JP2011052017A - 脈管形成因子の用量および心筋血流を改善するための投与方法 - Google Patents

Abstract

【課題】ヒト心臓において新脈管形成を誘導する一方で、身体の他の部位における新脈管形成の危険性を最小化する、投与のための薬学的組成物および方法を提供すること。
【解決手段】本発明は複数の局面を有する。１つの局面において本発明は、約５ｎｇ／用量〜１３５，０００ｎｇ未満、代表的には５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの脈管形成因子を含む、単位用量の薬学的組成物に関する。好ましくはこの脈管形成因子はＦＧＦであり、より好ましくは塩基性ＦＧＦ（ＦＧＦ−２）である。本発明は、第２の局面において、患者の心臓において新脈管形成を誘発するか、あるいは、心筋の灌流または血管密度を増加するための方法に関し、脈管形成因子の単位用量を一回の注射または一連の注射として必要な領域の心筋に直接投与することを包含する。新脈管形成が必要な複数の場所で複数の単位用量の組成物が心筋層に直接投与されることもまた本発明の請求の範囲内である。
【選択図】なし

Description

（発明の背景）
（Ａ．発明の分野）
本発明は、脈管形成因子（例えば、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、血小板由来増殖因子もしくは血管内皮増殖因子）、または脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインの用量（超低用量を含む）に関し、ならびに改善された心筋血流を得るための用量の投与形態に関する。本発明はまた、脈管形成因子の用量を含む薬学的組成物、ならびに心筋機能、血流、灌流および／または脈管密度を改善するための、心臓、好ましくはヒト心臓への、その薬学的組成物の投与方法に関する。本発明は有用である。なぜなら、開示された用量、その投与のための薬学的組成物および方法は、冠状動脈疾患（ＣＡＤ）処置のための、外科的処置に対する代替物または補助剤を提供し、そして／または、さらにヒトにおける心筋梗塞（ＭＩ）後の損傷を減少する方法を提供するからである。最後に、本発明は、投与された脈管形成因子が、標的組織に対する治療効果を有するか否かを、代わりのマーカーについてアッセイすることによって決定するための方法を含む。

（Ｂ．発明の背景）
冠状動脈疾患（アテローム性動脈硬化症）は、ヒトにおける進行性の疾患であり、１以上の冠状動脈は、プラークの蓄積を通じて次第に閉鎖する。この疾患を有する患者の冠状動脈は、しばしば、バルーン脈管形成術またはステントの挿入によって処置され、部分的に閉鎖した動脈を開ける。最後には、これらの患者は、非常に高額で危険な冠状動脈バイパス手術を受けることを必要とされる。このような患者に、冠状血流を高める処置を提供し、バイパス手術または脈管形成術を受ける必要生を無くすることは望ましい。

ヒトにおいて、さらにより重大な状況が起こるのは、患者が心筋梗塞に罹患する場合である。ここで１以上の冠状動脈または小動脈は、凝塊などによって、完全に閉じる。閉じた動脈または小動脈によってなされる心筋層の部分への循環を回復するための即時の必要性が存在する。失われた冠状の循環が梗塞形成の数時間内に回復される場合、閉塞から生じる心筋層への損傷のほとんどは、予防され得る。凝塊溶解剤（例えば、組織プラスミノゲン活性化剤（ｔＰＡ）、ストレプトキナーゼ、およびウロキナーゼ）は、この状況に有用であることが証明されている。しかし、凝塊溶解剤に対する補助剤として、それはまた、損傷したかまたは閉塞した心筋層に、新脈管形成によって、副行循環を得るために望ましい。

従って、本発明の目的は、ヒト心臓に、心新脈管形成を提供するが、体内の他の箇所（特に、検出されない腫瘍）での新脈管形成を誘導する危険性を最小化する、新脈管形成を必要とするヒト心臓への、脈管形成因子の用量およびその投与形態を、提供することである。より具体的には、本発明のさらなる目的は、心新脈管形成の所望の特性（例えば、冠状動脈疾患および／または急性心筋梗塞の処置の間）を提供するが、体内の他の箇所で生じる有害な脈管形成効果の可能性を最小化する、ヒト患者への脈管形成因子の治療用量およびその投与形態を提供することである。

脈管形成因子としては、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、血管内皮増殖因子−Ａ（ＶＥＧＦ−Ａ）、トランスホーミング増殖因子β１（ＴＧＦ−β１）および線維芽細胞増殖因子が挙げられる。線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）は、少なくとも１８の構造学的に関連したポリペプチドのファミリー（ＦＧＦ−１〜ＦＧＦ−１８と呼ばれる）であり、プロテオグリカン（例えば、ヘパリン）に対しての高程度の親和性によって特徴付けられる。種々のＦＧＦ分子は、１５〜２３ｋＤのサイズに及び、そして以下を含む正常および悪性条件における広範囲の生物学的活性を示す：神経細胞接着および分化［Ｓｃｈｕｂｅｒｔら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１０４：６３５−６４３（１９８７）］；創傷治癒［米国特許第５，４３９，８１８号（Ｆｉｄｄｅｓ）］；多くの中胚葉細胞型および外胚葉細胞型に関するマイトジェンとして、栄養因子として、分化誘導因子または分化阻害因子のとして［Ｃｌｅｍｅｎｔｓら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ８：１３１１−１３１６（１９９３）］；ならびに、脈管形成因子として［Ｈａｒａｄａ，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．，９４：６２３−６３０（１９９４）］。従って、ＦＧＦファミリーは、多能性増殖因子のファミリーであり、異なる範囲の線維芽細胞、平滑筋細胞、内皮細胞および神経細胞を刺激する。

任意の脈管形成因子（または因子）が、正常組織（例えば、胎児発生時または創傷治癒字）によって放出される場合、時間的かつ空間的な制御が問題である。しかし、多くの脈管形成因子はまた、発癌遺伝子である。従って、時間的かつ空間的制御の非存在下で、それらは、新脈管形成を提供することによって腫瘍増殖を刺激する潜在能力を有する。従って、任意の脈管形成因子が、ヒト被験体において医薬として使用される前、検出されない腫瘍に対する、その脈管形成効果を最小にすることが考慮されなくてはならない。結果として、本発明の目的は、標的組織において局在化された新脈管形成を提供するが、体内の他の箇所での検出されない腫瘍における新脈管形成の増加する危険性を最小化する、脈管形成因子の用量およびその投与形態を提供することである。

多くの脈管形成因子（例えば、ＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−ＡまたはＦＧＦ）は、単離され、そして心筋虚血の種々の動物モデルに投与され、異なる結果およびしばしば反対の結果を有している。Ｂａｔｔｌｅｒらに従って、「心筋虚血のイヌモデルは、その関連する少数の天然の副行循環およびヒト冠動脈循環に対する類似において「勝る」ブタモデルに対するように、天然に存在する副行循環のために非難される」。Ｂａｔｔｌｅｒら、「Ｉｎｔｒａｃｏｒｏｎａｒｙ Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｅｎｈａｎｃｅｓ Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ ｉｎ Ｉｎｆａｒｃｔｅｄ Ｓｗｉｎｅ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ」ＪＡＣＣ，２２（７）：２００１−６（１９９３年１２月）第２００２ページ、第１欄。従って、当業者は、ブタ心臓がヒト心臓に類似する点で最も勝るモデルであることを認識した。さらに、Ｂａｔｔｌｅｒは、「ｂＦＧＦ（すなわちブタＦＧＦ−２）の投与の用量および形態は、達成された生物学的効果に対して意味深い関係であり得る」ことを指摘する。Ｂａｔｔｌｅｒら、第２００５頁、第１欄。従って、ヒト患者におけるＣＡＤおよび／またはＭＩ後の傷害の処置の完全性および効果を提供する、脈管形成因子の用量および投与形態を提供することが、本発明のさらなる目的である。さらに一般には、ヒト心臓において新脈管形成を誘導する一方で、身体の他の部位における新脈管形成の危険性を最小化する、投与のための薬学的組成物および方法を提供することが、本発明の目的である。

最近までの脈管形成因子に対する種々の研究は、１０μｇ〜１５００μｇの範囲の脈管形成因子の投与される用量を有する。例えば、Ｙａｎａｇｉｓａｗａ−Ｍｉｗａら、「Ｓａｌｖａｇｅ ｏｆ Ｉｎｆａｒｃｔｅｄ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ ｂｙ Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｃ Ａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５７：１４０１−１４０３（１９９２）は、１０ｍｌの生理食塩水中の１０μｇ用量のヒト組換え塩基性ＦＧＦ（ｈｒ−ＦＧＦ−２）を、隣接する左上行冠状動脈（ＬＡＤ）内に血栓を挿入することにより心筋梗塞を誘導した後のイヌの左回旋冠状動脈（ＬＣＸ）に、１分間にわたって２度注入する工程を開示する。Ｙａｎａｇｉｓａｗａ−Ｍｉｗａは、さらに、このイヌモデルにおける総量２０μｇのｈｒ−ＦＧＦ−２冠状内投与の結果として、「脈管形成がｂＦＧＦの投与１週間後以内に生じた」ことを開示する。Ｙａｎａｇｉｓａｗａ−Ｍｉｗａ、１４０３頁。Ｂａｎａｉら、「Ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ−Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ ｔｏ Ｉｓｃｈｅｍｉｃ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ ｂｙ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ ｉｎ Ｄｏｇｓ」，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ、８９（５）：２１８３−２１８９（１９９４年５月）は、イヌの遠位左回旋動脈（ＬＣｘ）に１日あたり４５μｇのヒト組換えＶＥＧＦを１週間あたり５日間、４週間にわたって、投与することによって、冠状新脈管形成を首尾よく誘導する工程（すなわち、副行血流における４０％増加および心筋内に分布する脈管の実数的密度における８９％増加）を開示する。このイヌの近位ＬＣｘは、アメネロイド（ａｍｅｒｏｉｄ）圧縮器（ｃｏｎｓｔｒｉｃｔｏｒ）を有する第一の開放枝の前に圧縮され、ここで、取り巻くアネロイドの遠位に水圧バルーン閉塞器（ｏｃｃｌｕｄｅｒ）を直ちに設置した。同様の研究において、Ｕｎｇｅｒら、「Ｂａｓｉｃ ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｅｎｈａｎｃｅｓ ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ ｆｌｏｗ ｉｎ ａ ｃａｎｉｎｅ ｍｏｄｅｌ」、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２６６（Ｈｅａｒｔ Ｃｉｒｃ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．３５）：Ｈ１５８８−Ｈ１５９５（１９９４）は、イヌの遠位左回旋動脈（ＬＣｘ）に１１０μｇのヒト組換え塩基性ＦＧＦ（１５５残基形態）の毎日のポーラスを９日間にわたって、投与することによって、副行血流を増加する工程（すなわち、処置群および未処置群におけるそれぞれ０．４９および０．３５の、最終の副行ゾーン対正常ゾーン（ＣＺ／ＮＺ）の血流比）を開示する。このイヌの近位ＬＣｘは、アネロイド圧縮器を有する第一の開放枝の前に圧縮され、ここで、取り巻くアネロイドの遠位に水圧バルーン閉塞器を直ちに設置した。しかし、上記の研究において、Ｕｎｇｅｒは、新脈管形成を誘導した方法または用量を示し得なかった。副行血流に基づく任意の評価がより困難であること示すために、Ｕｎｇｅｒはまた、塩基性ＦＧＦの投与が急性の血管拡張性効果、血圧の減少、および副行血流の増加を生じることを開示する。Ｕｎｇｅｒ（１９９４）Ｈ１５９０頁、第２欄およびＨ１５９２頁、第２欄。

初期の研究，Ｕｎｇｅｒら「Ａ ｍｏｄｅｌ ｔｏ ａｓｓｅｓｓ ｉｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎｓ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ ｂｌｏｏｄ ｆｌｏｗ：ｃｏｎｔｉｎｕｏｕｓ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａｇｅｎｔｓ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｌｅｆｔ ｃｏｒｏｎａｒｙ ａｒｔｅｒｙ ｉｎ ｄｏｇｓ」Ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ Ｒｅｓ．２７：７８５−７９１（１９９３）において、Ｕｎｇｅｒは、アネロイド圧縮器での４週間にわたる動脈の圧縮後の動脈の二重連結および連結したＬＣｘの近位株（ｓｔｕｂ）内へのＦＧＦ−１の注入のためのカテーテルの挿入の後に、イヌの左回旋動脈（ＬＣｘ）の近位端への、３０ ＩＵ／ｈｒのヘパリンの存在下での３０μｇ／ｈｒの組換え酸性ＦＧＦ（すなわち、ＦＧＦ−１）の４週間にわたる連続注入を開示する。Ｕｎｇｅｒ（１９９３）第７８５頁。にもかかわらず、総蓄積量１０ｍｇの酸性ＦＧＦを、それぞれのイヌの冠状動脈内に注入した。Ｕｎｇｅｒは、「酸性ＦＧＦは．．．副行血流に例示的な効果を有さなかった」、Ｕｎｇｅｒ（１９９３）第７８５頁（要約）、および第７９０頁に、このモデルを報告した。

Ｈａｒａｄａら「Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｉｍｐｒｏｖｅｓ Ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｃｈｒｏｎｉｃａｌｌｙ Ｉｓｃｈｅｍｉｃ Ｐｏｒｃｉｎｅ Ｈｅａｒｔｓ」、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．９４：６２３−６３０（１９９４年８月）は、１カプセル当たり１μｇの塩基性ＦＧＦを有する４〜５カプセルの形態での８μｇの塩基性ＦＧＦの膣外（膣外周囲）投与による、ヨークシャーブタにおける緩やかな冠状閉塞モデルでの冠状血流の増加および梗塞サイズの減少を開示する。これは、近位左前室間動脈（ＬＡＤ）ならびに第１の開放枝（ｆｉｒｓｔ ｔａｋｅｏｆｆ ｂｒａｎｃｈ）の前で左回旋動脈（ＬＣｘ）の近位端に設置されたアネロイド圧縮器の近位および遠位の両方に位置する。Ｈａｒａｄａの実験が表す目的が「新脈管形成を刺激することによって慢性心筋梗塞を緩和すること」（Ｈａｒａｄａ、第６２８頁）であるにもかかわらず、Ｈａｒａｄａは、新脈管形成を示し得なかった。さらに、Ｈａｒａｄａは、「ｂＦＧＦの最適用量および投与経路の長さ」は明白ではないと結論付けた。Ｈａｒａｄａ、第６２９頁。これとは別に、Ｌａｎｄａｕら「Ｉｎｔｅｒｐｅｒｉｃａｒｄｉａｌ ｂａｓｉｃ ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｉｎｄｕｃｅｓ ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ ｉｎ ａ ｒａｂｂｉｔ ｍｏｄｅｌ ｏｆ ｃｈｒｏｎｉｃ ｉｓｃｈｅｍｉａ」、Ａｍ．Ｈｅａｒｔ Ｊｏｕｒｎａｌ、１２９：９２４−９３１（１９９５）は、１日当たり１８０ｎｇのヒト組換え塩基性ＦＧＦ（１５４残基）を２．０〜４．３ｋｇのウサギの心嚢周囲空間に７〜２８日間にわたって投与することが、新たな心外膜の小脈管増殖を増加すること、ならびに、この効果は左心室肥大によって増加されることを開示する。Ｌａｎｄａｕにおいて使用される塩基性ＦＧＦの用量は、サイズが７０ｋｇの男性の場合、１日当たり２．９μｇで７〜２８日間、または総用量の塩基性ＦＧＦが２０．３μｇ〜８１．２μｇに対応する。Ｌｏｐｅｚら「Ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ ｐｅｒｉｖａｓｃｕｌａｒｌｙ ｄｅｌｉｖｅｒｅｄ ａＦＧＦ ｉｎ ａ ｐｏｒｃｉｎｅ ｍｏｄｅｌ ｏｆ ｃｈｒｏｎｉｃ ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ ｉｓｃｈｅｍｉａ」、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７４（Ｈｅａｒｔ Ｃｉｒｃ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．４３）：Ｈ９３０−Ｈ９３６（１９９８）は、ヨークシャーブタにおける、１４μｇの組換えヒトａＦＧＦムテイン（すなわち、ａＦＧＦのＳｅｒ−１１７がＳｅｒからＣｙｓに置換される）の脈管周囲送達による、心筋血流および完全な左心室機能の改善を開示する。このムテインは、近位左回旋動脈にわたる縫合で確保される酢酸エチレンビニル（ＥＶＡ）ポリマーのポーラスにおいて広く分布される。Ｌｏｐｅｚは、脈管周囲に送達されたａＦＧＦが、動物での心臓の妥協（ｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅｄ）領域における「休止期」および「迅速な調子の間」の両方での血流を改善したことを報告する。Ｌｏｐｅｚ、Ｈ９３４頁、第２欄。しかし、Ｌｏｐｅｚは、例えば、「血管拡張」または「脈管循環における改善」といった他の可能な原因（ｓｏｕｒｃｅ）を列挙して、増加した血流を新脈管形成に直接帰し得なかった。

最終的には、米国特許第４，２９６，１００号（１９８１年１０月２０日にＦｒａｎｃｏにより出願）は、梗塞形成の直後の１回の処置として、１００ｇの心臓組織当たり１０ｍｇ〜１ｇの純度９０％のウシＦＧＦ（下垂体抽出物）を投与することによる、患者における心筋梗塞の処置の方法を開示する。Ｆｒａｎｃｏに従って、「１００グラムの心臓当たり少なくとも１０μｇを使用して所望の効果を達成する」。Ｆｒａｎｃｏ、第１欄、６２〜６４行目。Ｆｒａｎｃｏは、ＦＧＦが種々の形態（心臓への直接投与、静脈内注射、皮下注射、筋肉内注射および経口摂取を含む）によって心臓に投与されることを開示する。Ｆｒａｎｃｏ、第２欄、６３〜６９行目。Ｆｒａｎｃｏはまた、その方法が梗塞のサイズ（創傷領域または永続的損傷の領域）を標準におけるサイズの４分の１へ減少し得ることを開示する。Ｆｒａｎｃｏ、表ＩＩＩ。Ｆｒａｎｃｏに従って、ＦＧＦの機能は、「心筋梗塞の後の持続的期間にわたって血流を増加する」ことである。Ｆｒａｎｃｏ、第１欄、４２〜４３行目。しかし、任意のＦＧＦ投与の急性の効果は、冠状血流を本質的に増加する血管拡張である。Ｆｒａｎｃｏは、１００ｇの心臓当たり１０μｇ〜１ｇのＦＧＦでの処置のような結果として、組織学的研究は「心臓における毛管領域での顕著な増加を何ら示さない」ことを明確に開示する。Ｆｒａｎｃｏ、第４欄１３〜１７行目。さらに、Ｆｒａｎｃｏは、このような大用量のＦＧＦの投与が身体での任意の未発見の腫瘍における新脈管形成効果を有するか否かの論点を示さなかった。

従って、新脈管形成を必要とする心臓の領域に新脈管形成を誘導するに効果的な量で、患者に対して新脈管形成因子の用量、および新脈管形成因子の１以上の用量を投与する方法を提供することが、本発明の目的である。標的部位での新脈管形成を誘導する一方、身体での他の所望されない部位で新脈管形成を誘導する危険性を減少する治療効果を提供する脈管形成因子を送達する用量および方法を提供することが、本願のさらなる目的である。

上記の参考文献および本明細書中に列挙される他の全ての参考文献は、明らかにその全体が本明細書中に援用される。

本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
（項目１） 薬学的に受容可能なキャリア中に有効量の脈管形成因子を含む薬学的組成物であって、該有効量の脈管形成因子が、約５ｎｇ〜約１３５，０００ｎｇ未満の範囲の該脈管形成因子である、薬学的組成物。
（項目２） 凍結乾燥された形態である、項目１に記載の薬学的組成物。
（項目３） 前記脈管形成因子が、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、血管内皮増殖因子−Ａ（ＶＥＧＦ−Ａ）、ＶＥＧＦ−Ｄ、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目１または２に記載の薬学的組成物。
（項目４） 前記脈管形成因子が、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目３に記載の薬学的組成物。
（項目５） 前記ＶＥＧＦ−Ａが、ヒトのＶＥＧＦ−Ａ121、ＶＥＧＦ−Ａ165、ＶＥＧＦ−Ａ189、またはＶＥＧＦ−Ａ206である、項目４に記載の薬学的組成物。
（項目６） 前記脈管形成因子が、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目４に記載の薬学的組成物。
（項目７） 前記ＦＧＦが、ＦＧＦ−２、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目６に記載の薬学的組成物。
（項目８） 前記ＦＧＦが、配列番号２、５または６のＦＧＦ−２である、項目７に記載の薬学的組成物。
（項目９） 前記脈管形成因子の酸化を阻止するために有効な量のキレート剤をさらに含む、項目２に記載の薬学的組成物。
（項目１０） 前記ＦＧＦ−２、あるいは前記脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインの酸化を阻止するために有効な量のキレート剤をさらに含む、項目９に記載の薬学的組成物。
（項目１１） 前記有効量のＦＧＦ−２が、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの範囲の前記脈管形成因子である、項目８に記載の薬学的組成物。
（項目１２） 心筋層において血管灌流を増加するための方法であって、該方法は、有効量の脈管形成因子を、灌流における増加が必要な該心筋層の領域に注射する工程を包含し、該有効量が、脈管形成因子の約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の範囲内である、方法。
（項目１３） 前記有効量の脈管形成因子が、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇのＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目１２に記載の方法。
（項目１４） 前記脈管形成因子が、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目１３に記載の方法。
（項目１５） 前記ＶＥＧＦ−Ａが、ヒトのＶＥＧＦ−Ａ121、ＶＥＧＦ−Ａ165、ＶＥＧＦ−Ａ189、またはＶＥＧＦ−Ａ206である、項目１４に記載の方法。
（項目１６） 前記脈管形成因子が、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目１４に記載の方法。
（項目１７） 前記ＦＧＦが、ＦＧＦ−２、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目１６に記載の方法。
（項目１８） 前記ＦＧＦ−２が、配列番号２、５または６のアミノ酸配列を有する、項目１７に記載の方法。
（項目１９） 心筋層において血管密度を増加するための方法であって、該方法は、有効量の脈管形成因子を、灌流における増加が必要な該心筋層の領域に注射する工程を包含し、該有効量が、脈管形成因子の約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の範囲内である、方法。
（項目２０） 前記有効量の脈管形成因子が、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇのＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目１９に記載の方法。
（項目２１） 患者の心臓において新脈管形成を誘導するための方法であって、該方法は、新脈管形成が必要な１以上の領域での該患者の心筋層に、有効量の脈管形成因子を直接注射する工程を包含し、該有効量の脈管形成因子が、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の該脈管形成因子である、方法。
（項目２２） 前記有効量の脈管形成因子が、前記脈管形成因子の５ｎｇ〜６７，５００ｎｇである、項目２１に記載の方法。
（項目２３） 前記患者がヒト患者である、項目２２に記載の方法。
（項目２４） 前記ヒト患者が冠状動脈障害（ＣＡＤ）または心筋梗塞（ＭＩ）の徴候を有する、項目２２に記載の方法。
（項目２５） 前記脈管形成因子が、ＰＤＦＧ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目２３に記載の方法。
（項目２６） 前記脈管形成因子が、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目２５に記載の方法。
（項目２７） 前記ＶＥＧＦ−Ａが、ヒトのＶＥＧＦ−Ａ121、ＶＥＧＦ−Ａ165、ＶＥＧＦ−Ａ189、またはＶＥＧＦ−Ａ206である、項目２６に記載の方法。
（項目２８） 前記脈管形成因子が、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目２６に記載の方法。
（項目２９） 前記ＦＧＦが、ＦＧＦ−２、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目２８に記載の方法。
（項目３０） 前記ＦＧＦ−２が、配列番号２、５または６のアミノ酸配列を有する、項目２９に記載の方法。
（項目３１） ３ヶ月までの間、ヒト心筋細胞においてＦＧＦ−２およびＶＥＧＦの産生を刺激するための方法であって、該方法は、新脈管形成が必要な１以上の領域での患者の心筋層に、有効量の脈管形成因子を直接注射する工程を包含し、該有効量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の該脈管形成因子である、方法。
（項目３２） 該有効量の脈管形成因子が６．７５μｇ〜６７．５μｇの該脈管形成因子である、項目３１に記載の方法。
（項目３３） 冠状動脈疾患についてヒト患者を処置するための方法であって、該方法は、該疾患について処置が必要な１以上の領域での心筋層に、有効量の脈管形成因子を直接注射する工程を包含し、該有効量の脈管形成因子が、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の該脈管形成因子である、方法。
（項目３４） 前記有効量の脈管形成因子が、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの該脈管形成因子である、項目３３に記載の方法。
（項目３５） 前記脈管形成因子が、ＰＤＦＧ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目３４に記載の方法。
（項目３６） 前記脈管形成因子が、ＶＥＧＦ‐Ａ、ＶＥＧＦ‐Ｄ、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそれらのフラグメントまたはムテインである、項目３５に記載の方法。
（項目３７） 前記ＶＥＧＦ−Ａが、ヒトのＶＥＧＦ−Ａ121、ＶＥＧＦ−Ａ165、ＶＥＧＦ−Ａ189、またはＶＥＧＦ−Ａ206である、項目３６に記載の方法。
（項目３８） 前記脈管形成因子が、ＦＧＦ、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目３７に記載の方法。
（項目３９） 前記ＦＧＦが、ＦＧＦ−２、あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである、項目３８に記載の方法。
（項目４０） 前記ＦＧＦがＦＧＦ−２である、項目３９に記載の方法。
（項目４１） 前記ＦＧＦ−２が、配列番号２、５または６のアミノ酸配列を有する、項目４０に記載の方法。
（発明の要旨）
出願人は、冠状閉塞の下流の心筋層に注射される場合、特定の用量の脈管形成因子が、休止する局所での灌流の増加、局所心機能における改善、および増加した血管分布によって反映されるような治療的応答を有する心筋層の部分を提供したことを予期せず見出した。特に、出願人は、単一の注射としてかまたは必要な領域における一連の注射として心筋層に直接投与された場合、単位用量（すなわち、約５ｎｇ／用量〜１３５，０００ｎｇ未満／用量）の脈管形成因子が、投与の領域における心筋層での冠状新脈管形成を誘導するが、身体でのほかの領域において十分に希釈して新脈管形成誘導の任意の危険性を最小化することを見出した。本発明の脈管形成因子の単位用量が一連の注射として投与される場合、この一連の注射は、同一日での単一の手順としてかまたは必要とされる連続する日数もしくは交互の日数での一連の注射として投与される。しかし、投与される脈管形成因子の累積の用量は、代表的には、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ（１３５μｇ）未満、より代表的には５ｎｇ〜６７，５００ｎｇ（６７．５μｇ）である。従って、１つの局面において、本発明は、薬学的に受容可能なキャリア中に約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満（好ましくは、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇ）の脈管形成因子を含む、単位用量の薬学的組成物（「薬学的組成物」）に関する。別の局面において、本発明は、薬学的に受容可能なキャリア中に約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満（好ましくは、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇ）の脈管形成因子を含む、単位用量の薬学的組成物（「単位用量の組成物」）に関する。

