JP2011015687A - 西ナイルウィルスを検出するための、組成物および方法 - Google Patents

Abstract

【課題】臨床試験を行う研究室の必要性に特に適合したＷＮＶスクリーニングアッセイを提供する。
【解決手段】第１の態様は、核酸検出用のハイブリダイゼーションアッセイプローブであり、塩基の標的相補的配列を有するプローブ配列を含み、検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列を任意に含む。塩基の標的相補的配列は、特定の配列またはその相補体内に含まれた１２〜８７個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在を、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れており、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、１００塩基までの長さを有することができる。
【選択図】図３

Description

関連出願
本出願は、２００２年１０月１６日出願の米国仮特許出願第６０／４１８，８９１号；２００２年１１月２５日出願の米国仮特許出願第６０／４２９，００６号；および２００３年２月２４日出願の米国仮特許出願第６０／４４９，８１０号の利益を主張する。これら先行出願の開示全体は、参照として本明細書に組み込まれている。
発明の分野
本発明は、バイオテクノロジーの分野に関する。より具体的には、本発明は、西ナイルウィルスなどのフラビウィルスの核酸検出のための診断アッセイに関する。
発明における政府の権利
本明細書に開示された本発明のある一定の態様は、合衆国国立衛生研究所の国立心肺血液研究所との契約Ｎ０１−ＨＢ−０７１４８下で政府の支持によってなされた。本発明のこれらの態様において、米国政府はある一定の権利を有する。

発明の背景
西ナイルウィルス（ＷＮＶ）は、第一に鳥類およびアカイエカに感染し、ヒトおよびウマが付随的宿主として働くＲＮＡウィルスである。鳥−蚊−鳥サイクルにおけるウィルスの拡大は、成体蚊が出現する早春に始まり秋まで続く。このタイミングは、晩夏と初秋にピークとなるヒトの疾患発生率と一致する。このウィルスは、１９９９年ニューヨークで初めて検出されて以来、米国の大部分に急速に拡散した。

実際、最近のヒトＷＮＶ感染に関し、２００２年初めの９ヵ月間、３２の州およびコロンビア特別区において、研究所で確認された合計２５００以上の症例が報告された。合計１２０件以上のヒトの死亡が報告されており、その平均年齢は７９才である。さらに、米国では、ＷＮＶ感染によるほぼ５０００羽のカラスの死亡とほぼ４０００羽の他の鳥の死亡が報告されている。ＷＮＶ感染が検出された３０００匹以上の哺乳動物のうち、９９％超がウマであった。また、ＷＮＶ陽性蚊の池がほぼ３４００箇所あることも報告されている。

このウィルスによるヒト感染の多くは、臨床上明らかではない。全体として、１５０件の感染のうち１件のみが骨髄炎（脊髄の炎症）または脳炎（脳の炎症）などの重篤な神経疾患をもたらす。ＷＮＶ感染と関連してより一般的に報告される、一般に３日〜６日間続くより軽い症状としては、倦怠感、食欲不振、悪心、嘔吐、眼痛、筋肉痛、発疹およびリンパ節症をしばしば伴う突然の発熱が挙げられる。ＷＮＶの潜伏期は正確には知られていないが、恐らく３日〜１４日の範囲であると思われる。１９９９年ニューヨーク発生時の１００万人当たりの発病率の分析により、１９才までの人に較べて少なくとも８０才の人における重篤な神経疾患発生率が４０倍以上高いことが示された。このように、より重篤な神経疾患にとって、高齢は重要な危険因子である。

蚊からの伝染の他に、伝染は、輸血や臓器移植に関連していた。例えば、２００２年中に米国では、単一のドナーから臓器移植された４人のレシピエントが西ナイルウィルスに感染した。レシピエントのうち３人が脳炎を発病し、この３人のうち１人がその結果死亡した。４人目のレシピエントでは脳炎はなく、ウィルス感染の軽い症状が発現したが、このウィルスに関する試験では、やはり陽性であった。自動車事故で負傷したこの臓器ドナーは、死亡する前に血液製剤の輸血を多数受けていた。彼女が、その自己前に疾患を有していたかどうかは不明であり、彼女の血液サンプルは、いずれの輸血前に採取されたものにおいても西ナイルウィルスの証拠は示されなかった。別の例では、母乳にＷＮＶを含有した授乳婦と、男性の肝臓移植患者が双方とも、共通のドナーから輸血を受け、双方とも西ナイルウィルス感染を発現した。そのドナーの保存血液サンプルは、ＷＮＶに関する試験で陽性であり、やはり、この感染ウィルスの共通源を示唆した。

西ナイルウィルスは、分類学上、フラビウィルス属下、フラビビリダエ（Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ）科に分類される一本鎖プラスセンスＲＮＡウィルスである。したがって、このウィルスは、ヒトの脳炎、すなわち、日本脳炎、セントルイス脳炎、マーレーバレー脳炎、およびクンジン（Ｋｕｎｊｉｎ）ウィルス（西ナイルウィルスのオーストラリアサブタイプ）に関連する医学的に重要な幾つかのウィルスを含む日本脳炎ウィルス血清複合体のメンバーである。このウィルスのゲノムサイズは、およそ１１ｋｂである。

ＷＮＶに関する核酸に基づく試験は記載されている。例えば、Ｓｈｉら、Ｊ．Ｃｋｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．３９：ｐ．１２６４（２００１）に、ＷＮＶ核酸に関するリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）アッセイを記載している。Ｌａｎｃｉｏｔｔｉら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．３８：ｐ．４０６６（２００１）に、ヒト標本、蚊の池、および鳥類組織標本におけるＷＮＶ ＲＮＡの検出に関するＴａｑＭａｎに基づくアッセイを記載している。これらのＰＣＲベースの試験が利用できるにも係らず、臨床試験を行う研究室の必要性に特に適合したＷＮＶスクリーニングアッセイに対する必要性は依然として存在している。この方法は、多数の臨床的および提供された血液サンプルまたは組織サンプルの試験に必要とされ得る高スループットスクリーニングを特に提供するものでなければならない。

発明の概要
本発明の第１の態様は、核酸検出用のハイブリダイゼーションアッセイプローブに関する。このハイブリダイゼーションアッセイプローブは、塩基の標的相補的配列を有するプローブ配列を含み、検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列を任意に含む。塩基の標的相補的配列は、配列番号１０１の配列またはその相補体内に含まれた１２〜８７個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在を、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。一般に、本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブは、１００塩基までの長さを有することができる。１つの好ましい実施形態において、塩基の標的相補的配列は、配列番号１０２の配列またはその相補体内に含まれた１２〜６９個の連続的塩基からなり、ＲＮＡおよびＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。さらにより好ましくは、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含む。さらに一層好ましくは、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、検出可能な標識を含む。例えば、前記プローブは、発蛍光団部分および消光因子部分を含み得る。そのような一例において、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、分子ビーコンであり得る。分子ビーコンの例としては、配列番号１７９、配列番号１８０または配列番号１８１のいずれか１つからなる塩基の標的相補的配列を挙げることができる。本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブの他の好ましい実施形態によると、塩基の標的相補的配列が、配列番号１０２の配列またはその相補体内に含まれた１２〜６９個の連続的塩基からなり、ＲＮＡおよびＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、または２０％までの塩基の差異を考慮に入れる場合、このプローブ配列は、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まない。さらにより好ましくは、本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブは、６９塩基までの長さを有し、さらに一層好ましくは、検出可能な標識を含む。他の好ましい実施形態によれば、塩基の標的相補的性配列は、配列番号１０３の配列またはその相補体内に含まれた１８〜５２個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。さらにより好ましくは、前記プローブ配列は、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まないが、さらに検出可能な標識を含み得る。この検出可能な標識は、化学発光標識か、または蛍光標識であり得る。代替の実施形態によれば、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、配列番号１０３の配列またはその相補体内に含まれた１８〜５２個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの差異を考慮に入れたものであり、５２塩基までの長さを有する。この場合、塩基の標的相補的配列は、配列番号１０３の配列またはその相補体内に含まれた１８〜２２個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものであり、このハイブリダイゼーションアッセイプローブは、２２塩基までの長さを有することができる。一実施形態において、本発明のプローブは、配列番号１１６の配列を有することができる。他の実施形態において、前記プローブ配列は、配列番号１１４、配列番号１１１、配列番号１１０、配列番号１０９、配列番号１０８、配列番号１０７または配列番号１０６のいずれかであり得る。

本発明の他の態様は、生物学的サンプルに存在し得る標的核酸配列増幅用キットに関する。本発明のキットは、３’末端標的相補的配列を有する第１のプライマーを含み、増幅すべき標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を任意に含む。この第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号７３の配列またはその相補体内に含まれた２２個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。また、前記キットは、３’末端標的相補的配列を有する第２のプライマーを含み、増幅しようとする標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を任意に含む。この第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号５９の配列またはその相補体内に含まれた１８個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。本発明のキットの１つの好ましい実施形態において、第１プライマーおよび第２プライマーは各々、長さが６０塩基までである。他の好ましい実施形態において、第１プライマーの３’末端標的相補的配列および第２プライマーの３’末端標的相補的配列は各々、長さが３５塩基までである。この場合、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、長さが２４塩基までであることが好ましい。あるいは、さらに他の好ましい実施形態によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、長さが３５塩基までであり得、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、長さが２２塩基までであり得る。第１プライマーの長さが、２４塩基までである場合、第２プライマーの３’末端標的相補的配列の長さが２２塩基までであることが極めて好ましい。さらにより好ましくは、第１プライマーは、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列などの第１プライマー上流配列を含む。本発明のキットの他の好ましい実施形態によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列の長さが、２４塩基までであり、第２プライマーの３’末端標的相補的配列の長さが、２２塩基までの場合、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号７５、配列番号７６および配列番号７７のうちのいずれかであることが好ましく、また、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号６０、配列番号６２、配列番号６３、配列番号６４、配列番号６５、配列番号６６、配列番号６７、配列番号６８、配列番号６９、配列番号７０および配列番号７１のうちのいずれかであることが好ましい。他の好ましい実施形態によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列の長さが、２４塩基までであり、第２プライマーの３’末端標的相補的配列の長さが、３５塩基までの場合、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号７４の配列またはその相補体内に含まれた２２個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。この場合、第２プライマーの３’末端標的相補的配列の長さは、２２塩基までであり得る。あるいは、第１プライマーは、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列などの第１プライマー上流配列を含み得る。

本発明の他の態様は、核酸検出用のハイブリダイゼーションアッセイプローブに関する。本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブは、塩基の標的相補的配列を有するプローブ配列を含み、検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列を任意に含む。塩基の標的相補的配列は、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１０〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡおよびＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。最後に、本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブは、１００塩基までの長さを有することができる。１つの好ましい実施形態において、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さは、３０塩基までである。さらにより好ましくは、前記プローブ配列は、検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列を任意に含む。この実施形態の第１の変法によれば、さらに検出可能な標識が含まれる。この実施形態の第２の変法によれば、さらに発蛍光団部分および消光因子部分が含まれ、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは分子ビーコンである。ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３０塩基までである異なる実施形態において、前記プローブ配列は、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１０〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものであり、ＷＮＶ核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まない。より好ましくは、前記ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、２０塩基までの長さを有する。ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３０塩基までである一定の実施形態において、塩基の標的相補的配列は、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１９〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。この実施例の第１の好ましい変法によれば、プローブ配列は、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１９〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの差異を考慮に入れたものであり、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まない。この実施例の第２の好ましい変法によれば、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、化学発光標識または蛍光標識などの検出可能な標識をさらに含む。この実施例の第３の好ましい変型によれば、塩基の標的相補的配列は、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１９〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものであり、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、２０塩基までの長さを有する。プローブ配列は、配列番号１００であり得る。ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３０塩基までであり、プローブ配列が検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含む場合の異なる実施形態によれば、塩基の標的相補的配列は、配列番号１６４、配列番号１６５、配列番号１６６、配列番号１６７、配列番号１６８、配列番号１６９または配列番号１７０のいずれかであり得る。

本発明の他の態様は、生物学的サンプル中に存在し得る標的核酸配列の増幅用キットに関する。前記キットは、３’末端標的相補的配列を含む第１プライマーを含み、増幅しようとする標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を任意に含む。第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号５２内に含まれた２２個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。前記キットはさらに、３’末端標的相補性配列を含む第２プライマーを含み、増幅しようとする標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を任意に含む。第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号４１内に含まれた２２個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。好ましい一実施形態において、第１プライマーおよび第２プライマーは、各々６０塩基までの長さである。異なる好ましい一実施形態において、第１プライマーの３’末端標的相補的配列および第２プライマーの３’末端標的相補的配列は各々、３５塩基までの長さである。この場合、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、２６塩基までの長さであることが好ましい。第１プライマーの３’末端標的相補的配列および第２プライマーの３’末端標的相補的配列が各々、３５塩基までの長さである、異なる好ましい実施形態によれば、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２３塩基までの長さであり得る。さらに他の実施形態において、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、２６塩基までの長さであり、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２３塩基までの長さであることが好ましい。この実施形態の第１の好ましい変法によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号５３、配列番号５４および配列番号５５よりなる群から選択でき、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号４２、配列番号４３、配列番号４４、配列番号４５、配列番号４６、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４９、配列番号５０および配列番号５１よりなる群から選択できる。この実施形態の第２の好ましい変法によれば、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２３塩基までの長さである。この場合、第１プライマーは、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列などの第１プライマー上流配列を含み得る。

本発明の他の態様は、核酸を検出するためのハイブリダイゼーションアッセイプローブに関する。本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブは、塩基の標的相補的配列を含み、検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列を含むプローブ配列を任意に有する。塩基の標的相補的配列は、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた１３〜３７個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。一般的に言って、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、１００塩基までの長さを有し得る。好ましい一実施形態において、ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さは、３７塩基までである。より好ましくは、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、検出すべき核酸に相補的でない任意の塩基配列を含む。さらにより好ましくは、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、さらに検出可能な標識を含む。例えば、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、さらに発蛍光団部分および消光因子部分を含み得る。この場合、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、分子ビーコンであり得る。本発明のハイブリダイゼーションアッセイプローブの異なる一実施形態において、プローブ配列は、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた１３〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものであり、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まない。ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３７塩基までであるさらに他の実施態様によれば、塩基の標的相補的配列は、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものであり、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まない。さらにより好ましくは、ハイブリダイゼーションアッセイプローブはさらに、化学発光標識または蛍光標識などの検出可能な標識を含む。さらに他の好ましい実施態様によれば、ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３７塩基までであり、かつ塩基の標的相補性配列が、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた１３〜２０個の連続的塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物
、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れた場合、プローブ配列は、検出しようとする核酸に相補的でない任意の塩基配列を含まず、ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、２０塩基までの長さを有する。例えば、プローブ配列は、配列番号９８であり得る。一般的に言って、ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが３７塩基までの場合、塩基の標的相補的配列は、例えば、配列番号１５４、配列番号１５５、配列番号１５６、配列番号１５７、または配列番号１５８のいずれか１つであり得る。

