JP2013505979A - Pdgfrベータ阻害剤の新たな使用 - Google Patents
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Abstract
Description
リアルタイムPCR
リアルタイムPCRを、Chromo 4 cycler (Biorad)上で製造者の標準プロトコールに従って、ABI Prism (Invitrogen)のSybrGreen PCR qPCR Supermixで行った。1ウェルあたり50 ngのcDNAを使用し、試料ごとに3通りに分析し、規準化用にGAPDHを使用した。結果を2-ΔΔCt法で分析した。プライマー: NPM-ALK FW: GTG GTC TTA AGG TTG AAG TGT GGT T (配列番号1); NPM-ALK Rev: GCT TCC GGC GGT ACA CTA CTA A (配列番号2); JunB FW: GGC TTT GCG GAC GGT TT (配列番号3); JunB Rev: GGC GTC ACG TGG TTC ATC T (配列番号4) ; c-jun FW: TGA CTG CAA AGA TGG AAA CG (配列番号5); c-jun Rev: GCT CTC GGA CTG GAG GAA C (配列番号6); PDGFRB FW: TGC CAG TTC CAC CTT GAA TGA A (配列番号7); PDGFRB Rev: AGT TGT GCC TCA GGC TCT GCT T (配列番号8)。
約100 mgの腫瘍組織を、氷上でDounceを使用して、50 mM のトリス-HCl pH 7,4、150 mMのNaCl、0.1% トリトン X-100、5 mM EDTA、1x 完全プロテイナーゼ阻害剤(Roche)、1x HALT ホスファターゼ阻害剤 (Thermo scientific) から成る1 mlの溶解緩衝液中で裁断した。続いて、得られる懸濁液を5分間1200 rpmで遠心分離し、上清を新たなチューブに移し、タンパク質濃度をQubit蛍光光度計(Invitrogen)で測定した。総タンパク質溶解物(50μg)を、ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミド電気泳動 (SDS-PAGE) に供し、続いて、ニトロセルロース膜に移した。
ホルマリン固定パラフィン包埋 (FFPE) 腫瘍試料の切片を作成し、スライドガラスに貼り付け、脱脂し、再水和した。エピトープをトリス-EDTA中で加熱処理によって回収した。内在性ペルオキシダーゼを10分間3 % H2O2 中でブロックした。アビジン/ビオチンブロック(Vector)、Universal Mouse HRP-Kit (IDLabs) 由来のSuperblock及びマウスブロック中で切片をブロックした。一次抗体染色を一晩4°Cで行った。AEC及びヘマトキシリンを対比染色として使用した。抗PDGFRB (細胞情報伝達、#3169) 、抗JunB (Santa Cruz、sc-46) 、抗c-jun (Santa Cruz、sc-1694) 、抗Alk Zymed (51-3900)抗体を、製造者説明書に従って使用した。ヘマトキシリン/エオシン及びPAS染色をDAKOから購入した染色キットで行った。
1.細胞増殖性疾患感受性患者における、T細胞リンパ腫の抗増殖治療のための、PDGFRベータ阻害剤。
2.AP-1発現リンパ腫の治療のための、請求項1に記載の阻害剤。
3.NHL、ALCL、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCL、及びPTCLから成る群から選択されるリンパ腫の治療のための、請求項1又は2に記載の阻害剤。
4.再発患者を治療するための、請求項1〜3のいずれか1項に記載の阻害剤。
5.患者の第一選択治療のための、請求項1〜4のいずれか1項に記載の阻害剤。
6.例えばポリペプチド又は小分子等のPDGFRベータ拮抗薬から選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の阻害剤。
7.ニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ及びトセラニブから成る群から選択される、特にイマチニブ又はニロチニブから成る群から選択される、請求項6に記載の阻害剤。
8.予防又は治療使用のための、請求項1〜7のいずれか1項に記載の阻害剤。
9.局所又は全身使用のために製剤される、請求項1〜8のいずれか1項に記載の阻害剤。
10.経口使用のために製剤される、請求項1〜9のいずれか1項に記載の阻害剤。
