JP2008500269A - 天然免疫グロブリン結合試薬とその作製及び使用方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願はUSSN60/509,850(発明の名称“NATIVE IMMUNOGLOBULIN BINDING REAGENTS AND METHODS FOR MAKING AND USING SAME”発明者Seed及びLi,出願日2003年10月8日)の非仮特許出願である。本願はUSSN60/509,850の優先権を主張し、その開示内容全体を参考資料として全目的で本明細書に組込む。
本発明は一般に変性免疫グロブリンよりも天然免疫グロブリンと優先的に結合する結合試薬に関する。本発明は一般にこれらの結合試薬の作製方法と、各種研究、診断及び治療背景におけるその使用方法にも関する。これらの方法と結合試薬は限定されないが、抗体に対する抗体に関するものを含めた広範な免疫相互作用の分析(例えばイムノブロットした蛋白質の分析)を実質的に改善及び強化する。本発明は新規抗体とその作製及び使用方法にも関し、限定されないが、天然免疫グロブリンと優先的に結合するモノクローナル抗体とポリクローナル抗体が挙げられる。本発明はこのようなモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマと、前記抗体をコードする核酸分子を発現する組換え宿主細胞にも関する。本発明はこれらの抗体と結合試薬を利用する研究、治療及び診断方法及び組成物、並びに前記組成物を含むキットにも関する。
抗原と抗体(又は任意結合試薬)を結合する力は任意の2種の無関係の蛋白質(例えばヒト血清アルブミンやヒトトランスフェリン等の他の巨大分子)間に生じる非特異的相互作用と本質的に変わらない。これらの分子間力は一般に(1)静電力;(2)水素結合力;(3)疎水力;及び(4)ファンデルワールス力の主に4種類に分類される。静電力は2本の蛋白質側鎖上の逆電荷のイオン基間の吸引による。吸引力(F)は電荷間の距離(d)の二乗に反比例する。水素結合力は−−OH、−−NH2及び−−COOH等の親水基間の可逆的水素架橋の形成により提供される。これらの力は主にこれらの基をもつ2分子の緊密配置に依存する。疎水力は水中の油滴が結合して大きな1個の液滴を形成すると同様に作用する。従って、バリン、ロイシン及びフェニルアラニン上の側鎖等の非極性疎水基は水性環境で会合する傾向がある。最後に、ファンデルワールス力は外部電子雲間の相互作用に依存する分子間に生じる力である。
NIgSBR又は抗NIgSAbと天然免疫グロブリンの結合親和性は測定することができ、上記全力の測定の蓄積である。このような測定を実施するための標準方法は当業者に周知であり、天然免疫グロブリンに対する本発明の任意化合物又は抗体の親和性を測定するために直接適用することができる。
上記のように、「親和性」なる用語は抗体等の結合試薬と単一抗原決定基の結合を意味する。しかし、多くの場合には抗体と多価抗原の相互作用が問題となる。「アビディティ」なる用語はこの結合を表すために使用される。アビディティに寄与する因子は複雑であり、抗原上の2個以上の決定基と決定基自体の不均質性に対するポリクローナル試料中の抗体の不均質性が挙げられる。大半の抗原は多価であるため、2個の抗原分子と抗体の結合は個々の抗体相互作用の算術的合計よりも大きくなり、場合によっては何倍にもなる。従って、抗血清と多価抗原の間のアビディティ測定値は抗体と単一抗原決定基の間のアビディティよりも多少大きいと理解することができる。
本発明の少なくとも1種の抗NIgSAbは当分野で周知のように、場合により細胞株、混合細胞株、不死化細胞又は不死化細胞のクローン集団により産生させることができる。例えば各々参考資料としてその開示内容全体を本明細書に組込むAusubelら(Ed.),Current Protocols in Molecular Biology,(John Wiley & Sons,Inc.,New York,New York(1987−2001));Sambrookら,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,2nd Edition,(Cold Spring Harbor,NY(1989))及びSambrookら,Molecular Cloning−A Laboratory Manual(3rd Ed.),Vol.1−3,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,New York,2000(「Sambrook」と総称する);Harlow and Lane,Antibodies.A Laboratory Manual,(Cold Spring Harbor,NY(1989));Colliganら(Eds.),Current Protocols in Immunology,(John Wiley & Sons,Inc.,NY(1994−2001));Colliganら,Current Protocols in Protein Science,(John Wiley & Sons,NY,NY,(1997−2001))参照。
