JP2005518199A - 栽培用植物および家畜化動物中のポリヌクレオチドおよびポリペプチド配列における進化的に有意の変化を同定するための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
背景技術
ヒトは、ある種の商業的に価値のある、および/または、審美的な形質を選択しながら、何千年もの間、植物や動物を育種してきた。栽培品種化植物は、収量、短日開花、タンパク質および/または油含量、収穫の容易さ、味、耐病性、耐乾燥性のような形質で、それらの野生祖先と異なる。家畜化動物は、脂肪および/またはタンパク質含量、ミルク産生、従順さ、繁殖力、および成熟までの期間、のような形質で、それらの野生型祖先と異なる。現在、上記の相違の素地となる大部分の遺伝子はわかっておらず、また重要なことに、これらの能力を賦与するようにこれらの遺伝子に発生した特定の変化も知られていない。栽培品種化(家畜化)植物および動物とそれらの野生型祖先との間のこれらの相違の根拠を理解することは、それらの形質を維持そして増強するための有用な情報をもたらすであろう。作物植物の場合、所望の形質を制御する特定の遺伝子類の同定は、従来は可能でなかった仕方で、直接的で迅速な改良を可能にするであろう。 栽培種とそれらの野生祖先との間の相同遺伝子またはタンパク質の比較は、保存された分子配列および機能特徴に関して有用な情報を提供することも可能であるが、このアプローチは、人為的選択圧のために配列が変化した遺伝子の同定に使うには、限界がある。洗練されたアルゴリズムと分析方法の進歩に伴って、どの遺伝子が正に選択されているかに関して、DNA配列変化から、さらに多くの情報を引き出すことも可能である。これらの方法のうち最も有力なものである、“KA/KS”は、
非同義部位当りの非同義ヌクレオチド置換(K A )
同義部位置当りの同義置換(KS)
の比のアラインされたタンパク質コードヌクレオチド配列間のペアワイズ(pairwise)比較を含む(ここで、非同義はコードされたアミノ酸を変える置換を意味し、同義はコードされたアミノ酸を変えない置換を意味する)。“KA/KS型方法”は本法および同様な方法を包含する。
植物における同様な形質を制御している可能性がある(Paterson(1995))。それゆえ、1つのイネ科牧草由来の作物植物におけるこれらの遺伝子の同定は、その他のすべてにおける相同遺伝子の同定を容易にするであろう。
発明の詳細な説明
1つの実施態様では、本発明は、栽培品種化(家畜化)された生物(例えば、植物および動物)における商業的にもしくは審美的に重要な形質と関連する、そしてそれゆえにそれらに寄与または原因となることもあり得る、正に選択された遺伝子および特定の遺伝子変化を同定するために、比較ゲノミクスを利用する。
本発明の実施は、別に示さない限りは、当該技術分野の熟練の範囲内にある、分子生物学、遺伝学、および分子進化の慣用技術を使用する。そうした技術は、“Molecular Cloning:A Laboratory Manual”,第2版(Sambrookら,1989);“Oligonucleotide Synthesis”(M.J.Gait編、1984);“Current Protocols
in Molecular Biology”(F.M.Ausubelら編,1987);“PCR:The Polymerase Chain Reaction”,(Mullisら編,1994);“Molecular Evolution”,(Li,1997):のような文献中に十分に説明されている。
本明細書で使われる場合、「ポリヌクレオチド」は、リボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドのいずれか、またはそれらの類似体の、任意の長さのヌクレオチドの重合体型を指す。本用語は、前記分子の一次構造を指し、それゆえ、二本鎖および一本鎖DNAならびに二本鎖および一本鎖RNAを含む。それはまた、メチル化および/またはキャップ形成ポリヌクレオチドのような修飾ポリヌクレオチド、修飾塩基、バックボーン修飾、および同種のものを含むポリヌクレオチド、を含む。用語「ポリヌクレオチド」および「ヌクレオチド配列」は互換的に使用される。
「ハウスキーピング遺伝子」は、当該技術分野ではよく理解されている用語で、成長、分裂、静止、代謝、および/または死を、非限定的に含む、一般的な細胞機能に関連する遺伝子を意味する。「ハウスキーピング」遺伝子は、一般に、1つより多い細胞型で見られる機能を遂行する。それに対して、細胞特異的遺伝子は、一般に、特定の細胞型および/またはクラスで、機能を遂行する。
「機能性効果」は、当該技術分野では周知の用語で、直接的であれ間接的であれ、活性の任意のレベルで示される任意の効果を意味する。
用語「増強された経済的生産性」は、所望の特徴を改良するために、商業的にもしくは審美的に重要な形質を調整する能力を指す。収量の増加およびストレス耐性の亢進は、増強された経済的生産性の2つの例である。
本発明の目的のための、栽培品種化(家畜化)植物または動物またはその祖先からのポリヌクレオチドの来源は、任意の適当な来源、例えば、ゲノム配列またはcDNA配列であってもよい。好ましくは、cDNA配列が比較される。タンパク質コード配列は、本明細書に記載されたもののような利用可能な私的、公開および/または商業データベースから入手可能である。これらのデータベースは、進行中の研究努力により産生された分子配列データの貯蔵所として役立つ。あるいは、タンパク質コード配列は、例えば、当該技術分野で周知の方法に従って、細胞中で発現されたmRNAから逆転写されたcDNAの配列決定から、またはPCR増幅後に、得てもよい。あるいは、ゲノム配列を、配列比較のために使ってもよい。ゲノム配列は、利用可能な公開、私的、および/または商業データベースから、またはゲノムDNAライブラリーの配列決定から、またはPCR後にゲノムDNAから、入手可能である。
好ましい態様で、本明細書に記載された方法は、農業的に重要な栽培品種化植物において興味ある形質を制御する遺伝子を同定するために、適用が可能である。人類は、これらの形質を制御する遺伝子類の知識なしに、数千年間、栽培品種化植物を育ててきた。関与する特定の遺伝的機構の知識は、望ましいまたは増強された形質をもつ植物を作出するのに、分子レベルでの非常に迅速かつ直接的な介入を可能にするであろう。
例えば、本発明で同定された遺伝子EG307のスライディングウインドウKA/KS分析は、O.rufipogonに比較したとき、O.sativa株の多くでEG307の5’末端に多数の非同義変化があることを示した。当該遺伝子の3’末端は、当該株の全部で低い比をもっていた。これらの手順および結果は、実施例11および表2−7に詳述されている。
Mol.Biol Evol.37:441−456により記載された尤度比検定のような、標準法を非限定的に含み、すべての高KA/KS比について実施する。