本発明の他の態様は、生物学的サンプル中に存在し得る標的核酸配列の増幅用キットに関する。本発明のキットは、３’末端標的相補的配列を含む第１プライマーを含み、増幅すべき標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を任意に含む。第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号１６内に含まれた２０個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。前記キットはさらに、長さが３０塩基までの３’末端標的相補的配列を含む第２プライマーを含み、増幅しようとする標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を任意に含む。第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号１内に含まれた２０個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。好ましい一実施形態において、第１プライマーおよび第２プライマーは、各々６０塩基までの長さである。異なる好ましい一実施形態において、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、３５塩基までの長さである。この実施形態の第１の好ましい変法によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、２４塩基までの長さである。この実施形態の第２の好ましい変法によれば、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２４塩基までの長さである。さらに他の好ましい実施形態において、第１プライマーの３’末端標的相補的配列が２４塩基までの長さである場合、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、好ましくは２４塩基までの長さである。代替の実施形態において、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２６塩基までの長さであり、配列番号２内に含まれた２０個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。この実施形態の第１の好ましい変法によれば、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、２４塩基までの長さである。この実施形態の第２の好ましい変型によれば、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２４塩基までの長さである。好ましくは、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、２４塩基までの長さである。さらにより好ましくは、第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号２４、配列番号２５、配列番号２６または配列番号２８のいずれか１つである。第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さであり、第２プライマーの３’末端標的相補的配列が、２６塩基までの長さであり、配列番号２内に含まれた２０個の連続的塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたある一定の実施形態において、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４または配列番号１５のいずれか１つである。あるいは、第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号２４、配列番号２５、配列番号２６または配列番号２８のいずれか１つである場合、第２プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４または配列番号１５のいずれか１つであり得る。極めて好ましい一実施形態によれば、第１プライマーは、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列などの第１プライマー上流配列を含む。
本発明はまた、以下の項目を提供する。
（項目１）
核酸を検出するためのハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
該プローブは、
標的相補的塩基配列、および必要に応じて、
検出しようとする該核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列
を含むプローブ配列
を含み、
ここで、該標的相補的塩基配列が、配列番号１０１の配列またはその相補体内に含まれた１２〜８７連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容しており、
ここで、該ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、１００塩基までの長さを有する、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目２）
項目１に記載のハイブリダイゼーションプローブであって、上記標的相補的塩基配列が、配列番号１０２の配列またはその相補体内に含まれた１２〜６９の連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物とＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容している、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、検出すべき上記核酸に相補的でない上記必要に応じた１つ以上の塩基配列を含む、項目２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４）
検出可能な標識をさらに含む項目３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目５）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、発蛍光団部分、消光因子部分をさらに含み、分子ビーコンである項目３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６）
上記標的相補的塩基配列が、配列番号１７９、配列番号１８０、配列番号１８１、配列番号１８２または配列番号１８３のいずれか１つからなる、
項目５に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目７）
上記プローブ配列が、検出すべき上記核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含まない項目２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目８）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、６９塩基までの長さを有する、項目７に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目９）
検出可能な標識をさらに含む、項目８に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１０）
項目２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、上記標的相補的塩基配列が、配列番号１０３の配列またはその相補体内に含まれた１８〜５２連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１１）
上記プローブ配列が、検出しようとする上記核酸に相補的でない上記必要に応じた１つ以上の塩基配列を含まない、項目１０に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１２）
検出可能な標識をさらに含む、項目１１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１３）
上記検出可能な標識が、化学発光標識および蛍光標識よりなる群から選択される、項目１２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１４）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、５２塩基までの長さを有する、項目１０に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１５）
項目１４に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号１０３の配列またはその相補体内に含まれた１８〜２２連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在および１０％までの塩基の差違を考慮に入れたものであり、上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、２２塩基までの長さを有する、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１６）
上記プローブ配列が、配列番号１１６からなる、項目１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１７）
上記プローブ配列が、配列番号１０６、配列番号１０７、配列番号１０８、配列番号１０９、配列番号１１０、配列番号１１１および配列番号１１４よりなる群から選択される、項目１５に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目１８）
生物学的サンプルに存在し得る標的核酸配列を増幅するためのキットであって、
該キットは、
第１のプライマーおよび
第２のプライマー
を備え、
該第１のプライマーは、３’末端標的相補的配列、および、必要に応じて、増幅される該標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を含み、
該第１プライマーの３’末端標的相補的配列は、配列番号７３に含まれた２２連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し；そして
該第２のプライマーは、３’末端標的相補的配列、および、必要に応じて、増幅される上記標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を含み、
該第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列は、配列番号５９に含まれた１８連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、
キット。
（項目１９）
上記第１プライマーおよび上記第２プライマーが、各々６０塩基までの長さである、項目１８に記載のキット。
（項目２０）
上記第１プライマーの３’末端標的相補的配列、および第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、各々３５塩基までの長さである、項目１８に記載のキット。
（項目２１）
上記第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである項目２０に記載のキット。
（項目２２）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２２塩基までの長さである項目２０に記載のキット。
（項目２３）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２２塩基までの長さである項目２１に記載のキット。
（項目２４）
上記第１プライマーが、上記第１プライマー上流配列を含む項目２３に記載のキット。
（項目２５）
上記第１プライマー上流配列が、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列を含む、項目２４に記載のキット。
（項目２６）
項目２３に記載のキットであって、
上記第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号７５、配列番号７６および配列番号７７よりなる群から選択され、
上記第２プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号６０、配列番号６２、配列番号６３、配列番号６４、配列番号６５、配列番号６６、配列番号６７、配列番号６８、配列番号６９、配列番号７０および配列番号７１よりなる群から選択される、
キット。
（項目２７）
項目２１に記載のキットであって、
上記第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号７４に含まれた２２連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、
キット。
（項目２８）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２２塩基までの長さである項目２７に記載のキット。
（項目２９）
上記第１プライマーが、上記第１プライマー上流配列を含む項目２７に記載のキット。
（項目３０）
上記第１プライマー上流配列が、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列を含む項目２９に記載のキット。
（項目３１）
核酸を検出するためのハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
該プローブは、標的相補的塩基配列、および、必要に応じて、
検出しようとする核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列
を含むプローブ配列を含み、
該標的相補的塩基配列が、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１０〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し、
ここで、該ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、１００塩基までの長さを有する、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３２）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブの長さが、３０塩基までである、
項目３１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３３）
上記プローブ配列が、検出しようとする上記核酸に相補的でない必要に応じた１つ以上の塩基配列を含む、項目３２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３４）
検出可能な標識をさらに含む、項目３３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３５）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、発蛍光団部分、消光因子部分をさらに含み、分子ビーコンである項目３３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３６）
項目３１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記プローブ配列が、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１０〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容しており、かつ
上記ＷＮＶ核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含まない、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３７）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、２０塩基までの長さを有する、項目３６に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３８）
項目３２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号９９の配列内またはその相補体内に含まれた１９〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目３９）
項目３８に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記プローブ配列が、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１９〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し、検出すべき核酸に相補的でない必要に応じた１つ以上の塩基配列を含まない、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４０）
検出可能な標識をさらに含む、項目３８に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４１）
上記検出可能な標識が、化学発光標識および蛍光標識よりなる群から選択される、
項目４０に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４２）
項目３８に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号９９の配列またはその相補体内に含まれた１９〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し、
ここで、該ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、２０塩基までの長さを有する、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４３）
上記標的相補的塩基酸配列が、配列番号１６４、配列番号１６５、配列番号１６６、配列番号１６７、配列番号１６８、配列番号１６９および配列番号１７０よりなる群から選択される、項目３３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４４）
上記プローブ配列が、配列番号１００である項目４２に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目４５）
生物学的サンプルに存在し得る標的核酸配列を増幅するためのキットであって、
該キットは、
第１のプライマーおよび
第２のプライマー
を備え、
該第１のプライマーは、３’末端標的相補的配列、および、必要に応じて、
、増幅される上記標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を含み、
該記第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号５２に含まれた２２連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し；そして、
該第２のプライマーは、３’末端標的相補的配列、および必要に応じて、増幅される標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を含み
該第２プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号４１に含まれた２２連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、
キット。
（項目４６）
上記第１プライマーおよび上記第２プライマーが、各々６０塩基までの長さである、項目４５に記載のキット。
（項目４７）
上記第１プライマーの３’末端標的相補的配列および上記第２プライマーの３’末端標的相補的配列が、各々３５塩基までの長さである、項目４５に記載のキット。
（項目４８）
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２６塩基までの長さである、項目４７に記載のキット。
（項目４９）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２３塩基まである、項目４７に記載のキット。
（項目５０）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２３塩基までの長さである、項目４８に記載のキット。
（項目５１）
項目５０に記載のキットであって、
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号５３、配列番号５４および配列番号５５よりなる群から選択され、
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号４２、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４３、配列番号４９、配列番号４４、配列番号４５、配列番号５０、配列番号５１、および配列番号４６よりなる群から選択される、
キット。
（項目５２）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２３塩基までの長さである、項目４８に記載のキット。
（項目５３）
上記第１プライマーが、上記第１プライマー上流配列を含む、項目５２に記載のキット。
（項目５４）
上記第１プライマー上流配列が、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列を含む、項目５３に記載のキット。
（項目５５）
核酸を検出するためのハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
該ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、
標的相補的塩基配列、および必要に応じて、
検出しようとする上記核酸に相補的でない１つ以上の塩基配列
を含むプローブ配列を含み、
該標的相補的塩基配列が、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた１３〜３７連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し、
ここで、該ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、１００塩基までの長さを有する、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目５６）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブの上記長さが、３７塩基までである項目５５に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目５７）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、検出しようとする上記核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含む、項目５６に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目５８）
検出可能な標識をさらに含む、項目５７に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目５９）
上記ハイブリダイゼーションアッセイプローブが、発蛍光団部分、消光因子部分をさらに含み、分子ビーコンである、項目５７に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６０）
項目５５に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記プローブ配列が、配列番号９５の配列またはその相補体内に含まれた１３〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の相違の存在を許容し、検出しようとする核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含まない、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６１）
項目５６に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号９５の配列内またはその相補体内に含まれた１３〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在および１０％までの塩基の差違を許容し、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６２）
項目６１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記プローブ配列が、配列番号９５の配列内またはその相補体内に含まれた２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し、検出すべき核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含まない、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６３）
検出可能な標識をさらに含む項目６１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６４）
上記検出可能な標識が、化学発光標識および蛍光標識よりなる群から選択される、項目６３に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６５）
項目６１に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号９５の配列内またはその相補体内に含まれた１３〜２０連続塩基からなり、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在および１０％までの塩基の差違を考慮に入れたものであり、上記プローブ配列は、検出しようとする核酸に相補的でない上記任意の１つ以上の塩基配列を含まず、該ハイブリダイゼーションアッセイプローブは、２０塩基までの長さを有する、ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６６）
項目５７に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブであって、
上記標的相補的塩基配列が、配列番号１５４、配列番号１５５、配列番号１５６、配列番号１５７、および配列番号１５８よりなる群から選択される、
ハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６７）
上記プローブ配列が、配列番号９８である項目６５に記載のハイブリダイゼーションアッセイプローブ。
（項目６８）
生物学的サンプルに存在し得る標的核酸配列を増幅するためのキットであって、
該キットは、
第１プライマーおよび
第２プライマー
を備え、
該第１プライマーは、３’末端標的相補的配列、および必要に応じて、増幅される上記標的核酸配列に相補的でない第１プライマー上流配列を含み、
該第１プライマーの３’末端標的相補的配列が、配列番号１６に含まれた２０連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容し；そして
該第２のプライマーは、３０塩基までの長さの３’末端標的相補的配列、および必要に応じて、増幅される上記標的核酸配列に相補的でない第２プライマー上流配列を含み、
該第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号１内に含まれた２０連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の差違の存在を許容する、
を含むキット。
（項目６９）
上記第１プライマーおよび上記第２プライマーが、各々６０塩基までの長さである、項目６８に記載のキット。
（項目７０）
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、３５塩基までの長さである、項目６８に記載のキット。
（項目７１）
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである、項目７０に記載のキット。
（項目７２）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基まである、項目７０に記載のキット。
（項目７３）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである、項目７１に記載のキット。
（項目７４）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２６塩基までの長さであり、配列番号２に含まれた２０連続塩基を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび１０％までの塩基の相違の存在を許容する、項目７０に記載のキット。
（項目７５）
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである、項目７４に記載のキット。
（項目７６）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである、項目７４に記載のキット。
（項目７７）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、２４塩基までの長さである、項目７５に記載のキット。
（項目７８）
上記第１プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号２４、配列番号２５、配列番号２６および配列番号２８よりなる群から選択される項目７５に記載のキット。
（項目７９）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１３および配列番号１５よりなる群から選択される、項目７５に記載のキット。
（項目８０）
上記第２プライマーの上記３’末端標的相補的配列が、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１３および配列番号１５よりなる群から選択される、項目７８に記載のキット。
（項目８１）
上記第１プライマーが、上記第１プライマー上流配列を含む、項目８０に記載のキット。
（項目８２）
上記第１プライマー上流配列が、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼに対するプロモーター配列を含む項目８１に記載のキット。

定義
以下の用語は、特に本明細書に反する言明がなされない限り、本開示のために以下の意味を有する。

本明細書に用いられる「生物学的サンプル」とは、ヒト、動物または環境サンプルから得られた任意の組織またはポリヌクレオチド含有物質である。本発明による生物学的サンプルとしては、末梢血液、血漿、血清または他の体液、骨髄または他の器官、生検組織または生物学的起源の他の物質が挙げられる。生物学的サンプルは、組織または細胞構造を崩壊させ、それによって酵素、緩衝液、塩類、界面活性剤などを含有し得る溶液中に細胞内成分を放出させるために処理できる。

本明細書で用いられる「ポリヌクレオチド」とは、配列内に存在でき、ポリヌクレオチドと相補的配列を有する第２の分子とのハイブリダイゼーションを妨害しない任意の合成ヌクレオチドアナログまたは他の分子と一緒のＲＮＡまたはＤＮＡのいずれかを意味する。

本明細書で用いられる「検出可能な標識」とは、検出できるか、または検出可能な応答を導くことのできる化学種である。本発明による検出可能な標識は、直接的または間接的にポリヌクレオチドプローブに結合することができ、ラジオアイソトープ、酵素類、ハプテン類、染料または検出可能な色を付与する粒子（例えば、ラテックスビーズまたは金属粒子）などの発色団、発光化合物（例えば、生物発光部分、りん光部分または化学発光部分）および蛍光化合物が挙げられる。

「均一検出可能標識」とは、標識が標的配列にハイブリダイゼーションしたプローブ上にあるかどうかを測定することによって均一な様式で検出できる標識を言う。すなわち、均一検出可能標識は、標識または標識プローブのハイブリダイゼーションした形体をハイブリダイゼーションしていない形体から取り出すことなく検出できる。ＷＮＶ核酸を検出するために標識プローブを用いる場合は、均一検出可能標識が好ましい。均一標識の例は、Ａｒｎｏｌｄら、米国特許第５，２８３，１７４号；Ｗｏｏｄｈｅａｄら、米国特許第５，６５６，２０７号；およびＮｅｌｓｏｎら、米国特許第５，６５８，７３７号により詳細に記載されている。均一アッセイに使用するための好ましい標識としては、化学発光化合物（例えば、Ｗｏｏｄｈｅａｄら、米国特許第５，６５６，２０７号；Ｎｅｌｓｏｎら、米国特許第５，６５８，７３７号；およびＡｒｎｏｌｄ，Ｊｒ．ら、米国特許第５，６３９，６０４号を参照）が挙げられる。好ましい化学発光標識は、標準的ＡＥまたはその誘導体（例えば、ナフチルＡＥ、オルト−ＡＥ、１−または３−メチル−ＡＥ、２，７−ジメチル−ＡＥ、４，５−ジメチル−ＡＥ、オルト−ジブロモ−ＡＥ、オルト−ジメチル−ＡＥ、メタ−ジメチル−ＡＥ、オルト−メトキシ−ＡＥ、オルト−メトキシ（シンナミル）−ＡＥ、オルト−メチル−ＡＥ、オルト−フルオロ−ＡＥ、１−または３−メチル−オルト−フルオロ−ＡＥ、１−または３−メチル−メタ−ジフルオロ−ＡＥ、および２−メチル−ＡＥ）などのアクリジニウム（「ＡＥ」）化合物である。

「均一アッセイ」とは、特定のプローブハイブリダイゼーションの程度を測定する前に、ハイブリダイゼーションしていないプローブからハイブリダイゼーションしたプローブの物理的分離を必要としない検出操作を言う。本明細書に記載されているものなどの例示的均一アッセイでは、適切な標識にハイブリダイゼーションすると蛍光シグナルを発する分子ビーコンまたは他の自己報告プローブ、ハイブリッド二本鎖で存在しなければ化学的手段で選択的に破壊できる化学発光アクリジニウムエステル標識および当業界の通常の技術者に周知の他の均一検出可能標識を使用することができる。

本明細書で用いられる「増幅」とは、標的核酸配列、その相補体またはその断片の複数のコピーを得るためのインビトロ操作を言う。

「標的核酸」または「標的」とは、標的核酸配列を含む核酸を意味する。一般に、増幅される核酸配列は、２つの逆に配置されたプライマーの間に配置され、各プライマーに完全に相補的な標的核酸部分を含むことになる。

「標的核酸配列」または「標的配列」または「標的領域」とは、一本鎖核酸分子のヌクレオチド配列の全てまたは部分を含む特定のデオキシリボヌクレオチド配列またはリボヌクレオチド配列およびそれに相補的なデオキシリボヌクレオチド配列またはリボヌクレオチド配列を意味する。

「転写関連増幅」とは、ＲＮＡポリメラーゼを用いて核酸テンプレートから複数のＲＮＡ転写体を生産する任意のタイプの核酸増幅を意味する。「転写媒介増幅」（ＴＭＡ）と称される転写関連増幅の一例では、一般にＲＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼ、三リン酸デオキシリボヌクレオシド、三リン酸リボヌクレオシドおよびプロモーターテンプレート相補性オリゴヌクレオチドが用いられ、任意に１種以上のオリゴヌクレオチドアナログを含み得る。ＴＭＡの変法は、Ｂｕｒｇら、米国特許第５，４３７，９９０号；Ｋａｃｉａｎら、米国特許第５，３９９，４９１号および米国特許第５，５５４，５１６号；Ｋａｃｉａｎら、国際公開第９３／２２４６１号；Ｇｉｎｇｅｒａｓら、国際公開第８８／０１３０２号；Ｇｉｎｇｅｒａｓら、国際公開第８８／１０３１５号；Ｍａｌｅｋら、米国特許第５，１３０，２３８号；Ｕｒｄｅａら、米国特許第４，８６８，１０５号および米国特許第５，１２４，２４６号；ＭｃＤｏｎｏｕｇｈら、国際公開第９４／０３４７２号；およびＲｙｄｅｒら、国際公開第９５／０３４３０号に詳細に開示されているとおり、当業界に周知である。Ｋａｃｉａｎらの方法は、本明細書に開示されたタイプの核酸増幅操作を行う上で好ましい。

本明細書で用いられる「オリゴヌクレオチド」または「オリゴマー」は、少なくとも２つ、一般に約５つから約１００の間の化学的サブユニットの高分子鎖であり、各サブユニットはヌクレオチド塩基部分、糖部分およびサブユニットを線状の空間配置につなぐ結合部分を含む。一般的なヌクレオチド塩基部分は、グアニン（Ｇ）、アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、チミン（Ｔ）およびウラシル（Ｕ）であるが、水素結合できる他の希少な、または修飾されたヌクレオチド塩基は当業者によく知られている。オリゴヌクレオチドは、任意に糖部分、塩基部分および骨格構成要素、いずれかのアナログを含み得る。本発明の好ましいオリゴヌクレオチドは、約１０残基から１００残基の範囲のサイズに入る。オリゴヌクレオチドは、天然源から精製できるが、種々の周知の酵素的または化学的方法のいずれかを用いて合成されることが好ましい。

本明細書に用いられる「プローブ」は、ハイブリダイゼーションを促進する条件下で、核酸内、好ましくは増幅された核酸内の標的配列に特異的にハイブリダイゼーションし、検出可能なハイブリッドを形成するオリゴヌクレオチドである。プローブは、任意にプローブの一端または両端に付加され得るか、または内部にあり得る検出可能部分を含有し得る。標的ポリヌクレオチドと組み合わせるプローブのヌクレオチドは、プローブの配列内の検出可能部分の場合のように厳密に連続的である必要はない。検出は、直接的（すなわち、標的配列または増幅核酸に直接ハイブリダイゼーションするプローブから生じる）でもよいし、また、間接的（すなわち、プローブを標的配列または増幅核酸に結合させる中間分子構造にハイブリダイゼーションするプローブから生じる）でもよい。プローブの「標的」は、一般に標準的な水素結合（すなわち塩基対合）を用いて、プローブオリゴヌクレオチドの少なくとも一部に特異的にハイブリダイゼーションする増幅核酸配列内に含まれる配列である。プローブは、標的特異的配列および任意に、検出すべき標的配列に非相補的な他の配列を含み得る。これらの非相補的配列は、プロモーター配列、制限エンドヌクレアーゼ認識部位またはプローブの三次元立体配座に寄与する配列（例えば、Ｌｉｚａｒｄｉら、米国特許第５，１１８，８０１号および米国特許第５，３１２，７２８号）を含み得る。「十分に相補的な」配列は、プローブの標的特異的配列に完全には相補的でない標的配列に対するプローブオリゴヌクレオチドの安定なハイブリダイゼーションを可能にする。

本明細書に用いられる「増幅プライマー」は、標的核酸またはその相補体にハイブリダイゼーションして、核酸増幅反応に寄与するオリゴヌクレオチドである。例えば、増幅プライマー、またはより簡単に「プライマー」は、任意にテンプレート核酸にハイブリダイゼーションすることができ、ＤＮＡポリメラーゼ活動によって伸長できる修飾オリゴヌクレオチドであり得る。一般にプライマーは、下流ＷＮＶ相補的配列を有し、ＷＮＶ核酸に相補的でない上流配列を任意に有する。任意の上流配列は、例えば、ＲＮＡポリメラーゼプロモーターとして働き得るか、または制限エンドヌクレアーゼ開裂部位を含有し得る。

「実質的に相同な」、「実質的に相当している」または「実質的に相当する」とは、対象オリゴヌクレオチドが参照塩基配列（ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物を除く）に存在する少なくとも１０塩基連続領域に対して、少なくとも７０％相同、好ましくは少なくとも８０％相同、より好ましくは少なくとも９０％相同、最も好ましくは少なくとも１００％相同である、少なくとも１０塩基連続領域を含む塩基配列を有することを意味する。当業者は、標的配列に対するオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションを許容する一方、許容できないレベルの非特異的ハイブリダイゼーションを防ぐ種々のパーセンテージの相同性で、ハイブリダイゼーションアッセイ条件に対してなし得る修飾を容易に理解するであろう。類似の程度は、２つの配列を作り上げているヌクレオ塩基の順序を比較することによって決定され、構造の違いが相補的塩基との水素結合を防げないという条件で、２つの配列間に存在し得る他の構造の違いは考慮に入れない。２つの配列間の相同性の程度は、比較されている少なくとも１０の連続塩基の各セットに存在する塩基誤対合の数によっても表すことができ、それは０〜２塩基の違いの範囲であり得る。

