JP2009506776A - コーヒー中のカロテノイド及びアポカロテノイド生合成経路の酵素をコードするポリヌクレオチド - Google Patents
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Abstract
【選択図】 なし
Description
本発明は、農業バイオテクノロジーの分野に関する。具体的には、本発明は、カロテノイド及びアポカロテノイド合成に関与する酵素をコードするコーヒー植物由来のポリヌクレオチド、コーヒーカロテノイド遺伝子由来のプロモーター配列、並びにこれらのポリヌクレオチド、ポリペプチド、及びプロモーターを、コーヒー豆の風味、芳香、及び他の特徴の遺伝子制御及び操作に使用する方法を特徴とする。
特許、公開された出願及び学術論文を含めた様々な刊行物が本明細書全体にわたって引用されている。これらの各刊行物は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれている。本明細書内で完全には示されていない引用文献は、本明細書の末尾に認めることができる。
本明細書に記載の発明は、コーヒー植物中でのカロテノイド及びアポカロテノイド生合成に関与する酵素をコードする遺伝子、そのコードされたポリペプチド、コーヒーカロテノイド及びアポカロテノイドの生合成経路酵素遺伝子由来のプロモーター配列、並びにこれらのポリヌクレオチド、ポリペプチド及びプロモーターを、コーヒー豆の風味、芳香、及び他の特徴の遺伝子制御及び操作に使用する方法を特徴とする。
定義:
本発明の生体分子及び他の態様に関係する様々な用語を、本明細書及び特許請求の範囲全体にわたって使用する。
その態様の1つでは、本発明は、カロテノイド及びアポカロテノイド生合成経路に関与する様々なタンパク質をコードするコーヒー由来の核酸分子を特徴とする。カロテノイド及びアポカロテノイド生合成経路を構成するタンパク質をコードする核酸分子の代表的な例は、幼葉並びに発生の様々な段階で採取した実の粒及び果皮組織から単離されたRNAを用いて作製されたいくつかのコフィアカネフォラ(Coffea canephora)(ロブスタ)cDNAライブラリの47,000を超える発現配列タグ(EST)のデータベースから同定された。重複するESTを同定し、それを完全なコード配列を含むユニジーン(unigene)(コンティグ)へと「クラスター化」した。NCBI(米国国立バイオテクノロジー情報センター(National Center for Biotechnology Information))の重複のないタンパク質データベースに対する個々の各配列のBLAST検索を行うことによってユニジーン配列に注釈を付けた。
2つの一般的な方法によって本発明の核酸分子を調製することができる:(1)その分子は適当なヌクレオチド三リン酸から合成することができ、又は(2)その分子は生物学的供給源から単離することができる。どちらの方法も、当技術分野で周知のプロトコルを利用する。
Tm=81.5℃+16.6Log[Na+]+0.41(%G+C)−0.63(%ホルムアミド)−600/二重鎖中の塩基対数
本発明によれば、カロテノイド及びアポカロテノイド生合成経路を構成するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、或いはオリゴヌクレオチド、又はセンス若しくはアンチセンス方向のその相同体、類似体若しくは変異体、或いは細胞又は組織特異的プロモーター、特に本明細書に記載のカロテノイド又はアポカロテノイドをコードする遺伝子のプロモーターの制御下にあるレポーター遺伝子及び他の構築物、並びに他の制御性配列を含有する、トランスジェニック宿主細胞を産生するベクター及びキットも特徴とする。適切な宿主細胞には、それだけに限らないが、植物細胞、細菌細胞、酵母及び他の真菌細胞、昆虫細胞並びに哺乳動物細胞がある。多様なこれらの宿主細胞を形質転換するベクターは当業者に周知である。そのベクターには、それだけに限らないが、プラスミド、ファージミド、コスミド、バキュロウイルス、バクミド、細菌人工染色体(BAC)、酵母人工染色体(YAC)、並びに他の細菌、酵母及びウイルスベクターがある。典型的には、トランスジェニック宿主細胞を産生するキットは、1つ又は複数の適当なベクター及びベクターを使用してトランスジェニック細胞を産生するための使用説明書を含有する。キットは、いくつか例を挙げると、細胞を培養する培地、細胞の形質転換を行う試薬、及び遺伝子発現についてトランスジェニック細胞を試験する試薬などの1つ又は複数のさらなる構成要素をさらに含んでよい。
コーヒー植物中でタンパク質産物が発現することができ、その結果、そのタンパク質が光合成、並びにタンパク質が発現しているコーヒー植物の豆から最終的に生産されるコーヒー飲料又はコーヒー製品の風味及び/又は芳香の増強において役割を果たすことができるいくつかの方法のいずれか1つで本発明の核酸及びポリペプチドを使用することができる。同様に、ポリペプチドから合成されたカロテノイド、アポカロテノイド、及び他のそのような植物化学産物が光合成、並びにカロテノイド及びアポカロテノイドを含有するコーヒー植物の豆から最終的に生産されるコーヒー飲料又はコーヒー製品の風味及び/又は芳香の増強において役割を果たすことができるいくつかの方法のいずれか1つで本発明のポリペプチドを使用することができる。
以下の実施例のための材料及び方法
植物材料。生育の種々の段階にある新しく収穫した根、若葉、茎、花及び果実を、温室条件下(25℃、70RH)で生育したコフィアアラビカ(Coffea arabica) L.cv.Caturra T−2308及びコフィアカネフォラ var.BP409、並びにインドネシア、東ジャワの畑で成長したコフィアカネフォラ BP−409から収穫した。生育段階は、次のように定義する:小緑色果実(SG)、大緑色果実(LG)、黄色果実(Y)及び赤色果実(R)。新鮮な組織を、液体窒素中で迅速に凍結させ、RNA抽出に用いるまで−80℃にて保存した。
PDSについてESTデータベースを検索すると、対応する配列は見つからなかった。しかし、897bpの部分長cDNAを、黄色ロブスタ粒から、縮重プライマーDegPDS2 FWR(5’−GGTGGAAAGRTAGCTGCATGGA−3’)(配列番号46)及びDegPDS4 REV(5’−TGTTACRGACATGTCAGCATACAC−3’)(配列番号47)を用いるRT−PCRにより回収し、これは、LePDS(CAA55078)、CaPDS(CAA48195)及びAtPDS(AAA20109)の相同分子種に見出される保存ペプチド配列GGKVAAW(配列番号48)及びVYADMSVT(配列番号49)に対応した。cDNAを作製するために、PCRを次のようにして行った:94℃にて3分間、続いて94℃にて1分間;60〜50℃にて30秒間(温度はサイクルあたり1℃低下させる);72℃にて2分間を10サイクル、続いて94℃にて1分間;50℃にて30秒間;72℃にて2分間をさらに25サイクル。
−80℃にて貯蔵した植物組織試料を、粉末にすりつぶし、この粉末から、Lepelley et al.により記載された方法(これはHQT/HCT参照である)を用いて全RNAを抽出した。DNAを除去するために、試料を、「Qiagen RNase−Free DNase」キットを製造者の指示書に従って用いてDNアーゼで処理した。すべてのRNA試料を、ホルムアルデヒドアガロースゲル電気泳動により分析した。リボソームRNAのバンドを、エチジウムブロミド染色により視覚化した。
全ての配列は、5’から3’で示す。
(1)MGBプローブは、5’末端にて蛍光レポーター色素である6−カルボキシフルオレセイン(FAM)で、及び3’末端にて消光色素である6−カルボキシ−テトラメチル−ローダミン(TAMRA)で標識した。
(2)RPL39プローブは、5’末端にて蛍光レポーター色素であるVICで、及び3’末端にて消光剤であるTAMRAで標識した。
いくつかのコードされたタンパク質の機能性を、E.coliのカロテノイド蓄積株で、完全ORF配列を含む対応するcDNAの同時発現により試験した。全長Coffea CCD1を、プライマーCCD1FWR(5’−CACCATGGGTAGGCAAGAAGGAGAAG−3’)(配列番号38)及びCCD1REV(5’−ACTCTCCAGGACATGGTCCAGC−3’)(配列番号39)を用いるRT−PCRにより粒から回収し、ゲートウェイベクターpENTR/D(Invitrogen)にクローニングしてpENTR−CcCCD1を作製した。クローンpENTR−CcCCD1の配列は、以前のin−silico配列のものと同一であった。CCD1のORFを、製造者(Invitrogen)により記載されるようにして組換えにより、ゲートウェイ細菌発現ベクターpDEST17(Invitrogen)に移して、pDEST17−CcCCD1を作製した。
カロテノイドを分析し定量するために用いた方法は、Fraser et al.(2000)に記載されている。典型的には、粒組織を粉末にすりつぶし、凍結乾燥させ、10〜50mgの分割量を、メタノール:クロロホルム(容量で1:3)を用いて抽出し、50mM Tris−HCl pH7.0(2容量)に対して分配した。水相を、2回再抽出した。HPLCによる分離を、ノースカロライナ、ウィルミントンのYMCから購入したC30逆相カラム(250×4.6mm)で行った。用いた移動相は、メタノール(A)、0.2%酢酸アンモニウムを含有した、水/メタノール(容量で20/80)(B)及びtert−メチルブチルエーテル(C)であった。用いた勾配は、均一濃度で12分間の95%A/5%B、12分での80%A/5%B/及び15%Cへのステップ、続いて30分間の30%A/5%B/65%Cへの直線勾配であった(Fraser et al.,2002)。
コフィアカネフォラからのカロテノイド生合成経路遺伝子の単離及び同定
