JP2013527246A - リファキシミンの型およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2010年11月23日に出願された米国特許出願第61/416,593号;2010年6月3日に出願された米国特許出願第61/351,281号;2010年6月22日に出願された米国特許出願第61/357,505号;2010年7月10日に出願された米国特許出願第61/363,241号;2010年7月12に出願された米国特許出願第61/363,511号;2010年7月23日に出願された米国特許出願第61/367,185号の恩典を主張する。上述の各出願の内容は全て、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。
リファキシミン(INN;The Merck Index, XIII Ed., 8304(非特許文献1)を参照されたい)は、リファマイシン系抗生物質に属する抗生物質、例えば、ピリド-イミダゾリファマイシンである。リファキシミンは、広範囲の抗菌活性、例えば、胃腸管内で、感染性下痢、過敏性腸症候群、小腸細菌異常増殖、クローン病、および/または膵機能不全の原因となる局在性胃腸細菌に対して抗菌活性を発揮する。リファキシミンは、その化学的特性よび物理的特性のために全身吸収がわずかにしかないことが特徴であると報告されている(Descombe J.J. et al. Pharmacokinetic study of rifaximin after oral administration in healthy volunteers. Int J Clin Pharmacol Res, 14 (2),51-56,(1994)(非特許文献2))。
以前に述べられたことのないリファキシミンの多形カッパ(κ)、シータ(θ)、ならびにリファキシミン:ピペラジン共結晶(共結晶1および共結晶2)が本明細書において説明される。
本明細書に記載の態様は、リファキシミンの新たな多形型および共結晶型の発見ならびに抗生物質としてのこれらの型の使用に関する。1つの態様において、経口経路用または局所経路用の医用調製物の製造における、リファキシミン(INN)として知られる抗生物質のリファキシミンのカッパ型、リファキシミンのシータ型、リファキシミン:ピペラジン共結晶1、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶2のうちの1つまたは複数(図1〜72)の使用が意図される。本発明に記載の態様はまた、このような医用調製物を、抗生物質による治療を必要とする対象に投与することに関する。
腸関連障害を治療、予防または緩和する方法であって、それを必要とする対象に、有効量のリファキシミンのカッパ型、リファキシミン:ピペラジン共結晶1、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶2のうちの1つまたは複数を投与する工程を含む方法が、本明細書において提供される。腸関連障害には、過敏性腸症候群、下痢、微生物に関連する下痢、クロストリジウム・ディフィシル(Clostridium difficile)に関連する下痢、旅行者下痢、小腸細菌異常増殖、クローン病、憩室性疾患、慢性膵炎、膵機能不全、腸炎、大腸炎、肝性脳症、潜在性肝性脳症、または回腸嚢炎のうちの1つまたは複数が含まれる。局所皮膚感染および腟感染も、本明細書に記載のリファキシミン型を用いて治療することができる。
態様はまた、本明細書に記載の有効量の1種類または複数種のリファキシミン多形体および共結晶(例えば、本明細書に記載のもの)ならびに薬学的に許容される担体を含む薬学的組成物も提供する。さらなる態様において、有効量は、細菌感染、例えば、小腸細菌異常増殖、クローン病、肝性脳症、抗生物質に関連する大腸炎、および/または憩室性疾患を治療するのに有効な量である。態様はまた、有効量の本明細書に記載の1種類または複数種のリファキシミン多形体と、1種類または複数種の以前から知られているリファキシミン多形体(例えば、アルファ、ベータ、ガンマ、デルタ、イプシロン、イオータ、ゼータ、エータ、および非晶質)との組み合わせを含む薬学的組成物も提供する。
別の態様には、例えば、リファキシミンの経口投与または局所投与に適した薬学的組成物を保持する容器と、ある特定の剤形を食品と共に投与すべき場合について、および空腹状態で服用すべき場合について説明した、印刷されたラベル表示を備える製造物品が含まれる。例示的な剤形および投与プロトコールを下記で説明する。組成物は、剤形を保持および分配することができ、組成物とあまり相互作用せず、さらに、適切なラベルと物理的に関連している任意の適切な容器に入れられる。ラベル表示は、前記で説明した治療方法と合致している。ラベルは、ラベルと容器を物理的に近接しているのを維持する任意の手段によって容器と関連してよい。非限定的な例として、ラベルと容器は両方とも包装材料、例えば、箱またはプラスチック収縮包装に入れられてもよく、例えば、ラベル表示を不明瞭にしない接着剤または他の接着手段もしくは保持手段を用いて、表示が容器に接着された状態で関連してよい。
κ型は、様々な量のIPAを収容するように拡大および/または縮小することができる単位格子構造を有する可変溶媒和化合物である。カッパ型(κ)は、57〜197mg/mLの添加量でアルファ(α)型をイソプロパノールに溶解し、その後に、機械的にかき混ぜることによって得られた。
調製
κ型はイソプロパノール(IPA、表1を参照されたい)から調製することができる。
粉末X線回折(XRPD)によって材料を分析し、パターンを指数付けした。さらに、示差走査熱量測定(DSC)、熱重量分析(TGA)、動的蒸気吸着(DVS)、カールフィッシャー滴定(KF)、溶液プロトン(1H-)および固体(SS-)核磁気共鳴(NMR)、ならびに減衰全反射赤外分光法 (ATR-IR)およびラマン分光法によって、材料を特徴決定した。
2つのκ型試料のXRPDパターンを図1に示す。κ型は、様々な量の溶媒を収容するように容易に拡大または縮小することができる柔軟な単位格子構造を有する可変系であるので、図示されたパターンは、κ型によって示すことができる一連のピーク範囲のうちの2つ別個の例を示しているのにすぎないことに留意しなければならない。
調製されたままの状態のリファキシミンκ型のさらなる特徴決定データを図6〜図9に示し、表6にまとめた。