最初の免疫の前に免疫前血清を採取する。各動物に例えば許容可能な免疫アジュバントと共に天然免疫グロブリン約0.1mg〜約1000mgを投与する。このような許容可能なアジュバントとしては限定されないが、フロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、ミョウバン沈殿、Corynebacterium parvumとtRNAを含む油中水エマルションが挙げられる。初期免疫は天然免疫グロブリンを好ましくはフロイント完全アジュバントに加え、皮下(SC)、腹腔内(IP)又は両者の複数部位に投与する。各動物から一定間隔、好ましくは1週間おきに採血し、抗体力価を測定する。初期免疫後に動物にブースター注射してもよいし、しなくてもよい。ブースター注射する動物は一般に、等量の抗原をフロイント不完全アジュバントに加えて同一経路で投与する。ブースター注射は最大力価が得られるまで約3週間隔で実施する。各ブースター免疫から約7日後又は単一免疫後約1週間おきに動物から採血し、血清を採取し、アリコートを約−20℃で保存する。この方法を使用して本発明のポリクローナル本発明の抗NIgSAbを生産することができる。
サブトラクティブ免疫は標準免疫に代わる強力な方法であり、真にユニークな抗体を生産することができる。サブトラクティブ免疫は標準免疫により得られないモノクローナル抗体の生産に広く実施され、成功を収めている。サブトラクティブ免疫は所望抗原に対するモノクローナル抗体の作製を実質的に強化することができる独特な免疫寛容アプローチを利用する。このアプローチは該当抗原に構造的又は機能的に関連する可能性のある免疫優性又は他の非所望抗原(寛容原)に対して宿主動物を寛容にすることに基づく。宿主動物の寛容は当分野で公知の数種の方法の1つ(High Zone、Neonatal、又は薬剤誘導寛容)により実施することができる。寛容動物に次に所望抗原(免疫原)を接種し、その後の免疫応答により作製された抗体を所望抗原反応性についてスクリーニングする。
本明細書に記載する情報を使用し、本明細書に記載する方法を使用するか又は当分野で公知のように少なくとも1種の抗NIgSAbをコードする本発明の核酸分子を得ることができる。
本発明の単離核酸は当分野で周知の通り、(a)組換え法、(b)合成技術、(c)精製技術、又はその組み合わせにより作製することができる。
本発明の単離核酸組成物(例えばRNA、cDNA、ゲノムDNA、又はその任意組み合わせ)は当業者に公知の多数のクローニング法を使用して生物起源から得ることができる。所定態様では、ストリンジェント条件下で本発明のポリヌクレオチドと選択的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブを使用してcDNA又はゲノムDNAライブラリーで所望配列を同定する。RNAの単離とcDNA及びゲノムライブラリーの構築は当業者に周知である(例えばAusubel,前出;又はSambrook,前出参照)。
本発明の単離核酸は公知方法により直接化学合成により作製することもできる(例えばAusubelら,前出参照)。化学合成は一般に、相補的配列とのハイブリダイゼーション又は1本鎖を鋳型として使用するDNAポリメラーゼによる重合により2本鎖DNAに変換することが可能な1本鎖オリゴヌクレオチドを生産する。当業者に自明の通り、DNAの化学合成は一般に約100塩基以下の配列には最も有効であるが、化学又はリガーゼ法により単に短い配列のライゲーションにより長い配列を得ることができる。
本発明は更に本発明の核酸を含む組換え発現カセットを提供する。本発明の核酸配列(例えば本発明の抗体をコードするcDNA又はゲノム配列)を使用して、少なくとも1種の所望宿主細胞に導入可能な組換え発現カセットを構築することができる。組換え発現カセットは一般に所期宿主細胞におけるポリヌクレオチドの転写を誘導する転写開始調節配列と機能的に連結した本発明のポリヌクレオチドを含む。本発明の核酸の発現を誘導するには異種プロモーターと非異種(即ち内在)プロモーターの両者を利用することができる。
本発明は本発明の単離核酸分子を含むベクター、組換えベクターで遺伝子組換えされた宿主細胞、及び当分野で周知のような組換え技術による少なくとも1種の抗NIgSAbの生産にも関する。例えば各々参考資料としてその開示内容全体を本明細書に組込むSambrookら,前出;Ausubelら,前出参照。
抗NIgSAbは限定されないが、プロテインA又はプロテインG精製、硫酸アンモニウム又はエタノール沈殿、酸抽出、イオン又はカチオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー及びレクチンクロマトグラフィー等の周知方法により血清、又はハイブリドーマ又は組換え細胞培養から回収及び精製することができる。高性能液体クロマトグラフィー(「HPLC」)も精製に利用することができる。例えば各々参考資料としてその開示内容全体を本明細書に組込むColligan,Current Protocols in Immunology、又はCurrent Protocols in Protein Science,(John Wiley & Sons,New York,New York,1997−2001),例えば第1,4,6,8,9,10章参照。本明細書に記載する他の文献の多くに加え、種々の精製並びに関連蛋白質フォールディング及びリフォールディング法が当分野で周知であり、抗体又は他のNIgSBR分子精製に適用することができ、例えばR.Scopes,Protein Purification,Springer−Verlag,N.Y.