JP2008201750A - 抗菌処理方法 - Google Patents
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Abstract
抗菌処理を行う対象物が限定されず、抗菌処理に掛る時間やコストを節約することが可能な抗菌処理方法を提供すること。
【解決手段】
バチルススパリカス(Bacillus sphaericus)微生物菌、バチルスサブチルス(Bacillus subtilis)微生物菌、またはバチルスツリュゲナイセス(Bacillus thuringiensis)微生物菌を、60度〜150度で高温処理した家畜糞と混合した粉体を有する抗菌剤を用いた抗菌処理方法において、抗菌処理対象物と該抗菌剤とを非接触状態とし、該対象物で被対象菌の成長を抑制することを特徴とする。
【選択図】なし
Description
しかしながら、このような直接接触させる方法は、抗菌処理を行う対象物が限定される上、処理に時間が掛かり、コスト的にも大きな負担となっていた。
なお、本発明の抗菌処理方法は、抗菌作用のみに限らず、使用する抗菌剤が非接触状態で殺菌作用を有する場合も含むものである。
また、本発明に使用する抗菌剤は、微生物菌を栄養源と一体化して保持しているため、長時間に渡り微生物菌が活動でき、抗菌効果の持続性を高めることが可能となる。
このように、本発明の抗菌処理方法に使用される抗菌剤は、粉体、液体、又はゲル状態など多様な形態を選択することが可能であるため、極めて利用範囲の広い抗菌剤を提供することが可能となる。
表3に示す各培地を使用して試験を行った。各培地に対するBB菌(A)及び(B)のコロニー形成数及び全生細菌数を表4に、また、コロニー形成率を表5に示す。
表6に示すように、微生物資材であるBB菌(A)及び(B)における保存中の菌数の変化を測定した。この図1により、BB菌(A)及び(B)は、乾燥状態のまま常温保管した場合、5ヶ月経過しても菌数に変化が無く、5ヶ月の長期保管が可能であることが理解される。なお、表中の*1はEB蛍光染色法で測定,*2はCFDA蛍光染色法で測定,*3はNA培地に塗抹接種後30℃で14日間インキュベートした。また、試験体は、2006年7月18日に到着し、それ以降常温で保存した。
2つのシャーレの各々に被対象菌と抗菌剤とを別々に入れ、2つのシャーレを互いに対向するよう重ね合わせ、小規模の空間における、非接触による抗菌効果を測定した。
小規模空間における抗菌活性試験は、次の手順で行った。
(1)菌液調整
細菌に対しては、L字管中で対数増殖後期まで振とう培養した後、細菌の新鮮培養液(Nutrient broth, 30℃)200μLを滅菌生理食塩水1.8 mLに懸濁させた。
また、糸状菌および酵母菌では、Potate dextrose agar[PDA]培地で30℃,1週間培養した後、胞子を0.01%SDS添加滅菌生理食塩水0.5 mLに懸濁させた。
(2)塗抹
菌懸濁液100 μLを各2連で塗抹接種した。シャーレ内の各培地は、細菌にはNA培地を使用し、糸状菌および酵母菌にはPDA培地を使用した。
(3)充填・接種
シャーレ内のNA培地に微生物資材であるBB菌(A)及び(B)を各1.5 gを敷き詰めた。なお、資材が細菌株の場合はNB培地中で対数増殖後期まで振とう培養後、0.2 mLをNA培地上に接種し、30℃で1〜2日間インキュベートした。
上記(2)及び(3)で作成した2つのシャーレを互いに内側が向かい合うように重ね合わせ(上記(3)のシャーレが下側となる)、シャーレの接触部分をサージカルテープで貼り合わせた。
その後、30℃でインキュベートした。培養期間は、細菌および酵母菌は3日間とし、糸状菌は7日間とした。
(5)判定
対照区と比較し、明らかに発育抑制が見られた場合には、抑制効果ありと判定した。表7に小規模空間における抗菌活性試験の結果を示す。発育抑制が認められた場合には+で、認められない場合を−で表記した。
次に、2つのシャーレの各々に被対象菌と抗菌剤とを別々に入れ、容積1.3Lのプラスチック製密閉容器内に、2つのシャーレを横並びに配置し、非接触による抗菌効果を測定した。
中規模空間における抗菌活性試験は、次の手順で行った。
(1)菌液調整
細菌に対しては、L字管中で対数増殖後期まで振とう培養した後、細菌の新鮮培養液(Nutrient broth, 30℃)200μLを滅菌生理食塩水1.8 mLに懸濁させた。
また、糸状菌および酵母菌では、Potate dextrose agar[PDA]培地で30℃,1週間培養した後、胞子を0.01%SDS添加滅菌生理食塩水0.5 mLに懸濁させた。
さらに、両者について、約1000 cells or spores/mLに調整した菌懸濁液を作製した。なお、菌数又は胞子数の測定は、細菌については直接計数法で、糸状菌及び酵母菌についてはヘマチトメーターにて行った。
(2)塗抹
菌懸濁液100 μLを各3連で塗抹接種した。シャーレ内の各培地は、細菌にはNA培地を使用し、糸状菌および酵母菌にはPDA培地を使用した。
(3)充填・接種
シャーレ内のNA培地に微生物資材であるBB菌(A)及び(B)を各1.5 gを敷き詰めた。
上記(2)及び(3)で作成した2つのシャーレを、1.3Lのプラスチック製容器内に入れ、密閉した。その後、30℃でインキュベートした。培養期間は、細菌および酵母菌は3日間とし、糸状菌は7日間とした。