11.0.001 mg/kg/日〜約100 mg/kg/日の用量で投与される、請求項1〜10のいずれか1項に記載の阻害剤。
12.化学療法及び/又は放射線療法との併用使用のための、請求項1〜11のいずれか1項に記載の阻害剤。
13.T細胞リンパ腫、特にAP-1発現ALCL、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCLの抗増殖治療における使用のための、ニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ又はトセラニブから選択される、特にイマチニブ又はニロチニブから選択される、PDGFRベータ阻害剤。
14.T細胞リンパ腫の抗増殖治療のためのPDGFRベータ阻害剤を含有する医薬製剤の、調製方法。
15.T細胞リンパ腫、特にAP-1発現及びALK発現リンパ腫、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCLの抗増殖治療方法であって、リンパ腫を有する患者の腫瘍細胞を含む試料を分析し、腫瘍細胞がAP-1及び/又はALKを発現するか判別するとともに、試料の腫瘍細胞がAP-1及びALKを発現する場合、PDGFRベータ阻害剤の有効量で、好ましくはニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ又はトセラニブから選択されるPDGFRベータ阻害剤で、特にイマチニブ又はニロチニブで患者を治療する、抗増殖治療方法。
16.AP-1発現ALCL、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCLの抗増殖治療における使用のための、PDGFRベータ阻害剤。
本発明はさらに、次の実施例によってそれらに限定することなく説明する。
インビボ(in vivo)でのNPM-ALK陽性リンパ腫の形成におけるJunB及びcJunの役割を検討するために、マウス、T細胞特異的、CD4-プロモーターの制御の下でヒトNPM-ALK融合-チロシンキナーゼ (FTK) を保有するトランスジェニックマウスを、JunB遺伝子又はcJun 遺伝子のいずかのloxP導入版(JunBf/f又はcJunf/f)を保有する、CREリコンビナーゼ遺伝子(CD4-CRE)を独立して発現している同一バックグラウンドのマウスと交配した。(Chiarle et al., Blood 101 (2003): 1919-1927; Wolfer et al., Nat. Immunol. 2 (2001), 235-241; Behrens et al., EMBO J. 21 (2002), 1782-1790)。この手段を使用して、NPM-ALKのT細胞特異的発現を有しJunB及び/又はcJunがT細胞特異的にノックアウトされたマウスを作製した。目的の4つの系統のマウスを樹立した。導入遺伝子を有しJunB 又は cJunがコンディショナルノックアウトされたマウスを、NPM-ALKΔc-Jun又はNPM-ALKΔJunBとそれぞれ命名した。導入遺伝子を保有しJunB及びcJunが二重ノックアウトのマウスをNPM-ALKΔJunと命名した。カプラン・マイヤープロットを使用して異なるマウス系統の生存期間を分析した(図1a)。NPM-ALKΔJunはノックアウトなしの同腹子より顕著に長く生存したが(平均生存期間24 +/- 4,8 vs. 13,5 +/- 3,9 週間)、NPM-ALKΔJunB又はNPM-ALKΔc-Junの生存期間においては顕著な差はなかった(12,8 +/- 4,7及び11,3 +/- 3,2週間 vs. 13,5 +/- 3,9 週間) (図1a)。従って、さらに、NPM-ALKとNPM-ALKΔJunマウスとの違いを解明することに決定した。
組織マイクロアレイ(TMA)技術を使用して(NPM-ALK陽性及び陰性ALCL患者のパラフィン包埋ヒト患者試料を使用した組織マイクロアレイを、Dr. Ana Schmatz; Medical University Viennaから得た)、ALCL患者試料のタンパク質発現を分析した。JunB (Santa Cruz; sc-46)、cJun (Santa Cruz; sc-1694) 及びPDGFRB (Cell Signaling; Cat.Nr.3169)タンパク質発現レベルは、ALK(Dako; N1614)発現レベルから独立して上昇した(図2a及びb)。