(1982);Deutscher,Methods in Enzymology Vol.182:Guide to Protein Purification,Academic Press,Inc.N.Y.(1990);Sandana Bioseparation of Proteins,Academic Press,Inc.(1997);Bollagら,Protein Methods,2nd Edition Wiley−Liss,NY(1996);Walker The Protein Protocols Handbook Humana Press,NJ(1996);Harris and Angal Protein Purification Applications:A Practical Approach IRL Press at Oxford,Oxford,England(1990);Scopes Protein Purification:Principles and Practice 3rd Edition Springer Verlag,NY(1993);Janson and Ryden Protein Purification:Principles,High Resolution Methods and Applications,Second Edition Wiley−VCH,NY(1998);及びWalker Protein Protocols on CD−ROM Humana Press,NJ(1998);並びにその引用文献に記載されているものが挙げられる。
一般に本明細書に記載するように抗体以外の任意NIgSBRを同定し、単離し、特性決定することができる。当業者に容易に理解される通り、一般に特定クラスのNIgSBR化合物又は分子に適合又は適応するように任意特定非抗体NIgSBRを当分野で公知の標準方法及び操作で使用することができる。該当特定NIgSBRの単離、精製、製剤化、操作等に適合又は適切な方法は過度の実験を介さずに当業者に容易に理解され、選択されよう。上記のように、蛋白質又は関連NIgSBRについては、以下の文献がこのような方法についてかなり詳細に記載している:Scopes,Protein Purification,Springer−Verlag,N.Y.(1982);Deutscher,Methods in Enzymology Vol.182:Guide to Protein Purification,Academic Press,Inc.N.Y.(1990);Sandana Bioseparation of Proteins,Academic Press,Inc.(1997);Bollagら,Protein Methods,2nd Edition Wiley−Liss,NY(1996);Walker The Protein Protocols Handbook Humana Press,NJ(1996);Harris and Angal Protein Purification Applications:A Practical Approach IRL Press at Oxford,Oxford,England(1990);Scopes Protein Purification:Principles and Practice 3rd Edition Springer Verlag,NY(1993);Janson and Ryden Protein Purification:Principles,High Resolution Methods and Applications,Second Edition Wiley−VCH,NY(1998);及びWalker Protein Protocols on CD−ROM Humana Press,NJ(1998)。核酸操作については、Sambrook and Ausubelが核酸(及び蛋白質と所定の小分子)の詳細な単離、精製、製剤化及び操作方法を記載している。有機合成技術と得られる分子の単離、精製、製剤化及び操作法については、例えばOrganic Chemistry by Fessendon and Fessendon,(1982,Second Edition,Willard Grant Press,Boston Mass.);Advanced Organic Chemistry by March(Third Edition,1985,Wiley and Sons,New York);及びAdvanced Organic Chemistry by Carey and Sundberg(Third Edition,Parts A and B,1990,Plenum Press,NewYork)参照。多数の化合物の単離、精製、製剤化及び操作に関する更に詳細は2004年Sigmaカタログ(USA)又は2004年Aldrichカタログ(Milwaukee,WI,USA)に記載されている。
本発明は研究、治療又は診断法で使用するための本明細書に記載する検出可能に標識した抗NIgSAbを提供する。
免疫及び融合方法
Lou/Mラットにマウス血清免疫グロブリンを免疫した。Balb/cマウスにウサギ血清免疫グロブリンを免疫した。3回免疫後に血清力価を試験した。血清力価の高い動物に由来する脾臓をマウス骨髄腫融合パートナーSP2/Oと融合した。