(5)判定
被対象菌のシャーレ内のコロニー数の平均値を計測し、対照区のコロニー数から試験区のコロニー数を引いた値を、対照区のコロニー数で除した値を、発育抑制度として百分率で示した。表8に中規模空間における抗菌活性試験の結果を示す。
次に、各々のシャーレに被対象菌と抗菌剤とを別々に入れ、容積10Lのプラスチック製密閉容器内に、2つのシャーレを横並びに配置し、非接触による抗菌効果を測定した。
大規模空間における抗菌活性試験は、上述した中規模空間における抗菌活性試験と同様であり、ただし、一つのプラスチック容器内には、抗菌剤を入れたシャーレを1つと、被対象菌を入れたシャーレを5つ配置した。
なお、被対象菌は、クラドスポリウム・スファエロスペルムン(Cladosporium sphaerospermum)NBRC4460のみとした。
抗菌剤に滅菌処理を施した場合に、非接触による抗菌作用の変化を測定した。滅菌処理は、BB菌(A)及び(B)を、120℃でオートクレーブして試験に供した。
試験は、小規模空間(対向する2つのシャーレ)で行った。また、使用した被対象菌は、クラドスポリウム・スファエロスペルムン(Cladosporium sphaerospermum)NBRC4460である。
試験結果を表10に示す。
次に、非接触による殺菌効果について調査した。
試験方法は次のとおりである。
(1)糸状菌前培養
糸状菌株をマスタープレートから釣菌し、PDAスラントに塗抹後、30℃で1週間以上培養した。
(2)胞子液作製
01%SDS添加生理食塩水500μLをスラント内の被験菌に注入し、パスツールピペットピペッティングし、小試験管に移した。
(3)菌数調整
ヘマチトメーターで胞子数測定後、0.01%SDS添加生理食塩水で103 spores/mLとなるよう希釈した。
(4)接種
調整した胞子液100μLをPDA培地に接種した。
(5)インキュベート
上記(4)を30℃で1週間インキュベートした。
微生物資材(BB菌(A)及び(B))1.5 gを充填したNA培地シャーレの蓋を取った状態で、上記(5)のシャーレと向かい合わせにし(上記(5)のシャーレが上側となる)、サージカルテープで貼り合わせ、30℃で1週間インキュベートした。菌液の場合はNB培地中で対数増殖後期まで振とう培養後、200μLをNA培地上に接種後、30℃で1〜2日間インキュベートした。
(7)接種・インキュベート
上記(6)の被対象菌が接種されたシャーレから、被験菌を白金耳で取り出し、別のPDA培地に10点スポット接種した。そして、30℃で1週間インキュベートした。
(8)判定
発育がみられたスポット数を計測し、次式で殺菌効率を求めた。
殺菌効率(%)=(1−発育が見られたコロニー数/10)×100
評価結果を表11に示す。
なお、微生物資材の培地を素寒天とした場合には、被対象菌であるクラドスポリウム・クラドスポリオイデス(Cladosporium cladosporioides)NBRC4459に対しても、殺菌効果が認められなかった。
したがって、非接触による殺菌作用についても、抗菌作用と同様に、作用効果を発揮するためには、BB菌などの微生物資材に養分を供給することが不可欠であると判断される。
しかも、本発明に使用される抗菌剤は、安全性の高い微生物菌を使用しながら、製造コストを抑制し、生産時又は使用時において全く無公害で環境や人体に影響を与えず、使用時においても持続性があり、さらには効率的に非接触状態にて抗菌及び滅菌作用を発揮することが可能となる。
Claims (4)
- バチルススパリカス(Bacillus sphaericus)微生物菌、バチルスサブチルス(Bacillus subtilis)微生物菌、またはバチルスツリュゲナイセス(Bacillus thuringiensis)微生物菌を、60度〜150度で高温処理した家畜糞と混合した粉体を有する抗菌剤を用いた抗菌処理方法において、抗菌処理対象物と該抗菌剤とを非接触状態とし、該対象物で被対象菌の成長を抑制することを特徴とする抗菌処理方法。
- 請求項1に記載の抗菌処理方法において、該被対象菌は、クラドスポリウム・クラドスポリオイデス(Cladosporium cladosporioides)NBRC4459,クラドスポリウム・スファエロスペルムン(Cladosporium sphaerospermum)NBRC4460,アルテナリア・アルテナタ(Alternaria alternata)NBRC31188,カルブラリア・ルナタ(Curvularia lunata)NBRC100182,サナテフォルス・ククメリス(Thanatephorus cucumeris)のうち、少なくとも一種類の菌を含むことを特徴とする抗菌処理方法。
- 請求項1又は2に記載の抗菌処理方法において、前記家畜糞は、牛糞、豚糞、又は鶏糞であることを特徴とする抗菌処理方法。
- 請求項1乃至3のいずれかに記載の抗菌処理方法において、該抗菌剤は、該粉体自体、該粉体に水分を添加した液体、又は該液体を吸水ゲル化剤、ゼラチン、又は寒天の少なくとも一つに吸収させたもののいずれかであることを特徴とする抗菌処理方法。
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