なお別の局面では、本発明は、新脈管形成を誘導するか、または局所的灌流を増大させるか、または心臓機能を高めるか、または血管密度を増大させるような処置の必要がある患者の、新脈管形成を誘導するための方法、または局所的灌流を増大させるための方法、または心臓機能を高めるための方法、または血管密度を増大させるための方法に関し、この方法は、それぞれ、このような新脈管形成、または局所的灌流の増大、または心臓機能の高まり、または血管密度の増大の必要がある心筋層の領域に単位投薬量の脈管形成因子を、単一の注射としてまたは一連の注射として直接注射する工程を包含する。単位投薬量を注射する工程が、単一の注射として、または好ましくは、同じ日に一連の注射として行われることもまた上記の方法の範囲内である。上記の方法を単一の注射または一連の注射を用いて行うか否かによらず、１以上の注射の間に新脈管形成が必要な心筋層の領域へと注射される累積量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ（１３５μｇ）未満である。

本発明の単位用量を患者の体重１キログラム（ｋｇ）あたりのμｇの脈管形成因子として表現することもまた適切である。このように表現する場合、本発明による心筋内（ＩＭｃ）注射のための脈管形成因子の用量は、患者の体重１ｋｇあたり（本明細書中以下、「μｇ／ｋｇ」）約０．０６μｇ脈管形成因子〜約１０．０μｇ脈管形成因子の範囲にわたる。より代表的には、脈管形成因子の用量は、０．０６μｇ／ｋｇ〜６．０μｇ／ｋｇの範囲にわたる。しかし、脈管形成因子は、本発明の方法において患者の心筋層に直接注射されるので、患者の体重に関連した投薬量における代表的な希釈効果は最少であり、同じ量の脈管形成因子の全身投与または冠状動脈内（ｉｎｔｒａｃｏｒｏｎｏｒｙ）投与と比較した場合に特に最少である。

新脈管形成が局所的灌流を増大させ、そして冠動脈の血管分布（ｃｏｒｏｎａｒｙ ｖａｓｃｕｌａｒｉｔｙ）を増加させることが所望される２つの疾患は、冠動脈疾患（ＣＡＤ）および心筋梗塞（ＭＩ）である。従って、別の局面では、本発明はまた、冠動脈疾患（ＣＡＤ）についての患者を処置するための方法に関し、この方法は、単位投薬量の脈管形成因子を、ＣＡＤの症状を発現する心筋層の部分に単一の注射としてまたは一連の注射として直接注射する工程を包含し、単位投薬量は、新脈管形成を誘導するため、または局所的灌流を増大させるため、またはピーク負荷でのＤＳＥによる心筋機能を高めるため、または上記症状を発現する心筋層の領域における血管分布を増大させるために有効である量の脈管形成因子（約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満）を含む。別の局面では、本発明は、心筋梗塞（ＭＩ）についての患者を処置するための方法に関し、この方法は、単位投薬量の脈管形成因子を、上記ＭＩの結果として冠状動脈不全の症状を発現する心筋層の領域に単一の注射としてまたは一連の注射として直接注射する工程を包含する。上記の方法では、上記心筋梗塞を処置する際に有効である単位用量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の脈管形成因子／単位用量であり、より代表的には５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの脈管形成因子／単位用量である。

単位用量は代表的に、１日に心筋層内に注射されるが、単位用量の脈管形成因子を注射する工程が、必要に応じて、連続した日に、または１日おきに、または毎週、または毎月、行われるかまたは反復されることは本発明の範囲内である。上記の方法が反復されるか否かにかかわらず、任意の単一の介入の間に新脈管形成の必要な心筋層の領域に注射される累積量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の上記脈管形成因子である。

本発明の単位用量または薬学的組成物において使用するために適切な脈管形成因子は、以下からなる群より選択される：血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ−Ａ）、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−Ｄ、トランスフォーミング増殖因子−β（ＴＧＦ−β１）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）またはそれらの脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテイン。好ましくは、脈管形成因子は、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦまたはそれらの脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。より好ましくは、脈管形成因子は、ＦＧＦ（例えば、ＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２またはＦＧＦ−５）またはそれらの脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。最も好ましくは、脈管形成因子は、ＦＧＦ−２、またはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。

本発明の方法によって提供される治療効果の持続時間は、全く意外である。特に、０．０６μｇ／ｋｇ（１，３５０ｎｇの総用量）の組換えウシＦＧＦ−２（配列番号２）という単一単位用量が注射によって、左回旋冠動脈の９０％閉塞を有する（すなわち、冬眠心筋のモデルを提供する）ミニブタ（ｍｉｎｉｓｗｉｎｅ）の心筋層に直接投与された場合、冬眠心筋組織における安静時平均血流（ＭＢＦ）、壁運動スコア指数（ＷＭＳＩ）、血管灌流、心筋機能および血管密度の改善が見られ、この改善は、６ヶ月間という長期の測定期間の間、継続した。例として、安静時ＭＢＦは、６４±０．０４％の非虚血性中隔流（ｓｅｐｔａｌ ｆｌｏｗ）というベースラインから、処置後１ヵ月に７１±０．０５％（ベースラインに対してｐ＜０．０５）へと増大し、そして処置後３ヵ月に７６±０．０６（ベースラインに対してｐ＜０．０５）へと増大した。処置後６ヵ月に、安静時ＭＢＦは、ベースラインでの非虚血性中隔流の６１．３±４．４％から、８２．８±３．１％へと増大した。収縮性予備力の尺度として受け入れられている別の試験では、（ＬＣｘの９０％狭窄後）ＬＣｘ領域について安静時に測定された壁の運動スコア指数（ＷＭＳＩ）は、２．４±０．２から処置後６ヶ月に２．２±０．２（ベースラインに対してｐ＝０．０８）へと改善された。同様に、ＬＣｘ領域（ＬＣｘの９０％狭窄後）についてのピーク負荷で測定された壁運動スコア指数（ＷＭＳＩ）は有意に改善され、処置後６ヵ月で２．２±０．４から１．８±０．３へと減少した（ベースラインに対してｐ＝０．０５）。壁運動スコア指数におけるこれらの減少は、虚血における減少と一致する。対照的に、脈管形成因子についてのビヒクルで処置された患者（ミニブタ）は、処置後６ヶ月の期間の間のどの時点でも、安静時ＭＢＦにおいて有意な変化を示さず、そしてそれらの安静時ＷＭＳＩにおいても負荷ＷＭＳＩにおいても有意な変化を示さなかった。

さらに、冬眠心筋の上記のブタモデルにおける単一単位用量のＦＧＦ−２（０．０６μｇ／ｋｇ、すなわち、１．３５μｇ）の心筋内（ＩＭｃ）注射後、正規化された灌流（これは、灌流における変化の％として報告される）は、生理食塩水についてのそれぞれ、３ヶ月および６ヶ月での６％および１３％の増加と比較して、それぞれ、３ヶ月および６ヶ月で、１８％から３８％へと測定期間を通して増加し続けた。図４を参照のこと。本発明の単位用量の３つの異なる実施形態（すなわち、０．０６μｇ／ｋｇ（１．３５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「低」用量）；０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「中」用量）；６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「高」用量））を、冬眠心筋（ＬＣｘの９０％閉塞）のブタモデルにＩＭｃ注射し、そしてアメロイド（ａｍｅｒｏｉｄ）モデル（ＬＣｘの１００％閉塞）における「中」用量の冠状動脈内（ｉｎｔｒａｃｏｒｏｎａｒｙ）（ＩＣ）注射に対して比較した場合、全てのＩＭｃ注射は、３ヶ月で、ＩＣ注射によって生成された灌流よりも優れた、正規化された灌流を生じた。図７および図８。驚くべきことに、中用量は、投与後３ヶ月で、低用量または高用量のいずれによって生成される灌流よりも１０％大きな正規化された灌流を生じた。図７。

ドブタミン（ｄｏｌｂｕｔａｍｉｎｅ）負荷心エコー図（ＤＳＥ）によって測定した場合、心筋機能は、本発明の３つの異なる単位用量（低い、中程度および高い）の各々の、冬眠心筋のブタモデルへの注射後３ヶ月および６ヶ月で、アメロイドブタモデルにおけるプラシーボの注射および「中」用量のＩＣ注射と比較して、心筋機能（より少ない数）において統計的に有意な増加を示した。図５および図１１を参照のこと。冬眠心筋のブタモデルへの単一単位用量のＦＧＦ−２（１．３５μｇ）のＩＭｃ注射は、生理学的食塩水で処置した心筋層の同じ一定の容量における毛細血管の数（１７，０００）に対する、ＦＧＦ−２処置した虚血性心筋層の一定の容量における毛細血管の数（４４，０００）によって測定した場合、投与後６ヵ月に処置した冬眠心筋の血管分布における統計的に有意な（ｐ＜０．０５）増加を生じた。図６を参照のこと。

最終的に、ＦＧＦ−２でＩＣまたはＩＭｃで処置した心筋層の虚血性領域由来の心筋組織のウェスタンブロット分析は、ＶＥＧＦ（ＶＥＧＦ₁₆₅として測定される）およびＦＧＦ−２の有意なアップレギュレーションが存在することを示し、これは、ビヒクル単独で処置した領域に対して、観察期間の最後（すなわち、注射後３ヶ月）でさえも検出可能であった。図１０を参照のこと。驚くべきことに、ＦＧＦ−２で処置した虚血性細胞は、統計的に有意な量のＶＥＧＦおよびＦＧＦ−２の両方を処置後３ヶ月で産生した。より驚くべきことに、最大濃度（２９０ｐｇ／ｍｌよりも高い）の細胞内ＦＧＦ−２が、「中」用量（０．６μｇ／ｋｇ、すなわち、１３．５μｇ）の配列番号２のＦＧＦ−２のＩＭｃで３ヶ月前に処置された虚血性心筋組織において観察された。図１０を参照のこと。対照的に、「高」用量（６．０μｇ／ｋｇ、すなわち、１３５μｇ）のＦＧＦ−２は、匹敵する細胞内濃度のＶＥＧＦ（約１００ｐｇ／ｍｌ）を提供するとはいえ、約１６５ｐｇ／ｍｌである濃度の細胞内ＦＧＦ−２しか提供しなかった。図１０を参照のこと。従って、「中」用量のＦＧＦ−２は、ＩＭｃ投与された場合に、処置された虚血性心筋細胞が内因性ＶＥＧＦおよび内因性ＦＧＦ−２を産生することを処置後３ヶ月にわたって刺激するだけでなく、これらの細胞が、「高」用量で処置された細胞によって産生される濃度のほぼ２倍の濃度のＦＧＦ−２を産生することをも刺激する。本明細書中に提供されるこのデータおよび他のデータを考慮して、本発明者らは、予想外に優れた量の細胞内ＦＧＦ−２の産生が、約０．３μｇ／ｋｇ（または６．７５μｇ）〜約３．０μｇ／ｋｇ（または６７．５μｇ）の範囲にわたる用量のＦＧＦ−２のＩＭｃ注射によって刺激されると予測する。（６ヶ月でのデータは、まだ利用可能でない。）ＶＥＧＦおよびＦＧＦ−２の両方の存在は、灌流、心筋機能および血管透過性において増大を引き起こす機構を示唆する。従って、別の局面では、本発明は、虚血性心筋組織におけるＶＥＧＦおよびＦＧＦ−２の細胞内濃度を増大させるための方法に関し、この方法は、虚血性心筋組織に、単位用量の脈管形成因子を注射する工程を包含する。好ましくは、脈管形成因子はＦＧＦであり；より好ましくは、ＦＧＦ−２である。

本発明の方法は、処置後６ヶ月までにわたって、種々のコントロール群と比較した場合、心臓機能を改善することが見出された。特に、ピーク負荷正規化局所機能スコアにおける変化の％は、ＩＭｃ投与された群について処置後３ヶ月および６ヵ月後に減少する（このことは、改善された心臓機能を示す）ことが見出され、そしてＩＣ群およびプラシーボ群について増大する（このことは、機能の減少を示す）ことが見出された。図１１。さらに、正規化された機能スコアにおける最大の減少は驚くべきことに、「低」用量群で生じ、そしてさらにより驚くべきことに、減少しつづける機能スコアによって、局所的心筋機能は、低用量での処置後６ヶ月まで改善され続けることが示された。図１１。
多くの脈管形成因子（例えば、酸性ＦＧＦ（ａＦＧＦまたはＦＧＦ−１）、塩基性ＦＧＦ（ｂＦＧＦまたはＦＧＦ−２）、およびＶＥＧＦ）は、グリコサミノグリカン（ｇｌｙｃｏｓｏａｍｉｎｏｇｌｙｃａｎ）結合タンパク質である。グリコサミノグリカン（「プロテオグリカン」または「ムコ多糖」としても公知）の存在は、脈管形成活性およびこれらの脈管形成因子のＡＵＣを最適化する。結果として、単位投薬量のＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−Ｄまたはそれらの脈管形成フラグメントおよびムテインは、必要に応じて、グリコサミノグリカン（例えば、ヘパリン）のＩＶ投与の２０分間以内に投与される。しかし、本発明者らの経験では、アミノグリカンの存在は、単位用量の脈管形成因子（例えば、ＦＧＦ−２）が本発明の方法に従ってＩＭｃ投与された場合、効力のためには必要ではなかった。

図１は、ヒトにおいて２０分間の期間にわたるＩＣ注入によって投与された６つの異なる用量のｒＦＧＦ−２についての、時間（時間）に対する平均組換えウシＦＧＦ−２血漿濃度のプロットである。図１におけるｒＦＧＦ−２の６つの用量は、０．３３μｇ／ｋｇ、０．６５μｇ／ｋｇ、２μｇ／ｋｇ、６μｇ／ｋｇ、１２μｇ／ｋｇおよび２４μｇ／ｋｇの除脂肪体重（ＬＢＭ）である。 図２は、６つの用量のｒＦＧＦ−２についての図１についてのｐｇ・ｈｒ／ｍｌの各個々の患者のｒＦＧＦ−２曲線下面積（ＡＵＣ）のプロットであり、そしてＩＣ注入後の全身ｒＦＧＦ−２曝露の用量線形性を示す。 図３は、「ｒＦＧＦ−２注入前の分」においてヘパリン投与の時間の関数として個々のヒト患者のｒＦＧＦ−２用量で正規化したＡＵＣのプロットであり、そしてｒＦＧＦ−２ ＡＵＣに対するヘパリン投与のタイミングの影響を示す。ｒＦＧＦ−２は、組換えウシＦＧＦ−２であった。 図４は、以下の３ヵ月後および６ヶ月後に陽子射出断層撮影法（ＰＥＴ）によって測定した場合の、冬眠心筋のブタモデルにおける正規化された心筋灌流（ベースラインからの変化の％として報告される）を比較する棒グラフである：偽投与；生理食塩水；および１．３５μｇのｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含む単位用量。 図５は、以下の３ヵ月後および６ヶ月後にベースラインでの、冬眠心筋のブタモデルにおけるドルブタミンドブタミン負荷心エコー図によって心筋機能を比較する棒グラフである：偽投与；生理食塩水；および１．３５μｇのｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含む単位用量。 図６は、以下の６ヵ月後での、冬眠心筋のブタモデルにおける（ＬＣｘにおける９０％閉塞から下流の）虚血性心筋組織における毛細血管密度（血管数）を比較する棒グラフである：偽投与；生理食塩水；および１．３５μｇのｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含む単位用量。 図７は、以下を投与した３ヵ月後に陽子射出断層撮影法（ＰＥＴ）によって測定された場合の、冬眠心筋のブタモデルにおいて正規化された心筋灌流（ベースラインからの変化の％として報告される）を比較する、棒グラフである：生理食塩水（プラシーボ）；０．０６μｇ／ｋｇ（１．３５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「低」）；０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「中」）；６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「高」）。棒グラフは、正規化された灌流における最大の変化の％（すなわち、２７．５％の増加）が、「中」用量について生じ、「低」用量および「高」用量は、それぞれ、１７．５％および１７％という匹敵する変化を示すことを示す。図７におけるデータは、２つの別の実験（明るい棒および暗い棒）の結果であり、「ｕｌｄ」（超低用量）と称されるプラシーボは、「低」用量についてのプラシーボであり、明るく着色した棒として示す。 図８は、０．６μｇ／ｋｇ ｒＦＧＦ−２の冠状動脈内（ＩＣ）注入後１ヶ月および３ヶ月でのアメロイド（ＬＣｘの１００％閉塞）心筋層のブタモデルにおける正規化された心筋灌流（ＰＥＴによって測定された場合）における変化の％を、以下の心筋内（ＩＭｃ）注射後１ヶ月および３ヶ月での冬眠心筋（ＬＣｘの９０％閉塞）のブタモデルにおける正規化された心筋灌流における変化％に対して比較する棒グラフである：生理食塩水（プラシーボ）；０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「中」）；６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）を含有する単位用量（「高」）。この棒グラフは、正規化された灌流における最大の増加％が、処置後３ヶ月で「中」用量のｒＦＧＦ−２ ＩＭｃについて生じたことを示す。「高」用量は、予想外に、「中」用量について達成されたよりもより低い増大を正規化された灌流において示した。 図９は、０．６μｇ／ｋｇ（「中」用量）または６．０μｇ／ｋｇ（「高」用量）のｒＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＭｃで処置した、冬眠心筋のブタモデルについての血管密度（処置された心筋層の指定された容量における平均血管数）を、６．０μｇ／ｋｇのｒＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＣで処置したアメロイドブタモデル（ＬＣｘの１００％閉塞）に対して、生理食塩水ＩＭｃ（プラシーボ）での処置に対して、比較する棒グラフである。この結果は、血管密度における最大の増大が、ＩＭｃ投与された「中」用量（０．６μｇ／ｋｇまたは１３．５μｇのｒＦＧＦ−２）によって生じたことを示す。 図１０は、アメロイドブタモデル（ＬＣｘの１００％閉塞）における０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ）の配列番号２のＦＧＦ−２でのＩＣ、または冬眠心筋（ＬＣｘの９０％閉塞）のブタモデルのビヒクルもしくは０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ）の配列番号２のＦＧＦ−２（「中」用量）もしくは６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ）の配列番号２のＦＧＦ−２（「高」用量）での処置後３ヶ月における虚血性心筋細胞におけるＶＥＧＦ（ＶＥＧＦ₁₆₅として測定）およびＦＧＦ−２の細胞内濃度（ｐｇ／ｍｌ）を比較する、棒グラフである。驚くべきことに、ＦＧＦ−２で処置した虚血性細胞は、統計的に有意な量のＶＥＧＦおよびＦＧＦ−２の両方を処置後３ヶ月まで産生した。より驚くべきことに、最大濃度の細胞内ＦＧＦ−２は、「中」用量のＩＭｃで処置された細胞によって誘導された。 図１１は、アメロイドブタモデルにおけるプラシーボもしくは「中」用量（０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ））のＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＣでの、または冬眠心筋のブタモデルにおける「低」用量（０．０６μｇ／ｋｇ（１．３５μｇ））のＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＭｃ、もしくは「中」用量（０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ））のＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＭｃ、もしくは「高」用量（６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ））のＦＧＦ−２（配列番号２）ＩＭｃでの、処置後３ヶ月および６ヶ月でのＤＳＥによるピーク負荷正規化局所機能スコアにおける変化の％を比較する、棒グラフである。図１１は、ピーク負荷正規化局所機能スコアにおける変化の％が、ＩＭｃ投与群について処置後３ヵ月および６ヶ月で減少した（これは、より良好な機能を示す）ことを示し、そしてピーク負荷正規化局所機能スコアにおける変化の％は、ＩＣ群およびプラシーボ群について増大した（これは、減少している機能を示す）。さらに、正規化された機能スコアにおける最大の減少は、「低」用量群について生じ、そして驚くべきことに、減少している機能スコアによって、処置後６ヶ月まで機能が改善され続けていることを示した。

