JP2010273605A

JP2010273605A - 発酵法による乳酸の製法

Info

Publication number: JP2010273605A
Application number: JP2009129703A
Authority: JP
Inventors: Toshio Suzuki; 利雄鈴木; Atsushi Nakagawa; 篤中川; Tomohiro Nakai; 智洋仲井; Chiho Hitani; 千穂日谷
Original assignee: Daiso Co Ltd
Current assignee: Osaka Soda Co Ltd
Priority date: 2009-05-28
Filing date: 2009-05-28
Publication date: 2010-12-09

Abstract

【課題】安価な培地を用いて、糖質を、残存させることなく効率良く乳酸に転換させることができる方法を提供する。
【解決手段】乳酸生産能を有する微生物を、窒素源と炭素源とを含む培地で培養する工程と、生産された乳酸を回収する工程とを含む乳酸の製造方法であり、培養開始時の培地には、窒素源として魚由来窒素源のみ添加し、乳酸生産速度が低下又は実質的に停止した時点で、それ以外の窒素源を添加する方法。
【選択図】図１

Description

本発明は代替プラスチックとして注目されている乳酸ポリマーの原料として有用な高純度乳酸を微生物利用（発酵法)により工業的に製造する方法に関する。

ラセミ体乳酸は化学的な方法で生産されているが、光学活性の乳酸は発酵法により生産される場合がほとんどである。
乳酸を産生する微生物としては、Lactobacillus delbrueckiiなどの乳酸菌が古くから知られている（特許文献１、非特許文献１）。乳酸菌は、比較的高温での発酵が可能であり、グルコースから理論値に近い乳酸を生産することが知られている。しかし、乳酸菌を用いた工業的な乳酸の生産条件については、余り研究されていない。
また、乳酸は、プラスチックの代替物となりうる乳酸ポリマーの原料として生産するのであるから、工業的に安価に生産することが求められる。しかし、従来、乳酸生産菌を用いて高光学純度の乳酸の生産を行うためには、乳酸原料としてグルコースのような糖質、酵母エキスやペプトンのような窒素源、Tween80などの脂肪酸、及びビタミンなどを含む培養液を用いる必要があった。酵母エキス、ペプトン、ビタミンなどは高価であるため、得られる乳酸も高価なものになってしまう。さらに糖質も、グルコースより安価なデンプンを利用することが望ましい。

また、乳酸を産生する微生物の生育には比較的高い栄養価の培地を必要とするため、発酵後の培養液には培地成分が高濃度に含まれる。従って、発酵後の培養液から乳酸を精製するために多段階の化学的手法を要する。特に、乳酸の主原料である糖質が培養液に残存すると、乳酸をエステル化に供するときに、乳酸のカルボキシル基と糖質のヒドロキシル基との間で副反応が起こり、目的とする乳酸エステルの収率が低下する。また、糖質が残存する培養液を濃縮すると、高濃度の糖質のために濃縮液の粘度が高くなり、濃縮培養液のその後の扱いが困難になる。従って、発酵後の培養液から残存した糖質を除去する必要があり、煩雑でコスト高な方法になる。
なお、鯖の肉の加水分解物が乳酸菌の生育促進や乳製品のカードテンションを低下させることが報告されているが、魚肉乾燥物の加水分解物で効果のあった乳酸菌はStreptcoccus thermophilus, Streptcoccus lactis, Streptococcus cremoris, Lactobacillus helveticusの４種の菌株である（非特許文献２）。

特開昭６２−４４１８８号公報

K. Hofvendahl, Enzyme and Microbial Technology, 26, 87-107 (2000) H. Yuguchi, Japanese Journal of Dairy and Food Science, 33,81-91 (1984)

本発明は、安価な培地を用いて、糖質を、残存させることなく効率良く乳酸に転換させることができる方法を提供することを課題とする。

本発明者らは、上記課題を解決するために研究を重ね、以下の知見を得た。即ち、乳酸生産能を有する微生物を窒素源と炭素源とを含む培地で培養するに当たり、培養開始時の培地に含まれる窒素源は魚由来窒素源のみとし、乳酸生産速度が低下、実質的に停止、又は停止した時点で、それ以外の窒素源を添加すれば、魚由来の安価な窒素源を使用しながら、糖質を、残存させることなく効率良く乳酸に転換させることができる
本発明は、上記知見に基づき、さらに研究を重ねて完成されたものであり、以下の乳酸の製造方法を提供することを課題とする。

