JP2005500050A - 標的化された遺伝子発現阻害のための新規なオリゴリボヌクレオチド誘導体 - Google Patents
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Abstract
Description
【0001】
本発明は、3′末端に5′−リン酸残基を有さない2′5′−結合オリゴリボヌクレオチド残基を有する新規のオリゴリボヌクレオチド誘導体、および、遺伝子発現の特異的阻害のためのそれらの使用に関する。
【背景技術】
【0002】
合成核酸を用いて遺伝子発現を阻害することがますます重要になりつつある。これら合成核酸(オリゴヌクレオチド)の典型的な代表例としては、アンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム、DNA酵素および外部ガイド配列(EGS)がある。「アンチセンスオリゴヌクレオチド」とは、ワトソン−クリック塩基対を介して相補メッセンジャーリボ核酸(mRNA)に結合し、その対応するタンパク質への翻訳を阻害する短い一本鎖核酸誘導体のことである。ほとんどの場合において、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、細胞性リボヌクレアーゼH(RNアーゼH)によりサポートされるメカニズムに従った作用を示し、多数の研究でこれに関する証拠が示されている。全ての細胞に存在するRNアーゼHは、二本鎖DNAおよびRNAを認識し、1つのホスホジエステル結合、またはほとんどの場合において1以上のホスホジエステル結合を加水分解することにより、前記オリゴヌクレオチドに相補的なmRNAを切断する。RNアーゼHを活性化するためにオリゴヌクレオチドを改変する方法が知られており、例えば、Uhlmann(2000)Curr.Opin.Drug Discov.Dev.3,203-213に説明されている。合成リボザイムは、その配列中にこのヌクレアーゼ活性を有する。最も一般的なタイプのリボザイムは、「ハンマーヘッド型」リボザイムであり、これは、天然に存在するリボザイムから誘導されたコンセンサス配列GAAACがRNアーゼ部分を形成し、フランキング配列がアンチセンスオリゴヌクレオチド部分を形成する。しかしながら、天然に存在するリボザイムモチーフから誘導されていないが、インビトロでの選択で発見されたDNA酵素が、同様に作用する。EGSは、細胞性RNアーゼPを活性化し、適切なフランキング配列を介して標的mRNAに結合し、特異的mRNA分解を誘導する合成RNA類似体である。
【0003】
合成オリゴヌクレオチドを用いる遺伝子発現の阻害に関する共通の問題は、有効な配列を同定するために、標的核酸の様々な領域に対する比較的多数のオリゴヌクレオチドを常に分析する必要があることである。その上、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、しばしば、非効率的または不完全にしか遺伝子発現を阻害できない。その上、配列非特異的な副作用が観察されており、これは、約5塩基の長さの比較的短い部分配列でもRNアーゼHを活性化する現象により生じるものと推測される。これは例えば、Woolf et al.(1992).Proc.Natl.Acad.Sci U.S.a.89.7305-7309で示される。しかしながら、アンチセンスオリゴヌクレオチドとタンパク質との相互作用により生じる副作用も存在する。
【0004】
近年、遺伝子発現の阻害に二本鎖RNAを使用することが説明されている。二本鎖RNA(dsRNA)とは、特定の細胞および生物においてRNA干渉(RNAi)として知られるプロセスに従ったmRNAの配列特異的分解を誘導するシグナルである。RNAi現象は、多数の異なる生物、例えば、C.Elegans、ハエ、菌類、植物およびマウス胚で観察されており、RNAiは、植物で発見された転写後遺伝子サイレンシング(PTGS)と非常に類似しているか、または同一であると考えられている。500塩基対(bp)を超過する長さのdsRNA(そのセンス鎖配列は阻害しようとする標的mRNAと同一である)を単に注射することにより、対応するDNA配列を有する標的遺伝子の発現を特異的に阻害することができる。これは、非相同遺伝子の遺伝子発現を損なわず、標的遺伝子の塩基配列は改変されない。RNAiは、dsRNAがまず比較的小さい断片に分解され