A.培地調製
1)IMDM基礎培地:
2)20%FBS完全培地:
IMDM基礎培地500ml+FBS100ml+P/S6.5ml(ストック溶液濃度:ペニシリン10,000単位/ml;ストレプトマイシン100,000単位/ml)+グルタミン6.5ml(ストック溶液濃度:200μM)。
3)サプリメント:
100x HAT
50x HES(Hybridoma Enhancing Supplement:ハイブリドーマ増強サプリメント)。
4)融合培地:
完全培地500ml
100x HAT 5ml
50x HES 10ml。
5)50% PEG(Sigma,MW 1500)。
1)融合前に骨髄腫細胞株を少なくとも10−20% FBS IMDM培地で3〜4日間培養した。細胞融合前は骨髄腫を対数増殖期に維持した。
2)光学顕微鏡を使用して骨髄腫細胞の増殖と生存をチェックした。
3)骨髄腫細胞をフラスコの表面から静かに剥がし、50mlコニカルチューブに移した。
4)骨髄腫細胞を1100rpmで5分間遠心した。
5)上清を捨て、細胞ペレットを基礎IMDM培地に再懸濁した。
6)骨髄腫細胞を1100rpmで5分間遠心した。
7)上清を捨て、細胞ペレットを基礎IMDM培地に再懸濁した。
8)洗浄を1回繰返し、細胞カウントを実施した。
1)動物を麻酔し、心臓穿刺によりできるだけ多量を採血した後に頸部脱臼させた。
2)動物を75%エタノール浴に2〜3分間浸漬した。
3)左腹側領域を露出させるように動物の右側を下にし、75%エタノールで消毒した発泡スチレンラックにピンで固定した。
4)左脚の皮膚を鋏でV字形に切開した。切り口から皮膚を引っ張って切開を拡大することにより、腹膜を露出させた。左腹部の腹膜の真下に脾臓が暗赤色塊として見えた。
5)腹膜を小鋏で切開し、脾臓を露出させた。
6)脾臓を摘出し、付着物を取り除いて脾臓を取出した。予め湿潤させたナイロンスクリーンセルストレナーを50mlコニカルチューブの頂部に載せ、その上に脾臓を置いた。脾臓を小型カーブ鋏で小切片に裁断した。
7)脾臓切片を1ccシリンジプランジャーでセルストレナーに押し付け、圧延作用によりホモジナイズした。基礎IMDM培地(場合によりペニシリン/ストレプトマイシン)を加えた50mlコニカルチューブで脾細胞をリンスした。全脾細胞が分離するまで脾細胞を連続的にホモジナイズ及びリンスした。
8)脾細胞を1100rpmで5分間遠心した。上清を捨て、ペレットを再懸濁した。IMDM 40mlを細胞に加え、上記のように遠心を繰返した。これを第1洗浄物とした。
9)洗浄した脾細胞ペレットをIMDM培地に再懸濁し、細胞カウントを実施した。
1)脾細胞と骨髄腫細胞を2−5:1の脾細胞対骨髄腫細胞比で混合した(2:1又は3:1が好ましい)。
2)細胞混合物を1500rpmで7分間遠心した。
3)ガラスパスツールピペットを使用して上清を吸引し、50mlコニカルチューブの側面に水分が残らないようにした。
4)チューブの側面を発泡スチレンラックにぶつけることによりペレットを静かに剥がした。
5)(37℃まで予め加温しておいた)50%PEGを時折撹拌しながら1分間かけて滴下した。
マウス又はハムスター融合体 0.8−1.0ml PEG
ラット融合体 0.9−1.2ml PEG。
6)細胞/50%PEG懸濁液を反応させた。
マウス又はハムスター融合体:1分15秒
ラット融合体:1分30秒。
7)予め加温しておいた基礎IMDM培地15mlを5分間かけて徐々に加えた:
a)最初の1分間は時折混合しながら1mlを加えた。
b)次の1分間は時折混合しながら培地2mlを加えた。
c)次の2〜3分間で残りの培地を時折混合しながら加えた。
8)細胞懸濁液を37℃水浴で2〜5分間インキュベートした。
9)細胞を1000rpmで5分間遠心した。
10)上清を捨て、ペレットを静かに再懸濁した。次に細胞を適正容量の融合培地(HAT培地)に注意深く移した。
11)30分〜1時間後にハイブリドーマ培養液200μl/ウェルを幅広オリフィスチップで96ウェル平底組織培養プレートにプレーティングした。
12)混合物を37℃、湿度100%の7%CO2インキュベーターで3〜4日間培養した。上清の2/3を全ウェルから吸引した後、細胞コロニーがばらばらにならないようにHT培地140−180μl/ウェルを幅広オリフィスチップで注意深く再添加した。
13)9〜10日後にハイブリドーマ上清をスクリーニングした。
スクリーニング:96ウェルプレート中の全クローンをELISAにより以下のようにスクリーニングした:
1)ELISAプレートにPBS中濃度2μg/mlのマウス血清IgG 100μl/ウェルをコーティングした。プレートをシールし、4℃で一晩インキュベートした。
2)ウェルを吸引し、300μl/ウェルを上回る洗浄用緩衝液で3回洗浄した。プレートを反転させ、吸収紙に吸収させて残留緩衝液を除去した。
3)ウェルをアッセイ希釈剤200μl/ウェルでブロックし、室温で1時間インキュベートした。
4)ステップ2を繰返した。
5)TCS試料100μl/ウェルをウェルに加えた。プレートをシールし、室温で2時間インキュベートした。
6)ステップ2を繰返し、合計5回洗浄した。