「実質的に相補的」とは、対象オリゴヌクレオチドが標的核酸配列（ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物を除く）に存在する少なくとも１０塩基連続領域に対して、少なくとも７０％相補的、好ましくは少なくとも８０％相補的、より好ましくは少なくとも９０％相補的、最も好ましくは少なくとも１００％相補的である、少なくとも１０塩基連続領域を含む塩基配列を有することを意味する。当業者は、標的配列に対するオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションを許容する一方、許容できないレベルの非特異的ハイブリダイゼーションを防ぐ種々のパーセンテージの相補性で、ハイブリダイゼーションアッセイ条件に対してなし得る修飾を容易に理解するであろう。相補性の程度は、２つの配列を作り上げているヌクレオ塩基の順序を比較することによって決定され、構造の違いが相補的塩基との水素結合を防げないという条件で、２つの配列間に存在し得る他の構造の違いは考慮に入れない。２つの配列間の相補性の程度は、比較されている少なくとも１０の連続塩基の各セットに存在する塩基誤対合の数によっても表すことができ、それは０〜２塩基の違いの範囲であり得る。

「十分に相補的」とは、一連の相補的塩基との間の水素結合により、他の塩基配列にハイブリダイゼーションできる連続的核酸塩基配列を意味する。相補的塩基配列は、標準的塩基対合（例えば、Ｇ：Ｃ、Ａ：ＴまたはＡ：Ｕ対合）を用いて、オリゴヌクレオチドの塩基配列における各位置で相補的であり得るか、または、標準的水素結合を用いて相補的でない１つ以上の残基（非塩基「ヌクレオチド」を含む）を含有し得るが、全体の相補的塩基配列が、適切なハイブリダイゼーション条件下で、他の塩基配列と特異的にハイブリダイゼーションできる。連続的塩基は、オリゴヌクレオチドが特異的にハイブリダイゼーションすることが意図されている配列に対して、好ましくは少なくとも約８０％、より好ましくは少なくとも約９０％、最も好ましくは少なくとも約１００％相補的である。適切なハイブリダイゼーション条件は、当業者によく知られており、塩基配列組成に基づいて容易に予想できるか、または従来の試験（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、ニューヨーク州コールドスプリングハーバー所在、１９８９年）の§§１．９０−１．９１、７．３７−７．５７、９．４７−９．５１および１１．４７−１１．５７、特に９．５０−９．５１、１１．１２−１１．１３、１１．４５−１１．４７および１１．５５−１１．５７を参照）を用いて、経験的に決定できる。

「捕捉オリゴヌクレオチド」とは、塩基対合ハイブリダイゼーションによって標的配列と、固定オリゴヌクレオチドとを特異的に結合するための手段を提供する少なくとも１つの核酸オリゴヌクレオチドを意味する。捕捉オリゴヌクレオチドは、２つの結合領域、すなわち、通常、同一オリゴヌクレオチド上に連続している標的配列結合領域と固定プローブ結合領域を含むことが好ましいが、捕捉オリゴヌクレオチドは、１つ以上のリンカーによって共に結合している２つの異なるオリゴヌクレオチド上に存在している標的配列結合領域と固定プローブ結合領域を含み得る。例えば、固定プローブ結合領域は、第１のオリゴヌクレオチド上に存在でき、標的配列結合領域は、第２のオリゴヌクレオチド上に存在でき、２つの異なるオリゴヌクレオチドは、第１のオリゴヌクレオチドと第２のオリゴヌクレオチドの配列に、特異的にハイブリダイゼーションする配列を含む第３のオリゴヌクレオチドであるリンカーによる水素結合によって結合している。

「固定プローブ」または「固定核酸」とは、直接的に、または間接的に、捕捉オリゴヌクレオチドを固定支持体に結合する核酸を意味する。固定プローブは、結合した標的配列をサンプル中の非結合物質から分離することを促進する固体支持体に結合したオリゴヌクレオチドである。

「分離」または「精製」とは、生物学的サンプルの１種以上の成分を、前記サンプルの１種以上の他の成分から取り出すことを意味する。サンプル成分は、一般に水溶液相における核酸を含むが、それはまた、蛋白質、炭水化物、脂質および標識プローブも含み得る。分離工程または精製工程では、サンプル中に存在する他の成分の好ましくは少なくとも約７０％、より好ましくは少なくとも約９０％、さらにより好ましくは少なくとも約９５％が除去される。

「ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物」または「ＲＮＡ等価塩基およびＤＮＡ等価塩基」とは、同一の相補塩基対ハイブリダイゼーション特性を有するＲＮＡやＤＮＡなどの分子を意味する。ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物は、異なる糖部分（すなわち、リボース対デオキシリボース）を有し、ＲＮＡではウラシル、ＤＮＡではチミンの存在によって異なり得る。ＲＮＡ等価物とＤＮＡ等価物との間の違いは、相同性の違いに寄与しない。なぜならば、前記等価物は、特定の配列に対して、同程度の相補性を有しているからである。

「本質的に〜からなる」とは、本発明の基本的および新規な特徴を実質的に変化させることのない追加の成分（単数または複数）、組成物（単数または複数）または方法工程（単数または複数）を、本発明の組成物またはキットまたは方法に含み得ることを意味する。このような特徴としては、全血または血漿などの生物学的サンプルにおいてＷＮＶ核酸を選択的に検出する能力が挙げられる。本発明の基本的および新規な特徴に、実質的な影響を及ぼす成分（単数または複数）、組成物（単数または複数）または方法工程（単数または複数）は、いずれもこの用語には含まれない。

図１は、ＷＮＶ核酸内の標的領域を検出するために使用できる種々のポリヌクレオチド（太い横線で表されている）を示す略図である。以下の核酸の位置が、標的領域に相対的に示されている。「捕捉オリゴヌクレオチド」とは、増幅前に標的核酸にハイブリダイゼーションし、それを捕捉するために用いられる核酸を言い、ここで「Ｔ］は、相補的配列（示していない）を有する固定オリゴヌクレオチドをハイブリダイゼーションするために用いられる尾部配列を言う。「非Ｔ７プライマー」および「Ｔ７プロモータープライマー」は、ＴＭＡを実施するために用いられる２種の増幅プライマーを表し、ここで「Ｐ」は、Ｔ７プロモータープライマーのプロモーター配列を示し、「プローブ」とは、増幅核酸を検出するために用いられるプローブを言う。 図２は、相対的光単位（ｙ軸）に対する投入標的（ｘ軸）の増加濃度で測定された特異的プローブハイブリダイゼーションシグナルを表す一連の線グラフを示す。前記操作に用いられる標的オリゴヌクレオチドは、配列番号１４８（黒丸）、配列番号１５０（黒ひし形）、配列番号１５１（黒四角）、および配列番号１５２（黒三角）を有した。 図３は、リアルタイム核酸増幅反応内へ投入されたＷＮＶ標準量（ｘ軸）および背景閾値上に測定された蛍光シグナル（ｙ軸）に関する線グラフである。

発明の詳細な説明
本明細書に開示されるのは、血液、血清、血漿または他の体液または組織などの生物学的サンプルにおける西ナイルウィルス（ＷＮＶ）などのフラビウィルス類の核酸を選択的に検出するための組成物、方法およびキットである。本発明のプローブ、プライマーおよび方法は、診断的適用において、または提供血液および血液製品または感染性粒子を含有し得る他の組織のスクリーニング用に使用することができる。
序論および概論
本発明は、生物学的サンプルにおけるＷＮＶ核酸の検出に特に有用な組成物（核酸捕捉オリゴヌクレオチド、増幅オリゴヌクレオチドおよびプローブ類）、方法およびキットを含む。そのような利用にとって適切なオリゴヌクレオチド配列をデザインするために、診断アッセイにおいて試剤として働き得るウィルスゲノムの候補領域を同定するために、公知のＷＮＶ核酸配列をまず比較した。これらの比較の結果、図１に概略的に示されている捕捉オリゴヌクレオチドプライマーおよびプローブを用いて、検出のための標的として、ＷＮＶゲノムの３つの異なる領域を選択した。捕捉、増幅および増幅した配列の検出における使用に好適な合成オリゴヌクレオチドをデザインするための出発点として、比較された配列間に比較的少ない変異体しか含有しない配列の部分を選択した。

これらの分析に基づき、下記に示された捕捉オリゴヌクレオチド、増幅プライマーおよびプローブ配列をデザインした。当業界における通常の技術者は、下記の種々のプライマーに基づくインビトロ増幅法において、ＷＮＶまたは他のフラビウィルス標的に特異的なＴ７プロモーター配列を有する、または有さない任意のプライマー配列を、プライマーとして使用できることを理解するであろう。本明細書に開示された配列を有するオリゴヌクレオチドは、ＷＮＶ核酸を検出するためのアッセイにおいて、代替の機能を果たし得ることもまた考慮される。例えば、代替の検出アッセイにおいて、本明細書に開示された捕捉オリゴヌクレオチドは、ハイブリダイゼーションプローブとして働くことができ、本明細書に開示されたハイブリダイゼーションプローブは、増幅プライマーとして使用でき、また本明細書に開示された増幅プライマーは、ハイブリダイゼーションプローブとして使用できる。

本明細書に開示された増幅プライマーは、幾つかの単位複製配列種が、標的特異的プライマーの１組から製造できる複合増幅反応の構成要素として、特に考慮される。例えば、本明細書に開示された一定の好ましいＷＮＶ特異的プライマーは、それらのアッセイの感度を実質的に損なうことなく、非関連ウィルスのポリヌクレオチドを増幅することのできる複合増幅反応に用いることができると考えられる。これらの非関連ウィルスの具体例としては、ＨＩＶ−１、ＨＩＶ−２、ＨＣＶおよびＨＢＶが挙げられる。
有用な増幅法
本発明に関連する有用な増幅法としては、転写媒介増幅（ＴＭＡ）、核酸配列に基づく増幅（ＮＡＳＢＡ）、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、標準置換増幅（ＳＤＡ）および自己複製ポリヌクレオチド分子とＭＤＶ−１ ＲＮＡやＱ−ベータ酵素などの複製酵素を用いる増幅法が挙げられる。これらの種々の増幅技術を実施するための方法は各々、米国特許第５，３９９，４９１号、欧州特許出願公開第０ ５２５ ８８２号、米国特許第４，９６５，１８８号、米国特許第５，４５５，１６６号、米国特許第５，４７２，８４０号およびＬｉｚａｒｄｉら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ６：ｐ．１１９７（１９８８）に見ることができる。核酸増幅反応をどのように実施するかを記載しているこれらの文献の開示は、参照として本明細書に組み込まれている。

本発明の極めて好ましい実施形態において、ＷＮＶ核酸は、ＴＭＡプロトコルを用いて増幅される。このプロトコルによれば、ＤＮＡポリメラーゼ活性を提供する逆転写酵素は、内在性ＲＮアーゼＨ活性もまた有する。この操作に用いられるプライマーの１つは、増幅しようとする標的核酸の１本鎖に相補的な配列の上流に位置するプロモーター配列を含む。増幅の第１工程において、プロモーター−プライマーは、規定された部位においてＷＮＶ標的ＲＮＡにハイブリダイゼーションする。逆転写酵素は、プロモーター−プライマーの３’末端から伸長することによって、標的ＲＮＡの相補的ＤＮＡコピーを創製する。反対鎖プライマーと新たに合成されたＤＮＡ鎖との相互作用後、逆転写酵素によりＤＮＡの第２の鎖が、プライマーの末端から合成され、それによって、二本鎖ＤＮＡ分子が創製される。ＲＮＡポリメラーゼは、この二本鎖ＤＮＡテンプレートにおけるプロモーター配列を認識し、転写を開始する。新たに合成されたＲＮＡ単位複製配列の各々は、再びＴＭＡ過程に入り、複製の新ラウンドのためのテンプレートとして働き、それによってＲＮＡ増幅の指数関数的拡大に至る。ＤＮＡテンプレートの各々が、ＲＮＡ単位複製配列の１００〜１０００コピーを作製できるため、この拡大により、１時間未満に１００億の単位複製配列の製造をもたらすことができる。この全過程は自己触媒的であり、一定の温度において実施される。
プライマーの構造的特徴
上記に示したように、「プライマー」とは、核酸増幅反応に寄与することのできる、任意に修飾されたオリゴヌクレオチドを言う。好ましいプライマーは、テンプレート核酸にハイブリダイゼーションすることができ、ＤＮＡポリメラーゼ活性によって伸長できる３’末端を有するものである。このプライマーの５’領域は、標的核酸配列に対して非相補的であり得る。この５’非相補的領域が、プロモーター配列を含む場合、それは「プロモーター−プライマー」と称される。プライマーとして機能できる任意のオリゴヌクレオチド（すなわち、標的配列に対して特異的にハイブリダイゼーションし、ＤＮＡポリメラーゼ活性によって伸長できる３’末端を有するオリゴヌクレオチド）が、５’プロモーター配列を含むように修飾でき、プロモーター−プライマーとして機能し得ることを、当業者は理解するであろう。同様に、任意のプロモーター−プライマーは、プロモーター配列を除去するかまたはプロモーター配列なしで合成することによって改変され得、そしてなおプライマーとしての機能を有し得る。

プライマーのヌクレオチド塩基部分は、その修飾塩基部分が、Ｇ．Ａ．Ｃ．ＴまたはＵとの非共有的会合を形成する能力を保持する限り、かつ少なくとも１つの修飾ヌクレオチド塩基部分またはアナログが、一本鎖核酸とハイブリダイゼーションすることを立体的に妨げられない限り、修飾することができる（例えば、プロピン基の付加により）。有用なプローブの化学的組成物に関連して下記に示されるように、本発明によるプライマーの窒素性塩基は、従来の塩基（Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｔ、Ｕ）、それらの公知のアナログ（例えば、その塩基部分としてヒポキサンチンを有するイノシンまたは「Ｔ」；Ｔｈｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ ｐ．５−３６、Ａｄａｍｓら編集、第１１版、１９９２年を参照）、プリン塩基またはピリミジン塩基の公知の誘導体（例えば、Ｎ^４−メチルデオキシガウノシン、デアザ−またはアザ−プリン類ならびにデアザ−またはアザ−ピリミジン類、５位または６位に置換基を有するピリミジン塩基類、２位、６位または８位に変更または代替置換基を有するプリン塩基類、２−アミノ−６−メチルアミノプリン、Ｏ^６−メチルグアニン、４−チオピリミジン類、４−アミノ−ピリミジン類、４−ジメチルヒドラジン−ピリミジン類およびＯ^４−アルキル−ピリミジン類（Ｃｏｏｋ、国際公開第９３／１３１２１号を参照）および骨格がポリマーの１つ以上の残基に対して窒素性塩基を含まない「非塩基性」残基（Ａｒｎｏｌｄら、米国特許第５，５８５，４８１号を参照）であり得る。プライマー骨格を含む一般的な糖部分としては、リボースおよびデオキシリボースが挙げられるが、２’−Ｏ−メチルリボース（ＯＭｅ）、ハロゲン化糖、および他の修飾糖部分もまた使用し得る。通常、プライマー骨格の結合基は、リン含有部分、最も一般的には、ホスホジエステル結合であるが、例えば、ホスホロチオエート類、メチルホスホネート類および「ペプチド核酸」（ＰＮＡ）に見られるペプチド様結合などの非リン含有結合などの他の結合もまた、本明細書に開示されたアッセイにおける使用が意図されている。

有用なプローブ標識システムおよび検出可能部分
特異的核酸ハイブリダイゼーションのために使用できる、本質的に任意の標識および検出システムを、本発明に関連させて使用できる。有用な標識の集合のうちでも、放射標識、酵素、ハプテン類、結合オリゴヌクレオチド類、化学発光分子、蛍光部分（単独でまたは「消光因子」部分と組合わせて）、および電気的検出法に従うことのできるレドックス活性部分が挙げられる。好ましい化学発光分子としては、均一保護アッセイに関連させて使用されるＡｒｎｏｌｄら、米国特許第５，２８３，１７４号によって開示されたタイプおよび単一反応において複数の標的を定量化するアッセイに関連させて使用されるＷｏｏｄｈｅａｄら、米国特許第５，６５６，２０７号に開示されたタイプのアクリニジウムエステル類が挙げられる。これらの特許文書内に含まれた開示は、参照として本明細書に組み込まれている。好ましい電気的標識と検出法は、米国特許第５，５９１，５７８号と米国特許第５，７７０，３６９号、および公表された国際特許出願公開第９８／５７１５８号に開示されており、それらの開示は、参照として本明細書に組み込まれている。本明細書における標識として有用なレドックス活性部分としては、Ｃｄ、Ｍｇ、Ｃｕ、Ｃｏ、Ｐｄ、Ｚｎ、ＦｅおよびＲｕなどの遷移金属が挙げられる。

本発明によるプローブにとって特に好ましい検出可能標識は、均一アッセイシステム（すなわち、混合物において、結合した標識プローブは、未結合標識プローブに比して、安定性または示差分解などの検出可能な変化を示す）において検出可能である。蛍光標識および電気的検出可能標識などの他の均一検出可能標識が本発明の実践における使用に意図されるが、均一アッセイにおける使用に好ましい標識は、化学発光化合物（例えば、Ｗｏｏｄｈｅａｄらによる米国特許第５，６５６，２０７号に；Ｎｅｌｓｏｎらによる米国特許第５，６５８，７３７号に；またはＡｒｎｏｌｄらによる米国特許第５，６３９，６０４号に記載されているような）である。特に好ましい化学発光標識としては、標準ＡＥ、またはナフチルＡＥ、オルト−ＡＥ、１−または３−メチル−ＡＥ、２，７−ジメチル−ＡＥ、４，５−ジメチル−ＡＥ、オルト−ジブロモ−ＡＥ、オルト−ジメチル−ＡＥ、メタ−ジメチル−ＡＥ、オルト−メトキシ−ＡＥ、オルト−メトキシ（シンナミル）−ＡＥ、オルト−メチル−ＡＥ、オルト−フルオロ−ＡＥ、１−または３−メチル−オルト−フルオロ−ＡＥ、１−または３−メチル−メタ−ジフルオロ−ＡＥ、および２−メチル−ＡＥなどの標準ＡＥの誘導体などのアクリジニウムエステル（「ＡＥ」）化合物が挙げられる。

幾つかの適用においては、検出前に先ず非ハイブリダイゼーションプローブを除去する必要なしに試験サンプル中のプローブ、すなわち標的二本鎖の検出を促進するために、少なくともある程度の自己相補性を示すプローブが望ましい。例えば、接合領域によって繋げられ、予め決められたハイブリダイゼーションアッセイ条件下で互いにハイブリダイゼーションする明確な自己相補性領域（作製された「標的結合ドメイン」および「標的閉鎖ドメイン」）を含むように、「分子灯」と称される構造がデザインされる。変性条件に曝露されると、この分子灯の２つの相補的領域（完全または部分的に相補的であり得る）は変化して、標的結合ドメインを、予め決められたハイブリダイゼーションアッセイ条件が回復した時に、標準配列に対するハイブリダイゼーションにとって利用可能なものにする。標的結合ドメインが、標的閉鎖ドメインにわたる標的配列に対するハイブリダイゼーションに有利に働くように、分子灯がデザインされる。分子灯の標的結合ドメインおよび標的閉鎖ドメインは、分子灯が標的核酸にハイブリダイゼーションする場合とは反対に、分子灯が自己ハイブリダイゼーションする場合には、異なるシグナルが生じ、それによって非ハイブリダイゼーションプローブに会合した実行可能標識を有する非ハイブリダイゼーションプローブの存在下、試験サンプル中のプローブ、すなわち標識二本鎖の検出を可能にするように配置された相互作用標識（例えば、蛍光／消光因子）を含む。分子灯は、米国特許第６，３６１，９４５号に十分記載されており、その開示は、参照として本明細書に組み込まれている。

