊ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．１３：２３６〜２４３）。さらに、このアッセイは、通常、臨床試験において情報を読み出すだめに使用されており、臨床転帰と一致した結果をもたらすことが示された（Ｓｃｈｕｌｔｚら、２００３，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｄａｉｒｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，７０， １６５〜１７３；Ｔａｙｌｏｒら，２００６，Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｌｌｅｒｇｙ，３６， １２２７〜１２３５）。
アレルギー性疾患は、過去数十年の間に着実に増加してきており、現在、ＷＨＯにより流行病であると見なされている。一般的には、アレルギーは、免疫系のＴｈ１応答及びＴｈ２応答間の平衡異常から生じ、Ｔｈ２メディエーターの産生に対する強いバイアスをもたらすと見なされている。したがって、アレルギーは、免疫系のＴｈ１群及びＴｈ２群間の適切な平衡を回復させることにより緩和、下方制御又は予防することができる。このことは、Ｔｈ２応答を低減させるか、又は少なくとも一時的にＴｈ１応答を強化する必要性を暗示している。後者は、例えば、より高いレベルのＩＦＮγ、ＴＮＦ−α及びＩＬ−１２を伴うことが多い追加免疫応答の特徴となる可能性がある（Ｋｅｋｋｏｎｅｎら，２００８，Ｗｏｒｌｄ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，１４， １１９２〜１２０３；Ｖｉｌｊａｎｅｎ Ｍ．ら，２００５，Ａｌｌｅｒｇｙ，６０， ４９４〜５００）。
それ故、本発明のスプーナブルヨーグルト組成物は、免疫防御不全に関連する障害の治療又は予防を可能にする。
したがって、本発明の組成物により治療又は予防可能な免疫防御不全関連障害は特に限定されるものではない。
例えば、それらの障害は、感染、特に細菌、ウイルス、真菌及び／又は寄生虫感染；食細胞欠損；低いレベルから厳しいレベルの免疫抑制、例えば、ストレス又は免疫抑制薬、化学療法若しくは放射線療法により誘発されるもの；免疫能が低い免疫系の自然な状態、例えば新生児の状態；アレルギー；並びにそれらの組み合わせからなる群から選択することができる。
本発明に記載されているスプーナブルヨーグルト組成物により、また、子供のワクチン、特に経口ワクチンに対する応答を強化することが可能となる。
任意の量の非複製性微生物が効果的となる。しかし、一般に、少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９８％、最も好ましくは少なくとも９９％、理想的には少なくとも９９．９％、最も理想的にはすべてのプロバイオティクスが非複製性であることが好ましい。
本発明の一実施形態において、すべての微生物は非複製性である。
したがって、本発明の組成物において、少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９８％、最も好ましくは少なくとも９９％、理想的には少なくとも９９．９％、最も理想的にはすべてのプロバイオティクスが非複製性であってもよい。
本発明の目的のために、すべてのプロバイオティクス微生物を使用することができる。
例えば、プロバイオティクス微生物は、ビフィズス菌、乳酸菌、プロピオン酸菌又はそれらの組み合わせ（例えば、ビフィドバクテリウム・ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム・ラクティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌａｃｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム・アニマリス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｎｉｍａｌｉｓ）、ビフィドバクテリウム・ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウム・インファンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｉｎｆａｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム・アドレセンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ラクトバチルス・アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス・カゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・サリバリウス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ）、ラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ）、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトバチルス・ジョンソニイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ）、ラクトバチルス・プランタルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス・フェルメントゥム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）、ストレプトコッカス・テルモフィルス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）、ラクトコッカス・ジアセチラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｄｉａｃｅｔｙｌａｃｔｉｓ）、ラクトコッカス・クレモリス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラクトバチルス・ブルガリクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・ヘルベティクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・デルブリュッキイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ）、エシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）及び／又はそれらの混合物）からなる群から選択することができる。
