JP2009227618A - Immunostimulant derived from kjellmaniella crassifolia miyabe and method of extracting viscous polysaccharide derived from kjellmaniella crassifolia miyabe - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)から抽出されて得られる粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法に関する。 The present invention relates to an immunostimulant containing as an active ingredient a viscous polysaccharide obtained by extraction from gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe), and an extraction method of gagome-derived viscous polysaccharide. .
ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)は、主として北海道沿岸の函館周辺から渡島半島東岸、松前小島、東北北部の大間岬等のごく限られた地域で生息し、水深7〜25mの岩礁上で生育する、藻体の長さが2m、幅が30cm以上にもなる多年生藻類である。葉状部に大小の凹凸状のしわが一面に形成されており、粘りの原因である粘性多糖類が藻体から多量に分泌されるという特徴を有している。この粘性多糖類は、フコイダンやラミナラン、アルギン酸等から構成されており、この粘性多糖類が健康に役立つことが昨今明らかにされ、健康食品の原材料や薬剤の有効成分として注目されている。 Gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe) is an algae that grows on rocky reefs with a depth of 7 to 25 m, mainly in the limited areas such as Hakodate on the Hokkaido coast, the east coast of the Oshima Peninsula, Matsumae Kojima, and Cape Oma in the northeastern Tohoku region. It is a perennial algae with a body length of 2 m and a width of 30 cm or more. A large and small wrinkle is formed on the entire surface of the leaf-like part, and the viscous polysaccharide that causes stickiness is secreted in large quantities from the alga. This viscous polysaccharide is composed of fucoidan, laminaran, alginic acid and the like, and it has recently been clarified that this viscous polysaccharide is useful for health, and has attracted attention as a raw material for health foods and an active ingredient of drugs.
例えば、WO97−026896号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いたアポトーシス誘発剤が開示されている(特許文献1)。また、特開2005−231998号公報には、ガゴメ由来のフコイダンを用いた透析アミロイドーシス治療剤が開示されている(特許文献2)。 For example, WO97-026896 discloses an apoptosis inducer using fucoidan derived from gagome (Patent Document 1). JP-A-2005-231998 discloses a therapeutic agent for dialysis amyloidosis using fucoidan derived from Gagome (Patent Document 2).
一方、海藻から抽出した多糖類を有効成分とした免疫賦活剤が提案されている。例えば、特開平6−256208号公報には、紅藻類から抽出した酸性多糖にβ−アガラーゼを作用させて低粘性化したものを有効成分とする免疫賦活剤が開示されており(特許文献3)、特開2007−230980号公報には、メカブから多糖類抽出液を調製し、その多糖類抽出液を遠心分離して沈殿画分を抽出した免疫賦活剤が開示されている(特許文献4)。 On the other hand, an immunostimulant using a polysaccharide extracted from seaweed as an active ingredient has been proposed. For example, Japanese Patent Application Laid-Open No. 6-256208 discloses an immunostimulant containing, as an active ingredient, an acid polysaccharide extracted from red algae that has been reduced in viscosity by the action of β-agarase (Patent Document 3). JP-A-2007-230980 discloses an immunostimulant prepared by preparing a polysaccharide extract from Mekabu and centrifuging the polysaccharide extract to extract a precipitate fraction (Patent Document 4). .
特許文献1および特許文献2に開示された発明は、いずれも免疫賦活に関するものではない。また、特許文献3に開示された発明は、ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)由来の免疫賦活剤に関するものではなく、粘性多糖類の粘性を酵素処理によって低下させた免疫賦活剤に関するものである。さらに、特許文献4に開示された発明もまたガゴメ由来の免疫賦活剤ではなく、多糖類抽出液を調製・遠心分離して得られた沈殿画分を用いた免疫賦活剤に関するものである。
None of the inventions disclosed in
一方、本願発明者等は、ガゴメから粘性多糖類を抽出して、様々なサイトカインや抗体の産生量を定量すること、およびYAC−1腫瘍細胞傷害活性を測定することによる免疫賦活効果を鋭意検討したところ、抽出条件、濃度、粘度、および反射光の光強度等により免疫賦活効果が異なることを見出し、本発明を完成するに至った。 On the other hand, the inventors of the present application have conducted extensive studies on the immunostimulatory effect by extracting viscous polysaccharides from gagome, quantifying the production of various cytokines and antibodies, and measuring the YAC-1 tumor cytotoxic activity. As a result, it was found that the immunostimulatory effect varies depending on the extraction conditions, concentration, viscosity, light intensity of reflected light, etc., and the present invention has been completed.
すなわち、本発明は、ガゴメ由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とする免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することを目的としている。 That is, the present invention has an object to provide an immunostimulant having an active ingredient selected from among gagome-derived viscous polysaccharides according to predetermined conditions, and a method for extracting gagome-derived viscous polysaccharides. .
本発明に係る免疫賦活剤の第一の態様は、ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)から抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の濃度が0.05%より高く0.3%未満である粘性多糖類を有効成分として含むものである。 A first aspect of the immunostimulant according to the present invention is a viscous polysaccharide extracted from gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe), and the concentration of the aqueous solvent solution is higher than 0.05% and lower than 0.3% It contains a viscous polysaccharide as an active ingredient.
また、本発明に係る免疫賦活剤は、20℃における水の粘度の値を1とした場合の前記水性溶媒溶液の相対粘度の値が、2.5より大きく25.8より小さい値であってもよい。 Further, the immunostimulant according to the present invention has a value of relative viscosity of the aqueous solvent solution of more than 2.5 and less than 25.8 when the value of water viscosity at 20 ° C. is 1. Also good.
本発明に係る免疫賦活剤の第二の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、水性溶媒溶液の粘度が2.5センチポアズより大きく25.8センチポアズより小さい粘度である粘性多糖類を有効成分として含むものである。 The second aspect of the immunostimulant according to the present invention is a viscous polysaccharide extracted from gagome, wherein the viscosity of the aqueous solvent solution is larger than 2.5 centipoise and smaller than 25.8 centipoise. As an active ingredient.
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が30℃未満の水性溶媒で抽出されてもよく、前記粘性多糖類のpHが5以上8未満の条件下で抽出されてもよい。 In the immunostimulant according to the present invention, the viscous polysaccharide may be extracted with an aqueous solvent having a temperature of less than 30 ° C., and may be extracted under conditions where the pH of the viscous polysaccharide is 5 or more and less than 8.
本発明に係る免疫賦活剤の第三の態様は、ガゴメから抽出された粘性多糖類であって、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを350nmとして測定したアルギン酸水溶液0.1%の光強度の値を100とした場合において、水性溶媒溶液の光強度の値が600以上の値である粘性多糖類を有効成分として含むものである。 A third aspect of the immunostimulant according to the present invention is a viscous polysaccharide extracted from gagome, and the light intensity of 0.1% alginate aqueous solution measured with the excitation wavelength and the fluorescence wavelength of the fluorometer as 350 nm. When the value of 100 is 100, a viscous polysaccharide having a light intensity value of 600 or more of the aqueous solvent solution is contained as an active ingredient.
