JP2005536220A - 腫瘍関連抗原mn/caixの発現に特徴付けられる癌のための治療組成物ならびに治療方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、細胞増殖性障害の処置のための治療の組成物および方法に関し、より詳細には、MN/CA IXタンパク質を発現する新生物細胞上のMN/CA IX酵素活性を標的とする抗体および低分子ならびにこの腫瘍関連抗原の発現により特徴付けられる癌処置におけるこれらの使用方法に関する。
炭酸脱水酵素(CA)は、二酸化炭素および重炭酸イオンの変換を触媒する。これらの酵素は、水および電解質バランス、CO2およびHCO3 −輸送、ならびにpH調節を含む、生理的過程において重要な役割を果たす。新規の膜関連CAイソエンザイムCA IXは、MNと称される腫瘍関連膜抗原として最初に記載された。実質的な構造的特徴およびCA活性を伴う細胞外ドメインを有すると推定される細胞接着分子(Pastorekら(1994)Oncogene 9:2877−2888;Opavskyら(1996)Genomics 33:480−487;Zavadaら(1997)Intl.J.Oncol.10:857−863)としてのMNの認識は、炭酸脱水酵素ファミリー(CA IXと改名)の第9番目のメンバーとしてMN分類という結果を生じる。それ以来、G250と称される腎臓癌関連抗原は、クローン化されおよび、腫瘍関連抗原MN/CA IXと同一の膜貫通型タンパク質として同定された(Grabmaierら(2000)Int.J.Cancer 85:865−870)。
哺乳動物のCA IX+前新生物細胞または新生物細胞の増殖を阻害するのに有益な組成物および方法を、提供する。この組成物は、アンタゴニスト抗CA IX抗体、およびこれら細胞にCA IXの炭酸脱水酵素活性を標的とする他のインヒビターである。アンタゴニスト抗CA IX抗体または抗原結合フラグメントは、抗体抗原複合体を形成するように、CA IXもしくは、その生物活性改変体の阻害性エピトープと特異的に反応しそれにより、この複合体の形成は、CA IXまたはその生物学的に活性な改変体の炭酸脱水酵素活性の阻害を生じる。この活性は、癌の前新生物細胞または新生物細胞の変換および増殖、ならびにこの腫瘍関連抗原の発現により特徴付けられる他の増殖性障害に必須である。一つの実施形態において、アンタゴニスト抗CA IX抗体は、モノクローナル抗体である。適切なモノクローナル抗体は、ヒト定常領域を有するもの、また完全にヒト化したかまたは部分的にヒト化したフレームワーク領域を有するもの、および完全にヒト抗体もしくは、CA IX上の目的の阻害性エピトープまたはその生物学的に活性な改変体に特異的に結合するその抗原結合フラグメントであり、その結果抗体抗原複合体の形成は、例えば、ヒトCA IXのような目的のCA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性の阻害を生じる。CA IXまたはその生物学的に活性な改変体の炭酸脱水酵素活性を阻害する他の低分子薬剤およびこのような薬剤を同定するためのスクリーニングアッセイを、また提供する。本明細書中で同定されたアンタゴニスト抗CA IX抗体、その抗原結合フラグメント、および他のCA IX阻害薬剤は、CA IXの腫瘍関連抗原の発現により特徴付けられる癌の処置に有用である。
本発明は、炭酸脱水酵素IX(MNおよびG250としても知られる;本明細書中においてはCA IXと称する)の発現により特徴付けられる癌を有する哺乳動物を処置するための組成物ならびに方法に関する。組成物は、抗体抗原複合体を形成するように、CA IXのエピトープと特異的に反応する抗CA IX抗体および、その抗原結合フラグメントを含み、そのため、この複合体の形成は、CA IXの炭酸脱水酵素活性の阻害を生じる。このようなエピトープは、本明細書中において「阻害性エピトープ」と称される。阻害性エピトープは、CA IXポリペプチドまたはその改変体の連続するアミノ酸残基(つまり、エピトープ内の残基は、線状様式に次々に連続的に配置される)、不連続のアミノ酸残基(本明細書中において「不連続なエピトープ」と称される;これらエピトープ内の残基は、連続的に配置されない)、または、連続的なアミノ酸残基および不連続的なアミノ酸残基の両者を含み得、そして、エピトープを構成する残基は、抗CA IX抗体もしくは、その抗原結合フラグメントを用いた抗体抗原複合体の形成が、CA IXの炭酸脱水酵素活性を、減少させ、あるいは阻害する限り、CA IXの炭酸脱水酵素ドメインおよび/またはCA IXの炭酸脱水酵素ドメインの外側に存在し得る。いくつかの実施形態においては、阻害性のエピトープは、CA IXの炭酸脱水酵素ドメインの連続的なアミノ酸残基を含むエピトープ、CA IXの炭酸脱水酵素ドメインの不連続的なアミノ酸残基を含むエピトープ、ならびにCA IXの炭酸脱水酵素ドメインの連続的な残基および不連続的な残基の両者を含むエピトープである。