本発明の1つの態様は、単離された植物EG307ポリペプチドである。本明細書で使われる場合、EG307ポリペプチドは、1つの態様で、約447アミノ酸の、そして図2に表された配列(配列番号6)をもつ、O.sativaポリペプチドに関係する(すなわち、構造類似性をもつ)ポリペプチドである。そうしたポリペプチドの最初の同定は、実施例に詳述されている。好ましいEG307ポリペプチドは、下記の遺伝子の少なくとも1つに、厳格なハイブリッド形成条件下でハイブリッド形成するポリヌクレオチドによりコードされる:すなわち、(a)O.sativa EG307ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのO.sativa遺伝子);(b)O.rufipogon EG307ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのO.rufipogon遺伝子);(c)Zea mays mays EG307遺伝子をコードする1つの遺伝子;(d)Zea mays parviglumis EG307ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのZea mays parviglumis遺伝子);(e)Zea diploperennis EG307ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのZ.diploperennis遺伝子);および(f)Zea luxurians EG307ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのZ.luxurians)である。用語「1つの(a or an)」実体は、その実体の1つまたは1つより多く(one or more)を指す;例えば、1つの遺伝子は、1つまたは1つより多くの遺伝子、または少なくとも1つの(at least one)遺伝子を指すことを、指摘できる。それ自体、用語「1つの(a or an)」、「1つまたは1つより多くの」および「少なくとも1つの」は、本明細書では互換的に使用可能である。用語「含む(comprising)」、「含む(including)」、および「もつ(having)」は、互換的に使用可能であることも、指摘できる。
本発明の1つの態様は、融合セグメントに付着したEG307ポリペプチド含有ドメインを含む融合ポリペプチドである。本発明のEG307ポリペプチドの一部としての融合セグメントの包含は、生産、貯蔵、および/または使用中の当該ポリペプチドの安定性を増強することも可能である。当該セグメントの特性によって、融合セグメントはまた、そうした融合セグメントを含むEG307ポリペプチドで免疫された動物により始動される免疫応答を亢進するために、免疫賦活剤として働くこともある。さらに、融合セグメントは、結果として生じた融合ポリペプチドの、アフィニティークロマトグラフィー用いる精製を可能にするような、EG307ポリペプチドの精製を簡易化するための手段として、機能することも可能である。適当な融合セグメントは、所望の機能(例えば、安定性の増加を与える、ポリペプチドへの免疫原性の増加を与える、および/またはポリペプチドの精製を簡素化する)をもつ任意のサイズのドメインでよい。1つまたは1つより多い融合セグメントを使用することは、本発明の範疇に入る。融合セグメントは、当該ポリペプチドのEG307含有ドメインのアミノおよび/またはカルボキシル末端に、結合させてもよい。そうしたポリペプチドのEG307含有ドメインの簡単な回収を可能にするために、融合セグメントと融合ポリペプチドのEG307含有ドメインとの間の結合は、切断し易くしてもよい。融合ポリペプチドは、EG307含有ドメインのカルボキシルおよび/またはアミノ末端のいずれかに付着した融合セグメントを含むポリペプチドをコードする、融合ポリペプチドで形質転換された組み換え体細胞を培養することにより、好ましくは産生される。
列番号4のヌクレオチド37から約ヌクレオチド2280のオープンリーディングフレームは、本明細書の配列番号5に示される。
本発明の1つの態様は、単離された植物EG1117ポリペプチドである。本明細書で使われる場合、EG307ポリペプチドは、1つの態様で、約552アミノ酸のO.rufipogonポリペプチドに関係する(すなわち、構造類似性をもつ)、そして図7に表された配列(配列番号95)をもつ、ポリペプチドである。そうしたポリペプチドの最初の同定は、実施例に詳述されている。好ましいEG1117ポリペプチドは、下記の遺伝子の少なくとも1つに、厳格なハイブリッド形成条件下でハイブリッド形成するポリヌクレオチドによりコードされる:すなわち、(a)O.sativa EG1117ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのO.sativa遺伝子);(b)O.rufipogon EG1117ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのO.rufipogon遺伝子);(c)Zea mays mays EG1117遺伝子をコードする1つの遺伝子;(d)Zea mays parviglumis EG1117ポリペプチドをコードする1つの遺伝子(すなわち、1つのZ.mays parviglumis遺伝子)である。
本発明の1つの態様は、融合セグメントに付着したEG1117ポリペプチド含有ドメインを含む融合ポリペプチドである。
本発明の1つの態様は、下記の遺伝子の少なくとも1つと、厳格なハイブリッド形成条件下でハイブリッド形成する、単離された植物ポリヌクレオチドである:すなわち、O.sativa EG307遺伝子、O.rufipogon EG307遺伝子、Z.mays mays EG307遺伝子、Z.mays parviglumis EG307遺伝子、Z.diploperennis EG307遺伝子、およびZ.luxurians遺伝子である。そうした遺伝子類の明らかな特性は、これまでに記載されている。本発明のポリヌクレオチドは、単離された天然植物EG307遺伝子またはその相同体を含むことが可能で、後者について以下により詳細に記載される。本発明のポリヌクレオチドは、1つまたは1つより多い調節領域、完全長または部分コード領域またはそれらの組合せを含むことが可能である。本発明のポリヌクレオチドの最小サイズは、厳格なハイブリッド形成条件下で、前述の遺伝子類の1つと安定なハイブリッドを形成できる最小サイズである。適切かつ好ましい植物は、上に開示されている。
ものも、いないものも含む)のいずれかと、厳格なハイブリッド形成条件下で安定なハイブリッドを形成する、それらのポリヌクレオチドを含む。相補的配列を推定する方法は、当業者には知られている。EG307ポリペプチドの少なくとも一部をコードする核酸配列の対応領域(類)と、少なくとも約65%、好ましくは少なくとも約70%、さらに好ましくは少なくとも約75%、さらに好ましくは少なくとも約80%、さらに好ましくは少なくとも約85%、さらに好ましくは少なくとも約90%、そしてなおさらに好ましくは少なくとも約95%の相同性をもつ核酸配列を含む、EG307ポリヌクレオチドが好ましい。植物中に自然に存在する、EG307ポリペプチドの少なくとも一部をコードできるEG307ポリヌクレオチドがとくに好ましい。
D. EG1117ポリヌクレオチド
本発明の1つの態様は、下記の遺伝子の少なくとも1つと、厳格なハイブリッド形成条件下でハイブリッド形成する、単離された植物ポリヌクレオチドである:すなわち、O.sativa EG1117遺伝子、O.rufipogon EG1117遺伝子、Z.mays mays EG1117遺伝子、およびZ.mays parviglumis EG1117遺伝子である。そうした遺伝子類の明らかな特性は、これまでに記載されている。本発明のポリヌクレオチドは、単離された天然植物EG1117遺伝子またはその相同体を含むことが可能である。本発明のポリヌクレオチドは、1つまたは1つより多い調節領域、完全長または部分的コード領域、またはそれらの組合せを含むことが可能である。本発明のポリヌクレオチドの最小サイズは、厳格なハイブリッド形成条件下で、前述の遺伝子類の1つと安定なハイブリッドを形成できる最小サイズである。適切かつ好ましい植物は、上に開示されている。単離されたEG1117遺伝子およびそれらの相同体の特性は、「EG307ポリヌクレオチド」というタイトルの節で上記されている。