また、本発明に係る免疫賦活剤は、前記粘性多糖類が、塩類を除去する処理がされたものであってもよい。 In the immunostimulant according to the present invention, the viscous polysaccharide may be processed to remove salts.
一方、本発明に係る粘性多糖類の抽出方法は、ガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法であって、ガゴメを粉砕する粉砕工程と、粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程とを有するものである。 On the other hand, the method for extracting viscous polysaccharides according to the present invention is a method for extracting viscous polysaccharides derived from gagome, comprising a crushing step of crushing gagome, and mixing and shaking the crushed gagome and an aqueous solvent. It has the extraction process which obtains the extract of viscous polysaccharide, and the salt removal process which removes salts from viscous polysaccharide.
本発明によれば、ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)由来の粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分とし、効果的な免疫賦活作用を有する免疫賦活剤、およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法を提供することができる。 According to the present invention, among the polysaccharides derived from Gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe), the active ingredient is selected from the polysaccharides selected according to predetermined conditions, and the viscosity enhancer derived from Gagome has an effective immunostimulatory action. A method for extracting polysaccharides can be provided.
以下、本発明に係るガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)由来免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について、実施形態を用いて説明する。まず、本発明に係るガゴメ由来免疫賦活剤について説明する。 Hereinafter, the extraction method of the gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe) origin immunostimulant and gagome origin viscous polysaccharide which concern on this invention is demonstrated using embodiment. First, the Gagome-derived immunostimulator according to the present invention will be described.
本発明に係る免疫賦活剤は、ガゴメから抽出された粘性多糖類のうち、所定の条件により選択されたものを有効成分としている。本発明における「粘性多糖類」とは、水溶性溶媒を用いてガゴメから抽出される粘質物、および当該抽出された粘質物を処理したものをいい、多糖の一種であるアルギン酸やラミナラン、および硫酸多糖の一種であるフコイダン等の多糖を主な構成としている。また、ここにいう「処理」とは、一般には加工を施して性質を変えることをいうが、免疫賦活作用を損なわない態様をいい、例えば、熱処理や冷却処理、凍結処理、酸・アルカリ処理、架橋処理、固液分離処理、撹拌処理、乾燥処理、脱塩処理等であって免疫賦活作用を損なわない態様をいう。 The immunostimulant according to the present invention uses, as an active ingredient, a viscous polysaccharide extracted from gagome selected according to a predetermined condition. The “viscous polysaccharide” in the present invention refers to a sticky substance extracted from gagome using a water-soluble solvent, and a product obtained by treating the extracted sticky substance, and is a kind of polysaccharides such as alginic acid, laminaran, and sulfuric acid. The main component is a polysaccharide such as fucoidan, which is a kind of polysaccharide. In addition, the term “treatment” as used herein generally refers to changing the properties by processing, but refers to an aspect that does not impair the immunostimulatory action, such as heat treatment, cooling treatment, freezing treatment, acid / alkali treatment, It refers to a mode of crosslinking treatment, solid-liquid separation treatment, stirring treatment, drying treatment, desalting treatment, etc. that does not impair the immunostimulatory action.
なお、本発明において「免疫賦活」は、「免疫刺激」、「免疫増強」、「免疫増進」、「免疫活性」、「免疫活性化」、「免疫向上」、あるいは「免疫亢進」と交換可能に用いられ、「免疫増進剤」は、「免疫刺激剤」、「免疫増強剤」、「免疫増進剤」、「免疫活性剤」、あるいは「免疫亢進剤」と交換可能に用いられる。したがって「免疫賦活作用」は、例えば、「免疫刺激作用」としても表すことができる。 In the present invention, “immunostimulation” can be replaced with “immunity stimulation”, “immunity enhancement”, “immunity enhancement”, “immunity activity”, “immunity activation”, “immunity enhancement”, or “immunity enhancement”. The term “immune enhancer” is used interchangeably with “immunostimulatory agent”, “immune enhancer”, “immune enhancer”, “immunoactive agent”, or “immune enhancer”. Therefore, “immunostimulatory effect” can also be expressed as “immunostimulatory effect”, for example.
本実施形態においては、乾燥したガゴメをフードカッターにて破砕し、破砕したガゴメの25倍重量の蒸留水にこれを混合して調製した混合液を20℃条件下で24時間振盪して抽出して得た上澄みを粘性多糖類としている。
In this embodiment, the dried gagome is crushed with a food cutter, and a mixture prepared by mixing it with distilled
ここで、本実施形態においては、乾燥したガゴメから粘性多糖類が抽出されているが、本発明における「ガゴメ」はこれに限定されず、収穫直後や一時保存したような生のものでもよく、一旦凍結保存されたもの等であってもよい。また、破砕のサイズは特に限定されないが、例えば、細切りサイズ(約10mm〜20mmの大きさ)や粉砕サイズ(約5mm〜10mmの大きさ)、微粉砕サイズ(1mm〜5mmの大きさ)、粉末サイズ(1mm以下の大きさ)とすることができる。本実施形態においては、1mm〜3mmの微粉砕とすることを好適としている。 Here, in the present embodiment, the viscous polysaccharide is extracted from the dried gagome, but the `` gagome '' in the present invention is not limited thereto, and may be a raw one that has been stored immediately after harvesting, It may be once frozen and stored. The size of the crushing is not particularly limited. For example, a shredded size (a size of about 10 mm to 20 mm), a crushing size (a size of about 5 mm to 10 mm), a fine crushing size (a size of 1 mm to 5 mm), a powder It can be a size (size of 1 mm or less). In the present embodiment, it is preferable to use fine pulverization of 1 mm to 3 mm.
また、本実施形態においては、破砕したガゴメの25倍重量の蒸留水を用いて粘性多糖類が抽出されているが、粘性多糖類の抽出に用いられる溶媒の種類やその量は、水性溶媒であって粘性多糖類の抽出が可能な量であれば特に限定されず、適宜選択することができる。本発明における水性溶媒としては、例えば、水または水性溶剤を挙げることができ、水が好ましい。水としては、蒸留水の他、精製水、金属イオン等を除去したイオン交換水、純水、これらを滅菌処理した水等を挙げることができる。また、水性溶剤としてはアルコール類や酸、塩基等を挙げることができる。
Moreover, in this embodiment, although the viscous polysaccharide is extracted using
次に、本発明においては、抽出された粘性多糖類のうち、水性溶媒溶液とした場合の所定の濃度、相対粘度、粘度、抽出温度、抽出pH、あるいは反射光の光強度を有するものを、免疫賦活剤の有効成分として選択する。 Next, in the present invention, among the extracted viscous polysaccharides, those having a predetermined concentration, relative viscosity, viscosity, extraction temperature, extraction pH, or reflected light intensity when used as an aqueous solvent solution, Select as an active ingredient of an immunostimulator.