、続いてその断片が標的mRNAの配列特異的分解に用いられると推測される転写後プロセスである。
【0005】
これまでは、主に長さが100bpを超えるdsRNAを用いて遺伝子発現を効率的に阻害していた。この比較的長いdsRNAは、対応するDNAからの適切な転写系を介したインビトロまたはインビボ転写によってのみ利用可能である。長いdsRNAを用いるRNAiのその他の制限は、C.Elegans、ゼブラフィッシュ、植物、特定のタイプの菌類、ショウジョウバエ、マウスの卵母細胞および胚のような特定の有機体でのみdsRNAによる配列特異的阻害が可能であり、一方で、ほとんどの動物細胞は、dsRNAで処理するとアポトーシスを起こすということである。長いdsRNAでも、配列相同性が70〜90%である場合は遺伝子発現を阻害する。この理由のために、高い配列相同性を有する遺伝子ファミリーの場合、複数の完全に相同ではない遺伝子の発現を同時に阻害することにより、表現型の誤訳を起こすことが可能である。
【0006】
dsRNA、例えばdsRNAウイルスを用いた細胞の処理は、一般的に、アポトーシスプロセス、または、2′5′−オリゴアデニレート−シンターゼ活性の誘導によるmRNAの配列非特異的分解を生じさせる。感染した細胞は、ウイルスのdsRNAに反応して、通常とは異なる2′5′−ホスホジエステル−インターヌクレオシド結合により三量体または四量体アデニレート(2′5′−A)を合成する。2′5′−Aは、その5′末端で細胞性キナーゼによりリン酸化され、続いてRNアーゼLと呼ばれるヌクレアーゼを活性化する。また、2′5′−Aを化学合成し、細胞に導入することもできる(Torrence et al.(1994)Curr.Med.Chem1,176-191)。しかしながら、合成2′5′−Aは、それらが5′−リン酸または5′−三リン酸型に変換された場合にのみRNアーゼLを活性化する。続いて、5′−p−2′5′−A(pは、リン酸、二リン酸または三リン酸)により活性化されたRNアーゼLは、配列非特異的な方法で細胞の全てのRNAを分解する。加えて、アンチセンスオリゴヌクレオチドと5′−p−2′5′−A残基との結合体により、遺伝子発現を配列特異的に阻害することが可能であることが示された。しかしながら、この目的に関して、2′5′−A残基の5′末端は、オリゴヌクレオチドに結合するのではなく、リン酸、チオリン酸または三リン酸として存在することが必須である(Torrence et al.(1993)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S. A.90,1300-4)。その上、標的RNAが認識するオリゴヌクレオチド部分(アンチセンス部分)は、一本鎖形態でなければならない。上述した理由のために、結果として遊離の5′−リン酸または三リン酸機能を有さない2′5′−A残基をそれらの3′末端に有するオリゴヌクレオチドは、これまで、遺伝子発現の阻害剤として説明されていない。一本鎖の5′−リン酸化5′−p−2′5′−Aアンチセンスオリゴヌクレオチド結合体による遺伝子発現の阻害は、アンチセンス原理のバリエーションであり、それゆえに、アンチセンス−オリゴヌクレオチドアプローチの制限にもさらされる。この点について、2′5′−A残基の2′または3′末端が結合形態で存在するように、2′5′−A残基はスペーサー(リンカー)を介してオリゴヌクレオチドの5′末端に付着する。RNA結合部分は、好ましくは、DNAを含む(Torence,Curr.Opin.Mol.Ther.(1999)1,307における図4〜6)。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0007】
近年、新しい遺伝子の機能研究(機能ゲノミクス)のためのツールとして、オリゴヌクレオチドがますます用いられつつある。未知の機能を有するタンパク質をコードする新しい遺伝子の遺伝子発現を配列特異的に阻害するためのアンチセンスオリゴヌクレオチドおよびリボザイムの使用は、一般的に、配列が異なる多種多様なオリゴヌクレオチドを分析しなければならないためにより困難になり、これは、特に高スループットプロセスにおいて不利である。
【0008】
それゆえに、本発明の目的は、通常の方法および薬剤の上述の制限を回避する、顕著に改善された遺伝子発現の阻害が可能な新規の化学修飾されたオリゴヌクレオチドを提供することである。特に、RNA干渉様プロセスにおいて遺伝子発現が阻害されるように意図された。