本発明はまた、宿主細胞中に前記ポリヌクレオチドを配達できる任意のベクター中へ挿入された、本発明の少なくとも1つの植物EG307またはEG1117ポリヌクレオチドを含む、組み換え体ベクターを含む。そうしたベクターは、本発明のポリヌクレオチドに隣接して天然には見られない核酸配列であり、当該ポリヌクレオチド(類)が由来する種以外の種から誘導される、異種核酸配列を含む。本明細書で使われる場合、誘導されたポリヌクレオチドは、あるポリヌクレオチドまたはあるポリヌクレオチドの部分に配列が、同一か、類似しているが、修飾塩基、バックボーン修飾、ヌクレオチド変化、および同類のもの、のような修飾を含むことがある、ものである。前記ベクターは、RNAまたはDNAのいずれでも、原核生物性または真核生物性のいずれでもよく、そして典型的には、ウイルスまたはプラスミドである。組み換え体ベクターは、本発明の植物EG307またはEG1117ポリヌクレオチドのクローニング、配列決定、および/または、ほかの操作に使用可能である。本明細書で組み換え体分子と呼ばれ、そして以下により詳細に記載される組み換え体ベクターの1つのタイプは、本発明のポリヌクレオチドの発現で使用可能である。好ましい組み換え体ベクターは、形質転換細胞中で複製可能である。
EG307およびEG1117に関して、とくに好ましい組み換え体細胞は植物細胞である。「植物細胞」により、半透性膜に囲まれ、そしてプラスミドを含む任意の自己増殖性細胞を意味する。そうした細胞はまた、さらなる増殖が望まれるならば、細胞壁を必要とする。植物細胞は、本明細書で使われる場合、限定なしに、藻類、シアノバクテリア、種子、懸濁培養、胚、分裂組織領域、カルス組織、葉、根、苗条(shoots),配偶体(gametophytes)、胞子体(sporophytes)、花粉、および小胞子(microspores),を含む。
本発明はまた、本発明のEG307またはEG1117ポリペプチドに、またはそのミメトープに、選択的に結合できる単離された抗体を含む。その種の抗体は、本明細書では抗EG307または抗EG1117抗体とも呼ばれる。本態様のとくに好ましい抗体は、抗O.sativa EG307抗体、抗O.rufipogon EG307抗体、抗Z.mays EG307抗体、抗O.sativa EG1117抗体、抗O.rufipogon EG1117抗体、抗Z.mays EG1117抗体、を含む。
本発明はまた、本発明のEG307またはEG1117ポリペプチドの少なくとも1つまたは両方を含む組成物を含む。成長を効率的に制御するために、そうした組成物は、好ましくは十分量のポリペプチドを含む。そうした量は、標的作物次第で、および湿度、温度、または土壌のタイプのような、環境条件次第で、変わる。好ましい態様では、EG307および/またはEG1117ポリペプチドを含む組成物は、当該ポリペプチドを発現する宿主細胞を、余分の精製を加えずに、含む。もう1つの好ましい態様では、EG307および/またはEG1117ポリペプチドを発現する細胞は、成長促進剤としてのそれらの使用前に、凍結乾燥される。もう1つの態様で、EG307またはEG1117ポリペプチドは、宿主細胞から分泌されるように、操作される。それらが発現される宿主細胞から当該ポリペプチドの精製が望ましい場合、EG307またはEG1117ポリペプチドのさまざまな程度の精製が行われる。
本明細書に詳細に記載されているように、KA/KS分析は、正に選択されたタンパク質コード遺伝子の同定を可能にする;しかしこのタイプの分析はまた、中立条件下で進化している遺伝子のような、もう1つのセットの進化的に有意の遺伝子を同定するのに、使用することも可能である。
本発明はまた、上記の方法を用いて同定され、そして特徴解明されたポリヌクレオチドおよびポリペプチドを用いるスクリーニング法も、提供する。これらのスクリーニング法は、栽培化または祖先生物における特性を増強または減弱するのに役立つと思われる仕方で、当該ポリヌクレオチドまたはポリペプチドの機能(類)を調整することも可能な作用物質を同定するのに有用である。一般に、当該方法は、試験される予定の少なくとも1つの作用物質を、栽培化生物、祖先生物、または上記の方法により同定されたポリヌクレオチド配列でトランスフェクトしてあるトランスジェニック生物または細胞、あるいはそうしたポリヌクレオチド配列によりコードされたポリペプチドの調製物、と接触させることを設定するが、そこでの作用物質は、当該ポリヌクレオチド配列または当該ポリペプチドのいずれかの機能を調整する能力により同定される。例えば、作用物質は、同定された遺伝子の所望の時期における発現を誘導するために、栽培品種化(家畜化)植物または動物に適用または接触される化合物であってもよい。具体的に植物に関して、作用物質は、適切な時期に開花を誘導するために、使用されてもよい。
上記のスクリーニング法は、ポリヌクレオチドまたはポリペプチドの機能を調整する活性を示すことがあり得る任意の作用物質を検出するために設計された、一次選別を表す。当業者は、作用物質をさらに評価するためには、二次試験が必要らしいことを、認識するだろう。例えば、二次試験は、当該技術分野で知られるマウスおよび他の動物モデル(ラットのような)を用いる検定で、または栽培化(家畜化)植物または動物そのもので、当該作用物質(類)を試験することを含んでもよい。加えて、細胞毒性検定は、一次選別で陽性と試験された作用物質が生きている生物での使用に適するであろうことの、さらなる確証として実施されはずである。例えば、MTT検定法(Promega)を含む、細胞毒性のための任意の検定法が、本目的に適するはずである。
次の実施例は、当業者をさらに助けるために、提供される。そうした実施例は、例証的であるように意図されおり、それゆえに、本発明を制限すると見なすべきではない。多数の典型的な修飾および変形が、本出願に記載されており、そして他のものは、当業者には明らかになるだろう。そうした変形は、本明細書に記載され、そして請求されているように、本発明の範疇に入ると考えられる。
(実施例1):cDNAライブラリー構築
栽培品種化(家畜化)植物または動物cDNAライブラリーは、当該植物または動物からの適切な組織を用いて構築される。当業者は、興味ある形質に従って分析するための適切な組織または複数の組織を知っているはずである。あるいは、生物体全体を用いてもよい。例えば、1日齢植物実生は、当該植物の遺伝子の大部分を発現することがわかっている。
当該cDNAライブラリーからダンダムに選択された祖先cDNAクローンは、ABI377またはMegaBACE1000または任意の同様で適当な製品のような自動シークエンサーを用いて配列決定する。当該配列決定を行うには、M13 UniversalおよびReverseプライマー類のようなクローニングベクター上に普通に使われるプライマー類が使用される。末端シークエンシングにより完全には配列決定されない挿入断片については、色素標識ターミネーターまたはカスタムプライマーを用いて、残りのギャップに充填することが可能である。
比較されている栽培化(家畜化)植物または動物配列はKA/KS分析に付す。本分析では、Li93およびINAのような、公共的にまたは商業的に入手可能なコンピュータープログラムを使って、上記のように検討中の各配列について、部位当りの同義変化の数(KS)により部位当りの非同義変化の数(KA)を割って決定する。完全長コード領域またはコード領域の部分セグメントを使用可能である。KA/KS比が高ければ高いほど、配列は適応進化を受けてきた可能性が多い。KA/KS値の統計有意性は、t検定のような確立された統計的方法および入手可能なプログラムを用いて決定する。