本明細書中に記載されるように、CA IXの阻害性エピトープに対する抗CA IX抗体またはその抗原結合フラグメントの結合は、CA IXが、炭酸脱水酵素ドメイン活性を媒介するために必要とされる、適切な構造型または立体配置をとることを妨げ得、CA IXが、炭酸脱水酵素ドメイン活性のために必要とされる無機コファクターと複合体化することを物理的に阻害し得るか、または、CA IXが、適切な酵素基質と複合体化することを物理的に阻害し得るが、他の阻害機構もまた、含まれる。本発明の目的のため、本発明の抗CA IX抗体は、以下「アンタゴニスト抗CA IX抗体」と称される。これらアンタゴニスト抗CA IX抗体および本明細書中他の部分で言及するような他の阻害薬剤は、CA IX腫瘍関連抗原の発現により特徴付けられる癌を有する被験体を処置するために有用である。
本発明の適切な抗CA IX抗体は、上記のようにCA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を鑑みて、本明細書中「アンタゴニスト」抗CA IX抗体と称される。この様式においては、本発明のアンタゴニスト抗CA IX抗体および、その抗原結合フラグメントは、抗体抗原複合体を形成するように、CA IXの阻害性エピトープと特異的に反応し、そのために、この複合体の形成は、CA IXの炭酸脱水酵素活性の阻害を生じる。上記のように、阻害性のエピトープは、CA IXポリペプチドまたはその改変体の、連続的なアミノ酸残基、不連続的なアミノ酸残基、もしくは連続的および不連続的なアミノ酸残基の両者を含み得、そしてエピトープを構成する残基は、抗CA IX抗体もしくはその抗原結合フラグメントを伴う抗体抗原複合体の形成が、CA IXの炭酸脱水酵素活性の減少あるいは阻害を生じる限り、CA IXの炭酸脱水酵素ドメイン内側に、および/またはCA IXの炭酸脱水酵素ドメインの外側に、存在し得る。いくつかの実施形態においては、阻害性のエピトープは、CA IXの炭酸脱水酵素ドメインの連続的なアミノ酸残基を含むエピトープ、CA IXの炭酸脱水酵素ドメインの不連続的なアミノ酸残基を含むエピトープ、ならびにCA IXの炭酸脱水酵素ドメインの連続的な残基および不連続的な残基の両者を含むエピトープである。
腫瘍形成におけるその役割において、CA IXの機能的炭酸脱水酵素ドメインの重要性が同定されたので、CA IX+腫瘍化細胞上のCA IXの炭酸脱水酵素活性を特異的に阻害する任意の因子は、本発明方法において利用され得る。目的のCA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性を阻害する候補因子は、化学的ライブラリー、天然に存在する化合物、または化合物の混合物のほぼ任意の供給源から誘導され得る。候補インヒビターの供給源、ペプチドライブラリーの合成、ペプトイドライブラリーの合成、および有機的な低分子の例示は、以下に記載される。例えば、ヒトCA IXまたは、その生物活性改変体のような、CA IXの炭酸脱水酵素活性のインヒビターもしくはアンタゴニストである任意の因子は、本発明の処置方法において使用され得る。炭酸脱水酵素活性のインヒビターは、ペプチドアンタゴニスト、ペプトイドアンタゴニスト、または有機的な低分子アンタゴニストであり得る。いくつかのインヒビターは、CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素ドメイン内の三つの亜鉛結合ヒスチジン残基(例えば、配列番号2に示されるヒトCA IXの226、228、および251残基)のうちの一以上残基で作用することが予想され、これらの残基は、CAドメインの触媒活性に必須である(SlyおよびHu(1995)Annu.Rev.Biochem.64:375−401)。しかし、本発明の目的のためCA IXの炭酸脱水酵素活性のこのようなインヒビターの使用および妥当性は、インヒビターの作用機構の任意の仮説に限定されるものではない。インヒビターが、例えば、本明細書中の以下で定義されるようにヒトCA IXまたはその生物活性改変体のような、CA IXの炭酸脱水酵素活性を阻害することは、本発明の目的のために十分である。
(CA IX炭酸脱水酵素活性を阻害することが可能な他のインヒビターおよび抗体検出のためのスクリーニングアッセイ)