カロテノイド生合成経路の遺伝子及びカロテノイド由来のアポカロテノイドの形成に関わる遺伝子についての最長の入手可能なcDNAを表すESTを適切なライブラリから単離して、配列決定した。完全に配列決定したcDNAを、次いで、既知の配列との相同性について分析し、以下のように命名した:フィトエンシンターゼ(PSY)(cccs30w7e6)、β−カロテンヒドロキシラーゼ(BCH)(cccs46w21b8)、リコペンε−シクラーゼ(LεCY)(cccp8f16)、ゼアキサンチンエポキシダーゼ(ZEP)(cccp129g15)、ビオラキサンチンデエポキシダーゼ(VDE)(cccp13a9)、及びカロテノイド開裂ジオキシゲナーゼ1(CCD1)(cccwc22w2a6)。カロテノイドの貯蔵に関わるフィブリリン(FIB)構造タンパク質(cccs16w15e14)、及び色素体ターミナルオキシダーゼの相同分子種、カロテノイド不飽和化の補因子(PTOX;cccl24o10)及び推定上のリコペンε−シクラーゼ(LεCY)(cccp8f16)をコードするさらなるESTも同定した。関連するESTの数及び分布を、表2に示す。
PSY:フィトエンシンターゼ;PTOX:色素体ターミナルオキシダーゼ;βCHY:β−カロテンヒドロキシラーゼ;LεCY:リコペンε−シクラーゼ;ZEP:ゼアキサンチンエポキシダーゼ;VDE:ビオラキサンチンデエポキシダーゼ;NCED3:9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼ;CCD1:カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼ1;FIB:フィブリリン;PDH:フィトエンデヒドロゲナーゼ様。
最初の真のカロテノイドは、ゲラニルゲラニルジホスフェート2分子のフィトエンへの縮合により形成され、酵素フィトエンシンターゼ(PSY;EC2.5.1.32)により触媒される。PSYをコードする部分長cDNAクローン(cccs30w7e6)を、コーネル コフィアカネフォラ ESTデータベースで同定した。このクローンはORFの5’末端を欠損しているので、ゲノム歩行を用いて欠損している258bpの5’配列を回収した。ネステッドプライマーGWPSY1(5’−ACTTCACCGCAGCGATCATAAGCTTCAC−3’)(配列番号26)及びGWPSY2(5’−TTCACGTCCCAATCTTCTCGAGATCTC−3’)(配列番号27)を用いて、約1800bp長の断片を回収し、pCR4−TOPOにクローニングしてpCR4−GWPSY1を作製し、配列決定した。配列のin“silico”での組立により、PSYの全長ORFが明らかになった。表3に示すように、CcPSYの導き出されたアミノ酸配列は、Capsicum annuum PSY1(X68017;Romer et al,1993)に対して76%の同一性、Lycopersion esculentum PSY1(X60441;Ray et al.,1992)に対して74%の同一性、及びシロイヌナズナ PSY(NM_121729)に対して70%の同一性を有すると決定された。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
フィトエンは、酵素フィトエンデサチュラーゼ(PDS;EC 1.3.99)及びζ−カロテンデサチュラーゼ(ZDS;EC 1.14.99.30)により触媒される4つの連続する不飽和化ステップを受け得る(Bartley et al.,1992, Hugueney et at.,1992;Albrecht et al.,1995)。これらの不飽和化ステップは、補因子として色素体ターミナルオキシダーゼ(PTOX)の存在を必要とする。
PDS又はZDSについて、対応する配列はESTデータベースで検出されなかった。しかし、フィトエンデヒドロゲナーゼ様(PDH)タンパク質をコードする2つの部分長クローン(PDH、cccl31g22;PDH2、cccs46w13n19)が検出された。コーヒーのPDH1は、シロイヌナズナ PDH様と72%の相同性、及びPhycomyces blakesleeanus PDHタンパク質と23%の相同性を有することが見出された。Phycomyces blakesleeanus PDHタンパク質は、フィトエンに4つの二重結合を導入してリコペンを形成でき、よって、PhycomycesにおいてPDS及びZDSを置換できる(Arrach et al.,2001;図1を参照されたい)。このタンパク質は、1又は複数のコーヒー組織で同様の機能を行うと考えられている。
PDSについてのクローンがコーヒーのESTライブラリで見つかったので、PDSのcDNAクローンを新たに作製する実験を行った。これらの実験により、黄色ロブスタ粒から作製したcDNAを用いるRT−PCRを用いて、897bpのPDSの部分cDNAを作製した。RT−PCRは、LePDS(CAA55078)、CaPDS(CAA48195)及びAtPDS(AAA20109)で見出される保存ペプチド配列GGKVAAW(配列番号48)及びVYADMSVT(配列番号49)から設計した縮重プライマーDegPDS2 FWR(5’−GGTGGAAAGRTAGCTGCATGGA−3’)(配列番号46)及びDegPDS4 REV(5’−TGTTACRGACATGTCAGCATACAC−3’)(配列番号47)を用いて行った。897bpのPCR産物をpCR4−TOPOにクローニングして、pCR4−PDSを作製した。Genewalkerキットを用いて、PDSの部分コード配列を、ネステッドプライマーGWPDS1(5’−ATCATTGAATGCTCCTTCCACTGCAAC−3’)(配列番号50)及びGWPDS2(5’−TCATTAATTCCTAGTTCTCCAAACAGG−3’)(配列番号51)を用いて伸長して、2066bpの断片を作製した。この断片をpCR4−TOPOにクローニングして、pCR4−GWPDS#5を作製した。得られたクローンを配列決定して、追加の225bpのコード配列と、部分オープンリーディングフレームの122bp位、215bp位及び272bp位にそれぞれ616bp、373bp及び609bpの3つのイントロンを含む1077bpの部分ORFとが得られた。図4Bは、プラスミドpCR4−CcPDS及びpCR4−GWPDS#5から導き出されるコフィアカネフォラ(CcPDS)の部分PDSアミノ酸配列を示す。部分ORFを、GenBank非重複タンパク質データベース中の最も相同性が高い配列と整列させた。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、コフィアカネフォラからの部分PDS配列及び相同分子種からの対応する領域を用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
ZDSについてのクローンがコーヒーのESTライブラリで見つからなかったので、ZDSのcDNAクローンを新たに作製する実験を行った。これらの実験により、黄色ロブスタ粒から作製したcDNAを用いるRT−PCRを用いて、472bpのZDSの部分cDNAを作製した。RT−PCRは、LeZDS(AF195507)、CaZDS(X89897)及びAtZDS(U38550)相同分子種の保存ペプチド配列LAGMSTAV(配列番号54)及びMWDPVAYAL(配列番号55)から設計した非縮重プライマーDegZDS1 FWR(5’−TTGCAGGCATGTCGACTGCTG−3’)(配列番号52)及びDegZDS3 REV(5’−GTGGGATCCTGTTGCATATGCTCT−3’)(配列番号53)を用いて行った。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、コフィアカネフォラからの部分ZDS配列及び相同分子種からの対応する領域を用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
フィトエン不飽和化の補因子であるPTOX(cccl24o10)をコードする全長cDNAクローン(Carol et al.,1999;Josse et al.,2000;概説としてKuntz,2004を参照されたい)を、C.カネフォラのESTデータベースで検出した。最も相同性が高いGenBank配列とのPTOXのアラインメントにより、トマト(AF177980)に対して60%の相同性、コショウ(AF177981)に対して61%の相同性、及びシロイヌナズナ(AJ004881)PTOXタンパク質に対して46%の相同性が明らかになった(表6を参照されたい)。C末端アミノ酸配列を、NCBIデータベース中の3つの最も近縁の配列と整列させた。アラインメントは、図4Dに示す。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
酸化されたカロテノイドは、2つの連続するヒドロキシル化ステップにより形成される。β−カロテンは、酵素β−カロテンヒドロキシラーゼ(βCHY;EC 1.14.13−;Sandmann,1994)の作用によりゼアキサンチンに変換され、α−カロテンは、βCHYとε−カロテンヒドロキシラーゼ(εCHY)との作用によりルテインに変換される。εCHYは、最近クローニングされたばかりであり(Tian et al.,2004;Tian and DellaPenna,2004;概説としてInoue,2004を参照されたい)、ルテイン欠損変異体(lut1)が特徴決定されている(Pogson et al.,1996;Tian and DellaPenna,2001)。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
リコペンは、2つの酵素リコペンε−シクラーゼ(LεCY;Ronen et al.,1999)とリコペンβ−シクラーゼ(LβCY)との活性により、α−カロテン(β,ε−カロテン、図1E)及びβ−カロテンに変換される。LεCYは、1つのε環を導入し、LβCYは、1つのβ環を導入して、α−カロテンを形成する。LεCYの活性も、1つのε環と1つの閉環されていないプサイ末端とを有する中間体であるδ−カロテン(ε,Ψ−カロテン)の形成をもたらす。Lactuca sativa(レタス)のような植物においては、LεCYは、炭素鎖の末端に2つのε環構造を導入して、ε−カロテン(ε,ε−カロテン;Cunningham and Gantt 2001)の形成をもたらす(図1F)。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、コフィアカネフォラからの部分LεCY配列及び相同分子種からの対応する領域を用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