項１．乳酸生産能を有する微生物を、窒素源と炭素源とを含む培地で培養する工程と、生産された乳酸を回収する工程とを含む乳酸の製造方法であり、培養開始時の培地には、窒素源として魚由来窒素源のみ添加し、乳酸生産速度が低下又は実質的に停止した時点で、それ以外の窒素源を添加する方法。
項２．培養工程終了時の、培地中の残糖濃度が１０ｍｇ／ｍｌ以下である、項１に記載の方法。
項３．魚由来窒素源がフィッシュミールである項１又は２に記載の方法。
項４．培養開始時の培地中の魚由来窒素源の濃度が、乾燥重量に換算して、１〜７ｗ／ｖ％である項１〜３のいずれかに記載の方法。
項５．魚由来窒素源以外の窒素源の培地中濃度が、乾燥重量に換算して、０．０１〜４ｗ／ｖ％になるように後添加する項１〜４のいずれかに記載の方法。
項６．炭素源が糖質を含み、培養開始時の培地中の糖質濃度が１０〜１２０ｍｇ／ｍｌである項１〜５のいずれかに記載の方法。
項７．炭素源が糖質を含み、糖質が、グルコース、スクロース、及び廃糖蜜からなる群より選ばれる少なくとも１種である項１〜６のいずれかに記載の方法。
項８．乳酸生産能を有する微生物がLactobacillus属に属する乳酸菌である項１〜７の何れかに記載の方法。
項９．乳酸生産能を有する微生物がLactobacillus delbrueckiiである項１〜７の何れかに記載の方法。
項１０．乳酸がＤ-乳酸である項１〜９の何れかに記載の方法。

本発明方法によれば、魚由来窒素源を含む安価な培地を用いながら、糖質の乳酸への転換率を非常に高くすることができる。従って、本発明方法により得られる培養液は、糖質濃度が極めて低くなり、培養後の培養液から糖質を除去する手間を省くことができる。発酵後の乳酸を含む培養液は、そのまま次工程、例えばエステル化工程に供される場合があるが、本発明方法により得られる培養液を用いる場合は、乳酸と残存糖質との副反応が抑制されて、乳酸が副反応に消費されることなく、また、不純物となる副生成物の生成を抑制できるため、これを簡単に除去でき、これらの結果、乳酸エステルの回収率が高くなる。また、発酵後の乳酸を含む培養液は、乳酸を濃縮の上、次工程に供される場合が多いが、培養液の残存糖質濃度が低いため、濃縮しても培養液の粘度が高くなり過ぎることがなく、扱いが容易である。
また、本発明方法によれば、高光学純度の乳酸(特に、Ｄ-乳酸)が得られる。
さらに、本発明方法によれば、乳酸濃度の高い培養液が得られる。即ち、培地中の原料糖質濃度を高くすることができ、その結果、培養後に、高乳酸濃度の培養液を得ることができる。
本発明方法は、特にＤ−乳酸の製造に適している。

実施例５において、魚由来窒素源にそれ以外の窒素源を後添加した場合の、Ｄ-乳酸濃度の推移を示す図である。実施例６において、魚由来窒素源にそれ以外の窒素源を後添加した場合の、Ｄ-乳酸濃度の推移を示す図である。実施例７において、魚由来窒素源にそれ以外の窒素源を後添加した場合の、Ｄ-乳酸濃度の推移を示す図である。

以下、本発明を詳細に説明する。
培地中の窒素源
＜魚由来窒素源＞
魚由来窒素源としては、魚肉；魚の骨、皮、目玉、内臓のような「あら」（魚の魚肉以外の部分）；及び魚の全体；並びにそれらの乾燥物などが挙げられる。中でも、フィッシュミール（魚粉）が好ましい。フィッシュミールは、魚を丸ごと乾燥し、粉砕したものである。魚の種類は特に限定されないが、大量に入手できるイワシ、カツオ、サメ、タラ、ニシン、メンハーデンなどを使用すればよい。
魚由来窒素源は、例えば粉砕してそのまま培地に添加してもよいが、乳酸生産菌の乳酸発酵性能が高くなる点で、タンパク質分解酵素で処理したものを用いることが好ましい。タンパク質分解酵素処理物は、魚肉、あら、魚の全体、及びそれらの乾燥物などを、プロテアーゼで例えば約３０〜８０℃で数時間処理することにより得ることができる。
魚由来窒素源としては、中でも、乳酸生産菌の発酵性能が高くなり、また低価格である点で、フィッシュミールのタンパク質分解酵素処理物が好ましい。タンパク質分解酵素は、公知の酵素を制限なく使用できる。また、アルカリ性プロテアーゼ、酸性プロテアーゼ、中性プロテアーゼの何れでもよく、由来生物種も制限されない。
魚由来窒素源は１種を単独で、又は２種以上を組み合わせて使用できる。