（発明の詳細な説明）
本発明は、冠状動脈疾患（ＣＡＤ）の症状を示す患者のヒト臨床試験および２つの冠状不全のブタモデルにおいて種々の型で組換え脈管形成因子を投与することによって生成される効果の比較試験に基づく。ブタの心臓は、ヒトの心臓と特に関連した型であると考えられている。なぜなら、ヒト冠状循環およびその天然の側副循環が少ないことが似ているからである。Ｂａｔｔｌｅｒら「Ｉｎｔｒａｃｏｒｏｎａｒｙ Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｅｎｈａｎｃｅｓ Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ ｉｎ Ｉｎｆａｒｃｔｅｄ Ｓｗｉｎｅ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ」ＪＡＣＣ、２２（７）：２００１−６（１９９３年１２月）２００２頁、ｃｏｌ．１を参照のこと（「心筋虚血のイヌモデルは、ブタモデルとは対立して天然に存在する側副循環の豊富さに起因して批判され、このブタモデルは、その相対的に少ない天然の冠状循環およびヒト冠状循環に対するその類似さにおいて「優れて」いる。」）。使用される１つの動物モデルは、冬眠心筋のブタモデルであった。このモデルは、左の回旋状冠状動脈（ＬＣｘ）の近位末端上に水圧閉塞器（ｏｃｃｌｕｄｅｒ）を外科的に配置することによって作製された。閉塞部に対して遠位に、９０％で閉塞を維持するために閉塞を連続的にモニターする包埋された流量プローブが配置された。冬眠心臓モデルは、冠状動脈疾患に特に関連したモデルである。心筋は、健康、冬眠または死として分類することができた。死組織は、死んでいないが損傷しており、収縮せず、そしてたとえ適切に血を供給されてももはや収縮し得ない組織である。冬眠組織は、収縮していない筋組織であるが、血を適切に再供給されると収縮可能である組織である。健康な心臓組織は、強い排出と共同する強い電気的シグナルによって同定される。「死んだ心臓組織または疾患の心臓組織は、機能不全の排出（すなわち、健康な組織のものと反対の方向の排出）と共同する弱い電気的シグナルによって同定される。虚血心臓組織、または冬眠もしくは気絶の心臓組織は、欠陥した排出と共同する強い電気シグナルによって同定される」。米国特許第５，８９７，５２９号（Ｐｏｎｚｉ）（これは、１９９９年４月２７日発行）を参照のこと。冬眠組織の診断は、重要である。なぜなら、一旦閉塞が取り除かれると、正常な機能の迅速な回復が存在すると広く考えられているからである。米国特許第５，７４３，２６６（Ｌｅｖｅｎｅ）（１９９８年４月２８日発行）を参照のこと。従って、心筋の冬眠モデルは、冠状動脈疾患（ＣＡＤ）および／または慢性狭心症（ここで、１つ以上の冠状血管は、部分的に閉塞されている）を有するヒト患者に起こることに類似している。
ブタアメロイド（ａｍｅｒｏｉｄ）モデルにおいて、アメロイド圧迫器（これは、その内部表面に吸湿性物質を有するドーナツ様のバンドまたはリングである）が、ブタのＬＣｘの近位末端の周辺に配置される。この吸湿性物質は、徐々に膨張し、そして１０日間〜３週間に動脈の１００％の閉塞をもたらす。冬眠モデル（ここで、閉塞の割合は、水圧的に制御可能であり、一貫しそして確実性である）とは異なり、アメロイドモデルは、一貫した制御を欠く。同様に、アメロイドモデルにおける完全な閉塞は、梗塞および広範で自発的な側副形成を導き、これは、休止状態において正常に戻る厄介な（ｍｅａｎ）血流を引き起こし、特定の量の側副形成が外因性に投与される脈管形成因子に帰すことをより困難にする。従って、アメロイドモデルは、冬眠心筋モデルのようなストリンジェントなモデルではない。さらに、アメロイドモデルによって提供される１００％の閉塞は、このアメロイドモデルを心筋梗塞により類似させ、ここで、１つ以上の冠状動脈の１００％閉塞が存在する。
上記のモデルを用いて、出願人は、脈管形成因子の用量（すなわち、約５ｎｇ／用量から１３５，０００ｎｇ／用量未満）（すなわち、単位用量）は、単一注射としてかまたは連続注射として心筋の虚血領域に直接投与される場合、投与領域の心筋において冠状新脈管形成を誘導するが体内のいずれかで十分に希釈されて新脈管形成を誘導することのいずれの危険性も最小化するようになるということを発見した。より代表的には、患者の心筋に投与される累積的な脈管形成因子の量は、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの脈管形成因子である。従って、１つの局面において、本発明は、薬学的に受容可能なキャリア中に約５ｎｇから１３５，０００ｎｇ未満（好ましくは、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇ）の脈管形成因子を含む単位用量の薬学的組成物（「単位用量」）に関する。

本明細書中に使用される場合、用語「新脈管形成」または「冠状新脈管形成」は、冠状循環において側副として作用する毛細血管から細動脈の範囲のサイズである新規血管の形成を意味する。本発明において、新脈管形成は、心筋灌流における変化を評価する当該分野で受け入れられている１つ以上の指標、ドブタミン（ｄｏｌｂｕｔａｍｉｎｅ）負荷超音波心臓検査図によって測定される機能、および毛細血管密度を用いて測定された。
本明細書中に使用される場合、用語「脈管形成因子」は、以下：ＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＴＧＦ−β１、ＦＧＦからなる群から選択されるメンバー、またはこれらの脈管形成的に活性なムテインもしくはフラグメントを意味する。好ましくは、脈管形成因子は、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−ＤもしくはＦＧＦまたはこれらの脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。より好ましくは、脈管形成因子はＦＧＦである。最も好ましくは、脈管形成因子はＦＧＦ−２またはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。
句「脈管形成的に活性なフラグメント」は、それが由来する親分子の脈管形成活性の少なくとも８０％を示す、タンパク質またはポリペプチドのフラグメントの脈管形成因子を意味する。
句「脈管形成的に活性なムテイン」は、本明細書中に使用される場合、以下：１２のｇａｐオープンペナルティ、および１のｇａｐ伸長ペナルティ、の検索パラメーターを用いるアフィンｇａｐ検索を使用するＭＳＰＲＣＨプログラム（Ｏｘｆｏｒｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ）で実行されるように、Ｓｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎホモロジー検索アルゴリズム（Ｍｅｔｈ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．７０：１７３−１８７（１９９７））によって決定される場合に、以下：ＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＴＧＦ−β１、およびＦＧＦからなる群から選択される任意の天然に存在する脈管形成因子に対して６５％の配列同一性（ホモロジー）を有し、そして少なくとも６５％の配列同一性を有する天然に存在する脈管形成因子の脈管形成活性の少なくとも８０％を保持する、単離および精製された、組換えタンパク質または組換えポリペプチドを意味する。好ましくは、脈管形成的に活性なムテインは、天然に存在する脈管形成因子に対して、少なくとも７５％、より好ましくは少なくとも８５％、そして最も好ましくは少なくとも９０％の配列同一性を有する。周知でありホモロジー／同一性スキャンのアルゴリズムプログラムを慣用的に使用される他のものとしては、ＰｅａｒｓｏｎおよびＬｉｐｍａｎ、ＰＮＡＳ ＵＳＡ、８５：２４４４−２４４８（１９８８）；ＬｉｐｍａｎおよびＰｅａｒｓｏｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２２２：１４３５（１９８５）；Ｄｅｖｅｒｅａｕｘら、Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、１２：３８７−３９５（１９８４）；またはＡｌｔｓｃｈｕｌら、Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２１５：４０３−４１０（１９９０）のＢＬＡＳＴＰ、ＢＬＡＳＴＮもしくはＢＬＡＳＴＸアルゴリズムが挙げられる。これらのアルゴリズムを用いるコンピューター化されたプログラムがまた利用可能であり、そして以下が挙げられるがこれらに限定されない：ＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡおよびＴＦＡＳＴＡ（これらは、Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ Ｇｒｏｕｐ（ＧＣＧ）パッケージ、第８版、Ｍａｄｉｓｏｎ ＷＩ，ＵＳＡから市販される）；およびＩｎｔｅｌｌｅｇｅｎｅｔｉｃｓ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ ＣＡによるＰＣ／Ｇｅｎｅプログラム中のＣＬＵＳＴＡＬ。好ましくは、配列同一性の割合は、プログラムによって決定されるデフォルトパラメーターを用いることによって決定される。
句「配列同一性」は、本明細書中に使用される場合、特定化されたムテインのアミノ酸配列の連続セグメントが天然に存在する脈管形成因子のアミノ酸配列と整列されて比較される際に、そのムテイン配列内で同様に配置されたことが見出される同じアミノ酸の割合をいうことが意図される。

ムテイン中のアミノ酸配列同一性の割合を考慮する場合、同じアミノ酸残基の位置は、保存的アミノ酸置換（これは、タンパク質またはタンパク質機能の特性に影響を与えない）の結果として参照タンパク質とは異なり得る。これらの場合、配列同一性の割合は、保存的置換されたアミノ酸において類似性を取るために上へ調節され得る。このような調節は、当該分野で周知である。例えば、ＭｅｙｅｒｓおよびＭｉｌｌｅｒ「Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｐｐｌｉｃ．Ｂｉｏ．Ｓｃｉ．、４：１１−１７（１９８８）を参照のこと。

本発明の「脈管形成的に活性なムテイン」の脈管形成因子を調製するために、当該分野で公知であり、そして／またはＧｉｌｍａｎら、Ｇｅｎｅ、８：８１（１９７９）もしくはＲｏｂｅｒｔｓら、Ｎａｔｕｒｅ、３２８：７３１（１９８７）に教示されるような、部位指向型変異誘発に関する標準的な技術を使用する。１つの部位指向型変異誘発技術を用いて、１つ以上の点変異が、１つ以上の保存的アミノ酸置換または内部欠失を導入する。保存的アミノ酸置換は、通常の電荷、疎水性／親水性、および／または置換されるアミノ酸の立体的容積を保存する置換である。例として、以下の群の間の置換は保存的である：Ｇｌｙ／Ａｌａ、Ｖａｌ／Ｉｌｅ／Ｌｅｕ、Ｌｙｓ／Ａｒｇ、Ａｓｎ／Ｇｌｎ、Ｇｌｕ／Ａｓｐ、Ｓｅｒ／Ｃｙｓ／Ｔｈｒ、およびＰｈｅ／Ｔｒｐ／Ｔｙｒ。天然に存在する脈管形成因子の配列由来のかなりの（３５％まで）バリエーションは生じるタンパク質またはポリペプチドが上記に特定される制限内の脈管形成活性を保持する限り、許容される。

システイン枯渇ムテインは、本発明の範囲内のムテインである。これらのムテインは、上記のような部位指向型変異誘発を用いてか、または米国特許第４，９５９，３１４号（「’３１４特許」）、題名「Ｃｙｓｔｅｉｎｅ−Ｄｅｐｌｅｔｅｄ Ｍｕｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ」に記載される方法に従って、構築される。この‘３１４特許は、生物学的活性および置換の効果を決定する方法を開示する。システイン枯渇は、ジスルフィド形成に関与しない２つ以上のシステインを有するタンパク質において有用である。
本発明の薬学的組成物および単位用量中の脈管形成因子のうちの１つは、ＰＤＧＦである。ＰＤＧＦは、３つの二量体で脈管形成的に活性なタンパク（ＰＤＧＦ−ＡＡ、ＰＧＤＦ−ＡＢおよびＰＧＤＦ−ＢＢ）のファミリーであり、ここで、別々の遺伝子は、それぞれ、Ａ鎖およびＢ鎖をコードする。ＰＤＧＦレセプターα型（ＰＤＧＦＲ−α）は、ＰＤＦ二量体のＡ鎖またはＢ鎖の両方を高い親和性で結合し、一方、ＰＤＧＦレセプターβ型（ＰＤＧＦ−β）は、Ｂ鎖のみを結合する。全てのＰＤＧＦは、インビボにおいて脈管形成的に活性である。Ｃａｒｍｅｌｉｅｔら、「Ｖａｓｃｕｌａｒ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｓｉｇｈｔｓ」Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔｅｒｎａｔｌ．、５３：１５１９−１５４９（１９９８）；Ｒｉｓａｕら「Ｐｌａｔｅｌｅｔ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｉｓ ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ｉｎ ｖｉｖｏ」Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ、７：２６１−２６６（１９９２）；Ｍａｒｔｉｎｓら「Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ＰＤＧＦ−ＢＢ ｏｎ ｔｈｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ ａｆｔｅｒ ａｃｕｔｅ ａｒｔｅｒｉａｌ ｏｃｃｌｕｓｉｏｎ」１０：２９９−３０６（１９９４）；ならびにＢｒｏｗｎら「Ｐｌａｔｅｌｅｔ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ＢＢ ｉｎｄｕｃｅｓ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｓｃｕｌａｒ ａｎａｓｔｏｍｏｓｅｓ ｉｎ ｖｉｖｏ」ＰＮＡＳ ＵＳＡ、９２：５９２０−５９２４（１９９５）（これらは、本明細書中にその全体が参考として本明細書によって援用される）を参照のこと。前または後のいずれかに本明細書中に引用される全ての他の参考文献は、その全体が本明細書中に参考として明確に援用される。２１１アミノ酸残基のヒトＰＤＧＦ Ａ鎖前駆体のＤＮＡ配列およびアミノ酸配列は、当該分野で公知である。Ｈｅｄｌｉｎらに対する米国特許第５，２１９，７５９号、題名「Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ ＰＤＧＦ Ａ−ｃｈａｉｎ Ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ ａｎｄ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｖｅｃｔｏｒｓ」（これは、１９９３年６月１５日発行）（「’７５９特許」）の図１を参照のこと。１２５残基の成熟ＰＤＧＦ Ａ鎖のアミノ酸配列は、’７５９特許の図１の残基８７−２１１に対応する。’７５９特許の図２は、１９６アミノ酸残基のみを有する改変体ＰＤＧＦ Ａ鎖前駆体タンパク質のｃＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列をまた開示し、ここで、１１０残基の成熟ＰＤＧＦ Ａ鎖は、この推定配列の残基８７〜１９６に対応する。成熟ＰＤＧＦ Ａ鎖の最初の１０７残基（すなわち、残基８７〜１９３）は、同一である。’７５９特許の図１および２を参照のこと。従って、残りの残基（すなわち、成熟ＰＤＧＦ Ａ鎖の残基１０８〜１２５）は、活性に関して重要ではなく、そして有害な効果を伴わずに保存的置換され得る。さらに、’７５９特許の図２の１１０残基の改変体ＰＤＧＦ Ａ鎖が示すように、１２５残基成熟ＰＤＧＦの残基１１０を超える残基は、活性に関して重要ではなく、そして欠失されて、本発明においてなお機能的であると予測される一連の欠失ムテインを提供し得る。別の参考文献は、成熟Ａ鎖が１０４アミノ酸を有することを開示する。米国特許第５，５１２，５４５号、題名「ＰＤＧＦ−Ｂ Ａｎａｌｏｇｕｅｓ」（これは、Ｂｒｏｗｎらの名前で１９９６年４月３０日に発行された）（「’５４５特許」）のｃｏｌ．２、行４０〜４４を参照のこと。従って、この’５４５特許は、成熟ＰＤＧＦ−Ａの最初の１０４を超えるいずれの残基も、ＰＤＧＦ−Ａ活性に重要ではないことを示唆する。
同様に、ヒトＰＤＧＦ Ｂ鎖からのＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列は、当該分野で公知であり、それぞれ、’５４５特許の図２および図３に開示される。成熟ＰＤＧＦ−Ａ鎖およびＰＤＧＦ−Ｂ鎖は、６０％の相同性を示し、そして８個のシステイン残基各鎖においてが保存されている。ＰＤＧＦ Ｂ鎖は′５４５特許の図２および配列番号１に示される１６０アミノ酸の完全相補鎖を有し得るが、少なくとも５１残基は、活性を損失することなく取り除かれ得る。生じるカルボキシ短縮ＰＤＧＦ Ｂ鎖は、１０９残基（すなわち、’５４５特許の配列番号１および図３の残基１〜１０９）を有し、そして残基２５（Ｉｌｅ）と残基３７（Ｐｈｅ）との間に生じる結合領域を含む。ＰＤＧＦ Ｂ鎖が酵母中で発現される場合、残基２８位もしくは３２位またはこれらの両方のＡｒｇを、塩基性でない中性の残基に置換して、酵母細胞による切断を回避することが望ましい。ＰＤＧＦ Ａ鎖およびＢ鎖を発現するための方法、ベクター、および細胞、ならびにＰＤＧＦの３つのアイソフォームを作製するためにこれらのＡ鎖およびＢ鎖を合わせるための、方法、ベクターおよび細胞は、当該分野で周知である。上記に引用されるような米国特許第５，６０５，８１６号および同第５，５１２，５４５号を参照のこと。
本発明の薬学的組成物および単位用量において活性な薬剤である別の脈管形成因子は、ＶＥＧＦである。ＶＥＧＦは、塩基性であり、約４５，０００ダルトン（４５ｋＤ）の分子量を有するホモ二量体タンパク質であり、ＶＥＧＦ（またはＶＥＧＦ−Ａ）、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−ＣおよびＶＥＧＦ−Ｄと示される４つのホモログを有する。本明細書中ににおける明確化のために、このファミリーの最初のメンバーであるＶＥＧＦは、本明細書中にＶＥＧＦ−Ａといわれる。ＶＥＧＦファミリーのタンパク質は、高度に保存された中央領域を有することによって特徴付けられ、相同な位置の１５個のシステイン残基（このうちの８個は分子内ジスルフィド結合および分子間ジスルフィド結合に関与する）の不変な存在によって特徴付けられる。Ｆｅｒｒａｒａら「Ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ、１８（１）：４−２５ （１９９７）の図４を参照のこと。結果として、４個のＶＥＧＦホモログは、類似した形状（三次構造）を有し、そして同時発現された場合は自発的にヘテロ二量体を形成し得る。従って、分子内システインを保持するＶＥＧＦのＮ末端およびＣ末端での欠失ムテインは、発現されて、その形状を保持し、二量体を形成し、そして生物学的に活性であることが予想される。ＶＥＧＦの１５個の保存システイン残基のうちの８個の相同性配置は、例えば、ＷＯ９８／０２５４３の図３；およびＫｅｃｋら「Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ Ｆａｃｔｏｒ，ａｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｉｔｏｇｅｎ Ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ＰＤＧＦ」Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６：１３０９−１３１２（１９８９）の１３１１ページ、ｃｏｌ．２および図４に比較して示されるように、ＰＤＧＦファミリーの８個の保存システイン残基に対応する。

ヒトＶＥＧＦ−Ａは、４つのアイソフォームで存在し、それぞれ、１２１、１６５、１８９および２０６アミノ酸を有する。これらの４つのアイソフォームは、それぞれ、ＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁、ＶＥＧＦ−Ａ₁₆₅、ＶＥＧＦ−Ａ₁₈₉およびＶＥＧＦ−Ａ₂₀₆として示される。Ｆｅｒｒａｒａら「Ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ、１８（１）：４−２５（１９９７）の５頁を参照のこと。このヒトＶＥＧＦ−Ａ遺伝子は、７個（７）のイントロンによって分けられた８個（８）のエキソンに組織され、そしてコード領域は、１４ｋｂに及ぶ。同上。単一ＶＥＧＦ−Ａ遺伝子の選択的エキソンスプライシングは、全ての異質性の原因である。ＶＥＧＦ−Ａ₁₆₅は、エキソン６によってコードされる残基を欠き、一方ＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁は、エキソン６および７によってコードされる残基を欠く。同上。ＶＥＧＦ−Ａの３つの短いアイソフォームは、ＶＥＧＦ−Ａ₂₀₆に基づき、そしてこの分子のカルボキシ半分に生じるスプライス改変体を反映する。しかし、カルボキシ末端の最後の６アミノ酸（エキソン８）は、４つ全てのスプライス改変体で保存されている。
ヒトＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁をコードするｃＤＮＡ配列および対応するアミノ酸配列は、当該分野で周知である。Ｌｅｕｎｇら「Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｉｓ ａ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ｍｉｔｏｇｅｎ」Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６：１３０６−１３０９（１９８９）の１３０７頁、ｃｏｌ．３において記載されるように図２Ｂを参照のこと。ヒトＶＥＧＦ−Ａ₁₆₅に関するｃＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列はまた、当該分野で周知である。Ｌｅｕｎｇら「Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｉｓ ａ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ｍｉｔｏｇｅｎ」Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６：１３０６−１３０９（１９８９）の１３０７頁および図２Ｂを参照のこと。同様に、ヒトＶＥＧＦ−Ａ₁₈₉からのｃＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列は、１９９１年から当該分野で周知である。Ｋｅｃｋら「Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ Ｆａｃｔｏｒ，ａｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌ Ｍｉｔｉｇｅｎ Ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ＰＤＧＦ」Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４６：１３０９−１３１２（１９８９）を参照のこと；Ｔｉｓｃｈｅｒら「Ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｇｅｎｅ ｆｏｒ ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ」Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｓｃｉ．、２６６：１１９４７−１１９５４（１９９１）もまた参照のこと。最後に、ヒトＶＥＧＦ−Ａ₂₀₆のｃＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列もまた、当該分野で周知である。Ｈｏｕｃｋら「Ｔｈｅ ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｆａｍｉｌｙ：ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｆｏｕｒｔｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｓｐｌｉｃｉｎｇ ｏｆ ＲＮＡ」Ｍｏｌ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．５：１８０６−１８１４（１９９１）の図２Ａを参照のこと。
ＶＥＧＦ−Ａの４つのスプライス改変体（アイソフォーム）のアミノ酸配列の重複比較は、Ｆｅｒｒａｒａら「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｆａｍｉｌｙ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ」Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ １３（１）：１８−３２（１９９２）の２１頁、図１に示される。細胞外環境において大量に可溶性である最も短いアイソフォームのＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁は、塩基性アミノ酸残基に富む大部分のカルボキシ末端（すなわち、エキソン６および７）が存在しないことに起因してわずかに酸性である。より長いアイソフォームであるＶＥＧＦ−Ａ₁₆₅、ＶＥＧＦ−Ａ₁₈₉およびＶＥＧＦ−Ａ₂₀₆は、ＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁よりもあまり可溶性ではなく、従って、あまり拡散性ではないが、カルボキシ末端の漸増する長さと共に増加する有糸分裂促進活性およびヘパリンリッチマトリックスに対する結合親和性の両方を示す。例として、ＶＥＧＦ−Ａ₁₆₅は、ＶＥＧＦ−Ａ₁₂₁よりも１００倍より大きくより有糸分裂促進性である。Ｃａｒｍｅｌｉｅｔら「Ｖａｓｃｕｌａｒ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｓｉｇｈｔｓ」Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、５３：１５１９−１５４９（１９９８）の１５２１−１５２２頁を参照のこと。従って、全てのＶＥＧＦ−Ａアイソフォームが活性であり、そして本発明の脈管形成因子の範囲内であるが、ＶＥＧＦ−Ａのより高く塩基性でありかつヘパリン結合のカルボキシ末端が活性の最大化に重要である。ＶＥＧＦ−Ａが新脈管形成を刺激する機構は知られていないが、Ｂａｎａｉは、ＶＥＧＦ−Ａが新脈管形成をある部分、ＰＤＧＦの内皮放出の刺激を介して促進することを示唆している。Ｂａｎａｉら「Ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ−Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ ｔｏ Ｉｓｃｈｅｍｉｃ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ ｂｙ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ ｉｎ Ｄｏｇｓ」Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ、８９（５）：２１８３−２１８９（１９９４年５月）。ＶＥＧＦ−Ａは、ＶＥＧＦレセプター−１（ＶＥＧＦＲ−１またはＦＬＴ１）およびＶＥＧＦレセプター−２（ＶＥＧＦＲ−２またはＦＬＫ１）へ結合する。