ゼアキサンチンのヒドロキシル化されたβ環は、環境光条件の変化への色素体の適合に関わる可逆的サイクルにおいて、酵素ゼアキサンチンエポキシダーゼ(ZEP;Marin et al.,1996;Bouvier et al.,1996)によりエポキシ化され、ビオラキサンチンデエポキシダーゼ(VDE)の活性により脱エポキシ化される。VDE(cccp13a9)及びZEP(cccl29g15)の両方についての部分cDNAクローンは、C.カネフォラ ESTデータベースで同定された。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、コフィアカネフォラからの部分ZEP配列及び相同分子種からの対応する領域を用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
ネオキサンチンからの植物ホルモンであるアブシジン酸の合成に関わる9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼ(NCED3;cccwc22w23o20)の部分クローン(Tan et al.1997)が、C.カネフォラ ESTデータベースで検出された。シロイヌナズナでは、5つのcDNA、NCED2(NM117945)、NCED3(NM112304)、NCED5(NM102749)、NCED6(NM113327)及びNCED9(NM106486)がこの9−シス開裂反応を担う。ここで同定されるC.カネフォラのcDNAは、AtNCED3(NM112304)に対して最も高いオルソロジーを示し、よってCcNCED3と命名した。ABAは、NCED3の作用により形成されるカロテノイド由来アポカロテノイドである(Tan et al.,1997)。NCEDは、11,12−カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼであり、これは、種々の植物食品の風味及び芳香に関わる種々のカロテノイド由来アポカロテノイドの形成と類似の反応で、ネオキサンチンを開裂して、ABAの前駆体であるザントキシンを形成する。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼ1(CCD1)は、β−イオノン、α−イオノンゲラニルアセトン及びプソイドイオノンのin vivoでの形成に関わることが示されている(Simkin et al.,2004b;図2を参照されたい)。この遺伝子は、ネオキサンチンからのC13グラスホッパーケトンの形成におけるその役割のために、特に興味がある(図3)。いずれの特定の理論又は作用の機構にも結び付けられないが、グラスホッパーケトンは、グリーンコーヒー及び焙煎コーヒーの重要な風味揮発性物質であるβ−ダマセノン及び3−ヒドロキシ−β−ダマセノンの形成のための前駆体と仮定されている(Suzuki et al.,2002)(図2)。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
植物フィブリリン又は色素体脂質関連タンパク質とよばれるタンパク質は、ラン藻類から高等植物まで(Laizet et al.,2004)、そして後者の場合は多様な組織に多様な種々の脂質構造と関連して広まっている。いずれの特定の理論又は作用の機構にも結び付けられないが、フィブリリンタンパク質は、水性環境での脂質構造の安定化に関わると考えられている(Vishnevetsky et al.,1999)。さらに、その中でフィブリリンが見出されたリポタンパク質構造は、カロテノイドを(多少は)含有し得る。タバコ葉緑体でのフィブリリンの過剰発現は、カロテノイドの隔離に関わるリポタンパク質構造であるプラスト顆粒の数の増加を導くことが報告された(Rey et al.,2000)。よって、フィブリリンは、カロテノイドの「沈降」の改変を導き得るだろう。このことは、Li et al.(2001)の結果により支持され、彼らは、カロテノイドの過剰蓄積が、Brassica oleraceaのOr変異体において、カロテン生成遺伝子の発現又は酵素の豊富さの変化よりもむしろ、沈着構造の増殖に関連するだろうと報告した。同様に、コーヒー粒でのフィブリリンタンパク質の過剰発現は、粒の生育の間のカロテノイド貯蔵を導くだろう。
1.同一性は、デフォルトパラメータを用いるclustal Wで、全長ORFを用いて個別に算出した。
2.NP=未公表
コーヒー粒中での転写産物の発現
TaqManアッセイを用いて、PSY、PDS、ZDS、PTOX、LεCY、βCHY、ZEP、VDE、CCD1、NCED3及びFIB1についての転写産物の相対量を、コフィアカネフォラ及びC.アラビカからのコーヒー粒中で定量した。
E.coliでのCCD1及びβCHYの活性
組換えCcCCD1タンパク質(pDEST17−CcCCD1)を発現するプラスミドを、異なるカロテノイド化合物を蓄積するように予め工学的に改変したE.coli株に導入した(Cunningham et al.1994; Cunningham et al.1996; Sun et al.1996)。これらの株で蓄積するカロテノイドは、細胞に色を与え、色の変化又は消失は、導入された新しい遺伝子産物によりカロテノイドが改変されたことを示す。2つの組換えタンパク質のそれぞれがリコペン、β−カロテン又はゼアキサンチンを産生する細胞で発現したときに、色の消失が観察された(図6B)。これらの知見は、Simkin et al.(2004b)により以前に報告された結果と矛盾しない。これらの結果により、コーヒーのCCD1酵素が、一連の直鎖状及び環状のカロテノイド基質を異化でき、与えられるカロテノイド基質に応じて一連のアポカロテノイドの形成をもたらすことが確認される。
コーヒーの未熟及び成熟緑色粒のカロテノイドの分析
成熟アラビカ及びロブスタコーヒー粒が、カロテノイドであるルテイン及びゼアキサンチンを低レベルで含有することが最近示されている(Degenhardt et al.,2004)。いくつかの種子では、カロテノイドのレベルが成熟の進行とともに減じられることが知られているので(Bonham−Smith et al.,2006)、我々は、未熟なアラビカ及びロブスタの粒で見出されるカロテノイドのレベルを調べ、これらを同じ品種からの成熟粒で見出されるレベルと比較した。得られたHPLCプロファイルを図8に示し、定量されたレベルを表14に示す。
数字は、図8でのピークを表す。値は、3〜4回の決定の平均である。標準偏差を括弧内に示す。60mgの試料を、材料及び方法に記載するようにして抽出した。ND=検出せず
プロモーターの単離及びベクターの構築
コフィアカネフォラからのNCED3の5’上流領域を、Genomewalkerキット(BD Biosciences)を用いて回収した。簡単に、2.5μgのコフィアカネフォラ BP409のDNAを、DraI、EcoRV、PvuI及びStuIで別々に切断して、Genome WalkバンクDL1、DL2、DL3及びDL4をそれぞれ作製した。精製後、0.5μgのDNAを、製造者のプロトコルに従ってGenome Walkerアダプタ(25μM)に連結した。その後のPCR反応物は、1×緩衝液及び5mM MgCl2、それぞれ200μMのdATP、dCTP、dGTP及びdTTP、並びに1単位のLA Taqポリメラーゼ(Takara、Combrex Bio、ベルギー)、並びに200nMのプライマーGWNCED3F(5’−AAGCAGAAGCAGTCAGGGACTTCTACC−3’)(配列番号40)及び200nMのGenomeWalkerアダプタプライマーAP1(5’−GTAATACGACTCACTATAGGGC−3’;Genomewalkerキット)(配列番号28)を含んでいた。反応混合物を94℃にて10分間、続いて94℃にて25秒間/72℃にて4分間の7増幅サイクル、次いで94℃にて25秒間/67℃にて4分間の32増幅サイクルでインキュベートした。PCR反応物を1/200に希釈し、200nMのネステッドプライマーGWNCED3R(5’−TATCCAGTACACCGAATCTTGACACC−3’)(配列番号41)及び200nMのネステッドGenome WalkerアダプタプライマーAP2(5’−ACTATAGGGCACGCGTGGT−3’;Genomewalkerキット)(配列番号29)を用いる2回目のPCR反応に用いた。ネステッドPCRは、94℃にて10分間、続いて94℃にて25秒間/72℃にて4分間の5増幅サイクル、次いで94℃にて25秒間/67℃にて4分間の22増幅サイクルでインキュベートした。DL2から1075bpのゲノム断片を回収し、pCR4−TOPOベクター(Invitrogen)にクローニングして、pCR4−GWNCED#4を作製した。このクローンの挿入断片を配列決定して、NCED3のATG開始コドンの上流の1104bpの配列が得られた(配列番号25)。
コーヒーの葉のカロテノイド含量
HPLCによるコーヒーの葉の抽出物の分析は、C.カネフォラがC.アラビカよりも高い量のカロテノイドを含有することを示した。各カロテノイドの定量(表15)は、カロテノイドであるネオキサンチン、ビオラキサンチン及びβ−カロテン(約12〜13%β−カロテン、14〜16%ビオラキサンチン及び13〜14%ネオキサンチン)の2つの種での相対分布が類似することを明らかにした。表15からの最も著しい知見の1つは、ルテイン生合成の中間体であり、シロイヌナズナを含むほとんどの種からの葉では通常蓄積しない(図9C)著しい量のα−カロテン(ピーク4:図9)の存在である。ピークのα−カロテンとしての同一性を確かめるために、ニンジンの根から抽出されたα−カロテン標準物質のものとスペクトル及び保持時間を比較し、同一であることを見出した。C.アラビカ及びC.カネフォラでのα−カロテンレベルの比較は、C.アラビカの葉がより高い相対α−カロテンレベル(カロテノイドの合計のそれぞれ12%及び3.5%)を含有することを示した。対照的に、C.カネフォラは、より高い相対ルテインレベルを有した(C.アラビカでの48%に比較して54%)。より高いα−カロテンレベルは、C.アラビカにおいてC.カネフォラよりも著しく高いことが示された、より高いレベルのLεCY転写産物に関連し得る。さらに、C.カネフォラの葉は、C.アラビカからのものよりも高い相対ルテインレベルを有したので、そしてα−カロテンはルテインの直接の前駆体であるので、C.カネフォラの葉でのより高いルテイン含量は、より低いレベルのα−カロテンに直接関連し得、逆に、C.アラビカでのより低いルテイン含量は、より高いα−カロテン含量に関連する。
