JP2010520182A - ヘリコバクターにより引き起こされる感染症の治療のための組成物 - Google Patents

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Abstract

本発明はヘリコバクターピロリにより引き起こされる感染症の治療のための薬剤組成物で利用される一般化学構造式(I)の化合物に関する。RとRはO、SまたはNであり、同一または異なっており、RはOまたはSであり、RはHまたはアルキル基(C−C)であり、nは0から3であり、RはNO、COOR’またはSOR’の基であり、R’は水素原子(H)またはアルキル基(C−C)である。
【選択図】化1

Description

本発明は、フラボドキシンを阻害でき、感染症、特にヘリコバクターによって引き起こされる感染症の治療のための薬剤組成物として利用される一般化学構造式(I)の化合物に関する。
Figure 2010520182
ヘリコバクターピロリによる感染症は今日の最も一般的な慢性疾患の1つである。事実、このバクテリアは50%以上の人の胃粘膜にコロニーを形成していることが見出されている。
ヘリコバクターピロリはグラム陰性かん菌(バシラス)であり、慢性胃炎、胃潰瘍および十二指腸潰瘍を引き起こし、MALTリンパ腫や腺ガン(最も多発する致命的ガンの1種)の発症に関わる危険因子である。
ヘリコバクターピロリ感染症の根治に利用される従来の治療法は2つの広域抗生物質とプロトンポンプ阻害物質の利用で成る。従って、この病気の特定治療法は存在せず、現行治療法の治療成功率は80%を超えないため、現行治療法は特に効果的であるとは言えない。加えて、従来の抗生物質に対する、ますます増強する耐性による高い突然変異的変性は従来治療法の効果を低下させている。
本発明は薬剤組成物として利用する新規な化合物を提供する。さらに、本発明は感染症、特にヘリコバクターピロリによって引き起こされる病気の治療のための、それら化合物の利用法を提供する。
従って、本発明の第1の特徴的形態は、薬剤組成物として利用される以下の一般化学構造式(I)の化合物またはその塩である化合物(本発明化合物)の利用に関する。
Figure 2010520182