ヒトＶＥＧＦ−Ｂは、心臓および骨格筋に豊富に見出されるが、公知の高度に塩基性の非グリコシル化ヘパリン結合タンパク質であり、これは、Ｏｌｏｆｓｓｏｎら「Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ Ｂ，ａ ｎｏｖｅｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｆｏｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌｓ」ＰＮＡＳ ＵＳＡ ９３：２５７６−２５８１（１９９６）の図１に示されるアミノ酸配列を有する。ＶＥＧＦ−Ａのように、ＶＥＧＦ−Ｂは、プロホルモンとして発現され、そして１８８個のアミノ酸残基を有し、そのうちの残基１〜２１は、推定リーダー配列であり、したがって、脈管形成活性に必要ではない。同上。したがって、成熟ヒトＶＥＧＦ−Ｂは、推定リーダー配列に続く１６７残基を含む。Ｏｌｏｆｓｓｏｎの図１．ヒトプロホルモンＶＥＧＦ−Ｂはまた、マウスプロホルモンＶＥＧＦ−Ｂに対して８８％の配列同一性を有し、保存された様式で、残基位置１２、１９、２０、２６、２８、３０，３３、３７、４３、５７、５８、６３、６５、１０５、１３０、１４０、１４４、１４８、１４９、１６５、１６８、１８６、および１８８で異なる。Ｏｌｏｆｓｓｏｎの２５７７頁、第２欄およびその中の図１および２。成熟ヒトＶＥＧＦ−Ｂから成熟ネズミＶＥＧＦ−Ｂへの残基の差異は、以下のとおりである：５Ｐｒｏ→Ｐｈｅ、７Ａｌａ→Ｇｌｙ、９Ｇｌｙ→Ｓｅｒ、１２Ａｒｇ→Ｌｙｓ、１６Ｓｅｒ→Ｐｒｏ、２２Ｔｈｒ→Ａｌａ、３６Ｔｈｒ→Ｓｅｒ、３７Ｖａｌ→Ｍｅｔ、４２Ｔｈｒ→Ａｓｎ、４４Ａｌａ→Ｖａｌ、８６Ａｒｇ→Ｇｌｎ、１１９Ａｓｐ→Ｇｌｕ、１２９Ｐｒｏ→Ｉｌｅ、１３３Ａｒｇ→Ｐｒｏ、１３７Ｈｉｓ→Ａｒｇ、１３８Ｈｉｓ→Ａｒｇ、１６５Ｓｅｒ→Ａｒｇ、１６８Ａｒｇ→Ｈｉｓ、１６５Ｌｅｕ→Ｐｒｏ、および１６７Ａｒｇ→Ｌｙｓ。したがって、本発明の脈管形成因子は、１つ以上の上記参照残基位置で保存的置換を有するヒトＶＥＧＦ−Ｂムテインを含む。好ましくは、その保存的置換は、二段落前に記載した１つ以上の上記参照された差異である。

ＶＥＧＦ−Ｃは、大部分は主に、心臓、リンパ節、胎盤、卵巣、小腸、および甲状腺において発現されるが、種々の成長因子、炎症性サイトカイン、および低酸素によって誘導される。ＶＥＧＦ−Ｃは、Ｊｏｕｋｏｖらに開示されるように組換え発現され、そしてその中の２９１頁および図３に開示されるアミノ酸配列を有する。Ｊｏｕｋｏｖら、「Ａ ｎｏｖｅｌ ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ，ＶＥＧＦ−Ｃ，ｉｓ ａ ｌｉｇａｎｄ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｆｌｔ４（ＶＥＧＦＲ−３） ａｎｄ ＫＤＲ（ＶＥＧＦＲ−２）ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｋｉｎａｓｅ」Ｔｈｅ ＥＭＢＯ Ｊｏｕｒｎａｌ， １５（２）：２９０−２９８（１９９６）；また、Ｆｅｒｒａｒａら「Ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」，Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ，１８（１）：４−２５（１９９７）の図３を参照のこと。ＶＥＧＦ−Ｃは、ＶＥＧＦファミリーの最も大きなメンバーであり、３９９個のアミノ酸残基およびＶＥＧＦ−Ａに対して３２％の相同性を有する。Ｆｅｒｒａｒａ（１９９７）の１１頁、第１欄を参照のこと。ＶＥＧＦ−Ｃのカルボキシル末端は、他のＶＥＧＦには見出されないインサートの１８０残基（残基２１３〜２９５位）を含有する。Ｊｏｕｋｏｖら（１９９６）の図３；またはＦｅｒｒａｒａら、「Ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」，Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ，１８（１）：４−２５（１９９７）の図４を参照のこと。その大きなサイズのため、ＶＥＧＦ−Ｃは、ＶＥＧＦファミリーの最も所望でないメンバーである。しかし、２１３〜２９５残基を欠失するＶＥＧＦ−Ｃの欠失変異体またはそのフラグメントは、Ｎ末端で１つ以上の残基（最大で１から２８残基まで）を欠失しており、これもまた、本発明において使用される脈管形成因子の用語の範囲内にある。ＶＥＧＦ−Ｃは、ＶＥＧＦＲ−２（以前にｆｌｔ−１およびＫＤＲ／Ｆｌｋ−１として知られる）、およびＶＥＧＦＲ−３（Ｆｌｔ４としても知られる）に結合する。Ｊｏｕｋｏｖら（１９９６）を参照のこと。

ＶＥＧＦ−Ｄは、発見されるべきＶＥＧＦファミリーの最近のメンバーであるが、ｃＤＮＡによってコードされ、そして共願に係るＵＳＳＮ０９／０４３，４７６（０３／１８／９８に出願された）；および対応するＷＯ９７／１２９７２（１９９７年４月１０日に公開された）の図２に示されるアミノ酸配列を有する。ＶＥＧＦ−Ｄは、３０４アミノ酸残基を有する二量体化タンパク質である。ＶＥＧＦ−Ｄのコアは、他のＶＥＧＦタンパク質に対して高度に保存されている。より重要なことに、それは、ＶＥＧＦとＰＤＧＦを通して高度に保存された残基位置１１１、１３６、１４２、１４５、１４６、１５３、１８９、１９１、２５８、２６９、２７１、２７３、３００、３１２、および３１４に１５個のシステインを含有する。ＶＥＧＦのアミノ酸配列とＰＤＦのいくつかとの重複比較は、保存された領域を示しているが、Ｆｅｒｒａｒａら「Ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」、Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ，１８（１）：４−２５（１９９７）の図４；ＷＯ９７／１２９７２およびその対応米国特許出願ＵＳＳＮ０９／０４３，４７６の図３；およびＷＯ９８／０２５４３の図３に見出される。ＶＥＧＦ−Ｄの生物学的に活性な対立遺伝子およびフラグメントは、当該分野で公知である。１つの実施例において、ＷＯ９８／０７８３２は、ＷＯ９７／１２９７２のＶＥＧＦ−Ｄとは以下の変異を指定された残基位置に有することにより異なる、肺から単離された生物学的に活性なヒトＶＥＧＦ−Ｄを開示する：５６Ｔｈｒ→Ｉｌｅ、１５１Ｐｈｅ→Ｌｅｕ、１５２Ｍｅｔ→Ｉｌｅ、２６１Ａｓｐ→Ｈｉｓ、２６４Ｇｌｕｅ→Ｐｈｅ、および２９７Ｇｌｕ→Ｌｅｕ。したがって、脈管形成因子は、１つ以上の上記の参照残基位置で１つ以上の上記の参照アミノ酸置換または保存された置換を含むＶＥＧＦ−Ｄのムテインを含むことは、本発明の範囲内である。このようなムテインは、当該分野で標準的な技術である部位特異的変異誘発によって作製される。さらに、ヒト胸組織から単離された生物学的に活性なＶＥＧＦ−Ｄは、最初の３０アミノ酸を欠いていた。ＷＯ９８／２４８１１を参照のこと。したがって、脈管形成因子が成熟ＶＥＧＦ−Ｄのアミノ酸残基１〜３０を欠くＶＥＧＦ−Ｄのフラグメントを含むことは、本発明の範囲内である。さらに、成熟ＶＥＧＦ−Ｄの残基１０９〜３１５が、二量体化およびレセプターへの結合を担う高度に保存された領域を含有する範囲内で、血管形成剤脈管形成因子が、ＷＯ９７／１２９７２または対応ＵＳＳＮ０９／０４３，４７６の図２の成熟ホルモンの残基１０９〜３１５を含むＮ短縮化および／またはＣ短縮化ＶＥＧＦ−Ｄを含むことも、本発明の範囲内である。

ＴＧＦ−β１は、２ダースのメンバーを有するＴＧＦ−βスーパーファミリーのメンバーである。ＴＧＦ−βスーパーファミリーの種々のメンバーは、１１０〜１４０アミノ酸残基および少なくとも７個のシステインを有する成熟タンパク質のホモまたはヘテロダイマーである。６個のシステインは内部ジスルフィドを形成し、そして７個目のシステインは、２つのモノマーを一緒に連結するジスルフィド結合を形成する。Ｋｉｎｇｓｌｅｙ，Ｄ．Ｍ．，「Ｔｈｅ ＴＧＦ−β ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ：ｎｅｗ ｍｅｍｂｅｒｓ，ｎｅｗ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ，ａｎｄ ｎｅｗ ｇｅｎｅｔｉｃ ｔｅｓｔｓ ｏｆ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｏｒｇａｎｉｓｍｓ」Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐ．，８：１３３−１４６（１９９４）を参照のこと。ＴＧＦ−β１モノマーは、ＴＧＦ−βスーパーファミリーの他のモノマーと同様に、１０％未満ではあるが、ＰＤＧＦと構造的類似性を有する。ヒトＴＧＦ−β１のモノマーは、公知の１１２残基のタンパク質であり、ｃＤＮＡによってコードされ、そして米国特許第４，８８６，７４７号（「Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ ＴＧＦ−β ａｎｄ ｉｔｓ Ｕｓｅｓ」と題される（Ｄｅｒｙｎｃｋらに対して１２／１２／８９に発行され、組換えＴＧＦ−β１を発現する方法を開示する））の図１Ｂ（ＩＩＩ）に示される推定アミノ酸配列を有する。ＴＧＦ−β１は、１１２個のアミノ酸残基を有するが、成熟ＴＧＦ−β１の残基位置１６〜３１（すなわち、ＣＶＲＱＬＹＩＤＦＲＫＤＬＧＷＫ）に対応する残基の配列のみ（例えば、’７４７特許の図１Ｂ（ＩＩＩ）を参照のこと）が活性のために必要である。米国特許第５，６５８，８８３号（「Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ ＴＧＦ−β１ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ」と題され、０８／１７／９７にＯｇａｗａらに対して発行された）を参照のこと。成熟ヒトＴＧＦ−β１のより大きな二量体化フラグメントは、残基１６〜４７（すなわち、ＣＶＲＱＬＹＩＤＦＲＫＤＬＧＷＫＷＩＨＥＰＫＧＹＨＡＮＦＣＬＧＰ）に対応するが、１６〜３１フラグメントのダイマーおよび成熟ＴＧＦ−β１のダイマーに類似の活性を示した。１６〜３１残基のフラグメントは、２つのモノマーサブユニットのアミノ末端システイン間にジスルフィド結合を形成することによって二量体化される。１６〜４７残基のフラグメントは、アミノ末端システイン、カルボキシ末端システイン、または２つのモノマーサブユニットの両方の間にジスルフィド結合を形成することによって二量体化される。したがって、ＴＧＦ−β１のフラグメントは、活性フラグメントであるためには、成熟ヒトＴＧＦ−β１の残基１６〜３１を含むことが必要であるのみであることは本発明の範囲内である。直接に新脈管形成を誘導することに加えて、ＴＧＦ−β１は、炎症細胞または結合組織細胞に影響を及ぼすことによって、インビボで間接的に新脈管形成を誘導し得、これは次いで、例えば、ＶＥＧＦ−Ａ、ＰＤＧＦ、ＦＧＦ２などのような脈管形成分子を産生し得ることが予想される。Ｃａｒｍｅｌｉｅｔ（１９９８）を参照のこと。

本発明の組成物および方法において使用されるために適した別の脈管形成因子は、ＦＧＦである。本明細書で使用される場合、用語「ＦＧＦ」により、線維芽細胞成長因子タンパク質（これもまた脈管形成活性を有する）（例えば、ＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２、ＦＧＦ−４、ＦＧＦ−６、ＦＧＦ−８、ＦＧＦ−９またはＦＧＦ−９８）または脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインを意味する。代表的には、ＦＧＦは、ヒト（ｈ）ＦＧＦ−１、ウシ（ｂ）ＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２、ｂＦＧＦ−２、ｈＦＧＦ−４、またはｈＦＧＦ−５である。代替の実施形態において、単位用量における活性な薬剤は、ｈＦＧＦ−６、ｍＦＧＦ−８、ｈＦＧＦ−９またはｈＦＧＦ−９８である。

本発明の単位用量、薬学的組成物、および方法で利用されるＦＧＦの多くを作製するためのアミノ酸配列および方法は、当該分野で周知である。特に、ＦＧＦ１〜９およびＦＧＦ−９８のアミノ酸配列および組換え発現を開示する参考文献は、引き続いて以下に議論される。

（ＦＧＦ−１）：ｈＦＧＦ−１のアミノ酸配列およびその組換え発現の方法は、米国特許第５，６０４，２９３号（Ｆｉｄｄｅｓ）（「Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｌｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」と題され、１９９７年２月１８日に発行された）に開示される。’２９３特許の図２ｄを参照のこと。この参考文献および本明細書中のその他のすべての参考文献は、この文の前または後に引用されていても、明白にその全体が参考として本明細書中に引用される。ｂＦＧＦ−１のアミノ酸配列、ならびにその発現方法は、米国特許第５，６０４，２９３号（Ｆｉｄｄｅｓ）の図１ｂに開示される。ｈＦＧＦ−１およびｂＦＧＦ−１の両方の成熟形態は、１４０個のアミノ酸残基を有する。ｂＦＧＦ−１は、以下の１９残基位置で、ｈＦＧＦ−１とは異なる：５Ｐｒｏ→Ｌｅｕ、２１Ｈｉｓ→Ｔｙｒ、３１Ｔｙｒ→Ｖａｌ、３５Ａｒｇ→Ｌｙｓ、４０Ｇｌｎ→Ｇｌｙ、４５Ｇｌｎ→Ｐｈｅ、４７Ｓｅｒ→Ｃｙｓ、５１Ｔｙｒ→Ｉｌｅ、５４Ｔｙｒ→Ｖａｌ、６４Ｔｙｒ→Ｐｈｅ、８０Ａｓｎ→Ａｓｐ、１０６Ａｓｎ→Ｈｉｓ、１０９Ｔｙｒ→Ｖａｌ、１１６Ｓｅｒ→Ａｒｇ、１１７Ｃｙｓ→Ｓｅｒ、１１９Ａｒｇ→Ｌｅｕ、１２０Ｇｌｙ→Ｇｌｕ、１２５Ｔｙｒ→Ｐｈｅおよび１３７Ｔｙｒ→Ｖａｌ。ほとんどの場合、その差異は、保存されている。さらに、残基位置１１６および１１９での差異は、単に、Ａｒｇの位置の交換である。

（ＦＧＦ−２）：全長１５５残基のヒトＦＧＦ−２（配列番号５）をコードするｃＤＮＡ配列（配列番号４）およびヒトＦＧＦ−２（ｈＦＧＦ−２）の組換え発現の方法は、米国特許第５，４３９，８１８号（Ｆｉｄｄｅｓ）（表題「ＤＮＡ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ Ｈｕｍａｎ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」（１９９５年８月８日に発行された（その中の図４を参照のこと））および米国特許第５，５１４，５６６号（Ｆｉｄｄｅｓ）、表題「Ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ Ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ」（１９９６年５月７日に発行された）（この中の図４を参照のこと）に開示される。ヒトＦＧＦ−２はまた、配列番号５のＮ末端から最初の９個の残基を欠く配列番号６の活性なＮ短縮１４６残基形態を有する。この短縮型は、当該分野で公知の技術を使用して、配列番号４のｃＤＮＡの５’末端に適切な欠失を作製することによって容易に産生される。ウシＦＧＦ−２（配列番号２）をコードするｃＤＮＡ配列（配列番号１）およびこの組換え発現のための種々の方法は、米国特許第５，１５５，２１４号（表題「Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」（１９９２年１０月１３日に発行された））に開示される。ｈＦＧＦ−２およびｂＦＧＦ−２の１４６残基形態が比較される場合、それらのアミノ酸配列は、わずか２つの残基の違いを有して、ほとんど同一である。特に、ｈＦＧＦ−２からｂＦＧＦ−２に向かって、唯一の差異は、残基位置１１２（Ｔｈｒ→Ｓｅｒ）および１２８（Ｓｅｒ→Ｐｒｏ）において生じる。

（ＦＧＦ−３）：ＦＧＦ−３は、マウスｉｎｔ−２哺乳動物腫瘍の発現産物として最初に同定され、そのアミノ酸配列は、Ｄｉｃｋｓｏｎら「Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ Ｏｎｃｏｇｅｎｅ Ｐｒｏｄｕｃｔ Ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ」Ｎａｔｕｒｅ ３２６：８３３（１９８７年４月３０日）に開示される。ＦＧＦ−３は、Ｎ末端Ｍｅｔが排除される場合２４３残基を有し、ＦＧＦ−１（ヒトおよびウシ）およびＦＧＦ−２（ヒトおよびウシ）の両方よりも実質的に長い。ｂＦＧＦ−１およびｂＦＧＦ−２に対してのｍＦＧＦ−３についてのアミノ酸残基の比較は、Ｄｉｃｋｓｏｎら（１９８７）に重複した形式で表されている。 ｍＦＧＦ−３のアミノ酸配列がｂＦＧＦ−１およびｂＦＧＦ−２と比較される場合、ＦＧＦ−３は、ＦＧＦ−１およびＦＧＦ−２の両方に対して残基インサートを含有する５つの位置を有する。これらのインサートの最も重要なものは、それぞれ、ＦＧＦ−２およびＦＧＦ−１に対する１２および１４残基インサートであり、ＦＧＦ−３の残基位置１３５で始まる。そのインサートを許容することにより、Ｄｉｃｋｓｏｎらは、ｍＦＧＦ−３が、ＦＧＦ−１に対して５３残基の同一性を有し、そしてＦＧＦ−２に対して６９残基の同一性を有することを開示する。さらに、ＦＧＦ−３は、ＦＧＦ−１およびＦＧＦ−２の両方においてシグナル配列のＮ末端に対して１０残基の疎水性Ｎ末端伸長を含有する。ｂＦＧＦ−１およびｂＦＧＦ−２のＣ末端に対して、ｍＦＧＦ−３は、およそ６０残基の伸長を含有する。ｍＦＧＦ−３のＣ末端伸長が活性に必要であることはありそうでない。より可能性のあることとしては、それは、ＦＧＦに対してレセプター特異性を付与することによる活性の調整剤である。

（ＦＧＦ−４）：ｈｓｔタンパク質についてのアミノ酸配列は、現在、ｈＦＧＦ−４として知られるが、Ｙｏｓｈｉｄａら、「Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ ｈｓｔ， ａ Ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ Ｇｅｎｅ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ ａ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｔｏ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｉｎｔ−２−Ｅｎｃｏｄｅｄ Ｐｒｏｔｅｉｎ」ＰＮＡＳ ＵＳＡ，８４：７３０５−７３０９（１９８７年１０月）の図３に初めて開示された。このリーダー配列を含み、ｈＦＧＦ−４は、２０６アミノ酸残基を有する。ｈＦＧＦ−４、ｈＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２およびｍＦＧＦ−３のアミノ酸配列を比較した場合、ｈＦＧＦ−４の残基７２〜２０４は、ｈＦＧＦ−２に対して４３％の相同性を有する；残基７９〜２０４は、ｈＦＧＦ−１に対して３８％の相同性を有する；そして残基７２−１７４はｍＦＧＦ−３に対して４０％の相同性を有する。重複様式でこれらの４つの配列を比較したものがＹｏｓｈｉｄａ（１９８７）の図３に示される。さらに、ｈＦＧＦ−４の８８位および１５５位の残基にあるＣｙｓは、ｈＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２、ｍＦＧＦ−３、およびｈＦＧＦ−４に高度に保存され、そして相同領域において見出される。

ｈＦＧＦ−２の２つの推定細胞結合部位は、その３６〜３９および７７〜８１の残基位置に生じる。Ｙｏｓｈｉｄａ（１９８７）の図３を参照のこと。ｈＦＧＦ−２の２つの推定ヘパリン結合部位は、その１８〜３２および１０７〜１１１の残基位置に生じる。Ｙｏｓｈｉｄａ（１９８７）の図３を参照のこと。ヒトおよびウシＦＧＦ−２についてのアミノ酸配列間の実質的類似性を考慮すれば、本発明者らは、ｂＦＧＦ−２についての細胞結合部位を、また、その残基位置３６〜３９および７７〜８１に予想し、そしてそのヘパリン結合部位を、その残基位置１８〜２２および１０７〜１１１に予想する。ｈＦＧＦ−１に関連して、推定細胞結合部位は、残基２７〜３０および６９〜７２に生じ、そして推定ヘパリン結合部位は、残基９〜１３および９８〜１０２に生じる。成熟ｂＦＧＦ−１が、残基位置９〜１３、２７〜３０、６９〜７２および９８〜１０２で、ｈＦＧＦ−２と同一なアミノ酸を有する範囲では、ｂＦＧＦ−１は、ｈＦＧＦ−１と同じ細胞結合部位およびヘパリン結合部位を有することが予想される。

（ＦＧＦ−５）：ｈＦＧＦ−５についてのｃＤＮＡおよび推定アミノ酸配列は、Ｚｈａｎら「Ｔｈｅ Ｈｕｍａｎ ＦＧＦ−５ Ｏｎｃｏｇｅｎｅ Ｅｎｃｏｄｅｓ ａ Ｎｏｖｅｌ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ」Ｍｏｌｅｃ．ａｎｄ Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，８（８）：３４８７−３４９５（１９８８年８月）の図１に開示される。Ｚｈａｎはまた、ｈＦＧＦ−５をクローニングする方法を開示する。本出願人はまた、ｈＦＧＦ−５を配列決定し、そしてＺｈａｎの配列とは残基位置２３６（ＺｈａｎのＡｓｎの代わりにＬｙｓを有する）および残基位置２４３（ＺｈａｎのＳｅｒの代わりにＰｒｏを有する）で異なるアミノ酸配列を得た。ｈＦＧＦ−５のアミノ酸配列はいずれも、６７残基のリーダー配列を成熟ＦＧＦ−２の第１の残基の上流に、およびｈＦＧＦ−２のＣ末端を超えて約４７残基伸長するテール配列を含む２６６アミノ酸残基を有する。ｈＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２、ｍＦＧＦ−３、ｈＦＧＦ−４、およびＦＧＦ−５のアミノ酸配列間の比較は、Ｚｈａｎ（１９８８）の図２に表される。Ｚｈａｎの図２において、ｈＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２、ｍＦＧＦ−３およびｈＦＧＦ−４は、ａＦＧＦ（すなわち、酸性ＦＧＦ）、ｂＦＧＦ（すなわち、塩基性ＦＧＦ）、ｉｎｔ−２、およびｈｓｔＫＳ３とそれぞれ同一（すなわち、それらの元々の名称）である。上記に参照した比較において、ＦＧＦ−５アミノ酸残基の２つのブロック（９０〜１８０および１８７〜２０７）は、ＦＧＦ１〜４に実質的な相同性（すなわち、ＦＧＦ−４と５０．４％、ＦＧＦ−３と４７．５％、ＦＧＦ−２と４３．４％、およびｈＦＧＦ−１と４０．２％）を示した。Ｚｈａｎ（１９８８）の図２を参照のこと。米国特許第５，１５５，２１７号（Ｇｏｌｄｆａｒｂ）および同第５，２３８，９１６号（Ｇｏｌｄｆａｒｂ）は、Ｚｈａｎの公報に対応するが、ＺｈａｎのＦＧＦ−５をＦＧＦ−３として言及する。しかし、当該分野（以下のＣｏｕｌｉｅｒにより証明されるように）は、ＺｈａｎのｈＦＧＦ（およびＧｏｌｄｆａｒｂ特許の）は、ＦＧＦ−５であって、ＦＧＦ−３ではないと認識するに至っている。２つのＧｏｌｄｆａｒｂ特許は、Ｚｈａｎによって上記に報告されたｈＦＧＦ−５と同じアミノ酸配列を含んでいる。