値は、3〜4回の決定の平均である。標準偏差を括弧内に示す。60mgの試料を、材料及び方法に記載するようにして抽出した。数字は、図7でのピークを表す。
カロテノイド生合成及び干ばつストレス条件下での貯蔵に関わるコーヒー遺伝子の定量発現解析
我々は、長期の干ばつストレスに起因する3年齢のC.アラビカ(カティモール)植物の葉でのカロテノイド遺伝子発現の変化を評価した。この実験のために、葉の試料を、十分に水を与えた2つの対照植物と、並行して水を与えなかった2つの植物とから種々の時期(T=0、3、4、5及び6週)で採取した。試料のそれぞれからRNAを調製した。水不足試料について、葉の組織からの全RNAを、RNeasy Plant Mini Kit(Qiagen、カリフォルニア州、バレンシア)を用いて単離した。RNA試料を、RNアーゼフリーのDNアーゼ(Qiagen)で処理し、キアゲンミニカラムを用いて精製した。全植物RNAの濃度及び純度は、分光分析により決定した。定量は、各実験のすべてのRNA試料について、ホルムアルデヒドアガロースゲル電気泳動及びエチジウムブロミド染色によるrRNAバンドの目視検査により確認した。cDNAは、約2μgの全RNAから、Superscript II Reverse Transcriptase Kit(Invitrogen、カリフォルニア州Carlsbad)のプロトコルに従ってポリdTプライマーを用いて調製した。
Agrawal,G.K., Yamazaki,M., Kobayashi,M., Hirochika,R., Miyao,A. and Hirochika,H.(2001) Screening of the rice viviparous mutants generated by endogenous retrotransposon Tos17 insertion. Tagging of a zeaxanthin epoxidase gene and a novel ostatc gene. Plant Physiol. 125, 1248−1257.
Akiyama M, Murakami K, Ohtani N, Iwatsuki K, Sotoyama K, Wada A, Tokuno K, Iwabuchi H, Tanaka K. (2003). Analysis of volatile compounds released during the grinding of roasted coffee beans using solid−phase microextraction. J Agric Food Chem. 51(7): 1961−1969.
Albrecht M, Klein A, Hugueney P, Sandmann G, Kuntz M. (1995). Molecular cloning and functional expression in E.coli of a novel plant enzyme mediating z−carotene desaturation. FEBS Lett. 372: 199−202.
Al−Babili S, Hugueney P, Schledz,M, Frohnmeyer H, Laule O, Beyer P. (2000). Identification of a novel gene encoding for neoxanthin synthase from Sola tuberosum. FEBS Lett 485: 168−172
Al−Babili S, Ye X, Lucca P, Beyer P. (2001). Biosynthesis of beta−carotene (provitamin A) in rice endosperm achieved by genetic engineering. Novartis Found Symp. 236: 219−232.
Arrach N, Fernandez−Martin R, Cerda−Olmedo E, Avalos J. (2001). A single gene for lycopene cyclase, phytoene synthase, and regulation of carotene biosynthesis in Phycomyces. PNAS 98(4):1687−1692.
Aust O, Stahl W, Sies H, Tronnier H, Heinrich U (2005). Supplementation with tomato−based products increases lycopene, phytofluene, and Phytoene levels in human serum and protects against UV−light induced erythema. Int. J. Vitam. Nutr. Res. 75:54−60.
Baldwin EA, Nisperos−Carriedo MO, Baker R, Scott, JW. (1991). Quantitative analysis of flavor parameters of six Florida tomato cultivars (Lycopersicon esculentum). J. Agri, Food. Chem. 39: 1135−1140.
Baldwin EA, Scott JW, Shewmaker CK, Schuch W. (2000). Flavor trivia and tomato aroma: biochemistry and possible mechanisms for control of important aroma components. Hort. Sci. 35(6): 1013−1021.
Bartley GE, Viitanen PV, Bacot KO, Scolnik PA. (1992). A tomato gene expressed during fruit ripening encodes an enzyme of the carotenoid biosynthesis pathway. J. Biol. Chem. 267: 5036−5039.
Bartley,GE and Ishida,BK (1999). Zeta−carotene desaturase from tomato. Plant Physiol. 121:1383.
Baumlein H, Nagy I, Villarroel R, Inze D, Wobus U. 1992. Cis−analysis of a seed protein gene promoter: the conservative RY repeat CATGCATG within the legumin box is essential for tissue−specific expression of a legumin gene. Plant J. 2: 233−239.
Beyer P, Al−Babili S, Ye X, Lucca P, Schaub P, Welsch R, Potrykus I. (2002). Golden Rice: introducing the beta−carotene biosynthesis pathway into rice endosperm by genetic engineering to defeat vitamin A deficiency. J Nutr. 132(3):506S−510S.
Boelsma E, Hendriks HFJ, Roza L. (2001) Nutritional skin care: health effects of micronutrients and fatty acids. Am. J. Clin. Nutr. 73:853−864.
Bouvier F, d’Harlingue A, Hugueney P, Marin E, Marion−Poll A, Camara B. (1996). Xanthophyll biosynthesis. Cloning, expression, functional reconstitution, and regulation of beta−cyclohexenyl carotenoid epoxidase from pepper (Capsicum annuum). J Biol Chem. 271(46):28861−28867.
Bouvier F, Dogbo O, Camara B. (2003b). Biosynthesis of the food and cosmetic plant pigment bixin. Science 300: 289−291.
Bouvier F, Suire C, Mutterer J, Camara B. (2003a). Oxidative remodeling of chromoplast carotenoids: identification of a carotenoid cleavage dioxygenase CsCCD and CsZCD genes involved in Crocus secondary metabolic biogenesis. Plant Cell 15: 47−62.
Bouvier F, Isner JC, Dogbo O, Camara B. (2005). Oxidative tailoring of carotenoids: a prospect towards novel functions in plants. Trends Plant Sci. 10(4):187−194.
Bramley PM. (2000). Is lycopene beneficial to human health? Phytochem.54(3):233−236.