本発明の組成物は、例えば、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ３００１、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ２７０５、ビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０、ビフィドバクテリウム・ラクティスＮＣＣ２８１８、ラクトバチルス・ジョンソニイＬａ１、ラクトバチルス・パラカゼイＮＣＣ２４６１、ラクトバチルス・ラムノサスＮＣＣ４００７、ラクトバチルス・ロイテリＤＳＭ１７９３８、ラクトバチルス・ロイテリＡＴＣＣ５５７３０、ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０１９、ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０５９、ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ４００６、ラクトバチルス・アシドフィルスＮＣＣ３００９、ラクトバチルス・カゼイＡＣＡ−ＤＣ６００２（ＮＣＣ１８２５）、エシェリヒア・コリ・ニッスル（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｎｉｓｓｌｅ）、ラクトバチルス・ブルガリクスＮＣＣ１５、ラクトコッカス・ラクティスＮＣＣ２２８７又はそれらの組み合わせからなる群から選択されるプロバイオティクス微生物を含むことができる。
すべてのこれらの菌株は、ブダペスト条約に基づいて寄託及び／又は市販されている。
ブダペスト条約に基づいて寄託されている菌株は下記の通りである。
ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ３００１： ＡＴＣＣ ＢＡＡ−９９９
ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ２７０５： ＣＮＣＭ Ｉ−２６１８
ビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０： ＣＮＣＭ Ｉ−３８６５
ビフィドバクテリウム・ラクティスＮＣＣ２８１８： ＣＮＣＭ Ｉ−３４４６
ラクトバチルス・パラカゼイＮＣＣ２４６１： ＣＮＣＭ Ｉ−２１１６
ラクトバチルス・ラムノサスＮＣＣ４００７： ＣＧＭＣＣ１．３７２４
ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０１９： ＣＮＣＭ Ｉ−１４２２
ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０５９： ＣＮＣＭ Ｉ−４１５３
ラクトコッカス・ラクティスＮＣＣ２２８７： ＣＮＣＭ Ｉ−４１５４
ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ４００６： ＣＮＣＭ Ｉ−１５１８
ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ１８２５： ＡＣＡ−ＤＣ６００２
ラクトバチルス・アシドフィルスＮＣＣ３００９： ＡＴＣＣ７００３９６
ラクトバチルス・ブルガリクスＮＣＣ１５： ＣＮＣＭ Ｉ−１１９８
ラクトバチルス・ジョンソニイＬａ１： ＣＮＣＭ Ｉ−１２２５
ラクトバチルス・ロイテリＤＳＭ１７９３８： ＤＳＭ１７９３８
ラクトバチルス・ロイテリＡＴＣＣ５５７３０： ＡＴＣＣ５５７３０
エシェリヒア・コリ・ニッスル１９１７： ＤＳＭ６６０１
ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ３００１： ＡＴＣＣ ＢＡＡ−９９９
ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ２７０５： ＣＮＣＭ Ｉ−２６１８
ビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０： ＣＮＣＭ Ｉ−３８６５
ビフィドバクテリウム・ラクティスＮＣＣ２８１８： ＣＮＣＭ Ｉ−３４４６
ラクトバチルス・パラカゼイＮＣＣ２４６１： ＣＮＣＭ Ｉ−２１１６
ラクトバチルス・ラムノサスＮＣＣ４００７： ＣＧＭＣＣ１．３７２４
ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０１９： ＣＮＣＭ Ｉ−１４２２
ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０５９： ＣＮＣＭ Ｉ−４１５３
ラクトコッカス・ラクティスＮＣＣ２２８７： ＣＮＣＭ Ｉ−４１５４
ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ４００６： ＣＮＣＭ Ｉ−１５１８
ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ１８２５： ＡＣＡ−ＤＣ６００２
ラクトバチルス・アシドフィルスＮＣＣ３００９： ＡＴＣＣ７００３９６
ラクトバチルス・ブルガリクスＮＣＣ１５： ＣＮＣＭ Ｉ−１１９８
ラクトバチルス・ジョンソニイＬａ１： ＣＮＣＭ Ｉ−１２２５
ラクトバチルス・ロイテリＤＳＭ１７９３８： ＤＳＭ１７９３８
ラクトバチルス・ロイテリＡＴＣＣ５５７３０： ＡＴＣＣ５５７３０
エシェリヒア・コリ・ニッスル１９１７： ＤＳＭ６６０１
ＡＴＣＣと命名されている菌株は、ＡＴＣＣ Ｐａｔｅｎｔ Ｄｅｐｏｓｉｔｏｒｙ，１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｌｖｄ．，Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ ２０１１０，ＵＳＡに寄託されたものである。
ＣＮＣＭと命名されている菌株は、ＣＯＬＬＥＣＴＩＯＮ ＮＡＴＩＯＮＡＬＥ ＤＥ ＣＵＬＴＵＲＥＳ ＤＥ ＭＩＣＲＯＯＲＧＡＮＩＳＭＥＳ（ＣＮＣＭ），２５ ｒｕｅ ｄｕ Ｄｏｃｔｅｕｒ Ｒｏｕｘ，Ｆ−７５７２４ ＰＡＲＩＳ Ｃｅｄｅｘ １５，Ｆｒａｎｃｅに寄託された菌株である。