【課題を解決するための手段】
【0009】
本発明によれば、この目的は、リン酸、チオリン酸または三リン酸基を含まない、3′末端に2′5′−結合オリゴヌクレオチド残基を有する新規のオリゴヌクレオチド誘導体により達成される。新規のオリゴヌクレオチド誘導体の配列は、翻訳が阻害されるRNA配列に相補的である。
【0010】
従って、本発明は、
式I:
5′−(N)x−(Z)n 式I
[式中、Nは、標的RNAに対して少なくとも部分的に相補的である天然に存在する、または天然に存在しないヌクレオチド、好ましくはリボヌクレオチドであり、
xは、独立して、10〜100、好ましくは15〜45、特に好ましくは16〜25であり、
nは、2〜20、好ましくは3〜10、特に好ましくは3〜6であり、
Zは、2′5′インターヌクレオシド結合を介して結合される天然に存在する、または天然に存在しないヌクレオチドである]
で示されるオリゴヌクレオチド誘導体を提供し、ただし、該オリゴヌクレオチド誘導体の相同標的RNAは以下の配列パターンを有する:
5′−(U)v−(N′)z−(U)w
5′−(U)v−(N′)z−UX
5′−UX−(N′)z−UX、および、
5′−(U)v−(N′)z
式中、vおよびwは、互いに独立して、2〜20、好ましくは2〜10、特に好ましくは2〜6であり、
zは15〜25、好ましくは16〜23、特に好ましくは19〜21であり、
Uはウリジンであり、Nは、アデノシン(A)、グアノシン(G)、シチジン(C)またはUであり、Xは、A、GまたはC、好ましくはAである。好ましい実施形態において、Nはリボヌクレオチドである。
【0011】
発現が阻害される遺伝子が、例えば、以下のDNA配列:
5′−TTTTGAAGCGAAGGTTGTGGATCTG(配列番号1)
または、以下のRNA配列:
5′−UUUUGAAGCGAAGGUUGUGGAUCUG(配列番号2)
を含む場合、標的RNAは、以下の配列パターン:
5′−(U)v−(N)z−UX
(式中、vは4であり、zは19であり、XはGである)を有する。
【0012】
その上、好ましくは、1またはそれ以上のホスホジエステル結合が、例えばホスホロチオエート結合またはN3′,P5′−ホスホロアミデート結合で置換された式Iで示され
るオリゴヌクレオチドである。特に好ましくは、1またはそれ以上のホスホジエステル結合がホスホロチオエート残基で置換された式Iで示されるオリゴヌクレオチドである。特に、いくつかのピリミジンヌクレオチドが配列中で互いに連続する場合、ホスホロチオエート残基は、好ましくは、3′末端、5′末端ならびに内部ピリミジンヌクレオチドCおよびUに導入される。
【0013】
本発明の特定の実施形態は、遺伝子発現を阻害するための、2またはそれ以上の式Iで示されるオリゴヌクレオチド誘導体の混合物の使用を含む。この場合におけるオリゴヌクレオチド誘導体は、RNAの異なる領域に対して、または、異なる遺伝子のRNAに対して向けられていてもよい。
【0014】
式Iで示される一本鎖オリゴヌクレオチドはもともと、短いdsRNAを用いたRNAi実験でコントロールオリゴヌクレオチドとして用いられていた。従って、一本鎖の特徴のために、遺伝子発現の阻害が期待されていなかった。しかしながら、驚くべきことに、特定の一本鎖オリゴヌクレオチドが、特にヌクレアーゼに対して十分に安定である場合に、遺伝子発現も阻害した。他の驚くべきことは、2′5′−結合オリゴアデニレート残基において遊離の5′−リン酸、5′−チオリン酸または5′−三リン酸残基を含まない式Iで示されるオリゴヌクレオチドが、配列特異的な方法で遺伝子発現を阻害したことである。また、この場合において、2′5′−結合オリゴアデニレート残基が5′機能を介して直接3′5′−結合RNAに結合できることは、全く驚きである。遺伝子発現を阻害するためには、2′5′−結合オリゴアデニレート残基が5′末端に遊離のリン酸、チオリン酸または三リン酸残基を有さなければならないということは、これまで正当な定説であり続けた。その上、2′5′オリゴアデニレート介在阻害は、これまで常に、非特異的、すなわち配列非依存性効果に関連していた(Bass,Nature(2001)411,428)。それゆえに、式Iで示されるオリゴヌクレオチドが、それらの構造において、Torrence(Curr.Opin.Mol.Ther.(1999)1,307)により説明されたオリゴヌクレオチド結合体から逸脱するだけでなく、結果として異なるメカニズムに基づくよりいっそう優れた阻害作用を示すということは明らかである。