本発明と関連させて使用できる自己相補的ハイブリダイゼーションアッセイプローブの他の例は、一般に「分子ビーコン」と称される構造である。分子ビーコンは、標的相補的配列を有する核酸分子、標的核酸配列の不在下、閉鎖配座において、プローブを保持する親和対（または核酸アーム）、およびプローブが閉鎖配座にある場合に相互作用する標識対を含む。標的核酸と標的相補的配列のハイブリダイゼーションによって、親和対のメンバーが分離し、それによりプローブは、開放配座に移行する。開放配座への移行は、例えば、発蛍光団および消光因子（例えば、ＤＡＢＣＹＬおよびＥＤＡＮＳ）であり得る標識対の相互作用減少によって検出可能である。分子ビーコンは、米国特許第５，９２５，５１７号に十分記載されており、その開示は、参照として本明細書に組み込まれている。ＷＮＶ特異的核酸配列を検出する上で有用な分子ビーコンは、本明細書に開示されたプローブ配列のいずれかの一端に、発蛍光団を含む第１の核酸アームと消光因子部分を含む第２の核酸アームを付加することによって創製できる。この立体配置において、本明細書に開示されたＷＮＶ特異的プローブ配列は、生じる分子ビーコンの標的相補的「ループ」部分として働く。

分子ビーコンは、検出可能な標識の相互作用的対によって標識化されることが好ましい。標識の相互作用的対のメンバーとして好ましい検出可能標識の例は、ＦＲＥＴまたは非ＦＲＥＴエネルギー転移機構によって、互いに相互作用する。蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）は、熱エネルギーへの変換なしに、また、供与体と受容体とが運動衝突に入らずに、原子間距離よりもかなり大きな距離にわたる、発色団間での共鳴相互作用による、吸収部位から、前記分子または分子系の利用部位までのエネルギー量子の無放射伝達に関与する。「供与体」は、最初にエネルギーを吸収する部分であり、「受容体」は、その後エネルギーが転移される部分である。ＦＲＥＴの他に、供与体から受容体分子へ励起エネルギーを転移し得る、他の少なくとも３つの「非ＦＲＥＴ」エネルギー転移過程がある。

ＦＲＥＴ機構によるものであろうと、非ＦＲＥＴ機構によるものであろうと、１つの標識によって放射されたエネルギーが、第２の標識によって受容または吸収される得るほど、２つの標識が十分近接して保持されている場合、この２つの標識は、互いに「エネルギー転移関係」にあると言われる。これは、例えば、分子ビーコンが幹体二本鎖の形成により、閉鎖状態に維持され、プローブの１つのアームに付加している発蛍光団からの蛍光放射が、反対側のアーム上の消光因子部分によって消光される場合である。

本発明の分子ビーコンにとって極めて好ましい標識部分は、発蛍光団および蛍光消光部分（すなわち「消光因子」）を有する第２の部分を含む。特徴的シグナルは、特定の波長の蛍光である可能性が高いが、代わりに可視光シグナルでもあり得る。蛍光が関与する場合、放射における変化は、ＦＲＥＴ、または放射エネルギー転移または非ＦＲＥＴ様式によることが好ましい。閉鎖状態において相互作用標識対を有する分子ビーコンが、適切な周波数の光によって刺激される場合は、非常に低いものであり得る第１のレベルで蛍光シグナルが生じる。この同じサンプルプローブが開放状態にあって適切な周波数の光によって刺激される場合は、発蛍光団と消光因子部分とは、互いに十分に分離しているため、それらの間のエネルギー転移は実質的に妨げられる。その条件下では、消光因子部分は、発蛍光団からの蛍光を消光できない。発蛍光団が適切な波長の光エネルギーによって刺激される場合、第１のレベルよりも高い第２のレベルの蛍光シグナルが生じる。２つの蛍光レベル間の相違は検出でき、測定できる。この様式で発蛍光団と消光因子部分を用いると、分子ビーコンは「開放」配座においては「オン」にあるだけであり、容易に検出可能なシグナルを発することにより、プローブが標的に結合していることを示す。プローブの配座状態は、標識部分間の相互作用を調節することにより、プローブから生じるシグナルを変える。

ＦＲＥＴと非ＦＲＥＴとの区別を意図しない、本発明に関連させて使用し得る供与体／受容体標識対の例としては、フルオレセイン／テトラメチルローダミン、ＩＡＥＤＡＮＳ／フルオレセイン，ＥＤＡＮＳ／ＤＡＢＣＹＬ、クマリン／ＤＡＢＣＹＬ、フルオレセイン／フルオレセイン、ＢＯＤＩＰＹ ＦＬ／ＢＯＤＩＰＹ ＦＬ、フルオレセイン／ＤＡＢＣＹＬ、ルシファーイエロー／ＤＡＢＣＹＬ、ＢＯＤＩＰＹ／ＤＡＢＣＹＬ、エオシン／ＤＡＢＣＹＬ、エリトロシン／ＤＡＢＣＹＬ、テトラメチルローダミン／ＤＡＢＣＹＬ、テキサスレッド／ＤＡＢＣＹＬ、ＣＹ５／ＢＨ１、ＣＹ５／ＢＨ２、ＣＹ３／ＢＨ１、ＣＹ３／ＢＨ２およびフルオレセイン／ＱＳＹ７染料が挙げられる。当業界における通常の技術者は、供与体染料と受容体染料とが異なる場合、エネルギー転移は、受容体の蛍光増感の現れによって、または供与体蛍光の消光によって検出できる。供与体種と受容体種とが同じ場合、エネルギーは、生じる蛍光脱分極によって検出できる。ＤＡＢＣＹＬ染料やＱＳＹ７染料などの非蛍光受容体は、直接的（すなわち、非増感）受容体励起から生じる背景蛍光の潜在的問題を除く点で有利である。供与体−受容体対の１メンバーとして使用できる好ましい発蛍光団部分としては、フルオレセイン染料、ＲＯＸ染料およびＣＹ染料（ＣＹ５など）が挙げられる。供与体−受容体対の他のメンバーとして使用できる極めて好ましい消光因子部分としては、Ｂｉｏｓｅａｒｃｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社（カリフォルニア州ノバト所在）から入手できるＤＡＢＣＹＬ部分およびＢＬＡＣＫ ＨＯＬＥ ＱＵＥＮＣＨＥＲ部分が挙げられる。

合成法ならびに核酸に標識を結合する方法および標識を検出する方法は、当業界に周知である（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、ニューヨーク州コールドスプリングハーバー所在、１９８９年）、１０章；Ｎｅｌｓｏｎら、米国特許第５，６５８，７３７号；Ｗｏｏｄｈｅａｄら、米国特許第５，６５６，２０７号；Ｈｏｇａｎら、米国特許第５，５４７，８４２号；Ａｒｎｏｌｄら、米国特許第５，２８３，１７４号；Ｋｏｕｒｉｌｓｋｙら、米国特許第４，５８１，３３３号）、およびＢｅｃｋｅｒら、欧州特許出願公開第０７４７ ７０６号を参照。
プローブの化学組成
本発明によるプローブは、ポリヌクレオチドまたはポリヌクレオチドアナログを含み、それに共有結合した検出可能標識を任意に担持し得る。プローブのヌクレオシドまたはヌクレオシドアナログは、窒素性ヘテロ環式塩基または塩基アナログを含み、ここでヌクレオシドは、例えば、ホスホジエステル結合によって共に結合してポリヌクレオチドを形成する。したがって、プローブは従来のリボ核酸（ＲＮＡ）および／またはデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）を含み得るが、これらの分子の化学的アナログもまた含み得る。プローブの「骨格」は、１つ以上の糖−ホスホジエステル結合、ペプチド−核酸結合（Ｈｙｌｄｉｇ−Ｎｉｅｌｓｅｎら、国際公開第９５／３２３０５号によって記載されるとおり、時には、「ペプチド核酸」と称される）、ホスホロチオエート結合、メチルホスホネート結合、またはそれらの組合わせなど、当業界に知られている種々の結合からなり得る。プローブの糖部分は、リボースまたはデオキシリボースのいずれか、または、例えば、２’−Ｏ−メチルリボースと２’ハロゲン化物置換基（例えば、２’−Ｆ）などの、公知の置換基を有する類似化合物であり得る。窒素性塩基は、従来の塩基（Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｔ、Ｕ）、それらの公知のアナログ（例えば、イノシンまたは「Ｉ」；Ｔｈｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ ｐ．５−３６、Ａｄａｍｓら、第１１版、１９９２年を参照）、プリンまたはピリミジン塩基の公知の誘導体（例えば、Ｎ^４−メチルデオキシガウノシン、デアザ−またはアザ−プリン類、およびデアザ−またはアザ−ピリミジン類、５位または６位に置換基を有するピリミジン塩基、２位、６位または８位に置換基の変更または交替を有するプリン塩基、２−アミノ−６−メチルアミノプリン、Ｏ^６−メチルグアニン、４−チオ−ピリミジン類、４−アミノ−ピリミジン類、４−ジメチルヒドラジンピリミジン類およびＯ^４−アルキルピリミジン類（Ｃｏｏｋ、国際公開第９３／１３１２１号を参照）ならびに骨格が、ポリマーの１つ以上の残基に関して窒素性塩基を含まない「非塩基性」残基（Ａｒｎｏｌｄら、米国特許第５，５８５，４８１号を参照）であり得る。プローブは、ＲＮＡおよびＤＮＡに見られる従来の糖、塩基および結合のみを含み得るか、または従来の構成要素と置換基の双方（例えば、メトキシ骨格を介して結合した従来の塩基、または従来塩基と１つ以上の塩基アナログを含む核酸）を含み得る。

種々の長さと塩基組成のオリゴヌクレオチドプローブが、ＷＮＶ核酸の検出に使用し得るが、本発明における好ましいプローブは、１００ヌクレオチドまでの長さ、より好ましくは６０ヌクレオチドまでの長さを有する。本発明のオリゴヌクレオチドにとって好ましい長さは、１０塩基から１００塩基の長さ、より好ましくは１５塩基と５０塩基との間の長さ、さらにより好ましくは１５塩基と３０塩基との間の長さの範囲にある。しかしながら、下記に記載された特異的なプローブ配列もまた、核酸クローニングベクターまたは転写体または他のより長い核酸において提供でき、やはり、ＷＮＶ核酸の検出に使用することができる。
増幅プライマーの選択およびＷＮＶに特異的な検出プローブ
増幅プライマーおよび所望の特徴を有するプローブをデザインするための有用な指針を本明細書に記載している。ＷＮＶ核酸を増幅し、探査するための最適部位は、各々が約１５塩基長よりも長く連続配列が約２００塩基以内である２つ、好ましくは３つの保存領域を含む。１組のプライマー類またはプロモーター−プライマー類で見られる増幅の程度は、オリゴヌクレオチドがそれらの相補的配列にハイブリダイゼーションする能力および酵素的に延長されるそれらの能力などの幾つかの要因に依存する。ハイブリダイゼーション反応の程度および特異性は、多くの要因に影響されるため、それらの要因の操作が、特定のオリゴヌクレオチドが、その標的に完全に相補的であっても、なくてもその正確な感度および特異性を決定することになる。アッセイ条件変化による効果は、当業者に公知であり、Ｈｏｇａｎら、米国特許第５，８４０，４８８号によって記載され、その開示は、参照として本明細書に組み込まれている。

標的核酸配列の長さ、したがって、プライマー配列またはプローブ配列の長さは重要となり得る。幾つかの場合では、所望のハイブリダイゼーション特性を有するプライマー類またはプローブ類を生じる特定の標的領域からの位置や長さの異なる幾つかの配列があり得る。核酸が、ハイブリダイゼーションする上で完全に相補的とは限らない可能性はあるが、完全に相同な塩基配列の最長の伸長が通常、主にハイブリッドの安定性を決定することになる。

増幅プライマーおよびプローブは、オリゴヌクレオチド：非標的核酸（すなわち、標的核酸と類似の配列を有する核酸）ハイブリッドの安定性を最小化するように配置される必要がある。増幅プライマーおよび検出プローブは、標的配列と非標的配列との間を識別できることが好ましい。プライマーおよびプローブのデザインにおいては、これらのＴＭ値の差を、できる限り大きくする必要がある（例えば、少なくとも２℃、好ましくは少なくとも５℃）。

非特異的伸長（プライマー−二量体または非標的複製）の程度もまた、増幅効率に影響し得る。このため、プライマーは、低い自己相補性または交差相補性を、特に配列の３’末端において有するように選択される。擬似プライマー伸長を減少させるために、長いホモポリマー域とＧＣ高含量は避ける。デザインのこの点で、商品として入手できるコンピュータソフトウェアが助けとなり得る。入手できるコンピュータプログラムとしては、ＭａｃＤＮＡＳＩＳ（商標）２．０（Ｈｉｔａｃｈｉ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ａｍｅｒｉｃａｎ社）およびＯＬＩＧＯバージョン６．６（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｉｎｓｉｇｈｔｓ；コロラド州カスケード所在）が挙げられる。

当業界における通常の技術者は、ハイブリダイゼーションが、水素結合した二本鎖を形成するため、相補的核酸の２本の一本鎖の会合を含むことを理解するであろう。２本の鎖のうちの１本が全体的にまたは部分的に、あるハイブリッドに含まれる場合、その鎖は、新しいハイブリッド形成に、より少ない寄与しかできないであろうことが暗示される。関心対象配列の相当大きな部分が一本鎖であるようにプライマーとプローブをデザインすることにより、ハイブリダイゼーションの速度と程度を大きく増加させ得る。標的が組み込まれたゲノム配列である場合は、二本鎖形態が当然生じることになる（ポリメラーゼ連鎖反応の産物での場合のように）。これらの二本鎖標的は当然プローブとのハイブリダイゼーションを阻害し、ハイブリダイゼーション工程前に変性が必要である。

ポリヌクレオチドがその標的にハイブリダイゼーションする率は、標的結合領域における標的二次構造の熱的安定性の尺度である。ハイブリダイゼーション率の標準測定値は、１リットル当たりのヌクレオチドモル数に秒を掛けて測定されるＣ_ｏｔ_１／２である。したがって、これは、プローブ濃度に、その濃度で最大のハイブリダイゼーションの５０％が生じる時間を掛けたものである。この値は、一定時間の間に一定量の標的に対して、種々の量のポリヌクレオチドをハイブリダイゼーションすることによって決定される。Ｃ_ｏｔ_１／２は、当業界における通常の技術者に周知の標準的操作によって、グラフを用いて見出される。
好ましい増幅プライマー
増幅反応を実施する上で有用なプライマーは、標的結合に寄与せず、また、増幅操作または検出操作に実質的に影響しないと考えられる無関係な配列の存在に適合させるために、種々の長さを有し得る。例えば、本発明による増幅反応の実施に有用なプロモーター−プライマーは、ＷＮＶ標的核酸にハイブリダイゼーションする少なくとも最少の配列およびその最少配列の上流に位置するプロモーター配列を有する。しかし、標的結合配列とプロモーター配列との間の配列挿入により、増幅反応におけるプライマーの有用性を損なうことなく、プライマーの長さが変化し得る。さらに、増幅プライマーと検出プローブの長さは、これらのオリゴヌクレオチドの配列が、所望の相補的配列をハイブリダイゼーションする最少必須条件を満たす限り、選択の問題となる。

表１および表２は、５’非コード領域において、ＷＮＶ核酸を増幅するためのプライマーとして使用されたオリゴヌクレオチド配列の特定例を示す。表１は、核酸の一本鎖上でＷＮＶ配列に相補的であったプライマーの配列を示す。表１に示された例示的プライマーは全て、配列番号１の配列内に含まれた標的相補的配列を有する。好ましいプライマーの異なるサブセットは、配列番号２または配列番号３の配列内に含まれた標的相補的配列を有する。増幅操作に使用されるプライマーのうちの１つが、これらのドメインのうちの１つに入る標的相補的配列を有することが好ましい。表２は、本発明の開発中に使用されたＷＮＶ標的相補的プライマーおよびプロモーター−プライマーに関する完全配列の双方の配列を示す。表２に示された例示的プライマーは全て、配列番号１６の配列内に含まれた標的相補的配列を有し、これは現在、増幅操作に使用されるプライマーの１つにとって好ましいものである。特に、表１および表２におけるオリゴヌクレオチド配列は、ＷＮＶ核酸の反対鎖に相補的である。

ＷＮＶの５’非コード領域の増幅に有用なプライマーは、ヌクレオチドアナログを含み得る。例えば、配列番号４のプライマーと配列番号５のプライマーとは、１１位においてアデニン残基がヒポキサンチン塩基アナログに置換されていることで、互いに異なっている。同様に、配列番号６のプライマーと配列番号７のプライマーもこの塩基アナログの存在により異なっており、配列番号２１と配列番号２２によって同定された反対鎖プライマーも同様である。これは、プライマー内のヌクレオ塩基が修飾塩基またはヌクレオ塩基アナログにより、どのように置換できるかを示している。

表２は、ウィルスゲノムの５’非コード領域におけるＷＮＶ核酸配列の増幅に使用されたＷＮＶ標的相補的オリゴヌクレオチド配列および対応するプロモーター−プライマー配列を示す。上記で示されたように、プロモーター−プライマーは全て、それらの３’末端にＷＮＶ標的配列に相補的な配列およびそれらの５’末端にＴ７プロモーター配列を含んだ。表２の配列番号２９〜４０によって同定されたプライマーは、各々、配列番号１７〜２８として同定されたＷＮＶ相補的プライマーに対応するプロモーター−プライマーである。

５’非コード領域におけるＷＮＶ配列の増幅に好ましいプライマーの組は、ＷＮＶ標的配列にハイブリダイゼーションする第１のプライマー（表２に掲載されたプライマーのうちの１つなど）および第１プライマーの伸長産物の配列に相補的な第２プライマー（表１に掲載されたプライマーのうちの１つなど）を含む。極めて好ましい実施形態において、第１プライマーは、その５’末端にＴ７プロモーター配列を含むプロモーター−プライマーである。

表３と表４は、ウィルスゲノムの３０００領域におけるＷＮＶ核酸を増幅するためのプライマーとして使用されたオリゴヌクレオチド配列の特定例を示す。表３は、核酸の一本鎖上でＷＮＶ配列に相補的であったプライマーの配列を示す。表３に示された例示的プライマーは全て、配列番号４１の配列内に含まれた標的相補的配列を有し、これは現在、増幅操作に使用されるプライマーの１つにとって好ましいものである。表４は、本発明の開発中に使用されたＷＮＶ標的相補的プライマーおよびプロモーター−プライマーに関する完全配列の双方の配列を示す。表４に示された例示的プライマーは全て、配列番号５２の配列内に含まれた標的相補的配列を有し、これは現在、増幅操作に使用されるプライマーの１つにとって好ましいものである。特に、表３および表４におけるオリゴヌクレオチド配列は、ＷＮＶ核酸の反対鎖に相補的である。

ＷＮＶの３０００領域の増幅に有用なプライマーは、ヌクレオチドアナログを含み得る。例えば、配列番号４２、配列番号４７および配列番号４８のプライマーは、プライマー配列内の異なる個々の位置で、既存の塩基がヒポキサンチン塩基アナログに置換されていることで互いに異なっている。同様に配列番号４３のプライマーと配列番号４９のプライマーも、この塩基アナログの存在によって異なっており、配列番号４５と配列番号５０と配列番号５１によって同定されたプライマーも同様である。これはプライマー内のヌクレオ塩基が、修飾塩基またはヌクレオ塩基アナログによって置換し得ることを例示している。