式中、R、R、R、RおよびR並びにnは以下のものである。
とRは酸素(O)、硫黄(S)および窒素(N)の原子から選択されるものであり、同一または異なるものである。好適にはRはNであり、RはOである。
は硫黄(S)と酸素(O)の原子から選択さる。好適にはRはSである。
は水素(H)の原子と、アルキル基(C−C)から選択され、直鎖状、枝状または環状のものである。好適にはRはアルキル基(C−C)であり、さらに好適にはRはメチル基である。
はNO、COOR’、およびSOR’の基から選択される基である。ここでR’は水素原子(H)またはアルキル基(C−C)である。好適にはRはNO、COOHまたはSOHの基であり、さらに好適にはNOである。
nはR基に、対応する芳香族環の炭素を並べる脂肪族鎖の炭素原子数であり、0から3であり、好適には1である。
“アルキル”は直鎖状、枝状または環状の炭化水素基に関係し、炭素原子と水素原子とで構成され、不飽和状態であり、1から6の炭素原子を有し、好適には1から4の炭素原子を有し、例えば、メチル、エチル、プロピル、n−ブチル、t−ブチル、等々の単純連結による分子の残り部分に連結する基に関係する。
好適実施形態では、本発明化合物は以下の化学構造式(II)の構造を有している。
Figure 2010520182
本発明の別な好適実施形態は薬剤組成物の生成のために一般化学構造式(I)の化合物を利用することを含む。この組成物は感染症の治療のために利用される。
一部の感染症はヘリコバクターバクテリアの場合と同様にグラム陰性バクテリアによって引き起こされる。
これら特定タイプの病気の治療のための効果的な治療標的はフラボドキシンであり、α/βの構造を有した酸化還元タンパク質であり、その機能は様々な代謝経路を介した電子移動である。ヘリコバクターピロリでは、フラボドキシンは、ピルビン酸塩酸化脱炭酸化経路で酵素ピルビン酸塩:フラボドキシンオキシドレダクターゼ(PFOR)から電子を受領し、ピルビン酸塩をアセチルCoAに変換する。電子仲介物質としてこの機能を果たすためにフラボドキシンは非共有結合的に結合したフラビンモノヌクレオチド(FMN)分子を運搬する。他の種のフラボドキシンに対するその構造類似性にも拘わらず、ヘリコバクターピロリの構造はFMN結合部位に非常に大きな相違を付与する。この部位ではアラニンの残基が他のフラボドキシンの特徴であるトリプトファンを置換する。この理由で、それは補因子結合部位に隣接して弱部位を発生させる。そこは生物活性の可能な阻害物質である分子の結合には適した部位である。なぜなら、それら阻害物質はPFORへのFMN酸化還元電位阻害電子移動を変性するか、あるいはそれらが単に2つのタンパク質の結合を阻止するからである。ピルビン酸塩酸化経路の遮断はバクテリアを死滅に導く。
よってフラボドキシンはこのバクテリアの生存には必須であり、人体内には存在せず、前述したように、感染症に関係する病気の根治のための治療的に適した標的を構成する。
本発明の化合物は、ヘリコバクターピロリのフラボドキシンが関与するピルビン酸塩の酸化を阻害することによってミクロモル濃度範囲でヘリコバクターピロリバクテリアを完全に阻害することは実証済みである(実施例参照)。
従って、本発明の1好適実施形態は、ヘリコバクター属のバクテリア、特にヘリコバクターピロリ種により引き起こされる感染症の治療のための一般化学構造式(I)の化合物の利用を含む。
従って、これら化合物はそれら病気の治療のための薬剤または薬剤組成物の製造に使用が可能である。これらの化合物に加えて、それら薬剤組成物は薬学的に利用可能な賦形剤、添加剤、等々を含むことができる。
よって、フラボドキシンを阻害することができるこれら化合物は、感染症、特にヘリコバクターにより引き起こされる病気、その中でも特にヘリコバクターピロリによって引き起こされる病気の治療の非常に良好な代替物となるであろう。
本発明が提供する一般化学構造式(I)の化合物の利用は、これら化合物がフラボドキシンタンパク質に対する特異的な阻害物質であるため、この病原菌に対する特異的治療の不在を補うであろう。また人体内における同相タンパク質の欠如は、これら阻害物質を特異的分子治療剤とし、宿主生物に対する副作用を皆無か、あるいは限定的とする。
ヘリコバクターピロリにより引き起こされる感染症は、慢性胃炎、胃潰瘍または十二支潰瘍、リンパ腫および胃ガン等の胃腸病に関するものである。従って、さらに好適な実施形態は、慢性胃炎、胃潰瘍及び/又は十二支潰瘍、リンパ腫および胃ガン等の感染症の治療のために本発明化合物を利用することを含む。
本明細書と「請求の範囲」を通じて“含む”なる表現は他の特徴、追加要素、成分または工程を排除するものではない。この分野の専門家であれば、本発明の他の目的、利点および特徴は本明細書の説明と本発明の実施により明らかとなろう。よって以下の実施例と図面は本発明の説明のために提供されており、本発明を限定するものではない。
図1は、50μMの濃度の化学構造式(II)の化合物の存在下および不在下におけるヘリコバクターピロリの基本的反応での生成物産生曲線を比較するグラフである。時間(秒)(t)に対する340nmにおける吸光度(A)の測定値(AUは吸光度単位)を示す。
本発明は、フラボドキシン阻害物質の特殊性および効果を示す、発明者によって実施された実験を利用して以下において解説される。
組み換えフラボドキシンのための遺伝子の複製
ヘリコバクターピロリのゲノムDNAはQIAamp DNA Stool Mini Kit(Qiagen)を使用して抗原陽性患者から単離された。

フラボドキシンのためのDNA配列コードは制限酵素Nco(SEQ ID No.1)と、制限酵素BamHI(SEQ ID No.2)とTaq DNAポリメラーゼ(Madgen)を使用してPCRにより増幅された。

