JP2009160074A - 移植材とその製造方法 - Google Patents
移植材とその製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2009160074A JP2009160074A JP2007340178A JP2007340178A JP2009160074A JP 2009160074 A JP2009160074 A JP 2009160074A JP 2007340178 A JP2007340178 A JP 2007340178A JP 2007340178 A JP2007340178 A JP 2007340178A JP 2009160074 A JP2009160074 A JP 2009160074A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- derived cells
- subculture
- adipose
- fat
- cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
【課題】移植時に接着効果のあるサイトカインを維持し、治療効果を高める。
【解決手段】脂肪組織から脂肪由来細胞を分離する分離ステップＳ１と、該分離ステップＳ１において分離された脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを繰り返す継代培養ステップＳ２と、該継代培養ステップＳ２において得られた培養細胞と、脂肪組織から分離された脂肪由来細胞とを混合する混合ステップＳ３とを備える移植材の製造方法を提供する。
【選択図】 図１
【解決手段】脂肪組織から脂肪由来細胞を分離する分離ステップＳ１と、該分離ステップＳ１において分離された脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを繰り返す継代培養ステップＳ２と、該継代培養ステップＳ２において得られた培養細胞と、脂肪組織から分離された脂肪由来細胞とを混合する混合ステップＳ３とを備える移植材の製造方法を提供する。
【選択図】 図１
Description
本発明は、移植材とその製造方法に関するものである。
従来、ヒトから採取した脂肪組織を洗浄し、消化酵素液とともに攪拌することにより脂肪組織から脂肪由来細胞を単離させる技術が知られている（例えば、特許文献１参照。）。
この技術において得られた脂肪由来細胞は、例えば、種々の生体組織への分化能を有するので、継代培養することにより増殖させ、移植材として利用することができる。
これは、脂肪由来細胞には脂肪由来幹細胞や血管内皮細胞、リンパ球などが含まれるが、継代培養することで、接着細胞である脂肪由来幹細胞を選択的に培養、増殖させることができ、幹細胞の持つ特徴を強く示すようになるからである。
この技術において得られた脂肪由来細胞は、例えば、種々の生体組織への分化能を有するので、継代培養することにより増殖させ、移植材として利用することができる。
これは、脂肪由来細胞には脂肪由来幹細胞や血管内皮細胞、リンパ球などが含まれるが、継代培養することで、接着細胞である脂肪由来幹細胞を選択的に培養、増殖させることができ、幹細胞の持つ特徴を強く示すようになるからである。
しかしながら、発明者らは、脂肪由来細胞を継代培養することにより、移植時の細胞保護効果があるサイトカインの分泌量が低下していくことを発見した。
このため、従来のように、継代培養することにより増殖させた移植材では、移植時における細胞保護効果が低下し、治療効果を高めることができないという不都合がある。
このため、従来のように、継代培養することにより増殖させた移植材では、移植時における細胞保護効果が低下し、治療効果を高めることができないという不都合がある。
本発明は上述した事情に鑑みてなされたものであって、移植時に細胞保護効果のあるサイトカインを維持し、治療効果を高めることができる移植材とその製造方法を提供することを目的としている。
上記目的を達成するために、本発明は以下の手段を提供する。
本発明は、脂肪組織から分離した脂肪由来細胞と、該脂肪由来細胞を継代培養することにより得られた培養細胞とを混合してなる移植材を提供する。
本発明によれば、脂肪組織から分離しただけの脂肪由来細胞と、脂肪組織を継代培養して得られた培養細胞とを含むので、継代培養により失われるサイトカインを維持することができ、また、継代培養により産生されるサイトカインをも含むことができる。
本発明は、脂肪組織から分離した脂肪由来細胞と、該脂肪由来細胞を継代培養することにより得られた培養細胞とを混合してなる移植材を提供する。
本発明によれば、脂肪組織から分離しただけの脂肪由来細胞と、脂肪組織を継代培養して得られた培養細胞とを含むので、継代培養により失われるサイトカインを維持することができ、また、継代培養により産生されるサイトカインをも含むことができる。
すなわち、発明者らは、研究の結果、脂肪組織から分離した脂肪由来細胞が産生するサイトカインであるＩＧＦ−１（インスリン様成長因子）に細胞保護や増殖作用があるが、このサイトカインが継代培養によって徐々に失われていくことを発見した。また、発明者らは、脂肪組織由来細胞の継代培養によって、血管新生を促すサイトカインであるＶＥＧＦ（血管内皮細胞増殖因子）が増加することも発見した。
したがって、本発明によれば、ＩＧＦ−１を含むことにより、移植細胞の保護や増殖、移植周辺組織の再生を促し、かつ、継代培養により産生されるＶＥＧＦによって血管新生を促進して脂肪由来細胞や移植周辺組織の増殖効果を高めることができる。その結果、移植部位において組織の再生を促進し、移植部位の治療効果を高めることができる。