ＣＧＭＣＣと命名されている菌株は、Ｃｈｉｎａ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ Ｃｅｎｔｅｒ，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｚｈｏｎｇｇｕａｎｃｕｎ，Ｐ．Ｏ．Ｂｏｘ２７１４，Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００８０，Ｃｈｉｎａに寄託された菌株である。
ＡＣＡ−ＤＣと命名されている菌株は、Ｇｒｅｅｋ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅｄ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ，Ｄａｉｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ａｔｈｅｎｓ，７５，Ｉｅｒａ ｏｄｏｓ，Ｂｏｔａｎｉｋｏｓ，Ａｔｈｅｎｓ，１１８５５，Ｇｒｅｅｃｅに寄託された菌株である。
ＤＳＭと命名されている菌株は、ＤＳＭＺ−Ｄｅｕｔｓｃｈｅ Ｓａｍｍｌｕｎｇ ｖｏｎ Ｍｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ ｕｎｄ Ｚｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎ ＧｍｂＨ，Ｉｎｈｏｆｆｅｎｓｔｒ．７ Ｂ＾，３８１２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ，ＧＥＲＭＡＮＹに寄託された菌株である。
当業者は、本明細書に記載の本発明の特色のすべてを、開示している本発明の範囲から逸脱することなく自由に組み合わせることができることを理解されたい。
本発明のさらなる利点及び特色は、以下の実施例及び図面から明らかである。
実施例１：
方法：
細菌調製物：
生きたプロバイオティクスにより宿主免疫系に対してもたらされる健康上の利益は、一般に、菌株特異的であると見なされる。ｉｎ ｖｉｔｒｏで高レベルのＩＬ−１０を誘発する、及び／又は低レベルの炎症誘発性サイトカインを誘発する（ＰＢＭＣアッセイ）プロバイオティクスは、ｉｎ ｖｉｖｏで強力な抗炎症性菌株であることが示されてきた（Ｆｏｌｉｇｎｅ，Ｂ．ら，２００７，Ｗｏｒｌｄ Ｊ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．１３：２３６〜２４３）。
方法：
細菌調製物：
生きたプロバイオティクスにより宿主免疫系に対してもたらされる健康上の利益は、一般に、菌株特異的であると見なされる。ｉｎ ｖｉｔｒｏで高レベルのＩＬ−１０を誘発する、及び／又は低レベルの炎症誘発性サイトカインを誘発する（ＰＢＭＣアッセイ）プロバイオティクスは、ｉｎ ｖｉｖｏで強力な抗炎症性菌株であることが示されてきた（Ｆｏｌｉｇｎｅ，Ｂ．ら，２００７，Ｗｏｒｌｄ Ｊ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．１３：２３６〜２４３）。
複数のプロバイオティクス菌株を使用して、熱処理されたプロバイオティクスの抗炎症特性を調査した。これらのプロバイオティクスは、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ３００１、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ２７０５、ビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０、ビフィドバクテリウム・ラクティスＮＣＣ２８１８、ラクトバチルス・パラカゼイＮＣＣ２４６１、ラクトバチルス・ラムノサスＮＣＣ４００７、ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ４００６、ラクトバチルス・アシドフィルスＮＣＣ３００９、ラクトバチルス・カゼイＡＣＡ−ＤＣ６００２（ＮＣＣ１８２５）及びエシェリヒア・コリ・ニッスルであった。Ｎｅｓｔｌｅ Ｌｃ１発酵製品の製造に商業的に使用されているいくつかの菌株を含む複数のスターター培養株も試験した：ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０１９、ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０５９、ラクトバチルス・ブルガリクスＮＣＣ１５及びラクトコッカス・ラクティスＮＣＣ２２８７。
菌体は、各菌株について最適化した条件下、５〜１５Ｌのバイオリアクターにおいて培養した。すべての一般的な細菌増殖培地が使用可能である。そのような培地は、当業者に知られている。ｐＨが５．５に調整されたとき、３０％の塩基溶液（ＮａＯＨ又はＣａ（ＯＨ）２のいずれか）を連続的に添加した。適切であれば、ヘッドスペースにＣＯ２を供給することにより嫌気性条件を維持した。Ｅ．コリを標準的な好気性条件下で培養した。
菌体を遠心分離（５，０００×ｇ、４℃）により回収し、約１０９〜１０１０ｃｆｕ／ｍｌという最終濃度に達するのに十分な量で、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に再懸濁させた。調製物の一部は、１５％のグリセロールと共に−８０℃で冷凍した。菌体の別の部分は、
超高温：１４０℃、１５秒；間接スチームインジェクション
高温短時間（ＨＴＳＴ）：７４℃、９０℃及び１２０℃、１５秒の間接スチームインジェクション
水浴中で長時間低温（８５℃、２０分）
により熱処理した。
超高温：１４０℃、１５秒；間接スチームインジェクション
高温短時間（ＨＴＳＴ）：７４℃、９０℃及び１２０℃、１５秒の間接スチームインジェクション
水浴中で長時間低温（８５℃、２０分）
により熱処理した。
試料は、熱処理後、使用するまで−８０℃で冷凍保存した。
細菌調製物のｉｎ ｖｉｔｒｏ免疫プロファイル：