【0015】
驚くべきことに、本発明のオリゴヌクレオチドはまた、ヒトの初期細胞において阻害の配列特異的な効果も有していた。我々が知る限り、ヒトの初期細胞中の、2′5′−結合ヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドによる遺伝子発現の阻害は、これまで観察されていない。
【0016】
本発明に係る式Iで示されるオリゴヌクレオチドは、わずかな量の不完全な2′5′−オリゴアデニレートシンターゼしか発現しない細胞、または2′5′−オリゴアデニレートシンターゼを全く発現しない細胞において遺伝子発現を阻害することに用いることもできる。
その上また、2′5′−オリゴアデニレートシンターゼの欠陥または異常を有する患者を治療するために式Iで示されるオリゴヌクレオチドを用いることも可能である。例えばCFS(慢性疲労症候群)の患者を治療することもできる。
【0017】
特定の標的の遺伝子発現を阻害するのに用いられる式Iで示されるオリゴヌクレオチドの配列は、対応する遺伝子配列に基づき選択される。前記遺伝子の配列は、配列解析により、または、遺伝子データベースから得られる。本明細書で説明され得る例は、二本鎖核酸によるルシフェラーゼ(ホタル)の阻害である。この遺伝子の登録番号はU47298である。ホタルルシフェラーゼのコーディング領域は、1653個のヌクレオチドを有する。以下の4つの領域を、二本鎖核酸による阻害に関する標的配列として特に選択することができる。
【0018】
【化1】
【0019】
従って、これら領域に対応するRNAは以下の配列を有する。
【化2】
【0020】
それから誘導された式Iで示される本発明に係る相補オリゴヌクレオチドは、以下の配列を有し、2またはそれ以上のヌクレオチド(本明細書においては小文字で示される)が、2′5′インターヌクレオシド結合を介して結合されることを特徴とする。好ましくは、2′5′−結合アデニレート残基である。
【0021】
【化3】
【0022】
代謝上の安定性を高めるために、例えばホスホロチオエート(星印)としてオリゴヌクレオチドを改変することも可能である。ホスホロチオエートによる安定化は、好ましくは、末端および内部ピリミジンヌクレオチドで行われる。
3′a*a*aa−C*U*U*CGC*U*UC*CAA*CAC*C*UAGA*C
【0023】
ルシフェラーゼ発現の阻害の特異性は、標的RNAに完全に相補的ではなく、例えば4塩基のミスマッチを有するコントロールオリゴヌクレオチドに基づき調べることができる。
3′a*a*aaC*U*U*CU*CU*U*CAAC*CA*C*CGA*GA*C 配列番号15
【0024】
式Iで示されるオリゴヌクレオチドの構造の例は、以下で示される。
【化4】
【0025】
式中、Bは、天然に存在する、または天然に存在しない核酸塩基であり、
U、VおよびWは、互いに独立して、O、S、NHまたはCH2、好ましくはOまたは
Sであり、
R1は、互いに独立して、OH、SH、CH3もしくはBH3、好ましくはOHもしくは
SH、または生理学的に許容されるそれらの塩であり、
R2は、互いに独立して、OH、H、O−C1〜C12−アルキル、好ましくはOH(リボヌクレオチド)であり、ここでC1〜C12−アルキルは、好ましくはCH3またはCH3−
O−CH2CH2であり、
R3は、互いに独立して、OH、H、O−C1〜C12−アルキル、好ましくはOHまたはHであり、ここでC1〜C12−アルキルは、好ましくはCH3またはCH3−O−CH2CH2であり、
xは、独立して、10〜100、好ましくは15〜45、特に好ましくは16〜25であり、
nは、2〜20、好ましくは3〜10、特に好ましくは3〜6であり、
Aは、アデニンまたはアデニン誘導体であり、例えば8−ブロモアデニン、8−メチルアデニン、またはヒポキサンチンである。
【0026】
本発明のオリゴヌクレオチドを用いて、動物細胞、特にヒトの初期細胞で遺伝子発現の阻害を試験するために、これらを、例えば、ヒト遺伝子またはそれに対応するRNAに対して向けて、ヒト細胞(HUVEC、ヒト臍帯静脈内皮細胞)で分析する。これに関して、遺伝子データベースからのEdg−1のDNA(登録番号M31210)を、例えば、対応するメッセンジャーRNAに転写することができ、以下の2つの領域(175および725)を、適切なオリゴヌクレオチドを合成するのに選択することができる。