＜その他の窒素源＞
魚由来以外の、即ちその他の窒素源としては、微生物の培養に用いられる公知の窒素源を制限なく使用できる。魚由来以外の窒素源には、非魚動物由来窒素源、微生物由来、及び植物由来窒素源が含まれる。このような窒素源として、例えば、酵母エキス、ペプトン（魚由来ペプトンを除く。非魚動物由来ペプトン、植物由来ペプトンを含む。）、ポリペプトン（魚由来ポリペプトンを除く。牛乳カゼイン由来ポリペプトンのような非魚動物由来ポリペプトン、大豆やエンドウ豆由来ポリペプトンのような植物由来ポリペプトンを含む。）、ビール酵母、肉エキス、大豆加水分解物、エンドウ豆加水分解物、麦加水分解物、カゼイン分解物、カザミノ酸、油粕のようなペプチド又はアミノ酸類；アンモニア、硝酸塩のような無機体窒素類；尿素などが挙げられる。中でも、乳酸生産菌の発酵性能が高くなる点で、ペプチド又はアミノ酸類が好ましく、酵母エキス、非魚動物又は植物由来のポリペプトンがより好ましく、ビール酵母エキス（中でも、日本製薬株式会社製、酵母エキスイーストＤ３）、酵母エキス（中でも、ＫＥＲＲＹ社製、ＨＹ−ｙｅｓｔ、又はアサヒフードアンドヘルスケア株式会社製、ミーストＮ）、大豆由来ポリペプトン（中でも、日本製薬株式会社製、ポリペプトンＮ）、カゼイン由来ポリペプトン（中でも、日本製薬株式会社製、ポリペプトン、又はＤＭＶｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社製、ペプトンＣＥ９０Ｍ）が特に好ましい。
その他の窒素源は１種を単独で、又は２種以上を組み合わせて使用できる。

＜窒素源の比率＞
培養開始時の培地中の魚由来窒素源の濃度は、乾燥重量に換算して、約１〜７ｗ/ｖ％が好ましく、約２〜６ｗ/ｖ％がより好ましく、約３〜５ｗ/ｖ％がさらにより好ましい。上記範囲であれば、高光学純度の乳酸（特に、Ｄ-乳酸）が得られる。また、魚由来窒素源が多すぎて攪拌し難くなるということがない。
また、培地に後添加する、その他の窒素源の培地中の濃度は、乾燥重量に換算して、約０．０１〜４ｗ/ｖ％が好ましく、約０．０５〜３ｗ/ｖ％がより好ましく、約０．１〜２ｗ/ｖ％がさらにより好ましい。上記範囲であれば、安価な魚由来窒素源を用いてコストを抑えながら、高光学純度の乳酸（特に、Ｄ-乳酸）が得られ、培地中の糖質を効率よく乳酸に転換させることができる。
また、種菌は、どのような窒素源を用いた培地で培養したものであってもよい。種菌も魚由来窒素源を含む培地を用いてもよい。

その他の窒素源を添加するタイミングは、培養途中で、乳酸生産速度が低下、実質的に停止し、又は停止した時点とすればよい。乳酸生産速度が低下又は実質的に停止した時点とは、乳酸生産速度が、例えば０．５ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ以下、好ましくは０．３ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ以下、より好ましくは０．１ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ以下となった時点である。
魚由来窒素源だけでは、培地中の糖質の全ては乳酸に変換されず、培地中に糖質が残存しているのに乳酸生産が遅滞又は停止してしまう傾向にあるが、その他の窒素源を添加することにより、乳酸発酵を再開させることができる。
その他の窒素源を後添加する方法には、当該その他窒素源のみ後添加する方法、当該その他窒素源と炭素源とを後添加する方法、当該その他窒素源と窒素源以外の必要成分を含む培地とを後添加する方法、当該窒素源と魚由来窒素源と窒素源以外の必要成分を含む培地とを後添加する方法などが含まれる。