（ＦＧＦ−６）：ｈＦＧＦ−６についてのｃＤＮＡおよび推定アミノ酸配列がＣｏｌｉｅｒら「Ｐｕｔａｔｉｖｅ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｔｈｅ ＦＧＦ−６ Ｇｅｎｅ Ｐｒｏｄｕｃｔ ａｎｄ Ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｉｇｎａｌ Ｐｅｐｔｉｄｅ」、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ６：１４３７−１４４４（１９９１）の図２に開示される。Ｃｏｕｌｉｅｒはまた、ＦＧＦ−６をクローニングする方法を開示する。ｈＦＧＦ−６は、２０８アミノ酸残基を有するＦＧＦの最大のものの１つである。ヒトＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２、ＦＧＦ−３、ＦＧＦ−４、ＦＧＦ−５、ＦＧＦ−６、およびＦＧＦ−７のアミノ酸配列を比較すると、分子のＣ末端の３分の２（ｈＦＧＦ−６の残基７８〜２０８に対応する）において強力な類似性が存在する。特に、ＦＧＦ−６の２３残基（ｈＦＧＦ−６の残基位置９０〜１５７の２つのシステインを含む）は、ファミリーの７つのメンバー間で同一である。この数は、保存されたアミノ酸残基を考慮すると３３残基に増大する。これらの７つのヒトＦＧＦ間の全体的な類似性は、その分子のＣ末端の３分の２について、３２％〜７０％の同一な残基、および４８％〜７９％の保存された残基にわたっていた。ｈＦＧＦ−１〜ｈＦＧＦ−５およびｈＦＧＦ−７の、ｈＦＧＦ−６に対するその配列の比較は、本明細書の表１に示される。

表１を参照して、ＦＧＦ−６は、ＦＧＦ−４と最も高い対応を有する（９１の同一な残基／１０３の保存された残基）。これは、７０％の同一残基および７９％の保存された残基にのぼる。ｈＦＧＦ−６は、ｈＦＧＦ−３、ｈＦＧＦ−２、ｈＦＧＦ−７、およびｈＦＧＦ−１とは大部分異なり、それぞれ、４２、４２、３６、および３２の同一な残基であった。


ＦＧＦ１〜７のアミノ酸配列の重累比較は、引用したＣｏｕｉｅｒ（１９９１）の図３に示される。Ｃｏｕｌｉｅｒの図３は、ＦＧＦ分子のＣ末端の３分の２がアラインメントされた場合、７つ全てのＦＧＦメンバーからの残基が同一である２３残基位置が存在する。７つ全てのＦＧＦメンバーからの残基が保存されている１０残基位置もまた存在する。Ｃｏｕｌｉｅｒ（１９９１）の図３．比較において、これらの同一および保存された残基は、ＦＧＦ１〜７の各々の末端３分の２において３〜５残基の約６位置を形成し、ここで、３〜５残基は、ヒトＦＧＦの７つ全ての種において一緒にグループ分類されている（すなわち、ｈＦＧＦ１〜７）。

（ＦＧＦ−７） ｈＦＧＦ−７のアミノ酸配列は、当該分野で周知であり、そしてＭｉｙａｍｏｔｏら「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ｏｆ Ａ Ｎｏｖｅｌ Ｃｙｔｏｋｉｎｅ ｃＤＮＡ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ ｔｈｅ Ｎｉｎｔｈ Ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｆａｍｉｌｙ，Ｗｈｉｃｈ Ｈａｓ ａ Ｕｎｉｑｕｅ Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ Ｐｒｏｐｅｒｔｙ」、Ｍｏｌ．ａｎｄ Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１３（７）：４２５１〜４２５９（１９９３）図２に開示される。Ｍｉｙａｍｏｔｏにおいて、ｈＦＧＦ−７は、その旧名「ＫＧＦ」により言及された。ＦＧＦ−７は、１９１アミノ酸残基を有する。ｈＦＧＦ１〜６およびｈＦＧＦ−９のアミノ酸配列に対するｈＦＧＦ−７のアミノ酸配列の比較は、ＦＧＦ−７のカルボキシ末端側２／３が、そのグループの他のメンバーの遠位の２／３と匹敵する相同性を有することを示す。Ｍｉｙａｍｏｔｏ（１９９３）、４２５４頁（図２）を参照のこと。

（ＦＧＦ−８） ｍＦＧＦ−８のｃＤＮＡおよび推定アミノ酸配列は、当該分野で周知であり、そしてＴａｎａｋａら「Ｃｌｏｎｉｎｇ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａｎ Ａｎｄｒｏｇｅｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｍｏｕｓｅ Ｍａｍｍａｒｙ Ｃａｒｃｉｎｏｍａ Ｃｅｌｌｓ」ＰＮＡＳ ＵＳＡ、８９：８９２８〜８９３２（１９９２）図２に開示される。Ｔａｎａｋａはまた、組換えＦＧＦ−８を作製するための方法を開示する。ＴａｎａｋａのｍＦＧＦ−８は、２１５アミノ酸残基を有する。ＭａｃＡｒｔｈｕｒら「ＦＧＦ−８ ｉｓｏｆｏｒｍｓ ａｃｔｉｖｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｐｌｉｃｅ ｆｏｒｍｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ ｉｎ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｒｅｇｉｏｎｓ ｏｆ ｍｏｕｓｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ」Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ、１２１：３６０３〜３６１３（１９９５）は、ＦＧＦ−８が、成熟Ｎ末端で異なるがＣ末端領域にわたって同一である、８つの異なるアイソフォームを有することを開示する。この８つのアイソフォームは、ＦＧＦ−８が、６つのエキソンを有し、その最初の４つ（他のほとんどのＦＧＦ遺伝子の第１のエキソンに対応する）が選択的スプライシングを生じるので、生じる。

（ＦＧＦ−９） ヒトおよびマウスのＦＧＦ−９のｃＤＮＡおよび推定アミノ酸配列は、当該分野で公知であり、そしてその組換え発現のための方法が、Ｓａｎｔｏｓ−Ｏｃａｍｐｏら「Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｍｏｕｓｅ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１（３）：１７２６〜１７３１（１９９６）に開示される。ヒトおよびマウスの両方のＦＧＦ−９分子は、２０８アミノ酸残基を有し、２残基だけ異なる配列を有する。詳細には、ｈＦＧＦ−９は、残基９および３４にそれぞれＡｓｎおよびＳｅｒを有するが、ｍＦＧＦ−９は、それぞれＳｅｒおよびＡｓｎを有する。ＦＧＦ−９は、ＦＧＦファミリーを規定する保存アミノ酸の完全保存を有する。Ｓａｎｔｏｓ−Ｏｃａｍｐｏ（１９９６）１７２６頁。ＦＧＦ−９の最大半減活性化（ｈａｌｆ−Ｍａｘｉｍａｌ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ）は、１８５ｎｇ／ｍｌヘパリンで観察されるが、ＦＧＦ−１の最大半減活性化は、６７０ｎｇ／ｍｌヘパリンで観察される。Ｓａｎｔｏｓ−Ｏｃａｍｐｏ（１９９６）１７３０頁。ＦＧＦ−１と比較した場合、ＦＧＦ−２およびＦＧＦ−９は両方とも、最適活性のためにより低いヘパリン濃度を必要とする。

（ＦＧＦ−９８） ｈＦＧＦ−９８のｃＤＮＡおよびアミノ酸配列、ならびにその組換え発現のための方法は、仮特許出願第６０／０８３，５５３号に開示され、この仮出願は、本明細書中にその全体が参考として援用される。ｈＦＧＦ−９８は、ｈＦＧＦ−１８としても公知であり、２０７アミノ酸残基を有する。従って、ｈＦＧＦ−６（２０７残基）、ｈＦＧＦ−９（２０８残基）およびｈＦＧＦ−９８（２０７残基）は、サイズが類似する。

ＦＧＦは、４つの関連する膜貫通レセプターのうちの１つ以上に示差的に結合しそしてそれを活性し、次いでそのレセプターは、生物学的応答を媒介する。このＦＧＦレセプター（「ＦＧＦＲ」）は、チロシンキナーゼレセプタースーパーファミリーのメンバーである。ＦＧＦＲの細胞外ドメインは、選択的スプライシングの結果として示差的に発現される、２〜３個のの免疫グロブリン様（「Ｉｇ様」）ドメインを含む。別の選択的スプライシング事象はまた、読取り枠を変えることなく、Ｉｇ様ドメインＩＩＩのカルボキシル末端側半分の配列を変え得る。Ｓａｎｔｏｓ−Ｏｃａｍｐｏ（１９９６）。この２つのスプライス形態（「ｂ」および「ｃ」と呼ばれる）は、ＦＧＦＲ１、２、３について生じるが、ＦＧＦＲ４については生じない。ＦＧＦＲのより詳細な説明は、Ｍａｔｈｉｅｕら「Ｒｅｃｅｐｔｏｒ Ｂｉｎｄｉｎｇ ａｎｄ Ｍｉｔｏｇｅｎｉｃ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ Ｍｏｕｓｅ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ ３」Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０（４１）：２４１９７〜２４２０３（１９９５）に見出される。ＦＧＦ１〜９がＦＧＦＲを示差的に刺激する能力は、Ｏｒｎｉｔｚら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１（２５）：１５２９２〜１５２９７（１９９６）により報告されたように、レセプター依存性であった。Ｏｒｎｉｔｚにおいて、細胞株ＢａＦ３が画分に分割され、そして各画分が、以下のＦＧＦレセプターのうちの１つを発現するようにトランスフェクトされた：ＦＧＦＲ１ｂ、ＦＧＦＲ１ｃ、ＦＧＦＲ２ｂ、ＦＧＦＲ２ｃ、ＦＧＦＲ３ｂ、ＦＧＦＲ３ｃおよびＦＧＦＲ４（−１つのＩｇ様ドメイン）。その後、形質転換細胞株が、ＦＧＦ１〜９のうちの１つ（５ｎＭ）および補因子としてのヘパリン（２μｇ／ｍｌ）に曝露された。次いで、マイトジェン応答が、［³Ｈ］チミジンの取り込みにより測定された。その結果（ｃｐｍ）は以下の通りである：
１．ＦＧＦＲ１ｂ：同様のマイトジェン応答が、ｈＦＧＦ−１（３２，０００ｃｐｍ）およびｈＦＧＦ−２（２８，０００ｃｐｍ）により生成され、その次に高い応答がｍＦＧＦ−３（約１６，０００ｃｐｍ）およびｈＦＧＦ−４（１５，０００ｒｐｍ）により生成された；
２．ＦＧＦＲ１ｃ：同様のマイトジェン応答が、ｈＦＧＦ−１、ｈＦＧＦ−２、ｈＦＧＦ−４、ｈＦＧＦ−５、およびｈＦＧＦ−６（約３６，０００ｃｐｍ）により生成され、ｍＦＧＦ−９が、唯一他の有意な応答を生成した（約１９，０００ｃｐｍ）；
３．ＦＧＦＲ２ｂ：最高のマイトジェン応答は、ｈＦＧＦ−７（１４，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−１（１２，５００ｃｐｍ）、およびｍＦＧＦ−３（９，５００ｃｐｍ）によった；
４．ＦＧＦＲ２ｃ：最高のマイトジェン応答は、ｈＦＧＦ−４（２１，０００ｃｐｍ）、ｍＦＧＦ−９（２０，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−６（１６，５００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−１（１６，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−２（１４，５００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−５（９，５００ｃｐｍ）およびｍＦＧＦ−８（９，０００ｃｐｍ）によった；
５．ＦＧＦＲ３ｂ：マイトジェン応答は、ｈＦＧＦ−１（３７，０００ｃｐｍ）およびｍＦＧＦ−９（２６，０００ｃｐｍ）のみによった；
６．ＦＧＦＲ３ｃ：最高のマイトジェン応答は、ｈＦＧＦ−１（３９，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−２（３４，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−４（３３，０００ｃｐｍ）、ｍＦＧＦ−８（３２，５００ｃｐｍ）、ｍＦＧＦ−９（３１，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−５（１６，０００ｃｐｍ）、およびｈＦＧＦ−６（１３，０００ｃｐｍ）によった；
７．ＦＧＦＲ４Δ：最高のマイトジェン応答は、ｈＦＧＦ−２（２９，０００ｃｐｍ）、ｈＦＧＦ−４およびｈＦＧＦ−６（２７，０００ｃｐｍ）、ｍＦＧＦ−８（２５，０００ｃｐｍ）、ｍＦＧＦ−１（２４，０００ｃｐｍ）、およびｈＦＧＦ−９（２０，０００ｃｐｍ）により、他は全て、６，０００ｃｐｍ以下であった。

上記に反映されるように、ＦＧＦ−１のみが、試験したレセプターすべてにおいて有意なマイトジェン応答を誘導する。従って、ＦＧＦ−１は、他のＦＧＦと結合するレセプターの特異性を生じる分子へのＮ末端およびＣ末端が付加したユニバーサルリガンドとして考えられ得る。全身投与されたＦＧＦによるインビボでの多様な応答についての能力を考慮すると、本発明は、局所投与により、そしてその局所投与について適切な投与量を発見することにより（すなわち、ＣＡＤについての処置の必要がある患者の少なくとも１つの冠状動脈へＦＧＦの治療的に有効な量を投与することにより）、全身応答についての能力を最小にする。

以下の実施例において、ｂＦＧＦ−２が、ラット、ブタおよびヒトにインビボ投与され、そして脈管形成活性について試験された。この実施例のｂＦＧＦ−２は、米国特許第５，１５５，２１４号（「｀２１４特許」）に記載されるように作製された。この｀２１４特許の方法において、ｂＦＧＦ（本明細書中で以後「ＦＧＦ−２」）をコードするｃＤＮＡが、クローニングベクター（例えば、ｐＢＲ３２２、ｐＭＢ９、ＣｏｌＥ１、ｐＣＲＩ、ＲＰ４またはλファージ）に挿入され、そしてそのクローニングベクターが、真核生物細胞または原核生物細胞のいずれかを形質転換するために使用され、その形質転換細胞はＦＧＦ−２を発現する。１つの実施形態において、その宿主細胞は酵母細胞（例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）である。発現される生じる全長ＦＧＦ−２は、｀２１４特許のカラム６に示される配列に従う１４６アミノ酸を有する。生じるＦＧＦ−２は４つのシステイン（すなわち、残基位置２５、６９、８７および９２）を有するが、内部ジスルフィド結合は存在しない。［｀２１４特許カラム６、５９〜６１行目］。しかし、酸化的条件下で架橋が生じた場合においては、それぞれ２５位および６９位にある２つのＣｙｓ残基間に多分その架橋が生じる。

ウシＦＧＦ−２（ｂＦＧＦ−２）は、対応するヒトＦＧＦ−２（ｈＦＧＦ−２）と同様に、１５５アミノ酸残基を有するポリペプチドとしてインビボで最初に合成される。Ａｂｒａｈａｍら「Ｈｕｍａｎ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ：Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ」ＥＭＢＯ Ｊ．５（１０）：２５２３〜２５２８（１９８６）。この例の１４６残基ｂＦＧＦ−２（配列番号２）がＡｂｒａｈａｍの全長１５５残基のｂＦＧＦ−２と比較される場合、本出願人のｂＦＧＦ−２（配列番号２）は、Ａｂｒａｈａｍの全長分子のＮ末端に見出される最初の９アミノ酸残基（すなわち、Ｍｅｔ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ｌｅｕ（配列番号３））を欠く。上記のように、成熟ｂＦＧＦ−２は、成熟ｈＦＧＦ−２と２残基位置のみで異なる。詳細には、成熟ｂＦＧＦ−２（配列番号２）の残基位置１１２および１２８のアミノ酸は、それぞれＳｅｒおよびＰｒｏであるが、対応する成熟ｈＦＧＦ−２（配列番号６）において、それらはそれぞれＴｈｒおよびＳｅｒである。ｂＦＧＦ−２とｈＦＧＦ−２との間のこの実質的な構造的同一性（すなわち、９７％を超える同一性）、実施例に提供されそして本明細書中の他の場所に記載される脈管形成活性に対するインビボでの臨床結果を考慮して、組換えｂＦＧＦ−２を投与する投薬量および様式は、組換えｈＦＧＦ−２（まとめて「ＦＧＦ−２」）に直接適用可能であるはずである。

実施例の組換えｂＦＧＦ−２（配列番号２）は、米国特許第４，９５６，４５５（’４５５特許）、名称「Ｂｏｖｉｎｅ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」（０９／１１／９０に発行され、本明細書中に参考として全体が援用される）に詳細に記載される技術を使用して、製剤品質（９８％以上の純度）まで精製された。詳細には、本出願人の単位用量の組換えｂＦＧＦ−２の精製に使用される最初の２工程は、「以前に記載される通りの従来のイオン交換精製工程および逆相ＨＰＬＣ精製工程」である。［'４５５特許（Ｂｏｌｅｎら、ＰＮＡＳ ＵＳＡ ８１：５３６４〜５３６８（１９８４）を引用）］。第３の工程（'４５５特許は「キー（ｋｅｙ）精製工程」と呼ぶ［'４５５特許、カラム７、５〜６行を参照のこと］）は、ヘパリンＳＥＰＨＡＲＯＳＥ（登録商標）アフィニティクロマトグラフィーであり、ＦＧＦ−２の強力なヘパリン結合アフィニティーが利用され、約１．４Ｍおよび１．９５Ｍ ＮａＣｌで溶出する場合、７，０００倍精製が達成される［'４５５特許、カラム９、２０〜２５行］。ポリペプチドの均一性が、逆相高圧液体クロマトグラフィー（ＲＰ−ＨＰＬＣ）により確認された。緩衝液交換が、ＳＥＰＨＡＤＥＸ（登録商標）Ｇ−２５（Ｍ）ゲル濾過クロマトグラフィーにより達成された。

上記のＦＧＦに加えて、本発明の組成物および方法の脈管形成因子はまた、上記のＦＧＦのうちのいずれか１つの「脈管形成的に活性なフラグメント」を含む。その最も単純な形態において、その脈管形成フラグメントは、Ｎ末端Ｍｅｔ除去のための周知の技術（例えば、メチオニンアミノペプチダーゼでの処理）を使用する、Ｎ末端メチオニンの除去により作製される。第２の望ましい短縮型は、そのリーダー配列を含まないＦＧＦを含む。当業者は、リーダー配列を、細胞膜を通過するのを容易にするが活性には必要でなく、成熟タンパク質上には見出されない、タンパク質のＮ末端の疎水性残基の並びであると認識する。

ＦＧＦに対する好ましい短縮は、１４６残基を有する成熟ｈＦＧＦ−２（配列番号６）または類似のｂＦＧＦ−２（配列番号２）に対して決定される。一般的規則として、ＦＧＦのアミノ酸配列が、最大のホモロジーを得るようにＦＧＦ−２と整列される。整列されたＦＧＦ−２の対応するＮ末端を超えて伸長するＦＧＦ部分が、一般的に、有害な効果を伴わない欠失に適切である。同様に、整列されたＦＧＦ−２のＣ末端を超えて伸長するＦＧＦ部分もまた、有害な効果を伴わずに欠失され得る。

上記のものより小さいＦＧＦのフラグメントもまた、それがＦＧＦの細胞結合部分および少なくとも１つのヘパリン結合セグメントを保持する限り、本発明の範囲内にある。残基１〜１４６を有する成熟ＦＧＦ−２の場合、その２つの推定細胞結合部位が、その残基位置３６〜３９および７７〜８１にある。Ｙｏｓｈｉｄａら「Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ ｈｓｔ，ａ Ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ Ｇｅｎｅ Ｅｎｃｏｄｉｎｇ ａ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｔｏ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｉｎｔ−２−Ｅｎｃｏｄｅｄ Ｐｒｏｔｅｉｎ」ＰＮＡＳ ＵＳＡ ８４：７３０５〜７３０９（１９８７年１０月）図３を参照のこと。ｈＦＧＦ−２の２つの推定ヘパリン結合部位は、その残基位置１８〜２２および１０７〜１１１にある。Ｙｏｓｈｉｄａ（１９８７）図３を参照のこと。ｈＦＧＦ−２アミノ酸配列とｂＦＧＦ−２アミノ酸配列との間の実質的配列同一性を考慮して、本発明者らは、ｂＦＧＦ−２の細胞結合部位もまた、その残基位置３６〜３９および７７〜８１にあり、そしてヘパリン結合部位がその残基位置１８〜２２および１０７〜１１１にあると予測する。上記と一致して、ｂＦＧＦ−２のＮ末端短縮物は、ウシにおいてその脈管形成活性を排除しないことが、当該分野で周知である。詳細には、当該分野は、１４６残基成熟ＦＧＦ−２と比較してＮ末端短縮を有するｂＦＧＦ−２の天然に存在しそして生物学的に活性な数個のフラグメントを開示する。成熟ＦＧＦ−２の残基１２〜１４６を有する活性でありかつＮ短縮型のＦＧＦ−２フラグメントが、ウシ肝臓にて見出され、そして成熟ＦＧＦ−２の残基１６〜１４６を有する別の活性でありかつＮ短縮型のＦＧＦ−２フラグメントが、ウシ腎臓、副腎および精巣にて見出された。［米国特許第５，１５５，２１４号、カラム６、４１〜４６行（Ｕｅｎｏら、Ｂｉｏｃｈｅｍ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ．１３８：５８０〜５８８（１９８６）を引用）を参照のこと］。同様に、ＦＧＦ活性を有することが知られるＦＧＦ−２の他のフラグメントは、ＦＧＦ−２（２４〜１２０）−ＯＨおよびＦＧＦ−２（３０〜１１０）−ＮＨ₂である。［米国特許第５，１５５，２１４号、カラム６、４８〜５２行］。これら後者のフラグメントは、ＦＧＦ−２の細胞結合部分の両方（残基３６〜３９および７７〜８１）およびヘパリン結合セグメントの１つ（残基１０７〜１１１）を保持する。従って、ＦＧＦの脈管形成的に活性なフラグメントは、代表的には、ホモロジーを最大にするように成熟ＦＧＦ−２（残基１〜１４６を有する）と整列された場合に、少なくともＦＧＦ−２の残基位置３０〜１１０に対応する残基を有し、より代表的には、少なくともＦＧＦ−２の残基１８〜１４６に対応する残基を有する、ＦＧＦの末端短縮型フラグメントを含む。

上記のＦＧＦに加えて、本発明の単位用量、組成物および方法の脈管形成因子はまた、その「脈管形成的に活性な．．．ムテイン」を包含する。用語「脈管形成的に活性な．．．ムテイン」により、ＦＧＦととも使用される場合に、各ＦＧＦの少なくとも６５％配列同一性（好ましくは７５％、より好ましくは８５％、最も好ましくは９０％の配列同一性）および脈管形成活性の少なくとも８０％を保持する、天然に存在するＦＧＦの変異形態が意味され、ここで、配列同一性は、以下の検索パラメーターを用いるアフィンギャップ検索を使用してＭＳＰＲＣＨプログラム（Ｏｘｆｏｒｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ）にて実行されるようなＳｍｉｔｈ−Ｗａｔｅｒｍａｎホモロジー検索アルゴリズム（Ｍｅｔｈ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．７０：１７３〜１８７（１９９７））によって決定される：ｇａｐ ｏｐｅｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１２、およびｇａｐ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｅｎａｌｔｙ＝１。好ましくは、変異は、Ｌ−アミノ酸を使用する「保存的アミノ酸置換」であり、１つのアミノ酸が、別の生物学的に類似のアミノ酸により置換される。上記のように、保存的アミノ酸置換は、置換されるアミノ酸の全体的電荷、疎水性／親水性、および／または立体的かさを保存する置換である。