マウス及びヒトNPM-ALKリンパ腫の腫瘍試料をPDGFRBのRNA発現に関して分析した。qRT-PCRを使用して、PDGFRB発現がNPM-ALKΔJunマウスのリンパ腫においてNPM-ALKマウスと同様であることが分かった。野生型胸腺において、発現は腫瘍よりも50 %低い(図3a)。NPM-ALKマウスの腫瘍はPDGFRB陽性であるが、PDGFRBタンパク質発現はNPM-ALKΔJunマウスにおいて完全に消失されることを示す(図3b)。我々はまたIHCによって、NPMΔJunリンパ腫及び肝臓と比較してNPM-ALKのPDGFRB発現を分析した。PDGFRB発現は、NPM-ALKリンパ腫において高いが、NPM-ALKΔJunマウスはPDGFRBを発現しない(図3c及び未開示データ)。線維芽細胞を一晩血清非含有培地で血清欠乏させ、続いて、PDGFD(正の対照) 、NPM-ALK陽性マウス腫瘍株化細胞の血清(CD4-4又はCD4-417それぞれ、G. Inghirami; University of Turin) 又は血清非含有培地を、線維芽細胞に添加した。糖タンパク質に関して免疫沈降法を行い、PDGFRB及びp-PDGFRB(Cell Signaling; Cat.Nr.3124) のタンパク質レベルを、マウスNPM-ALKリンパ腫における自己刺激ループのウエスタンブロット解析によって評価した。NPM-ALKマウス腫瘍細胞は、自己刺激態様でマウス線維芽細胞において、PDGFを産生し、PDGFRB発現及びリン酸化反応を刺激することができる(図3d)。
マウスにおけるNPM-ALKリンパ腫は非常に活動的なので、腫瘍形成のこれらの初期段階の分析は直接は不可能であり、窒息死の数時間前までマウスは疾患の兆候を示さず、生存期間は約8〜約30週間と非常に広範である(図1aを参照されたい)。従って、我々は死亡時に、Ki-67 (Novocastra; NLC-Ki67p) 及びタネル(Chemicon; S7111) アッセイ、それぞれに関して免疫蛍光及び免疫組織化学染色を介してリンパ腫において増殖及びアポトーシス速度を分析した(図2e)。二重ノックアウト動物由来の腫瘍における増殖マーカーKi-67を使用した染色は非常に減少したが、タネル染色によって測定したアポトーシス速度はNPM-ALKΔJunマウスにおいて増加したことが分かった。フローサイトメトリーを使用して、NPM-ALKの細胞周期パラメータをNPM-ALKΔJunリンパ腫細胞に対して分析した。NPM-ALKΔJunリンパ腫細胞は、G期が顕著に長い状態であったが、S期は非常に短かった(図3f)。
次に、我々はJunB及びcJunによるPDGFRBの制御を分析した。「UCSC Genome Browser on Mouse July 2007 Assembly」及びMathInspectorを使用して(Kent et al., Genome Res. 12(2002): 996-1006; Cartharius et al., Bioinformatics 21 (2005), 2933-2942)、転写開始点から-269bp 〜-263 bp 上流のPDGFRプロモーター内にAP-1コンセンサス配列を同定することができ、かかる配列は複数の哺乳類種に渡って高度に保存されている(図4a)。このインシリコの発見から、PDGFRBプロモーターはAP-1因子を介して制御することができ、PDGFRBはおそらく新規であり未だ知られていないAP-1標的遺伝子であるという仮説が導びかれる。この仮説を試験するために、マウスCD4-NPM-ALK株化細胞 (417系統)を使用してクロマチン免疫沈降 (ChIP) 分析を行った (G. Inghirami, University of Turin)。この株化細胞は、我々が使用する同一のNPM-ALKマウスの原発腫瘍由来であった。ChIPを抗JunB及び抗cJun抗体で行い、得られる物質をPDGFRB-プロモーターの推定AP-1結合部位に結合したプライマーのqRT-PCRによって分析した(図の説明文を参照されたい)。JunB及びcJunがこのAP-1部位に結合することを示すことができ、PDGFRBがAP-1標的遺伝子であることを示唆している(図4b)。
NPM-ALK腫瘍形成に対するPDGFRBの役割を検討するために、マウスNPM-ALK細胞及びPDGFRB陽性株化細胞417及びヒトNPM-ALK陽性及びPDGFRB陰性株化細胞SR-786 (補足図3a) [G. Egger, Medical University Vienna] を、異なる濃度のチロシンキナーゼ阻害剤イマチニブ-メシル酸塩 (イマチニブ)及びニロチニブで処理した。細胞を3日間RPMI培地中で培養し、続いて細胞数及びアポトーシス速度に関して分析した。イマチニブ濃度が増加するにつれ、細胞数は株化細胞417において次第に減少した。しかしながらSR-786細胞は、全く影響を受けなかった。