【0027】
Edg−1のRNA:
【化5】
【0028】
対応するオリゴヌクレオチドの可能な構造の例を以下に示す:
【化6】
【0029】
ミスマッチコントロールと、edg−1 RNAとは、5個のヌクレオチドが異なる(
ミスマッチとして下線で示した)。
その上、edg−1に対して向けられた以下のオリゴヌクレオチドが調製され、該オリゴヌクレオチドは、改善されたヌクレアーゼ安定性と、増加した阻害活性を有し、上記のedg−1配列から誘導された。
【化7】
【0030】
式Iで示される本発明に係る核酸誘導体をオリゴヌクレオチドから合成する。例えば、オリゴヌクレオチドは、ヌクレオチドアデノシンホスフェート、グアノシンホスフェート、イノシンホスフェート、シチジンホスフェート、ウリジンホスフェート、および、チミジンホスフェートから完全に合成することができる。好ましくは、リボヌクレオチドから合成されたオリゴヌクレオチド、「オリゴリボヌクレオチド」である。本発明の他の実施形態において、オリゴヌクレオチドは、必要に応じて、1またはそれ以上の修飾、例えば化学修飾を含んでもよい。オリゴヌクレオチドは、複数の同一および/または異なる修飾を有してもよい。
【0031】
2′5′−結合残基は、例えば、アデノシン、3′−デオキシアデノシン(コルディセピン)、イノシン、8−ブロモアデノシン、8−メチルアデノシン、およびその他の8−置換アデノシン誘導体を含み得る。リボース残基はまた、3′−O−メチルアデノシンとして誘導体化することができる。2′5′−結合部分におけるインターヌクレオシド結合は、好ましくはホスホジエステルおよびホスホロチオエート結合である。2′5′−アデニレートの一般的な誘導体、それらの合成およびRNアーゼL活性化は、文献(Player et al.(1998)Pharmacol.Ther.78,55)に説明される。
【0032】
化学修飾の例は当業者既知であり、例えば、以下で説明されている:E.Uhlmann and A.Peyman,Chemical Reviews90(1990)543 and“Protocols for Oligonucleotides and Analogs”Synthesis and Properties&Synthesis and Analytical Techniques,S.Agrawal,Ed,Humana Press,Totowa,USA 1993,J.Hunziker and C.Leumann’Nucleic Acid Analogs:Synthesis and Properties’in Modern Synthetic Methods(Ed.Beat Ernst and C.Leumann)Verlag Helvetica Chimica Acata,Basle,p.331−417,RP lyer et al.Curr Opin Mol Therap(1999)1:344−358;S.Verma and F.Eckstein,Annu Rev Biochem(1998)67:99−134;JW Engels and E.Uhlmann:Chemistry of oligonucleotides.In:Pharmaceutical aspects of oligonucleotides.Couvreur P,Malvy C(Eds),Taylor&Francis,London,(2000):35−78。
【0033】
オリゴヌクレオチドの化学修飾としては、例えば、以下が挙げられる:
a)例えば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、NR1R1′ホスホロアミデート、ボランホスフェート、(C1〜C21)−O−アルキルホスフェート、[(C6〜C12)アリール−(C1−C21)−O−アルキル]ホスフェート、(C1〜C8)アルキルホスホネートおよび/または(C6〜C12)アリールホスホネート架橋で、リン酸ジエステル架橋を、完全または部分的に置換すること、ここで、
R1およびR1′は、互いに独立して、水素、(C1〜C18)アルキル、(C6〜C20)アリール、(C6〜C14)アリール−(C1〜C8)アルキル、好ましくは水素、(C1〜C8)アルキルおよび/またはメトキシエチル、特に好ましくは水素、(C1〜C4)アルキルおよび/またはメトキシエチルであり、または、