生菌体調製物及び熱処理菌体調製物の免疫プロファイル（すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏでヒト血球からの特定のサイトカインの分泌を誘発する能力）を評価した。ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液フィルターから単離した。細胞密度勾配による分離後、単核細胞を回収し、ハンクスの平衡塩類溶液を用いて２回洗浄した。次いで、１０％のウシ胎仔血清（Ｂｉｏｃｏｎｃｅｐｔ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、１％のＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ）、１％のペニシリン／ストレプトマイシン（Ｓｉｇｍａ）及び０．１％のゲンタマイシン（Ｓｉｇｍａ）を補充したＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ，Ｓｉｇｍａ）に細胞を再懸濁させた。次いで、４８ウェルプレートにおいて３６時間、ＰＢＭＣ（７×１０５細胞／ウェル）を生菌体及び熱処理菌体（当量７×１０６ｃｆｕ／ウェル）と共にインキュベートした。生菌体及び熱処理菌体の作用を、２つの別個の実験に分けた８人の個々のドナーからのＰＢＭＣで試験した。３６時間のインキュベーション後、培養プレートを冷凍し、サイトカイン測定まで−２０℃で保存した。サイトカインプロファイルは、生菌体及びその熱処理対応物について並行に（すなわち、ＰＢＭＣでの同じバッチの同じ実験において）実施した。
生菌体調製物及び熱処理菌体調製物の免疫プロファイル（すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏでヒト血球からの特定のサイトカインの分泌を誘発する能力）を評価した。ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液フィルターから単離した。細胞密度勾配による分離後、単核細胞を回収し、ハンクスの平衡塩類溶液を用いて２回洗浄した。次いで、１０％のウシ胎仔血清（Ｂｉｏｃｏｎｃｅｐｔ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、１％のＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ）、１％のペニシリン／ストレプトマイシン（Ｓｉｇｍａ）及び０．１％のゲンタマイシン（Ｓｉｇｍａ）を補充したＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ，Ｓｉｇｍａ）に細胞を再懸濁させた。次いで、４８ウェルプレートにおいて３６時間、ＰＢＭＣ（７×１０５細胞／ウェル）を生菌体及び熱処理菌体（当量７×１０６ｃｆｕ／ウェル）と共にインキュベートした。生菌体及び熱処理菌体の作用を、２つの別個の実験に分けた８人の個々のドナーからのＰＢＭＣで試験した。３６時間のインキュベーション後、培養プレートを冷凍し、サイトカイン測定まで−２０℃で保存した。サイトカインプロファイルは、生菌体及びその熱処理対応物について並行に（すなわち、ＰＢＭＣでの同じバッチの同じ実験において）実施した。
３６時間のインキュベーション後の細胞培養上澄み中のサイトカイン（ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０、ＴＮＦ−α及びＩＬ−１０）のレベルは、製造業者の使用説明書に従ってＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ ＤｕｏＳｅｔ Ｈｕｍａｎ ＩＬ−１０，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ Ｈｕｍａｎ ＩＬ１２ｐ４０，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ Ｈｕｍａｎ ＴＮＦα，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ Ｈｕｍａｎ ＩＦＮ−γ）により求めた。ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０及びＴＮＦ−αは、炎症誘発性サイトカインであり、一方、ＩＬ−１０は、強力な抗炎症性メディエーターである。結果は、４人の個々のドナーの平均（ｐｇ／ｍｌ）＋／−ＳＥＭとして表し、それぞれ４人のドナーを用いて実施した２つの個々の実験を代表するものである。ＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、ｉｎ ｖｉｖｏ抗炎症作用の予測値として各菌株について算出する（Ｆｏｌｉｇｎｅ，Ｂ．ら，２００７，Ｗｏｒｌｄ Ｊ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．１３：２３６〜２４３）。
各菌株についてＥＬＩＳＡにより求めた（上を参照されたい）サイトカイン数値（ｐｇ／ｍｌ）をＢｉｏＮｕｍｅｒｉｃｓ ｖ５．１０ソフトウェア（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｍａｔｈｓ，Ｓｉｎｔ−Ｍａｒｔｅｎｓ−Ｌａｔｅｍ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）に移した。このセットのデータの主成分分析（ＰＣＡ、ディメンショニング技術）を実施した。各指標の平均値の減算及び各指標の偏差による除算をこの分析に含めた。
結果：
超高温（ＵＨＴ）／高温短時間（ＨＴＳＴ）様処理により生じた抗炎症性プロファイル：
調査中のプロバイオティクス菌株を、一連の熱処理（超高温（ＵＨＴ）、高温短時間（ＨＴＳＴ）及び８５℃、２０分）に曝露し、処理菌株の免疫プロファイルをｉｎ ｖｉｔｒｏでの生菌体の免疫プロファイルと比較した。生きた微生物（プロバイオティクス及び／又は乳製品スターター培養物）は、ヒトＰＢＭＣと共にインキュベートすると様々なレベルのサイトカイン産生を誘発した（図１、２、３、４及び５）。これらの微生物の熱処理により、ＰＢＭＣにより産生されるサイトカインのレベルが温度依存的に変更された。「短時間高温」処理（１２０℃又は１４０℃、１５秒）により、抗炎症性免疫プロファイルを有する非複製性細菌が生じた（図１、２、３及び４）。実際に、ＵＨＴ様処理をした菌株（１４０℃、１５秒）は、ＩＬ−１０産生を維持するか、又はさらなるＩＬ−１０産生を誘発する一方、誘発した炎症誘発性サイトカイン（ＴＮＦ−α、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０）が（生きた対応物と比較して）少なかった。得られたＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、任意のＵＨＴ様処理をした菌株について、生菌体と比較して低かった（図１、２、３及び４）。この観測は、ＨＴＳＴ様処理により処置した、すなわち、１２０℃に１５秒（図１、２、３及び４）、又は７４℃及び９０℃に１５秒（図５）曝露した細菌についても妥当であった。