本発明はこのように、CA IXタンパク質の発現に特徴付けられる癌処置のための治療剤として与えられ得る他の因子を同定するための方法を提供する。本方法は、スクリーニングアッセイを包含し、これにより目的のCA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性を阻害する試験薬剤の能力が、評価される。候補試験薬剤が、インビトロアッセイにおいて炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を有するものとして同定された場合、この薬剤はさらに、本明細書中の実験セクションにおいて記載される軟寒天アッセイを含む当該分野において公知である細胞ベースのアッセイを使用することにより、目的のCA IXタンパク質を発現する細胞株の表現型の形質転換を阻害するその能力について、検定され得る。インビトロアッセイを使用することにより同定された阻害性因子はまた、インビボアッセイを使用することにより、さらに検定され得る。
アンタゴニスト抗CA IX抗体、それらの抗原結合フラグメント、およびCA IXもしくはそれらの生物学的に活性な改変体の炭酸脱水酵素活性を阻害する他の薬剤は、CA IXインヒビターとして、本明細書中で集合的に参照される。これらのCA IXインヒビターは、CA IXタンパク質の発現によって特徴付けられる癌の処置に有用である。このような癌としては、これらに限定されないが、癌腫(例えば、乳癌、膀胱癌、卵巣癌、子宮癌、子宮頸癌、子宮内膜癌、扁平細胞癌および腺扁平上皮癌);ならびに、頭部および頸部癌;中胚葉腫瘍(例えば、神経芽細胞腫および網膜芽細胞腫);肉腫(例えば、骨肉腫およびユーイング肉腫);ならびに黒色腫、が挙げられる。特に関心があるのは、頭部および頸部癌、婦人科の癌(卵巣癌、子宮頸癌、膣癌、子宮内膜、および外陰部の癌が挙げられる)、および婦人科の前癌状態(例えば、化生性子宮頸部組織およびコンジローム)、胃腸の癌(例えば、胃癌、結腸癌、食道癌)、尿路の癌(例えば、膀胱癌、腎臓癌)、皮膚癌、肝臓癌、前立腺癌、肺癌、および乳癌である。
(実施例1:Glu標識CA IXの精製手順)
以下の実施例に使用されるヒトCA IXタンパク質のglu標識CAドメイン部分を、バキュロウイルス感染Tn5細胞において可溶性形態で発現させた。分泌されたglu標識CAタンパク質(CA IX−glu)を含有する培地を収集して、−80℃で保存した。CA IX−gluを含有するバキュロウイルス培地を(室温で)解凍して、1mMPMSFを作製した。これを、10kD Minisette(Filtron)膜上において、氷上で6〜7倍に濃縮した。
(実施例2:Glu標識全長CA IXの精製手順)
以下の実施例で使用される、全長の、Glu標識されたヒトCAタンパク質を、バキュロウイルス感染Tn5細胞において内的に発現させた。細胞を収集して、−80℃で保存した。細胞を(室温で)解凍して、以下の溶解緩衝液:ロイペプチン5μg/mlおよびE−64 10μg/ml、を補充したComplete,EDTA−free Protease Inhibitor Cocktail (Roche Diagnostics#1873580)を含有するPBS/10%グリセロール/0.5% Triton−X(pH7.4)で、1/3に希釈した。
以下のロースループットアッセイは、候補試験薬剤を、CA IXの炭酸脱水酵素活性を阻害するその能力に関してスクリーニングするために使用され得る。このアッセイは、全長CA IXタンパク質を用いて、もしくは機能性炭酸脱水酵素ドメインを含む部分長CA IXポリペプチドを用いて行われ得る。CA IXタンパク質は、同様にglu標識され得る。
4×緩衝液を調製し、濾過する:
100mM HEPES、pH7.5
400mM フェノールレッド
400mM NaSO4
H2O中にCO2を泡立てる(CO2−H2O)。
96ウェルUV透過性プレートにおいて:
50μlの4×緩衝液/ウェルを分取する;
25μl/ウェルのCAスタンダード(ウシ炭酸脱水酵素[Sigma])、もしくはPBS中で希釈したCA IX、もしくはPBS中で希釈したglu標識CA IXを添加する;
25μl/ウェルの培地中に希釈された試験サンプル、もしくは培地のみを添加する;
ウェルに、バックグラウンドとして、50μlの4×緩衝液+25μl PBS+25μl培地を加える;
100μl/ウェルのCO2−H2Oを添加することによって、反応を開始する;
混合しながら15分間、動的モード(kinetic mode)で562nmを測定する。
フェノール緩衝液を調製する:
40mM HEPES、4℃でpH8.3
400mMフェノールレッド(組織培養グレード)
終濃度40mM HEPES中にmAbsを再調合する(25μlサンプル/ウェルを要する)。
氷上で、最低30分間、H2O中にCO2を泡立てる(「CO2−H2O」)。
マフェナイドを40mM HEPES中に50mg/mlまで再懸濁する(=203mM)(新たに調製しなければならない)。
サンプルを40mM HEPESで希釈する:
ネガティブコントロールとして、サンプルの1つをモノクローナル抗体M75とする(阻害しないはず)