上記発明においては、前記培養細胞が、脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを１〜５回繰り返して得られることとしてもよい。
継代培養により産生されるＶＥＧＦは６回以上の継代によって著しく少なくなることがわかった。そこで、継代回数を５回以下に限定することで、血管新生に有用なＶＥＧＦを十分に含む移植材を提供することができる。
継代培養により産生されるＶＥＧＦは６回以上の継代によって著しく少なくなることがわかった。そこで、継代回数を５回以下に限定することで、血管新生に有用なＶＥＧＦを十分に含む移植材を提供することができる。
また、本発明は、脂肪組織から脂肪由来細胞を分離する分離ステップと、該分離ステップにおいて分離された脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを繰り返す継代培養ステップと、該継代培養ステップにおいて得られた培養細胞と、脂肪組織から分離された脂肪由来細胞とを混合する混合ステップとを備える移植材の製造方法を提供する。
上記発明においては、前記継代培養ステップが、培養と継代とを１〜５回繰り返して行うことが好ましい。
上記発明においては、前記継代培養ステップが、培養と継代とを１〜５回繰り返して行うことが好ましい。
本発明によれば、移植時に細胞保護効果のあるサイトカインを維持し、治療効果を高めることができるという効果を奏する。
本発明の一実施形態に係る移植材とその製造方法について、図１〜図３を参照して以下に説明する。
本実施形態に係る移植材は、脂肪組織から分離した脂肪由来幹細胞や血管内皮細胞、リンパ球などを含んだ脂肪由来細胞と、該脂肪由来細胞を継代培養することにより得られた培養細胞とを混合して構成されている。
本実施形態に係る移植材は、脂肪組織から分離した脂肪由来幹細胞や血管内皮細胞、リンパ球などを含んだ脂肪由来細胞と、該脂肪由来細胞を継代培養することにより得られた培養細胞とを混合して構成されている。
さらに具体的には、本実施形態に係る移植材は、図１に示されるように、以下の製造方法により製造される。
すなわち、ヒトや哺乳動物から採取した脂肪組織を消化酵素液とともに攪拌することにより脂肪由来細胞を単離させ（分離ステップＳ１）と、単離された脂肪由来細胞を継代培養し（継代培養ステップＳ２）、得られた培養細胞と、新たに採取した脂肪組織を消化酵素液とともに攪拌することにより得られた培養されていない脂肪由来細胞とを混合する（混合ステップＳ３）により製造される。
すなわち、ヒトや哺乳動物から採取した脂肪組織を消化酵素液とともに攪拌することにより脂肪由来細胞を単離させ（分離ステップＳ１）と、単離された脂肪由来細胞を継代培養し（継代培養ステップＳ２）、得られた培養細胞と、新たに採取した脂肪組織を消化酵素液とともに攪拌することにより得られた培養されていない脂肪由来細胞とを混合する（混合ステップＳ３）により製造される。
継代培養ステップＳ２は、分離ステップにおいて単離された脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントあるいはサブコンフルエントになったときに継代することを１〜５回繰り返して行うことにより実施される。
この製造方法により製造された移植材は、上述したように、継代培養された脂肪由来細胞と、脂肪組織から単離されただけの培養されていない脂肪由来細胞とを含んでいる。
この製造方法により製造された移植材は、上述したように、継代培養された脂肪由来細胞と、脂肪組織から単離されただけの培養されていない脂肪由来細胞とを含んでいる。
発明者らは、以下の実験を行った結果、脂肪組織から分離した脂肪由来細胞に含まれるサイトカインであるＩＧＦ−１（インスリン様成長因子）が継代培養によって徐々に失われていくことを発見した。また、発明者らは、脂肪由来細胞の継代培養によって、血管新生を促すサイトカインであるＶＥＧＦ（血管内皮細胞増殖因子）が増加することも発見した。
（実験条件）
使用細胞：皮下脂肪組織由来細胞
培養培地：Ｄ−ＭＥＭ（Ｆ−１２）培地＋１０％ウシ胎仔血清
測定試薬：Ｈｕｍａｎ
ＩＧＦ−１ ＥＬＩＳＡ 測定キット（Ｒ＆Ｄ社製）
Ｈｕｍａｎ
ＶＥＧＦ−Ｃ ＥＬＩＳＡ 測定キット（Ｒ＆Ｄ社製）
使用細胞：皮下脂肪組織由来細胞
培養培地：Ｄ−ＭＥＭ（Ｆ−１２）培地＋１０％ウシ胎仔血清
測定試薬：Ｈｕｍａｎ
ＩＧＦ−１ ＥＬＩＳＡ 測定キット（Ｒ＆Ｄ社製）
Ｈｕｍａｎ
ＶＥＧＦ−Ｃ ＥＬＩＳＡ 測定キット（Ｒ＆Ｄ社製）
（実験方法）
（１） 皮下脂肪組織からコラゲナーゼ処理で脂肪由来細胞を回収し、培養培地に懸濁して培養容器に播種した。
（２） 一晩静置した後、培養上清を回収し、−３０℃で凍結保存した。
（３） ３〜４日ごとに培地交換しながら培養を継続した。
（４） サブコンフルエントになったところで培養上清を回収して凍結保存し、細胞をトリプシン処理により培養容器から剥離させて回収し、新たな培養容器に５０００〜７０００cells／cm２の播種密度で回収された脂肪由来細胞を播種することにより継代した。
（５） （３）および（４）を繰り返して、脂肪由来細胞の継代培養を行い、継代回数６回までの培養上清を回収した。
（６） 凍結保存していた培養上清を融解し、測定試薬を用いてサイトカインの測定を行った。
（１） 皮下脂肪組織からコラゲナーゼ処理で脂肪由来細胞を回収し、培養培地に懸濁して培養容器に播種した。
（２） 一晩静置した後、培養上清を回収し、−３０℃で凍結保存した。