表４は、ウィルスゲノムの３０００領域におけるＷＮＶ核酸配列の増幅に使用されたＷＮＶ標的相補的オリゴヌクレオチド配列および対応するプロモーター−プライマー配列を示す。上記で示されたように、プロモーター−プライマーは全て、それらの３’末端にＷＮＶ標的配列に相補的な配列およびそれらの５’末端にＴ７プロモーター配列を含んだ。

ウィルスゲノムの３０００領域におけるＷＮＶ配列の増幅に好ましいプライマーの組は、ＷＮＶ標的配列にハイブリダイゼーションする第１のプライマー（表４に掲載されたプライマーのうちの１つなど）および第１プライマーの伸長産物の配列に相補的な第２プライマー（表３に掲載されたプライマーのうちの１つなど）を含む。極めて好ましい実施形態において、第１プライマーは、その５’末端にＴ７プロモーター配列を含むプロモーター−プライマーである。

表５と表６は、ウィルスゲノムの３’非コード領域におけるＷＮＶ核酸を増幅するためのプライマーとして使用されたオリゴマー配列の特定例を示す。表５は、核酸の一本鎖上でＷＮＶ配列に相補的であったプライマーの配列を示す。表５に示された例示的プライマーは全て、配列番号５９の配列内に含まれた標的相補的配列を有し、これは現在、増幅操作に使用されるプライマーの１つにとって好ましいものである。表６は、本発明の開発中に使用されたＷＮＶ標的相補的プライマーおよびプロモーター−プライマーに関する完全配列の双方の配列を示す。表６に示された例示的プライマーは全て、配列番号７２の配列内に含まれた標的相補的配列を有する。好ましいプライマーの異なるサブセットは、配列番号７３または配列番号７４の配列内に含まれた標的相補的配列を有する。増幅操作に使用されるプライマーのうちの１つが、これらのドメインのうちの１つに入る標的相補的配列を有することが好ましい。特に、表５および表６におけるオリゴヌクレオチド配列は、ＷＮＶ核酸の反対鎖に相補的である。

ＷＮＶの３’非コード領域の増幅に有用なプライマーは、ヌクレオチドアナログを含み得る。例えば、配列番号６０のプライマーと配列番号６１のプライマーとは、１位においてチミン塩基がヒポキサンチン塩基アナログに置換されていることで、互いに異なっている。同様に、配列番号６４のプライマーと配列番号６５のプライマーもこの塩基アナログの存在により異なっており、この場合は、シトシンが置換を受けている。同様に、配列番号８３と配列番号８２のＷＮＶ相補的プライマー配列は、対応するプロモーター−プライマー配列と共に、やはりヒポキサンチン塩基アナログ置換基を含む。これはプライマー内のヌクレオ塩基が、修飾塩基またはヌクレオ塩基アナログによって置換し得ることをさらに例示している。

表６は、ウィルスゲノムの３’非コード領域におけるＷＮＶ核酸配列の増幅に使用されたＷＮＶ標的相補的オリゴヌクレオチド配列および対応するプロモーター−プライマー配列を示す。上記で示されたように、プロモーター−プライマーは全て、それらの３’末端にＷＮＶ標的配列に相補的な配列およびそれらの５’末端にＴ７プロモーター配列を含んだ。

３’非コード領域におけるＷＮＶ配列の増幅に好ましいプライマーの組は、ＷＮＶ標的配列にハイブリダイゼーションする第１のプライマー（表６に掲載されたプライマーのうちの１つなど）および第１プライマーの伸長産物の配列に相補的な第２プライマー（表５に掲載されたプライマーのうちの１つなど）を含む。極めて好ましい実施形態において、第１プライマーは、その５’末端にＴ７プロモーター配列を含むプロモーター−プライマーである。表６における配列番号８４〜９２によって同定されるプライマーは、それぞれ配列番号７５〜８３として同定されるＷＮＶ相補的プライマーに対応するプロモーター−プライマーである。
好ましい検出プローブ
本発明の他の態様は、ＷＮＶ核酸を検出するためのハイブリダイゼーションプローブとして使用できるオリゴヌクレオチドに関する。ＷＮＶの核酸に存在する標的核酸配列を増幅する方法は、単位複製配列をを検出するためのさらなる任意の工程を含み得る。ＷＮＶ核酸を検出するためのこの操作は、緊縮ハイブリダイゼーション条件下で、標的核酸配列またはその相補体に優先的にハイブリダイゼーションし、それによって、検出用に安定なプローブ：標的二本鎖を形成するハイブリダイゼーションアッセイプローブに試験サンプルを接触させるための工程を含む。次に、試験サンプル中のＷＮＶ核酸の有無を表示するものとして、試験サンプル中に、ハイブリッドが存在しているかどうかを決定する工程がある。これは、プローブ：標的二本鎖の検出を含み、好ましくは均一アッセイシステムを含む。

ＷＮＶ核酸配列の検出に有用なハイブリダイゼーションアッセイプローブは、ＷＮＶ標的核酸配列に実質的に相補的な塩基の配列を含む。したがって、本発明のプローブは、ＷＮＶ標的核酸配列の１本の鎖またはその相補体にハイブリダイゼーションする。これらのプローブは、標的核酸領域の外側にＷＮＶ核酸に相補的であってもなくてもよい追加の塩基を任意に有し得る。

好ましいプローブは、塩濃度が０．６〜０．９Ｍの範囲の場合に約６０℃に相当する緊縮条件下で、標的核酸に十分相同性であってハイブリダイゼーションする。好ましい塩としては、塩化リチウムが挙げられるが。塩化ナトリウムやクエン酸ナトリウムなどの他の塩もハイブリダイゼーション溶液中に使用できる。高緊縮ハイブリダイゼーション条件の例は、０．４８Ｍリン酸ナトリウム、０．１％ドデシル硫酸ナトリウムおよび各々１ｍＭ ＥＤＴＡとＥＧＴＡによるか、もしくは０．６Ｍ ＬｉＣｌ、１％ラウリル硫酸ナトリウム、６０ｍＭコハク酸リチウムおよび各々１０ｍＭのＥＤＴＡとＥＧＴＡによるか、のいずれかで提供される。

本発明によるプローブは、ＷＭＶゲノムの３つの異なるドメインのうちの１つに相補的な、またはそれに対応する配列を有する。下記で繰り返されるとおり、これらのドメインは：（１）５’非コード領域／カプシド領域、（２）３０００領域、および（３）３’非コード領域であった。ＷＮＶ核酸配列の検出に好ましい一定のプローブは、標的相補的塩基配列と共に、１０〜１００ヌクレオチドの範囲の長さにある、検出すべき核酸に相補的でない任意の塩基配列を含むプローブ配列を有する。ＷＮＶ核酸配列の検出に好ましい一定の特異的プローブは、１２〜８７ヌクレオチド、１０〜２０ヌクレオチド、１３〜３７ヌクレオチド、または１７〜２３ヌクレオチドの長さの範囲の標的相補的配列を有する。もちろん、これらの標的相補的配列は、線状配列であり得るか、または分子ビーコンの構造中に含まれ得るか、または検出しようとするＷＮＶ標的配列に相補的でない１つ以上の任意の核酸配列を有する他の構造体中に含まれ得る。上記に示したように、プローブは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＤＮＡとＲＮＡの組合わせ、核酸アナログから作製し得るか、または１つ以上の修飾ヌクレオシド（例えば、リボフラノシル部分に対して２’−Ｏ−メチル置換を有するリボヌクレオシド）を含有し得る。

簡単に述べると、本発明に関連して関心対象の標的核酸の検出に好ましいプローブは、幾つかの一定のプローブドメインの１つ以上の中に含まれる配列、またはそれの相補体を含み、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、１０％までの誤対合塩基、さらには２０％までの誤対合塩基を考慮に入れたものである。例えば、５’非コード領域において、ＷＮＶ核酸などのフラビウィルス核酸の検出に好ましいハイブリダイゼーションアッセイプローブは、配列番号９３の配列中に、または配列番号９４または配列番号９５によって規定されたサブドメインのうちの１つの中に含まれる標的相補的塩基配列を含み得る。３０００領域において、ＷＮＶ核酸などのフラビウィルス核酸の検出に好ましいハイブリダイゼーションアッセイプローブは、配列番号９９の配列内に含まれる標的相補的塩基配列を含む。３’非コード領域において、ＷＮＶ核酸などのフラビウィルス核酸の検出に有用な好ましいハイブリダイゼーションアッセイプローブは、配列番号１０１の配列中に、または配列番号１０２または配列番号１０３によって規定されたサブドメインの中に含まれる標的相補的塩基配列を含む。検出すべき核酸配列に相補的でない任意の配列が、プローブの標的相補的配列に結合し得る。

プローブの標的相補的塩基配列を含有する規定された標的領域から有用なプローブ配列を識別できる塩基差異の許容性について特に言及すると、配列番号１１４の配列（Ｔによって占められる）を有するプローブの１２位は、配列番号１０１、配列番号１０２および配列番号１０３によって規定されたドメイン配列（これら全ては対応する位置にＣを有する）における対応する位置と異なることに注意する必要がある。

本発明による一定の好ましいプローブは、検出可能な標識を含む。一実施形態において、この標識は、非ヌクレオチドリンカーによってプローブに結合したアクリジニウムエステルである。例えば、検出プローブは、実際には、米国特許第５，５８５，４８１号；および米国特許第５，６３９，６０４号、特に１０欄６行目から１１欄３行目まで、ならびに実施例８において記載されているリンカーによって付加される化学発光アクリジニウムエステル化合物によって標識化できる。これらの特許文献に含まれた開示は、参照として本明細書に組み込まれている。

表７は、３つのＷＮＶ標的領域の各々から、ＷＮＶ単位複製配列を検出するために用いられる幾つかのハイブリダイゼーションプローブの塩基配列を示す。ＷＮＶ核酸配列を検出するための代替プローブが、ＷＮＶの反対センス鎖にハイブリダイゼーションできるため、本発明は、この表に示された配列に相補的なオリゴヌクレオチドも含む。

上記に示したように、本発明のハイブリダイゼーションプローブのヌクレオ塩基配列にとっての骨格として、任意の数の異なる骨格構造が使用できる。極めて好ましい一定の実施において、ＷＮＶ単位複製配列の検出に用いられるプローブ配列は、メトキシ骨格、または核酸骨格における少なくとも１つのメトキシ結合を含む。
捕捉オリゴヌクレオチドの選択と利用
好ましい捕捉オリゴヌクレオチドは、固体支持体上に固定するための標的として働く第２の配列（すなわち、「尾部」配列）に共有結合している、ＷＮＶ配列に相補的な第１の配列（すなわち、「ＷＮＶ標的配列」）を含む。捕捉オリゴヌクレオチドの塩基配列に結合する任意の骨格が使用できる。一定の好ましい実施形態において、捕捉オリゴヌクレオチドは、骨格内に少なくとも１つのメトキシ結合を含む。捕捉オリゴヌクレオチドの好ましくは３’末端である尾部配列は、相補的塩基配列にハイブリダイゼーションして、ハイブリダイゼーションした標的ＷＮＶ核酸を、生物学的サンプルにおける他の成分よりも優先的に捕捉するための手段を提供するために使用される。

尾部配列には、相補的塩基配列にハイブリダイゼーションする任意の塩基配列を使用できるが、ハイブリダイゼーションする配列は、約５〜５０ヌクレオチド残基の範囲であることが好ましい。特に好ましい尾部配列は、実質的にホモポリマー性であり、約１０から約４０のヌクレオチド残基、より好ましくは、約１４から約３０残基を含む。本発明による捕捉オリゴヌクレオチドは、ＷＮＶ標的ポリヌクレオチドに特異的に結合する第１の配列および固体支持体に固定されたオリゴ（ｄＴ）伸長部に特異的に結合する第２の配列を含み得る。

図１に例示された構成要素を用い、生物学的サンプル中のＷＮＶ配列を検出するためのあるアッセイは、捕捉オリゴヌクレオチドを用いて、捕捉された標的領域を増幅する工程、および先ず、増幅された核酸に含まれる配列に、標識プローブをハイブリダイゼーションし、次いで、結合した標識プローブから生じるシグナルを検出する工程を含む。

捕捉工程では、捕捉オリゴヌクレオチドを用いることが好ましいが、この場合、ハイブリダイゼーション条件下で、捕捉オリゴヌクレオチドの一部は、標的核酸内の配列に特異的にハイブリダイゼーションし、尾部は、サンプルの他の成分からの標的領域の分離を可能にするリガンドなどの結合対（例えば、ビオチン−アビジン結合対）の一構成要素として働く。捕捉オリゴヌクレオチドの尾部は、固体支持体粒子に固定された相補的配列にハイブリダイゼーションする配列であることが好ましい。先ず、捕捉オリゴヌクレオチドと標的核酸とは、溶液相ハイブリダイゼーション動力学を利用するために、溶液中にあることが好ましい。ハイブリダイゼーションによって、捕捉オリゴヌクレオチド：標的核酸の二本鎖が生じ、これは、相補的固定化配列に対する捕捉オリゴヌクレオチド尾部のハイブリダイゼーションにより、固定プローブを結合させることができる。したがって、ハイブリダイゼーション条件下で標的核酸、捕捉オリゴヌクレオチドおよび固定プローブを含む二本鎖が形成する。好ましくは、固定プローブは、反復的配列であり、より好ましくは、尾部配列に相補的であり、固体支持体に結合した、ホモポリマー性配列（例えば、ポリ−Ａ、ポリ−Ｔ、ポリ−Ｃまたはポリ−Ｇ）である。例えば、捕捉オリゴヌクレオチドの尾部がポリ−Ａ配列を含むならば、固定プローブはポリ−Ｔ配列を含むことになるが、相補的配列の任意の組合せを使用し得る。捕捉オリゴヌクレオチドは、標的にハイブリダイゼーションする塩基配列と、固定プローブにハイブリダイゼーションする尾部塩基配列との間に位置する１つ以上の塩基である「スペーサー」残基もまた含有し得る。標的核酸：捕捉オリゴヌクレオチド複合体の結合には、任意の固体支持体を使用し得る。有用な支持体は、溶液中で遊離しているマトリクスまたは粒子のいずれか（例えば、ニトロセルロース、ナイロン、ガラス、ポリアクリレート、混合ポリマー、ポリスチレン、シランポリプロピレンおよび好ましくは磁気的誘引物質）であり得る。固定プローブを固体支持体に結合させる方法は周知である。前記支持体は、標準的方法（例えば、遠心分離、磁気粒子の磁気的誘引など）を用いて、溶液から回収できる粒子であることが好ましい。好ましい支持体は、常磁性単分散粒子（すなわち、±約５％の均一サイズ）である。

効果的に、標的核酸：捕捉オリゴヌクレオチド：固定プローブの複合体を回収することにより、標的核酸と凝縮し（生物学的サンプル中のその濃度と相対的に）、生物学的サンプル中に存在し得る増幅阻害物質から標的核酸を精製する。捕捉された標的核酸は１回以上洗浄でき、さらに例えば、標的核酸：捕捉オリゴヌクレオチド：固定プローブの複合体を有する前記粒子を、洗浄溶液中に再懸濁してから、上記のとおり、洗浄溶液から結合複合体を有する前記粒子を回収することにより、前記標的を精製する。好ましい実施形態において、捕捉オリゴヌクレオチドを標的核酸に連続的にハイブリダイゼーションし、次いで捕捉オリゴヌクレオチドの尾部を固定相補的配列（例えば、国際公開第９８／５０５８３号に記載されたもの）にハイブリダイゼーションさせるハイブリダイゼーション条件に調整することによって、捕捉工程を実施する。捕捉工程および任意の清浄工程を完了した後に、標的核酸を増幅することができる。取り扱い工程数を制限するために、標的核酸は、任意に捕捉オリゴヌクレオチドから遊離せずに増幅できる。

有用な捕捉オリゴヌクレオチドは、誤対合配列が、増幅すべき配列を含有するＷＮＶ核酸にハイブリダイゼーションする限り、上記に示した配列に対する誤対合を含んでもよい。本明細書に記載された各捕捉オリゴヌクレオチドは、その３’末端でポリ−（ｄＡ）尾部に結合した、表８に示されたＷＮＶ相補的配列とポリ−（ｄＡ）尾部との間に挿入された任意の３つのチミジンヌクレオチドも含んだ。３つのチミジンヌクレオチドの存在は、捕捉操作の成功にとって、本質的ではないと考えられる。３つのチミジンヌクレオチドとポリ−（ｄＡ）尾部とは、ＤＮＡ前駆体を用いて合成されたが、オリゴヌクレオチドの捕捉オリゴヌクレオチドのＷＮＶ相補的部分は、２’−ＯＭｅヌクレオチドアナログを用いて合成された。

ＷＮＶポリヌクレオチド配列の増幅と検出にとって好ましい方法
本発明の好ましい方法は、下記に示される実施例によって記載され、例示されている。図１は、ＷＮＶゲノムの標的領域（太い横線によって示されている）に使用され得る１つの系を概略的に示している。この系は、４種のオリゴヌクレオチド（短い実線によって示されている）を含む。すなわち、生物学的サンプル中に存在する標的領域内のＷＮＶ配列に特異的にハイブリダイゼーションする配列、および標的領域を捕捉するために、固体支持体上に固定された相補的配列にハイブリダイゼーションする尾部（「Ｔ」）を含む１種の捕捉オリゴヌクレオチド；標的領域におけるＷＮＶ配列に特異的にハイブリダイゼーションする配列および二本鎖になった場合、Ｔ７ＴＮＡポリメラーゼに対する機能的プロモーターとして働くＴ７プロモーター配列（「Ｐ」）を含む１種のＴ７プロモーター−プライマー；Ｔ７プロモーター−プライマーを用いて、標的領域配列から作製された第１鎖ｃＤＮＡに特異的にハイブリダイゼーションする配列を含む１種の非Ｔ７プライマー；および前記２種のプライマーを用いて増幅される標的領域の一部に、特異的にハイブリダイゼーションする配列を含む１種の標識プローブである。

上記に示されたように、２種のプライマーを用いて捕捉された標的領域の増幅は、通常の当業者に周知されている公知の種々の核酸増幅反応のいずれかによって達成できる。好ましい実施形態において、ＴＭＡなどの転写関連増幅が採用される。このような実施形態において、標的核酸の単一コピーから多くの核酸鎖が生じ、したがって、増幅された配列に結合している検出プローブによって、標的の検出が可能となる。１種の核酸テンプレートから複数のＲＮＡ転写体を産出するために、転写関連増幅では、溶液中適切な塩類および緩衝剤と共に、２種のプライマー（１種は、ＲＮＡポリメラーゼに対する、図１で「Ｐ」と表示されているプロモーター配列を含むため、プロモーター−プライマーと称される）、２種の酵素（逆転写酵素およびＲＮＡポリメラーゼ）および基質（三リン酸デオキシリボヌクレオシド、三リン酸リボヌクレオシド）を用いることが好ましい。