培地中の炭素源
炭素源としては、使用する乳酸生産菌が乳酸発酵できる糖質を用いればよい。糖質としては、グルコース、フルクトースのような単糖類；シュークロース、マルトース、トレハロースのような二糖類；デンプン、セルロース、ヘミセルロース、キシランのような多糖類などが挙げられる。糖質としてデンプン、セルロース、ヘミセルロース、キシランなどの多糖類を用いる場合は、アミラーゼ、セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、エンドキシラナーゼ、キシロシダーゼのような、当該多糖類を分解する酵素で予め処理したものを用いたり、又は多糖類とともに多糖類分解酵素を培地に添加することにより多糖類の分解と並行して乳酸発酵を行うことが好ましく、これにより、効果的に乳酸を産生させることができる。また、これらの糖類を含有する甘藷糖蜜、サトウキビ廃糖蜜のような廃糖蜜なども使用できる。
中でも、乳酸生産菌の発酵性能が高くなる点で、単糖類、二糖類がより好ましく、グルコース、スクロースがさらにより好ましい。また、乳酸の生産性が高くなる点で、サトウキビ廃糖蜜も好ましい。

糖質に加えて、酢酸、フマル酸のような有機酸；エタノールのような一価アルコール類；グリセリンのような多価アルコールなども炭素源として用いることができる。
糖質を含む炭素源は、１種を単独で、又は２種以上を組合わせて使用できる。
培養開始時の培地中の糖質濃度は、約１０〜１２０ｍｇ／ｍｌが好ましく、約３０〜１００ｍｇ／ｍｌがより好ましく、約４０〜８０ｍｇ／ｍｌがさらに好ましい。上記範囲であれば、効率よく乳酸を生産できるとともに、残存糖質量が抑えられる。
炭素源、及び窒素源は、それぞれ、蒸気殺菌、ろ過殺菌、瞬間殺菌など一般的な殺菌方法で殺菌しておき、培地に添加すればよい。

培地のその他の成分
培地は、乳酸発酵用の培地に通常添加される、リン酸塩、硫酸マグネシウムのようなマグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩のような無機塩類；ビタミン類；ポリソルベートのような脂肪酸などを含んでいてよい。

乳酸生産菌
乳酸生産菌、特にＤ-乳酸を生産できる菌としては、ホモ発酵を行う、Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis IAM 12476、Lactobacillus delbrueckii IFO 3534等の菌株が挙げられる。中でも、発酵性能の点で乳酸の工業生産に適しているため、Lactobacillus delbrueckii IFO 3534が好ましい。その他、ヘテロ発酵を行う乳酸菌株として、Leuconostoc pseudomesenteroides JCM 9696等も用いることができる。
ＩＦＯ番号が付された微生物は、独立行政法人製品評価技術基盤機構バイオテクノロジー本部生物遺伝資源部門（ＮＢＲＣ）から入手できる。ＩＡＭ番号およびＪＣＭ番号の付された微生物は、独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンター微生物材料開発室（ＲＩＫＥＮＢＲＣ−ＪＣＭ）より入手できる。

培養条件
乳酸発酵の温度は、使用する乳酸生産菌が生育する温度であればよく、例えば約０〜６０℃が好ましく、約３０〜５０℃がより好ましく、約３５〜４５℃がさらにより好ましい。
発酵中は、乳酸の生成に伴って培地ｐＨが低下する。培地ｐＨが下がりすぎると菌の生育を阻害するため、炭酸カルシウム、水酸化ナトリウム、アンモニアなどのアルカリでｐＨを調整すればよい。中でも、水酸化ナトリウム、アンモニアが好ましい。これは乳酸ナトリウム、乳酸アンモニウムは常温で液状であるため、培養後に、菌体などの不溶性成分と分離し易いからである。また水酸化ナトリウムなどの液状の中和剤を用いれば、中和剤の必要添加量と乳酸の生成量が相関することから、中和剤の添加量から発酵の進行度合いを簡単に知ることができる。さらに水酸化ナトリウムは安価であり、工業生産に有利である。発酵液のｐＨは、使用菌株によって異なるが、約４〜７に調整することが好ましく、約５〜６．５に調整することがより好ましい。
培養開始時又はその後に培地中に予め炭酸カルシウムを約０．１〜１ｗ/ｖ％添加しておき、ｐＨの低下に伴い、さらに異種のアルカリを用いて上記範囲にｐＨ調整することも好ましい。これにより、乳酸生産速度が一層高くなり、効率よく乳酸を製造できる。