本発明においては、水性溶媒溶液とした場合の濃度が0.05%より高く0.3%未満である粘性多糖類を、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分としている。ここで、本発明における「濃度」とは、粘性多糖類の水性溶媒溶液の濃度である。すなわち、本発明における濃度とは、糖濃度のみならず、粘性多糖類に含まれる多糖と、硫酸基、還元末端、および灰分等から選択される任意の混合体の濃度が含まれる。なお、本実施形態における濃度とは、粘性多糖類の水溶液の糖濃度であり、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が0.07%〜0.29%であるものを、好適な粘性多糖類としている。 In the present invention, a viscous polysaccharide having a concentration higher than 0.05% and lower than 0.3% in the case of an aqueous solvent solution is used as an active ingredient of the immunostimulator according to the present invention. Here, the “concentration” in the present invention is the concentration of an aqueous solvent solution of a viscous polysaccharide. That is, the concentration in the present invention includes not only the sugar concentration but also the concentration of a polysaccharide contained in the viscous polysaccharide and an arbitrary mixture selected from sulfate groups, reducing ends, ash, and the like. The concentration in this embodiment is the sugar concentration of an aqueous solution of a viscous polysaccharide. In this embodiment, the concentration of sugar in the aqueous solution is 0.07% to 0.29%. Sugars.
糖濃度は必要に応じて、糖重量と水溶液の重量または容積とを基に、w/w%、w/v%で表すことができる。また糖濃度は、可溶性固形分の割合を、糖液の屈折率を基にして表したものであるBrix(w/w%)によって表すことができる。また、糖濃度の測定方法は、フェノール硫酸法、アンスロン硫酸法等により、発色した化合物の吸光度を測定することにより求めることができ、単糖類と多糖類とはいずれも任意の糖に換算して定量することができる{基礎生化学実験法 第5巻 p118(2000)}。なお、本実施形態においては、フェノール硫酸法{Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}により、フコイダンを標準糖として糖濃度を測定している。 The sugar concentration can be expressed as w / w% or w / v% based on the weight of the sugar and the weight or volume of the aqueous solution as necessary. The sugar concentration can be represented by Brix (w / w%), which is a ratio of the soluble solid content expressed based on the refractive index of the sugar liquid. The sugar concentration can be determined by measuring the absorbance of the colored compound by the phenol sulfate method, the anthrone sulfate method, etc., and both monosaccharides and polysaccharides can be converted into any sugar. Can be quantified {Basic Biochemical Experimental Method Vol. 5 p118 (2000)}. In the present embodiment, the sugar concentration is measured using fucoidan as a standard sugar by the phenol sulfate method {Hodge, JE and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}.
本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の濃度に相関性のある水性溶媒溶液の相対粘度の値によっても選択することができる。すなわち、本発明においては、水性溶媒溶液の濃度が0.05%より高く0.3%未満であって、かつ20℃における水の粘度の値を1とした場合の水性溶媒溶液の相対粘度の値が、2.5より大きく25.8より小さい値のものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の糖濃度が0.07%〜0.29%であって、かつ相対粘度の値が5.8〜20.3であるものを、より好適な粘性多糖類としている。 The viscous polysaccharide in the present invention can also be selected by the value of the relative viscosity of the aqueous solvent solution having a correlation with the concentration of the aqueous solvent solution. That is, in the present invention, the relative viscosity of the aqueous solvent solution when the concentration of the aqueous solvent solution is higher than 0.05% and lower than 0.3% and the value of water viscosity at 20 ° C. is 1. A substance having a value larger than 2.5 and smaller than 25.8 can be used as an active ingredient of the immunostimulant according to the present invention. In the present embodiment, a more suitable viscous polysaccharide having a sugar concentration of 0.07% to 0.29% and a relative viscosity value of 5.8 to 20.3 is used. It is said.
本発明において、粘性多糖類の水性溶媒溶液の相対粘度は、20℃における水の粘度の値を1としているが、相対粘度の測定方法は特に限定されず、所望の粘度計や相対粘度計を用いることにより適宜測定することができる。なお、本実施形態においては、20℃の条件下、内径が0.75mmおよび1.5mmのオストワルド相対粘度計を用いて相対粘度を測定している。 In the present invention, the relative viscosity of the aqueous solution of the viscous polysaccharide is set to 1 at a water viscosity at 20 ° C., but the method for measuring the relative viscosity is not particularly limited, and a desired viscometer or relative viscometer is used. It can measure suitably by using. In the present embodiment, the relative viscosity is measured using an Ostwald relative viscometer having an inner diameter of 0.75 mm and 1.5 mm under the condition of 20 ° C.
また、20℃における水の粘度は1センチポアズ(cP)であることから、本発明におおける粘性多糖類は、水性溶媒溶液とした場合の粘度が2.5センチポアズより大きく25.8センチポアズより小さい粘度であるものを、本発明に係る免疫賦活剤の有効成分とすることができる。なお、本実施形態においては、水溶液の粘度が5.8cP〜20.3cPであるものを、好適な粘性多糖類としている。 Moreover, since the viscosity of water at 20 ° C. is 1 centipoise (cP), the viscosity polysaccharide in the present invention has a viscosity of 2.5 centipoise larger than 25.8 centipoise when used as an aqueous solvent solution. What has viscosity can be used as an active ingredient of the immunostimulant according to the present invention. In addition, in this embodiment, the thing whose viscosity of aqueous solution is 5.8 cP-20.3 cP is made into the suitable viscous polysaccharide.
さらに、本発明においては、30℃未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類、および/またはpHが5以上8未満の条件下で水性溶媒により抽出された粘性多糖類を選択することができる。30℃未満の条件下、および/またはpHが5以上8未満の条件下で抽出されることにより、粘性度の高い粘性多糖類が得られることが発明者等によって明らかにされている。本実施形態においては、4℃〜20℃の条件下、および/またはpHが5.8〜7.6の条件下で抽出された粘性多糖類が、好適な粘性多糖類として用いられ、20℃の条件下、および/またはpHが6.3〜7.4の条件下で抽出された粘性多糖類が、より好適な粘性多糖類として用いられている。 Further, in the present invention, a viscous polysaccharide extracted with an aqueous solvent under a condition of less than 30 ° C. and / or a viscous polysaccharide extracted with an aqueous solvent under a condition of pH of 5 or more and less than 8 is selected. Can do. It has been clarified by the inventors that a polysaccharide having a high viscosity can be obtained by extraction under conditions of less than 30 ° C. and / or a pH of 5 or more and less than 8. In the present embodiment, a viscous polysaccharide extracted under conditions of 4 ° C. to 20 ° C. and / or a pH of 5.8 to 7.6 is used as a suitable viscous polysaccharide, and 20 ° C. And / or a viscous polysaccharide extracted under the condition of pH 6.3 to 7.4 is used as a more suitable viscous polysaccharide.