Britton G. (1988). Biosynthesis of carotenoids. In: Goodwin TW (ed), Plant pigments. Academic Press, London, pp 133−182.
Britton, G. (1995). Structure and properties of carotenoids in relation to function. FASEB J., 9:1551−1558.
Bugos RC, Hieber AD, Yamamoto HY. (1998). Xanthophyll cycle enzymes are members of the lipocalin family, the first identified from plants Biol Chem. 273(25):15321−15324.
Burbidge A, Grieve T, Terry C, Corlett J, Thompson A, Taylor I. (1997). Structure and expression of a cDNA encoding zeaxanthin epoxidase, isolated from a wilt−related tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) J. Exp. Bot. 48, 1749−1750.
Burden RS, Dawson, GW, Taylor HF. (1972). Synthesis and plant growth inhibitory properties of (±)−O−methylxanthoxin. Phytochem. 11: 2295−2299.
Buttery R, Ling L. (1993). Volatiles of tomato fruit and plant parts: relationship and biogenesis. Pp 23−34. In: Teranishi R, Buttery R, Sugisawa H, (eds) Bioactive volatile compounds from plants. ACS Books. Washington DC.
Buttery RG, Seifert RM, Guadagni DG, Ling LC. (1971). Characterisation of additional components of tomato. J. Agri, Food. Chem. 19: 524−529.
Buttery RG, Teranishi R, Ling LC, Flath R, Stern D. (1988). Quantitative studies on origins of fresh tomato aroma volatiles. J. Agric. Food Chem. 36: 1247−1250.
Buttery RG, Teranishi R, Ling LC, Turnbaugh JG (1990). Quantitative and sensory studies on tomato paste volatiles. J. Agric. Food Chem. 38: 336−340.
Buttery RG, Teranishi R, Ling LC. (1987). Fresh tomato aroma volatiles: a quantitative study. J. Agri, Food. Chem. 35: 540−544.
Carol P, Stevenson D, Bisanz C, Breitenbach J, Sandmann G, Mache R, Coupland G, Kuntz M. (1999). Mutations in the Arabidopsis gene IMMUTANS cause a variegated phenotype by inactivating a chloroplast terminal oxidase associated with phytoene desaturation. Plant Cell, 11: 57−68.
Clarke R, Vitzthum O. Coffee : Recent Developments. Blackwell Science 2001.
Comhaire FH, Mahmoud A. (2003). The role of food supplements in the treatment of the infertile man. Reprod Biomed Online. 7(4):385−391.
Cunningham FX, Gantt E. (1998). Genes and enzymes of carotenoid biosynthesis in plants. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 49: 557−583.
Cunningham FX, Gantt E. (2001). One ring or two? Determination of ring number in carotenoids by lycopene epsilon−cyclases. PNAS 98(5):2905−2910.
Cunningham FX Jr, Gantt E. (2005). A study in scarlet: enzymes of ketocarotenoid biosynthesis in the flowers of Adonis aestivalis. Plant J. 41(3):478−492.
Cunningham FX, Pogson B, McDonald KA, DellaPenna D, Grant E. (1996). Functional analysis of the beta and epsilon lycopene cyclase enzymes of Arabidopsis reveals a mechanism for control of cyclic carotenoid formation. Plant Cell 8(9): 1613−1626.
Cunningham FX, Sun Z, Chamovitz D, Hirschberg C. (1994). Molecular Structure and Enzymatic Function of Lycopene Cyclase from the Cyanobacterium Synechococcus sp Strain PCC7942. Plant Cell, 6: 1107−1121.
Czerny M, Grosch W. (2000). Potent odorants of raw Arabica coffee. Their changes during roasting. J Agric Food Chem. 48(3):868−872.
Czerny M, Mayer F, Grosch W. (1999). Sensory study on the character impact odorants of roasted arabica coffee J Agric Food Chem. 47(2): 695−699
Demmig−Adams B, Gilmore AM, Adams, WW. (1996). In vivo functions of carotenoids in higher plants. FASEB J. 10:403−412.
Deruere J, Bouvier F, Steppuhn J, Klien A, Camara B, Kuntz M. (1994a). Structures and expression of two plant genes encoding chromoplast−specific proteins: occurrence of partially spliced transcripts. Biochem. Biophys. Res. Com. 199(3): 1144−1150.
Deruere J, Romer S, d’Harlingue A, Backhaus RA, Kuntz M, Camara B. (1994b). Fibril assembly and carotenoid overaccumulation in chromoplasts: a model for supramolecular lipoprotein structures. Plant Cell 6: 119−133.
Di Mascio, P., M. E. Murphy, and H. Sies. (1991) Antioxidant defense systems: the role of carotenoids, tocopherols, and thiols. Am. J. Clin. Nutr., 53:194S−200S.
da Silva EA, Toorop PE, van Aelst AC, Hilhorst HW. (2004). Abscisic acid controls embryo growth potential and endosperm cap weakening during coffee (Coffea arabica cv. Rubi) seed germination. Planta. 220(2):251−261.
Eugster CH, Hurlimann H, Leuenberger HJ. (1969). Crocetindialdehyd und Crocetinhalbaldehyd als Blutenfarbstoffe von Jacquinia angustifolia. Helv. Chim. Acta 52: 89−90.
Fay LB, Newton A, Simian H, Robert F, Douce D, Hancock P, Green M, Blank, I. (2003). Potential of gas chromatography−orthogonal acceleration time−of−flight mass spectrometry (GC−oaTOFMS in flavor research. J. Agric. Food Chem. 51: 2708−2713.
Fraser PD, Bramley PM. (2004). The biosynthesis and nutritional uses of carotenoids. Prog Lipid Res. 43(3): 228−265.
Fraser PD, Pinto ME, Holloway DE, Bramley PM. (2000). Technical advance: application of high−performance liquid chromatography with photodiode array detection to the metabolic profiling of plant isoprenoids. Plant J. 24: 551−558.
Fray RG, Wallace A, Fraser PD, Valero D, Hedden P, Bramley PM, Grierson D. (1995). Constitutive expression of a fruit phytoene synthase gene in transgenic tomatoes causes dwarfism by redirecting metabolites from the gibberellin pathway. Plant J 8: 693−701.
Gaziano JM, Hennekens CH (1993). The role of beta−carotene in the prevention of cardiovascular disease. Ann. NY Acad. Sci. 691:148−155.
Hieber AD, Bugos RC, Yamamoto HY. (2000). Plant lipocalins: violaxanthin de−epoxidase and zeaxanthin epoxidase. Biochim Biophys Acta. 1482(1−2): 84−91.
Hirschberg J. Molecular Biology of Carotenoid Biosynthesis (in) Britton,G., Liaaen−Jensen,S. and Pfander,H. (Eds.); CAROTENOIDS VOL 3: BIOSYNTHESIS AND METABOLISM: 149−194; Birkhaeuser Verlag, Basel, Boston, Berlin (1998).
Hsieh K, Huang AHC. (2004). Endoplastic reticulum, oleosins, and oils in seeds and tapetum cells. Plant Physiol 136: 3427−3434.
Huang AHC. (1996). Oleosins and oil bodies in seeds and other organs. Plant Physiol 110(4): 1055−1061.
Hugueney P, Romer S, Kuntz M, Camara B. (1992). Characterisation and molecular cloning of a flavoprotein catalysing the synthesis of phytofluene and zeta−carotene in Capsicum chromoplasts. Eur. J. Biochem. 209: 399−407.
Inoue K (2004). Carotenoid hydroxylation−−P450 finally! Trends Plant Sci. 9(11):515−517.
Josse EM, Simkin AJ, Gaffe J, Laboure AM, Kuntz M, Carol P. (2000). A plastid terminal oxidase associated with carotenoid desaturation during chromoplast differentiation. Plant Physiol. 123: 1427−1436.
Josse EM, Jalcaraz JP, Laboure AM, Kuntz M. (2003). In vitro characterisation of plastid terminal oxidase (PTOX). Eur. J. Biochem. 270: 3787−3794.
Jyonouchi H, Zhang L, Tomita Y. (1993). Studies of immunomodulating actions of carotenoids. II. Astaxanthin enhances in vitro antibody production to T−dependent antigens without facilitating polyclonal B−cell activation. Nutr Cancer.19(3): 269−280.
Kato−Noguchi H. (1992). An endogenous growth inhibitor, 3−hydroxy−β−ionone. I. Its role in light−induced growth inhibition of hypocotyls of Phaseolus vulgaris. Physiol. Plant. 86: 583−586
Kato−Noguchi H, Kosemura S, Yamamura S, Hasegawa, K. (1993). A growth inhibitor, R−(−)−3−hydroxy−β−ionone, from light−grown shoots of a dwarf cultivar of Phaseolus vulgaris. Phytochem. 33: 553−555.