培養は、回分培養、半回分培養、連続培養の何れであってもよい。中でも、残存糖質量を低減できる点で回分培養が好ましい。また、糖質のみ培養中に追加する半回分培養、連続培養であってもよい。
培養時間は、使用菌株、培地成分、特に糖質の量などにより異なるが、回分培養の場合、約１〜２０日間が好ましく、約２〜１７日間がより好ましく、約３〜１０日間がさらに好ましい。連続培養、半回分培養を行う場合はこれに限定されない。
本発明方法により、最終的に培地中の残糖濃度を、通常１０ｍｇ／ｍｌ以下、好ましくは５ｍｇ／ｍｌ以下、より好ましくは３ｍｇ／ｍｌ以下、さらに好ましくは１ｍｇ／ｍｌ以下にすることができる。また、条件を選択することにより、残存する糖質の全て、又は殆ど全てを乳酸に転換することができる。

乳酸の回収
培養後の培養液から菌体を除去することにより、乳酸を、乳酸又は乳酸アルカリ塩の形態で回収することができる。また、ｐＨ調整用のアルカリとして、炭酸カルシウムを使用する場合は乳酸カルシウムが生じるが、乳酸カルシウムは水に不溶性であるため、培養液を例えば硫酸で酸性（ｐＨ３．５以下）にし、カルシウムを硫酸カルシウムとして析出させ、菌体と共に除去すればよい。さらに、菌体などの不溶性成分を除去した後、エタノール、又はメタノールで乳酸エステルを生成させ、有機溶媒中に回収することもできる。

以下、本発明を実施例を挙げてより具体的に説明する。
分析方法
(1)乳酸の定量および光学純度の測定
乳酸の定量用試料は、乳酸カルシウムの溶解度を考慮し、試料希釈液０．２ｍｌにエタノール０．８ｍｌを加え生じる沈殿物を遠心分離(１５．０００ｒｐｍ、５ｍｉｎ)して除去し、上清を水で適宜希釈することにより調製した。この試料をHPLC(キラルカラム)で分析した。HPLC条件は下記の通りである。
カラム：Sumichiral OAキラルカラム(Column, Sumichiral OA-5000
(4.6mm ID×15cm)
温度：室温
移動相：2mM Cooper(II)sulfate-5H₂O(249.69) 水-イソプロパノール混液(９８:２)溶液
溶出率：１．０ｍｌ/ｍｉｎ
検出：ＵＶａｔ２５４ｎｍ
鏡像異性体過剰率ee（Enantiomeric excess）は、以下の式により計算した。
ee (%) =([Ｄ-体]-[Ｌ-体])/([Ｄ-体]+[Ｌ-体])×１００
(２)糖の定量
糖はフェノール硫酸法で定量した。グルコースは、グルコース定量キット（グルコースＣIIテストワコー、和光純薬）を用いて定量した。

実施例１（各乳酸菌による通常培地中でのＤ−乳酸の生産率の比較）
２００ｍｌ容の三角フラスコに１％ペプトン、１％酵母エキス、０．４％リン酸水素二カリウムからなる培地１００ｍｌを調製し、１ＮＮａＯＨでｐＨ６．８に調整後、１２１℃、１５分オートクレーブした。別にオートクレーブした５０％グルコース溶液を終濃度５０ｍｇ／ｍｌになるように無菌的に加えて種培養用培地とした。中和剤としてＣａＣＯ_３を４ｇ添加してＰＹＧ培地とした。これに、保存用寒天培地から各菌株を白金耳で植菌し、ロータリーシェイカーにて４０℃で７２時間培養した。この種培養液の１０ｍｌを種培養用培地と同様に調製した本培養用培地に加え、種培養と同条件で４８時間培養した。以下の表１に、試験した菌種とＤ−乳酸の生成濃度、光学純度を示す。