次に、本発明における粘性多糖類は、水性溶媒溶液の反射光の光強度によって選択することができる。本発明における粘性多糖類は、粘稠性の高い複数の多糖類等が相互に絡み合って高次構造を有する複合体を形成し、この高次構造複合体が一定のサイズや密度となる場合に免疫賦活効果を発揮すると発明者等は考えている。反射光の光強度の値は一定の範囲では水性溶媒溶液の濃度に比例するが、濃度が高すぎると当該光強度の値は小さくなることが発明者等によって明らかにされている。これは、当該一定の濃度において形成される一定のサイズや密度の高次構造複合体が免疫賦活効果を有していることを示している。発明者等によれば、存在する高次構造複合体のサイズや密度が光の反射に大きく影響しており、一定の糖濃度を超える場合は高次構造複合体のサイズが大きくなりすぎてしまうことから、光の反射がうまくなされないと考えられている。 Next, the viscous polysaccharide in the present invention can be selected according to the light intensity of the reflected light of the aqueous solvent solution. The viscous polysaccharide in the present invention is a case where a plurality of polysaccharides having high viscosity are entangled with each other to form a complex having a higher-order structure, and this higher-order structure complex has a certain size and density. The inventors believe that an immunostimulatory effect is exhibited. The value of the light intensity of the reflected light is proportional to the concentration of the aqueous solvent solution in a certain range, but it has been clarified by the inventors that the value of the light intensity decreases when the concentration is too high. This indicates that the higher-order structure complex having a certain size and density formed at the certain concentration has an immunostimulatory effect. According to the inventors, the size and density of the existing higher-order structure complex greatly affect the reflection of light, and when the sugar concentration exceeds a certain level, the size of the higher-order structure complex becomes too large. For this reason, it is thought that the reflection of light is not performed well.
なお、本実施形態においては、蛍光光度計の励起波長と蛍光波長とを350nmとして水溶液の光強度の値を測定し、アルギン酸水溶液0.1%の光強度の値を100とした場合に、水溶液の光強度の値が約600〜900の値である粘性多糖類を好適な粘性多糖類とし、当該水溶液の光強度の値が約710〜900の値である粘性多糖類をより好適な粘性多糖類としている。 In this embodiment, the light intensity value of the aqueous solution is measured by setting the excitation wavelength and the fluorescence wavelength of the fluorometer to 350 nm, and the light intensity value of the alginate aqueous solution 0.1% is 100. A viscous polysaccharide having a light intensity value of about 600 to 900 is a suitable viscous polysaccharide, and a viscous polysaccharide having a light intensity value of about 710 to 900 of the aqueous solution is a more suitable viscous polysaccharide. Sugars.
さらに、本発明における粘性多糖類は、塩類を除去する処理がされたものを選択することができる。本発明における「塩類」には、いわゆる塩化ナトリウムのみならず、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩等の無機塩や、無機質(ミネラル)、微量元素が含まれる。また、本発明において、「除去する処理」には、すべてを取り除く行為のみならず、少なくともその一部を取り除く行為が含まれる。 Furthermore, the viscous polysaccharide in this invention can select the thing by which the process which removes salts is carried out. The “salts” in the present invention include not only so-called sodium chloride but also inorganic salts such as carbonates, sulfates, magnesium salts, calcium salts, minerals (minerals), and trace elements. In the present invention, the “removing process” includes not only an act of removing all but also an act of removing at least a part thereof.
本発明において、塩類を除去する処理は特に限定されないが、例えば、透析膜、限外濾過膜、脱塩用カラム等を用いた透析や電気透析、吸引濾過や限外濾過、あるいはイオン交換樹脂を用いて行う等、当業者に公知の任意の物理的または化学的方法・手段を挙げることができる。本実施形態においては、セルロースチューブ透析膜を用いた透析により、塩類を除去する処理がなされている。透析により塩類が除かれると、電荷バランスが変化して分子構造が広がり、その結果、巨大構造が形成され、粘度が上昇すると発明者等によって考えられている。 In the present invention, the treatment for removing salts is not particularly limited. For example, dialysis or electrodialysis using a dialysis membrane, ultrafiltration membrane, desalting column, suction filtration or ultrafiltration, or ion exchange resin. Any physical or chemical method / means known to those skilled in the art can be mentioned. In this embodiment, the process which removes salts is made | formed by the dialysis using a cellulose tube dialysis membrane. It is believed by the inventors that when salts are removed by dialysis, the charge balance changes and the molecular structure expands, resulting in the formation of a giant structure and increased viscosity.
次に、本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法について説明する。本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、
(i)ガゴメを粉砕する粉砕工程
(ii)粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程
(iii)粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程
以上(i)〜(iii)の工程を有している。
Next, the extraction method of the gagome-derived viscous polysaccharide according to the present invention will be described. The method for extracting a viscous polysaccharide derived from Gagome according to the present invention comprises:
(i) Crushing process for crushing gagome
(ii) Extraction step of obtaining an extract of viscous polysaccharide by mixing pulverized gagome and aqueous solvent and shaking
(iii) A salt removal step of removing salts from the viscous polysaccharide The steps (i) to (iii) are included.
本発明に係るガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法は、以上(i)〜(iii)の工程を有していれば、他の任意の工程を有してもよく、例えば、加熱工程や冷却工程、凍結工程、酸・アルカリ添加工程、架橋工程、固液分離工程、撹拌工程、乾燥工程、脱塩工程等、当業者に公知の任意の工程を有してもよい。本実施形態においては、フードカッターが用いられているが、本発明における「粉砕」は、これに限られず、当業者に公知の任意の手段を挙げることができる。 The method for extracting a gagome-derived viscous polysaccharide according to the present invention may have other optional steps as long as it has the above steps (i) to (iii), for example, a heating step or a cooling step. You may have arbitrary processes well-known to those skilled in the art, such as a process, a freezing process, an acid / alkali addition process, a bridge | crosslinking process, a solid-liquid separation process, a stirring process, a drying process, a desalting process. In this embodiment, a food cutter is used. However, the “pulverization” in the present invention is not limited to this, and any means known to those skilled in the art can be used.
ここで、本発明における「振盪」とは、一般にはふるい動かすことをいうが、これに限られず、「撹拌」の意味を含む趣旨である。すなわち本発明においては、所望の振盪機器を用いることができるほか、マグネティックスターラーやメカニカルスターラー等の撹拌機器を用いることもできる。なお、本実施形態においては、恒温振盪培養器を用いて振盪を行っている。 Here, “shaking” in the present invention generally means sieving, but is not limited to this and includes the meaning of “stirring”. That is, in the present invention, a desired shaking device can be used, and a stirring device such as a magnetic stirrer or a mechanical stirrer can also be used. In the present embodiment, shaking is performed using a constant temperature shaking incubator.