図１について述べると、転写媒介増幅時、捕捉された標的核酸は、Ｔ７プロモーター−プライマーとして示される第１プライマーにハイブリダイゼーションする。標的ＤＮＡをテンプレートとして用い、逆転写酵素を用いて、Ｔ７プロモーター−プライマーから相補的ＤＮＡ鎖を合成する。非Ｔ７プライマーとして示される第２プライマーは、新たに合成されたＤＮＡ鎖にハイブリダイゼーションし、逆転写酵素の作用によって伸長してＤＮＡ二本鎖を形成し、それによって二本鎖Ｔ７プロモーター領域を形成する。次いでＴ７ ＲＮＡポリメラーゼが、この機能的Ｔ７プロモーターを用いることによって、複数のＲＮＡ転写体を生成させる。ｃＤＮＡ合成工程後、ＴＭＡの自己触媒機構は、ＲＮＡ転写体をテンプレートとして使用し、反復的ハイブリダイゼーション工程と重合化工程を用いてさらに転写体を生成させ、それによって標的領域に特異的な核酸配列を増幅する。

検出工程では、上記の増幅ＲＮＡ転写体または単位複製配列に特異的に結合する、少なくとも１種の検出プローブを用いる。この検出プローブは、均一検出システムを用いて検出できる標識で標識化されることが好ましい。例えば、標識プローブは、上記のとおり、化学発光シグナルが生じ、検出し得るアクリジニウムエステル化合物によって標識化できる。あるいは、標識プローブは、発蛍光団部分または発蛍光団部分と消光因子部分を含み得る。分子ビーコンは、均一検出システムに使用し得るそのような標識プローブの一実施形態である。
ＷＮＶ核酸検出用キット
本発明は、ウィルス核酸テンプレートを用いて、ポリヌクレオチド増幅反応を実施するためのキットも含む。一定の好ましいキットは、標的相補的塩基配列を含み、検出すべき標的を増幅するためのプライマーまたは他の副次的オリゴマーを任意に含む。他の好ましいキットは、インビトロ増幅反応において、標的核酸を増幅するために使用し得る１対のオリゴヌクレオチドプライマーを含む。典型的キットは、増幅されるＷＮＶ核酸配列の反対鎖に相補的な第１および第２増幅オリゴヌクレオチドを含む。前記キットは、１種以上のオリゴヌクレオチド検出プローブをさらに含み得る。本発明によるさらに他のキットは、増幅前に、ＷＮＶテンプレート核酸を他の種から精製するための捕捉オリゴヌクレオチドをさらに含む。

本発明の一般的原理は、以下の非限定的実施例を参照することにより、より十分に理解できるであろう。

実施例１は、後にＷＮＶ核酸検出用アッセイに使用されたハイブリダイゼーションプローブの幾つかを同定した操作を記載している。より具体的には、以下の操作により、３つの異なるＷＮＶドメインのうちの１つに対応する核酸にハイブリダイゼーションすることのできたプローブを確認した。これらのドメインは、（１）５’非コード領域／カプシド領域（５’ＮＣ／Ｃ）、（２）３０００領域（ＮＳ１／ＮＳ２ａ領域）および３’非コード領域（３’ＮＣ）であった。６種の合成オリゴヌクレオチドが、プローブに結合するための標的として働いた。
実施例１
ＷＮＶ検出用オリゴヌクレオチドプローブ
表９に示された配列を有する合成ＷＮＶ標的オリゴヌクレオチドは、ＲＮＡ構造を模倣するために、２’−ＯＭｅヌクレオチドアナログを用い、標準的な実験室操作によって調製した。これらの合成ＷＮＶ標的をハイブリダイゼーションするためのプローブは、表７に示された配列を有し、やはり２’−ＯＭｅヌクレオチドアナログを用いて調製した。

ハイブリダイゼーション反応は、約２ｘ１０^８ＲＬＵ／ピコモルの比活性を有する約１ｘ１０^６ＲＬＵのＡＥ標識プローブおよび約０．５ピコモルの合成ＷＮＶ標的オリゴヌクレオチドを含んだ。陰性コントロール反応ではＷＮＶ標的オリゴヌクレオチドを除いた。表７に掲載したプローブは各々、米国特許第５，５８５，４８１号および米国特許第５，６３９，６０４号に記載された操作に従って、内部に配置された非ヌクレオチドリンカーによってオリゴヌクレオチド構造に結合されたＡＥ部分により標識化され、これらの特許の開示は、参照として上記明細書に組み込まれている。配列番号９６のプローブ上のリンカーは、５位と６位との間、あるいは９位と１０位との間、あるいは１３位と１４位との間、あるいは１６位と１７位との間に配置した。配列番号９７のプローブ上のリンカーは、９位と１０位との間に配置した。配列番号９８のプローブ上のリンカーは、６位と７位との間、あるいは９位と１０位との間、あるいは１１位と１２位との間に配置した。配列番号１００のプローブ上のリンカーは、６位と７位との間、あるいは９位と１０位との間、あるいは１１位と１２位との間、あるいは１３位と１４位との間に配置した。配列番号１０５のプローブ上のリンカーは、１２位と１３位との間、あるいは１３位と１４位との間に配置した。配列番号１０６のプローブ上のリンカーは、１４位と１５位との間に配置した。配列番号１０７のプローブ上のリンカーは、６位と７位との間、あるいは７位と８位との間に配置した。配列番号１０８のプローブ上のリンカーは、６位と７位との間、あるいは１２位と１３位との間に配置した。配列番号１０９のプローブ上のリンカーは、５位と６位との間、あるいは１１位と１２位との間に配置した。配列番号１１０のプローブ上のリンカーは、１１位と１２位との間に配置した。配列番号１１１のプローブ上のリンカーは、９位と１０位との間、あるいは１０位と１１位との間、あるいは１２位と１３位との間、あるいは１３位と１４位との間に配置した。配列番号１１２のプローブ上のリンカーは、７位と８位との間、あるいは８位と９位との間、あるいは１０位と１１位との間、あるいは１１位と１２位との間に配置した。配列番号１１３のプローブ上のリンカーは、７位と８位との間、あるいは８位と９位との間、あるいは９位と１０位との間に配置した。配列番号１１４のプローブ上のリンカーは、６位と７位との間に配置した。配列番号１１５のプローブ上のリンカーは、１２位と１３位との間、あるいは１３位と１４位との間、あるいは１５位と１６位との間に配置した。配列番号１１６のプローブ上のリンカーは、５位と６位との間、あるいは１０位と１１位との間、あるいは１２位と１３位との間に配置した。これら種々のリンカー位置の全ての使用により、この標識方法の多用性が確認された。プローブハイブリダイゼーションは、約３００ｍＭ ＬｉＣｌおよび約０．７５％（ｗ／ｖ）ラウリル硫酸リチウムを含む５０μｌ容量のコハク酸塩緩衝液中、６２℃で１５分間実施した。ハイブリダイゼーション反応後、６３μｌの０．１５Ｍテトラホウ酸ナトリウム（ｐＨ８．５）および１％ＴＲＩＴＯＮ Ｘ−１００（Ｕｎｉｏｎ Ｃａｒｂｉｄｅ社、コネチカット州ダンベリー所在）を加えた。これらの混合物を、先ず６２℃で１０分間温置して、未ハイブリダイゼーションプローブに結合した化学発光標識を不活化してから、ハイブリダイゼーションシグナルの読取り前に、４℃までしばらく冷却した。各サンプル中のハイブリダイゼーションしたプローブによる化学発光は、１ｍＭ硝酸および０．１％（ｖ／ｖ）過酸化水素の自動注入、続いて１Ｎ水酸化ナトリウム含有溶液の注入用に構成されたＬＵＭＩＳＴＡＲ ＧＡＬＡＸＹ発光ミクロプレート読取り機（ＢＭＧ Ｌａｂｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社；ノースカロライナ州ダーハム所在）を用いてアッセイした。この化学発光に関する結果を相対光単位（ＲＬＵ）において測定した。この操作による代表的結果は、３つの異なる標的領域各々に関して、表１０にまとめている。この表に示された数値は、１つまたは２つの試験（各試験が４回の反復試験を含んだ）から算出した平均シグナル／ノイズ比（Ｓ／Ｎ平均）を示す。

表１０に示された結果は、前記操作において試験された各プローブが、ＷＮＶ標的配列との相互作用の後に、強いハイブリダイゼーションシグナルを与えることを示した。この表に示された数値は、ヌクレオ塩基の５位と６位との間に標識を結合させた配列番号９６および配列番号１０９のプローブ、ヌクレオ塩基の６位と７位との間に標識を結合させた配列番号１０４および配列番号１０８のプローブ、ヌクレオ塩基の９位と１０位との間に標識を結合させた配列番号９７および配列番号１００のプローブ、ヌクレオ塩基の１０位と１１位との間に標識を結合させた配列番号１１１および配列番号１１６のプローブ、ヌクレオ塩基の１１位と１２位との間に標識を結合させた配列番号９８および配列番号１１０のプローブ、ヌクレオ塩基の１２位と１３位との間に標識を結合させた配列番号１０５のプローブ、およびヌクレオ塩基の１４位と１５位との間に標識を結合させた配列番号１０６のプローブに関するものである。しかしながら、前記操作に使用されたプローブは全て、合成標的の少なくとも１つにハイブリダイゼーションされた場合、１０よりもかなり大きなＳ／Ｎ値を与えた。実際、本明細書に記載された任意のプローブに結合した任意の検出可能標識の位置を変化させることができ、やはり本発明の範囲内に入る。具体的に上記のいずれか１箇所に位置した標識を有する各プローブが、本発明のプローブの好ましい実施形態となる。

表１０に数値結果は示されていないが、その他のプローブもまた試験され、非常に良好な結果で合成ＷＮＶ標的核酸にハイブリダイゼーションすることが示された。より具体的には、配列番号１１２の配列を有するプローブと、ＣＵＵＵＧＵＵＣＡＣＣＣＡＧＵＣＣＵＣＣＵＧ（配列番号１９４）の配列を有する合成ＷＮＶ標的とのハイブリダイゼーションにより、約１１００の高さのシグナル／ノイズ比が得られた。配列番号１１３の配列を有するプローブと、同じ合成標的配列とのハイブリダイゼーションにより、約１０５０の高さのシグナル／ノイズ比が得られた。１１５の配列を有するプローブと、ＡＣＡＵＧＧＡＵＣＡＣＵＵＣＧＣＧＧＣＵＵＵＧ（配列番号１９６）の配列を有する合成ＷＮＶ標的とのハイブリダイゼーションにより、約１４８０の高さのシグナル／ノイズ比が得られた。７位と８位にリンカーを配置させた配列番号１０７の配列を有するプローブと、ＣＣＡＧＵＣＣＵＣＣＵＧＧＧＧＵＵＧＡＧＵＣＧＣＡＧＧＧＣＡ（配列番号１９３）の配列を有する合成ＷＮＶ標的とをハイブリダイゼーションさせると、約１０００のシグナル／ノイズ比が得られた。したがって、前記各プローブ配列が、本発明の好ましい実施形態を表し、本明細書に記載された伸長プローブドメインの少なくとも１つに入る。

さらに他のハイブリダイゼーションプローブを同じ操作によって試験すると、良好な結果が得られることが判明した。ここでもやはり、全てのプローブと標的は、２’−ＯＭｅヌクレオチドアナログを用いて合成された。プローブは、上記の非ヌクレオチドリンカーによってプローブに結合させた化学発光アクリジニウムエステル標識によって標識化された。より具体的には、１１位と１２位との間にリンカーを配置させたＣＣＣＴＧＣＧＡＣＴＣＡＡＣＣＣＣ（配列番号１８９）の配列を有するプローブを、配列番号１９３の配列を有する合成ＷＮＶ標的にハイブリダイゼーションさせると、約１８０のシグナル／ノイズ比が得られた。１３位と１４位にリンカーを配置させたＣＣＴＧＣＧＡＣＴＣＡＡＣＣＣＣ（配列番号１９０）の配列を有するプローブを、配列番号１９３の配列を有する合成ＷＮＶ標的にハイブリダイゼーションさせると、約１６０のシグナル／ノイズ比が得られた。１１位と１２位にリンカーを配置させたＣＣＴＧＣＧＡＣＴＣＡＡＣＣＣ（配列番号１９１）の配列を有するプローブを、配列番号１９３の配列を有する合成ＷＮＶ標的にハイブリダイゼーションさせると、約１９０のシグナル／ノイズ比が得られた。７位と８位との間または８位と９位との間のいずれかに標識を配置させたＡＧＧＡＧＧＡＣＴＧＧＧＴＧＡＡＣＡＡ（配列番号１９２）の配列を有するプローブを、ＧＡＵＣＡＣＵＵＣＧＣＡＧＣＵＵＵＧＵＵＣＡＣＣＣＡＧＵＣＣＵＣＣＵＧＧ（配列番号１９５）の配列を有する合成ＷＮＶ標的にハイブリダイゼーションさせると、約２００のシグナル／ノイズ比が得られた。やはり、前記各プローブ配列が、本発明の好ましい実施形態を表し、本明細書に記載された伸長プローブドメインの少なくとも１つに入る。

ＷＮＶ標的配列と、実質的に相補的なハイブリダイゼーションプローブとの間の誤対合の許容性は、上記のプローブ農地の１つおよび天然変異体配列を表す合成標的の回収物を用いて示された。より具体的には、配列番号１１１の上記ＡＥ標識プローブを含有するサンプルをジーンバンク登録番号ＡＦ２９７８５６（配列番号１５０）、ＡＦ２６０９６９（配列番号１５１）およびＡＦ２９７８４７（配列番号１５２）によって同定されたウィルス配列の実質的に相補的な部分を含む合成標的オリゴヌクレオチドにハイブリダイゼーションした。各標的は、異なった位置における標識ハイブリダイゼーションプローブに誤対合し、その誤対合の位置で、前記プローブと標的とは相補的でないことを意味した。配列番号１４８の標準標的は、前記プローブに完全に相補的であるため、陽性コントロールとして用いた。各標的にハイブリダイゼーションするプローブの能力は、上記の操作により、標的投入レベルの関数として評価した。

図２に示すように、ハイブリダイゼーションプローブは、このプローブ配列に完全には相補的ではない標的を明らかに検出した。この緊縮試験により、ハイブリダイゼーションプローブと、その標的との間の誤対合は、標的を検出するプローブの能力を損なうことなく容認され得ることが証明された。実際、本発明のプローブは、標的を検出するプローブの能力を実質的に損なうことなく、標的に対する１０％まで、さらには２０％までの塩基対合を含み得ることが許容される。言い換えると、本発明のハイブリダイゼーションプローブに含まれた標的相補的塩基配列は、１０％まで、またはさらに２０％までの塩基位置において、それが由来した伸長ドメイン配列と異なってもよいことが許容される。したがって、ＷＮＶの検出に有用なハイブリダイゼーションプローブおよびプライマーは、規定された長さの範囲を有する標的相補的塩基配列を有し、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログおよび他の場合には、前記プローブまたはプライマー配列を含む規定された配列に比して、約１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を含み得ることが許容される。例えば、上記の変異体フラビウィルス配列の１つを検出する上で有用なハイブリダイゼーションプローブは、配列番号１０３または配列番号１１１の配列またはそれらの相補体内に含まれた１８連続塩基からなる標的相補的塩基配列を有し得、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在、および１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。

表７に示された配列を有するハイブリダイゼーションアッセイプローブは、引き続き、増幅プライマーおよび捕捉オリゴヌクレオチドの範囲が、生物学的サンプル中のＷＮＶ核酸を検出し得ることを証明するために使用された。ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログ置換の存在を考慮に入れて、これらの配列、またはそれらの相補体を有するプローブは、各々本発明の特に好ましい実施形態を表している。

また、本発明により有用なプライマーは、他の場合には相補的標的に対する塩基誤対合の存在に関して柔軟性を示す。これは、核酸増幅の増幅機構では、引き続く増幅サイクルにおいて結合する相補的プライマーに対する正確な対合を含む第１の単位複製配列生成のために、一時的なプライマー結合のみを必要とするからである。したがって、また、ハイブリダイゼーションプローブ配列における塩基の差異、または誤対合の許容性と同様に、ＷＮＶなどのフラビウィルスの核酸増幅に有用なプライマーは、規定された長さの範囲内の３’末端標的相補的塩基配列を有し、ＲＮＡ等価物、ＤＮＡ等価物、ヌクレオチドアナログの存在および他の場合には、前記プライマー配列を含む規定された配列に比して、１０％まで、またはさらに２０％までの塩基の差異を考慮に入れたものである。

ＷＮＶ核酸の増幅に好ましいプライマーの組合わせは、核酸テンプレート源として、ＷＮＶウィルス粒子を使用した一連の操作において同定された。プロモーター−プライマーおよび反対鎖プライマーは、下記の方法を用いた組合わせにおいてスクリーニングされた。これらの操作は、具体的に転写媒介増幅（ＴＭＡ）プロトコルを用いて実施されたが、本明細書に開示されたプライマーは、単位複製配列を生成するために通常のレベルの当業者に周知である代替のインビトロ核酸増幅法によって使用し得る。

実施例２は、西ナイルウィルスの５’非コード領域に対する有用な増幅プライマーを同定した方法を記載している。
実施例２
増幅プライマーの同定
プライマーの対の組を使用した増幅反応において、ウィルスライセートが、ＷＮＶテンプレート配列源として働いた。ＴＭＡ反応が、本質的にＫａｃｉａｎらによる米国特許第５，３９９，４９１号に記載されたとおりに実施されたが、この米国特許の開示は、参照として上記本明細書に組み込まれている。各プロモーター−プライマーは、ＷＮＶ相補的配列の上流に、Ｔ７プロモーター配列ＡＡＴＴＴＡＡＴＡＣＧＡＣＴＣＡＣＴＡＴＡＧＧＧＡＧＡ（配列番号１５３）を含んだ。増幅反応は、種々のプライマー組合わせに関して、ＷＮＶテンプレート源としてＮＹ９９ＷＮＶ株のウィルスライセートの１：１０，０００希釈液の５μｌまたは１．４μｌのいずれか（反応液は１ＰＦＵウィルス当量未満を含んだ）、および１００μｌの反応緩衝液中１０ピコモルの各プライマーを用いて実施された。ウィルスライセートは、コロラド州フォートコリンズ所在、ベクター−ボーン感染疾患局、感染疾患国立センター、疫病管理センターより入手した。核酸は、テンプレートが、ＨＩＶ特異的オリゴヌクレオチドではなくて、ＷＮＶ特異的オリゴヌクレオチドを用いて捕捉されたこと以外は本質的に国際公開特許出願第ＵＳ２０００／１８６８５号に開示された操作に従って、増幅前に標本処理と標的捕捉を受けた。テンプレート核酸源として、５μｌのウィルスライセートを用いて実施された試験に関して、各々、２．５ピコモル／反応の濃度で配列番号１１７、配列番号１１８および配列番号１１９の配列または配列番号１２０、配列番号１２６および配列番号１３０の配列を有する捕捉オリゴヌクレオチドの組を組合わせて用いた。標的核酸とプライマーとを６０℃に１０分間加熱してから、プライマーのアニーリングを促進するために４２℃に冷却した。次いで前記化合物に、マロニーマウス白血球ウィルス（ＭＭＬＶ）逆転写酵素（５，６００／単位）およびＴ７ＲＮＡポリメラーゼ（３，５００単位／反応）を加えた。最終増幅反応液は、５０ｍＭトリスＨＣｌ（ｐＨ８．２から８．５）、３５ｍＭ ＫＣｌ、４ｍＭ ＧＴＰ、４ｍＭ ＡＴＰ、４ｍＭ ＵＴＰ、４ｍＭ ＣＴＰ、１ｍＭ ｄＡＴＰ、１ｍＭ ｄＴＴＰ、１ｍＭ ｄＣＴＰ、１ｍＭ ｄＧＴＰ、２０ｍＭ ＭｇＣｌ_２、２０ｍＭ Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン、および５％（ｗ／ｖ）グリセロールを含んだ。４２℃で１時間の温置後、全体で１００μｌの増幅反応液を、配列番号９８（表１０を参照）のプローブを用いて、本質的に実施例１に記載されたとおりのハイブリダイゼーションアッセイに供した。より具体的には、前記プローブをアクリジニウムエステルにより、約２ｘ１０^８ＲＬＵ／ピコモルの比活性へと標識してから、各ハイブリダイゼーション反応に関して、２ｘ１０^６ＲＬＵと等価な量で使用した。試験は、１０回の反復試験を用いて行われた。陽性結果として判断されるには、プローブハイブリダイゼーションを示している化学発光シグナルが、アッセイにおいて５０，０００ＲＬＵを超過したことが必要であるか、またはシグナル対ノイズ比（バックグラウンドノイズは、陰性増幅コントロール反応において測定された）が少なくとも１０であったことが必要である。