熱処理（ＵＨＴ様又はＨＴＳＴ様処理）は、プロバイオティクス菌株（図１、２、３及び５）及び乳製品スターター培養物（図４）のｉｎ ｖｉｔｒｏ免疫プロファイルに対して同様の作用を有していた。生きた及び熱処理された（１４０℃、１５秒）プロバイオティクス及び乳製品スターター菌株を用いて生成したＰＢＭＣデータの主成分分析により、生菌株はすべてｘ軸に沿って広がっていることが明らかになった。これは、菌株によって、炎症誘発性サイトカインを誘発する量が少ないもの（左側）から多いもの（右側）まで非常に異なる免疫プロファイルをｉｎ ｖｉｔｒｏで示すことを示している。熱処理菌株群はグラフの左側に存在しており、熱処理菌株により誘発された炎症誘発性サイトカインがずっと少なかったことを示している（図６）。対照的に、８５℃で２０分熱処理された菌体は、生菌体より多い炎症誘発性サイトカイン及び少ないＩＬ−１０を誘発し、その結果、ＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比が高くなった（図７）。
超高温（ＵＨＴ）／高温短時間（ＨＴＳＴ）様処理により生じた抗炎症性プロファイル：
調査中のプロバイオティクス菌株を、一連の熱処理（超高温（ＵＨＴ）、高温短時間（ＨＴＳＴ）及び８５℃、２０分）に曝露し、処理菌株の免疫プロファイルをｉｎ ｖｉｔｒｏでの生菌体の免疫プロファイルと比較した。生きた微生物（プロバイオティクス及び／又は乳製品スターター培養物）は、ヒトＰＢＭＣと共にインキュベートすると様々なレベルのサイトカイン産生を誘発した（図１、２、３、４及び５）。これらの微生物の熱処理により、ＰＢＭＣにより産生されるサイトカインのレベルが温度依存的に変更された。「短時間高温」処理（１２０℃又は１４０℃、１５秒）により、抗炎症性免疫プロファイルを有する非複製性細菌が生じた（図１、２、３及び４）。実際に、ＵＨＴ様処理をした菌株（１４０℃、１５秒）は、ＩＬ−１０産生を維持するか、又はさらなるＩＬ−１０産生を誘発する一方、誘発した炎症誘発性サイトカイン（ＴＮＦ−α、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０）が（生きた対応物と比較して）少なかった。得られたＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、任意のＵＨＴ様処理をした菌株について、生菌体と比較して低かった（図１、２、３及び４）。この観測は、ＨＴＳＴ様処理により処置した、すなわち、１２０℃に１５秒（図１、２、３及び４）、又は７４℃及び９０℃に１５秒（図５）曝露した細菌についても妥当であった。熱処理（ＵＨＴ様又はＨＴＳＴ様処理）は、プロバイオティクス菌株（図１、２、３及び５）及び乳製品スターター培養物（図４）のｉｎ ｖｉｔｒｏ免疫プロファイルに対して同様の作用を有していた。生きた及び熱処理された（１４０℃、１５秒）プロバイオティクス及び乳製品スターター菌株を用いて生成したＰＢＭＣデータの主成分分析により、生菌株はすべてｘ軸に沿って広がっていることが明らかになった。これは、菌株によって、炎症誘発性サイトカインを誘発する量が少ないもの（左側）から多いもの（右側）まで非常に異なる免疫プロファイルをｉｎ ｖｉｔｒｏで示すことを示している。熱処理菌株群はグラフの左側に存在しており、熱処理菌株により誘発された炎症誘発性サイトカインがずっと少なかったことを示している（図６）。対照的に、８５℃で２０分熱処理された菌体は、生菌体より多い炎症誘発性サイトカイン及び少ないＩＬ−１０を誘発し、その結果、ＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比が高くなった（図７）。
抗炎症性プロファイルは、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様処理により強化されるか、又は生じる。
ＵＨＴ及びＨＴＳＴ処理された菌株は、それらのそれぞれの最初の免疫プロファイル（生菌体）に関係なく抗炎症性プロファイルを示す。ｉｎ ｖｉｖｏで抗炎症性であり、ｉｎ ｖｉｔｒｏで抗炎症性プロファイルを示すことが知られているプロバイオティクス菌株（Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ロンガムＮＣＣ２７０５、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８）は、「短時間高温」処理後に強化された抗炎症性プロファイルをｉｎ ｖｉｔｒｏで示すことが示された。図１に示している通り、ＵＨＴ様処理をしたビフィドバクテリウム菌株のＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、生きた対応物のＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比より低く、したがって、ＵＨＴ様処理をした試料の改善された抗炎症性プロファイルを示していた。より顕著なことに、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様処理により抗炎症性プロファイルが生じたことは、非抗炎症性の生菌株についても確認された。生きたＬ．ラムノサスＮＣＣ４００７及びＬ．パラカゼイＮＣＣ２４６１は、いずれも、高いＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比をｉｎ ｖｉｔｒｏで示す（図２及び５）。２種の生菌株は、マウスにおけるＴＮＢＳ誘発性の大腸炎に対して保護作用を示さないことが示された。Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７及びＬ．パラカゼイＮＣＣ２４６１により誘発されたＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、「短時間高温」処理（ＵＨＴ又はＨＴＳＴ）後に劇的に低減し、ビフィドバクテリウム菌株を用いて得られたレベルと同程度の低いレベルに達した。これらの低いＩＬ−１２ｐ４０／ＩＬ−１０比は、ＩＬ−１０分泌の変化無し（Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７）又は劇的な誘発（Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１）（図２）と合わせて、低レベルのＩＬ−１２ｐ４０産生が原因である。
結論：