リファキシミンκ型の乾燥後試料のさらなる特徴決定データを図11〜図14に示し、表7および表8にまとめた。
1. 粉末X線回折ピークの特定
本報告において提示されたデータは、ラベルされたピークが記載されたX線回折パターンおよびピークリストが記載された表を含む。収集データの範囲は、典型的には、データが最初に報告された科学報告書に示され、機器に左右される。ほとんどの状況下では、約30°2θまでの範囲内のピークが選択された。ピークは回折パターン上にラベルされ、表に列挙されたが、技術的な理由により、異なる丸めアルゴリズムを用いて、それぞれのピークを、データおよび/または固有ピーク分解能を収集するのに使用した機器に応じて最も近い0.1°2θまたは0.01°2θに丸めた。表において特定されたピークは報告に使用しなければならない。図面および表の両方にあるx軸(°2θ)に沿ったピークの位置を、知的所有権下にあるソフトウェア(PatternMatch(商標) 3.0.4)を用いて自動的に求め、前記の基準に基づいて、小数点以下、有効数字1桁または2桁に丸めた。粉末X線回折のばらつきについてのUSP議論(米国薬局方, USP 32, NF 27, Vol.1, pg. 392, 2009)において概説された勧告に基づき、ピーク位置のばらつきを±0.2°2θ以内に示す。本明細書において報告された特定の測定値に関連した正確度および精度は求められていない。さらに、異なる機器での、独立して調製された試料に対する第三者の測定が±0.1°2θを超えるばらつきにつながることがある。面間隔のリストについて、面間隔を計算するために使用した波長は、Cu-Kα1およびCu-Kα2波長の加重平均である1.541874Åであった。面間隔の推定値に関連するばらつきを、それぞれの面間隔でUSPの勧告から計算し、それぞれのデータ表に示した。
以下の方法は、21 CFR211.165(e)に適合しているかどうか検証されていない。
DSCは、TA Instruments Q2000示差走査熱量計を用いて行った。追跡可能なNISTインジウム金属を用いて温度較正を行った。試料をアルミニウムDSCパンに入れ、パンを蓋で覆い、重量を正確に記録した。試料パンがセルの参照側に入れられるように、秤量したアルミニウムパンを配置した。それぞれのサーモグラムのデータ取得パラメータおよびパン配置を、本報告のデータセクションにある画像の中に表示している。サーモグラム上にある方法コードは、開始温度および終了温度ならびに加熱速度の短縮形である。例えば、25-250-10は「25℃〜250℃、10℃/分」を意味する。以下の表は、パン配置のために、それぞれの画像において使用した略語をまとめたものである。
LP 蓋にレーザーピンホールを開けた
HS 蓋を密閉封止した
HSLP 蓋を密閉封止し、蓋にレーザーピンホールを開けた
C 蓋を圧着した
NC 蓋を圧着しなかった
自動蒸気吸着(VS)データは、VTI SGA-100 Vapor Sorption Analyzerにおいて収集した。NaClおよびPVPを較正標準品として使用した。分析の前に試料を乾燥させなかった。吸着データおよび脱着データを、5〜95%RHの範囲にわたって10%RH間隔で窒素パージ下で収集した。分析に使用した平衡基準は5分で0.0100%未満の重量変化であり、最大平衡時間は3時間であった。試料の初期含水量のデータは補正しなかった。
ホットステージ顕微鏡観察は、SPOT Insight(商標)カラーデジタルカメラを搭載したLeica DM LP顕微鏡に取り付けた、TMS93コントローラ付Linkamホットステージ(FTIR 600)を用いて行った。USP融点標準品を用いて温度較正を行った。試料をカバーガラス上に置き、別のカバーガラスを試料の上に置いた。ステージを加熱しながら、20×0.4 N.A.超長作動距離対物レンズと直交ポラライザおよび一次赤色補正板を使用して、各試料を視覚的に観察した。SPOTソフトウェア(v.4.5.9)を用いて画像を取り込んだ。
IRスペクトルは、Ever-Glo中赤外線/遠赤外線IR源、拡張臭化カリウム(KBr)ビームスプリッター、および重水素化硫酸トリグリシン(DTGS)検出器を備えたMagna-IR 860(登録商標)フーリエ変換赤外線(FT-IR)分光光度計(Thermo Nicolet)において取得した。波長検証はNIST SRM 1921b(ポリスチレン)を用いて行った。データ取得のために、減衰全反射法(ATR)アクセサリー(Thunderdome(商標), Thermo Spectra-Tech)とゲルマニウム(Ge)結晶を使用した。各スペクトルは、4cm-1のスペクトル分解能で集められた256回のコアド(co-add)スキャンを表している。バックグラウンドデータセットを、きれいなGe結晶を用いて取得した。Log1/R(R=リフレクタンス)スペクトルを、これらの2つのデータセットの互いの比をとることによって得た。
水を測定するために、Mettler Toledo DL39 KF滴定装置を用いて電量カールフィッシャー(KF)分析を行った。分析前にブランク滴定を行った。乾燥窒素雰囲気下で試料を調製した。この場合、約1グラムの試料を、予め乾燥させたバイアルの中に入っている約1mLの乾燥したHydranal-Coulomat ADに溶解した。全溶液をKF電量計に隔壁を通して添加し、10秒間、混合した。次いで、試料を発生電極によって滴定した。発生電極は電気化学的酸化:2I-→I2+2e-によってヨウ素を発生させる。再現性を確実なものとするために、2回繰り返した。
a. 溶液1D1H NMR分光法(SSCI)
VarianUNITIYINOVA-400分光計を用いて溶液NMRスペクトルを取得した。約5〜10mgの試料をTMS含有CDCl3に溶解することによって試料を調製した。データ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある最初のスペクトルプロットの中に表示している。
ある溶液1H NMRスペクトル(LIMS 228228,ファイル名389420)が、Spectral Data Services of Champaign, ILによって、VarianUNITIYINOVA-400分光計を用いて1Hラーモア周波数399.796MHz、25℃で取得された。試料をCDCl3に溶解した。6.0μsの1Hパルス幅、スキャン間5秒遅れ、35Kデータポイントで10KHzのスペクトル幅、および40回のコアドスキャンでスペクトルを取得した。シグナル対ノイズ比を改善するために、自由誘導減衰(FID)を、64Kポイントおよび0.2Hzの指数関数的な線幅の広がり係数(exponential line broadening factor)で処理した。
