JP2008517614A5 - - Google Patents
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本発明の特定の実施態様においては、株はSaccharomyces cerevisiae種に属し、前記の株のユビキチンリガーゼ複合体SCFMet30のMet30レセプター・サブユニットをコードする遺伝子(MET30)の不活性化は、特にMET30遺伝子配列の破壊により行われ、次いで、前記の株のMET4遺伝子及び/又は前記の株のMET32遺伝子の不活性化もまた、特に対応する遺伝子配列の破壊により実施される。
[proPGK1−SAM2融合遺伝子によるSAM3及びSAM4遺伝子の置換]
本発明に記載の方法を実施するうえで好都合な方法においては、酵母細胞が一旦分泌したSAMを再び取込こむことを有意に減らすために、SAM4遺伝子を、隣接する高親和性SAMトランスポータをコードするSAM3遺伝子と同時に不活性化した。
本発明記載の方法を実施するうえで好都合な他の方法においては、このSAM3及びSAM4遺伝子の二重不活性化は、強力構成的プロモータPGK1の制御下で酵素Sam2p(SAM合成酵素2)を過剰発現する融合遺伝子をこれら遺伝子座に挿入することで、実施された。このようにして構築した酵母細胞は、このゲノムに施された特異的な修飾の結果による低減したSAMの異化、追加SAM2遺伝子による不活性化したSAMの高親和性輸送システム及びSAM合成酵素活性の発現増加、並びに強力構成的プロモータによる過増殖(一方、天然のSAM1及びSAM2遺伝子プロモータは内在性の有機硫黄含有化合物の濃度上昇により負の制御を受ける、Thomas and Surdin−Kerjan, 1997, Microbiol. Mol. Biol. Rev. 61, 503−532)、という利点を備えている。第XVI染色体左腕レベルのSAM3及びSAM4遺伝子座に挿入されたproPGK1−SAM2融合遺伝子(構築はsam3−sam4::proPGK1−SAM2などの株の遺伝子型に示される)を有する株は、その親株に比較してSAM生産が増加していることが十分に示された。
前記で得られた、PGK1遺伝子プロモータの制御下にあるSAM2遺伝子を有するプラスミドは、proPGK−SAM2遺伝子を含む断片の増幅のために、二機能性オリゴヌクレオチドと共に用いられた。オリゴヌクレオチドSAM3−PGKは、標的である5’領域のSAM3遺伝子配列(−80から−3、下に太字(下線)タイプで示す)に相同の77ヌクレオチド及びそれに続づくPGK1遺伝子プロモータ領域(−771から−748)に相同の24ヌクレオチドを含む。オリゴヌクレオチドSAM4−SAM2は、標的である3’領域のSAM4遺伝子配列(1043から974、下に太字(下線)タイプで示す)に相同の70ヌクレオチド、及びそれに続くSAM2遺伝子末端(1155から1134)に相同の21ヌクレオチドを含む。ヌクレオチドは各遺伝子の翻訳開始のATGより番号が振られている。
本発明に記載の方法を実施するうえで好都合な方法においては、酵母細胞が一旦分泌したSAMを再び取込こむことを有意に減らすために、SAM4遺伝子を、隣接する高親和性SAMトランスポータをコードするSAM3遺伝子と同時に不活性化した。
本発明記載の方法を実施するうえで好都合な他の方法においては、このSAM3及びSAM4遺伝子の二重不活性化は、強力構成的プロモータPGK1の制御下で酵素Sam2p(SAM合成酵素2)を過剰発現する融合遺伝子をこれら遺伝子座に挿入することで、実施された。このようにして構築した酵母細胞は、このゲノムに施された特異的な修飾の結果による低減したSAMの異化、追加SAM2遺伝子による不活性化したSAMの高親和性輸送システム及びSAM合成酵素活性の発現増加、並びに強力構成的プロモータによる過増殖(一方、天然のSAM1及びSAM2遺伝子プロモータは内在性の有機硫黄含有化合物の濃度上昇により負の制御を受ける、Thomas and Surdin−Kerjan, 1997, Microbiol. Mol. Biol. Rev. 61, 503−532)、という利点を備えている。第XVI染色体左腕レベルのSAM3及びSAM4遺伝子座に挿入されたproPGK1−SAM2融合遺伝子(構築はsam3−sam4::proPGK1−SAM2などの株の遺伝子型に示される)を有する株は、その親株に比較してSAM生産が増加していることが十分に示された。
前記で得られた、PGK1遺伝子プロモータの制御下にあるSAM2遺伝子を有するプラスミドは、proPGK−SAM2遺伝子を含む断片の増幅のために、二機能性オリゴヌクレオチドと共に用いられた。オリゴヌクレオチドSAM3−PGKは、標的である5’領域のSAM3遺伝子配列(−80から−3、下に太字(下線)タイプで示す)に相同の77ヌクレオチド及びそれに続づくPGK1遺伝子プロモータ領域(−771から−748)に相同の24ヌクレオチドを含む。オリゴヌクレオチドSAM4−SAM2は、標的である3’領域のSAM4遺伝子配列(1043から974、下に太字(下線)タイプで示す)に相同の70ヌクレオチド、及びそれに続くSAM2遺伝子末端(1155から1134)に相同の21ヌクレオチドを含む。ヌクレオチドは各遺伝子の翻訳開始のATGより番号が振られている。
増幅により得られた断片は、W744−1A株を形質転換、そしてSAMに関する原栄養形質転換体の選択による、一段階破壊実験に用いた(Rothstein, 1991, Methods in Enzymology, 194, 281−301)(図2B参照)。
proPGK−SAM2遺伝子によるSAM3及びSAM4遺伝子の同時置換はPCRにより証明した。
CY273株は、株CY270−7D(Mata、his3、leu2、ura3、trp1、met32::TRP1、ado1::URA3、sam3−sam4::proPGK1−SAM2)及び株CY258−10D(Matα、his3、leu2、ura3、trp1、met32::TRP1、met30::URA3、ado1::URA3、sam3−sam4::proSAM4−SAM2、mht1)を交配し、得られた二倍体に胞子を形成させ、次いで、求める遺伝子組換えを有する胞子を選択するために得られた四分子を分析することで、取得された。
proPGK−SAM2遺伝子によるSAM3及びSAM4遺伝子の同時置換はPCRにより証明した。
CY273株は、株CY270−7D(Mata、his3、leu2、ura3、trp1、met32::TRP1、ado1::URA3、sam3−sam4::proPGK1−SAM2)及び株CY258−10D(Matα、his3、leu2、ura3、trp1、met32::TRP1、met30::URA3、ado1::URA3、sam3−sam4::proSAM4−SAM2、mht1)を交配し、得られた二倍体に胞子を形成させ、次いで、求める遺伝子組換えを有する胞子を選択するために得られた四分子を分析することで、取得された。
Claims (1)
- S−アデノシルメチオニン合成酵素1をコードする遺伝子、S−アデノシルメチオニン合成酵素2をコードする遺伝子、低親和性メチオニン透過酵素をコードする遺伝子、高親和性メチオニン透過酵素をコードする遺伝子、超低親和性メチオニン透過酵素をコードする遺伝子、メチオニンの輸送が可能な広域スペクトル透過酵素をコードする遺伝子、を含む群から選択される前記株の一つの遺伝子の少なくとも一つのプロモータ配列が、酵母の強力プロモータ配列と置換されていることを特徴とする、請求項3又は4に記載の遺伝子修飾された酵母株の使用。
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