（３） ３〜４日ごとに培地交換しながら培養を継続した。
（４） サブコンフルエントになったところで培養上清を回収して凍結保存し、細胞をトリプシン処理により培養容器から剥離させて回収し、新たな培養容器に５０００〜７０００cells／cm２の播種密度で回収された脂肪由来細胞を播種することにより継代した。
（５） （３）および（４）を繰り返して、脂肪由来細胞の継代培養を行い、継代回数６回までの培養上清を回収した。
（６） 凍結保存していた培養上清を融解し、測定試薬を用いてサイトカインの測定を行った。
実験の結果を図２および図３に示す。
図２は、継代時に得られた培養上清に含まれるＩＧＦ−１の量の変化、図３は、ＶＥＧＦの量の変化をそれぞれ示している。
図２は、継代時に得られた培養上清に含まれるＩＧＦ−１の量の変化、図３は、ＶＥＧＦの量の変化をそれぞれ示している。
図２によれば、ＩＧＦ−１は細胞の培養開始後、継代の回数を追うに従って分泌量が減少していることが示されており、培養前の状態、すなわち、脂肪組織から単離しただけの状態において、特に多く含まれていることが示されている。
また、図３によれば、ＶＥＧＦは細胞の培養開始時には全く含まれておらず、培養開始後、継代の回数を追うに従って分泌量が増加し、継代回数３回の時点で分泌量が最も増加していることが示されている。また、この図３によれば、継代回数５回の時点でＶＥＧＦの分泌量が急激に減少していることが示されている。したがって、継代回数１〜５回の範囲の脂肪由来細胞であれば、多くのＶＥＧＦを分泌しているものとなる。
したがって、脂肪組織から単離しただけの脂肪由来細胞と、単離後、１〜５回の継代培養を繰り返した脂肪由来細胞とを混合してなる本実施形態に係る移植材は、ＩＧＦ−１およびＶＥＧＦを多く含んでいるので、以下の効果を奏する。
すなわち、ＩＧＦ−１は、活性酸素障害の軽減、外傷性運動神経細胞死の抑制、細胞成長（特に神経細胞）、細胞のエネルギ代謝を亢進させ細胞自体の成長を促進するなど、様々な細胞保護作用を有する。さらに、細胞の増殖、生存、分化に関与することから、心筋再生治療の際に効果をもたらす可能性がある。すなわち、本実施形態に係る移植材を虚血性心筋症モデルに投与することで、虚血により心筋細胞のアポトーシスが抑制され、残存心筋の肥大促進や血管新生促進効果により高い心筋保護作用を得ることができる。
また、ＶＥＧＦは、血管内皮細胞表面にある血管内皮細胞増殖因子受容体に結合し、細胞分裂や遊走・分化の刺激または微小血管の血管透過性を亢進させたりする作用があり、ＩＧＦ−１と同様に、心筋再生治療に効果を及ぼす可能性のある液性因子の１つである。
したがって、本実施形態に係る移植材によれば、これらＩＧＦ−１およびＶＥＧＦの効果を併せ持ち、移植部位を迅速に治療することができるという利点を有する。
したがって、本実施形態に係る移植材によれば、これらＩＧＦ−１およびＶＥＧＦの効果を併せ持ち、移植部位を迅速に治療することができるという利点を有する。
Ｓ１ 分離ステップ
Ｓ２ 継代培養ステップ
Ｓ３ 混合ステップ
Ｓ２ 継代培養ステップ
Ｓ３ 混合ステップ
Claims (4)
- 脂肪組織から分離した脂肪由来細胞と、
該脂肪由来細胞を継代培養することにより得られた培養細胞とを混合してなる移植材。 - 前記培養細胞が、脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを１〜５回繰り返して得られる請求項１に記載の移植材。
- 脂肪組織から脂肪由来細胞を分離する分離ステップと、
該分離ステップにおいて分離された脂肪由来細胞を培養容器に播種して培地交換を行いながら培養し、コンフルエントになったときに継代することを繰り返す継代培養ステップと、
該継代培養ステップにおいて得られた培養細胞と、脂肪組織から分離された脂肪由来細胞とを混合する混合ステップとを備える移植材の製造方法。 - 前記継代培養ステップが、培養と継代とを１〜５回繰り返して行う請求項３に記載の移植材の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2007340178A JP2009160074A (ja) | 2007-12-28 | 2007-12-28 | 移植材とその製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2007340178A JP2009160074A (ja) | 2007-12-28 | 2007-12-28 | 移植材とその製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2009160074A true JP2009160074A (ja) | 2009-07-23 |
Family
ID=40963393
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2007340178A Pending JP2009160074A (ja) | 2007-12-28 | 2007-12-28 | 移植材とその製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2009160074A (ja) |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005035739A1 (ja) * | 2003-10-14 | 2005-04-21 | Kohji Nishida | 再生治療システム |