テオシンテcDNAライブラリーは、全テオシンテ1日齢実生または他の適切な植物組織を用いて構築される。全RNAは当該実生組織から抽出され、そして当該RNAの完全性および純度は慣用の分子クローニング方法に従って決定される。ポリA+RNAが選択され、そしてプライマーとしてオリゴ(dT)とともに、cDNAの逆転写用の鋳型として使用される。合成されたcDNAは、商業的に入手可能なキットを用いて、クローニング用に処理し、修飾される。次に、組み換え体をパッケージし、宿主細胞系中で増殖させる。当該パッケージングミックスの一部を増幅し、そして残りは増幅前に保存する。組み換え体DNAは、確立された方法を用いて、大腸菌(E.coli)宿主細胞にトランスフェクトするのに使われる。当該ライブラリーは標準化可能であり、そして当該ライブラリー中の独立組み換え体の数を決定する。
当該cDNAライブラリーからランダムに選択されたテオシンテ実生cDNAクローンは、ABI377のような自動シークエンサーを用いて配列決定する。当該配列決定を行うには、M13 UniversalおよびReverseプライマー類のようなクローニングベクター上に普通に使われるプライマー類が使用される。末端シークエンシングにより完全には配列決定されない挿入断片については、色素標識ターミネーターを用いて、残りのギャップに充填するために使われる。
比較されているテオシンテおよびメイズ配列は、KA/KS分析に付す。本分析では、Li93およびINAのような、公共的にまたは商業的に入手可能なコンピュータープログラムを使って、上記のように検討中の各配列について、部位当りの同義変化の数(KS)により部位当りの非同義変化の数(KA)を割って決定する。この比、KA/KSは、検討中の配列で、適応進化、すなわち、正の選択が作用してきた程度の反映であることが、示されている。典型的には、これらの比較分析では、完全長コード領域が使われてきた。しかし、コード領域の部分セグメントも有効に使用可能である。KA/KS比が高ければ高いほど、配列は適応進化を受けてきたことの可能性が多い。KA/KS値の統計有意性は、t検定のような確立された統計的方法および入手可能
なプログラムを用いて決定される。テオシンテとメイズとの遺伝子の間で統計的に高いKA/KS比を示すそれらの遺伝子は、適応進化を受けた可能性が非常に高い。
Genbank上で入手可能な栽培化メイズおよびテオシンテ配列(the Entrez Nucleotides database at the National Center for BiotechnologyInformation web siteを通じてアクセス可能)の比較は、少なくとも4つの相同遺伝子:waxy,A1*,A1およびglobulinを明らかにし、それらについての配列はメイズおよびテオシンテの両方から入手可能であった。メイズおよびテオシンテの両方についてのこれらの遺伝子についてのすべての入手可能な配列を比較した。当該KA/KS比は、Li93および/またはINAを用いて決定した:
実施例4−7の方法に従って得られた正に選択されたメイズ遺伝子の機能的役割は、トランスジェニックメイズ植物中で当該遺伝子の各対立遺伝子の評価を実施することにより、評価可能である。トランスジェニック植物は、Pengら(1999)Nature 400:256−261に記載の方法の応用を用いて、作出が可能である。当該トランスジェニック植物またはそのタンパク抽出物の生理学的、形態学的および/または生化学的検討は、特定の表現型と各対立遺伝子との関連づけを可能にするはずである。
QTL(量的形質遺伝子座)分析は、植物の高さおよび油含量を含む、メイズにおける興味あるいくつかの表現型的形質を制御する遺伝子を含む染色体領域を決定した。本法により同定された正に選択された各遺伝子を既知QTLsの1つの上に物理的にマッピングすることにより、正に選択された各遺伝子により制御される特定の形質を、迅速かつ確実に同定可能である。
規準化されたcDNAライブラリーを、現代イネの祖先であることがわかっている種、Oryza rufipogonの(葉、円錐花序、および茎を含む)プールした組織から構築した。PBI0307H9と呼ぶクローンをまず、MegaBACE 1000シークエンサー(AP Biotech)上で高性能配列決定プロジェクトの一部として、配列決定した(配列番号89)。このクローンの配列を、GenBankデータベースのBLAST検索で、クエリー配列として使用した。4つの無名コメESTs(アクセス番号AU093345,C29145,ISAJ0161,AU056792)がヒットとして検索された。さらなる配列決定は、PBI307H9が部分cDNAクローンであることを明らかにした。PBI307H9は、GenBank中の栽培化イネ(Oryza sativa)ESTsに比較すると、高いKA/KS比をもっていた。cDNA増幅および配列決定は次のように行った:全RNAは、O.rufipogon(NSGC5953株)およびO.sativa栽培品種Nipponbare(Quiagen RNeasy Plant Mini Kit:cat#74903)から単離した。第1鎖cDNAは、dTプライマー(AP Biotech Ready−to−Go T−Primed First−Strand Kit:cat#27−9263−01)を用いて合成し、そして次にPCR分析(Qiagen HotStar Taq Master Mix Kit:cat#203445)に使用した。
EG307遺伝子についてO.sativa中に存在する遺伝的多様性の程度を確かめるため、Qiagenのプロトコル(DNaesy Plant Mini Kit:cat#69103)を用いて、O.sativaのいくつかの異なる株(the National Small Grains Collection,U.S.D.A.Aberdeen,アイダホから入手)から、ゲノムDNAを単離した。次に、6つの異なるO.sativa株:Nipponbare,Lemont,IR64,Teqing,Azucena,およびKasalathからのゲノムDNA中で、EG307を配列決定した。これらの株のそれぞれのKA/KS比は、O.rufipogonに比較すると、変化していた。表1は、コード領域の全1344塩基についての結果を示す。
EG307は次に物理的にイネ中にマッピングされた。クレムソン大学は、イネNipponbare細菌性人工染色体(BAC)ライブラリーを開発した;Budiman,M.A.1999,「2つのモデル作物、トマトおよびイネについての深度網羅BACライブラリーの構築と特性解明、およびトマト中のjointless−2への染色体歩行の開始」、博士論文、Texas A&M University,College Station,テキサス、を参照されたい。ライブラリークローンはハイブリダイゼーションフィルターの形でクレムソンから入手可能である。
表8 EG307 494bp PCR産物によるBACライブラリーの全スクリーンで同定された個々のBACs。
(イネEG307配列を用いた)BLASTによるGenBank中のメイズゲノムの検索は、2つのメイズESTs,アクセス番号BE511288およびBG320985、を同定したが、それらは相同のようであった。メイズ(Zea mays)およびテオシンテ(Zea mays parviglumis)EG307相同体(配列番号35により表される提案オープンリーディングフレームをもつ、配列番号33および配列番号34、および配列番号67により表される提案オープンリーディングフレームをもつ、配列番号66)の増幅成功を可能にしたプライマーを設計した。(メイズおよびテオシンテについてのタンパク質配列が推定された;そして配列番号36および配列番号68で表される)。表9は、メイズとテオシンテとの間の比較についてのKA/KS推定値を示す。