同様にインビボ(in vivo)でのイマチニブ及びニロチニブの効果を試験するために、マウスNPM-ALK陽性株化細胞CD4-417の細胞を6週齢のSCID(重度の複合免疫不全)マウスの右側腹部の中に注入することによって、マウス異種移植モデルを樹立した。注入の4週間後に、固形の腫瘍が発生し、マウスを経管栄養によって300 mg/kg/日のイマチニブ又は75 mg/kg/日のニロチニブでそれぞれ毎日処置した。7日のコース後、イマチニブで処置したマウスは腫瘍の完全な寛解又は大きな減少を示した(未処置マウス: 2.7 g、処置マウス 0.5 g)(補足図2a及びb; 補足図3b)。さらに、NPM-ALKΔJunマウスにおいて観察された腫瘍表現型に一致して、移植腫瘍のイマチニブでの治療は、Ki-67及びタネル蛍光免疫染色によって測定されるように、増殖の減少及びアポトーシス速度のわずかな増大につながる(補足図2c)。PDGFRBタンパク質発現は、イマチニブ処理マウスにおいて上方制御される。これはおそらく、イマチニブによるPDGFRB-リン酸化反応の阻害への反作用である (補足図2d)。これらのデータは、イマチニブ及びニロチニブがALCLにおいてPDGFRBをブロックすることを支持している。
アポトーシス速度をアラマーブルーアッセイによって測定した。アラマーブルーの活性成分は、非蛍光性濃青色指示色素であるレサズリンである。それは細胞に浸透することができ、生(代謝上活性のある) 細胞による還元反応において、蛍光、鮮赤色色素のレゾルフィンに変換される。生じた蛍光は、代謝上活性のある細胞の数と比例する。
Claims (15)
- 細胞増殖性疾患感受性患者における、T細胞リンパ腫の抗増殖治療のための、PDGFRベータ阻害剤。
- AP-1発現リンパ腫の治療のための、請求項1に記載の阻害剤。
- NHL、ALCL、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCL、及びPTCLから成る群から選択されるリンパ腫の治療のための、請求項1又は2に記載の阻害剤。
- 再発患者を治療するための、請求項1〜3のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 患者の第一選択治療のための、請求項1〜4のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 例えばポリペプチド又は小分子等のPDGFRベータ拮抗薬から選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の阻害剤。
- ニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ及びトセラニブから成る群から選択される、特にイマチニブ又はニロチニブから成る群から選択される、請求項6に記載の阻害剤。
- 予防又は治療使用のための、請求項1〜7のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 局所又は全身使用のために製剤される、請求項1〜8のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 経口使用のために製剤される、請求項1〜9のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 0.001 mg/kg/日〜約100 mg/kg/日の用量で投与される、請求項1〜10のいずれか1項に記載の阻害剤。
- 化学療法及び/又は放射線療法との併用使用のための、請求項1〜11のいずれか1項に記載の阻害剤。
- T細胞リンパ腫、特にAP-1発現ALCL、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCLの抗増殖治療における使用のための、ニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ又はトセラニブから選択される、特にイマチニブ又はニロチニブから選択される、PDGFRベータ阻害剤。
- T細胞リンパ腫の抗増殖治療のためのPDGFRベータ阻害剤を含有する医薬製剤の、調製方法。
- T細胞リンパ腫、特にAP-1発現及びALK発現リンパ腫、好ましくはALK+-ALCL、特にNPM-ALK+-ALCLの抗増殖治療方法であって、リンパ腫を有する患者の腫瘍細胞を含む試料を分析し、腫瘍細胞がAP-1及び/又はALKを発現するか判別するとともに、試料の腫瘍細胞がAP-1及びALKを発現する場合、PDGFRベータ阻害剤の有効量で、好ましくはニロチニブ、イマチニブ、ダサチニブ、アキシチニブ、スニチニブ又はトセラニブから選択されるPDGFRベータ阻害剤で、特にイマチニブ又はニロチニブで患者を治療する、抗増殖治療方法。
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