表１１および表１２は、５μｌならびに１４μｌのウィルスライセートに含まれたＷＭＶテンプレート量および増幅プライマーの種々の組合せを用いて各々実施された増幅操作の結果を示す。表の最終欄の結果は、この操作に用いられた陽性試験数および反復試験数を示している。

表１１に示された結果は、プライマーの組合わせの多くが、１反応当たり１ＰＦＵのウィルス当量より低いテンプレート濃度でさえ、極めて高レベルのＷＮＶ検出性を与えることを示した。本明細書に提供された結果において、低いけれども測定可能レベルのＷＮＶ検出性を与えるプライマーの組合わせでも、ＷＮＶテンプレートの増幅に成功したことを示し、ＷＮＶ核酸増幅アッセイの有用な構成要素としての組合せを確立した。ＷＮＶ核酸の１本の鎖に相補的なプライマーの各々が、ＷＮＶ核酸の反対鎖に相補的なプライマーのうちの少なくとも１つと対合でき、高感度増幅に基づくアッセイが得られることを、これらの操作の結果が示したことは重要である。

表１２に提供された結果は、上記捕捉オリゴヌクレオチド、プローブおよびプライマーが、極めて低濃度の投入テンプレートでＷＮＶ核酸検出用の高感度アッセイに使用され得る方法をさらに例示する。

実施例３は、西ナイルウィルスの３０００領域の核酸を増幅するのに有用なプライマーを同定した方法を記載する。
実施例３
増幅プライマーの同定
ＷＮＶの３０００領域に特異的なプライマー類の対セットを使用する増幅反応は、表４に示されたＷＮＶ相補的配列を有するプロモーター−プライマーを、表３に示された配列を有する反対鎖プライマーと組合わせて用いたことを除いて、本質的に実施例２で記載されたとおり実施した。増幅反応は、上記ウィルスのライセートの１：１０，０００希釈液の５μｌまたは１．４μｌ（各反応は１ＰＦＵ未満のウィルス当量を含有した）を用いて種々のプライマーの組合わせについて実施した。核酸は、配列番号１１７、配列番号１１８および配列番号１１９の標的相補的配列または配列番号１２０、配列番号１２６、および配列番号１３０の標的相補的配列を含んだ捕捉オリゴヌクレオチドの組合せを用いて、実施例２に従って標本処理を受けた。各捕捉オリゴヌクレオチドを、標的捕捉工程において２〜５ピコモル／反応の濃度で用いた。標的核酸およびプライマーは、６０℃で１０分間加熱してから、４２℃に冷却し、増幅反応を上記のとおり実施した。増幅反応の終結時に、全反応容量を、配列番号１００（表１０参照）の配列を有するプローブを用いてハイブリダイゼーションアッセイに供した。より具体的には、前記プローブを、アクリジニウムエステルにより約２ｘ１０^８ＲＬＵ／ピコモルの比活性に標識し、次いで約１ｘ１０^６
から１ｘ１０^７ＲＬＵに等しい量で各ハイブリダイゼーション反応に用いた。試験は、１０回の反復試験を用いて実施した。陽性結果として判定するためには、プローブハイブリダイゼーションを示す化学発光シグナルが、一アッセイにおいて５０，０００ＲＬＵを超過していなければならない。

表１３は、ＷＮＶの３０００領域の核酸を増幅させるために、プライマーの異なる組合わせを用いて実施された増幅操作からの結果を示している。表の最終欄の結果は、この操作で用いられた陽性試験数および反復試験数を示している。それに反する指示がなされない限り、ウィルス核酸源として５μｌのＷＮＶライセートを用いて全ての反応を実施した。

表１３に示された結果は、掲載されたプライマー組合わせの多くが、ＷＮＶ核酸の増幅を含んだ高感度アッセイを創製するのに有用であることを示した。実際、投入テンプレートのいくらかの濃度におけるＷＮＶ核酸増幅のために、１本の鎖に相補的な任意の掲載プライマー類が、反対鎖に相補的な任意の掲載プライマーと組合わせて使用できることが考慮されている。

実施例４は、西ナイルウィルスの３’非コード化領域の核酸を増幅するのに有用なプライマーを同定した方法を記載する。
実施例４
増幅プライマーの同定
ＷＮＶの３’非コード化領域に特異的なプライマーの対セットを使用する増幅反応は、表６に提供されたＷＮＶ相補的配列を有するプロモーター−プライマーを、表５に示された配列を有する反対鎖プライマー類と組合わせて用いたことを除いて、本質的に前記実施例で記載されたとおり実施した。増幅反応は、上記ウィルスのライセートの１：１０，０００希釈液の１．４μｌまたは０．１４μｌ（各反応は１ＰＦＵ未満のウィルス当量を含有した）を用いて種々のプライマーの組合わせについて実施した。核酸は、配列番号１１８、配列番号１１９および配列番号１２０の標的相補的配列を有する捕捉オリゴヌクレオチド類を組合せて用い、各々が２〜５ピコモル／反応の濃度で標本処理を受けた。標的核酸およびプライマーを、６０℃で１０分間加熱してから、４２℃に冷却し、増幅反応を上記のとおり実施した。増幅反応の終結時に、全反応容量を、配列番号１０４（表１０参照）の配列を有するプローブを用いてハイブリダイゼーションアッセイに供した。より具体的には、前記プローブを、アクリジニウムエステルにより約２ｘ１０^８ＲＬＵ／ピコモルの比活性に標識し、次いで約１ｘ１０^６から１ｘ１０^７ＲＬＵに等しい量で各ハイブリダイゼーション反応に用いた。試験は、１０回の反復試験を用いて実施した。陽性結果として判定するためには、プローブハイブリダイゼーションを示す化学発光シグナルが、一アッセイにおいて５０，０００ＲＬＵを超過していなければならない。

表１４は、プライマー類の異なる組合わせを用いて実施された増幅操作からの結果を示している。表の最終欄の結果は、この操作で用いられた陽性試験数および反復試験数を示している。

表１４に示された結果は、掲載されたプライマー組合わせが、ＷＮＶ核酸の増幅を含んだ高感度アッセイを創製するのに有用であることを示した。実際、投入テンプレートの幾らかの濃度におけるＷＮＶ核酸を増幅するために、１本の鎖に相補的な任意の掲載プライマーが、反対鎖に相補的な任意の掲載プライマーと組合わせて使用できることが考慮されている。

とりわけ、１つの例を除く全てにおいて、表１４に掲載された反対鎖プライマーと組合わせて用いられた他のプロモーター−プライマーは、示された標的投入濃度で０陽性試験／１０回反復試験を与えた。より具体的には、以下のオリゴヌクレオチドによって得られたＷＮＶ相補的配列を含んだＴ７プロモーター−プライマーは、上記に示した条件を用いて表１４に掲載された反対鎖プライマーの各々：配列番号８２、配列番号８３、配列番号８０および配列番号８１と組合わせて試験した場合、好結果を得なかった。全てのプライマーが等価であるならば、これらのプライマーを用いた場合、測定可能な結果を予想できたであろうが、そうではなかった。特別の感度を有する増幅操作を実施するのに有用なプライマーは、配列番号７３および配列番号７４の極めて好ましいドメイン内に含まれていた。

前記アッセイデザインにおける汎用性をさらに立証するために、さらなる操作を実施して、１つ以上の同センスプライマーが、アッセイ感度を損なうことなく増幅反応に使用できる方法を示した。実際、前記アッセイにおいて１つ以上の同センスプライマーを使用する能力は、ＷＮＶ遺伝子変異体を検出する一方法を表している。

３’非コード化領域におけるＷＮＶを増幅し、検出する反応は、以下の小さな修飾をして実質的に上記のとおり実施した。この操作に使用された捕捉オリゴヌクレオチドには、配列番号１３４、配列番号１３１および配列番号１２７の標的相補的配列を含んだ。配列番号７６の標的相補的配列を含んだプロモーター−プライマーは、増幅反応の全てに存在した。表に示された結果を除いて、全ての反応は、ＷＮＶ核酸の同じ鎖にハイブリダイゼーションした同じセンスの第２プライマーと組合わせて、配列番号６４の配列を有するプライマーを含んだ。一例として、配列番号７６の標的相補的配列を含んだ配列番号６８の配列を有するプライマーおよび配列番号８５のプロモーター−プライマーを、第３プライマーの不在下でＷＮＶ核酸を増幅させるために使用した。単位複製配列生成を検出するために配列番号１１１の配列を有するプローブを、全ての場合に使用した。反応は、１０回の反復試験で実施し、上記ウィルスライセートの１：１０，０００希釈液の０．３３μｌを用いてプライムした（１反応当たりウィルス標的のほぼ１０〜２０コピー）。陽性結果として判定するためには、プローブハイブリダイゼーションを示す化学発光シグナルが、一アッセイにおいて５０，０００ＲＬＵを超過していなければならない。とりわけ、これらの試験は、ＨＩＶ−１内部コントロールテンプレートおよびＷＮＶ標的の増幅または検出に実質的に影響を及ぼさないプライマーをさらに含んだ。

表１５に示された結果は、被験プライマー組合わせの各々が、ＷＮＶ核酸の増幅および検出を容易にすることを示した。

前記アッセイデザインにおける汎用性をさらに例示するために、捕捉オリゴヌクレオチドの同じセット用い、ＷＮＶ単位複製配列を生成するための複数プライマーを用いるが、検出工程では異なるハイブリダイゼーションプローブを用いて他の方法を実施した。より具体的には、この操作に使用された捕捉オリゴヌクレオチドは、配列番号１３４、配列番号１３１および配列番号１２７の標的相補的配列を含んだ。配列番号７６のＷＮＶ相補的配列を有するプロモーター−プライマーを、配列番号６４および配列番号６８の配列を有する反対鎖プライマー類と組合わせて使用した。増幅反応は、テンプレート源として上記ウィルスライセートの１．４μｌを用いて実施した。１つは配列番号１０７の配列を有し、他は配列番号１１４の配列を有する２つの異なるプローブのうちのいずれかを用いて検出反応を実施した。これらのプローブの各々は上に記載されている。これらの操作結果は、配列番号１０７のプローブを用いて１０／１０陽性、また、配列番号１１４のプローブを用いて１８／１８陽性を得た。このことにより、ハイブリダイゼーションプローブの有用性が確認され、さらに高感度アッセイを得るために、増幅および検出操作の要素を、組合わせできる方法を立証した。とりわけ、試験を受ける生物学的サンプルが、僅かに異なる方法によって調製された場合でも、配列番号１１４のプローブは、他の方法において、並はずれて再現性のある結果を得ることが判った。上記のとおり、配列番号１１４のプローブ配列は、配列番号１０１、配列番号１０２および配列番号１０３により規定されたプロ−ブドメインに含まれた対応する配列とは僅かに異なる。

以下の実施例では、候補となるＷＮＶ捕捉オリゴヌクレオチドを試験するために使用される方法を記載する。この操作で記載されたＷＮＶ特異的標的捕捉、増幅プライマー、プローブに加えて、前記反応により、ＨＩＶ−１、ＨＣＶおよびＨＢＶ検体に特異的な捕捉オリゴヌクレオチドを含む効果を試験した。
実施例５
種々の捕捉オリゴヌクレオチドを用いるＷＮＶ標的配列の検出
上記操作に使用されたＷＮＶライセートの一定分量を、約４ピコモルの各捕捉オリゴヌクレオチドおよびポリ−（ｄＴ_１４）に共有結合した約４０μｇの０．７〜１．０５μ常磁性粒子（Ｓｅｒａｄｙｎ、インディアナ州インディアナポリス所在）を含有する４００μｌの溶解／捕捉試剤に分散した。この操作に使用された捕捉オリゴヌクレオチドは、表８に掲げた配列を有した。溶解／捕捉試剤は、ＨＩＶ−１内部増幅コントロールテンプレート、ＨＩＶ−１、ＨＣＶならびにＨＢＶ特異的捕捉オリゴヌクレオチド類、および２９４ｍＭラウリル硫酸リチウム、７３０ｍＭ塩化リチウムならびに５０ｍＭ水酸化リチウムを含有する１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液をさらに含んだ。上記のとおり、５’−ＴＴＴ−３’スペーサー配列を、表８に示された各捕捉オリゴヌクレオチドに関して、ＷＮＶ相補的配列とオリゴ−（ｄＡ）尾部領域との間に挿入する。この混合物を５５〜６０℃に約１５〜３０分間加熱してから、室温に冷却してハイブリダイゼーションさせる。磁場をかけて、Ｗａｎｇによって米国特許第４，８９５，６５０号に記載されたものなどの操作を用いて、固定化された捕捉オリゴヌクレオチドおよびＷＮＶ ＤＮＡを含有する粒子複合体を採取する。この粒子を、１ｍｌの洗浄用緩衝液（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、６．５ｍＭ
ＮａＯＨ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、０．３％（ｖ／ｖ）エタノール、０．０２％（ｗ／ｖ）メチル−パラベン、０．０１％（ｗ／ｖ）プロピル−パラベン、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１％（ｗ／ｖ）ラウリル硫酸ナトリウム）で２回洗浄した。次いで洗浄した粒子を、実施例２で記載された７５μｌの増幅剤に再懸濁した。この試剤は、塩類、ヌクレオチド類、リボヌクレオチド類、ＷＮＶ特異的プライマー類を含んだ。幾つかの試験ではさらに、ＨＩＶ−１内部コントロールテンプレートを増幅できるプライマー類を含んだ。次に、ＷＮＶ標的核酸を増幅して、増幅産物を、配列番号９８（表１０参照）のハイブリダイゼーションプローブを用いて実施例１で本質的に記載された、均一保護アッセイを用いて検出した。内部コントロール単位複製配列に特異的なプローブ、またはＷＮＶ単位複製配列に特異的なプローブとハイブリダイゼーションした場合に陽性シグナルを示した反応を、有効な反応として評価した。ＷＮＶ単位複製配列の存在が陽性と考えられる有効な操作のためには、プローブハイブリダイゼーションを示す化学発光シグナルは、一アッセイにおいて５０，０００ＲＬＵを超過していなければならない。

表１６は、ＷＮＶ特異的捕捉オリゴヌクレオチド（類）の同一性およびＷＮＶ配列を効率的に増幅し、検出するシステム能力に関連するサンプル結果を提供している。増幅反応において陽性結果を達成するためには、ＷＮＶ捕捉オリゴヌクレオチドは、増幅プライマー類およびプローブ（類）と協同的に作用して、ＷＮＶテンプレート核酸を捕捉し、ＷＮＶテンプレート核酸を増幅し、次に増幅された核酸を検出できていなければならない。

とりわけ、この操作に使用され、表１６に掲載されたプロモーター−プライマー類は、Ｔ７プロモーターを含んだ完全配列により同定されている。しかしながら、プロモーター−プライマーのＷＮＶ相補的部分は、ポリメラーゼ連鎖反応などの代替のプロトコルによる任意のプロモーター配列との増幅反応を実施するための本質的な配列を表すことを理解するべきである。したがって、表１６に掲載されたプライマーの幾つかは、任意のプロモーター配列を有し、任意のプロモーターを含まない対応するプライマーは、本質的なＷＮＶ相補的配列を表すことを理解するべきである。これら後者のＷＮＶ相補的配列は、ＷＮＶ核酸を増幅するための反対鎖プライマー類と関連して有用である。

表１６に示された結果により、単独に、または組合わせて試験された実質的に全ての捕捉オリゴヌクレオチドが、ＷＮＶ検出アッセイに有用であることを確認した。

前述の実施例に用いられたＮＹ９９株のように、西ナイルウィルスのウガンダ株は、公知の１００株以上の西ナイルウィルスのうちの一株である。配列決定および系統学的分析に基づいて、公知のウィルスは、２つの系列−系列１および系列２に分けられている。無症候性またはヒトの軽度熱性症例から単離された系列２株は、系列１株よりもいくらか毒性が弱いことが疫学的データにより示されている。系列１株は、ヒト脳炎症例および致死性のあった伝染病を伴っている。

上記増幅システムの重要な利点は、西ナイルウィルスのウガンダ株の「熟達パネル」を用いて立証された（系列２株の一例）。通常レベルの当業技術者は、この株が、米国内で顕著であるＮＹ９９株（系列１株の例）に対して核酸レベルでわずかに関連しているのみであることを認識するであろう。したがって、アッセイが、ＷＮＹのＮＹ９９およびウガンダ株の双方を検出できるかどうかは、臨床設定に有用な高緊縮試験であることを示している。

実施例６は、西ナイルウィルスのウガンダ株が、ＮＹ９９株を検出した同じアッセイにより検出されたことを証明するために使用された方法を記載している。
実施例６
西ナイルウィルスのウガンダ株の増幅および検出
ヒト血清誘導体の８００μｌから１，０００容量にＷＮＶウガンダ株の既知量を含有するサンプルの熟達度パネルは、Ｂｏｓｔｏｎ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａ社（マサチューセッツ州）から入手した。このパネルは、各々がＷＮＶウガンダ株ＲＮＡの０、３０、１００、１，０００または１０，０００コピー／ｍｌを含有する複数のメンバーから構成された。標的捕捉操作、増幅操作および検出操作を、本質的に前述の実施例に記載されたとおり実施した。この実施例において、配列番号１２０、配列番号１３０および配列番号１２６の標的相補性配列を有する捕捉オリゴヌクレオチド類を、互いに組合わせて使用した。予備的方法において、ウィルスＲＮＡの１０，０００コピー／ｍｌを含有するパネルメンバーのうちの１つが、ウィルス核酸の１０、３０、１００または３００コピーのいずれかを含有した一連の希釈液を創製するために使用された。増幅および検出反応を、表１７に掲載されたオリゴヌクレオチド試剤を用いて実施した。本例において、配列番号９８の配列を有するプローブ上の標識は、１１位と１２位との間に配置され；配列番号１００の配列を有するプローブ上の標識は、９位と１０位との間に配置され；配列番号１０４の配列を有するプローブ上の標識は、６位と７位との間に配置される。パネルメンバーを、予め希釈することなく試験に用いた場合、５００μｌの一定分量を、標的の３０００領域を増幅した反応に用い、パネルメンバーの残りの容量を（５００μｌ未満の量）を、３’非コード化領域を増幅した反応に用いた。希釈していないパネルメンバーの容量に制限があることから、試験は、これら２つの領域に限定された。陽性結果は、シグナル対ノイズ比が少なくとも１０である場合に評価された。