クローンIWF1117H5(以下EG1117と呼称)は、MegaBACE1000シークエンサー(AP Biotech)で行われた、EGの高性能配列決定プロジェクトの際に、まず、配列決定された。本クローンは、祖先イネOryza rufipogonからの材料から構築された、基準cDNAライブラリー(Incyte Genomics)から配列決定された。GenBank BLASTの結果、3つの無名のイネESTs(AU055884,AU055885,BI808367)、2つの無名のトウモロコシESTs(AI783000,AW000223)、および2つの無名のコムギESTs(BE444456,BE443845)をヒットした。さらなる配列決定は、IWF1117H5が部分cDNAクローンであることを明らかにした。それは、GenBankで栽培化イネOryza sativa ESTsに比較した場合、ゼロにより割られるKA/KS比をもっていた。
表10 O.rufipogon NSGC5948株対0.sativaの各種株についてのKA/KS比。
EG1117は次に物理的にイネ中でマッピングされた。DIGプロトコル(BMB−Roche PCR DIG Probe Synthesis Kit cat#1636090)は、ユニークなEG1117 657bp PCR産物(プライマー:5’−TCCTGCATCCCTCTCAACTT−3’および5’−GCATTGGATTCGATGAATGT−3’)の標識に成功し、クレムソン大学からのイネBACフィルターに対してスクリーンするために使用された。当該ブロットは、DIGプロトコル(BMB−Roche DIG Luminescent Detection Kit cat#1636090)どおり化学ルミネッセンスを用いて明確に検出された。2つの異なるO.sativaライブラリー(OSJNBaおよびOSJNBb)は、合計2つの異なるフィルターについてスクリーンされた。下に、両スクリーンにより同定された個々のBACsを示す:
表11 EG1117 PCR産物によるBACライブラリーの全スクリーンで同定された個々のBACs。
EG1117および既述の遺伝子EG307は、同じClemson BACコンティグ58にマッピングされる。EG1117は、EG307の約3cM上流のp腕の末端側に存在する。EG1117はコンティグ58上のマーカーの多くと同じBACsにマッピングされ、そしてEG307は同じコンティグにマッピングされるが、そのポジティブBACsに直接マッピングされるマーカーをもたない。
穀類において収量を制御するEG307およびEG1117の役割は、本特許の別のところに記載されているように、トランスジェニック植物の作製により実証が可能であるが;別の実証支持は、関連分析と系統分析から得られる。
表12 高収量イネ株への正に選択されたEG307対立遺伝子の関与
実施例13に記載の当業者には周知の方法を用いて、EG1117を、多数のメイズ株(Zea mays mays)、配列番号119、122、123、124、127、128、129、132、135、136、137、140、141、144、145、146、149、150、151、154)および多数のテオシンテ株(Zea mays parviglumis)(配列番号157、160、161、162、165、166、167)から増幅した。
EG307タンパク質の機能を解明するため、それが相互作用するイネタンパク質が決定される。この「交際により有罪(guilt−by−association)」アプローチは、未知タンパク質と関連する可能性がある経路または機能を同定したいと思う状況では、有用である(編集部(2001)Nature 410)。相互作用タンパク質を決定する2つの方法は、酵母ツーハイブリッドアプローチ(the yeast two−hybrid approach)のような全体的スクリーニングアプローチ、ならびに、当該未知タンパク質の組み換え的に発現された型を用いて、相互作用の親和性に基づいて相互作用タンパク質を単離することによる直接的アプローチを含む。実験方法および設計の概要を、両方法について示す。
タンパク質・タンパク質相互作用があると思われるときは、追加のin vitroおよびin vivo研究により立証されよう。時間が許せば、相互作用を確認するためにより簡単な検定をフェイズIの際に行う。アフィニティプルダウン(affinity pull−downs)およびファーウェスタン(far−westerns)のような検定は、抗体および組み替え体タンパク質のような追加の試薬がつくられたときに、行われよう。おとりタンパク質(EG307)ならびに推定相互作用タンパク質の両方についての組み替え体タンパク質の作製は、エピトープタグ融合タンパク質(GST,myc,V5,ビオチン標識)と同じく、必要に応じて行われる。in vivo相互作用をはっきりと証明し、そしてまた、その相互作用に影響する可能性がある因子を測定するためには、関連in vivo相互作用(例えば、2つの適切に構築された緑色蛍光タンパク質融合体間の蛍光エネルギー転移)についての別の証拠も必要かも知れない。しかし、そうした実験は、明らかに、フェーズIの範囲を超えている。
植物組織から相互作用タンパク質を直接単離するため、さまざまな可溶化植物組織中に存在するタンパク質のアフィニティー単離が行われる。単離された相互作用タンパク質は限定タンパク質分解を受け、そして生じるペプチド断片は、既知または予測されたタンパク質を示すペプチド断片パターンが生じるかどうかを同定するために、質量分析により分析される。
EG1117タンパク質は、それが、タンパク質のPTR−2ファミリーのメンバーであることを示唆するシリコホモロジー(コンピューター相同性)データに基づき、一種のペプチド輸送タンパク質をコードするらしいので、この特定の機能を直接評価する実験を行う。2つの補完的だが、独立のアプローチを用いる。第1に、酵母における異種ペプチド輸送タンパク質機能を調べる方法を用いて、酵母のPTR−2欠損変異体における細胞膜を横切りペプチドを輸送し、そして栄養要求性アミノ酸要求を補完するための、EG1117の栽培化型および祖先型の両方の能力を調べる。第2に、有毒エチオニン含有ペプチドの存在下で、イネ実生の栽培化種および祖先種の両方の成長特性を用いて、イネの栽培化種および祖先種間の測定可能な表現型差を、潜在的ペプチド輸送タンパク質変異に相関させる。
EG1117がペプチド輸送タンパク質をコードするかどうかをテストするため、上にリストされたペプチドは、商業的に合成され、そして精製される。各ペプチドはロイシンをもつので、当該ペプチドが、機能性のペプチド輸送タンパク質でトランスフェクトされそしてガラクトースの存在下で増殖されたロイシン栄養要求性BY4742−ptr2株中へ輸送されるならば、その株は増殖できるはずである。
これらの研究は、EG1117タンパク質が、イネの栽培化株と祖先株とでは、違って機能することを、in vivoで直接証明するための試みを表している。有毒ペプチドを輸送する能力は、当該有毒ペプチドを取り込む細胞の死をもたらす。機能の欠如は、当該実生根の成長持続への有毒ペプチドの作用に対する抵抗性として、表現されよう。表現型差の欠如は、EG1117が発現されなかったか、または他の輸送タンパク質が、選択されたEG1117タンパク質の変更された機能を補償するか、のいずれかを示唆している。