保存的置換の例は、以下のグループ間の置換である：Ｇｌｙ／Ａｌａ、Ｖａｌ／Ｉｌｅ／Ｌｅｕ、Ｌｙｓ／Ａｒｇ、Ａｓｎ／Ｇｌｎ、Ｇｌｕ／Ａｓｐ、Ｓｅｒ／Ｃｙｓ／Ｔｈｒ、およびＰｈｅ／Ｔｒｐ／Ｔｙｒ。ＦＧＦ−２の場合、このような保存的アミノ酸置換の例は、ジスルフィド形成に関与しない残基位置のシステイン（例えば、成熟ＦＧＦ−２（残基１〜１４６を有する）の残基８７および９２）のうちの１つまたは両方に代わるセリンの置換を含む。好ましくは、置換は、脈管形成活性に関係しない、Ｎ末端に導入される。しかし、上記のように、保存的置換は、その分子全体にわたる導入に適切である。；
当業者は、公知の技術を使用し、本発明の単位用量、組成物および方法における使用のための脈管形成活性を有するＦＧＦポリペプチドムテイン（またはフラグメントムテイン）の発現を得るように、ＦＧＦのうちのいずれかをコードするＤＮＡ中に１つ以上の点変異を作製し得る。ＦＧＦの脈管形成的に活性なムテインを調製するために、当該分野で公知であり、そして／またはＧｉｌｍａｎら、Ｇｅｎｅ ８：８１（１９７９）もしくはＲｏｂｅｒｔｓら、Ｎａｔｕｒｅ ３２８：７３１（１９８７）に教示されるように、ＦＧＦをコードするｃＤＮＡに１つ以上の点変異を導入するために、部位特異的変異誘発についての標準的技術を使用する。

従って、本発明の薬学的組成物は、脈管形成因子の脈管形成的に有効な量を、薬学的に受容可能なキャリア中に含み、この脈管形成的に有効な量は、約５ｎｇ〜約１３５，０００ｎｇ未満の範囲であり、この脈管形成因子は、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ），血管内皮増殖因子Ａ（ＶＥＧＦ−Ａ）、ＶＥＧＦ−Ｄ、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、またはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。好ましい実施形態において、薬学的組成物の脈管形成因子は、ヒトＶＥＧＦ−Ａ、ヒトＶＥＧＦ−Ｄ、ＦＧＦまたはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。より好ましくは、薬学的組成物の脈管形成因子は、ＦＧＦ（例えば、ＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２もしくはＦＧＦ−５）またはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。最も好ましくは、薬学的組成物の脈管形成因子は、ＦＧＦ−２またはその脈管形成的に活性なフラグメントもしくはムテインである。

本発明の単位用量薬学的組成物は、その第２の記載される成分として、「薬学的に受容可能なキャリア」を含む。用語「薬学的に受容可能なキャリア」により、本明細書中で使用される場合、組成物を受ける患者に有害な抗体の生成をそれ自体は誘導せずかつ過度の毒性を伴わずに投与され得る、タンパク様医薬の安定化および／または投与のために当該分野で周知の任意のキャリアもしくは希釈剤が意味される。薬学的に受容可能なキャリアおよびその後の処理の選択は、液体形態または固体形態のいずれかで、処置する医師に本発明の単位用量組成物を提供するのを可能にする。しかし、本発明の単位用量組成物は、患者に心筋層への注射により投与される前に、液体形態に変換される。

この単位用量薬学的組成物が液体形態である場合、その薬学的に受容可能なキャリアは、静脈内（「ＩＶ」）または冠内（「ＩＣ」）の注射もしくは注入に適切な、安定なキャリアまたは希釈剤を含む。注射可能な溶液または注入可能な溶液に適切なキャリアもしくは希釈剤は、ヒトレシピエントに対して、使用される投薬量および濃度で非毒性であり、そしてこれらとしては、滅菌水、糖溶液、生理食塩水溶液、タンパク質溶液またはそれらの組み合わせが挙げられる。

代表的に、薬学的に受容可能なキャリアは、緩衝液および１以上の安定剤、還元剤、酸化防止剤および／または酸化防止キレート剤を含む。タンパク質ベースの組成物（特に、薬学的組成物）の調製における緩衝液、安定剤、還元剤、酸化防止剤およびキレート剤の使用は、当該分野で周知である。例えば、Ｗａｎｇら、「Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｅｘｃｉｐｉｅｎｔｓ ａｎｄ ｐＨｓ ｆｏｒ Ｐａｒｅｎｔｅｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ」、Ｊ．Ｐａｒｅｎｔ．Ｄｒｕｇ Ａｓｓｎ．，３４（６）：４５２−４６２（１９８０）；Ｗａｎｇら、「Ｐａｒｅｎｔｅｒａｌ Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ Ｓｔａｂｉｌｉｚｅｒｓ」、Ｊ．Ｐａｒｅｎｔ Ｓｃｉ．ａｎｄ Ｔｅｃｈ．，４２：Ｓ４−Ｓ２６（補遺１９８８）；Ｌａｃｈｍａｎら、「Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓ ａｎｄ Ｃｈｅｌａｔｉｎｇ Ａｇｅｎｔｓ ａｓ Ｓｔａｂｉｌｉｚｅｒｓ ｉｎ Ｌｉｑｕｉｄ Ｄｏｓａｇｅ Ｆｏｒｍｓ−Ｐａｒｔ １」、Ｄｒｕｇ ａｎｄ Ｃｏｓｍｅｔｉｃ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ、１０２（１）：３６−３８、４０および１４６−１４８（１９６８）；Ａｋｅｒｓ，Ｍ．Ｊ．，「Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓ ｉｎ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ」、Ｊ．Ｐａｒｅｎｔ Ｓｃｉ．ａｎｄ Ｔｅｃｈ．，３６（５）：２２２−２２８（１９８８）；およびＭｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、第２５巻、ＣｏｌｏｗｉｃｋおよびＫａｐｌａｎ編、Ｋｏｎｉｇｓｂｅｒｇによる「Ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｄｉｓｕｌｆｉｄｅ Ｂｏｎｄｓ ｉｎ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｗｉｔｈ Ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ」、１８５−１８８頁。適切な緩衝液としては、アセテート、アジパート、ベンゾエート、シトレート、ラクテート、マレアート、ホスフェート、タータレートおよび種々のアミノ酸の塩が挙げられる。Ｗａｎｇ（１９８０）４５５頁を参照のこと。適切な安定剤としては、トレオース（ｔｈｒｅｌｏｓｅ）またはグリセロールのような炭水化物が挙げられる。適切な還元剤（還元型システインの還元状態を維持する）としては、ジチオトレイトール（ＤＴＴ（クリランド試薬としても公知））またはジチオエリトリトール（０．０１％〜０．１％重量／重量）；アセチルシステインまたはシステイン（０．１％〜０．５％（ｐＨ２〜３））；およびチオグリセロール（０．１％〜０．５％（ｐＨ３．５〜７．０））およびグルタチオンが挙げられる。Ａｋｅｒｓ（１９８８）、２２５〜２２６頁を参照のこと。適切な酸化防止剤としては、重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、チオ硫酸ナトリウム、ホルムアルデヒドスルホキシル酸ナトリウム、およびアスコルビン酸が挙げられる。Ａｋｅｒｓ（１９８８）、２２５頁を参照のこと。適切なキレート剤（微量金属をキレート化して、還元型システインの微量金属触媒酸化を防止する）としては、シトレート、タータレート、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）の二ナトリウム塩、四ナトリウム塩およびカルシウム二ナトリウム塩、およびジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）が挙げられる。例えば、Ｗａｎｇ（１９８０）、４５７〜４５８頁および４６０〜４６１頁、ならびにＡｋｅｒｓ（１９８８）、２２４〜２２７頁を参照のこと。適切な糖としては、グリセロール、トレオース、グルコース、ガラクトースおよびマンニトール、ソルビトールが挙げられる。適切なタンパク質は、ヒト血清アルブミンである。

液体形態において、本発明の代表的な単位用量の薬学的組成物は、０．１ｍｌ〜１０ｍｌの薬学的に受容可能なキャリア中に溶解された、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の脈管形成因子を含む。本発明の薬学的組成物は、心臓カテーテルまたは他の注射デバイス（これらは、デッドスペースを有する）を介して投与されるので、その薬学的組成物を含むバイアルが、患者に投与されるべきよりもより多くの薬学的組成物を含むように、そのバイアルを処方することが簡便である。例えば、投与される脈管形成因子の用量が、４５ｎｇである場合、バイアルは、その送達装置内のデッドスペースを充填するために適切な過剰の溶液と共に、６０〜７５ｎｇの脈管形成因子を含むよう処方される。デッドスペースを見込まない代替的実施形態において、薬学的組成物は、薬学的受容可能な緩衝液、希釈剤またはキャリアの前で、心臓カテーテルに装填され、次いで、新脈管形成を必要とする心筋層の１以上の部位に対して、１回以上の適切な投薬量を送達するために使用される。上記で議論したように、上記の薬学的組成物のための薬学的に受容可能なキャリアは、緩衝液および１以上の安定剤、還元剤、酸化防止剤および／または酸化防止キレート剤を含む。

脈管形成因子が、ＦＧＦであり、そして薬学的に受容可能なキャリアが、液体キャリアである場合、代表的な薬学的組成物は、約５ｎｇ／ｍｌ〜１３５，０００ｎｇ／ｍｌ、より代表的には、約５ｎｇ／ｍｌ〜６７，５００ｎｇ／ｍｌのＦＧＦあるいはその脈管形成性のフラグメントまたはムテイン、１０ｍＭ チオグリセロール、１３５ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭ クエン酸ナトリウム、および１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ ５を含む。上記組成物についての適切な希釈剤または洗浄剤（ｆｌｕｓｈｉｎｇ ａｇｅｎｔ）としては、任意の上記のキャリアである。代表的に、希釈剤は、キャリア溶液自体であり、この例においては、このキャリア溶液は、１０ｍＭ チオグリセロール、１３５ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭ クエン酸ナトリウム、および１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ ５を含む。

液体形態で提供される場合、本発明の単位用量の薬学的組成物は、長期間保存する場合に不安定になる。安定性および貯蔵寿命を最大化するために、本発明の単位用量の薬学的組成物は、−６０℃で凍結保存するべきである。解凍したときに、この溶液は、冷凍した状態で６ヶ月間安定である。本発明の単位用量の薬学的組成物の代表的なバイアルは、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の脈管形成因子あるいはその脈管形成性のフラグメントまたはムテインを含有する、約１．０〜１００ｍｌ（より代表的には、約１．０〜２５ｍｌ、最も代表的には、約１．０〜１０ｍｌ）の上記の薬学的に受容可能なキャリアを含む。

別の実施形態において、本発明の単位用量の薬学的組成物は、凍結乾燥（フリーズドライ）形態で提供される。凍結乾燥形態において、単位用量の薬学的組成物は、治療的有効性を損なうことなく、実質的に６ヶ月よりも長い間、冷凍温度で保存され得る。凍結乾燥は、薬学的に受容可能なキャリア中に溶解した有効量の脈管形成因子を含む溶液の、減圧下での迅速なフリーズドライによって達成される。上記の凍結乾燥を行う、凍結乾燥機は、市販されており当業者によって容易に操作され得る。代表的に、複数のバイアル（各々、その中に、本発明の薬学的組成物（１以上の用量を含む）または単位用量組成物を含む）を、凍結乾燥機中にバッチで配置し、そして全ての液体キャリアが除去されるまで、冷却および減圧に供する。患者への投与の前に、この凍結乾燥生成物は、好ましくは、そのバイアル中で、適切な滅菌水性希釈剤（代表的には、０．９％（または、それ未満）の滅菌生理食塩水溶液）またはいくらかの他の薬学的に受容可能なキャリアで、既知の濃度に再構成される。主治医によって評価された新脈管形成の必要性に依存して、５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満、代表的には、約５ｎｇ〜約６７，５００ｎｇの脈管形成因子を含む単位用量が、単回注射または連続注射（代表的には、２〜４０回の注射）として、新脈管形成が必要な虚血心筋層に投与される。

第３の局面において、本発明は、患者の心臓において新脈管形成を誘導するため（または血管灌流を増加するため、あるいはＤＳＥによって測定されるような血管密度または局所的心筋機能を増加するため）の方法に関する。この方法は、有効量の脈管形成因子を、この患者の心筋層に、新脈管形成が必要な１以上の領域に直接投与する工程を包含し、有効量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の脈管形成因子である。代表的には、この有効量の脈管形成因子は、５ｎｇ〜６７，０００ｎｇの脈管形成因子である。好ましくは、患者は、ヒト患者である。より好ましくは、このヒト患者は、冠状動脈疾患（ＣＡＤ）または心筋梗塞（ＭＩ）の症状を有する。上記で言及した、用語「血管灌流」および「血管密度」とは、新脈管形成の客観的尺度である。本発明の方法に従う脈管形成因子の投与に応答する、「血管灌流」および「血管密度」の増加は、本明細書中の図４および６〜８に示される。本発明の方法に従って単位用量の脈管形成因子を投与することによって生じる、局所的な心機能の増加を、図５および１１に示す。

上記の方法において、脈管形成因子は、ＰＤＧＦ、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＴＧＦ−β１、ＦＧＦ、あるいはそれらの脈管形成的に活性なムテインまたはフラグメントの群から選択されるメンバーである。好ましくは、脈管形成因子は、ＶＥＧＦ−Ａ、ＶＥＧＦ−ＤまたはＦＧＦ、あるいはそれらの脈管形成的に活性なフラグメントまたはムテインである。より好ましくは、脈管形成因子は、ＦＧＦ（例えば、ＦＧＦ−１、ＦＧＦ−２またはＦＧＦ−５）、あるいはそれらの脈管形成的に活性なフラグメントまたはムテインである。最も好ましくは、脈管形成因子は、ＦＧＦ−２、あるいはその脈管形成的に活性なフラグメントまたはムテインである。

上記の方法において、脈管形成因子は、心筋層薬物送達について当該分野で公知の技術のうちの任意の１つを使用して、新脈管形成を必要する患者の心筋層へ送達される。患者の新脈管形成についての必要性は、冠動脈造影、ＭＲＩなどのような従来の評価技術を使用して、主治医によって評価される。最も単純な実施形態において、薬物送達デバイス（例えば、注射器）に装着された針は、新脈管形成を必要とする心筋層の領域への有効量の脈管形成因子の送達のために、身体の外側から胸腔（ｃｈｅｓｔ ｃａｖｉｔｙ）および心膜を通ってその心筋層の領域に定位的に指向される。一旦投薬量が心筋層に送達されると、ニードルを抜くかまたは脈管形成因子の送達のためにその心筋層の１以上の部位に再位置付けされる。心筋層の注射部位の数（代表的には、２〜４０）に関わらず、送達される脈管形成因子の全量は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満、より代表的には、５ｎｇ〜６７，０００ｎｇである。心筋層は、脈管形成因子の送達後に収縮するので、いくらかの少量の用量の脈管形成因子は、心筋層から、針穴を介してそして心膜空間内に押し戻され、ここで一時的に、必要なその領域での局所的濃度を生じ、引き続いて、その心膜液に混合されて、長期間の間、心筋層を脈管形成因子中に浴し続けるということが考えられる。これらの効果は、本発明の脈管形成因子のＩＭｃ用量の効果を増強するよう作用するだけである。従って、別の局面において、本発明は、患者の心臓において新脈管形成を誘導するための方法に関し、単位用量の脈管形成因子を新脈管形成の必要な患者の心筋層内へ直接投与する工程、およびその残余量の脈管形成因子を、この心筋層周辺の心膜空間に侵入させる工程を包含する。

新脈管形成を誘導するため（または血管灌流を増加するため、あるいはＤＳＥによって測定されるような血管密度または局所的心筋機能を増加するため）の方法の別の実施形態において、単位用量の脈管形成因子は、デバイスから心筋層に直接送達され、このデバイスは、その身体の外側に近位端を、そして冠状静脈、冠状動脈または心臓チャンバ内に位置付けられた遠位端を有する。冠状静脈、冠状動脈または心臓チャンバから心筋層への、注射による薬物送達のための多くのデバイスが、当該分野で周知である。このようなデバイスの例としては、心臓カテーテルが挙げられ、これは、遠位端に伸縮自在な針を有し、新脈管形成を必要とする心筋層の領域に隣接して位置付けられる際に、所定量の薬物の送達のために、その心筋層内へ針を伸ばすことが可能である。現在の方法において、このようなデバイスは、本発明の超低用量の脈管形成因子を、新脈管形成を必要とする心筋層の領域へ送達する。脈管形成因子の送達後、針は、遠位端内に引き戻され、そしてデバイスの遠位端は、新脈管形成を必要とする心筋層の第２の領域に隣接して再位置付けされ、ここで、針が、心筋層内に再度伸ばされて、超低用量の脈管形成因子が送達される。次いで、この手順は、必要とされるだけ繰り返される。上記の実施形態の針はまた、レーザー（レーザー脈管形成術において使用されるような）に置換可能であり、ここで、このレーザーは、新脈管形成を必要とする心筋層の領域内へチャネルを開けるために使用され、そしてレーザーに隣接する開口部が、超低用量の脈管形成因子を、そのチャネル内に直接送達する。この後者のデバイスは、「Ｔｒａｎｓｍｕｒａｌ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ Ａｐｐｒａｔｕｓ」との表題の、ＷＯ ９８／０５３０７および対応ＵＳＳＮ０８／９０６，９９１（１９９７年８月６日に出願され、ＬｏｃａｌＭｅｄ，Ｐａｌｐ Ａｌｔｏ ＣＡに譲渡された）に記載される。薬物送達に適切な類似の心臓カテーテルは、ＡＣＳ、Ｇｕｉｄａｎｔ、ＡｎｇｉｏｎおよびＬｏｃａｌＭｅｄのような製造者から市販されている。

心筋層への薬物の送達に適切な他のデバイスとしては、一連の薬物送達細孔が、従来のバルーン心臓カテーテルのバルーン部分の外面上に配置されている送達デバイスが挙げられ、これは、バルーンの膨張時に、その薬物送達細孔を血管上皮と直接接触させる。次いで、薬物は、この薬物が上皮を通って下層の心筋層内へ通過させる圧力下で、その薬物送達細孔を通して送達される。このタイプのデバイスは、「Ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ Ａｐｐａｒａｔｕｓ ｆｏｒ Ｐｒｅｓｓｕｒｉｚｅｄ Ｉｎｔｒａｌｕｍｉｎａｌ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ」という表題の米国特許第５，８１０，７６７号（１９９８年９月２２日公布）；および「Ｉｎｔｒａｖａｓｃｕｌａｒ Ｃａｔｈｅｔｅｒ ｗｉｔｈ Ｉｎｆｕｓｉｏｎ Ａｒｒａｙ」という表題の米国特許第５，７１３，８６０号（１９９８年２月３日公布）；ならびに「Ｌｏｃａｌｉｚｅｄ Ｉｎｔｒａｖａｓｃｕｌａｒ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｍｏｔｉｏｎ ｏｆ Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ」という表題の係属中の出願ＷＯ９７／２３２５６および対応ＵＳＳＮ０８／７５３，２２４（現在係属中）に開示される。

上記の心臓カテーテルは、心臓カテーテル使用のための標準的な技術を使用して利用される。代表的に、主治医は、カテーテルの遠位端を、冠状新脈管形成を必要とする患者の大腿動脈または鎖骨下動脈に挿入し、そしてカテーテルを可視化しながら、その遠位端を、新脈管形成を必要とする心臓の領域に近位する、冠状動脈、静脈または心臓チャンバにガイドする。カテーテルの遠位端は、新脈管形成を必要とする心筋層の領域に隣接して配置され、そして上記のように使用して超低用量（すなわち、脈管形成に効果的な量）の脈管形成因子を送達する。本発明に従って、脈管形成に有効な量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満、代表的には、５ｎｇ〜６７，５００ｎｇの脈管形成因子を含む。脈管形成に有効な量の脈管形成因子は、送達デバイスの各々の再位置付けによって心筋層に注射されるが、注射される脈管形成因子の全量は、１３５，０００ｎｇ未満（すなわち、１３５μｇ未満）である。

上記の方法の他の実施形態において、１以上の用量の脈管形成因子は、数日間の間か、２日に１回で継続的にか、数週間の間か、または２週間に１回で継続的にかで、心筋層の適切な領域に投与される。しかし、１回の処置レジメンで注射される脈管形成因子の全量は、１３５，０００ｎｇ未満（すなわち、１３５μｇ未満）である。

冠状新脈管形成の必要性に最もよく関連する疾患としては、冠状動脈疾患（ＣＡＤ）（すなわち、患者の１以上の冠状動脈が、部分的に閉塞される）および心筋梗塞（ＭＩ）（すなわち、冠状動脈が、十分に閉塞されて、酸素付加された血液のための動脈に依存する下流の心筋組織の壊死を引き起こす）である。従って、別の局面において、本発明はまた、ＣＡＤまたはＭＩの患者を処置するための方法に関し、この方法は、有効量の脈管形成因子を、患者の心筋層に、新脈管形成を必要とする１以上の領域に、直接投与する工程を包含し、有効量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜１３５，０００ｎｇ未満の脈管形成因子である。代表的に、有効量の脈管形成因子は、約５ｎｇ〜約６７，５００ｎｇの脈管形成因子である。好ましくは、患者は、ヒト患者である。

本出願人の上記の薬学的組成物、単位用量または方法における活性薬剤は、好ましくは、組換えＦＧＦあるいはその脈管形成的に活性なフラグメントまたはムテインである。より好ましくは、脈管形成因子は、ＦＧＦ−２あるいは脈管形成的に活性なそのフラグメントまたはムテインである。

本発明の脈管形成因子の超低投与量の臨床的効力は、脈管形成因子が、減少するより少ない量で動物およびヒトに投与された一連の工程で確立された。これらの臨床研究の脈管形成因子は、米国特許第４，９５６，４５５号（Ｂａｉｒｄ）に開示されるような１４６残基を有する組換え成熟ｂＦＧＦ−２であり、そして以後本明細書ではｒｂＦＧＦ−２と呼ばれる。本明細書で用いられる超低投与量の脈管形成因子の臨床的効力の予備的証拠として、最適の医療管理にもかかわらず、症候性のままである重篤なＣＡＤの症状を示すヒト患者に、心臓カテーテルを経由する冠内注入により減少する投与量のｒｂＦＧＦ−２を投与した。（実施例３を参照のこと。）投与されたＦＧＦ−２の投与量（および患者の数）は、０．３３μｇ／ｋｇ（ｎ＝４）、０．６５μｇ／ｋｇ（ｎ＝４）、２．０μｇ／ｋｇ（ｎ＝８）、６．０μｇ／ｋｇ（ｎ＝４）、１２．０μｇ／ｋｇ（ｎ＝４）、２４μｇ／ｋｇ（ｎ＝８）、３６μｇ／ｋｇ（ｎ＝１０）および４８μｇ／ｋｇ（ｎ＝１０）であった。アンギナ頻度および生活の質は、ベースライン（ＦＧＦ−２投与前）およびＦＧＦ−２投与後約６０日におけるシアトルアンギナ質問表（Ｓｅａｔｔｌｅ Ａｎｇｉｎａ Ｑｕｅｓｔｉｏｎｎａｉｒｅ）（ＳＡＱ）により評価した。運動耐性時間（ＥＴＴ）は、トレッドミル試験により評価した。休息／運動核灌流およびゲート化セスタミビ決定静止駆出率（ｇａｔｅｄ ｓｅｓｔａｍｉｂｉ−ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｒｅｓｔ ｅｊｅｃｔｉｏｎ ｆｒａｃｔｉｏｎ）（ＥＦ）、および磁気共鳴画像化法（ＭＲＩ）を、ベースライン、ならびにＦＧＦ−２投与後３０日および６０日で評価した。評価されたその他の終点は、（客観的に駆出率（ＥＦ）、正常の壁厚（ＮＷＭ）、標的の壁厚（ＴＷＮ）、虚血領域ゾーンおよび側副の程度を測定するための）ＭＲＩを含んだ。それぞれ表２〜４を参照のこと。

患者は、ＩＣ投与されたＦＧＦ−２のすべての投与量に対して有意な臨床的改善を示した。特に、表３は、最低投与量のＦＧＦ−２（２μｇ／ｋｇより少ない）を受けた患者が、評価された５つの規準のうち４つで、より高い投与量のＦＧＦ−２（２μｇ／ｋｇより多い）を受けた患者が示したより良好な結果を示したことを記載する。ＣＡＤを処置するための上記に記載された方法は、当該分野で採用された標準的客観的判定基準（すなわちＥＴＴ）により評価されたとき、処置された患者のＥＴＴにおいて１分半〜２分の予期せぬ優れた増加を提供した。これは、現在の処置の様式、すなわち脈管形成術について臨床的に有意であるとみなされる３０秒の増加と比較したとき、非常に良好であると比較される。