− 生きた微生物の抗炎症性プロファイルは、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様熱処理により強化することができる（例えば、Ｂ．ロンガムＮＣＣ２７０５、Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８）。
− 抗炎症性プロファイルは、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様熱処理により非抗炎症性の生きた微生物（例えば、Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７、Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１、乳製品スターターＳ．テルモフィルスＮＣＣ２０１９）から生じさせることができる。
− 抗炎症性プロファイルは、プロバイオティクスＥ．コリ菌株を含む市販の製品から単離された菌株についても証明された（図３Ａ＆Ｂ）。
− 生きた微生物の抗炎症性プロファイルは、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様熱処理により強化することができる（例えば、Ｂ．ロンガムＮＣＣ２７０５、Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８）。
− 抗炎症性プロファイルは、ＵＨＴ様及びＨＴＳＴ様熱処理により非抗炎症性の生きた微生物（例えば、Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７、Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１、乳製品スターターＳ．テルモフィルスＮＣＣ２０１９）から生じさせることができる。
− 抗炎症性プロファイルは、プロバイオティクスＥ．コリ菌株を含む市販の製品から単離された菌株についても証明された（図３Ａ＆Ｂ）。
ＵＨＴ／ＨＴＳＴ様処理の影響は、すべての試験したプロバイオティクス及び乳製品スターター、例えば、乳酸菌、ビフィズス菌及び連鎖球菌について同様であった。
ＵＨＴ／ＨＴＳＴ様処理を、異なるｉｎ ｖｉｔｒｏ免疫プロファイルを示す複数の乳酸菌、ビフィズス菌及び連鎖球菌に適用した。すべての菌株は、ＵＨＴ／ＨＴＳＴ様処理後に誘発した炎症誘発性サイトカインがそれらの生きた対応物より少なく（図１、２、３、４、５及び６）、得られた非複製性細菌の免疫特性に対するＵＨＴ／ＨＴＳＴ様処理の作用が、すべてのプロバイオティクス、特に乳酸菌及びビフィズス菌及び特定のＥ．コリ菌株、並びにすべての乳製品スターター培養物、特に連鎖球菌、ラクトコッカス及び乳酸菌に一般化できることを証明している。
実施例２：
方法：
細菌調製物：
５種のプロバイオティクス菌株を使用して、非複製性プロバイオティクス：３種のビフィズス菌（Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０）及び２種の乳酸菌（Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１、Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７）の追加免疫特性を調査した。
方法：
細菌調製物：
５種のプロバイオティクス菌株を使用して、非複製性プロバイオティクス：３種のビフィズス菌（Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０）及び２種の乳酸菌（Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１、Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７）の追加免疫特性を調査した。
菌体を、３７℃で１６〜１８時間、ＭＲＳでｐＨを制御することなく、回分発酵で増殖させた。菌体を沈降（５，０００×ｇ、４℃）させ、約１０Ｅ１０ｃｆｕ／ｍｌという最終濃度に達するように生理的食塩水で希釈する前にリン酸緩衝生理食塩水に再懸濁させた。Ｂ．ロンガムＮＣＣ３００１、Ｂ．ラクティスＮＣＣ２８１８、Ｌ．パラカゼイＮＣＣ２４６１、Ｌ．ラムノサスＮＣＣ４００７は、水浴中、８５℃で２０分熱処理した。Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０は、水浴中、９０℃で３０分熱処理した。熱処理菌体懸濁液をアリコートし、使用するまで−８０℃で冷凍保存した。生菌体は、使用するまでＰＢＳ−グリセロール１５％中、−８０℃で貯蔵した。
細菌調製物のｉｎ ｖｉｔｒｏ免疫プロファイル：
生菌体調製物及び熱処理菌体調製物の免疫プロファイル（すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏでヒト血球からの特定のサイトカインの分泌を誘発する能力）を評価した。ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液フィルターから単離した。細胞密度勾配による分離後、単核細胞を回収し、ハンクスの平衡塩類溶液を用いて２回洗浄した。次いで、１０％のウシ胎仔血清（Ｂｉｏｃｏｎｃｅｐｔ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、１％のＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ）、１％のペニシリン／ストレプトマイシン（Ｓｉｇｍａ）及び０．１％のゲンタマイシン（Ｓｉｇｍａ）を補充したＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ，Ｓｉｇｍａ）に細胞を再懸濁させた。次いで、４８ウェルプレートにおいて３６時間、ＰＢＭＣ（７×１０５細胞／ウェル）を生菌体及び熱処理菌体（当量７×１０６ｃｆｕ／ウェル）と共にインキュベートした。生菌体及び熱処理菌体の作用を、２つの別個の実験に分けた８人の個々のドナーからのＰＢＭＣで試験した。３６時間のインキュベーション後、培養プレートを冷凍し、サイトカイン測定まで−２０℃で保存した。サイトカインプロファイルは、生菌体及びその熱処理対応物について並行に（すなわち、ＰＢＭＣでの同じバッチの同じ実験において）実施した。