VarianUNITYINOVA-400分光計(ラーモア周波数:13C=100.542MHz, 1H=399.787MHz)によって周囲温度で、固体13C交差分極マジックアングルスピニング(CP/MAS)NMRスペクトルを取得した。試料を4mm PENCIL型ジルコニアローターに詰め、12kHz、マジックアングルで回転させた。データ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある最初のスペクトルプロットの中に表示している。VNMR線形予測アルゴリズムを用いて、FIDの最初の3つのデータポイントを逆予測(back predict)して、平らなベースラインを作成した。スペクトルピークの化学シフトの外部基準を176.5ppmにあるグリシンのカルボニル炭素共鳴とした。
TGA分析は、TA Instruments 2950またはQ5000 IR熱重量分析器を用いて行った。ニッケルおよびAlumel(商標)を用いて温度較正を行った。各試料をアルミニウムパンに入れた。試料を密閉封止し、蓋に穴を開け(Q5000のみ)、次いで、TG炉に挿入した。炉を窒素下で加熱した。それぞれのパターンのデータ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある画像の中に表示している。サーモグラム上にある方法コードは、開始温度および終了温度ならびに加熱速度の短縮形である。例えば、25-350-10は「25℃〜350℃、10℃/分」を意味する。
a. Bruker D-8 Discover回折計
XRPDパターンは、Bruker D8 DISCOVER回折計 およびBrukerのGeneral Area-Detector Diffraction System(GADDS,v.4.1.20)を用いて収集した。ロングファインフォーカス管(long fine-focus tube)(40kV,40mA)、放物線型多層膜鏡(parabolically graded multilayer mirror)、および0.5mmダブルピンホールコリメータを用いて、Cu Kα放射線の入射ビームを発生させた。分析の前に、ケイ素標準品(NIST SRM 640c)を分析して、Si111ピーク位置を検証した。試料の標本を3κm厚フィルム間に詰めて、携帯可能な円盤状の標本を形成した。トランスレーションステージに固定されたホルダーに、調製された標本を装填した。ビデオカメラおよびレーザーを用いて、透過型配置で入射ビームを交差するように、対象となる面を位置決めした。サンプリングおよび配向統計値を最適化にするように、入射ビームをスキャンおよびラスタ化した。ビームストップを用いて、空気からのバックグラウンドを最小限にした。試料から15cmの位置にあるHISTAR(商標)面検出器を用いて回折パターンを収集し、GADDSを用いて処理した。回折パターンのGADDS画像中の強度を積分し、2θの関数として表示した。
Inel XRG-3000回折計を用いてXRPDパターンを収集した。ファインフォーカス管および放物線型多層膜鏡を用いて、Cu Kα放射線の入射ビームを発生させた。分析の前に、ケイ素標準品(NIST SRM 640c)を分析して、Si111ピーク位置を検証した。試料標本を薄壁ガラスキャピラリーに詰め、ビームストップを用いて、空気からのバックグラウンドを最小限にした。Windif v.6.6ソフトウェアおよび湾曲型位置敏感Equinox検出器を用いて、透過型配置、120°の2θ範囲で回折パターンを収集した。
PANalytical X'Pert PRO MPD回折計とOptixロングファインフォーカス線源を用いて発生させたCu放射線の入射ビームを用いて、XRPDパターンを収集した。楕円多層膜鏡を用いて、Cu Kα X線を標本に通して検出器上に集めた。分析の前に、ケイ素標準品(NIST SRM 640c)を分析して、Si111ピーク位置を検証した。試料の標本を3κm厚フィルムではさみ、透過型配置で分析した。ビームストップを用いて、空気によって発生するバックグラウンドを最小限にした。軸発散からの広がりを最小限にするために、入射ビームおよび回折ビームについてソーラースリットを使用した。標本から240mmの位置にある走査型位置高感度検出器(X'Celerator)およびData Collectorソフトウェアv.2.2bを用いて、回折パターンを収集した。
どちらのリファキシミン:ピペラジン共結晶もアセトニトリル含有溶媒系のみから単離され、プロトンNMRによって2:1のリファキシミン:ピペラジン化学量論比で生じる(表9および表10)。
a. endo=吸熱、exo=発熱。報告した温度(℃)は遷移最大値である。温度を最も近い度数になるよう端数を丸めた。
b. ある特定の温度での重量減少(%);重量変化(%)を小数点第2位に丸めた。温度を最も近い度数になるよう端数を丸めた。
リファキシミンを受領し、特徴決定を行った。この材料は結晶性であり、XRPDによって、以前から知られているα乾燥型を示した。この材料のプロトンNMRスペクトルは構造と一致した。比較のために固体NMR、IR、およびラマンスペクトルも収集した。
a. 共結晶2は周囲条件に曝露されると素早く脱溶媒和し、型変換を受ける性質があるために、XRPDと他の特徴決定法との間に遅延があると、実際に試験された型に不確実性が加わる。
b. 報告した温度(℃)は遷移最大値である。温度を最も近い度数に丸めた。
c. ある特定の温度での重量減少(%);重量変化(%)を小数点第2位に丸めた。温度を最も近い度数に丸めた。
d. 溶媒:重水素化DMSO。
e. 初回単結晶評価後に、試料の蓋を外し、バイアルの側面から可能性のある単結晶を緩めようとして、蒸気ストレスを加えるために試料をヘキサンバイアルに2日間、入れた。しかしながら、ストレスを加えた後に、適切な単結晶は観察されなかった。
f. 溶媒:重水素化クロロホルム。
h. 溶媒:重水素化クロロホルム。XRPDとプロトンNMR分析との間で6日が経過した。
i. 溶媒:重水素化クロロホルム。
j. 単離直後に試料を分析した。
共結晶の調製および関連性