Claims (78)
- 栽培品種化(家畜化)生物のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列であって、野生祖先と比較した当該栽培品種化(家畜化)生物における収量の増加と関連するまたは関連するのではないかと思われる前記ポリペプチド、を同定するための方法であって、
a)当該栽培品種化(家畜化)生物のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を、当該野生祖先のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列に比較する工程;そして
b)当該野生祖先における対応する配列と比較した場合、進化的に有意なヌクレオチド変化を含む当該栽培品種化(家畜化)生物におけるポリヌクレオチド配列を選択し、当該栽培品種化(家畜化)生物のポリヌクレオチド配列を同定する工程:
を含む、前記方法。 - 収量の改良と関連する前記ポリペプチドがEG307またはEG1117ポリペプチドである、請求項1の方法。
- a)植物細胞を、当該細胞に天然には存在しないEG307またはEG1117ポリヌクレオチドに由来し、ポリペプチドをコードし、且つトランスジェニックタンパク質の発現に効果的に使用可能なプロモーターに機能可能に連結された異種DNAセグメントを含むようにトランスフェクトする工程;
b)場合により、当該細胞をそこからトランスジェニック植物が再生される条件下で成育させ、そして維持する工程;および
c)場合により、当該DNAが発現される条件下で前記トランスジェニック植物を成育させて、当該植物中のEG307またはEG1117ポリペプチドの総量を増加させる工程:
を含む、トランスフェクト植物細胞またはトランスジェニック植物の製造方法。 - 前記異種DNAセグメントを含む前記トランスジェニック植物の子孫の以降の世代を得、そして成育させ、当該異種DNAセグメントを発現させる工程をさらに含む、請求項3の方法。
- EG307またはEG1117ポリペプチドをコードする異種DNAを含む、植物細胞。
- 請求項5のトランスジェニック植物細胞を含むトランスジェニック植物の増殖用の材料。
- 植物組織中で発現するEG307またはEG1117ポリペプチドをコードする異種DNAを含む、トランスジェニック植物。
- 植物組織中でEG307またはEG1117遺伝子をコードするポリヌクレオチドに機能可能に連結されているプロモーターを含む、単離されたポリヌクレオチド。
- ポリヌクレオチドが組み替え体ポリヌクレオチドである、請求項8の単離されたポリヌクレオチド。
- プロモーターがEG307またはEG1117遺伝子に天然に存在するプロモーターである、請求項8の方法。
- トランスフェクトされた細胞の製造方法であって、
a)栽培化植物の祖先中の進化的に有意なEG307またはEG1117ポリヌクレオチドまたは栽培化植物中の相当するポリヌクレオチドを同定する工程;
b)当該EG307またはEG1117ポリヌクレオチドを使って、転写または翻訳調節エレメント、エンハンサー、イントロンまたは他の5’または3’フランキング配列であってもよい非ポリペプチドコード配列を同定する工程;
c)リポータータンパク質をコードするポリヌクレオチドに機能可能に連結されている当該非ポリペプチドコード配列を含む構築体を組み立てる工程;そして
d)宿主細胞中へ当該構築体をトランスフェクトする工程:
を含む、前記方法。 - 請求項11の方法により製造されたトランスフェクト細胞。
- 宿主細胞が植物細胞であり、当該細胞をそこからトランスジェニック植物が再生される条件下で増殖させ、そして維持する工程をさらに含む、請求項11の方法を含む、トランスジェニック植物の製造方法。
- 請求項12の方法により製造されたトランスジェニック植物。
- 進化的に有意なEG307またはEG1117ポリヌクレオチドの非ポリペプチドコード領域の機能を調整する作用物質を同定する方法であって、請求項11のトランスフェクト宿主細胞を少なくとも1つの候補作用物質と接触させ、リポーターポリヌクレオチドの転写または翻訳を調整する能力により作用物質を同定する、ことを含む前記方法。
- 請求項15の方法により同定された作用物質。
- 進化的に有意なEG307またはEG1117ポリヌクレオチドの非ポリペプチドコード領域の機能を調整する作用物質を同定する方法であって、請求項13のトランスジェニック植物を少なくとも1つの候補作用物質と接触させ、リポーターポリヌクレオチドの転写または翻訳を調整するその能力により作用物質を同定する、ことを含む前記方法。
- 請求項17の方法により同定された作用物質。
- リポータータンパク質をコードするポリヌクレオチドに機能可能に連結された、進化的に有意なEG307またはEG1117ポリヌクレオチドからのプロモーター、エンハンサーもしくはイントロンのポリヌクレオチド、またはそれらの任意の組み合わせを含む構築体でトランスフェクトされた宿主細胞を含む、トランスフェクトされた宿主細胞。
- 収量を調整することが可能な作用物質を同定する方法であって、少なくとも1つの候補作用物質を、EG307またはEG1117遺伝子を含む植物または細胞に接触させ、収量を調整するその能力により作用物質を同定することを含む、前記方法。
- 前記植物または細胞が、EG307またはEG1117をコードするポリヌクレオチドおよびその遺伝子でトランスフェクトされる、請求項20の方法。
- 請求項20の方法に従って同定された作用物質。
- 同定された作用物質が、当該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの機能を調整することによって収量を調整する、請求項20の方法。
- 同定された作用物質が、当該ポリペプチドの機能を調整することによって収量を調整する、請求項20の方法。
- 植物における収量増加をもたらす方法であって、
a)EG307またはEG1117が植物細胞中で発現される、EG307またはEG1117ポリペプチドをコードする異種DNAをもつトランスフェクト植物細胞を製造する工程;そして
b)EG307またはEG1117トランスジーンが当該トランスジェニック植物中で発現される、トランスフェクト植物細胞からトランスジェニック植物を成育させる工程:
を含む、前記方法。 - トランスジーンが、当該トランスジーンの発現制御に適した調節配列の制御下にある、請求項25の方法。
- EG307またはEG1117ポリペプチドの製造方法であって、
a)発現のために細胞中に配置された、EG307またはEG1117ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドでトランスフェクトされた前記細胞を提供する工程;
b)当該ポリヌクレオチドを発現するための条件下で当該トランスフェクト細胞を培養する工程;そして
c)当該EG307またはEG1117ポリペプチドを単離する工程:
を含む、前記方法。 - EG307またはEG1117遺伝子をコードする異種DNAが、当該EG307またはEG1117遺伝子の構成的発現をもたらすプロモーターの制御下にある、請求項25の方法。
- EG307またはEG1117遺伝子をコードする前記異種DNAが、当該EG307またはEG1117遺伝子の制御可能な発現をもたらすプロモーターの制御下にある、請求項25の方法。