ポジティブコントロールとして、サンプルの1つを200μMマフェナイド(最終50μM)とする(阻害するはず)
フェノール緩衝液でCA−gluを80nMに希釈する(最終20nM)。
等量の希釈されたCA−gluをサンプルに添加する(1:2希釈)。
氷上で20分間、脱気する。
96ウェルUV Starプレートを氷上でインキュベート。
リーダーを、560nm、途中で3秒の振とうを伴う5分間の動的読み取り(kinetic read)にセットアップ。
50μlのサンプルを氷上でウェルに分取する。
容器にCO2−H2Oを流す。
プレートリーダー制御部で「Read」をクリックし、カウントを開始する。
プレートリーダーの扉を閉める前に、CO2−H2O(50μl/ウェル)を添加する。
プレートを読む。
アッセイの詳細:
実行ごとに12ウェルまでの試験が可能
全ての実行に、「CA−gluなし」および「CA−gluあり」のコントロールを含める必要がある
各サンプルは、三つ組もしくは四つ組で試験すべきである
(CAアッセイ(マクロ/ミディ))
緩衝液を調製する:
40mM HEPES、4℃でpH8.3
40mM HEPES緩衝液中にmAbsを再調合する。
HEPES緩衝液中でCA−gluを80nMに希釈する(最終20nM)。
マフェナイドを40mM HEPES中に50mg/mlまで再懸濁する(=203mM)(新たに調製しなければならない)。
サンプルを40mM HEPESで希釈する:
サンプルとして、モノクローナル抗体M75を加える(阻害しないはず)
サンプルとして、200μMマフェナイド(最終50μM)を加える(阻害するはず)
Abもしくはマフェナイドを含有しない(HEPESのみの)サンプルを加えて、酸性化の自発性の速度を決定する
氷上で、サンプルとCA−gluとを1:1で混合する。
CA−gluを含有しないコントロールセットを加える。
氷上で20分間、脱気する。
氷上で、最低30分間、H2O中にCO2を泡立てる。
氷上で、等量のCO2飽和水をCA−glu/mAbサンプルに添加する。
直ちにpHのモニタリングを開始する。10秒ごとに、pHをモニタリングして、pH対時間を図に示す。
予期される結果:
酵素を含有しないコントロールセットは、アッセイの時間に渡って、pHの変化を示さないはずである。
アイソタイプコントロールセットおよびM75セットは、自発性酸化サンプル(水+酵素のみ;Absもしくはインヒビターを含まない)と比較して、酸性化動態の変化を示さないはずである。
マフェナイドサンプルは、酸性化の速度を阻害(低下)させるはずである。
以下のハイスループットアッセイは、候補試験薬剤を、CA IXの炭酸脱水酵素活性を阻害するその能力に関してスクリーニングするために使用され得る。glu標識CA IX(CA IX−glu)は、上記の実施例に記述されるように精製される。ロースループットアッセイと同様に、全長CA IXタンパク質、もしくは機能性炭酸脱水酵素ドメインを含む部分長CA IXポリペプチドが使用され得る。この反応に使用される基質は、フルオレセインジアセテート(FDA)(カタログ#F−103、Molecular Probesから入手可能)である。基準のスタンダードは、アセタゾラミド(カタログ#A−9842、Sigma Chemicalsから入手可能)である。アッセイの緩衝液は、50mM MES(pH6.5)、0.05%Tween−20、0.1mM EDTAである。
以下のアッセイは、384ウェルブラックポリペプチドプレート中で実行される。
1)100%ジメチルスルホキシド中の試験サンプル1.25μlを、各ウェルに添加する。
2)アッセイ緩衝液中で、CA IX−glu酵素ストックを83.3nMに希釈する。30μlの希釈酵素ストックを各ウェルに添加する。混合する。バックグラウンドウェルに対して、30μlのアッセイ緩衝液(酵素なし)を加える。
3)アッセイ緩衝液中で、FDA基質ストックを62.5μMに希釈する。20μlの希釈基質ストックを各ウェルに添加する。混合する。
4)室温で2時間、インキュベートする。
5)励起=485nm、放出=520nmで蛍光を読む。
以下のプロトコールは、候補インヒビターを、CA IXの炭酸脱水酵素活性を阻害するその能力に関して試験するために使用され得る。
1)非組織培養用96ウェルプレートの各ウェルを、1.2%ポリ(HEMA)でコーティングする。コーティングが乾燥した後、プレートを滅菌する。
2)96ウェルプレートに、100μl中350〜500細胞/ウェルの密度で、細胞をプレートする。所望する場合、平板培養に先立って細胞を抗体とともにプレインキュベートし、阻害活性に関して試験し得る。
3)300μlの融解したノーブル寒天(60℃)を840μlの培地(37℃)に加えて、混合する。
4)50μlの混合物を各ウェルに分配し(1つの列のウェルに同時に行う)、そして混合して、寒天中に細胞の均一な懸濁液を作製する。