Kiefer C, Hessel S, Lampert JM, Vogt K, Lederer MO, Breithaupt DE, von Lintig J. (2001). Identification and characterization of a mammalian enzyme catalyzing the asymmetric oxidative cleavage of provitamin A. J Biol Chem. 276(17): 14110−14116.
Kjeldsen F, Christensen LP, Edelenbos M. (2003). Changes in volatile compounds of carrots (Daucus carota L.) during refrigerated and frozen storage. J. Agric. Food Chem. 51: 5400−5407.
Kuntz M. (2004). Plastid terminal oxidase and its biological significance. Planta 218: 896−899.
Laizet Y, Pontier D, Mache R, Kuntz M. (2004). Subfamily organization and phylogenetic origin of genes encoding plastid lipid−associated proteins of the fibrillin type. J. Genome Sci. Tech. 3(1): 19−28.
Li, L., Paolillo, DJ., Parthasarathy, MV., DiMuzio, EM., Garvin, DF. (2001). A novel gene mutation that confers abnormal patterns of −carotene accumulation in cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis). Plant J. 26(1): 59−67.
Lin C, Mueller LA, McCarthy J, Petiard V, Crouzillat D, Tanksley S (2005) Generation and analysis of a coffee EST database: Deductions about gene repertoire, expression and evolution. (Submitted).
Lindgren LO, Stalberg KG, Hoglund AS. (2003). Seed−specific overexpression of an endogenous Arabidopsis phytoene synthase gene results in delayed germination and increased levels of carotenoids, chlorophyll, and abscisic acid. Plant Physiol.132(2): 779−785.
Lutz A, Winterhalter P. (1992) Biooxidative cleavage of carotenoids − important route to physiological active−plant constituents. Tetrahedron Lett. 33: 5169−5172.
Marin E, Nussaume L, Quesada A, Gonneau M, Sotta B, Hugueney P, Frey A, Marion−Poll A. (1996). Molecular identification of zeaxanthin epoxidase of Nicotiana plumbaginifolia, a gene involved in abscisic acid biosynthesis and corresponding to the ABA locus of Arabidopsis thaliana. EMBO J. 15(10): 2331−2342.
Mahattanatawee K, Rouseff R, Valim MF, Naim M. (2005). Identification and aroma impact of norisoprenoids in orange juice. J Agric Food Chem. 53(2): 393−397.
Matthews−Roth MM. (1993). Carotenoids in erythropoietic protoporphyria and other photosensitivity diseases. Ann. NY Acad. Sci. 691: 127−138.
Mayne ST. (1996). Beta−carotene, carotenoids, and disease prevention in humans. FASEB J. 10: 690−701.
Mbeguie−A−Mbeguie D, Fils−Lycaon B (2000). Molecular cloning and nucleotide sequences of PA−ZE (Accession No. AF071888) and PA−ZE2 (Accession No. AF159948), two cDNAs from apricot fruit coding for a zeaxanthin epoxidase. Gene expression during fruit ripening. Plant Physiol. 122 (1): 291.
Moehs,CP, Tian,L., Osteryoung,KW and Dellapenna,D. (2001) Analysis of carotenoid biosynthetic gene expression during marigold petal development. Plant Mol. Biol. 45: 281−293.
Nagao A. (2004) Oxidative conversion of carotenoids to retinoids and other products J. Nutr. 134(1): 237S−240S
Neill SJ, Burnett EC, Desikan R, Hancock JT. (1998) Cloning of a wilt−responsive cDNA from Arabidopsis thaliana suspension culture cDNA library that encodes a putative 9−cic−epoxy−carotenoid dioxygenase. J. Exp. Bot. 49: 1893−1894.
Ortiz A, Ortiz A, Vega FE, Posada F. (2004). Volatile composition of coffee berries at different stages of ripeness and their possible attraction to the coffee berry borer Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae). J Agric Food Chem. 52(19): 5914−5918.
Paine JA, Shipton CA, Chaggar S, Howells RM, Kennedy MJ, Vernon G, Wright SY, Hinchliffe E, Adams JL, Silverstone AL, Drake R. (2005). Improving the nutritional value of Golden Rice through increased pro−vitamin A content. Nature Biotechnol. 23(4): 482−487.
Parry AD, Horgan R. (1991) Carotenoids and abscisic acid (ABA) biosynthesis in higher plants. Physiol. Plant. 82: 320−326.
Pecker,I., Chamovitz,D., Linden,H., Sandmann,G. and Hirschberg,J. (1992) A single polypeptide catalyzing the conversion of phytoene to zeta−carotene is transcriptionally regulated during tomato fruit ripening. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89: 4962−4966.
Pogson B, McDonald KA, Truong M, Britton G, DellaPenna D. (1996). Arabidopsis carotenoid mutants demonstrate that lutein is not essential for photosynthesis in higher plants. Plant Cell 8(9): 1627−1639.
Ravanello MP, Ke D, Alvarez J, Huang B, Shewmaker CK. (2003). Coordinate expression of multiple bacterial carotenoid genes in canola leading to altered carotenoid production. Metab Eng. 5(4): 255−263.
Ray J, Moureau P, Bird C, Bird A, Grierson D, Maunders M, Truesdale M, Bramley P, Schuch W. (1992). Cloning and characterization of a gene involved in phytoene synthesis from tomato. Plant Mol. Biol. 19: 401−404.
Rey P, Gillet B, Romer S, Eymery F, Massimino J, Peltier G, Kuntz M. (2000). Over−expression of a pepper plastid lipid−associated protein in tobacco leads to changes in plastid ultrastructure and plant development upon stress. Plant J. 21(5): 483−494.
Richman AS, Gijzen M, Starratt AlN, Yang Z, Brandle JE. (1998). Diterpene synthesis in Stevia rebaudiana: recruitment and up−regulation of key enzymes from the gibberellin biosynthetic pathway. Plant J. 19(4):411−421.
Romer S, Hugueney P, Bouvier F, Camara B, Kuntz M. (1993). Expression of the genes encoding the early carotenoid biosynthetic enzymes in Capsicum annuum. Biochem. Biophys. Research Commun. 196: 1414−1421.
Ronen G, Cohen M, Zamir D, Hirschberg J. (1999). Regulation of carotenoid biosynthesis during tomato fruit development: expression of the gene for lycopene epsilon−cyclase is down regulated during ripening and is elevated in the mutant Delta. Plant J. 17: 341−351.
Sandmann, G. (1994). Carotenoid biosynthesis in micro−organisms and plants. Eur. J. Biochem. 223: 7−24.
Sato,S., Nakamura,Y., Kaneko,T., Katoh,T., Asamizu,E. and Tabata,S. (2000). Structural analysis of Arabidopsis thaliana chromosome 3. I. Sequence features of the regions of 4,504,864 bp covered by sixty P1 and TAC clones. DNA Res. 7 (2): 131−135
Schwartz SH, Qin X, Zeevaart JAD (2001). Characterization of a novel carotenoid cleavage dioxygenase from plants. J. Biol. Chem. 276: 25208−25211.
Scolnik, PA and Bartley, GE (1995) Nucleotide sequence of zeta−carotene desaturase from Arabidopsis. Plant Physiol. 109: 1499.
Seddon JM, Ajani UA, Sperduto RD, Hiller R, Blair N, Burton TC, Farber MD, Garoudos ES, Haller J, Miller DT, Yannuzzi LA, Willet W. (1994). Dietary carotenoids, vitamins A, C, and E, and advanced age−related macular degeneration. J. Am. Med. Assoc. 272: 1413−1420.
Shewmaker CK, Sheehy JA, Daley M, Colburn S, Ke DY. (1999). Seed−specific overexpression of phytoene synthase: increase in carotenoids and other metabolic effects. Plant J. 20(4): 401−412.
Sies H, Stahl W. (2004). Carotenoids and UV protection. Photochem. Photobiol. Sci. 8: 749−752.
Simkin AJ, Underwood BA, Auldridge M, Loucas HM, Shibuya K, Clark DG, Klee HJ. (2004a). Circadian regulation of the PhCCD1 carotenoid dioxygenase controls emission of β−ionone, a fragrance volatile of petunia flowers. Plant Physiol. 136(3): 3504−3514.
Simkin AJ, Schwartz SH, Auldridge M, Taylor MG, Klee HJ. (2004b). The tomato carotenoid cleavage dioxygenase 1 genes contribute to the formation of the flavour volatiles β−ionone, pseudoionone and geranylacetone. Plant J. 40(6): 882−894.