どちらのリファキシミン:ピペラジン共結晶もアセトニトリル含有溶媒系のみから単離され、プロトンNMRによって2:1のリファキシミン:ピペラジン化学量論比で生じる(表14、表15、図31、および図43)。両共結晶のXRPDオーバーレイを図19に示す。それぞれの共結晶の詳細な調製手順を下記に示す。
a.b. XRPD分析前に約5〜6時間、周囲条件において(蓋をかぶせて)試料を静置した。
c. 試料を単離した直後にXRPD分析を行った。
リファキシミン:ピペラジン共結晶の特徴決定データを表16にまとめた。以前に議論したように、共結晶2はアセトニトリル溶媒和化合物である可能性が高く、周囲条件に曝露されると脱溶媒和する傾向を示す。表15の最初の縦列にある「可能性のある共結晶2」として指定された共結晶は、XRPDとさらなる特徴決定技法との間に型変換を受けた可能性があることに留意してください。同様に、「可能性のある共結晶1」は、周囲条件で共結晶2から共結晶1に変換したと考えられている試料を指す。最後に、「共結晶2である可能性が高い」という名称は、単離直後に分析された材料を指すが、型を確認するためにXRPDデータは取得されなかった。
共結晶1の高分解能XRPDパターンを図19に示す。パターンは指数付けに成功した。このことから、これは純粋な単結晶相からなることが分かる(図24)。XRPDパターンのピークピッキングを行った。この材料について1つのPanalyticalパターンおよび1つのInelパターンを分析し、従って、複数のパターンを比較することによって選択配向および粒子統計の効果を評価することができた。わずかな選択配向効果が観察されたが、このパターンは比較的よく一致しているように見えた。観察されたピークを図25および図26に示し、代表的なピークを図27に列挙している。
共結晶2の高分解能XRPDパターンを図37に示す。共結晶1のパターンと同様に、このパターンも指数付けに成功した。このことから、これは溶媒和材料の純粋な単結晶相からなることが分かる(図38)。XRPDパターンのピークピッキングを行った。この材料について1つのPanalyticalパターンおよび1つのInelパターンを分析し、従って、複数のパターンを比較することによって選択配向および粒子統計の効果を評価することができた。パターン間でよく一致していることから、観察パターンには配向および粒子統計の効果が無いことが分かる。観察されたピークを図39および図40に示し、代表的なピークを図41に列挙している。
指数付けおよび構造精密化は計算論的研究である。リファキシミン:ピペラジン共結晶1の指数付けされたXRPDパターンを図24に図示する。図24においてバーで印をつけた許容ピーク位置と観察されたピークとの一致は単位格子の決定に矛盾がないことを示している。パターンの指数付けが成功したことは、この試料が主に単結晶相からなることを示している。割り当てられたイクスティンクションシンボルと一致する空間群、単位格子パラメータ、および導き出された量を表18にまとめている。
指数付けおよび構造精密化は計算論的研究である。リファキシミン:ピペラジン共結晶2(ACN溶媒和化合物)の指数付けされたXRPDパターンを図38に図示する。図38においてバーで印をつけた許容ピーク位置と観察されたピークとの一致は単位格子の決定に矛盾がないことを示している。パターンの指数付けが成功したことは、この試料が主に単結晶相からなることを示している。割り当てられたイクスティンクションシンボルと一致する空間群、単位格子パラメータ、および導き出された量を表19にまとめている。2:1のリファキシミン:ピペラジン化学量論と仮定すると、指数付けされた単位格子体積では式単位あたり6モルまでのACNが可能である。
共結晶1に約75%および97%相対湿度(RH)、周囲温度でストレスを加え、3日後、1週間後、および2週間後にプルを作製した(表18)。各条件で乾燥した橙色の固体が観察された。97%RH、3日間および1週間のプルにおいて、XRPDによるリファキシミン型β-1への変換が観察された。2週間後に単離された固体は分析されず、これも変換したと想定された。75%RHで3日間、1週間、および2週間のプルは全て、同じXRPDパターン:共結晶1に類似したブロードなピークと約5°2θのさらなるピークを示した(図48)。これらの実験から、共結晶は高RH条件で安定しないことが分かる。
共結晶の水溶解度(平衡またはキネティック)を測定することができるようにするためには、共結晶は、ある期間にわたって水性条件に曝露されても変化してはならない。水と接触すると素早く解離するか、または型を変えるのであれば、溶解度に代わるものとして固有溶出(intrinsic dissolution)が導入されることがある。この場合、共結晶のペレットの溶出が測定される。しかしながら、共結晶は圧縮によって変化してはならない。
蒸気拡散、超音波処理、溶媒/貧溶媒、スラリー、および冷却法を用いてリファキシミン:ピペラジン共結晶の単結晶を成長させようという非常に多くの試みがなされたが、小さすぎる結晶および/または破損した結晶が形成したために実験は全て成功しなかった(表14および表22)。
a. 示された比はAPI:コフォーマーである。
b. 試料をインサイチューで観察した。針、ようじ、およびピペットを用いてアリコートをガラススライドに移して、Paratone-Nおよび鉱油の中にマウントした。「複屈折なし」という観察は、減光が観察されなかったことも示している。
リファキシミン:ピペラジン共結晶1
超音波処理しながらリファキシミン(2.0234g)をアセトニトリル(8mL)に溶解した。次いで、撹拌しながら、溶液を、ピペラジン(0.0467g)が入っているバイアルに添加し、すぐに、透明な赤色の溶液(5:1モル比リファキシミン:ピペラジン)が得られた。約1分間の攪拌の後に、多量の沈殿物が観察され、濃密な不透明の溶液が得られた。攪拌を容易にするために、さらなるアセトニトリル(8mL)を添加し、混合物を周囲条件で3日間、攪拌した。固体を減圧濾過によって収集し、減圧下で約8分間、風乾させ、分析した。この手順によって、小規模実験からも共結晶1が再現性よく得られた。