以下、本発明に係る免疫賦活剤およびガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法の実施例について説明する。なお、本発明の範囲は、これらの実施例によって示される特徴に限定されない。 Hereinafter, the Example of the extraction method of the immunostimulant which concerns on this invention, and the viscous polysaccharide derived from Gagome is described. Note that the scope of the present invention is not limited to the features shown by these examples.
《抽出条件の検討》
ガゴメ(Kjellmaniella crassifolia Miyabe)から高粘度の粘性多糖類を抽出するために、抽出温度、時間、およびpHの検討を行いつつ、粘性多糖類の濃度と粘度との関係について検討を行った。
<Examination of extraction conditions>
In order to extract highly viscous viscous polysaccharides from Gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe), the relationship between the concentration and viscosity of viscous polysaccharides was examined while examining extraction temperature, time, and pH.
(1)温度および時間の検討
まず、乾燥したガゴメをフードカッターで微粉砕して1mm〜3mmに小片化し、25倍重量の蒸留水に懸濁した。この懸濁液を4〜100℃の温度条件下、1時間〜24時間100rpm/分で、恒温振盪培養器(TAITEC)を用いて振盪することによって粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。抽出温度は4,10,20,30,40,60,80,100℃の8段階で行った。粘度測定は、オストワルド粘度計(管内径0.75mmまたは1.5mm;柴田化学)を用いて20℃の浴槽中で各々6回測定し、水に対する相対粘度の平均値を算出した。その結果を図1(a)に示し、これをグラフ化したものを図1(b)に示す。
(1) Examination of temperature and time First, the dried gagome was finely pulverized with a food cutter, cut into pieces of 1 mm to 3 mm, and suspended in 25 times weight of distilled water. The suspension was shaken using a constant temperature shake incubator (TAITEC) at 100 rpm / min for 1 to 24 hours under a temperature condition of 4 to 100 ° C., and the viscosity of the supernatant was adjusted. It was measured. The extraction temperature was performed in 8 steps of 4, 10, 20, 30, 40, 60, 80, and 100 ° C. Viscosity was measured 6 times each in a 20 ° C. bath using an Ostwald viscometer (tube inner diameter 0.75 mm or 1.5 mm; Shibata Chemical), and the average value of the relative viscosity with respect to water was calculated. The result is shown in FIG. 1 (a), and a graph of this is shown in FIG. 1 (b).
図1(a)および(b)に示すように、20℃の温度条件下で12時間〜24時間抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。 As shown in FIGS. 1 (a) and 1 (b), it is clear that the viscosity of the supernatant of the viscous polysaccharide extract becomes the highest when extraction is performed for 12 to 24 hours at a temperature of 20 ° C. became.
(2)pHの検討
次に、フードカッターを用いて1〜3mmのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、25倍重量の蒸留水に懸濁後、0.1NのHCl水溶液または0.1NのNaOH水溶液を加えることによりpHを3.8〜9.4に調製した。このpH調製懸濁液を20℃の温度条件下、24時間100rpm/分で、恒温振盪培養器(TAITEC)を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、その上澄みの粘度を測定した。粘度の測定および算出は、(1)と同様に行った。また、当該上澄み中の糖濃度はフェノール硫酸法{Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}を用いて測定した。その結果を図2(a)に示し、pHと相対粘度との関係を図2(b)に示す。
(2) Examination of pH Next, dried gagome finely pulverized to a size of 1 to 3 mm using a food cutter is suspended in 25 times weight of distilled water, and then 0.1 N HCl aqueous solution or 0.1 N NaOH. The pH was adjusted to 3.8-9.4 by adding an aqueous solution. This pH-adjusted suspension was shaken at 100 rpm / min for 24 hours at a temperature of 20 ° C. using a constant temperature shaking incubator (TAITEC) to extract viscous polysaccharides, and the viscosity of the supernatant was measured. The measurement and calculation of the viscosity were performed in the same manner as (1). The sugar concentration in the supernatant was measured using the phenol sulfate method {Hodge, JE and Hofreiter, BT, Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}. The results are shown in FIG. 2 (a), and the relationship between pH and relative viscosity is shown in FIG. 2 (b).
図2(a)および(b)に示すように、pHを7.1の条件下にて抽出を行った場合に、粘性多糖類抽出液の上澄みの粘度が最も高くなることが明らかとなった。 As shown in FIGS. 2 (a) and 2 (b), it has been clarified that the viscosity of the supernatant of the viscous polysaccharide extract is highest when extraction is performed under the condition of pH 7.1. .
(3)糖濃度と粘度との関係
前記(1)および(2)と同様の方法で、温度30℃未満でpH5.8の条件下で抽出された粘性多糖類の抽出液を用いて、含有する粘性多糖類の糖濃度(%)を測定し、相対粘度との関係を調べた。その結果を図3に示す。
(3) Relationship between sugar concentration and viscosity Contained using an extract of viscous polysaccharide extracted under the conditions of pH 5.8 at a temperature below 30 ° C. in the same manner as in (1) and (2) above. The sugar concentration (%) of the viscous polysaccharide was measured and the relationship with the relative viscosity was examined. The result is shown in FIG.
図3に示すように、抽出液の糖濃度が0.07%〜0.29%である場合に、相対粘度は5.8〜20.3の値となった。そして、糖濃度が高くなるにつれて相対粘度も高くなる傾向が明らかとなった。 As shown in FIG. 3, when the sugar concentration of the extract was 0.07% to 0.29%, the relative viscosity was a value of 5.8 to 20.3. And it became clear that the relative viscosity tends to increase as the sugar concentration increases.