Simkin AJ, Laizet Y, Kuntz M. (2004c). Plastid lipid associated proteins of the fibrillin family: structure, localisation, function and gene expression. Rec Res Dev Biochem 5: 307−316.
Soar,C.J., Speirs,J., Maffei,S.M. and Loveys,B.R. (2004). Gradients in stomatal conductance, xylem sap ABA and bulk leaf ABA along canes of Vitis vinifera cv Shiraz: biochemical and molecular biological evidence indicating their source. Funct. Plant Biol. 31, 659−669.
Spanier AM, Flores M, Toldra F, Aristoy MC, Bett KL, Bystricky P, Bland JM (2004). Meat flavor: contribution of proteins and peptides to the flavor of beef. Adv Exp Med Biol. 542: 33−49.
Stalberg K, Lindgren O, Ek B, Hoglund AS. (2003). Synthesis of ketocarotenoids in the seed of Arabidopsis thaliana. Plant J. 36: 771−779.
Stevens AA. (1970). Relationship between polyene−carotene content and volatile compound composition of tomatoes. J. Am. Soc. Hort. Sci. 95: 461−464.
Suzuki M, Matsumoto S, Mizoguchi M, Hirata S, Takagi K, Hashimoto I, Yamano Y, Ito M, Fleischmann P, Winterhalter P, Morita T, Watanabe N. (2002). Identification of (3S, 9R)− and (3S, 9S)−megastigma−6,7−dien−3,5,9−triol 9−O−beta−D−glucopyranosides as damascenone progenitors in the flowers of Rosa damascena Mill. Biosci Biotechnol Biochem. 66(12): 2692−2697.
Tan BC, Schwartz SH, Zeevaart JAD, McCarty DR. (1997) Genetic control of abscisic acid biosynthesis in maize. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94: 12235−12240.
Tan BC, Joseph LM, Deng WT, Liu L, Li QB, Cline K, McCarty DR. (2003) Molecular characterisation of the 9−cis epoxycarotenoid dioxygenase gene family. Plant J. 35: 44−56.
Tanaka T, Morishita Y, Suzui M, Kojima T, Okumura A, Mori H. Chemoprevention of mouse urinary bladder carcinogenesis by the naturally occurring carotenoid astaxanthin Carcinogenesis, Vol 15, 15−19, Copyright (c) 1994 by Oxford University Press.
Tandon JS, Katti SB, Ruedi P, Eugster CH. (1979) Crocetin−dialdehyde from Coleus forskolii Briq., Labiatae. Helv. Chim. Acta 274: 2706−2707.
Taylor A (1993). Cataract: relationship between nutrition and oxidation. J. Am. Coll. Nutr. 12: 138−146.
Thompson,A.J., Thorne,E.T., Burbridge,A., Jackson,A.C., Sharp,R.E. and Taylor,I.B. (2004). complementation of notabilis, an abscisic acid−deficient mutant of tomato: importance of sequence context and utility of partial complementation. Plant Cell Environ. 27 (4): 459−471.
Tian L, DellaPenna D. (2001). Characterization of a second carotenoid beta−hydroxylase gene from Arabidopsis and its relationship to the LUT1 locus. Plant Mol Biol. 47(3): 379−388.
Tian L, DellaPenna D. (2004). Progress in understanding the origin and functions of carotenoid hydroxylases in plants. Arch Biochem Biophys. ;430(1):22−29.
Tian L, Musetti V, Kim J, Magallanes−Lundback M, DellaPenna D. (2004). The Arabidopsis LUT1 locus encodes a member of the cytochrome p450 family that is required for carotenoid epsilon−ring hydroxylation activity. PNAS 6;101(1): 402−407.
Variyar PS, Ahmad R, Bhat R, Niyas Z, Sharma A. (2003). Flavoring components of raw monsooned arabica coffee and their changes during radiation processing. J Agric Food Chem. 51(27): 7945−7950.
von Lintig J, Vogt K. (2000). Filling the gap in vitamin A research. Molecular identification of an enzyme cleaving beta−carotene to retinal. J. Biol. Chem. 275(16): 11915−11920.
Watzl B, Bub A, Brandstetter BR, Rechkemmer G. (1999). Modulation of human T−lymphocyte functions by the consumption of carotenoid−rich vegetables. Br. J. Nutr. 82: 383−389.
Winterhalter P, Schreier P. (1995) The generation of norisoprenoid volatiles in starfruit (Averrhoa carambola L.): A review. Food Rev. International 11: pp. 237−254.
Winterhalter P, Rouseff R. (2002). Carotenoid−derived aroma compounds. (Washington DC: American Chemical Society).
Vishnevetsky M, Ovadis M, Vainstein A. (1999). Carotenoid sequestration in plants: the role of carotenoid−associated proteins. Trends Plant Sci. 4(6): 232−235.
Claims (86)
- フィトエンシンターゼ、フィトエンデサチュラーゼ、色素体ターミナルオキシダーゼ(plastid terminal oxidase)、β−カロテンヒドロキシラーゼ、リコペンε−シクラーゼ、ゼアキサンチンエピオキシダーゼ(zeaxanthine epioxidase)、ビオラキサンチンデエポキシダーゼ、9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼ、カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼ、フィブリリン、フィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素−1及びゼータカロテンデサチュラーゼから選択される、カロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードするコード配列を有する、コーヒー(コーヒー種(Coffea spp.))から単離された核酸分子。
- コード配列がフィトエンシンターゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- フィトエンシンターゼが配列番号13と76%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項2に記載の核酸分子。
- フィトエンシンターゼが配列番号13を含むアミノ酸配列を有する、請求項3に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号1を含む、請求項2に記載の核酸分子。
- コード配列がフィトエンデサチュラーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- フィトエンデサチュラーゼが配列番号14と76%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項6に記載の核酸分子。
- フィトエンデサチュラーゼが配列番号14を含むアミノ酸配列を有する、請求項7に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号2を含む、請求項6に記載の核酸分子。
- コード配列が色素体ターミナルオキシダーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- 色素体ターミナルオキシダーゼが配列番号15と61%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項10に記載の核酸分子。
- 色素体ターミナルオキシダーゼが配列番号15を含むアミノ酸配列を有する、請求項11に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号3を含む、請求項10に記載の核酸分子。
- コード配列がβ−カロテンヒドロキシラーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- β−カロテンヒドロキシラーゼが配列番号16と73%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項14に記載の核酸分子。
- 色素体ターミナルオキシダーゼが配列番号16を含むアミノ酸配列を有する、請求項15に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号4を含む、請求項14に記載の核酸分子。
- コード配列がリコペンε−シクラーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- リコペンε−シクラーゼが配列番号17と86%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項18に記載の核酸分子。
- リコペンε−シクラーゼが配列番号17を含むアミノ酸配列を有する、請求項19に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号5を含む、請求項18に記載の核酸分子。
- コード配列がゼアキサンチンエピオキシダーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- ゼアキサンチンエピオキシダーゼが配列番号18と72%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項22に記載の核酸分子。
- ゼアキサンチンエピオキシダーゼが配列番号18を含むアミノ酸配列を有する、請求項23に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号6を含む、請求項22に記載の核酸分子。
- コード配列がビオラキサンチンデエポキシダーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- ビオラキサンチンデエポキシダーゼが配列番号19と74%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項26に記載の核酸分子。
- ビオラキサンチンデエポキシダーゼが配列番号19を含むアミノ酸配列を有する、請求項27に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号7を含む、請求項26に記載の核酸分子。
- コード配列が9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- 9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼが配列番号20と75%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項30に記載の核酸分子。