R1およびR1′は、それらが結合する窒素原子と一緒になって、5〜6員環複素環(O、S、Nからなる群より選択された他のヘテロ原子をさらに含んでもよい)を形成する;
【0034】
b)完全または部分的に3′−および/または5′−リン酸ジエステル架橋を「デホスホ」架橋で置換すること(例えば、Uhlmam,E.and Peyman,A.In“Methods in Molecular Biology”,Vol.20,“Prooocols for Oligonucleotides and Analogs”,S.Agrawal,Ed.,Humana Press,Totowa 1993,Chapter16,355ffで説明された)、例えば、ホルムアセタール、3′−チオホルムアセタール、メチルヒドロキシルアミン、オキシム,メチレンジメチルヒドラゾ,ジメチレンスルホンおよび/またはシリル基で置換すること;
【0035】
c)部分的に糖リン酸主鎖を、例えば「モルホリノ」オリゴマーで置換すること(例えば、E.P.Stirchak et al.,Nucleic Acids Res.17(1989)6129、および、J.Summerton and D.Weller,Antisense and Nucleic Acid Drug Dev.7(1997)187−195で説明された)、および/または、ポリアミド核酸(「PNAs」)で置換すること(例えば、P.E.Nielsen et al.,Bioconj.Chem.5(1994)3で説明された)、および/または、ホスホモノエステル核酸(「PHONAs」)で置換すること(例えば、Peyman et al.,Angew.Chem.Int.Ed.Engl.35(1996)2632−2638で説明された);
【0036】
d)例えば、β−D−2′−デオキシリボース、α−D−2′−デオキシリボース、L−2′−デオキシリボース、2′−F−2′−デオキシリボース、2′−F−2′−デオキシアラビノフラノース、2′−O−(C1〜C6)アルキルリボース、2′−O−(C2〜C6)アルケニルリボース、2′−[O−(C1〜C6)アルキル−O−(C1〜C6)アルキル]リボース、2′−NH2−2′−デオキシリボース、β−D−キシロフラノース、β−D−アラビノフラノース、α−アラビノフラノース、2,4−ジデオキシ−β−D−エリスロヘキソピラノース、立体構造的に制限された糖類似体(例えばLNA)(Locked Nucleic Acids;Singh et al.,Chem.Commun.4(1998)455;Singh et al.Chem.Commun.12(1998)1247)、および、炭素環(例えば、Froehler,J.Am.Chem.Soc.114(1992)8320で説明された)、および/または、開環した糖類似体(例えば、Vandendriessche et al.,Tetrahedron49(1993)7223で説明された)、および/または、ビシクロ糖類似体(例えば、M.Tarkov et al.,Helv.Chim.Acta76(1993)481で説明された)で、部分的にβ−D−リボース単位を置換すること。2′−修飾オリゴヌクレオチド類似体は、Manoharan,Biochim.Biophys.Acta(1999)117で詳細に説明され、立体構造的に制限されたオリゴヌクレオチド類似体は、Herdewijn,Biochim.Biopyhs.Acta(1999)167で詳細に説明される;
【0037】
e)天然ヌクレオシド塩基を修飾し、それぞれ完全または部分的に、例えば、5−(ヒドロキシメチル)ウラシル、5−アミノウラシル、プソイドウラシル、プソイドイソシトシン、ジヒドロウラシル、5−(C1〜C6)アルキルウラシル、5−(C2〜C6)−アルケニルウラシル、5−(C2〜C6)アルキニルウラシル、5−(C1〜C6)アルキルシトシン、5−(C2〜C6)アルケニル−シトシン、5−(C2〜C6)アルキニルシトシン、5−フルオロウラシル、5−フルオロシトシン、5−クロロウラシル、5−クロロシトシン、5−ブロモウラシル、5−ブロモシトシン、または、7−デアザ−7−置換プリンで置換すること。
複素環式の塩基修飾は、例えば、Herdewijn,Antisense&Nucl.Acid Drug Dev.(2000)297に説明される。
【0038】