《粘性多糖抽出液の成分解析》
フードカッターを用いて1〜3mmのサイズに微粉砕した乾燥ガゴメを、25倍重量の蒸留水に懸濁後、20℃の温度条件下、24時間100rpm/分で、恒温振盪培養器(TAITEC)を用いて振盪して粘性多糖類を抽出し、吸引濾過により濾液とガゴメ残渣とに固液分離した。この濾液をさらに1500rpmで20分間遠心して沈殿物を除去して上清を得た。得られた上清25mLをセルロースチューブ透析膜(平面幅32mm,直径20mm,壁厚0.0305mm,透過分子量約14000以下;三光純薬)に供し、1.25Lの蒸留水を外液として、スターラーで撹拌しながら透析処理を行った。透析処理は、透析開始から各々3時間後、6時間後、12時間後に外液を交換し、24時間経過するまで行った。透析処理後の溶液を凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性多糖類抽出液(GE)とした。一方、透析処理後の溶液を60℃で1時間加熱処理をした後、凍結乾燥し、滅菌蒸留水を加えて一晩静置して溶解させたものを粘性低下液(GH)とした。
<Component analysis of viscous polysaccharide extract>
A dried gagome finely pulverized to a size of 1 to 3 mm using a food cutter is suspended in 25-fold weight of distilled water, and then kept at a temperature of 20 ° C. for 24 hours at 100 rpm / min. The viscous polysaccharides were extracted by shaking using, and the filtrate and gagome residue were separated into solid and liquid by suction filtration. The filtrate was further centrifuged at 1500 rpm for 20 minutes to remove the precipitate and obtain a supernatant. 25 mL of the obtained supernatant was applied to a cellulose tube dialysis membrane (planar width: 32 mm, diameter: 20 mm, wall thickness: 0.0305 mm, permeation molecular weight: about 14,000 or less; Sanko Junyaku Co., Ltd.) The dialysis treatment was carried out with stirring. The dialysis treatment was performed until 24 hours had passed after changing the
上記透析処理後の溶液(抽出液)の粘度と、上記透析処理後の溶液を凍結乾燥したもの(凍結乾燥品)に含まれる全糖量、構成する各多糖量、硫酸基、還元末端、および灰分との定量を行った。粘度および全糖量は実施例1と同様に行った。また、各多糖量の定量は、Nishideらの手法(Nishide, E.; Yoshihara, M.; Kato, T.; Hakone, T.; Kamata, Y.; Anzai, H.; Uchida, N. Fractionation of laminaran and fucoidan by DEAE-sephadex column chromatography. Bull. Coll. Agr. & Vet. Med., Nihon Univ. 1994, 51, 103-107)に従って各々分離した後、フェノール硫酸法{Hodge, J. E. and Hofreiter, B. T., Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}により行った。さらに、硫酸基の定量は、ロジゾン酸法(Terho, T. T.; Hartiala, K. Method for determination of the sulfate content of glycosaminoglycans. Anal Biochem. 1971, 41, 471-476.)により行い、還元末端の定量は、ソムギー・ネルソン法(Somogyi, M. Note on sugar determination. J Biol Chem. 1952, 195, 19-23.)により行い、灰分の定量は、直接灰化法(550℃灰化法)により行った。その結果を図4に示す。 The viscosity of the solution after the dialysis treatment (extract), the total amount of sugar contained in the lyophilized solution (lyophilized product), the amount of each polysaccharide, the sulfate group, the reducing end, and Quantification with ash was performed. The viscosity and total sugar amount were the same as in Example 1. The amount of each polysaccharide was determined by the method of Nishide et al. (Nishide, E .; Yoshihara, M .; Kato, T .; Hakone, T .; Kamata, Y .; Anzai, H .; Uchida, N. Fractionation of laminaran and fucoidan by DEAE-sephadex column chromatography. Bull. Coll. Agr. & Vet. Med., Nihon Univ. 1994, 51, 103-107), respectively, followed by phenol sulfate method {Hodge, JE and Hofreiter, BT , Method in Carbohydrate Chemistry, 1338 (1962)}. Furthermore, the sulfate group was quantified by the rosin acid method (Terho, TT; Hartiala, K. Method for determination of the sulfate content of glycosaminoglycans. Anal Biochem. 1971, 41, 471-476.) Somgyi, M. Note on sugar determination. J Biol Chem. 1952, 195, 19-23. The ash content was determined by the direct ashing method (550 ° C ashing method). . The result is shown in FIG.
図4に示すように、GE中には多糖としてフコイダン、ラミナラン、アルギン酸を含んでいることが示された。また、GHの相対粘度はGEに比べて非常に低い値が示され、60℃で1時間の加熱処理を行うことにより、抽出液の粘性が低下することが明らかとなった。 As shown in FIG. 4, it was shown that GE contains fucoidan, laminaran, and alginic acid as polysaccharides. In addition, the relative viscosity of GH was much lower than that of GE, and it was revealed that the viscosity of the extract was lowered by heat treatment at 60 ° C. for 1 hour.
《マウスを用いた免疫賦活作用の検討》
マウスを用いてガゴメから抽出した粘性多糖類の免疫賦活作用について検討を行った。
まず、マウスは6週齢オスのC57BL/6Cr(三協ラボサービス)を使用し、群分けを行った。試験構成群は、コントロール群,GE10,GE30,GE100,GH10,GH30,GH100の計7群を設定し、各群につき5匹のマウスを用いた。実施例2で得られたGEを滅菌蒸留水にて各々1,3,10mg/mLに調製し、これら水溶液を被検物質としてGE10,GE30,GE100の3群に投与した。一方、実施例2で得られたGHを滅菌蒸留水にて各々1,3,10mg/mLに調製し、これら水溶液を被検物質としてGH10、GH30、GH100の3群に投与した。コントロール群には滅菌蒸留水を投与した。
《Study of immunostimulatory effect using mice》
The immunostimulatory action of viscous polysaccharides extracted from gagome using mice was investigated.
First, mice were divided into groups using 6-week-old male C57BL / 6Cr (Sankyo Lab Service). A total of 7 groups, ie, a control group, GE10, GE30, GE100, GH10, GH30, and GH100, were set as test composition groups, and 5 mice were used for each group. The GE obtained in Example 2 was prepared to 1, 3, 10 mg / mL with sterilized distilled water, and these aqueous solutions were administered as test substances to three groups of GE10, GE30, and GE100. On the other hand, GH obtained in Example 2 was prepared to 1, 3, 10 mg / mL with sterilized distilled water, and these aqueous solutions were administered as test substances to three groups of GH10, GH30, and GH100. Sterile distilled water was administered to the control group.
試験方法は、群分けを行った日を0日とし、翌日から1日1回ゾンデを用いて被検物質または滅菌蒸留水を、各々10mL/kgを14日間連日経口投与した。投与期間中は毎日体重を測定した。また、投与最終日の14日目には糞便を採取し、投与最終日の翌日の15日目にはマウスの解剖を行った。解剖は、まずマウスを炭酸ガスで屠殺し、後大静脈から全採血を行った後、脾臓を摘出した。なお、動物実験は、「国立大学法人北海道大学動物実験に関する規程」に準じて実施した。
In the test method, the day of grouping was defined as
前記で得られたデータおよびサンプルを用いて、免疫賦活作用について調べた。なお、データ解析は、得られた数値に基づいて、各群における平均値および標準偏差を算出した。各群間の統計解析はExcel(登録商標;Microsoft)を用いてT検定を行い、コントロール群との平均値を比較することにより被検物質の効果を評価した。有意水準は危険率5%および1%とし、各々「*」および「**」で示す。 Using the data and samples obtained above, the immunostimulatory effect was examined. In the data analysis, an average value and a standard deviation in each group were calculated based on the obtained numerical values. The statistical analysis between each group performed the T test using Excel (trademark; Microsoft), and evaluated the effect of the to-be-tested substance by comparing the average value with a control group. Significance levels are 5% and 1%, and are indicated by “*” and “**”, respectively.