リファキシミン:ピペラジン共結晶1の一部を1ドラムバイアルに移した。1ドラムバイアルの蓋を外し、アセトニトリル(2mL)が入っている20mLバイアルの中に入れた。20mLバイアルに蓋をし、蒸気ストレスのために周囲条件で放置した。7日後に、固体の一部を取り出し、XRPDによって素早く分析し、共結晶2が得られた。この手順によって共結晶2が再現性よく得られた。おそらく、長期間のストレスの後にも共結晶2が再現性よく得られるだろう。だが、共結晶2は周囲条件に曝露されると、共結晶1または共結晶1に類似した材料に素早く変換することが見出されたことに留意しなければならない。
窒素下で約10分間のζ型の乾燥からθ型を作製した。表23。窒素流速は、容器内で固体を「転がす」のに十分な流速であった。XRPDパターンを図67に示す。これは、指数付けに十分な量のXRPDパターンであった。表23を参照されたい。
調製
大規模実験
一例では、ζ型を減圧下、周囲温度で約6時間、乾燥させることによってθ型を得た。θ型は、1H-NMR結果に基づくとエタノール付加物である可能性がある。ある試料は、1H-NMRによってリファキシミン1モル当たり2モルのエタノールを含有するが、仮のXRPD指数付け解から推定された体積から、単位格子はリファキシミン1モル当たり4モルのエタノールまで収容できることが分かる。θ型のXRPDパターンが指数付けに成功した。この型によって示された粉末回折パターンの指数付けが成功したことから、θ型は単結晶相であることが裏付けられた。
本実施例では、1mLのエタノールを251.5mgのリファキシミンに添加した。超音波処理すると、リファキシミンは最初にほぼ全て溶解したが、さらに超音波処理すると赤/橙色の沈殿物が形成した。さらに1mLのエタノールを添加し(総エタノール=2mL)、超音波処理した。どろどろしたペーストを得た。濾紙で濾過することによって固体を単離し、2mLのエタノールでリンスした。その後に、材料を、濾紙で密封した20mlバイアルに移し、高速の窒素流下でバイアル内で約10分間、転がした。自由に流動することができる橙/赤色の不透明な微粒子が顕微鏡下で観察され、XRPD分析によってθ型と特定された。
大規模実験からのθ型のXRPDパターンを図67に示す。周囲温度で8日間、保管した後に、試料をXRPDによって再分析した。試料はθ型のままであった。
リファキシミン型の粒径は異なる。以下は、カッパ型およびエータ型のリファキシミンそれぞれの粒径を列挙している表である。
a. 粒子の総体積の10%が、示された粒径μmより小さい。
b. 粒子の総体積の50%が、示された粒径μmより小さい。
c. 粒子の総体積の90%が、示された粒径μmより小さい。
圧縮
ある特定のリファキシミン:ピペラジン共結晶を秤量してウッズダイ(Wood's die)に移し、ある特定のパラメータでカーバープレスを用いて圧縮した。結果として生じたペレットを破壊し、分析した。
リファキシミン:ピペラジン共結晶1の指数付け
X'Pert High Score Plus (X'Pert High Score Plus 2.2a(2.2.1).)を用いて、リファキシミン:ピペラジン共結晶1のXRPDパターンを指数付けした。
知的所有権下にあるSSCIソフトウェアを用いて、リファキシミン:ピペラジン共結晶2(ACN溶媒和化合物)のXRPDパターンを指数付けした。
Omnicバージョン7.2を用いて、ピークピッキングを行った。出発物質および共結晶のそれぞれについて赤外線スペクトルおよびラマンスペクトルが提示され、全ての観察されたピークがラベルされた。観察されたピークには、非常に弱い強度ピークおよび最大値が十分に規定されなかったブロードなピークを除いて、ある特定の型の全てのIRピークおよびラマンピークが含まれる。
本報告において提示されたピークピッキングデータは、ラベルされたピークとピークリストを記載したX線回折パターンを含む。ほとんどの状況下では、約30°2θまでの範囲内のピークが選択された。ピークは回折パターン上にラベルされ、表に列挙されたが、技術的な理由により、異なる丸めアルゴリズムを用いて、それぞれのピークを、データを収集するのに使用した機器および/または固有ピーク分解能に応じて最も近い0.1°2θまたは0.01°2θに丸めた。図面およびリストの両方にあるx軸(°2θ)に沿ったピークの位置を、知的所有権下にあるソフトウェア(PatternMatch(商標) 3.0.1)を用いて自動的に求め、前記の基準に基づいて、小数点以下、有効数字1桁または2桁に丸めた。粉末X線回折のばらつきについてのUSP議論(米国薬局方, USP 32, NF 27, Vol.1, pg.392, 2009)において概説された勧告に基づき、ピーク位置のばらつきを±0.1°2θ以内に示す。異なる機器での、独立して調製された試料に対する第三者の測定が±0.1°2θを超えるばらつきにつながることがある。面間隔のリストについて、面間隔を計算するために使用した波長は、Cu-Kα1およびCu-Kα2波長の加重平均である1.541874Åであった(Phys. Rev. A56(6)4554-4568(1997)。面間隔の推定値に関連するばらつきを、それぞれの面間隔でUSPの勧告から計算し、それぞれのデータ表に示した。
示差走査熱量測定(DSC)
DSCは、TA Instruments 2920またはQ2000示差走査熱量計を用いて行った。追跡可能なNISTインジウム金属を用いて温度較正を行った。試料をアルミニウムDSCパンに入れ、パンを蓋で覆い、重量を正確に記録した。試料パンがセルの参照側に入れられるように、秤量したアルミニウムパンを配置した。それぞれのサーモグラムのデータ取得パラメータおよびパン配置は、本報告のデータセクションにある画像の中に表示する。サーモグラム上にある方法コードは、開始温度および終了温度ならびに加熱速度の短縮形である。例えば、25-250-10は「25℃〜250℃、10℃/分」を意味する。以下の表は、パン配置のために、それぞれの画像において使用した略語をまとめたものである。
LP 蓋にレーザーピンホールを開けた
HS 蓋を密閉封止した
HSLP 蓋を密閉封止し、蓋にレーザーピンホールを開けた
C 蓋を圧着した
NC 蓋を圧着しなかった
自動動的蒸気吸着(DVS)データは、VTI SGA-100 Vapor Sorption Analyzerにおいて収集した。NaClおよびPVPを較正標準品として使用した。分析の前に試料を乾燥させなかった。吸着データおよび脱着データを、5〜95%RHの範囲にわたって10%RH間隔で窒素パージ下において収集した。分析に使用した平衡基準は5分で0.0100%未満の重量変化であり、最大平衡時間は3時間であった。