- EG307またはEG1117遺伝子が、組織特異的または細胞型特異的プロモーターを用いて、または、化学シグナルまたは作用物質のような外部シグナルまたは作用物質の導入により活性化されるプロモーターを用いて発現される、請求項29の方法。
- 収量関連遺伝子またはその断片を植物細胞から単離する方法であって、
a)植物細胞ポリヌクレオチドの試料を提供する工程;
b)EG307またはEG1117遺伝子の保存領域に配列相同性をもつオリゴヌクレオチドのペアを提供する工程;
c)オリゴヌクレオチドの当該ペアを、ポリメラーゼ連鎖反応仲介ポリヌクレオチド増幅に適した条件下で当該植物細胞ポリヌクレオチド試料に結合させる工程;そして
d)増幅された収量関連ポリヌクレオチドまたはその断片を単離する工程:
を含む、前記方法。 - 請求項31の方法により単離された、植物収量関連ポリヌクレオチド。
- 収量関連ポリヌクレオチドを単離する方法であって、
a)ゲノム植物細胞DNAおよび組み替え体植物細胞ライブラリーポリヌクレオチドより成る群から選択されたポリヌクレオチドの調製物を提供する工程;
b)当該調製物を、50%またはそれより大きい配列同一性をもつポリヌクレオチドの検出をもたらすハイブリッド形成条件下で、EG307またはEG1117オリゴヌクレオチドと接触させる工程;そして
c)当該EG307またはEG1117オリゴヌクレオチドとの会合により収量関連ポリヌクレオチドを単離する工程:
を含む、前記方法。 - EG307またはEG1117オリゴヌクレオチドが検出可能に標識され、そして当該検出可能標識との会合により収量関連遺伝子が単離される、請求項33の方法。
- 前記EG307またはEG1117オリゴヌクレオチドが少なくとも長さ12ヌクレオチドである、請求項33の方法。
- EG307またはEG1117オリゴヌクレオチドが少なくとも長さ30ヌクレオチドである、請求項33の方法。
- 植物の収量関連遺伝子を同定する方法であって、
a)植物組織試料を提供する工程;
b)当該植物組織試料中へ候補植物収量関連遺伝子を導入する工程;
c)当該植物組織試料内で当該候補植物収量関連遺伝子を発現させる工程;そして
d)応答の変化が植物収量関連遺伝子を同定する、収量応答の変化を当該植物組織試料が示すかどうかを決定する工程:
を含む、前記方法。 - 請求項37の方法に従って単離された、植物収量関連遺伝子。
- a)配列番号92、配列番号93、配列番号94、配列番号96、配列番号97、および配列番号98より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号100、配列番号101、配列番号103、配列番号104、配列番号106、配列番号107、配列番号109、配列番号110、配列番号112、配列番号113、配列番号114、配列番号116、および配列番号117より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号119、配列番号120、配列番号121、配列番号122、配列番号123、配列番号124、配列番号125、配列番号127、配列番号128、配列番号129、配列番号130、配列番号131、配列番号133、配列番号135、配列番号136、配列番号137、配列番号138、配列番号140、配列番号141、配列番号142、配列番号144、配列番号145、配列番号146、配列番号147、配列番号149、配列番号150、配列番号151、配列番号152、配列番号154、および配列番号155より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号157、配列番号158、配列番号160、配列番号161、配列番号162、配列番号163、配列番号165、配列番号166、配列番号167、および配列番号168より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号92、配列番号93、配列番号94、配列番号96、配列番号97、および配列番号98より成る群から選択されたポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド:
より成る群から選択された単離ポリペプチド。 - a)配列番号100、配列番号101、配列番号103、配列番号104、配列番号106、配列番号107、配列番号109、配列番号110、配列番号112、配列番号113、配列番号114、配列番号116、および配列番号117より成る群から選択されたポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド:
より成る群から選択された単離ポリペプチド。 - a)配列番号119、配列番号120、配列番号121、配列番号122、配列番号123、配列番号124、配列番号125、配列番号127、配列番号128、配列番号129、配列番号130、配列番号131、配列番号133、配列番号135、配列番号136、配列番号137、配列番号138、配列番号140、配列番号141、配列番号142、配列番号144、配列番号145、配列番号146、配列番号147、配列番号149、配列番号150、配列番号151、配列番号152、配列番号154、および配列番号155より成る群から選択されたポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド:
より成る群から選択された単離ポリペプチド。 - a)配列番号157、配列番号158、配列番号160、配列番号161、配列番号162、配列番号163、配列番号165、配列番号166、配列番号167、および配列番号168より成る群から選択されたポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド:
より成る群から選択された単離ポリペプチド。 - 野生祖先または栽培化生物において、当該野生祖先または栽培化生物の経済的生産性亢進と関連する、または関連するのではないかと思われるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を同定するための方法であって、
a)当該野生祖先および当該栽培化生物のポリペプチドコードヌクレオチド配列を比較する工程;そして
b)それぞれ、当該野生祖先または栽培化生物における対応する配列と比較した場合、進化的に中立のまたは正の進化的に有意なヌクレオチド変化を含む当該栽培化生物または野生祖先のいずれかにおけるポリヌクレオチド配列を選択し、それにより経済的生産性亢進と関連するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを同定する工程:
を含む、前記方法。 - 栽培化生物の野生祖先のポリペプチドであって、当該栽培化生物に比べて当該野生祖先において独特で亢進または変更されたストレス抵抗性形質と関連する前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を同定するための方法であって、
a)当該野生祖先のポリペプチドコードヌクレオチド配列に、当該栽培化生物のポリペプチドコードヌクレオチド配列を比較すること;そして
b)当該栽培化生物における対応する配列と比較した場合、進化的に中立なヌクレオチド変化を含む当該野生祖先におけるポリヌクレオチド配列を選択することにより、当該野生祖先のポリヌクレオチド配列を同定する:
工程を含む、前記方法。 - 栽培化生物が、メイズ、コメ(イネ)、トマト、ポテトおよびその祖先がわかっている他の栽培化植物より成る群から選択された植物である、請求項48の方法。
- 栽培化生物がメイズであり、そして前記野生祖先がテオシンテである、請求項49の方法。