7)HRP標識マウス抗ラット抗体100μl/ウェルをアッセイ希釈剤に加え、2000倍濃度に希釈した。プレートをシールし、室温で1時間インキュベートした。
8)ステップ2を繰返し、合計5回洗浄した。
9)ABTS基質を使用の20分間以内に融解し、基質11ml当たり30% H2O2 11μlを加えた。ABTS基質溶液100μl/ウェルを各ウェルに加えた。プレートを室温で10〜20分間インキュベートした。
10)プレートを405nmで読み取った。
1)特異性試験:ELISAプレートにPBS中2μg/mlの各種マウスアイソタイプ100μl/ウェルをコーティングした。マウスIgG1.2a、2b、G3、IgA及びIgMをA、B、C、D、E、F及びG行に加えた。試料を1、2、3、4列等に加えた。他のアッセイステップは上記スクリーニングプロトコールに記載したように実施した。
2)アイソタイプ試験:ELISAプレートにPBS中2μg/mlの各種抗マウスアイソタイプmAb100μl/ウェルをコーティングした。マウスIgG1.2a、2b、G3、IgA及びIgMをA、B、C、D、E、F及びG行に加えた。試料を1、2、3、4列等に加えた。他のアッセイステップは上記スクリーニングプロトコールに記載したように実施した。
3)免疫グロブリンのウェスタンブロット/イムノブロットを以下のように実施した:
1)血清IgG(天然及び変性)試料を作製し、SDS−PAGEゲルを泳動した。
2)最良の蛋白質転写結果が得られるように転写システム製造業者の説明書に従って試料をゲルからImmobilon−P膜に転写した。
3)ブロットをTCS試料と共に抗体結合緩衝液で一晩4℃にてインキュベートした。
4)膜と試料の一晩インキュベーション後、ブロットを5分間TBSTで5回洗浄した。
5)HRP標識抗Igの2000倍希釈液と共にブロットを1時間室温でインキュベートした。
6)抗NIgSAbのインキュベーション後、ブロットを5分間TBSTで5回洗浄した。
7)製造業者のPierce Chemiluminescence HRP基質説明書に従ってブロットを展開した。
8)ブロットを適当な時間写真フィルムに露光した。最良結果を得るためには、1分〜15分間露光し、特異的抗体−抗原反応に対応する化学発光シグナルを可視化すべきである。天然免疫グロブリンと反応するが、変性免疫グロブリンと反応しなかったクローンを増殖させ、精製し、HRP抗NIgSAbと結合した後、免疫沈降/ウェスタンブロット(IP/WB)試験を実施した:
4)IP/WBは以下のように実施した:
ステップI:細胞溶解液調製を以下のように実施した:
1.Jurkat細胞約107個を採取した。
2.細胞をコニカルチューブ内にてPBS約10mlで洗浄し、400xgで10分間遠心した。
3.上清を捨て、ステップ2を繰返した。
4.2回目の洗浄後、上清を完全に捨て、1X Protease Inhibitor Cocktailを加えた冷溶解用緩衝液1mlに細胞ペレットを再懸濁した(最終濃度107細胞/ml)。チューブを静かにボルテックスした。
5.チューブを時折混合しながら氷上に30分間置いた。
6.細胞溶解液を10,000xgで15分間4℃にて遠心した。
7.ペレットを撹乱しないように上清を注意深く集め、清浄なチューブに移した。この時点で細胞溶解液を長期保存に備えて−80℃で凍結することができる。ペレットを捨てた。
1.抗免疫グロブリンビーズスラリー50μlを試験管に移し、冷溶解用緩衝液450μlを加えた。混合物を10000xgで60秒間遠心し、溶解用緩衝液を除去した。冷溶解用緩衝液500μlで洗浄を繰返し、ビーズを冷溶解用緩衝液50μlに再懸濁した。
2.抗免疫グロブリンビーズスラリー50μlと溶解用緩衝液500μlを試験管に加え、氷上で60分間インキュベートした。
3.混合物を10000xgで10分間4℃にて遠心し、上清を別の試験管に移した。ビーズが混入した場合には、上清を再遠心し、更に別の試験管に移さなければならない。
1.プレクリア済み冷溶解液を入れた試験管に抗ヒトカスパーゼ−7抗体5μgを加えた。
2.混合物を4℃で1時間インキュベートした。
3.プレチルド溶解用緩衝液中の抗免疫グロブリンスラリー50μlを(上記プレクリアステップ1に指示したように調製した)混合物に加えた。
4.混合物をロッキングプラットフォーム又はローテーターで4℃にて1時間インキュベートした。
5.試験管を10000xgで60秒間4にて遠心した。
6.上清を注意深く完全に除去し、ビーズを溶解用緩衝液500μlで3回洗浄した。バックグラウンドを最小限にするために、これらの洗浄で上清を完全に除去するように注意した。
7.最終洗浄後、上清を吸引し、試料緩衝液50μlをビーズペレットに加え、100℃まで10分間加熱混合した。
8.混合物を10,000xgで5分間遠心した後、上清を集め、SDS−PAGEゲルにロードした。ゲルを後で泳動する場合にはこの時点で上清試料を集めて凍結保存することができる。
9.SDS−PAGEの製造業者の説明書に従う。
10.転写システム製造業者の説明書に従って試料をSDS−PAGEゲルからImmobilon−P膜に転写した。
11.ブロットを抗体結合緩衝液中2μg/mlの抗ヒトカスパーゼ−7mAb(一次抗体)と共に一晩4℃でインキュベートした。
12.膜と一次抗体の一晩インキュベーション後、ブロットを5分間TBSTで5回洗浄した。
13.HRP標識した第2段階mAb(抗NIgSAb)の250倍希釈液と共にブロットを1時間室温でインキュベートした。