IRスペクトルは、Ever-Glo中赤外線/遠赤外線IR源、拡張臭化カリウム(KBr)ビームスプリッター、および重水素化硫酸トリグリシン(DTGS)検出器を備えたMagna-IR 860(登録商標)フーリエ変換赤外線(FT-IR)分光光度計(Thermo Nicolet)において取得した。波長検証はNIST SRM 1921b(ポリスチレン)を用いて行った。データ取得のために、減衰全反射法(ATR)アクセサリー(Thunderdome(商標), Thermo Spectra-Tech)とゲルマニウム(Ge)結晶を使用した。各スペクトルは、4cm-1のスペクトル分解能で集められた256回のコアドスキャンを表している。バックグラウンドデータセットを、きれいなGe結晶を用いて取得した。Log1/R(R=リフレクタンス)スペクトルを、これらの2つのデータセットの互いの比をとることによって得た。
直交ポラライザ、2×もしくは4×対物レンズを備えたWolfe光学顕微鏡下、または一次赤色補正板と直交ポラライザ、0.8×〜10×対物レンズを備えた実体顕微鏡下で試料を観察した。
Varian UNITIYINOVA-400分光計を用いて溶液NMRスペクトルを取得した。約5〜10mgの試料を、TMSを含有するDMSO-d6またはCDCl3に溶解することによって、試料を調製した。データ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある最初のスペクトルプロットの中に表示する。
2つの溶液1H NMRスペクトルが、Spectral Data Services of Champaign, ILによって、Varian UNTIYINOVA-400分光計を用いて1Hラーモア周波数399.798MHz、25℃で取得された。試料を、それぞれ、DMSO-d6またはCDCl3に溶解した。6.0μsの1Hパルス幅、スキャン間5秒遅れ、35Kデータポイントで7000Hzのスペクトル幅、および40回のコアドスキャンでスペクトルを取得した。シグナル対ノイズ比を改善するために、自由誘導減衰(FID)を、64Kポイントおよび0.2Hzの指数関数的な線幅の広がり係数で処理した。完全に重水素化されていないDMSOからの残りのピークは約2.50ppmである。完全に重水素化されていないクロロホルムは7.26ppmでシングレットとして現れる。約3.3ppmにある比較的ブロードなピークは水によるものである(DMSOのみの中で収集したスペクトルにある)。
ヒ化インジウムガリウム(InGaAs)検出器を搭載したMagna-IR 860(登録商標)フーリエ変換赤外線(FT-IR)分光光度計(Thermo Nicolet)に接続したFT-ラマンモジュールにおいて、ラマンスペクトルを取得した。硫黄およびシクロヘキサンを用いて波長を検証した。試料をガラス管に入れ、管を、金でコーティングされた管ホルダーに配置することによって、それぞれの試料を分析する準備をした。約0.300WのNd:YVO4レーザー出力(1064nm励起波長)を用いて、試料を照射した。それぞれのスペクトルは、4cm-1のスペクトル分解能で収集した256回のコアドスキャンに相当する。
固体13C交差分極マジックアングルスピニング(CP/MAS)NMRスペクトルは、Varian UNITYINOVA-400分光計(ラーモア周波数:13C=100.542MHz, 1H=399.789MHz)によって周囲温度で取得した。試料を4mm PENCIL型ジルコニアローターに詰め、12kHz、マジックアングルで回転させた。
TGA分析は、TA Instruments 2950またはQ5000 IR熱重量分析器を用いて行った。ニッケルおよびAlumelを用いて温度較正を行った。各試料をアルミニウムパンに入れた。試料を密閉封止し、蓋に穴を開け(Q5000のみ)、次いで、TG炉に挿入した。炉を窒素下で加熱した。それぞれのパターンのデータ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある画像の中に表示する。サーモグラム上にある方法コードは、開始温度および終了温度ならびに加熱速度の短縮形である。例えば、25-350-10は「25℃〜350℃、10℃/分」を意味する。
Inel XRG-3000回折計
Inel XRG-3000回折計を用いてXRPDパターンを収集した。ファインフォーカス管および放物線型多層膜鏡を用いて、Cu Kα放射線の入射ビームを発生させた。分析の前に、ケイ素標準品(NIST SRM 640c)を分析して、Si111ピーク位置を検証した。試料標本を薄壁ガラスキャピラリーに詰め、ビームストップを用いて、空気からのバックグラウンドを最小限にした。Windif v.6.6ソフトウェアおよび湾曲型位置敏感Equinox検出器を用いて、120°の2θ範囲、透過型配置で回折パターンを収集した。それぞれの回折パターンのデータ取得パラメータは、本報告のデータセクションにある画像の上に表示する。
PANalytical X'Pert PRO MPD回折計と、Optixロングファインフォーカス線源を用いて発生させたCu放射線の入射ビームを用いて、XRPDパターンを収集した。楕円多層膜鏡を用いて、Cu Kα X線を標本に通して検出器上に集めた。分析の前に、ケイ素標準品(NIST SRM 640c)を分析して、Si111ピーク位置を検証した。試料の標本を3μm厚フィルムではさみ、透過型配置で分析した。ビームストップを用いて、空気によって発生するバックグラウンドを最小限にした。軸発散からの広がりを最小限にするために、入射ビームおよび回折ビームについてソーラースリットを使用した。標本から240mmの位置にある走査型位置敏感検出器(X'Celerator)およびData Collectorソフトウェアv.2.2bを用いて、回折パターンを収集した。それぞれのパターンのデータ取得パラメータは、鏡の前の発散スリット(divergence slit)(DS)および入射ビームアンチスキャタースリット(antiscatter slit)(SS)を含めて本報告のデータセクションにある画像の上に表示する。
ホットステージ顕微鏡観察は、SPOT Insight(商標)カラーデジタルカメラを搭載したLeica DM LP顕微鏡に取り付けたTMS93コントローラ付Linkamホットステージ(FTIR 600)を用いて行った。USP融点標準品を用いて温度較正を行った。試料をカバーガラス上に置き、もう一枚のカバーガラスを試料の上に置いた。ステージを加熱しながら、20×0.4 N.A.超長作動距離対物レンズと直交ポラライザおよび一次赤色補正板を使用して、各試料を視覚的に観察した。SPOTソフトウェア(v.4.5.9)を用いて画像を取り込んだ。