5)室温で10〜15分間、寒天を凝固させる
6)100μl/ウェルの培地で寒天を覆い、37℃で7〜14日間(細胞がどのくらい速く増殖するかに依存する)、プレートをインキュベートする、所望する場合、阻害活性に関して試験されるべき化学成分もしくは抗体を、培地に加え得る。
7)7〜14日後、20μlのアラマーブルー(Alamar Blue)を各ウェルに添加し、プレートを、室温で10〜15分間、ゆっくりと振とうさせる。
8)プレートをインキュベーターに戻し、インキュベーション期間の初期の毎時間、モニタリングする。
9)アラマーブルーは、細胞によって代謝され、時間とともに減少する。
10)アラマー色素の減少を、励起530nm、放出590nmで読み、細胞増殖の指標として、蛍光団を使用する。
この研究の第一の目的は、ヒトCA IXのプロテオググリカン様(PG)ドメイン(配列番号2の38〜134残基)のみ、またはヒトCA IXの炭酸脱水酵素(CA)ドメイン(135〜414残基)のみの発現で、NIH−3T3細胞へ形質転換された表現型をもたらすのに十分であるかどうかを決定することである。CAドメインのみで十分であると確認された場合、第二の目的は、NIH−3T3細胞へ形質転換された表現型をもたらすのに、酵素活性が必要とされるかどうかを決定することである。
全長CA IX構築物(CA−full)。この構築物は、全長ヒトCA IXをコードした。コードし、そして翻訳されるポリペプチド配列を、それぞれ、配列番号1および配列番号2に示す。
ELISA試験に使用された抗原は、ヒトCA IXのCAドメイン部分を表現するglu標識組み換えタンパク質(「CA−glu」タンパク質)であり、これを、実施例1に記載されるように単離した。CA−gluタンパク質を、1μg/mlの濃度でリン酸緩衝液(PBS)に懸濁し、そしてこの溶液100μl/ウェルを96ウェル平底プレート(Immulon 4HBX)中に分配した。このプレートを4℃で一晩インキュベーションした後、このタンパク質溶液を除去し、ウェルをPBST(PBS+0.05% Tween−20)で洗浄した。このウェルに、200μl/ウェルのブロッキング緩衝液(PBS+0.01% Tween−20中の3% Carnation脱脂粉乳)を加え、そしてプレートを、室温で1〜2時間インキュベートした。ウェルを、PBSTで再度洗浄し、次いで、各ウェルに、抗体、もしくは試験されるべきハイブリドーマ上清を含有する溶液100μlを加えた。ハイブリドーマ上清の場合は、この溶液は、ブロッキング緩衝液によって100μlの最終容量に調製された上清、5〜50μlから構成された。プレートを、室温で1時間インキュベートした後、ウェルをPBSTで洗浄した。各ウェルに、100μlの2次抗体溶液(西洋ワサビペルオキシダーゼ結合ウサギ抗マウスIgG(γ);Zymed #61−6020;ブロッキング緩衝液中で1:4000に希釈)を加え、そしてプレートを、室温で0.5〜1時間インキュベートした。PBSTによるウェルの最終洗浄の後、100μl/ウェルのODPペルオキシダーゼ基質(Sigma #P−9187;製造者の使用説明書に従って調製)を添加し、そしてプレートを、室温で5〜30分間インキュベートして、発色させた。ペルオキシダーゼ反応を、50μl/ウェルの4M H2SO4の添加によって停止させ、そして各ウェルの反応を、490nmでの吸光度−540nmでの吸光度として定量した。
CAドメインが、細胞表面上のネイティブ分子の一部として存在した場合に、CA−glu抗体がCAドメインに結合し得るかどうかを決定するため、蛍光標示式細胞分取を行った。このアッセイに利用された細胞型は、ヒト結腸直腸腺癌に由来する、HT29細胞株(ATCC #HTB−38)であった。このアッセイのため、この細胞を、およそ30分環の3mM EDTA処理によって組織培養プレートから剥離した。細胞を遠心分離によって回収し、次いで、冷えたインキュベーション緩衝液(1%ウシ血清アルブミン含有PBS9に再懸濁した。試験されるべき抗体もしくはハイブリドーマ上清と2〜5×105細胞とを冷えたインキュベーション緩衝液(最終容量100μl)中で混合した。ネガティブコントロールとして、細胞を10μg/mlの非特異的マウスIgG2bと混合した;ポジティブコントロールとして、細胞を10μg/mlの抗CA IXモノクローナル抗体M75と混合した(Pastorekovaら、(1992)Virology 187:620−626)。4℃で30分間のインキュベーションの後、細胞を遠心分離によって回収し、冷えたインキュベーション緩衝液で3回洗浄し、そして検出抗体(フィコエリトリンと結合したヤギ抗マウスIgG抗体;CALTAG M30004−4;冷えたインキュベーション緩衝液100μl/細胞サンプル中に0.2μg)と混合した。細胞を2次抗体とともに4℃で30分間インキュベートした後、細胞を、遠心分離によって再度回収して、冷えたインキュベーション緩衝液で3回洗浄した。各細胞サンプルを、0.5μl/サンプルのヨウ化プロピジウム溶液(Roche #1 348 639)を含有するインキュベーション緩衝液300〜500μl中に再懸濁した。次いで、このサンプルを、FACScaliber FACS装置(Becton Dickinson)を利用して分析した。