- 9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼが配列番号20を含むアミノ酸配列を有する、請求項31に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号8を含む、請求項30に記載の核酸分子。
- コード配列がカロテノイド開裂ジオキシゲナーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼが配列番号21と83%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項34に記載の核酸分子。
- カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼが配列番号21を含むアミノ酸配列を有する、請求項35に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号9を含む、請求項34に記載の核酸分子。
- コード配列がフィブリリンをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- フィブリリンが配列番号22と72%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項38に記載の核酸分子。
- フィブリリンが配列番号22を含むアミノ酸配列を有する、請求項39に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号10を含む、請求項38に記載の核酸分子。
- コード配列がフィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素−1から選択されるフィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素をコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- フィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素が配列番号23と72%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項42に記載の核酸分子。
- フィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素が配列番号23を含むアミノ酸配列を有する、請求項43に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号11を含む、請求項42に記載の核酸分子。
- コード配列がゼータカロテンデサチュラーゼをコードする、請求項1に記載の核酸分子。
- ゼータカロテンデサチュラーゼが配列番号24と92%より大きい同一性があるアミノ酸配列を有する、請求項46に記載の核酸分子。
- ゼータカロテンデサチュラーゼが配列番号24を含むアミノ酸配列を有する、請求項47に記載の核酸分子。
- コード配列が配列番号12を含む、請求項46に記載の核酸分子。
- コード配列が遺伝子のオープンリーディングフレームである、請求項1に記載の核酸分子。
- 請求項50に記載の遺伝子の転写によって作製されたmRNA分子。
- 請求項51に記載のmRNA分子の逆転写によって作製されたcDNA分子。
- 請求項1に記載の核酸分子のセグメントと相補的である、長さが8〜100塩基のオリゴヌクレオチド。
- 請求項1に記載の核酸分子のコード配列を含むベクター。
- プラスミド、ファージミド、コスミド、バキュロウイルス、バクミド、細菌、酵素及びウイルスベクターからなるベクターの群から選択される発現ベクターである、請求項54に記載のベクター。
- 核酸分子のコード配列が構成的プロモーターと作動的に連結している、請求項54に記載のベクター。
- 核酸分子のコード配列が誘導性プロモーターと作動的に連結している、請求項54に記載のベクター。
- 核酸分子のコード配列が組織特異的プロモーターと作動的に連結している、請求項54に記載のベクター。
- 組織特異的プロモーターが種子特異的プロモーターである、請求項58に記載のベクター。
- コーヒー種子特異的プロモーターがカロテノイド又はアポカロテノイド遺伝子プロモーターである、請求項59に記載のベクター。
- カロテノイド又はアポカロテノイド遺伝子プロモーターが配列番号25を含む、請求項60に記載のベクター。
- 種子特異的プロモーターがコーヒー種子特異的プロモーターである、請求項59に記載のベクター。
- 請求項54に記載のベクターで形質転換された宿主細胞。
- 植物細胞、細菌細胞、真菌細胞、昆虫細胞及び哺乳動物細胞からなる群から選択される、請求項63に記載の宿主細胞。
- コーヒー、タバコ、シロイヌナズナ、トウモロコシ、コムギ、イネ、ダイズ、オオムギ、ライムギ、カラスムギ、モロコシ、アルファルファ、クローバー、アブラナ、ベニバナ、ヒマワリ、ラッカセイ、カカオ、トマティロ、ジャガイモ、コショウ、ナス、サトウダイコン、ニンジン、キュウリ、レタス、エンドウマメ、アスター、ベゴニア、キク、ヒエンソウ、ヒャクニチソウ、及び芝草からなる植物の群から選択される植物細胞である、請求項64に記載の宿主細胞。
- 請求項65に記載の宿主細胞から作製された稔性植物。
- コーヒー豆の風味又は芳香を調節する方法であって、コーヒー種子内で1つ又は複数のカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素の産生又は活性を調節するステップを含み、当該カロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素が、フィトエンシンターゼ、フィトエンデサチュラーゼ、色素体ターミナルオキシダーゼ、β−カロテンヒドロキシラーゼ、リコペンε−シクラーゼ、ゼアキサンチンエピオキシダーゼ、ビオラキサンチンデエポキシダーゼ、9−シス−エポキシカロテノイドジオキシゲナーゼ、カロテノイド開裂ジオキシゲナーゼ、フィブリリン、フィトエンデヒドロゲナーゼ様酵素−1、及びゼータカロテンデサチュラーゼから選択される方法。
- 1つ又は複数のカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素の産生又は活性を増大するステップを含む、請求項67に記載の方法。
- コーヒー種子内で1つ又は複数の内因性カロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素遺伝子の発現を増大するステップを含む、請求項68に記載の方法。
- カロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードする導入遺伝子を植物中に導入するステップを含む、請求項68に記載の方法。
- 1つ又は複数のカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素の産生又は活性を低下するステップを含む、請求項67に記載の方法。
- 1つ又は複数のカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードする遺伝子の発現を阻害する核酸分子をコーヒー中に導入するステップを含む、請求項71に記載の方法。
- カロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードするコーヒー植物遺伝子から単離されたプロモーター。
- 遺伝子が配列番号12〜24のいずれか1つと50%以上同一であるアミノ酸配列を有するカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードする、請求項73に記載のプロモーター。
- 遺伝子が配列番号12〜24のいずれか1つの任意のアミノ酸配列を有するカロテノイド又はアポカロテノイド生合成経路酵素をコードする、請求項74に記載のプロモーター。
- 遺伝子が配列番号1〜12で示す配列のいずれか1つと50%以上同一であるオープンリーディングフレームを含む、請求項73に記載のプロモーター。
- 遺伝子が配列番号1〜12のいずれか1つを有するオープンリーディングフレームを含む、請求項76に記載のプロモーター。
- TATAボックス、アブシジン酸反応性エレメント、レグミニン(leguminin)型タンパク質の発現を制御するレグミニンボックスのRY反復(CATGCA(T/a)(A/g)、少なくとも1つの脱水反応性エレメント/C−反復シス作用性配列モチーフ(G/ACCGAC)及び少なくとも1つのE−ボックスモチーフ(CANNTG)からなる群から選択される1つ又は複数の制御性配列を含む、請求項73に記載のプロモーター。
- 配列番号25を含む、請求項78に記載のプロモーター。
- 1つ又は複数のコード配列と作動的に連結した、請求項73に記載のプロモーターを含むキメラ遺伝子。
- 請求項79に記載のキメラ遺伝子を含む、細胞を形質転換するベクター。
- 請求項81に記載のベクターで形質転換された細胞。
- 植物細胞である、請求項82に記載の形質転換細胞。
- コーヒー種の細胞である、請求項83に記載の形質転換植物細胞。
- 請求項83に記載の形質転換植物細胞を再生することによって作製された稔性トランスジェニック植物。
- コーヒー種である、請求項85に記載の稔性トランスジェニック植物。
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---|---|
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Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8557585B2 (en) * | 2007-08-30 | 2013-10-15 | Republic Of Korea, Rural Development Administration | Fusion polynucleotide for biosynthesis of beta-carotene using bicistronic gene expression and method for producing beta-carotene using the same |
KR101147963B1 (ko) | 2007-11-21 | 2012-05-29 | 숙명여자대학교산학협력단 | 대두의 산토필 대사에 필요한 제아산틴 에폭시다제 유전자 |
EP2545166A2 (en) | 2010-03-09 | 2013-01-16 | Nestec S.A. | Modulation of galactomannan content in coffee |
ITRM20110491A1 (it) * | 2011-09-19 | 2013-03-20 | Aep Advanced Ecopower Patents Sa | Pianta oleaginosa transgenica. |
WO2018156086A1 (en) | 2017-02-24 | 2018-08-30 | Agency For Science, Technology And Research | Production of carotenoids and apocarotenoids |
WO2020167834A1 (en) * | 2019-02-11 | 2020-08-20 | Arch Innotek, Llc | Compositions and methods of biosynthesizing carotenoids and their derivatives |
BR112022021375A2 (pt) * | 2020-04-21 | 2022-12-06 | Japan Tobacco Inc | Corpo da planta de tabaco e método para produzir o mesmo |
CN115215930B (zh) * | 2021-04-21 | 2024-03-12 | 山东农业大学 | 控制玉米种子总蛋白和类胡萝卜素含量的蛋白ptox1及其编码基因与应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002355040A (ja) * | 2000-05-08 | 2002-12-10 | Bayer Ag | カロチノイド生合成経路の酵素の調節物質を見出す方法 |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2261577A1 (en) * | 1996-08-09 | 1998-02-19 | Calgene, Inc. | Methods for producing carotenoid compounds and speciality oils in plant seeds |
US6653530B1 (en) * | 1998-02-13 | 2003-11-25 | Calgene Llc | Methods for producing carotenoid compounds, tocopherol compounds, and specialty oils in plant seeds |
WO2000011199A1 (en) | 1998-08-20 | 2000-03-02 | Pioneer Hi-Bred International, Inc. | COMPOSITIONS AND METHODS FOR ALTERING AN ACETYL-CoA METABOLIC PATHWAY OF A PLANT |
DE19909637A1 (de) * | 1999-03-05 | 2000-09-07 | Peter Beyer | Verfahren zur Verbesserung des agronomischen Wertes und der ernährungsphysiologischen Eigenschaften von Pflanzen |
AU2002323509A1 (en) | 2001-08-30 | 2003-03-18 | Purdue Research Foundation | Methods to produce transgenic plants resistant to osmotic stress |
AU2003246889A1 (en) * | 2002-06-26 | 2004-01-19 | University Of Sheffield | Stress tolerant plant |
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Non-Patent Citations (1)
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JPN6012011980; Gene Vol.140, No.2, 1994, p.227-231 * |
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