生菌体調製物及び熱処理菌体調製物の免疫プロファイル（すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏでヒト血球からの特定のサイトカインの分泌を誘発する能力）を評価した。ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を血液フィルターから単離した。細胞密度勾配による分離後、単核細胞を回収し、ハンクスの平衡塩類溶液を用いて２回洗浄した。次いで、１０％のウシ胎仔血清（Ｂｉｏｃｏｎｃｅｐｔ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、１％のＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ）、１％のペニシリン／ストレプトマイシン（Ｓｉｇｍａ）及び０．１％のゲンタマイシン（Ｓｉｇｍａ）を補充したＩｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ，Ｓｉｇｍａ）に細胞を再懸濁させた。次いで、４８ウェルプレートにおいて３６時間、ＰＢＭＣ（７×１０５細胞／ウェル）を生菌体及び熱処理菌体（当量７×１０６ｃｆｕ／ウェル）と共にインキュベートした。生菌体及び熱処理菌体の作用を、２つの別個の実験に分けた８人の個々のドナーからのＰＢＭＣで試験した。３６時間のインキュベーション後、培養プレートを冷凍し、サイトカイン測定まで−２０℃で保存した。サイトカインプロファイルは、生菌体及びその熱処理対応物について並行に（すなわち、ＰＢＭＣでの同じバッチの同じ実験において）実施した。
３６時間のインキュベーション後の細胞培養上澄み中のサイトカイン（ＩＦＮ−ｇ、ＩＬ−１２ｐ４０、ＴＮＦ−α及びＩＬ−１０）のレベルは、製造業者の使用説明書に従ってＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ ＤｕｏＳｅｔ Ｈｕｍａｎ ＩＬ−１０，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ Ｈｕｍａｎ ＩＬ１２ｐ４０，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ ヒトＴＮＦ，ＢＤ ＯｐｔＥＩＡ ヒトＩＦＮ−γ）により求めた。ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０及びＴＮＦ−αは、炎症誘発性サイトカインであり、一方、ＩＬ−１０は、強力な抗炎症性メディエーターである。結果は、４人の個々のドナーの平均（ｐｇ／ｍｌ）＋／−ＳＥＭとして表し、それぞれ４人のドナーを用いて実施した２つの個々の実験を代表するものである。
アレルギー性下痢の予防における生きた及び熱処理されたビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０のｉｎ ｖｉｖｏ作用：
アレルギー性下痢のマウスモデルを使用して、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０のＴｈ１促進作用を試験した（Ｂｒａｎｄｔ Ｅ．Ｂら，ＪＣＩ ２００３， １１２（１１）：１６６６〜１６６７）。感作（１４日の間隔；０及び１４日目でのオボアルブミン（ＯＶＡ）及び硫酸カリウムアルミニウムの２回の腹腔内注射）後の雄のＢａｌｂ／ｃマウスに、ＯＶＡを６回（２７、２９、３２、３４、３６、３９日目）経口で曝露すると、一過性の臨床症状（下痢）及び免疫パラメーターの変化（総ＩｇＥ、ＯＶＡ特異的ＩｇＥ、マウス肥満細胞プロテアーゼ１（ＭＭＣＰ−１）の血漿中濃度）が生じた。生きた又は９０℃で３０分熱処理されたビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０を、ＯＶＡ感作の４日前（−３、−２、−１、０日目及び１１、１２、１３及び１４日目）及び曝露期間（２３〜３９日目）の間に胃管栄養により投与した。マウス１匹当たり１日量で約１０９コロニー形成単位（ｃｆｕ）又はこれと同等のｃｆｕの菌体を使用した。
アレルギー性下痢のマウスモデルを使用して、Ｂ．ブレーベＮＣＣ２９５０のＴｈ１促進作用を試験した（Ｂｒａｎｄｔ Ｅ．Ｂら，ＪＣＩ ２００３， １１２（１１）：１６６６〜１６６７）。感作（１４日の間隔；０及び１４日目でのオボアルブミン（ＯＶＡ）及び硫酸カリウムアルミニウムの２回の腹腔内注射）後の雄のＢａｌｂ／ｃマウスに、ＯＶＡを６回（２７、２９、３２、３４、３６、３９日目）経口で曝露すると、一過性の臨床症状（下痢）及び免疫パラメーターの変化（総ＩｇＥ、ＯＶＡ特異的ＩｇＥ、マウス肥満細胞プロテアーゼ１（ＭＭＣＰ−１）の血漿中濃度）が生じた。生きた又は９０℃で３０分熱処理されたビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０を、ＯＶＡ感作の４日前（−３、−２、−１、０日目及び１１、１２、１３及び１４日目）及び曝露期間（２３〜３９日目）の間に胃管栄養により投与した。マウス１匹当たり１日量で約１０９コロニー形成単位（ｃｆｕ）又はこれと同等のｃｆｕの菌体を使用した。
結果：
熱処理後の「炎症誘発性」サイトカインの分泌の誘発：
ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）によるサイトカイン分泌を刺激する熱処理菌株の能力をｉｎ ｖｉｔｒｏで評価した。熱処理菌体によってＰＢＭＣが刺激されたときの４種のサイトカインに基づいた免疫プロファイルを、同じｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイにおいて生菌体により誘発された免疫プロファイルと比較した。
熱処理後の「炎症誘発性」サイトカインの分泌の誘発：
ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）によるサイトカイン分泌を刺激する熱処理菌株の能力をｉｎ ｖｉｔｒｏで評価した。熱処理菌体によってＰＢＭＣが刺激されたときの４種のサイトカインに基づいた免疫プロファイルを、同じｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイにおいて生菌体により誘発された免疫プロファイルと比較した。
熱処理菌体調製物を平板培養し、任意の生存可能数の不存在について評価した。熱処理菌体調製物は、平板培養後にコロニーを形成しなかった。