始めに、雌BALB/cマウスを、全長組み換えヒトCA IXを発現する細胞によって免疫した。免疫化のための細胞を産生するため、Tn5昆虫細胞を、ヒトCA IXタンパク質をコードする組み換えバキュロウイルスに感染させ、この細胞を、遠心分離によって回収し、そしてPBS中に再懸濁し、最終濃度を5×107細胞/mlとした。細胞懸濁液を、等量のフロイント不完全アジュバント(Sigma,F−5506)で乳化し、0.2mlの乳濁液を、各マウスの腹腔内に注入した。次いで、このマウスを、30μg/マウスの組み換えCA−gluタンパク質の腹腔内注入によって、2〜3週毎に追加免疫した。最初の追加免疫のために、注入前に、CA−gluタンパク質を、等量のフロイント不完全アジュバント(Sigma,F−5881)で乳化した。続く全ての腹腔内免疫において、このタンパク質を、注入前に、CA−gluタンパク質を、フロイント不完全アジュバントで乳化した。各追加免疫の8日後、各動物から血液を収集し、この血液サンプルから血清を生成し、そして、実施例7に記載されたELISAを用いて、CA−gluタンパク質を認識する抗体のレベル(力価)に関して、この血清を試験した。
全長ヒトCA IXタンパク質および炭酸脱水酵素ドメイン(すなわち、配列番号2の135〜414残基)を、Vector NTIのBioannotatorプログラム(例えば、InforMaxから入手可能なVector TI Advance(VNTI Suite 8.0))を用いて、抗原性領域分析に供した。両配列の抗原性プロットは、炭酸脱水酵素ドメイン内の抗原性領域を予測した。ここで、抗原性の28残基領域は、配列番号2の229〜256残基に対応する(データは示さない)。
Claims (40)
- CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性を阻害可能な薬剤を同定する方法であって、該薬剤は、アンタゴニスト抗CA IX抗体、該アンタゴニスト抗CA IX抗体の抗原結合フラグメント、ペプチド、ペプトイド、および有機低分子からなる群から選択され、該方法は、以下:
a)炭酸脱水酵素活性を検出するために適切な条件下で、試験されるべき薬剤を該CA IXポリペプチドを発現する細胞と合わせる工程;および
b)該薬剤の、該炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を評価する工程であって、これにより、該炭酸脱水酵素活性の該薬剤による阻害が、該薬剤がインヒビターであることを表す、工程、
を、包含する、方法。 - 前記薬剤が、アンタゴニスト抗CA IX抗体またはその抗原結合フラグメントである、請求項1に記載の方法。
- 請求項2に記載の方法であって、前記抗CA IX抗体またはその前記抗原結合フラグメントが、前記CA IXポリペプチドの阻害性エピトープと特異的に反応して抗体抗原複合体を形成し、これにより、該複合体の形成が、該CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性の阻害をもたらす、方法。
- 請求項3に記載の方法であって、前記阻害性エピトープが、前記CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素ドメインの連続するアミノ酸残基を含む阻害性エピトープ、該炭酸脱水酵素ドメインの不連続なアミノ酸残基を含む阻害性エピトープ、ならびに該炭酸脱水酵素ドメインの連続するアミノ酸残基および不連続なアミノ酸残基の両方を含む阻害性エピトープからなる群から選択される、方法。
- 前記哺乳動物が、ヒトであり、前記CA IXポリペプチドが、配列番号2のヒトCA IXであり、前記炭酸脱水酵素ドメインが、配列番号2のアミノ酸残基135〜414によって表される、請求項4に記載の方法。
- 前記阻害性エピトープが、配列番号2の残基226、228および251からなる群から選択される、少なくとも1つのアミノ酸残基を含む、請求項5に記載の方法。
- 前記阻害性エピトープが、配列番号2の残基220〜260からなる群から選択される、少なくとも5つの連続するアミノ酸残基を含む、請求項5に記載の方法。
- 前記阻害性エピトープが、配列番号2の残基226、228および251からなる群から選択される、少なくとも1つのアミノ酸残基を含む、請求項7に記載の方法。