菌種１：Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis IAM 12476
菌種２：Lactobacillus delbrueckii IFO 3534
菌種３：Leuconostoc pseudomesenteroides JCM 9696 (ヘテロ発酵)

実施例２（魚粉末の種類の検討）
窒素源として各種魚粉末を用いてＤ-乳酸を生産し、得られる乳酸濃度と、Ｄ-乳酸の光学純度を比較した。即ち、２００ｍｌ容の三角フラスコに各種魚粉末４ｇ、０．４％Ｋ_２ＨＰＯ_４(ｐＨ７.２)５０ｍｌ、オリエンターゼ２２ＢＦ（エイチビーアイ社製アルカリプロテアーゼ）２００ｍｇを加えて、６０℃で３時間反応させた。反応後、終濃度４％になるようにＣａＣＯ_３を加えて、８５ｍｌになるよう水でメスアップし、１２１℃で１５分間オートクレーブし、別にオートクレーブした５０％(ｗ／ｖ)グルコース溶液１０ｍｌ（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）を加え、魚粉末培地とした。これらの培地に実施例１と同様に調製したLactobacillus delbrueckii IFO 3534株の種培養液を１０ｍｌ加え、４０℃、７２時間培養した。結果を以下の表２に示す。

実施例３（各乳酸菌による魚粉末蛋白分解酵素処理物含有培地中でのＤ−乳酸の生産率の比較）
２００ｍｌ容の三角フラスコにカツオ魚粉末（粉砕した試料）４ｇ、０．４％Ｋ_２ＨＰＯ_４(ｐＨ７．２)５０ｍｌ、オリエンターゼ９０Ｎ（エイチビーアイ社製中性プロテアーゼ）８０ｍｇを加えて、５０℃で３時間反応させた。反応後、終濃度４％になるようにＣａＣＯ_３加えて、８５ｍｌになるよう水でメスアップし、１２１℃で１５分間オートクレーブし、別にオートクレーブした５０％(w/v)グルコース溶液１０ｍｌを加え（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）カツオ魚粉末蛋白分解酵素処理物含有培地（フィッシュミール培地）とした。これらの培地に実施例１と同様に調製した各種菌株の種培養液を１５ｍｌ加え、Lactobacillus delbrueckii IFO 3534は４０℃で４８時間培養した。結果を以下の表３に示す。各種菌株とも、カツオ魚粉末蛋白分解酵素処理物含有培地を用いてＤ−乳酸を生成することができた。

実施例４（魚由来窒素源とそれ以外の窒素源との併用）
培地中のグルコースの仕込み濃度を１２０ｍｇ／ｍｌにした以外は、実施例２と同様にして、２００ｍｌ容の三角フラスコに魚粉末蛋白分解酵素分解物含有培地（ニシンフィッシュミール培地）１００ｍｌを調製し、Lactobacillus delbrueckii IFO 3534株を培養した。但し、培養時間は４８時間とした。
培養４８時間後の培養液にポリペプトンＮ（日本製薬株式会社製）およびＨＹ−ｙｅｓｔ（ＫＥＲＲＹ社製）を各１％ずつ添加し、さらに１２０時間培養を継続した(合計１６８時間)。培地中の魚粉末蛋白分解酵素分解物の濃度は４％であり、ポリペプトンＮおよびＨＹ−ｙｅｓｔの合計濃度は２％である。
以下の表４に、魚粉末蛋白分解酵素分解物含有培地を用いて４８時間培養した場合、及びさらにポリペプトンＮおよびＨＹ−ｙｅｓｔを添加して合計１６８時間培養した場合の、培養後の培地の濁度、Ｄ-乳酸濃度、グルコース濃度、Ｄ-乳酸の光学純度を示す。表４から、ポリペプトンＮおよびＨＹ−ｙｅｓｔをフィッシュミール培地に加えることにより、グルコースのほぼ全量を消費することができ、高濃度のＤ-乳酸が得られることが分かる。

実施例５（魚由来窒素源とそれ以外の窒素源との併用）
ミツワ製５０Ｌ容のジャーファーメンターにカツオ魚粉末（丸石株式会社製）１．２ｋｇ、０．４％Ｋ_２ＨＰＯ_４（ｐＨ７．２）１５ＬオリエンターゼＮ（エイチビーアイ社製中性プロテアーゼ）２４ｇを加えて、５０℃で３時間（回転数１００ｒｐｍ）反応させた。反応後、２７Ｌになるように水でメスアップし、１２１℃で３０分間蒸気滅菌し、別途オートクレーブ滅菌した５０％グルコース溶液３Ｌ（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）を加えてカツオ培地とした。