14.二次抗体のインキュベーション後、ブロットを5分間TBSTで5回洗浄した。
15.Pierce Chemiluminescence HRP基質説明書に従ってブロットを展開した。
16.ブロットを適当な時間写真フィルムに露光した。最良結果を得るためには、1分〜15分間露光し、特異的抗体−抗原反応に対応する化学発光シグナルを可視化する。
手順:
典型的な哺乳動物発現ベクターはmRNAの転写開始を媒介する少なくとも1種のプロモーターエレメントと、抗体コーディング配列と、転写終結と転写産物のポリアデニル化に必要なシグナルを含む。付加エレメントとしてエンハンサー、Kozak配列及びRNAスプライシングの供与部位と受容部位により挟まれる介在配列が挙げられる。SV40に由来する初期及び後期プロモーター、レトロウイルスに由来する長い末端反復配列(LTRS)(例えばRSV,HTLVI,HIVI)及びサイトメガロウイルス(CMV)の初期プロモーターにより高度に効率的な転写を達成できる。他方、細胞エレメント(例えばヒトアクチンプロモーター)も使用できる。本発明の実施に使用するのに適切な発現ベクターとしては、例えばpIRES1neo、pRetro−Off、pRetro−On、PLXSN、又はpLNCX(Clonetech Labs,Palo Alto,California)、pcDNA3.1(+/−)、pcDNA/Zeo(+/−)又はpcDNA3.1/Hygro(+/−)(Invitrogen)、PSVL及びPMSG(Pharmacia,Uppsala,Sweden)、pRSVcat(ATCC 37152)、pSV2dhfr(ATCC 37146)及びpBC12MI(ATCC 67109)等のベクターが挙げられる。使用することができる哺乳動物宿主細胞としてはヒトHela293、H9及びJurkat細胞、マウスNIH3T3及びC127細胞、Cos1、Cos7及びCV1、ウズラQC1−3細胞、マウスL細胞並びにチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞が挙げられる。
本発明の方法で使用することができるモノクローナル抗体を作製するためにはマウスを使用することができる。
抗NIgSAbハイブリドーマを作製するためには1種以上の免疫スケジュールを使用することができる。以下の典型的な免疫プロトコール後に最初の数種の融合を実施することができるが、他の同様の公知プロトコールも使用することができる。20週齢雌及び/又は外科的に去勢した雄マウス数匹に最終容量100〜400μL(例えば200)となるように等容量のTITERMAX又は完全フロイントアジュバントで乳化した所望免疫グロブリン蛋白質1〜1000μgをIP及び/又はID免疫する。各マウスに場合により2個のSQ部位の各々に生理的食塩水100μL中1〜10μgを投与してもよい。次に1〜7、5〜12、10〜18、17〜25及び/又は21〜34日後に等容量のTITERMAX又は不完全フロイントアジュバントで乳化した免疫グロブリン蛋白質をマウスにIP(1〜400μg)及びSQ(1〜400μg x2)免疫することができる。12〜25日後と25〜40日後に抗凝血剤を使用せずに眼後穿刺によりマウスから採血することができる。次に血液を室温で1時間凝固させ、血清を採取し、公知方法に従って抗免疫グロブリンEIAアッセイを使用して力価を測定する。繰返して注射しても力価が増加しない場合には融合を実施する。その時点で、生理的食塩水100μLで希釈した免疫グロブリン蛋白質1〜400μgをマウスに最終IVブースター注射することができる。3日後に頸部脱臼によりマウスを安楽死させ、脾臓を無菌摘出し、100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン、及び0.25μg/mLアンホテリシンB(PSA)を加えた冷リン酸緩衝食塩水(PBS)10mLに浸漬することができる。脾臓をPSA−PBSで滅菌潅流することにより脾細胞を回収する。細胞を冷PSA−PBSで1回洗浄し、トリパンブルー色素排除法を使用してカウントし、25mM Hepesを加えたRPMI 1640培地に再懸濁する。
融合は公知方法に従って(例えば当分野で公知のように)1:1〜1:10のマウス骨髄腫細胞対生存脾細胞比で実施することができる。非限定的な例として、脾細胞と骨髄腫細胞を一緒にペレット化することができる。次に、ペレットを37℃の50%(w/v)PEG/PBS溶液(PEG分子量1,450,Sigma)1mLに30秒間かけてゆっくりと再懸濁することができる。次に25mM Hepesを加えたRPMI 1640培地(37℃)10.5mLを10分間かけてゆっくりと加えることにより融合を停止することができる。融合細胞を5分間500〜1500rpmで遠心する。次に細胞をHAT培地(25mM Hepes、10% Fetal Clone I血清(Hyclone)、1mMピルビン酸ナトリウム、4mM L−グルタミン、10μg/mLゲンタマイシン、2.5% Origen培養サプリメント(Fisher)、10% 653馴化RPMI 1640/Hepes培地、50μM 2−メルカプトエタノール、100μMヒポキサンチン、0.4μMアミノプテリン、及び16μMチミジンを加えたRPMI 1640培地)に再懸濁した後、200μL/ウェルで96ウェル平底組織培養プレート15枚にプレーティングする。次に5% CO2と95%空気を含有する加湿37℃インキュベーターにプレートを7〜10日間入れる。