その上、オリゴヌクレオチドの化学修飾は、オリゴヌクレオチドと、前記オリゴヌクレオチドの特性(例えばヌクレアーゼ安定性、標的配列に対する親和性、薬物動態学)に有利な影響を与える、および/または、改変オリゴヌクレオチドの標的配列へのハイブリダイゼーションの際に結合および/または架橋により前記標的配列に作用する1またはそれ以上の分子と結合することを含む(オリゴヌクレオチド結合体)。それらの例としては、ポリリジン、インターカレーター(例えばピレン、アクリジン、フェナジン、フェナントリジン)、蛍光性化合物(例えばフルオレセイン)、クロスリンカー(例えばソラレン、アジドプロフラビン)、親油性分子(例えば(C12〜C20)アルキル)、脂質(例えば1,2−ジヘキサデシル−rac−グリセロール)、ステロイド(例えばコレステロールまたはテストステロン)、ビタミン(例えばビタミンE)、ポリ−またはオリゴエチレングリコール、(C12〜C18)アルキルリン酸ジエステル、および/または、−O−CH2−CH(OH)−O−(C12〜C18)アルキルとの結合体である。このような分子は、5′および/または3′末端で、および/または、配列内で、例えば核酸塩基で結合させることができる。当業者既知のオリゴヌクレオチド結合体の例は、Manoharan(2001)Conjugated Oligonucleotides in Antisense technology.In:Crooke(Editor)Antisense technology.Marcel Dekker.New Yorkで説明される。
【0039】
化学修飾の特定の実施形態は、オリゴヌクレオチドと、a)親油性分子、例えば(C12〜C20)アルキル、b)ステロイド、例えばコレステロールおよび/またはテストステロン、c)ポリ−および/またはオリゴエチレングリコール、d)ビタミンE、e)インターカレーター、例えばピレン、f)(C14〜C18)アルキルリン酸ジエステル、および/または、g)−O−CH2−CH(OH)−O−(C12〜C16)アルキルとの結合に関する。
【0040】
化学修飾の他の特定の実施形態は、アリールエステル結合体として、例えばFDA結合体としてHMR 99/L045で説明されたオリゴヌクレオチドの誘導体化に関し、該誘導体化は、前記オリゴヌクレオチドの細胞の摂取に有用である。
【0041】
前記オリゴヌクレオチド誘導体を調整する方法は当業者既知であり、例えば、Uhlmann,E.&Peyman,A.,Chem.Rev.90(1990)543、および/または、M.Manoharan in“Antisense Research and Applications”,Crooke and Lebleu,Eds.,CRC Press,Boca Raton,1993,chapter17,p.303ff、および/またはEP−A 0 552 766に説明される。
【0042】
本発明のさらに特定の実施形態において、オリゴヌクレオチドは、その5′末端に、5′−5′転位を有していてもよい。このタイプの化学修飾は当業者既知であり、例えば、M.Koga et al.,J.Org.Chem.56(1991)3757に説明される。その上、5′末端は、オリゴヌクレオチドと、オリゴヌクレオチドの特性(例えばヌクレアーゼに対する安定性、細胞摂取、標的配列に対する親和性、薬物動態学)に有利な効果を与える1またはそれ以上の分子とを結合させるのに好ましい位置である。
【0043】
本発明は、オリゴヌクレオチドを調製する方法をさらに提供する。説明されたオリゴヌクレオチドを様々な既知の化学法を用いて調製することができ、例えば、Eckstein,F.(1991)“Oligonucleotides and Analogues,A Practical Approach”,IRL Press,Oxfordに説明されたように調製することができる。必要に応じて1またはそれ以上の酵素的な工程を含む方法でオリゴヌクレオチドを調製することもできる。
【0044】
その上、本発明は、特定の標的遺伝子の発現を調節するため、および、完全または部分的に阻害するため、例えば、完全または部分的に翻訳を阻害するための、オリゴヌクレオチドの使用を提供する。その上、本発明は、わずかな異常な2′5′−オリゴアデニレートシンターゼしか有さない細胞、または、2′5′−オリゴアデニレートシンターゼを全く有さない細胞において、発現を調節するため、および、完全または部分的に阻害するための、前記オリゴヌクレオチドの使用に関する。