(1)体重
試験期間中における各群の体重推移を図5(a)〜(g)に示し、投与最終日の14日目には各群の体重の平均値を算出し、データ解析を行った。その結果を図6(a)に示し、これをグラフ化したものを図6(b)に示す。図5(a)〜(g)に示すように、全ての群において各個体の体重差は認められなかった。また、図6(a)および(b)に示すように、コントロール群と比較して、GEまたはGHの投与群の全てにおいて、有意差は認められなかった。
(1) Body weight Changes in body weight of each group during the test period are shown in FIGS. 5 (a) to (g). On the 14th day of the last day of administration, the average value of the body weight of each group is calculated and data analysis is performed. It was. The result is shown in FIG. 6A, and a graph of this is shown in FIG. 6B. As shown in FIGS. 5 (a) to (g), there was no difference in body weight among the individual groups in all groups. In addition, as shown in FIGS. 6A and 6B, no significant difference was observed in all of the GE or GH administration groups as compared to the control group.
(2)脾臓重量
摘出した脾臓重量を測定し、データ解析を行った。その結果を図7(a)に示し、これをグラフ化したものを図7(b)に示す。
(2) Spleen weight
The weight of the extracted spleen was measured and data analysis was performed. The result is shown in FIG. 7A, and a graph of this is shown in FIG. 7B.
その結果、コントロール群と比較して、GE30において、脾臓重量値が有意に高い値を示し(p<0.01)、脾臓が巨大化していることが明らかとなった。 As a result, compared with the control group, the spleen weight value was significantly higher in GE30 (p <0.01), and it was revealed that the spleen was enlarged.
(3)脾臓細胞によるサイトカインおよび抗体産生量
摘出した脾臓の脾臓細胞より産生されたサイトカインおよび免疫グロブリンの量をELISA法で定量した。測定方法は、摘出した脾臓から細胞懸濁液(2.8×106cells/mL)を調製し、培養プレートに分注した後、コンカナバリンA(ConA)を最終濃度1μg/mLとなるよう添加し、培養温度37℃、CO2濃度5%の条件下で、サイトカインについては3日間、免疫グロブリンについては5日間、各々培養することにより、脾臓細胞より産生された培養上清を得た。そして、サンドイッチ酵素免疫測定(サンドイッチELISA)法により、培養上清中のサイトカイン(IFN−γ,IL−12,IL−18,IL−6)濃度および免疫グロブリン(IgA,IgM)濃度を測定した。その結果を図8(a)〜(g)に示す。
(3) Amount of cytokine and antibody produced by spleen cells The amount of cytokine and immunoglobulin produced from the extracted spleen cells of the spleen was quantified by ELISA. The measurement method is to prepare a cell suspension (2.8 × 10 6 cells / mL) from the extracted spleen, dispense it to a culture plate, and then add concanavalin A (ConA) to a final concentration of 1 μg / mL. Then, under the conditions of a culture temperature of 37 ° C. and a CO 2 concentration of 5%, the culture supernatant produced from the spleen cells was obtained by culturing the cytokine for 3 days and the immunoglobulin for 5 days, respectively. Then, cytokine (IFN-γ, IL-12, IL-18, IL-6) concentration and immunoglobulin (IgA, IgM) concentration in the culture supernatant were measured by sandwich enzyme immunoassay (sandwich ELISA). The results are shown in FIGS.
その結果、コントロール群と比較して、GE30では、IFN−γ,IL−12,IL−18,IL−6,IgA,IgMのすべての値が有意に高い値を示し(p<0.05)、サイトカインおよび抗体の産生を促進することが明らかとなった。 As a result, compared with the control group, all values of IFN-γ, IL-12, IL-18, IL-6, IgA, and IgM were significantly higher in GE30 (p <0.05). Have been shown to promote the production of cytokines and antibodies.
(4)YAC−1腫瘍細胞傷害活性
摘出した脾臓からよりナチュラル・キラー(NK)細胞を単離し、YAC−1を標的細胞とした腫瘍細胞傷害活性をNK活性として測定した。すなわち、摘出した脾臓からNK細胞を単離した後、6.25×106cells/mLの濃度に調製し、これをエフェクター細胞(E)とした。一方、YAC−1細胞(大日本住友製薬)を2.5×105cells/mL、5×105cells/mL、1×106cells/mLの濃度に調製し、これを標的細胞(T)とした。EとTとの細胞数の比を100:1,50:1,25:1で混合し播種した96ウェルプレートを37℃(5%CO2)で22時間培養した。この96ウェルプレートをWST−1試薬(タカラバイオ)で2時間染色した後、マイクロプレートリーダー(コロナ)を用いて450nmの吸光値を測定した。なお、YAC−1細胞に対する傷害活性は次式により求めた。
(次式)
%(細胞傷害活性)=[1−{(E・T共培養の吸光値−E培養の吸光値)/(T培養の吸光値)}]×100
得られた数値に基づいて各々データ解析し、その結果を各々図9(a)〜(c)に示し、これを各々グラフ化したものを図10(a)〜(c)に示す。
(4) YAC-1 tumor cytotoxic activity Natural killer (NK) cells were isolated from the excised spleen, and tumor cytotoxic activity using YAC-1 as a target cell was measured as NK activity. That is, after isolating NK cells from the extracted spleen, it was prepared to a concentration of 6.25 × 10 6 cells / mL, and this was used as effector cells (E). On the other hand, YAC-1 cells (Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd.) were prepared to a concentration of 2.5 × 10 5 cells / mL, 5 × 10 5 cells / mL, 1 × 10 6 cells / mL, and these were designated as target cells (T). did. A 96-well plate mixed and seeded at a cell number ratio of E: T of 100: 1, 50: 1, 25: 1 was cultured at 37 ° C. (5% CO 2 ) for 22 hours. The 96-well plate was stained with WST-1 reagent (Takara Bio) for 2 hours, and then the absorbance value at 450 nm was measured using a microplate reader (Corona). In addition, the damaging activity with respect to YAC-1 cell was calculated | required by following Formula.
(Following formula)
% (Cytotoxic activity) = [1-{(absorbance value of ET co-culture−absorbance value of E culture) / (absorbance value of T culture)}] × 100
Each data analysis is performed based on the obtained numerical values, and the results are shown in FIGS. 9 (a) to 9 (c), respectively, and graphs of the results are shown in FIGS. 10 (a) to 10 (c).
その結果、E:Tの比100:1に場合には、コントロール群と比較して、GE30おいてNK細胞活性の有意な亢進が認められた(p<0.05)。 As a result, in the case of an E: T ratio of 100: 1, a significant increase in NK cell activity was observed in GE30 compared to the control group (p <0.05).