天然免疫グロブリンに特異的なヒトIgG抗体についてマウス血清をスクリーニングするためには固相EIAを使用することができる。要約すると、プレートにPBS中2μg/mL免疫グロブリンを一晩コーティングすることができる。0.02%(v/v)Tween 20を加えた0.15M食塩水で洗浄後、PBS中1%(w/v)BSA200μL/ウェルで1時間室温にてウェルをブロックすることができる。プレートをすぐに使用するか又は将来の使用に備えて−20℃で凍結する。免疫グロブリンをコーティングしたプレートでマウス血清希釈液50μL/ウェルを室温で1時間インキュベートする。プレートを洗浄した後、1%BSA−PBSで30,000倍に希釈したHRP標識ヤギ抗ヒトIgG(Fc特異的)50μL/ウェルでプローブする。プレートを再び洗浄することができ、クエン酸−リン酸基質溶液(0.1Mクエン酸と0.2Mリン酸ナトリウム,0.01% H2O2及び1mg/mL OPD)100μL/ウェルを15分間室温で加える。次に停止溶液(4N硫酸)25μL/ウェルを加え、自動プレートスペクトロフォトメーターによりODを490nmで読み取る。
免疫グロブリンを分泌する増殖陽性ハイブリドーマは適切なEIAにより検出することができる。要約すると、96ウェルポップアウトプレート(VWR,610744)に炭酸ナトリウム緩衝液中10μg/mLヤギ抗マウスIgG Fcを一晩4℃でコーティングすることができる。プレートを洗浄し、1%BSA−PBSで1時間37℃にてブロックし、すぐに使用するか又は−20℃で凍結する。未希釈ハイブリドーマ上清をプレート上で1時間37℃にてインキュベートする。プレートを洗浄し、1%BSA−PBSで10,000倍に希釈したHRP標識ヤギ抗マウス抗体で1時間37℃にてプローブする。次にプレートを上記のように基質溶液と共にインキュベートする。
上記のようなハイブリドーマは適切なRIAウェスタンブロット又は他のアッセイを使用して天然免疫グロブリンに対する反応性を同時にアッセイすることができる。ハイブリドーマを分泌する抗NIgSAbを細胞培養で増殖させ、限界希釈法により順次サブクローニングすることができる。得られたクローン集団を増殖させ、凍結培地(95%FBS,5%DMSO)で低温処理し、液体窒素中で保存することができる。本発明のモノクローナル抗体は変性免疫グロブリンに比較して天然免疫グロブリンに特異性を示す。
抗体のアイソタイプ決定はマウス免疫血清を特定力価についてスクリーニングするために使用したフォーマットと同様のフォーマットでEIAを使用して実施することができる。抗原を上記のように96ウェルプレートにコーティングし、精製抗体2μg/mLをプレート上で1時間室温にてインキュベートすることができる。プレートを洗浄し、1%BSA−PBSで4000倍に希釈したHRP標識ヤギ抗マウスIgG1、又はHRP標識ヤギ抗マウスIgG3又は他の任意クラス特異的もしくはアイソタイプ特異的抗体で1時間室温にてプローブする。プレートを再び洗浄し、上記のように基質溶液と共にインキュベートする。
抗NIgSAbモノクローナル抗体の作製
数種の融合を実施し、天然免疫グロブリンに特異的な抗体数ダースを産生するプレート15枚に各融合体(1440ウェル/融合体)を播種する。免疫グロブリン蛋白質を免疫したマウスに由来する脾細胞を使用して数種の融合を実施する。天然免疫グロブリン反応性モノクローナル抗体数個1組を作製する。抗NIgSAbを更に特性決定し、変性免疫グロブリンに比較して天然免疫グロブリンとの特異的結合を実証する。
以下の文献は参考資料としてその開示内容全体を本明細書に組込む。Ausubelら(Ed.),Current Protocols in Molecular Biology,(John Wiley & Sons,Inc.,New York,New York(1987−1991));Sambrookら,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,2nd Edition,(Cold Spring Harbor,NY(1989))、及びSambrookら,Molecular Cloning−A Laboratory Manual(3rd Ed.),Vol.1−3,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,New York,(2000);Harlow and Lane,Antibodies,A Laboratory Manual,(Cold Spring Harbor,NY(1989));Colliganら(Eds.),Current Protocols in Immunology,(John Wiley & Sons,Inc.,NY(1994−2001));Colliganら,Current Protocols in Protein Science,(John Wiley & Sons,NY,NY,(1997−2001))。
Claims (37)
- 単離又は組換え抗NigSAb。
- 前記抗NIgSAbが天然免疫グロブリン蛋白質と特異的に結合する請求項1に記載の抗NIgSAb。