本発明の脈管形成術試薬について当該分野で報告された主要な副作用は、急性低血圧症である。これは、多くの脈管形成因子の血管拡張薬としての既知の効果に起因する。しかし、本発明の範囲内の任意の超低投与量の脈管形成因子の単独または一連の投与の後、如何なる有害な低血圧作用は観察されなかった。

インビボで脈管形成活性について脈管形成因子を試験することにおいて、本明細書で実施例２の規準を満足する、ＣＡＤをもつと診断された５２人のヒト患者に、約２０分間に亘り冠内（ＩＣ）注入により０．３３μｇ／ｋｇ〜４８μｇ／ｋｇのＦＧＦ−２の単位投与量を投与した。特に、５２人の患者では、冠状動脈（心臓）カテーテルを処置の必要な患者の動脈中（例えば、大腿または鎖骨下）中に挿入し、そしてこのカテーテルを、これが処置される患者の適切な冠状動脈中に位置するまで可視化して前方に押した。明りょうなラインを維持するための標準的な注意を用い、脈管形成因子を、１０〜３０分の時間に亘り実質的に連続的に、単位投与量を注入することにより投与した。次いで、５２人の処置患者をシアトルアンギナ質問表により評価した。これは、客観的および主観的規準の混合された組み合わせに基づく評価を提供する。表２を参照のこと。このシアトルアンギナ質問表は、処置前および処置後の両方で評価される以下の５つのサブスケールを備えた、確証された疾患特異的証書である：１）「労作性能力」＝肉体的活性の制限；２）「疾患認知」＝ＭＩを気にする；３）「処置満足度」；４）「アンギナ頻度」＝発症および舌下ニトログリセリン使用の数；および５）「アンギナ安定性」＝最も激しい肉体的活性をともなう発症の数。この５つのサブスケールの各々に対する可能な範囲は０〜１００であり、より高いスコアはより良好な生活の質を示す。さらに、平均ベースラインスコア（処置前）と処置後スコアとの間の８点以上の平均値の変化は、「臨床的に有意」であるとして認識される。表２は、予備試験され、次いでＩＣ注入により０．３３μｇ／ｋｇ〜２４μｇ／ｋｇのｒｂＦＧＦ−２の単一単位投与量を投与された２８人の患者が、「シアトルアンギナ質問表」により評価された５つの「生活の質」について１３〜３６点の平均のスコアの増加を示したことを報告する。本明細書にある表２を参照のこと。これらの１３〜３６点の増加は、処置の代替の様式中で「臨床的に有意」であるとして当該分野で認識されている８点の変化より約１．６〜４．５倍大きかった。本明細書中の表２を参照のこと。さらに、表２の最初の１５人の患者についての合わせた結果を、低投与量（２μｇ／ｋｇより小さいかまたはそれに等しい）および高（２μｇ／ｋｇより多い）投与量のｒｂＦＧＦ−２の間で分類し、そして「シアトルアンギナ質問表」により評価したとき、両方の投与量がそれぞれ約１２．３〜５８．１および約１０．９〜３２．１の範囲の増加したスコアを提供することが見出された。本明細書中の表３を参照のこと。この増加したスコアは、処置の代替様式における「臨床的に有意」であると考えられている８点の変化より約１．４〜７．２倍大きかった。

同じフェーズＩ治験において、ＣＡＤをもつと診断され、かつ本明細書の実施例２の規準を満足する５２人のヒト患者に、０．３３μｇ／ｋｇ〜４８μｇ／ｋｇのｒｂＦＧＦ−２の単一単位投与量をＩＣ投与した。最大許容投与量は、重篤であるが一過性の低血圧症により３６μｇ／ｋｇと規定され、低血圧症は、次のより高い投与量４８μｇ／ｋｇで１０人の患者のうち２人で観察された。部位の１つで、２３人の患者の心臓は、処置前（「ベースライン」）、および処置後３０および６０日の両方で、磁気共鳴画像化法（ＭＲＩ）により、改善された冠状充足性の客観的徴候に対して評価された。ＭＲＩにより評価された客観的規準は以下である：１）左心室（ＬＶ）駆出率（ＥＦ）；２）正常の壁厚（ＮＷＴ）；３）正常の壁運動（ＮＷＭ）；４）側副の程度；５）虚血領域ゾーン；６）標的の壁厚（ＴＷＴ）；７）標的の壁運動（ＴＷＭ）；および８）灌流または遅延到達ゾーン（％ＬＶ）。患者はまた、アンギナ、トレッドミル運動持続時間、休息／運動核灌流についても評価された。結果を表４に要約する。表４は、ベースラインアンギナクラスが、ＩＣ ＦＧＦ−２後３０および６０日で、２．６〜１．４および１．２までそれぞれ低下したことを反映する。平均のトレッドミル運動時間は、８．５分のベースラインから、処置後３０および６０日で９．４および１０．０分まで増加した。左心室駆出率（ＬＶ ＥＦ）においては有意な差は観察されなかった。しかし、標的の壁運動は、有意に増加し、１５．４％のベースラインから、ＦＧＦ−２処置後２３．５％（３０日）および２４．１％（６０日）まで動いた。同様に、標的の壁厚は、２８．７％のベースラインから、ＦＧＦ−２処置後、３４．７％（３０日）および４５．９％（６０日）まで有意に増加した。灌流においてもまた有意な増加があり、遅延到達ゾーン（％ＬＶ）における減少によって測定され、この遅延到達ゾーンは１８．９％のベースラインから、ＦＧＦ−２処置後７．１％（３０日）および１．８２％（６０日）まで減少した。したがって、ＣＡＤ患者に、ＦＧＦ−２のような脈管形成因子の単一ＩＣ注入を提供することは、患者に、ＭＲＩおよびその他の従来の規準により客観的に測定されるような有意な肉体的改善を提供した。

（薬物動態学および代謝）
腎臓および肝臓は、脈管形成因子の除去のための主要な器官である。特に、腎臓は、約６０ｋＤのタンパク質カットオフを有し、そしてそれ故、血清アルブミンを保持する（ＭＷ６０ｋＤ）。しかし、本発明のすべての脈管形成因子は、４０ｋＤより小さい分子量を有する。本明細書の実施例の脈管形成因子であるＦＧＦ−２は、約１６ｋＤの分子量を有する。従って、腎臓排泄が期待される。市販のｂＦＧＦ−２の放射標識生体分配研究では、肝臓および腎臓の両方が、ＩＶまたはＩＣ注射後１時間で高カウントの放射標識ｂＦＧＦ−２を含むことが示された。ｂＦＧＦ−２の別の組換えヨウ素化形態がラットに与えられた公開された研究では、肝臓が除去の主要器官として同定された。Ｗｈａｌｅｎら、「Ｔｈｅ Ｆａｔｅ ｏｆ Ｉｎｔｒａｖｅｎｏｕｓｌｙ Ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ ｂＦＧＦ ａｎｄ ｔｈｅ Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ｈｅｐａｒｉｎ」Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒｓ、１：１５７−１６４（１９８９）。より詳細には、ＦＧＦ−２は、通常循環においてα₂−マクログロブリンに結合し、しかもこの複合体はＫｕｐｆｆｅｒ細胞上のレセプターによりインターナライズされることが知られている。Ｗｈａｌｅｎら（１９８９）およびＬａＭａｒｒｅら「Ｃｙｔｏｋｉｎｅ Ｂｉｎｄｉｎｇ ａｎｄ Ｃｌｅａｒａｎｃｅ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ−Ａｃｔｉｖａｔｅｄ Ａｌｐｈａ−２−Ｍａｃｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎｓ」Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．、６５：３−１４（１９９１）。標識されたＦＧＦ−２フラグメントは、血漿中には見出されなかったが、それらは、尿中に見出され、そしてサイズにおいて細胞内分解産物に対応した。ＦＧＦ−２がヘパリンと組み合わせて投与されたとき、ＦＧＦ−２の腎臓排出が増加した。Ｗｈａｌｅｎら（１９８９）。このＦＧＦ−２分子は、ヘパリンと複合体化しないときカチオン性であって、糸球体基底膜のカチオン性硫酸ヘパリンによりはじかれるようである。このＦＧＦ−２／ヘパリン複合体は、より中性に荷電し、そしてそれ故、より容易に濾過され、そして腎臓により排泄される。

ＦＧＦ−２の薬物動態学は、家畜ヨークシャーブタにおける静脈内（ＩＶ）および冠内（ＩＣ）投与後、Ｓｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙ（「ＳＤ」）ラットにおけるＩＶ投薬後、およびＣＡＤヒト患者におけるＩＣ投与後に測定された。すべての種において、ＩＶおよび／またはＩＣ注射後のｒＦＧＦ−２血漿濃度は、最初の時間の間のいくつかの対数スケール（分配フェーズ）に亘る初期の急峻な傾きおよびかなりの減少をともなう二指数関数的曲線に従い、より緩和された減退（排除フェーズ）が続く。図１は、時間に対する血漿濃度曲線を提供し、これは、次の投与量：０．３３μｇ／ｋｇ，０．６５μｇ／ｋｇ、２μｇ／ｋｇ、６μｇ／ｋｇ、１２μｇ／ｋｇおよび２４μｇ／ｋｇ除脂肪体重（ＬＢＭ）の関数として、組換え成熟ｂＦＧＦ−２（１４６残基）のＩＣ投与後のヒトにおけるこれらのフェーズを示す。ｂＦＧＦ−２の血漿濃度は、ヒトＦＧＦ−２の分析のために上市された市販のＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ ＭＮ）により測定した。ｈＦＧＦ−２のＥＬＩＳＡアッセイは、組換え成熟ｂＦＧＦ−２と１００％交差反応性を示した。ＦＧＦファミリーのその他のメンバー、および多くのその他のサイトカインは、このアッセイにより検出されなかった。また、ヘパリンはこのアッセイを妨害しない。

これらの薬物動態学研究のデザイン、薬物動態学パラメータおよび結論を、ブタおよびラットにおける研究についてそれぞれ表５および表６に列挙する。読者は、特定の詳細についてこれらの表に言及される。しかし、これらの点の中で、注目されるべきは、半減期（Ｔ_1/2）が、７０２±３１１〜６０９±３５０ｍｌ／時間／ｋｇのクリアランス（ＣＬ）を有する動物について単一成分モデルのための単回ＩＣ注入の後２．８±０．８〜３．５時間であったことである。この研究の結果は、ｒＦＧＦ−２の薬物動態学が、動物がＩＣまたはＩＶ経路を経由して投薬された否かにかかわらず実質的に同一であったことを示す。表５を参照のこと。

これらの研究の表５および６から読み取られるべきその他の薬物動態学結果は、より温和な排除フェーズが続く迅速な分配フェーズ、およびヒトについて図１で報告されるような投与量直線性があることである。また、性別による差はなかった。さらに、３区画モデルを、５−１０分ＩＣ注入により０．６５〜６．５μｇ／ｋｇを受ける前、約（「〜」）１５分に７０Ｕ／ｋｇのヘパリンを受けたブタについて分析した。この３区画モデルについて半減期（Ｔ_1/2α、Ｔ_1/2βおよびＴ_1/2γ）は、それぞれ１．５分、１７分、および６．６時間であった。これらの動物では、初期容量（「Ｖ₁」）は、ほぼ血漿容量であり、そして定常状態容量（「Ｖ_ss」）は、血漿容量の約１０倍であった。表５を参照のこと。ブタでは、循環性ヘパリンに対するｒＦＧＦ−２の結合は、生体分配および排除を低減するようである。同様に、ラットにおいて、ｒＦＧＦ−２の分配の容積およびクリアランスの両方がヘパリンを投与したときより小さかった。表６を参照のこと。さらに、ＦＧＦ−２のクリアランスに対する最大かつ最も好適な変化は、ヘパリンが±１５分以内、好ましくはｒＦＧＦ−２のＩＣ注入の直前に投与されたときに見出された。表６を参照のこと。

ＦＧＦ−２の薬物動態学は、最適の医療管理にもかかわらず、ＣＡＤをもつと診断されたヒトで、本出願を支持するフェーズＩ研究において、研究された。そのフェーズＩ研究で採用されたｒｂＦＧＦ−２の投与量は、０．３３μｇ／ｋｇ，０．６５μｇ／ｋｇ、２μｇ／ｋｇ、６μｇ／ｋｇ、１２μｇ／ｋｇおよび２４μｇ／ｋｇ除脂肪体重（ＬＢＭ）であり、そしてすべての投与量は、ｒｂＦＧＦ−２注入前１−９５分のＩＶまたはＩＣ投与された４０Ｕ／ｋｇヘパリンを用いた患者の前処置後、２０分のＩＣ注入（２つの開存冠血管の各々中に１０分）で投与された。本明細書の図１−３は、これらの結果の基礎になるデータを要約する。特に、図１は、２０分間の時間に亘り上記に記載のようなＩＣ注入により投与されたｒｂＦＧＦ−２の６つの異なる投与量について、時間（時間）に対する平均ＦＧＦ−２血漿濃度のプロットである。図１は、投与量直線性および二相性血漿レベルの減少（すなわち、最初の時間の間の迅速分配フェーズ、それに続く１．９±２．２時間のＴ_1/2の除去フェーズ）を示す。投与量直線性は、投与されたｒｂＦＧＦ−２の６つの投与量の各々に対する図１についてｐｇ・時間／ｍｌで示す個々の患者のＦＧＦ−２の曲線下面積（ＡＵＣ）のプロットである図２でより容易に観察される。図３は、「ｒＦＧＦ−２注入前の分」で表したヘパリン投与量の時間に対する個々のヒト患者のＦＧＦ−２投与量正規化ＡＵＣのプロットであり、そしてＦＧＦ−２ ＡＵＣに対するヘパリン投与のタイミングの影響を示す。図３は、最大のＡＵＣ／投与量が、ヘパリンのようなグリコサミノグリカンの有効量がｒＦＧＦ−２のＩＣ注入の３０分またはそれより短い内、より好ましくはｒＦＧＦ−２のＩＣ注入の２０分またはそれより短い内に前投与されたとき達成されたことを示す。

代表的には、グリコサミノグリカン（ｇｌｙｃｏｓｏａｍｉｎｏｇｌｙｃａｎ）の有効量は、４０〜７０Ｕ／ｋｇヘパリンである。これらの薬物動態学の結果が、本明細書中の表７にまとめられる。

ｒＦＧＦ−２の分布期は、ヘパリンを伴う場合には、ヘパリンを伴わないｒＦＧＦ−２と比較して、あまり急激ではなく、分布の容量がより少なく、そしてクリアランスはよりゆっくりである。循環しているヘパリンとのｒＦＧＦ−２の複合体はｒＦＧＦ−２の生体内分布および除去を減少させるようである。ヘパリン様構造に対するＦＧＦ−２の結合は強力（解離定数 約２×１０^-9Ｍ）であるが、ＦＧＦ−２レセプターに対するＦＧＦ−２の結合は、およそ二桁大きい（解離定数 約２×１０^-11Ｍ）。Ｍｏｓｃａｔｅｌｌｉら（１９９１）。さらに、グリコサミノグリカン（例えば、ヘパリン）とのｒＦＧＦ−２の複合体形成は、シグナル伝達および有糸分裂誘発を増大させ得、そして／または酵素による分解からｒＦＧＦ−２を保護し得る。

有効と認められそして当該分野で受け容れられた冬眠心筋（ｈｉｂｅｒｎａｔｉｎｇ ｍｙｃａｒｄｉｕｍ）のモデルを使用して、１０匹のミニブタに、９０％の左の回旋状の（ＬＣｘ）冠状動脈狭窄を受けさせた。確認については、例えば、Ｙａｎａｇｉｓａｗａ−Ｍｉｗａら、「Ｓａｌｖａｇｅ ｏｆ Ｉｎｆａｒｃｔｅｄ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ ｂｙ Ａｎｔｇｉｏｇｅｎｅｓｉｃ Ａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ」、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５７：１４０１−１４０３（１９９２）；Ｂａｎａｉら、「Ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ−Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ ｔｏ Ｉｓｃｈｅｍｉｃ Ｍｙｏｃａｒｄｉｕｍ ｂｙ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ ｉｎ Ｄｏｇｓ」、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，８９（５）：２１８３−２１８９（１９９４年５月）；およびＵｎｇｅｒら、「Ｂａｓｉｃ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｅｎｈａｎｃｅｓ ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ ｆｌｏｗ ｉｎ ａ ｃａｎｉｎｅ ｍｏｄｅｌ」、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．，２６６（Ｈｅａｒｔ Ｃｉｒｃ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．３５）：Ｈ１５８８−Ｈ１５９５（１９９４）を参照のこと。１ヶ月後、ベースラインの陽電子射出断層撮影（ＰＥＴ）およびドブタミン負荷心エコー検査を、これらの動物に対して行った。次いで動物を無作為化し、そして１００μｌのキャリア（ｎ＝５）またはキャリア中のｒｂＦＧＦ−２（４５ｎｇ／注射；全用量１，３５０ｎｇ）（ｎ＝５）のいずれかの、ＬＣｘ領域中での３０回の注射を用いて処置した。上記の注射においては、キャリアは、１０ｍＭのチオグリセロール、１３５ｍＭのＮａＣｌ、１０ｍＭのクエン酸ナトリウムおよび１ｍＭのＥＤＴＡ（ｐＨ５）を含有している滅菌水溶液であった。

それらの心筋層中にＦＧＦ−２の注射を受けさせた５匹の動物においては、安静時のＬＣｘ領域の心筋の血流（ＭＢＦ）は、ＰＥＴによって測定した場合には、ベースライン（０日）の非虚血性中隔値の６１．３±４．４％から、手術の６ヶ月後には８２．８±３．１％に増大した（ｐ＜０．００１）。ＬＣｘ領域についての安静時の壁の運動スコア指数（ＷＭＳＩ）は、ベースラインでは２．４±０．２であり、そして６ヶ月で２．２±０．２に改善された（ベースラインに対してｐ＝０．０８）。同様に、ピーク負荷時のＬＣｘ領域についてのＷＭＳＩは、ベースラインでは２．２±０．４（０日目）であり、そして６ヶ月で１．８±０．３にまで減少した（ｐ＝０．０５）。ビヒクルで処置した動物においては、あらゆる時点で、ＭＢＦにおいても、安静時ＷＭＳＩでも負荷ＷＭＳＩでも有意な変化は存在しなかった。処置した慢性的な虚血の領域から採取した組織サンプルのウェスタンブロット分析は、ビヒクルで処置した慢性的な虚血の領域中で観察されたＶＥＧＦに対して、ｒＦＧＦ−２で処置した慢性的な虚血の領域におけるＶＥＧＦの有意に大きいアップレギュレーションを明らかにした（ｐ＜０．０５）。

従って、新脈管形成を必要としている患者のこの有効と認められたモデルにおいては、超低用量の脈管形成因子（例えば、ＦＧＦ−２）の心筋内への直接注射が、心筋層の処置された領域におけるＭＢＦおよび収縮予備力を改善した。従って、超低用量の脈管形成因子が、新脈管形成を誘導するための実行可能な方法、ならびにＣＡＤおよび／またはＭＩの処置のための実行可能な代替治療を示す。

以下の実施例１〜６は、上記で議論されている予備データを生じたＩＣ ＦＧＦ−２についての選択の基準および第Ｉ相の臨床試験についてのさらなる詳細を提供する。実施例７は、超低用量の薬学的組成物についてのデータ、ならびに冠状動脈の疾患および心筋梗塞についてのモデル系において患者（ミニブタ）の冠状動脈の新脈管形成を誘導するための本発明の方法およびその使用を開示する。

（実施例１：第Ｉ相の臨床試験において使用した中程度の濃度の単位用量のｒＦＧＦ−２）
米国特許第５，１５５，２１４号（Ｂａｉｒｄ）の組換えの成熟ＦＧＦ−２を、中程度の濃度（０．２μｇ／ｋｇから約３６μｇ／ｋｇ）の単位用量および薬学的組成物として処方し、そしてラット、ブタ、および最終的にはヒトに、本明細書中で言及される第Ｉ相の臨床試験において投与した。種々の処方物を以下に記載する。

中程度の濃度のｒＦＧＦ−２単位用量を、積層した灰色のブチルラバーストッパーおよび赤色のフリップオフオーバーシールを備えた３ｃｃのＩ型のガラスバイアル中の液体として、提供した。ｒＦＧＦ−２単位用量は、０．３ｍｇ／ｍｌのｒＦＧＦ−２を、１０ｍＭのクエン酸ナトリウム、１０ｍＭのモノチオグリセロール、１ｍＭのＥＤＴＡ二ナトリウム二水和物（分子量３７２．２）、１３５ｍＭの塩化ナトリウム（ｐＨ ５．０）中に含む１．２ｍｌを含んだ。このように、絶対的な用語で、それぞれのバイアル（および単位用量）は、０．３６ｍｇのｒＦＧＦ−２を含んだ。液体の形態で単位用量を含有しているバイアルを、２℃から８℃で保存した。

ｒＦＧＦ希釈液を、積層した灰色のブチルラバーストッパーおよび赤色のフリップオフオーバーシールを備えた５ｃｃのＩ型のガラスバイアル中に供給した。ｒＦＧＦ−２希釈液は、１０ｍＭのクエン酸ナトリウム、１０ｍＭのモノチオグリセロール、１３５ｍＭの塩化ナトリウムを含む（ｐＨ５．０）。それぞれのバイアルは、５．２ｍｌのｒＦＧＦ−２の希釈溶液を含んだ。そしてこれを、２℃から８℃で保存した。

中程度の濃度のｒＦＧＦ−２の薬学的組成物（注入した）を、ｒＦＧＦ希釈液でｒＦＧＦ−２の単位用量を注入容量が１０ｍｌであるように希釈することによって調製した。ＥＤＴＡの濃度を１００μｇ／ｍｌの限界未満に維持するために、比例的に大きい絶対量のＦＧＦ−２をより重い体重を有している患者に対して投与する場合には、全注入容量を２０ｍｌにまで増大させた。

（実施例２：ｒＦＧＦ−２での処置についての冠状動脈疾患を有している患者についての選択基準）
以下の選択基準を、最適な医療管理にもかかわらずその活動が冠状動脈の虚血によって制限され、そして承認された再脈管形成治療についての候補ではない、冠状動脈疾患を有している第Ｉ相の患者に対して適用した。