生きたプロバイオティクスは、ヒトＰＢＭＣと共にインキュベートすると、異なる及び菌株依存的なレベルのサイトカイン産生を誘発した（図８）。プロバイオティクスの熱処理により、ＰＢＭＣにより産生されるサイトカインのレベルが、それらの生きた対応物と比較して変更された。熱処理菌体は、生きた対応物より多くの炎症誘発性サイトカイン（ＴＮＦ−α、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２ｐ４０）を誘発した。対照的に、熱処理菌体は、生菌体と比較して同等又は低い量のＩＬ−１０を誘発した（図８）。これらのデータは、熱処理菌体が、それらの生きた対応物より免疫系を刺激することができ、したがって、弱くなった免疫防御を増強することができることを示している。換言すると、ｉｎ ｖｉｔｒｏデータは、熱処理後の菌株の強化された追加免疫作用を例示している。
熱処理されたＢ．ブレーベＮＣＣ２９５０の免疫系に対する（生菌体と比較して）強化された作用を例示するために、生きた及び熱処理されたＢ．ブレーベＮＣＣ２９５０（菌株Ａ）の両方を、アレルギー性下痢の動物モデルにおいて試験した。
陽性対照群と比較して、下痢の強度は、熱処理されたＢ．ブレーベＮＣＣ２９５０を用いた処理後に有意に及び一貫して低下した（４１．１％±４．８）が、一方、下痢の強度は、生きたＢ．ブレーベＮＣＣ２９５０を用いた処理後に２０±２８．３％しか低下しなかった。これらの結果は、熱処理されたＢ．ブレーベＮＣＣ２９５０が、その生きた対応物より、アレルギー性下痢に対する強化された保護作用を示すことを証明している（図９）。
その結果、免疫防御を強化するプロバイオティクスの能力は、熱処理後に改善されることが示された。
さらなる実施例：
冷蔵温度（４〜８℃）で貯蔵される下記スプーナブルヨーグルト組成物は、標準的技術を使用して調製することができる。
冷蔵温度（４〜８℃）で貯蔵される下記スプーナブルヨーグルト組成物は、標準的技術を使用して調製することができる。
Claims (13)
- 非複製性プロバイオティクス微生物を含むスプーナブルヨーグルト組成物。
- １食当たり約１０６〜１０１２ｃｆｕに相当する量で非複製性プロバイオティクス微生物を含む、請求項１に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 冷蔵又は周囲温度下で貯蔵されることを特徴とする、請求項１又は２に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- プレバイオティクス（例えば、オリゴフルクトース、イヌリン）をさらに含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 前記プロバイオティクス微生物は、熱処理により、好ましくは少なくとも７１．５℃、少なくとも１秒の高温処理により非複製性にされている、請求項１〜４のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 前記熱処理は、約７１．５〜１５０℃、約１〜１２０秒の高温処理であり、好ましくは高温／短時間（ＨＴＳＴ）処理又は超高温（ＵＨＴ）処理である、請求項７に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 炎症性障害の予防又は治療のための、請求項８に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 前記熱処理は、約７０〜１５０℃で約３分〜２時間、好ましくは８０〜１４０℃で５分〜４０分実施される、請求項７に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 免疫防御不全に関連する障害の予防又は治療のための、請求項１０に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９８％、最も好ましくは少なくとも９９％、理想的には少なくとも９９．９％、最も理想的にはすべてのプロバイオティクスが非複製性である、請求項１〜９のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 前記プロバイオティクス微生物は、ビフィズス菌、乳酸菌、プロピオン酸菌又はそれらの組み合わせ（例えば、ビフィドバクテリウム・ロンガム、ビフィドバクテリウム・ラクティス、ビフィドバクテリウム・アニマリス、ビフィドバクテリウム・ブレーベ、ビフィドバクテリウム・インファンティス、ビフィドバクテリウム・アドレセンティス、ラクトバチルス・アシドフィルス、ラクトバチルス・カゼイ、ラクトバチルス・パラカゼイ、ラクトバチルス・サリバリウス、ラクトバチルス・ロイテリ、ラクトバチルス・ラムノサス、ラクトバチルス・ジョンソニイ、ラクトバチルス・プランタルム、ラクトバチルス・フェルメントゥム、ラクトコッカス・ラクティス、ストレプトコッカス・テルモフィルス、ラクトコッカス・ラクティス、ラクトコッカス・ジアセチラクティス、ラクトコッカス・クレモリス、ラクトバチルス・ブルガリクス、ラクトバチルス・ヘルベティクス、ラクトバチルス・デルブリュッキイ、エシェリヒア・コリ及び／又はそれらの混合物）からなる群から選択される、請求項１〜１０のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- 前記プロバイオティクス微生物は、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ３００１、ビフィドバクテリウム・ロンガムＮＣＣ２７０５、ビフィドバクテリウム・ブレーベＮＣＣ２９５０、ビフィドバクテリウム・ラクティスＮＣＣ２８１８、ラクトバチルス・ジョンソニイＬａ１、ラクトバチルス・パラカゼイＮＣＣ２４６１、ラクトバチルス・ラムノサスＮＣＣ４００７、ラクトバチルス・ロイテリＤＳＭ１７９３８、ラクトバチルス・ロイテリＡＴＣＣ５５７３０、ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０１９、ストレプトコッカス・テルモフィルスＮＣＣ２０５９、ラクトバチルス・カゼイＮＣＣ４００６、ラクトバチルス・アシドフィルスＮＣＣ３００９、ラクトバチルス・カゼイＡＣＡ−ＤＣ６００２（ＮＣＣ１８２５）、エシェリヒア・コリ・ニッスル、ラクトバチルス・ブルガリクスＮＣＣ１５、ラクトコッカス・ラクティスＮＣＣ２２８７又はそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１〜１１のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
- １日量当たり約０．００５ｍｇ〜１０００ｍｇの非複製性微生物を含有する、請求項１〜１２のいずれか一項に記載のスプーナブルヨーグルト組成物。
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