- 前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、抗体部分、抗体フラグメント、抗体変異体、抗NIgSAb、抗NIgSAb部分、抗NIgSAbフラグメント、及び抗NIgSAb変異体から構成される群から選択される請求項2に記載の抗NIgSAb。
- 前記抗体が哺乳動物で産生される請求項3に記載の抗体。
- 前記哺乳動物がヒト、マウス、ラット、ヤギ、ウサギ、ヒツジ、ウマ及びハムスターから構成される群から選択される請求項4に記載の抗体。
- 前記ポリクローナル抗体が変性免疫グロブリンのサブトラクティブ免疫後に天然免疫グロブリンを免疫することにより哺乳動物で産生される請求項2に記載のポリクローナル抗体。
- 前記ポリクローナル抗体が不溶性支持体に固定した変性免疫グロブリンと前記ポリクローナル抗体を接触させることにより抗変性免疫グロブリン抗体を除去するように処理されている請求項2に記載のポリクローナル抗体。
- 前記不溶性支持体がビーズ、プレート、ウェル、チューブ、膜又はシートから構成される群から選択される請求項7に記載のポリクローナル抗体。
- 前記抗NIgSAbが組換え動物又は組換え宿主細胞により産生される請求項1に記載の抗NIgSAb。
- 前記組換え宿主細胞が哺乳動物細胞、昆虫細胞、酵母細胞、及び細菌細胞から構成される群から選択される請求項9に記載の抗NIgSAb。
- 前記抗NIgSAbがバクテリオファージにより産生される請求項14に記載の抗NIgSAb。
- 抗NigSAbを発現する組換え細胞株。
- 少なくとも1種の抗NIgSAbと希釈剤又はキャリヤーを含有する組成物。
- 免疫グロブリン抗原に対する抗体をスクリーニングし、天然免疫グロブリンと特異的に結合する抗体を同定する段階を含む少なくとも1種の抗NIgSAbの生産方法。
- 前記抗NIgSAbがポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、抗体部分、抗体フラグメント、抗体変異体、抗NIgSAbフラグメント、抗NIgSAb部分及び抗NIgSAb変異体から構成される群から選択される請求項14に記載の方法。
- パッケージング材料と少なくとも1種の単離抗NIgSAbを含む容器を含む研究又は診断用製品。
- 前記抗NIgSAbが検出可能に標識されている請求項16に記載の製品。
- 前記標識が化学発光剤、放射性同位体、酵素、蛍光剤及び発色剤から構成される群から選択される請求項17に記載の製品。
- 前記標識がHRPを含む請求項18に記載の製品。
- 前記抗体がマウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ハムスター及びウマから構成される群から選択される哺乳動物で産生される請求項17に記載の製品。
- 試料を1種以上の抗NIgSAbと接触させる段階と、前記抗NIgSAbと前記試料の結合を測定する段階を含む天然免疫グロブリンの検出方法。
- 前記抗NIgSAbが検出可能に標識されている請求項21に記載の方法。
- 前記抗NIgSAbが検出可能な反応生成物の形成を触媒する酵素である請求項22に記載の方法。
- 前記試料が支持体に固定化されている請求項21に記載の方法。
- 前記支持体がビーズ、プレート、シート、ストリップ、ウェル、膜及びチューブから構成される群から選択される請求項24に記載の方法。
- 単離又は組換えNIgSBR。
- NIgSBRが検出可能に標識されている請求項26に記載のNIgSBR。
- 前記標識が化学発光剤、放射性同位体、酵素、蛍光剤及び発色剤から構成される群から選択される請求項27に記載のNIgSBR。
- 少なくとも1種のNIgSBRと適切な希釈剤又はキャリヤーを含有する組成物。
- パッケージング材料と少なくとも1種のNIgSBRを含む容器を含む研究又は診断用製品。
- 1種以上の化合物をスクリーニングし、天然免疫グロブリンと特異的に結合する化合物を同定する段階を含む少なくとも1種のNIgSBRの生産方法。
- 前記NIgSBRが蛋白質スカフォールドライブラリー、ペプチドディスプレイライブラリー、特異的進化ライブラリー、及び蛋白質アレイライブラリーから構成される群から選択されるライブラリーから同定される請求項31に記載の方法。
- 前記NIgSBRがポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、抗体部分、抗体フラグメント、抗体変異体、組換え蛋白質、ポリマースカフォールド、組換え化合物、ポリペプチド、哺乳動物システムで作製されたポリマー、非哺乳動物システムで作製されたポリマー、及びファージディスプレイにより大腸菌で作製されたポリマーから構成される群から選択される請求項31に記載の方法。
- 試料を1種以上のNIgSBRと接触させる段階と、前記NIgSBRと前記試料の結合を測定する段階を含む天然免疫グロブリンの検出方法。
- 前記NIgSBRが検出可能に標識されている請求項34に記載の方法。
- 前記試料が支持体に固定化されている請求項34に記載の方法。
- 前記支持体がビーズ、プレート、シート、ストリップ、ウェル、膜及びチューブから構成される群から選択される請求項36に記載の方法。
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