表１８は、本操作からの数値結果を示している。単一標的濃度で実施された反応の各シリーズに関する結果の中の精度は、変動係数（％ＣＶ）を算出することにより決定された。

表１８に示された結果は、ＷＮＶウガンダ株における３つの異なる標的領域の各々が、ＮＹ９９株を増幅し、検出するために使用された同じオリゴヌクレオチド試剤を用いる高感度様式で増幅され、検出され得ることを確認した。種々の増幅システムの各々は、３０コピー／ｍｌに至るまで１００％のサンプルにウィルス核酸を検出した。３０００領域および３’非コード化領域における標的を検出するシステムでは、１０コピー／ｍｌに至るまで１００％のサンプルにウィルス核酸を検出した。種々の希釈液の０．５ｍｌサンプルを、検出操作に使用したことから、ウィルスＲＮＡコピー数／反応は、ウィルスＲＮＡコピー数／ｍｌの二分の一であった。サンプル源が１０コピー／ｍｌのウィルスＲＮＡを含んだ場合に、ウィルス標的が検出されたことを示す陽性結果は、このアッセイが５コピーのウィルスＲＮＡを検出することを意味した。とりわけ、３０００領域および３’非コード化領域における核酸を増幅した反応は、低い％ＣＶの読取りが有利に得られ、それにより増幅反応において高レベルの精度が示された。

表１９の結果は、西ナイルウィルスの３０００領域および３’非コード化領域における配列を増幅し、検出するためのアッセイが、擬似陰性結果を与えることなく、１５コピー／反応に至るまで、またはそれ以下でウガンダ株のウィルスＲＮＡ標的を検出することを示した。これらの知見は、表１８に示された結果と一致した。

本明細書に記載されたオリゴヌクレオチド類を、高感度アッセイを与えるために組合わせできる方法をさらに例示するために、西ナイルウィルスのウガンダ株を増幅し、検出するための異なる組み合わせの捕捉オリゴヌクレオチド、プライマーおよびプローブを使用した。配列番号１１７、配列番号１３４および配列番号１２８の標的相補的配列を含んだ捕捉オリゴヌクレオチド類が使用されたこと、配列番号８５のプロモータープライマーが配列番号７６の標的相補的配列を含んだこと、反対鎖プライマーが配列番号６４の配列を有すること、配列番号１１１の配列を有する上記オリゴヌクレオチドがプローブとして使用されたこと以外、上記のものと同様の操作を使用した。さらに前記ウィルスの３、１、０．３および０．１コピー／ｍｌを含有するサンプルは、アッセイ感度を正確に定量化するためのデータを作成するために２０回の反復試験を行った。９５％および５０％検出レベルを算出するために、ＳＡＳ（登録商標）Ｓｙｓｔｅｍソフトウェア（バージョン８．０２）（ノースカロライナ州カリー所在）におけるプロビット関数を用いる回帰解析を用いた。無効な反応は、再試験せず、また、分析感度の解析に含ませなかった。

表２０に示された結果により、西ナイルウィルスのウガンダ株が、増幅アッセイにおいて優れた感度で検出されることを示した。より具体的には、核酸増幅アッセイ、および約４〜７コピー／反応に相当する量の７〜１３ウィルスコピー／ｍｌに至るまでの結果の解析により、エンドポイント検出システムを用いた９５％検出が予測された。

上記の検体検出システムの多用性をさらに例示するために、単位複製配列生成を、「リアルタイム」増幅操作における時間の関数としてモニタした。増幅反応に含まれた単位複製配列特異的分子ビーコンは、単位複製配列合成の連続モニタリングの手段を提供した。時間と共に増加した蛍光発光により、分子ビーコンにハイブリダイゼーションし、プローブの「開放」配座への検出可能な遷移を引き起こした単位複製配列の生成を示した。

分子ビーコンは、標的相補的配列を有する核酸分子、標的の不在下で相補的塩基対合による「幹」構造（すなわち、「閉鎖」配座）を形成するために相互作用する親和性対（または核酸「アーム」）、およびプローブが閉鎖配座内にある場合に相互作用する標識の対になったセットを含む。通常レベルの当業者は、分子ビーコンの構造内に含まれた標的相補的配列が、一般にプローブの一本鎖「ループ」領域の形態にあることを理解するであろう。標的核酸とプローブの標的相補的配列とのハイブリダイゼーションは、親和性対のメンバーを分離させ、それによってプローブが開放配座にシフトする。このシフトは、例えば、発蛍光団および消光剤因子あり得る標識対のメンバー間での相互作用が減じることから検出可能である。分子ビーコンは、米国特許第５，９２５，５１７号に十分に記載され、この特許文献の開示は、参照として本明細書に組み込まれている。

（１）５’非コード化領域、（２）３０００領域、および（３）３’非コード化領域から誘導された単位複製配列に特異的な分子ビーコンを用いて得られた時間依存性の結果を解析するために、商品として入手できるソフトウェアを使用した。これらの解析結果により、図３に例示されるとおり、増幅反応に含まれた標的コピー数と、蛍光シグナルがバックグラウンド閾値を超えた時間（すなわち、バックグラウンド超の「出現時間」）との間で実質的に直線関係を示した。下記に提供された結果により確認されたように、これらの方法は、極めて広範囲にわたり検体標的量を定量化するために有用であった。より具体的には、検体ポリヌクレオチド類の既知量を、較正標準として用いる場合、測定された出現時間と標準プロットとを比較することにより、試験サンプルに存在する検体量を決定することが可能である。

下記の操作に用いられた増幅反応が、増幅と検出とが同時に行われるように一定温度で、別個の検出工程の中断なしで操作されるという事実は、上記分子ビーコンに対して厳密な要件を課す。より具体的には、この方法を成功させるためには、分子ビーコンが、指数関数的増幅機構におけるテンプレートとして単位複製配列の引き続く使用を阻害することなく、単位複製配列に結合することが要求される。実際、増幅反応が、分子ビーコンの存在下で効率的に進行できたという知見により、プローブとその標的との相互作用は、増幅反応を不可逆的に阻害しなかったか、または害さなかったことを示した。

実施例７は、ＴＭＡ反応における時間依存性単位複製配列生成をモニタリングするために、各々が相互に作用する発蛍光団／消光因子対で標識された、分子ビーコンプローブを使用した方法を記載している。この実施例に記載された分子ビーコンは、増幅核酸産物の１本の鎖のみにハイブリダイゼーションしたが、相補的プローブ配列もまた、反対核酸鎖にハイブリダイゼーションすることが予想され、それゆえ本発明の範囲内に入るであろう。
実施例７
単位複製配列生成のリアルタイムモニタリング
種々のＷＮＶ単位複製配列に結合特異性を有する分子ビーコンを、Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ（カリフォルニア州フォスターシティー所在）ＥＸＰＥＤＩＴＥモデル８９０９自動化シンセサイザ上で３’消光因子結合制御ポアガラス（ＣＰＧ）および５’発蛍光団標識ホスホラミダイトを用いる標準的固相亜リン酸トリエステル化学により合成した。フルオレセインを蛍光団として用い、ＤＡＢＣＹＬを、分子ビーコン構築のための消光因子として用いた。全ての分子ビーコンは、２’−メトキシヌクレオチドアナログを用いて構築された。ＣＰＧおよびホスホラミダイト試薬は、Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ社（バージニア州スターリング所在）から購入した。合成後、プローブを脱保護し、濃水酸化アンモニウム（３０％）を用いて６０℃で２時間処理することにより固体支持体マトリクスから開裂した。次いで、このプローブを、ポリアクリルアミドゲル電気泳動を用いて精製し、次いで通常レベルの当業技術者に知られている標準的な方法を用いるＨＰＬＣにより精製した。

リアルタイムの増幅法に用いられた核酸標的は、既知濃度のインビトロ合成のＲＮＡ転写体であった。３種のインビトロ合成ＷＮＶ標的（５’非コード化領域標的、３０００領域標的、および３’非コード化領域標的）は、対応する配列、または各プライマーに相補的な配列を含んだＷＮＶゲノム部分を含有した。分子ビーコンを、約０．２ピコモル／μｌ（４ピコモル／反応）の濃度で用いた。ＷＮＶ核酸を増幅する反応は、１．５ｘ１０^１テンプレートコピー／反応のような低さから５ｘ１０^９テンプレートコピー／反応のような高さまでを用いて実施された。

実施例２で本質的に記載されたとおり、塩類と試剤、標的ポリヌクレオチド、および分子ビーコンを含んだ１５μｌの緩衝液を含有するチューブを先ず、蒸発を防ぐために１５μｌの不活性油で覆った。次いで前記チューブを、乾熱ブロック中、６０℃で１０分間温置してプライマーアニーリングを促進した。ＷＮＶ標的の５’非コード化領域を増幅させるプライマー類は、配列番号２８（配列番号４０のプロモーター−プライマーの配列内に含有）および配列番号１０の標的相補的配列を有した。ＷＮＶ標的の３０００領域を増幅させるプライマー類は、配列番号５３（配列番号５６のプロモーター−プライマーの配列内に含有）および配列番号４７の標的相補的配列を有した。ＷＮＶ標的の３’非コード化領域を増幅させるプライマー類は、配列番号７６（配列番号８５のプロモーター−プライマーの配列内に含有）および配列番号６４と配列番号６８の双方の標的相補的配列を有した。６０℃の温置ステップ後、チューブを４２℃の熱ブロックに移してから、１０分間温置した。ＭＭＬＶ逆転写酵素およびＴ７ ＲＮＡポリメラーゼ酵素の双方を含んだ５マイクロリットルの一定分量の酵素試剤は、反復ピペッタを用いて各チューブに加えた。チューブを簡単に渦巻かせてから、予め４２℃に加温したＲＯＴＯＲＧＥＮＥ−２０００（Ｃｏｒｂｅｔｔ Ｒｅｓｅａｒｃｈ；オーストラリア国シドニー所在）ロータに移した。増幅反応は、４２℃で実施し、蛍光読取りは、３０秒毎にとり、この結果は、ＲＯＴＯＲＧＥＮＥ−２０００装置で包まれた標準的ソフトウェアを用いてリアルタイムで解析した。
５’非相補的領域における増幅
表２１は、５’非コード化領域に相当する単位複製配列の生成をモニタリングするために用いられた分子ビーコンのループ部分に含まれたＷＮＶ標的相補的配列を提供している。とりわけ、配列番号１５８の標的相補的ループ配列の第９位（Ａ残基により占められる）は、西ナイルウィルのスウガンダ株の単位複製配列産物に誤対合された。この方法に使用されたＷＮＶ特異的分子ビーコンは全て、ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物の存在を考慮に入れたものであり、配列番号９３および配列番号９５の配列内に含有した１３〜１５連続ヌクレオチドを含んだ標的相補的配列を有した。表２１に示された標的相補的配列は、分子ビーコンのループ領域に独立して取り込まれた。

表２１に示されたＷＮＶ相補的配列を含んだ分子ビーコンの完全配列は、表２２にある。配列番号１６２を除いて、各分子ビーコンには、表２１にあるＷＮＶ標的相補的配列に付加した５’ＣＣＧＡＧアーム配列、および３’ＣＵＣＧＧアーム配列を含んだ。配列番号１６２の配列を有する分子ビーコンは、プローブのループ部分に付加した５’ＧＧＣＡＣアーム配列および３’ＧＵＧＣＣアーム配列を含んだ。とりわけ、配列番号１６１の配列を有する分子ビーコンのループ部分は、ＷＮＶ標的相補的配列およびＷＮＶ標的に相補的でないその３’に付加した単一Ｃ残基を含んだ。全ての場合において、ＷＮＶ相補的配列は、分子ビーコン構造内のループ領域として配置された。したがって、配列番号１６１の配列を有する分子ビーコンのループ配列の最終位置（Ｃ残基により占められる）は、単位複製配列の標的配列に誤対合され、配列番号１６３の配列を有する分子ビーコンのループ配列の第９位置（ＡＣ残基により占められる）は、西ナイルウィルのスウガンダ株の単位複製配列産物に誤対合された。この方法に使用された各分子ビーコンは、その５’末端にフルオレセイン発蛍光団、およびその３’末端にＤＡＢＣＹＬ消光因子部分を含んだ。相補的アーム構造に相当する配列は、表２２の下線部により表されている。

表２３〜２５に示された結果により、ＷＮＶ特異的分子ビーコンのうちの１つを含んだ増幅反応が、望ましくは、検出可能性の閾値レベルに到達するまでの時間と共に増加する蛍光シグナルを生じることが確認された。ＷＮＶテンプレートの種々の量が、種々の操作で種々のプローブ類を試験するために使用されるので、これらの操作の結果は、同様の標的量が分類される別々の表に提供される。全ての結果は、二重反復試験または三重反復試験で実施された反応に基づいた。本操作で試験された単独分子ビーコンを除いて（データは示さず）、各プローブは、少なくともいくらかのレベルの時間依存性検体検出性を与えた。蛍光標識の完全性または非機能性プローブの場合のプローブ合成を確認する試みがなされなかったので、このプローブが良好な結果を与えなかった理由は定められなかった。

この操作で試験された種々の分子ビーコンが、リアルタイムアッセイフォーマットにおいていくらか異なった挙動を示したことは重要である。例えば、配列番号１５５の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応によって、高い標的数の極めて迅速な検出、および被験投入標的濃度の十分な範囲にわたる対数プロット上で蛍光シグナルと標的量との間に強い直線関係を得た（図３を参照）。このプローブを用いて得られた出現時間の読取りに関する変動係数（複数ＣＶ）は、３．３％以下であり（表２３を参照）、それによって、データポイント間で極めて高い精度を示した。配列番号１５８の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応は、いくらか遅い検出動態を示したが、有利な点としては、互いに低い標的濃度を見分けることができた（表２４を参照）。プローブ類のこれらの特性は、配列番号１５５および配列番号１５８の標的相補的配列を含有する分子ビーコンを用いて反応を並べて実施した場合に再現性があった。表２４に示されたとおり、３２．２分により、ＷＮＶテンプレートの１５および１．５ｘ１０^７コピーを含んだ反応に関して出現時間が識別され、また、配列番号１５８の標的相補的配列を含有する分子ビーコンを用いた場合、１０．７分により、ＷＮＶテンプレートの１５および１５０コピーを含んだ反応に関して時間出現が十分に識別された。このプローブを用いた直線関係の標的コピー数と出現時間との勾配は、標的の低濃度範囲で特に有利であったことが明白であろう。配列番号１５７の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応は、投入標的コピー数と出現時間との間で実質的に直線関係を生じたが、配列番号１５８の標的相補的配列を含んだプローブと比較すると、いくらかより低い勾配を示した。配列番号１５６の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応は、約４コピー／反応という低いＷＮＶ標的濃度を用いて実施し（表２５を参照）、図３に例示されたものなど、プロット上の４〜４．２３ｘ１０^３の範囲で測定された出現時間と標的コピー数との間で、強いがやはりいくらか低い直線関係を示した。実際、ほぼ６分の違いにより、配列番号１５６の標的相補的配列を含むプローブを用いた場合のこれら極端な状態で実施された反応に関する出現時間の測定が識別された。

３０００領域における増幅
表２６は、３０００領域に相当する単位複製配列生成をモニタリングするために用いられた分子ビーコンのループ部分に含まれたＷＮＶ標的相補的配列を示している。ＷＮＶ特異的分子ビーコンは全て、ヌクレオチドアナログおよびＲＮＡ等価物とＤＮＡ等価物の存在を考慮に入れたものであり、配列番号９９に含有した１０〜２０連続塩基を含んだ標的相補的配列を有した。表２６に示された標的相補的配列は、分子ビーコンのループ領域に独立して取り込まれた。

表２６に示されたＷＮＶ相補的配列を含んだ分子ビーコンの完全配列は、表２７にある。各分子ビーコンには、そのＷＮＶ標的相補的配列に付加した５’ＣＣＧＡＧアーム配列、および３’ＣＵＣＧＧアーム配列を含んだ。この方法に使用された各分子ビーコンは、その５’末端にフルオレセイン発蛍光団、およびその３’末端にＤＡＢＣＹＬ消光因子部分を含んだ。相補的アーム構造に相当する配列は、表２７の下線部により表されている。

表２８に示された結果により、ＷＮＶ特異的分子ビーコンのうちの１つを含んだ増幅反応が、望ましくは、検出可能性の閾値レベルに到達するまでの時間と共に増加する蛍光シグナルを生じることが確認された。やはり、種々の分子ビーコンは、リアルタイムアッセイフォーマットにおいていくらか異なる挙動を示した。例えば、配列番号１６７の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応は、極めて迅速な検出動態、および被験投入標的濃度の十分な範囲にわたる対数プロット上で蛍光シグナルと標的量との間に強い直線関係を与えた。このプローブを用いて得られた出現時間の読取りに関する変動係数（複数ＣＶ）は、１．８％以下であり、それにより、データポイント間で極めて高い精度を示した。配列番号１６５の標的相補的配列を有する分子ビーコンを含んだ反応は、披験標的投入濃度の十分な範囲にわたりいくらか直線性の低い種々の応答特性を示した。しかしながら、このプローブを用いて得られた数値結果の従来の曲線調整により、高濃度の投入標的と比較した場合、低濃度の投入標的においては、実質的により大きな勾配で０．９９よりも大きなＲ^２値を有する曲線を生じたことが判明した。このことは、低い標的コピー数間の小さな差異の定量化をより正確にさせる利点がある。

３’非相補的領域における増幅
表２９は、３’非コード化領域に相当する単位複製配列の生成をモニタリングするために用いられた分子ビーコンのループ部分に含まれたＷＮＶ標的相補的配列を示している。この方法で試験された分子ビーコン内に含有した標的相補的配列は、ＲＮＡ等価物およびＤＮＡ等価物の存在を考慮に入れ、配列番号１０１の配列内、より好ましくは、配列番号１０２の配列内、またはさらにより好ましくは、配列番号１０３の配列内もしくはＴＡＧＡＣＧＧＴＧＣＴＧＣＣＴＧＣＧ（配列番号１７８）の配列内に含有した１２〜１８連続ヌクレオチド類を含んだ。

表２９に示された標的相補的配列は、分子ビーコンのループ領域に独立して取り込まれた。

表２９に示されたＷＮＶ相補的ループ配列を含んだ分子ビーコンの完全配列は、表３０にある。各分子ビーコンには、ＷＮＶ標的相補的配列に付加した５’ＣＣＧＡＧアーム配列、および３’ＣＵＣＧＧアーム配列を含んだ。さらにこの方法に使用された各分子ビーコンは、その５’末端にフルオレセイン発蛍光団、およびその３’末端にＤＡＢＣＹＬ消光因子部分を含んだ。

表３１に示された結果により、ＷＮＶ特異的分子ビーコンのうちの１つを含んだ増幅反応が、望ましくは、検出可能性の閾値レベルに到達するまでの時間と共に増加する蛍光シグナルを生じることが確認された。とりわけ、表３１に示された幾つかの結果は、種々の実験で得られた。それにもかかわらず、配列番号１８２の標的相補的配列を含んだものなど、幾つかのプローブは、迅速な動態によりＷＮＶ標的を都合よく検出したが、一方、配列番号１７９の標的相補的配列を含んだものなどの他のプローブは、より遅い検出動態を示したことが明白であろう。

Claims (1)

1. 明細書中に記載の発明。