このカツオ培地に実施例１と同様に調製したLactobacillus delbrueckii IFO 3534株の種培養液を３００ｍｌ加えて培養を行った。培養条件は攪拌回転数８０ｒｐｍ、培養温度４０℃、通気は５％ｖｖｍ量を気相のみに行い、２５％ＮａＯＨ水溶液を用いてｐＨ６．０に制御した。培養開始１７０時間で、Ｄ−乳酸の生産が停止したため（Ｄ-乳酸生産速度が約０ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ）、ポリペプトン（日本製薬株式会社製）と酵母エキスイーストＤ３（日本製薬株式会社製）を各０．１％ずつ添加した。培地中の魚粉末蛋白分解酵素分解物の濃度は４％であり、ポリペプトンと酵母エキスイーストＤ３の合計濃度は０．２％である。
培養液中のＤ-乳酸濃度を経時的に測定した結果を以下の表５、及び図１に示す。表５、及び図１から明らかなように、一旦停止したＤ-乳酸の発酵が、ポリペプトン、及び酵母エキスイーストＤ３の添加により再開された。また、培地中の糖質を実質的に全て消費してＤ-乳酸に転換させることができた。

実施例６（魚由来窒素源とそれ以外の窒素源との併用（工業スケールでの検討;２０００Ｌ））
小松川化工機製３０００Ｌ容のジャーファーメンターにカツオ魚粉末（丸石株式会社製）８０Ｋｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４４ｋｇ、オリエンターゼ９０Ｎ（エイチビーアイ社製中性プロテアーゼ）１．６ｋｇを加えて、５０℃で３時間反応させた。反応後、１０００Ｌになるように水でメスアップし、１２１℃で３０分間蒸気滅菌し、別途滅菌した２５％グルコース溶液４００Ｌを加えて（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）カツオ培地とした。カツオ培地に実施例１と同様に調製したLactobacillus delbrueckii IFO 3534株の種培養液を２０Ｌ加えて培養を行った。培養条件は攪拌回転数６５ｒｐｍ、培養温度４０℃、通気は５％ｖｖｍ量を気相のみに行い、２５％ＮａＯＨ水溶液を用いてｐＨ６．０に制御した。培養開始２３０時間でＤ−乳酸の生産が停止したため（Ｄ-乳酸生産速度が約０ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ）、ポリペプトン（日本製薬株式会社製）と酵母エキスイーストＤ３（日本製薬株式会社製）を各０．１％ずつ添加した。培地中の魚粉末蛋白分解酵素分解物の濃度は４％であり、ポリペプトンと酵母エキスイーストＤ３の合計濃度は０．２％である。
培養液中のＤ-乳酸濃度を経時的に測定した結果を以下の表６、及び図２に示す。表６、及び図２から明らかなように、一旦停止したＤ-乳酸の発酵が、ポリペプトン、及び酵母エキスイーストＤ３の添加により再開された。また、培地中の糖質を全て消費してＤ-乳酸に転換させることができた。