- 前記抗CA IX抗体が、ヒト抗CA IXモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメントである、請求項3に記載の方法。
- 前記抗CA IX抗体が、ヒト化抗CA IXモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメントである、請求項3に記載の方法。
- 前記抗CA IX抗体が、またはその抗原結合フラグメントが、それらに結合する、細胞毒素、治療剤、または放射活性金属イオンをさらに含む、請求項3に記載の方法。
- 前記抗原結合フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメント、単鎖Fvフラグメントからなる群から選択される、請求項3に記載の方法。
- 哺乳動物において、新生物細胞の増殖を阻害する方法であって、該新生物細胞は、CA IXタンパク質の発現によって特徴付けられ、該方法は、該哺乳動物に、治療的有効用量の、該CA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性を阻害する薬剤を投与する工程を包含し、ここで、該薬剤は、請求項1に記載の方法によって同定される、方法。
- 前記CA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性を阻害する前記薬剤が、組換えCHO細胞または組換え骨髄腫細胞によって産生される抗体である、請求項13に記載の方法。
- 前記骨髄腫細胞が、Sp2骨髄腫細胞またはNS0骨髄腫細胞である、請求項14に記載の方法。
- 機能的炭酸脱水酵素ドメインを有する、CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性を阻害する薬剤を同定する方法であって、該方法は、以下:
a)炭酸脱水酵素活性を検出するために適切な条件下で、試験されるべき薬剤を該CA IXポリペプチドを発現する細胞と結合させる工程;および
b)該薬剤の、該炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を評価する工程であって、これにより、該炭酸脱水酵素活性の該薬剤による阻害が、該薬剤がインヒビターであることを表す、工程、
を、包含する、方法。 - 請求項16に記載の方法であって、前記CA IXポリペプチドは、以下:
a)配列番号2に示されるアミノ酸配列を有するヒトCA IX;
b)配列番号2の残基135〜414に示されるポリペプチド;
c)炭酸脱水酵素活性を有するポリペプチドであって、該ポリペプチドはヒトCA IXのフラグメントを含み、該フラグメントは機能的炭酸脱水酵素ドメインを含み、ここで、該炭酸脱水ドメインは、配列番号2の残基135〜414と少なくとも70%の配列同一性を共有する、ポリペプチド;ならびに
d)配列番号2のヒトCA IXのポリペプチド改変体であって、該ポリペプチド改変体は、配列番号2と少なくとも70%の配列同一性を共有し、該ポリペプチド改変体は、機能的炭酸脱水酵素ドメインを有し、ここで、該炭酸脱水酵素ドメインは、配列番号2の残基135〜414と少なくとも70%の配列同一性を共有する、ポリペプチド改変体、
からなる群から選択される、方法。 - 前記フラグメントが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも80%の配列同一性を共有する機能的炭酸脱水酵素ドメインを含む、請求項17に記載の方法。
- 前記フラグメントが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも90%の配列同一性を共有する機能的炭酸脱水酵素ドメインを含む、請求項18に記載の方法。
- 前記フラグメントが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも95%の配列同一性を共有する機能的炭酸脱水酵素ドメインを含む、請求項19に記載の方法。
- 前記ポリペプチド改変体が、配列番号2と少なくとも80%の配列同一性を共有し、ここで、前記炭酸脱水酵素ドメインが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも80%の配列同一性を共有する、請求項17に記載の方法。
- 前記ポリペプチド改変体が、配列番号2と少なくとも90%の配列同一性を共有し、ここで、前記炭酸脱水酵素ドメインが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも90%の配列同一性を共有する、請求項21に記載の方法。
- 前記ポリペプチド改変体が、配列番号2と少なくとも95%の配列同一性を共有し、ここで、前記炭酸脱水酵素ドメインが、配列番号2の残基135〜414と少なくとも95%の配列同一性を共有する、請求項22に記載の方法。