増幅後に、600程度のヌクレオチドの破断片が、フラボドキシン遺伝子の破断片(613のヌクレオチド)に対応して検出された。

これら破断片は精製され、標準技術を利用してpET28a(Novagen)発現ベクターのNcol−BamHI部位にクローン化された。遺伝子の注入、その方向性および一体性は、バクテリオファージT7促進物質を使用してプラスミドのDNA配列によって審査された。
ヘリコバクターピロリ組み換えフラボドキシンの発現および精製
E.coli BL21コンピテント細胞が挿入物を含んだpET28aプラスミドで変質あるいはガン化され、カナマイシン(30μg/ml)の存在下、37℃にて10mlのLB培地内において培養された。
培養液は同一条件にて10倍に希釈され、600nmで光学濃度(吸光度)が0.8となるまで成長が継続された。それらはIPTG(最終濃度1mM)で誘導され、それら細胞は3〜4時間、成長が継続された。
その後、培養液は遠心分離され、細胞が採取された。それらは0.15MのNaClで洗浄された。
遠心分離後、それら細胞は50mMのトリスHClバッファ(pH8)、1mMのβメルカプトエタノール、1mMのEDTAおよび1mMのPMSF内で再縣濁された。
それら細胞は超音波サイクルで粉砕され、細胞破断片は遠心分離(1800rpmで45分間、4℃)によって除去された。
得られた未処理抽出物は65%の飽和硫酸アンモニウムで沈殿され、遠心分離された。上澄み液は、65%の硫酸アンモニウムにて50mMのトリス−HCl(pH8)で平衡化処理されたDEAE DE−52セルロースカラム上に装填された。
タンパク質は65%から0%の(NHSOの浸透である逆相勾配で溶離された。
50mMのトリスHClバッファ(pH8)でのタンパク質の透析後、それは同一バッファで平衡化された別DEAE DE−52セルロースカラム上に充填された。
タンパク質は0から1MのNaClの勾配で溶離された。タンパク質の(補因子のない)アポ形態と(補因子を有する)ホロ形態とを分離するには、サンプルをEPLCシステムでMonoQ10/10カラムを通過させることが必要であるものの、このカラム通過後に精製されたタンパク質が得られた。
得られたタンパク質は−20℃で保存された。
阻害試験
ヘリコバクターピロリは、ピルビン酸塩の酸化脱炭酸作用からエネルギーを得るための基本的反応に関与するため、フラボドキシンはヘリコバクターピロリの生存に必須である。この反応では、フラボドキシンはPFOR酵素とFqrB酵素との間で電子を移動させ、電子をNADPに放出する。
以下の実施例では、pBS(KS)ベクターに挿入されたPFOR酵素の遺伝子とpET29bベクターに挿入されたFqrB酵素の遺伝子に対応するcDNAが利用された。
それら両方の組み換え酵素は溶解性フラクションとして発現され、レダクターゼ(nsfAおよびnfsB)が欠落したE.coli JVQ2コンピテント細胞内のPFOR並びにBL21(DE3)コンピテント細胞内のFqrBとして発現される。
これら細胞は37℃のLB培地内で成長し、JVQ2の場合にはアンピシリンに対する抵抗性で選択され、BL21の場合にはカナマイシンに対する抵抗性で選択される。
その後、それらはIPTGで誘導され、3時間の誘導(光密度約0.8)後に−80℃で保存された。
FqrB酵素は、ニッケルアフィニティクロマトグラフィによって精製されるようにアミノ酸配列のN端末にて6個のヒスチジン残基の末尾で発現される。よって、細胞は破砕バッファ(50mMの燐酸ナトリウム、300nMのNaCl(pH8)、10mMのイミダゾール)内で再縣濁され、1分間隔の10秒間の超音波サイクルによって破砕された。
残った細胞は4℃の30分間にわたる10000rpmの遠心分離によって排除され、上澄み液は破砕バッファで既に平衡化されていたニッケルアフィニティカラム(Ni−NTAアガロース、Qiagen)上に充填された。20mM、40mMおよび60mMのイミダゾールで3回の洗浄が実施され、他のタンパク質とのマトリックスの非特定相互作用が排除され、FqrB酵素は250mMのイミダゾールの勾配でカラムから溶離された。
最後に酵素は10%のグリコールでPBS保存バッファ内にて透析された。試験された酵素に対して、それが活性に影響を及ぼさないことが理解されたため、ヒスチジンの末尾は除去されなかった。
PFOR酵素は空気に曝露することで不活性化され(酸素で不活性化)、窒素流が前に通過し、接続部が密封されたシステムで純化された。
細胞は50mMのトリスHCl(pH7.4)と1mMのMgCl、1mMのDTTおよび10%のグリセロールで再縣濁され、1分間隔の10秒間超音波サイクルによって超音波処理され、10分間の4℃における8000rpmの遠心分離で処理され、細胞破断片が除去された。その後にさらに高速(2時間、24000rpm)で遠心分離され、タンパク質の濃度はブラッドフォードアッセイによって決定された。
無処理抽出液はタンパク質濃度が25mg/mlとなるまで以前のバッファで希釈された。タンパク質は0から0.5Mの塩化ナトリウムの勾配のDEAE DE−52カラム内で部分的に精製された。酵素を含有する破断片は、25μlの反応バッファ(500mMのピルビン酸塩、10mMのCoAおよび100mMのベンジルビオロゲン)に加えられた50から100μlの破断片と、無色から青色に変色した酵素を含有する破断片とで成る好気条件の急速エッセイによって所在確認された。
その後に、酵素を含有する破断片は保存バッファ(細胞を再縣濁したものと同一)で透析された。その後の精製ステップは産量を相当程度減少させ、特定酵素活性は不純物によって変化したとは確認されなかったので、これらの試験のために酵素は前述のように部分的に精製された。
ピルビン酸塩、PFOR、フラボドキシン、FqrBおよびNADP(活性アッセイ)の間の電子移動の連続的反応後に、NADPHの形成を伴う340nmの信号の出現が分光的に続いた。その反応混合物は100mMの燐酸カリウム(pH7)、10mMのピルビン酸塩、0.18mMのCoA、1mMのMgCl、0.3mMのNADP、0.09、g/mlのPFOR、10μMのFldおよび0.15μMのFqrBを含んだ。CoAを除外した混合物は嫌気性条件に合わせて特に設計されたキュベットに入れられた。酸素は真空とアルゴンを交互に5分間の交互に流すサイクルによって除去された。反応はそのキュベットの内側の小部屋に保持されていた0.18mMのコエンザイムA(CoA)の追加によって開始された。CoA試薬を加えた後、反応は15分で完了した。どの反応成分の欠落もNADPHの形成には結びつかなかった。すなわち全成分が、ピルビン酸塩とNADPとの間の電子の移動のために不可欠であることが解った。
阻害アッセイは前述の活性アッセイと同一条件下で実施され、一般化学構造式(II)の本発明化合物が50μM、反応キュベットにさらに加えられた。
図1で示すように、阻害はこの濃度でほぼ全面的であった。
阻害物質の結合エネルギー
本発明の阻害物質のヘリコバクターピロリのフラボドキシンに対する特異結合は等温適定熱量計(ITC)により確認された。この技術は標的タンパク質に対するそれぞれの化合物の親和性を測定するだけではなく、結合のエンタルピー成分およびエントロピー成分の貢献度をも測定する。
結合実験は7%のDMSOを含んだ50mMのEPPSバッファ(pH9)内で実施された。300から500μMの濃度の阻害物質が注射器内に入れられ、約20μMのタンパク質が測定セル内に収容された。
阻害物質の親和定数は約1μMであり、(ミクロモル濃度でピルビン酸塩の脱炭酸化を完全に阻害する)阻害アッセイ内で得られた結果と一致した。
特に、一般化学構造式(II)の化合物はフラボドキシンに対する親和定数が3.0(±1.0)μMである。