- 栽培化生物のタンパク質コードヌクレオチド配列がcDNAに相当する、請求項48の方法。
- ヌクレオチド変化が非同義置換である、請求項48の方法。
- 栽培化生物が植物であり、そして前記ストレス抵抗性形質が、乾燥抵抗性、疾病抵抗性、有害生物抵抗性、高塩濃度抵抗性、および商業的に関心のある他のストレス抵抗性形質より成る群から選択される、請求項48の方法。
- 栽培化生物の野生祖先におけるストレス抵抗性形質を調整することが可能な作用物質を同定する方法であって、少なくとも1つの候補作用物質を、請求項48で同定されたポリヌクレオチド配列を発現する野生祖先もしくは栽培化生物、または、細胞もしくはトランスジェニック生物と接触させ、そして当該ポリヌクレオチドの機能または同定されたポリヌクレオチド配列によりコードされるポリペプチドの機能を調整する能力により作用物質を同定することを含む前記方法。
- 請求項54の作用物質を投与することによって、栽培化生物の野生祖先におけるストレス抵抗性を調整する方法。
- 請求項48の野生祖先ストレス抵抗性ポリヌクレオチド配列に相当する、栽培化生物におけるポリヌクレオチド配列によりコードされるポリペプチド配列に対する作用物質を同定する方法であって、少なくとも1つの候補作用物質を、当該ポリヌクレオチド配列を発現する栽培化生物もしくは祖先生物、または、細胞もしくはトランスジェニック生物と接触させ、そして、当該ポリペプチドの機能を調整する能力により作用物質が同定されることを含む前記方法。
- 請求項56の作用物質を投与することによって、栽培化生物におけるストレス抵抗性を調整する方法。
- 栽培化生物の野生祖先のポリペプチドコードポリヌクレオチド配列における進化的に中立な変化を同定するための方法であって、
a)野生祖先のポリペプチドコードポリヌクレオチド配列を栽培化生物の対応配列と比較する工程;そして
b)当該野生祖先の対応配列に比べて、進化的に中立なヌクレオチド変化を含む当該栽培化生物におけるポリヌクレオチド配列を選択し、そして当該ポリヌクレオチドが栽培化生物の野生祖先におけるストレス抵抗性形質と関連しており、それにより当該ポリヌクレオチド中の進化的中立変化が同定される工程:
を含む、前記方法。 - 栽培化生物が、メイズ、コメ(イネ)、トマト、ポテトおよびその祖先がわかっている他の栽培化植物より成る群から選択された植物である、請求項58の方法。
- 栽培化生物がメイズであり、そして前記野生祖先がテオシンテである、請求項58の方法。
- 栽培化生物のタンパク質コードヌクレオチド配列がcDNAに相当する、請求項58の方法。
- ヌクレオチド変化が非同義置換である、請求項58の方法。
- 栽培化生物が植物であり、そして関連形質が、乾燥抵抗性、疾病抵抗性、有害生物抵抗性、高塩濃度抵抗性、および商業的に関心のある他のストレス抵抗性形質より成る群から選択される、請求項58の方法。
- 栽培化生物の野生祖先のポリペプチドコードヌクレオチド配列と当該栽培化生物からのポリペプチドコード配列との間の大規模配列比較のための方法であって、ここで当該野生祖先生物ポリペプチドは、栽培化生物に比べて野生祖先において独特で、亢進または変更されているストレス抵抗性形質を付与する、または付与するのではないかと思われ、
a)野生祖先配列を、栽培化生物からの対応配列と、配列相同性に従って整列させる工程;そして
b)それぞれ、野生祖先または栽培化生物からの相同配列に比較して、栽培化生物配列または野生祖先配列内に何らかのヌクレオチド変化を同定する工程:
を含む、前記方法。 - 栽培化生物が、メイズ、コメ(イネ)、トマト、およびその祖先がわかっている他の栽培化植物より成る群から選択された植物である、請求項64の方法。
- 栽培化生物がメイズであり、そして野生祖先がテオシンテである、請求項65の方法。
- 栽培化種のタンパク質コードヌクレオチド配列がcDNAに相当する、請求項64の方法。
- 進化的に中立のヌクレオチド変化を、栽培化生物の野生祖先において独特で、亢進または変更されているストレス抵抗性形質に相関させるための方法であって、
a)請求項48に従ってヌクレオチド配列を同定する工程:そして
b)当該栽培化生物または祖先生物で同定された配列の存否の機能効果を分析する工程:
を含む、前記方法。 - トランスフェクト植物細胞またはトランスジェニック植物を製造するための方法であって、
a)請求項48の野生祖先のストレス抵抗性ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを、トランスジェニックタンパク質の発現に有効に使うことができるプロモーターに機能可能に連結されて含むように植物細胞を形質転換する工程;
b)場合により、当該細胞をそこからトランスジェニック植物が再生される条件下で増殖させ、そして維持する工程:
を含む、前記方法。 - 請求項69の方法により製造されたトランスフェクト細胞。
- 請求項69の方法により製造されたトランスジェニック植物。
- a)配列番号1、配列番号91、配列番号2、配列番号4、配列番号5、配列番号7、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号14、配列番号15、および配列番号17、および配列番号18より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号20、配列番号21、配列番号23、配列番号24、配列番号25、配列番号27、配列番号28、配列番号29および、配列番号90より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号37、配列番号38、配列番号40、配列番号41、配列番号42、配列番号44、配列番号45、配列番号46、配列番号47、配列番号49、配列番号50、配列番号51、配列番号53、配列番号54、配列番号55、配列番号57、配列番号58、配列番号60、配列番号62、配列番号63、および配列番号64より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号66、配列番号67、配列番号69、配列番号70、配列番号71、配列番号73、配列番号74、配列番号75、配列番号77、配列番号59、および配列番号78より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号80、配列番号81、および配列番号82より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号84および配列番号85より成る群から選択されたポリヌクレオチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチド:
より成る群から選択された単離ポリヌクレオチド。 - a)配列番号1、配列番号91、配列番号2、配列番号4、配列番号5、配列番号7、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号14、配列番号15、および配列番号17、および配列番号18より成る群から選択されたポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド;および
b)a)のポリヌクレオチドに少なくとも85%の相同性をもち、そしてそれが実質的にa)のポリヌクレオチドと同じ収量を与えるポリヌクレオチドによりコードされたポリペプチド:
より成る群から選択された単離ポリペプチド。
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