- 前記細胞が、COS、チャイニーズハムスター卵巣、NIH−3T3、293、およびこれらの誘導体からなる群から選択される宿主細胞である、請求項16に記載の方法。
- 前記細胞が、前記CA IXを天然に発現する細胞株または組織の細胞である、請求項16に記載の方法。
- 前記薬剤の炭酸脱水酵素活性を阻害する前記能力が、軟寒天アッセイを使用して検出される、請求項16に記載の方法。
- 請求項16に記載の方法に従って同定されているCA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性のインヒビターであって、ここで、該インヒビターが、ペプチド、ペプトイド、および有機低分子からなる群から選択される、インヒビター。
- 哺乳動物において新生物細胞の増殖を阻害するための方法であって、該新生物細胞は、CA IXタンパク質の発現によって特徴付けられ、該方法は、該哺乳動物に、治療的有効用量の、該CA IXタンパク質の炭酸脱水酵素を阻害する薬剤を投与する工程を包含し、ここで、該薬剤は、請求項16に記載の方法によって同定される、方法。
- CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性を阻害可能な薬剤を含有する組成物であって、該薬剤は、アンタゴニスト抗CA IX抗体、該アンタゴニスト抗CA IX抗体の抗原結合フラグメント、ペプチド、ペプトイド、および有機低分子からなる群から選択され、ここで、該薬剤は、該炭酸脱水酵素活性を検出するために適切な条件下で、試験されるべき薬剤を、該CA IXポリペプチドを発現する細胞と合わせる工程;および、該薬剤の、該炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を評価する工程であって、これにより、該薬剤による該炭酸脱水酵素活性の阻害が、該薬剤がインヒビターであることを表す工程、によって同定される、組成物。
- 前記組成物が、薬学的組成物である、請求項29に記載の組成物。
- 薬学的に受容可能なキャリアをさらに含有する、請求項30に記載の組成物。
- 哺乳動物において、新生物細胞の増殖を阻害する方法であって、該新生物細胞は、CA IXタンパク質の発現によって特徴付けられ、該方法は、該哺乳動物に、治療的有効量の請求項29の組成物を投与する工程を包含する、方法。
- 本質的に配列番号2のアミノ酸残基135〜414からなる、ポリペプチド。
- CA IXタンパク質の発現によって特徴付けられる新生物を有する被験体を処置する、改善された方法であって、該方法は、治療的有効量の薬学的薬剤を該被験体に投与する工程を包含し、ここで、該改善は、該薬学的薬剤が、該CA IXタンパク質の炭酸脱水酵素活性を阻害する薬剤を含む改善であり、ここで、該薬剤は、請求項1に記載の方法によって同定される、方法。
- 前記薬剤が、モノクローナル抗体である、請求項34に記載の方法。
- 機能的炭酸脱水酵素ドメインを含むヒトCA IXまたはその生物学的に活性な改変体の炭酸脱水酵素活性を阻害するモノクローナル抗体であって、該機能的炭酸脱水酵素ドメインは、配列番号2の残基229〜256に相同である残基の領域を含み、ここで、該抗体は、該ヒトCA IXの阻害性エピトープまたは該その生物学的に活性な改変体の該阻害性エピトープと特異的に反応して抗体抗原複合体を形成し、ここで、該複合体の形成は、該炭酸脱水酵素活性の阻害をもたらし、ここで、該ヒトCA IXの該阻害性エピトープは、配列番号2の残基229〜256の少なくとも1つを含み、ここで、該その生物学的に活性な改変体の該阻害性エピトープは、配列番号2の残基229〜256と相同な少なくとも1つの残基の領域を含む、モノクローナル抗体。
- 請求項36に記載のモノクローナル抗体であって、前記ヒトCA IXの前記阻害性エピトープが、配列番号2の残基229〜256の少なくとも2つを含むが、配列番号2の残基229〜256の28未満しか含まない、モノクローナル抗体。
- 請求項36に記載の抗体および薬学的に受容可能なキャリアを含有する、薬学的組成物。
- CA IXポリペプチドの炭酸脱水酵素活性を阻害する能力について、抗体をアッセイする方法であって、該方法は、以下:
a)炭酸脱水酵素活性を検出するために適切な条件下で、試験されるべき抗体を該CA IXポリペプチドを発現する細胞と合わせる工程;および
b)該抗体の、該炭酸脱水酵素活性を阻害する能力を評価する工程であって、これにより、該炭酸脱水酵素活性の該抗体による阻害が、該抗体がインヒビターであることを表す、工程、
を、包含する、方法。 - 前記抗体が、既存の抗体である、請求項39に記載の方法。
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