Claims (12)

  1. 薬剤組成物として利用するための下記の一般化学構造式(I)の化合物またはその塩であって、
    Figure 2010520182
    式中、RとRはO、SまたはNであり、同一または異なっており、
    はOまたはSであり、
    はHまたはアルキル基(C−C)であり、
    はNO、COOR’またはSOR’の基であり、R’は水素原子(H)またはアルキル基(C−C)であり、
    nは0から3である、
    ことを特徴とする化合物。
  2. はアルキル基(C−C)であることを特徴とする請求項1記載の化合物。
  3. はメチルであることを特徴とする請求項1または2に記載の化合物。
  4. は窒素であり、Rは酸素であることを特徴とする請求項1から3のいずれかに記載の化合物。
  5. はNO、COOHまたはSOHであることを特徴とする請求項1から4のいずれかに記載の化合物。
  6. はNOであることを特徴とする請求項1から5のいずれかに記載の化合物。
  7. nは1であることを特徴とする請求項1から6のいずれかに記載の化合物。
  8. 下記の化学構造式(II)の構造を有することを特徴とする請求項1から7のいずれかに記載の化合物。
    Figure 2010520182
  9. 感染症の治療のための薬剤組成物を生成するための請求項1から8のいずれかに記載の化合物を含んでいることを特徴とする薬剤組成物。
  10. 感染症はヘリコバクターによって引き起こされるものであることを特徴とする請求項9記載の薬剤組成物。
  11. 感染症はヘリコバクターピロリによって引き起こされるものであることを特徴とする請求項9または10に記載の薬剤組成物。
  12. 感染症は胃炎、胃十二指腸潰瘍、リンパ腫または胃ガンであることを特徴とする請求項9から11のいずれかに記載の薬剤組成物。
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