実施例７（魚由来窒素源とそれ以外の窒素源との併用（工業スケールでの検討；３,０００Ｌ））
５０００Ｌ容の培養槽にニシンフィッシュミール粉末（エクアドル産）１２０ｋｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４６ｋｇ、オリエンターゼ２２ＢＦ（エイチビーアイ社製アルカリ性プロテアーゼ）６ｋｇを加えて、６０℃で３時間反応させた。反応後、２０００Ｌになるように水でメスアップし、１２１℃で３０分間蒸気滅菌し、別途滅菌した１５０ｍｇ/ｍｌグルコース溶液１０００Ｌを加えて（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）魚粉培地とした。魚粉培地に実施例１と同様に調製したLactobacillus delbrueckii IFO 3534株の種培養液を３０Ｌ加えて培養を行った。培養条件は攪拌回転数８０ｒｐｍ、培養温度４０℃、通気は５％ｖｖｍ量を気相のみに行い、２５％ＮａＯＨ水溶液を用いてｐＨ６．０に制御した。培養開始４８時間で、Ｄ-乳酸の生産速度が低下したため（Ｄ-乳酸生産速度が約０．１ｍｇ／ｍｌ／ｈｒ以下）、カゼインペプトン（ＣＥ９０Ｍ）（ＤＭＶｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社製）と酵母エキス（ミーストＮ）（アサヒフードアンドヘルスケア株式会社製）を各０．１％添加した。培地中の魚粉末蛋白分解酵素分解物の濃度は４％であり、カゼインペプトン（ＣＥ９０Ｍ）と酵母エキス（ミーストＮ）の合計濃度は０．２％である。
培養液中のＤ-乳酸濃度を経時的に測定した結果を以下の表７及び図３に示す。表７及び図３から明らかなように、一旦遅滞したＤ-乳酸の発酵が、カゼインペプトン（ＣＥ９０Ｍ）及び酵母エキス（ミーストＮ）の添加により再開された。また、培地中の糖質を全て消費してＤ-乳酸に転換させて、高濃度のＤ−乳酸液が得られた。また、非常に光学純度が高いＤ-乳酸が得られた。

比較例１（魚由来窒素源のみを用いた発酵（２０００Ｌ））
小松川化工機製３０００Ｌ容のジャーファーメンターにニシンフィッシュミール粉末（エクアドル産）８０Ｋｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４４ｋｇ、オリエンターゼ２２ＢＦ（エイチビーアイ社製アルカリプロテアーゼ）４ｋｇ、水１０００Ｌを加えて、６０℃で３時間反応させた。反応後、合計１６００Ｌになるように水でメスアップし、１２１℃で３０分間蒸気滅菌し、別途滅菌した２５％グルコース溶液４００Ｌを加えて（培地中のグルコースの仕込み濃度５０ｍｇ／ｍｌ）フィッシュミール培地とした。フィッシュミール培地に実施例１と同様に調製したLactobacillus delbrueckii IFO 3534株の種培養液を２０Ｌ加えて培養を行った。培養条件は攪拌回転数６５ｒｐｍ、培養温度４０℃、通気は５％ｖｖｍ量を気相のみに行い、２５％ＮａＯＨ水溶液を用いてｐＨ６．０に制御した。培養開始１１０時間でＤ−乳酸の生産が停止したため発酵を終了した。培養液をジャーファーメンターからタンクへと移液し、７２時間静置した。
培養液中のＤ-乳酸濃度を経時的に測定した結果を以下の表８に示す。表８から明らかなように、生成したＤ-乳酸の光学純度およびＤ−乳酸の濃度が、発酵終了時（１１０時間）から静置後（１８２時間）にかけて顕著に低下した。

本発明方法によれば、ポリ乳酸原料となる乳酸、特にＤ-乳酸を安価に効率よく生産できるため、ポリ乳酸を低コストで工業生産できるようになった。

Claims

乳酸生産能を有する微生物を、窒素源と炭素源とを含む培地で培養する工程と、生産された乳酸を回収する工程とを含む乳酸の製造方法であり、培養開始時の培地には、窒素源として魚由来窒素源のみ添加し、乳酸生産速度が低下又は実質的に停止した時点で、それ以外の窒素源を添加する方法。
培養工程終了時の、培地中の残糖濃度が１０ｍｇ／ｍｌ以下である、請求項１に記載の方法。
魚由来窒素源がフィッシュミールである請求項１又は２に記載の方法。
培養開始時の培地中の魚由来窒素源の濃度が、乾燥重量に換算して、１〜７ｗ／ｖ％である請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
魚由来窒素源以外の窒素源の培地中濃度が、乾燥重量に換算して、０．０１〜４ｗ／ｖ％になるように後添加する請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
炭素源が糖質を含み、培養開始時の培地中の糖質濃度が１０〜１２０ｍｇ／ｍｌである請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
炭素源が糖質を含み、糖質が、グルコース、スクロース、及び廃糖蜜からなる群より選ばれる少なくとも１種である請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
乳酸生産能を有する微生物がLactobacillus属に属する乳酸菌である請求項１〜７の何れかに記載の方法。
乳酸生産能を有する微生物がLactobacillus delbrueckiiである請求項１〜７の何れかに記載の方法。
乳酸がＤ-乳酸である請求項１〜９の何れかに記載の方法。