包括基準：被験体は、以下である場合に適格である：
・１８歳以上の男性または女性
・冠状動脈疾患（ＣＡＤ）の診断
・承認された再脈管形成手順（例えば、脈管形成術、ステント、冠状動脈のバイパス移植（ＣＡＢＧ））（またはそのような介入を拒絶する）についての最適には及ばない候補である
・改変されたＢｒｕｃｅプロトコールを使用して少なくとも３分間の運動を行うことが可能であり、そして冠状動脈の虚血によって制限される
・薬理学的な負荷を受けたタリウムセスタミビ（ｓｅｓｔａｍｉｂｉ）スキャンにおける少なくとも２０％の心筋層の誘導性でありそして可逆的な欠損
・必要とされる心臓のカテーテル法のための臨床的に受容可能な範囲の、ＣＢＣ、血小板、血清の化学
・正常なＩＮＲ、またはクマジン（Ｃｏｕｍａｄｉｎ）を用いて血液凝固を阻止された場合には、ＩＮＲ＜２．０
・この試験（全ての必要な試験手順およびフォローアップの通院を含む）への参加についての書面でのインフォームドコンセントを得る意思がありそしてそれを得ること
排除の基準：被験体は、以下である場合には適格ではない：
・悪性疾患：治療的に処置された基底細胞癌を除いて、過去１０年以内の悪性疾患の任意の病歴
・眼の状態：増殖性の網膜症、重篤な非増殖性の網膜症、網膜の静脈の閉塞、イールズ病、または黄斑の浮腫もしくは眼科医による眼底検査：６ヶ月以内の眼内の外科手術歴
・腎機能：年齢について調整された正常な範囲未満のクレアチニンのクリアランス；２４時間の尿あたりで、タンパク質＞２５０ｍｇまたはミクロアルブミン＞３０ｍｇ
・クラスＩＶの心不全（Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ Ｈｅａｒｔ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ）
・心エコー図、タリウムスキャン、ＭＲＩ、またはゲートで制御されるプールされた血液のスキャン（ＭＵＧＡ）による、＜２０％の駆出率
・血液動力学的に関連する不整脈（例えば、心室細動、持続性心室頻拍）
・重篤な弁の狭窄（大動脈の面積＜１．０ｃｍ²、僧帽弁の面積＜１．２ｃｍ²）、または重篤な弁の不全
・３週間以内のアンギナまたは不安定狭心症の顕著な増大
・３ヶ月以内の心筋梗塞（ＭＩ）歴
・６ヶ月以内の一過性脳虚血発作（ＴＩＡ）または卒中歴
・６ヶ月以内のＣＡＢＧ、脈管形成術、またはステント歴
・６ヶ月以内の、経心筋層レーザー再脈管形成術、ｒＦＧＦ−２、または血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）での処置歴
・妊娠の可能性のある女性または授乳中の母親
・任意の病理学的な線維症（例えば、肺線維症、強皮症）
・既知の血管の奇形（例えば、ＡＶ奇形、血管腫）
・ＣＡＤの症状の評価を妨害し得る任意の疾患（例えば、心外膜炎、肋軟骨炎、食道炎、全身性の血管炎、鎌状赤血球症）の共存
・改変されたＢｒｕｃｅプロトコールの運動負荷試験の能力を制限する任意の疾患（例えば、下肢の麻痺または切断、重篤な関節炎または下肢、重篤な慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ））の共存
・３０日以内の研究薬剤、デバイス、または手順の臨床試験への参加（または６０日以内に研究薬物が予定されている）
・ｒＦＧＦ−２または関連する化合物に対する既知の過敏症
・調査者の意見において被験体のこの研究への参加を不適切とさせる任意の状態（例えば、精神病、重篤な精神遅滞、研究職員とコミュニケーションをとることができないこと、薬物またはアルコールの濫用）
（実施例３：ヒトに対してＩＣで投与された組換えＦＧＦ−２についての第Ｉ相の臨床試験）
米国特許第５，１５５，２１４号の組換えＦＧＦ−２を、最適な医療管理を受けたにもかかわらず徴候を残しており、そして外科手術によるかもしくは経皮的な再脈管形成を拒否したかまたはこれらの最適状態には及ばない候補である、重篤なＣＡＤを有している５２人のヒトの患者に対して、第Ｉ相の非盲検、単回の投与で、用量を段階的に増大させながら、２つの部位試験において、投与した。薬物を、２つの主要な冠状動脈血供給源（ＩＣ）の間で分かれる、患者の冠状動脈中にカテーテルを配置するための標準的な技術（脈管形成術においてすでに使用されているような）を使用して、単回の２０分間の注入として投与した。投与したｒＦＧＦ−２の用量（μｇ／ｋｇ）は、０．３３（ｎ＝４）、０．６５（ｎ＝４）、２．０（ｎ＝８）、６．０（ｎ＝４）、１２．０（ｎ＝４）、２４（ｎ＝８）、３６（ｎ＝１０）、および４８（ｎ＝１０）であった。アンギナの頻度および生活の質を、Ｓｅａｔｔｌｅ Ａｎｇｉｎａ Ｑｕｅｓｔｉｏｎｎａｉｒｅ（ＳＡＱ）によって、ベースライン（ｒＦＧＦ−２の投与の前）およびｒＦＧＦ−２の投与の約６０日後に評価した。運動耐性時間（ＥＴＴ）を、スレッドミル（ｔｈｒｅａｄｍｉｌｌ）試験によって評価した。安静時／運動の核灌流（ｒｅｓｔ／ｅｘｅｒｃｉｓｅ ｎｕｃｌｅａｒ ｐｅｒｆｕｓｉｏｎ）、およびゲートで制御されるセスタミビ（ｓｅｓｔａｍｉｂｉ）で決定された安静時駆出率（ＥＦ）、および核磁気共鳴画像化法（ＭＲＩ）を、ベースライン、ならびにＦＧＦ−２投与の３０日後および６０日後に評価した。評価した他の終点には、ＭＲＩ（駆出率（ＥＦ）、正常な壁の運動（ＮＷＭ）、標的化した壁の運動（ＴＷＭ）、正常な壁の厚み（ＮＷＴ）、標的化した壁の厚み（ＴＷＴ）、虚血領域帯および側副の程度を客観的に測定するため）を含んだ。表２〜４をそれぞれ参照のこと。

予備的な安全性の結果は、深刻な事象は用量に関係していないことを示す。今までに、８つの投与量のグループのうち、最も低い投与量のグループ（すなわち、０．６５μｇ／ｋｇ（２３日目）、２．０μｇ／ｋｇ（５７日目）、および６．０μｇ／ｋｇ（６３日目））で、３人が死亡した。３人の患者（すなわち、グループ１（０．３３μｇ／ｋｇ）、グループ３（２．０μｇ／ｋｇ）およびグループ４（６．０μｇ／ｋｇ）からそれぞれ１人の患者）においては急性心筋梗塞（ＭＩ）についての６回の入院があった。３人の患者のうちの１人は、急性ＭＩについての６回の入院のうちの４回を数えた。また、グループ４の１人の患者への投与の３週間後に診断された１つの大Ｂ細胞リンパ腫も存在した。この患者は、投与後２ヶ月で死亡した。急性の低血圧（注入の間または注入の直後により高い用量で見られる）は、昇圧剤を必要とすることなく液体の投与によって管理した。ヒトにおける最大寛容用量（ＭＴＤ）を、３６μｇ／ｋｇと定義した。（対照的に、ブタにおいては、ＭＴＤは、６．５μｇ／ｍｌであった）。４８μｇ／ｋｇまでのＩＣのｒＦＧＦ−２の用量で、積極的な液体での管理を用いて患者を管理したが、１０人の患者のうちの２人においては、急性でありそして／または起立性の低血圧に起因して寛容ではなかった。ＩＣによって注入したｒＦＧＦ−２の半減期は約１時間であった。

ｒＦＧＦ−２の単回のＩＣの注入で処置したこの研究のヒトの患者は、１．５から２分のＥＴＴにおける平均の増大を示した。これは、特に重要である。なぜなら、＞３０秒のＥＴＴにおける増大が重要であると考えられ、そして代替治療（例えば、脈管形成術）を評価するための基準であるからである。アンギナの頻度および生活の質は、ＳＡＱによって測定した場合には、試験した２８人の患者（ｎ＝２８）について、全ての５つのサブスケールにおいて、５７日で有意な改善を示した。表２および３を参照のこと。詳細には、ＳＡＱによって評価された５つの基準についてのスコアにおける平均の変化は、１３から３６の範囲であり、８以上の平均の変化は「臨床的に有意である」と考えられる。表２を参照のこと。

核磁気共鳴画像化法（ＭＲＩ）は、ＦＧＦ−２の単回の単位用量の投与後の客観的な改善を示した。これは、３０日目および６０日目での増大した標的化された壁の運動（ｐ＜０．０５）、および６０日目での増大した標的化された壁の厚み（ｐ＜０．０１）を含む。ＭＲＩはさらに、１１人の患者の試験グループ（ｎ＝１１）において、より少ない用量（０．３３μｇ／ｋｇおよび０．６５μｇ／ｋｇ）およびより多い用量（２．０μｇ／ｋｇおよび１２．０μｇ／ｋｇ）のグループの両方について、改善された局所的な壁の運動、ならびに、標的化された領域での増大した心筋の灌流量および側副の発達を示した。

異常な血流の領域（これは、２８人の患者について１つの部位で評価した）は、３０日目および６０日目で有意に減少した（ｐ＜０．００１）。

上記の基準（すなわち、ＥＴＴ、ＳＡＱ、ＭＲＩ）に加えて、処置は、少なくとも６ヶ月間続く脈管形成をもたらす場合には、非常に良好であると考えられる。この第Ｉ相の研究においては、予想以上の優れた脈管形成効果が、全ての投薬量のグループにおいて最後の５７〜６０日間続くことが観察された。（表２〜４を参照のこと）。すでに得られている結果に基づくと、脈管形成の影響が、１２ヶ月以上であるが少なくとも６ヶ月続き、その時間に、必要とされる場合にはこの手順が繰り返され得ることが、予想される。

（実施例４）
「冠状動脈の疾患を処置するためにヒトに対して投与された組換えのＦＧＦ−２についての提案された第ＩＩ相の臨床試験」
冠状動脈の疾患についてヒトの患者を処置するための米国特許第５，１５５，２１４号のｒＦＧＦ−２の第ＩＩ相の臨床試験を、４つのアーム：偽薬、０．３μｇ／ｋｇ、３μｇ／ｋｇ／ｋｇ３μｇ／ｋｇ、および３０μｇ／ｋｇの冠状動脈内投与を用いる二重盲検／プラセボコントロール試験として実施した。

（実施例５）
「第ＩＩ相のヒトでの臨床試験のためのｒＦＧＦ−２の単位用量および薬学的組成物」
米国特許第５，１５５，２１４号のｒＦＧＦ−２を、本明細書中に参照する第ＩＩ相の臨床試験におけるヒトへの投与のための薬学的組成物のストックとして処方した。種々の処方物を以下に記載する。
実施例２〜４の中程度の濃度のｒＦＧＦ−２ストック薬学的組成物を、積層した灰色のブチルラバーストッパーおよび赤色のフリップオフオーバーシールを備えた５ｃｃのＩ型のガラスバイアル中の液体として、調製した。ｒＦＧＦ−２組成物は、１０ｍＭのクエン酸ナトリウム、１０ｍＭのモノチオグリセロール、０．３ｍＭのＥＤＴＡ二ナトリウム二水和物（分子量３７２．２）、１３５ｍＭの塩化ナトリウム（ｐＨ ５．０）中に、米国特許第５，１５５，２１４号の０．３ｍｇ／ｍｌのｒＦＧＦ−２を含んだ。それぞれのバイアルは、３．７ｍｌのｒＦＧＦ−２の薬物生成物の溶液（１つのバイアルあたり１．１１ｍｇのｒＦＧＦ−２）を含んだ。液体の形態の得られたＦＧＦ−２ストック薬学的組成物を、２℃〜８℃で保存した。使用の前に、上記のＦＧＦ−２組成物を、「ｒＦＧＦ−２偽薬」で稀釈した。

ｒＦＧＦ偽薬を、積層した灰色のブチルラバーストッパーおよび赤色のフリップオフオーバーシールを備えた５ｃｃのＩ型のガラスバイアル中に透明な無色の液体として供給する。ｒＦＧＦ−２偽薬は、薬物生成物からの外観においては識別が不可能であり、そして以下の処方を有する：１０ｍＭのクエン酸ナトリウム、１０ｍＭのモノチオグリセロール、０．３ｍＭのＥＤＴＡ二ナトリウム二水和物（分子量３７２．２）、１３５ｍＭの塩化ナトリウム（ｐＨ ５．０）。それぞれのバイアルは、５．２ｍｌのｒＦＧＦ−２の偽薬の溶液を含む。単位用量と同様に、ｒＦＧＦ−２偽薬を、２℃から８℃で保存した。

中程度の濃度のｒＦＧＦ−２の薬学的組成物（最終的に冠状動脈内で注入される）を、本明細書中の実施例２〜４に記載するように、ｒＦＧＦ稀釈液でｒＦＧＦ−２の単位用量を注入容量が１０ｍｌであるように希釈することによって調製した。ＥＤＴＡの濃度を１００μｇ／ｍｌの限界未満に維持するために、全注入容量を、比例的に大きい絶対的な量のＦＧＦ−２がより大きな体重を有している患者に対して投与される場合には、４０ｍｌにまで増大させた。
（実施例６）
「冠状動脈内ｒＦＧＦ−２の第ＩＩ相のヒト臨床試験のためのＣＡＤ患者の選択の基準」
従って、本発明に従うｒＦＧＦ−２の単回の単位投与量を投与したヒトにおける、生活の質および増大させられた脈管形成の効率における予想以上の優れた改善の上記の証拠は、出願人らの単位用量の薬学的組成物およびその使用方法の特許性を支持する。

（実施例７）
「ミニブタの心筋への超低容量のｒＦＧＦ−２の投与によるインビボでの新脈管形成の誘導」
有効と認められた冬眠心筋モデルを使用して、ミニブタに９０％の左回旋状（ＬＣｘ）冠状動脈の狭窄を受けさせた。簡潔には、水圧で制御される閉塞器を、ミニブタのＬＣｘの近位末端周辺に配置した。フロープローブを、水圧の閉塞器に対して遠位のＬＣｘ中に挿入し、そして閉塞器を一貫して９０％の閉塞を提供するように膨張させた。動物を６つのグループで試験した。１ヶ月後、ベースラインの陽子射出断像撮影（ＰＥＴ）およびドブタミン負荷の心エコー検査（ＤＳＥ）を行い、そして動物を、１００μｌのキャリア（ｎ＝５）またはキャリア中のｒＦＧＦ−２（４５ｎｇ／注射；全用量１．３５μｇ）（ｎ＝５）のいずれかの、ＬＣｘ領域中での３０回の注射に対して無作為化した。上記の注射においては、ＦＧＦ−２は、米国特許第５，１５５，２１４号の組換えの成熟のＦＧＦ−２（配列番号２）であった。キャリアは、１０ｍＭのチオグリセロール、１３５ｍＭのＮａＣｌ、１０ｍＭのクエン酸ナトリウム、および１ｍＭのＥＤＴＡを含有している滅菌の水溶液（ｐＨ５）であった。この実施例で提供した全用量（１．３５μｇ）のＦＧＦ−２は、アメロイド（ａｍｅｒｏｉｄ）ブタモデルにおいて有効であることが見出されている、冠状動脈内（ＩＣ）で送達される用量（１３５μｇ）の１／１００であった。アメロイドブタモデルでは、ＬＣｘは１００％を閉塞した。

それらの心筋中にｒＦＧＦ−２の注射を受けさせた動物においては、休止期のＬＣｘ領域の心筋の血流（ＭＢＦ）は、ＰＥＴによって測定した場合には、ベースライン（０日目）での非虚血性の中隔の値の６１．３±４．４％から、手術の６ヶ月後には８２．８±３．１％に増大した（ｐ＜０．００１）。ＬＣｘ領域についての休止期の壁の運動スコア指数（ＷＭＳＩ）は、ベースラインでは２．４±０．２であり、そして６ヶ月で２．２±０．２に改善された（ベースラインに対してｐ＝０．０８）。同様に、ピーク負荷期のＬＣｘ領域についてのＷＭＳＩは、ベースラインでは２．２±０．４（０日目）であり、そして６ヶ月で１．８±０．３にまで改善された（ｐ＝０．０５）（図５）。ビヒクルで処置した動物においては、あらゆる時点で、ＭＢＦにおいてまたは休止期もしくはストレス期のＷＭＳＩにおいても有意な変化は存在しなかった。処置の６ヶ月後、ミニブタを屠殺し、そして処置した虚血性の心筋の毛細血管の密度を決定した。ＦＧＦ−２処置したミニブタは、生理食塩水で処置したグループについての約１７００に対して、約４４００／単位容量の毛細血管の密度を示した（図６）。ウェスタンブロット分析は、ビヒクルを用いて観察したものに対して、慢性的な虚血のＦＧＦ−２で処置した領域においてＶＥＧＦ（ＶＥＧＦ₁₆₅として測定した）およびＦＧＦ−２の有意に大きいアップレギュレーションを明らかにした（ｐ＜０．０５）。図１０。驚くべきことに、ＶＥＧＦおよびＦＧＦ−２のアップレギュレーションは、処置後少なくとも３ヶ月間持続した（図１０）。

従って、超低用量の脈管形成因子（例えば、ｒＦＧＦ−２）の直接の心筋内注射は、ＭＢＦ、収縮性の保存、灌流（図４）、ＤＳＥによって測定されるような心筋の機（図５）能、および心筋の処置領域の毛細血管密度（図６）を改善する。従って、超低用量の脈管形成因子ＩＭｃの注射が、院新脈管形成を誘導するための実行可能な方法、およびＣＡＤおよび／またはＭＩの処置のための実行可能な別の治療を示す。
（実施例８）
「ミニブタの心筋への種々の用量のｒＦＧＦ−２の投与による、インビボでの新脈管形成の誘導」
実施例７に記載した確認された冬眠心筋のモデルと同じモデルを使用して、ミニブタに、９０％の左回旋状（ＬＣｘ）冠状に狭窄を受けさせた。簡潔には、水圧で制御される閉塞器を、ミニブタのＬＣｘの近位の末端の周辺に配置した。フロープローブを、水圧の閉塞器に対して遠位のＬＣｘ中に挿入し、そして閉塞器を一貫して９０％の閉塞を提供するように膨張させた。４群の動物を６匹の群で試験した。群は以下の通りであった：
・ＩＭｃの中程度の用量：６匹の動物、＠０．６μｇ／ｋｇ 全用量ＩＭｃ
・ＬＣｘ領域中に３０回の注射、ヘパリンのＩＭｃはなし
・ＩＭｃの高用量：６匹の動物、＠６．０μｇ／ｋｇ 全用量ＩＭｃ
・ＬＣｘ領域中に３０回の注射、ヘパリンのＩＭｃはなし
・ポジティブコントロール：６匹の動物、アメロイドモデル（ＬＣｘの１００％の閉塞）において＠６．０μｇ／ｋｇのＩ．Ｃ．、送達される全用量１３５μｇ
・注入の開始の５分前に７０Ｕ／ｋｇのヘパリン
・可能である場合には、１／２用量のＲＣＡ、１／２用量のＬＣｘまたはＬＡＤ（３μｇ／ｋｇ／動脈）、動脈あたり１０分間にわたる注入によってそれぞれ送達される（２０分の全注入時間）
・ネガティブコントロール：６匹の動物−ビヒクル／生理食塩水×３０回の注射 ＩＭｃ。

ミニブタを、外科手術の時点で処置グループにランダムに割り当てた。

（第１相）
（ベースラインの確立および処置の開始）
・上記に記載するように、ＰＥＴによって決定した灌流、およびＤＳＥによる心臓の機能を用いて、すぐに冬眠心筋についてのベースラインを確立した。

・予備処置（麻酔下）：
・ベースラインの心臓の速度（ＨＲ）／血圧（ＢＰ）を記録した
・以下のために血液を回収した：
・血清の化学、ＣＢＣ、心臓の酵素（例えば、損傷した心臓の筋細胞に関連する、ＣＰＫ、ＭＢ、心臓のトロポニンＩ（「ＴＮＩ」）、または心臓のトロポニンＴ（「ＴＮＴ」））
・ｒＦＧＦ−２アッセイの予備処置のための遠心分離した血漿（−７０℃で凍結）
・ＥＫＧ（３つのリード、周期的な静脈抜去術を伴う）
・処置の間：
・ＨＲおよびＢＰデータを記録した：液体を用いて低血圧を処置する
・モニターによってリズムの変化を記録した
・上記に記載した、ＦＧＦ−２（中程度の用量および高用量）、ネガティブコントロール、およびポジティブコントロールを用いて、４つのグループを処置した
・処置後：
・ＨＲ／ＢＰをベースラインに戻るまで記録した
・血清の化学、ＣＢＣ、心臓の酵素、およびｒＦＧＦ−２アッセイのための遠心分離した血漿の第２のセットを、処置後の可能な最新の時点（最低２時間）で回収した。血液の回収にはすべての動物について処置後の同じ時間を使用する。取り扱いについての上記を参照のこと
・ＥＫＧ（３つのリード、周期的な静脈抜去術を伴う）
（第２相）
（フォローアップ＠処置後３ヶ月）
・麻酔下
・ＨＲおよびＢＰを記録した
・血清の化学、ＣＢＣ、心臓の酵素、およびｒＦＧＦ−２アッセイのための遠心分離した血漿のために血液を回収した。取り扱いについての上記を参照のこと。

・ＥＫＧを行った（３つのリード、周期的な静脈抜去術を伴う）
・ＰＥＴによって灌流、そしてＤＳＥによる負荷での心筋の機能を決定した。２人のリーダーに対してブラインドにした処置群。

（第３相）
（組織学および最終的な報告）
・屠殺後：ミニブタを、ＦＧＦ−２またはコントロールでの処置の３ヶ月後に屠殺した。

・心臓の全体的な病理学：注射部位または他の心臓の病理学の証拠（梗塞、傷跡、注射部位の変化、心臓周辺の変化）を記録した
・組織：隔壁、動脈壁、ＬＣｘ領域
・構造についてヘマトキシリンおよびエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した
・線維症についてトリクロムで染色した
・内皮組織を同定するためにアルカリホスファターゼについて染色した
・中央の心筋の横断面の血管全体の密度のブラインド評価を行った
・注射部位での局所的な病理学（線維症、血管の分布状態、筋細胞の欠失、梗塞など）を検索した。

処置した虚血性の心筋の正規化された灌流の比を、ポジティブおよびネガティブコントロール（上記）を用いた処置の３ヶ月後、および「中程度」（０．６μｇ／ｋｇ（１３．５μｇ））または「高」６．０μｇ／ｋｇ（１３５μｇ））の用量のｒＦＧＦ−２（配列番号２）でのＩＭｃ処置の３ヶ月後に、ＰＥＴによって決定した。このデータを、図７に棒グラフで示す。これはまた、実施例７において決定するように、「低」（０．０６μｇ／ｋｇ（１．３５μｇ））用量のＦＧＦ−２による正規化された灌流のデータと組合せる。図７は、正規化された灌流における最大の％変化（すなわち、２７．５％の増大）が、驚くべきことに、「中程度」の用量について生じ、そして「低」および「高」用量はそれぞれ１７．５％および１７％のより低い変化を示すことを示す。図７のデータは、２つの別々の実験の結果（明るい棒および暗い棒）であり、「低」用量についての偽薬である「ｕｌｄ」（超低用量）として示される明るい色をつけた偽薬もまた、明るい色をつけた棒として示す。

処置の１ヶ月および３ヶ月後の中程度の用量群および高い用量群で処置した虚血性の心筋についての正規化された灌流における％変化を、図８の棒グラフ中のポジティブ（ＩＣ）およびネガティブ（偽薬）コントロールと比較する。「高」用量は、処置後１ヶ月で、「中程度」の用量について達成された正規化された灌流においてより多い増大を示した。しかし、正規化された灌流における％増大は、処置後３ヶ月で、「中程度」の用量のｒＦＧＦ−２のＩＭｃについて予想以上に生じた。この予想以上の優れた結果は、「高」用量で処置したグループについてのものよりも、「中程度」の用量で処置したグループについて観察された、予想以上により大きな血管の密度によって確証づけらる。（図９）。さらに、中程度の用量で処置した群について予想以上の優れた結果の両方を示したことは、「高」用量の群（約１７０ｐｇ／ｍｌ）で、またはポジティブなＩＣコントロール（約１７５ｐｇ／ｍｌ）で観察されたものと比較して、「中程度」の用量（約２９０ｐｇ／ｍｌ）での処置の３ヶ月後に観察された処置された虚血性の心筋における細胞内ＦＧＦ−２の、予想以上に優れたアップレギュレーションと一致する。

従って、本発明の方法に従ってＩＭｃで投与されるＦＧＦ−２の全ての投薬量が、灌流および心臓の機能を増大させるが、（中程度）の用量のＦＧＦ−２が予想以上に優れているようであり、これは、約０．３μｇ／ｋｇ（または６．７５μｇまたは６，７５０ｎｇ）から約３．０μｇ／ｋｇ（または６７．５μｇまたは６７，５００ｎｇ）までで生じる。
［配列表］

Claims (1)

1. 明細書中に記載の発明。