水を測定するために、Mettler Toledo DL39 KF滴定装置を用いて電量カールフィッシャー(KF)分析を行った。分析前にブランク滴定を行った。乾燥窒素雰囲気下で試料を調製した。この場合、約1グラムの試料を、予め乾燥させたバイアルに入っている約1mLの乾燥したHydranal-Coulomat ADに溶解した。全溶液をKF電量計に隔壁を通して添加し、10秒間混合した。次いで、試料を発生電極によって滴定した。発生電極は電気化学的酸化:2I-→I2+2e-によってヨウ素を発生させる。再現性を確実なものとするために、2回繰り返した。
当業者であれば、本明細書に記載の本発明の特定の態様に対する多くの等価物を認識しているか、または日常的な実験以上のものを用いることなく突き止めることができるだろう。このような等価物は、添付の特許請求の範囲に含まれることが意図される。
Claims (27)
- リファキシミンのカッパ型、シータ型、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶。
- カッパ型が、1、2、3、10、および16に実質的に類似したXRPDを特徴とするか、または図6、図7、図11、図12、および図13に実質的に類似したDSCもしくはTGAのサーモグラムを特徴とする、請求項1記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型が、表3または表4に列挙されたピークを特徴とする、請求項1記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型が、度2θ(+/-0.10度θ)で表される(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20および(7.68-7.78)±0.20;(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20および(7.52-7.56)±0.20;(6.83-6.94)±0.20、(7.68-7.78)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20、(7.68-7.78)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;(6.83-6.94)±0.20、(7.52-7.56)±0.20、(7.68-7.78)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20、(7.52-7.56)±0.20、(7.68-7.78)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20、(7.52-7.56)±0.20、(7.68-7.78)±0.20、(8.30-8.34)±0.20および(18.46-18.61)±0.20;または(5.41-5.65)±0.20、(6.45-6.67)±0.20、(6.83-6.94)±0.20、(7.52-7.56)±0.20、(7.68-7.78)±0.20、(8.30-8.34)±0.20および(18.46-18.61)±0.20の特徴的なピークを有する粉末X線回折パターンを示す、請求項1記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶が、図17および図18に実質的に類似したXRPDを特徴とする、請求項1記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶が共結晶1を含む、請求項1記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が、図19、図23、図25、図30、および/または図48のうちの1つまたは複数に実質的に類似したXRPDを特徴とする、請求項6記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が、図21および/もしくは図33に実質的に類似したIRスペクトル、または図22、図35に実質的に類似したラマンスペクトル、および/もしくは図30のうちの1つもしくは複数のピークを特徴とする、請求項6記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が、度2θ(+/-0.10度θ)で表される特徴的なピークを有する粉末X線回折パターンを示し、該特徴的なピークが、図26または図27に列挙された1つまたは複数のピークを含む、請求項6記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が、度2θ(+/-0.10度θ)で表される5.74±0.10;6.58±0.10;7.49±0.10;8.21±0.10;および9.83±0.10;または5.74±0.10;7.49±0.10;8.21±0.10;および9.83±0.10;または5.74±0.10;6.58±0.10;8.21±0.10;および9.83±0.10;または5.74±0.10;6.58±0.10;7.49±0.10;および9.83±0.10;または5.74±0.10;6.58±0.10;7.49±0.10;および8.21±0.10の特徴的なピークを有する粉末X線回折パターンを示す、請求項8記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が、図28に実質的に類似したDSCおよびTGAの曲線、または図29に実質的に類似したDVS曲線、または図31に実質的に類似したNMRスペクトル、または図32に実質的に類似したSSNMRを特徴とする、請求項6記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶1が図34に示されるIRスペクトルピークを示す、請求項6記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶が共結晶2を含む、請求項1記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶2が、図19、図20、図37、および/もしくは図39のうちの1つもしくは複数に実質的に類似したXRPD、または図21および/もしくは図44に実質的に類似したIRスペクトル、または図22、図46に実質的に類似したラマンスペクトル、および/もしくは図47のうちの1つもしくは複数のピーク、または図42に実質的に類似したDSCおよびTGAの曲線、または図43に実質的に類似したNMRスペクトルを特徴とする、請求項13記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶2が、図45に示されるIRスペクトルピークを示す、請求項13記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶2が、度2θ(+/-0.10度θ)で表される特徴的なピークを有する粉末X線回折パターンを示し、該特徴的なピークが、図40または図41に列挙された1つまたは複数のピークを含む、請求項13記載の化合物。
- 前記リファキシミン:ピペラジン共結晶2が、度2θ(+/-0.10度θ)で表される3.64±0.10;5.58±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;8.27±0.10;および9.01±0.10;または5.58±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;8.27±0.10;および9.01±0.10;または3.64±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;8.27±0.10;および9.01±0.10;または3.64±0.10;5.58±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;8.27±0.10;および9.01±0.10;または3.64±0.10;5.58±0.10;6.45±0.10;7.60±0.10;8.27±0.10;および9.01±0.10;または3.64±0.10;5.58±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;および9.01±0.10;または3.64±0.10;5.58±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;7.60±0.10;および8.27±0.10;または3.64±0.10;5.58±0.10;6.45±0.10;7.29±0.10;および7.60±0.10の特徴的なピークを有する粉末X線回折パターンを示す、請求項13記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型、シータ型、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶が、5重量%未満の総不純物を含有する、請求項1記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型、シータ型、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶の純度が、少なくとも50%であるか、または少なくとも75%であるか、または少なくとも80%であるか、または少なくとも90%であるか、または少なくとも95%であるか、または少なくとも98%である、請求項1記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型、シータ型、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶が、薬学的に許容される担体をさらに含む、請求項1記載の化合物。
- リファキシミンのカッパ型、シータ型、および/またはリファキシミン:ピペラジン共結晶のうちの1つまたは複数が、コーティング錠もしくは非コーティング錠、硬ゼラチンカプセルもしくは軟ゼラチンカプセル、糖衣丸剤、ロゼンジ、オブラート、ペレット剤、または密封された小さな包みに入っている散剤として製剤化される、請求項1記載の化合物。
- 表1および表2に列挙された方法のうちの1つまたは複数を含む、リファキシミンのカッパ型を生成するための方法。
- 表10に列挙された方法のうちの1つまたは複数を含む、リファキシミン:ピペラジン共結晶を生成するための方法。
- 図60または図68に実質的に類似したXRPDを特徴とする、請求項1記載のシータ型。
- 度2θ(+/-0.10度θ)で表される以下の特徴的なピークのうちの1つまたは複数を有する粉末X線回折パターンを示す、請求項1記載のシータ型:5.48±0.10、7.00±0.10、7.75±0.10、8.72±0.10、9.09±0.10、または10.96±0.10または;5.48±0.10、7.00±0.10、7.75±0.10、8.72±0.10、9.09±0.10、および10.96±0.10;または5.48±0.10、7.00±0.10、7.75±0.10、または5.48±0.10、7.75±0.10、および8.72±0.10;または5.48±0.10、7.00±0.10、および8.72±0.10;または5.48±0.10、8.72±0.10、および9.09±0.10;または5.48±0.10、9.09±0.10、および10.96±0.10;または7.75±0.10、8.72±0.10、および9.09±0.10;または7.00±0.10、7.75±0.10、8.72±0.10、および10.96±0.10;または8.72±0.10、9.09±0.10、および10.96±0.10;または7.00±0.10、7.75±0.10、8.72±0.10、および10.96±0.10;または7.00±0.10、8.72±0.10、および10.96±0.10。
- 図70に実質的に類似したDSC、および/または図70に実質的に類似したTGA、および/または図71に実質的に類似した水分収着XRPD、および/または図72に実質的に類似した水分収着後XRPDを特徴とする、請求項1記載のシータ型。
- 表24または表25において特定されるピークのうちの1つまたは複数を含む、請求項1記載のシータ型。
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