| JP2007507202A (ja) * | 2003-10-07 | 2007-03-29 | 株式会社バイオマスター | 脂肪由来前駆細胞の細胞分化 |
-
2007
- 2007-12-28 JP JP2007340178A patent/JP2009160074A/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2007507202A (ja) * | 2003-10-07 | 2007-03-29 | 株式会社バイオマスター | 脂肪由来前駆細胞の細胞分化 |
| WO2005035739A1 (ja) * | 2003-10-14 | 2005-04-21 | Kohji Nishida | 再生治療システム |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Tonti et al. | From bone marrow to therapeutic applications: different behaviour and genetic/epigenetic stability during mesenchymal stem cell expansion in autologous and foetal bovine sera? | |
| CN102911918B (zh) | 一种基因工程细胞及其在nk细胞扩增中的应用 | |
| EP2414511B1 (en) | Isolation of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells | |
| Chong et al. | Developmental origins and lineage descendants of endogenous adult cardiac progenitor cells | |
| Fink et al. | Isolation and expansion of adipose-derived stem cells for tissue engineering | |
| KR102155623B1 (ko) | 성체 심장 줄기세포 군집 | |
| CN102367435A (zh) | 人富血小板血浆的制备及在人间充质干细胞分离培养中的应用 | |
| Ye et al. | Cardiac stem cell therapy: review of the native cardiac progenitor cells and future direction | |
| KR101175175B1 (ko) | 인간 줄기세포에서 고활성 줄기세포를 분리하는 방법 및상기 방법에 의해 분리된 고활성 줄기 세포 | |
| CN1898380A (zh) | 从乳腺分泌物中分离细胞的方法 | |
| JP2023179751A (ja) | 増幅毛包間葉系細胞の製造方法及びその使用 | |
| KR20160079390A (ko) | 줄기세포 배양을 위한 배지조성물 | |
| JP7064254B2 (ja) | ヒト臍帯から幹細胞を分離する方法 | |
| KR101508413B1 (ko) | 키메라 중간엽 줄기세포군 및 그의 제조방법 | |
| JP2009160074A (ja) | 移植材とその製造方法 | |
| KR102121417B1 (ko) | Stat3 활성화제를 이용한 골격근세포 분화 유도용 조성물 및 이를 이용한 골격근세포 분화 유도 방법 | |
| Lee et al. | Minimal cube explant provides optimal isolation condition of mesenchymal stem cells from umbilical cord | |
| KR101768632B1 (ko) | 칼슘 펄스를 통한 배양상피세포층의 분리방법 | |
| JP2013000121A (ja) | 上皮細胞培養用培地、それを用いた上皮細胞培養方法及びそれより得られた上皮細胞 | |
| JP2022550911A (ja) | 軟骨形成ヒト間葉系幹細胞（ｍｓｃ）シート | |
| Miyoshi et al. | Expansion of mouse hematopoietic progenitor cells in three-dimensional cocultures on frozen-thawed stromal cell layers formed within porous scaffolds | |
| JP2012235731A (ja) | 骨格筋芽細胞の心筋細胞への分化方法、心筋移植材の製造方法および心筋移植材 | |
| WO2014135949A2 (en) | Novel method of progenitor cell expansion | |
| KR102066159B1 (ko) | 줄기세포의 층분리 배양 및 증식 방법 | |
| CN107189985B (zh) | miRNA分子及其抑制剂在调控骨间充质干细胞成脂分化中的应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20101111 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20121113 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20130312 |