《粘度測定》
前記実施例3で投与した被検物質(投与液)の粘度を各々測定した。粘度測定は、実施例1で用いた方法にて6回測定を行った。各群における個々の相対粘度を図11(a)〜(f)に示し、6回の測定データの平均値を図12に示す。
<Viscosity measurement>
The viscosity of each test substance (administration solution) administered in Example 3 was measured. The viscosity was measured 6 times by the method used in Example 1. Individual relative viscosities in each group are shown in FIGS. 11 (a) to (f), and an average value of six measurement data is shown in FIG. 12.
その結果、GE、GHのいずれにおいても、濃度が増加するに伴って相対粘度の値が大きくなることが明らかとなった。 As a result, it has been clarified that the value of relative viscosity increases as the concentration increases in both GE and GH.
《光強度測定》
(1)投与液の測定
前記実施例3で投与した被検物質(投与液)の構造の特徴を調べるために、蛍光光度計を用いた反射光の光強度の測定を行った。実施例3で投与した被検物質を測定サンプルとし、精製アルギン酸(Sigma)を1,3,10mg/mLに調製しもの、およびカルボキシメチルセルロース(CMC;関東化学)を10mg/mLに調製したものを対照サンプルとした。CMCは滅菌蒸留水に溶解し、精製アルギン酸は12%炭酸ナトリウム水溶液に溶解して用いた。0.6mLの各サンプルを蛍光光度計に供し、蛍光波長と励起波長とを共に350nmとして、反応光の光強度を測定した。測定後、アルギン酸0.1%水溶液の光強度を100として各光強度を算出した。その結果を図13(a)に示し、これをグラフ化したものを図13(b)に示す。
<Light intensity measurement>
(1) Measurement of administration liquid In order to investigate the characteristics of the structure of the test substance (administration liquid) administered in Example 3, the light intensity of the reflected light was measured using a fluorometer. The test substance administered in Example 3 was used as a measurement sample, purified alginic acid (Sigma) prepared to 1,3,10 mg / mL, and carboxymethylcellulose (CMC; Kanto Chemical) prepared to 10 mg / mL A control sample was used. CMC was dissolved in sterilized distilled water, and purified alginic acid was dissolved in a 12% aqueous sodium carbonate solution. 0.6 mL of each sample was subjected to a fluorometer, and the light intensity of the reaction light was measured by setting both the fluorescence wavelength and the excitation wavelength to 350 nm. After the measurement, each light intensity was calculated with the light intensity of the 0.1% aqueous solution of alginic acid as 100. The result is shown in FIG. 13A, and a graph of this is shown in FIG. 13B.
図13(a)および(b)に示すように、GE30において著しく高い光強度が検出された。前記実施例3において、GE30に有意な免疫賦活作用が認められたことから、3mg/mLのGEには免疫賦活に亢進的に作用する特異的な構造を有していることが示唆された。また、GH30はGE30に比べて光強度が36.3%低下していた。これは、前記実施例4において、GH30はGE30に比べて粘度の低下が認められており、熱処理により糖分子の高次構造が崩壊していることが示唆された。なお、10mg/mLのアルギン酸における光強度が高い値を示しているのは、分子構造の中心に金属イオン塩が存在することで、架橋結合によって大きなクラスターが形成されるためであると考えられる。 As shown in FIGS. 13A and 13B, a significantly high light intensity was detected in GE30. In Example 3 above, a significant immunostimulatory effect was observed for GE30, suggesting that 3 mg / mL GE has a specific structure that enhances immunostimulation. Further, the light intensity of GH30 was reduced by 36.3% as compared with GE30. This indicates that the viscosity of GH30 is lower than that of GE30 in Example 4, and it is suggested that the higher order structure of the sugar molecule is destroyed by the heat treatment. The reason why the light intensity in 10 mg / mL alginic acid shows a high value is considered to be that a large cluster is formed by cross-linking due to the presence of the metal ion salt at the center of the molecular structure.
(2)GEの濃度検討
GEを滅菌蒸留水にて1,2,3,5,10mg/mLに調製したサンプルを、各々GE10,GE20,GE30,GE50,GE100とし、前記(1)と同様に反射光の光強度の測定を行った。サンプル調製および測定を各々4回行った。その結果を図14(a)に示し、これをグラフ化したものを図14(b)に示す。
(2) Examination of GE concentration Samples prepared with GE in sterile distilled water to 1, 2, 3, 5, 10 mg / mL are designated as GE10, GE20, GE30, GE50, and GE100, respectively, as in (1) above. The light intensity of the reflected light was measured. Sample preparation and measurement were each performed 4 times. The result is shown in FIG. 14 (a), and a graph of this is shown in FIG. 14 (b).
その結果、GE30,GE50,GE100における光強度は600以上の値を示し、GE30,GE50では、光強度は700以上の高い値を示すことが明らかとなった。 As a result, it was found that the light intensity at GE30, GE50, and GE100 showed a value of 600 or more, and that at GE30 and GE50, the light intensity showed a high value of 700 or more.
以上のような本実施例によれば、ガゴメ由来の粘性多糖類は、特定の粘度または特定の測定による反射率を有することにより、脾臓細胞におけるサイトカイン産生、抗体産生、およびYAC−1腫瘍細胞傷害活性を促進し、図15に示すような免疫応答に作用していることが示唆される。 According to the present Example as described above, the viscous polysaccharide derived from Gagome has a specific viscosity or a reflectance by a specific measurement, so that cytokine production, antibody production, and YAC-1 tumor cell damage in spleen cells It is suggested that the activity is promoted and acts on the immune response as shown in FIG.
また、本実施形態においては、水を溶媒として免疫賦活亢進作用に有効なガゴメ由来の粘性多糖類を抽出しており、この粘性多糖類の水性溶液の適度な粘稠性と免疫賦活作用とを利用して、とろみを有する機能性食品の開発が期待できる。 In the present embodiment, a viscous polysaccharide derived from gagome that is effective for enhancing immunostimulation is extracted using water as a solvent, and the appropriate viscosity of the aqueous solution of this viscous polysaccharide and the immunostimulatory action are obtained. Utilization can be expected to develop functional foods with thickness.
Claims (8)
ガゴメを粉砕する粉砕工程と、
粉砕したガゴメと水性溶媒とを混合して振盪することにより粘性多糖類の抽出液を得る抽出工程と、
粘性多糖類から塩類を除去する塩類除去工程と
を有するガゴメ由来の粘性多糖類の抽出方法。 A method for extracting a viscous polysaccharide from Gagome (Kjellmaniella crassifolia Miyabe),
Crushing step of crushing gagome;
An extraction step of obtaining a viscous polysaccharide extract by mixing and shaking the pulverized gagome and an aqueous solvent;
A method for extracting a gagome-derived viscous polysaccharide comprising a salt removing step of removing salts from the viscous polysaccharide.
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