【0045】
その上、本発明は、医薬としての前記オリゴヌクレオチドの使用、または、医薬製造のための前記オリゴヌクレオチドの使用を提供する。特に、特定の遺伝子の発現または過剰発現を伴う病気の予防および/または治療のための医薬において前記オリゴヌクレオチドを使用することが可能である。
【0046】
本発明は、特定の遺伝子の過剰発現が原因であるか、またはこれが関与する病気の治療のための、前記オリゴヌクレオチドまたは前記オリゴヌクレオチドを含む医薬の使用をさらに提供する。
【0047】
本発明の医薬は、例えば、CMV、HIV、HSV−1、HSV−2、肝炎B、肝炎Cウイルス、またはパピローマウイルスのようなウイルスにより引き起こされる疾患の治療のために用いることができる。本発明の医薬は、例えばポリオウイルス、VSVまたはインフルエンザウイルスのようなRNAウイルスの治療、また特に、例えばレオウイルスのような二本鎖RNAウイルスの治療に特に適している。
【0048】
本発明の医薬はまた、例えばガン治療に適している。この場合において、例えば、ガンの発達または成長の原因となる標的に対して向けられたオリゴヌクレオチド配列を用いることが可能である。このような標的の例としては、以下が挙げられる:
1)核の腫瘍性タンパク質、例えば、c−myc、N−myc、c−myb、c−fos、c−fos/jun、PCNA、p120、
2)細胞質/膜結合型腫瘍性タンパク質、例えば、EJ−ras、c−Ha−ras、N−ras、rrg、bcl−2、cdc−2、c−raf−1、c−mos、c−src、c−abl、c−ets、
3)細胞性受容体、例えば、EGF受容体、Her−2、c−erbA、VEGF受容体(KDR−1)、レチノイド受容体、タンパク質キナーゼ調節サブユニット、c−fms、Tie−2、c−raf−1キナーゼ、PKC−α、タンパク質キナーゼA(R1α)、
4)サイトカイン、成長因子、細胞外基質、例えば、CSF−1、IL−6、IL−1a、IL−1b、IL−2、IL−4、IL−6、IL−8、bFGF、VEGF、ミエロブラスチン、フィブロネクチン、
5)腫瘍抑制遺伝子の阻害剤、例えばMDM−2。
【0049】
本発明の医薬は、例えば、インテグリンまたは細胞−細胞付着受容体により、例えばVLA−4、VLA−2、ICAM、VCAMまたはELAMにより影響を受ける疾患の治療にさらに適している。
【0050】
本発明の医薬はまた、例えば再狭窄の予防に適している。この点について、例えば、拡散または移動を引き起こす標的に対して向けられたオリゴヌクレオチド配列を用いることが可能である。このような標的の例としては、以下が挙げられる:
1)核のトランスアクチベータータンパク質およびサイクリン、例えば、c−myc、c−myb、c−fos、c−fos/jun、サイクリンおよびcdc2キナーゼ、
2)マイトジェンまたは成長因子、例えば、PDGF、bFGF、VEGF、EGF、
HB−EGFおよびTGF−β、
3)細胞性受容体、例えば、bFGF受容体、EGF受容体、および、PDGF受容体。
【0051】
本発明は、さらに、アデノシンA1受容体、アデノシンA3受容体、ブラジキニン受容体またはIL−13の発現を適切なオリゴヌクレオチドを用いて阻害することによる喘息の治療のためのオリゴヌクレオチドに関する。
本発明はまた、例えば、β1−アドレナリン受容体またはEDGファミリーからのタンパク質(例えばEdg−1)の発現を阻害することにより、例えば心臓血管疾患を治療するためのオリゴヌクレオチドに関する。
本発明はまた、例えばPTP−1Bの発現を阻害することにより、例えば糖尿病を治療するためのオリゴヌクレオチドに関する。
【0052】
該医薬は、例えば、経口的に投与可能な医薬製剤の形態で、例えば、錠剤、コーティング錠剤、ハードもしくはソフトゼラチンカプセル、溶液、乳濁液または懸濁液の形態で用いることができる。これらはまた、例えば坐剤の形態で直腸に投与することができ、または、例えば注射液の形態で非経口的に投与することができる。医薬製剤は、治療上不活性な有機および無機キャリアー中に前記化合物を加工することにより製造することができる。錠剤、コーティング錠剤およびハードゼラチンカプセルのためのこのようなキャリアーの例としては、ラクトース、コーンスターチまたはそれらの誘導体、タルクおよびステアリン酸またはそれらの塩がある。液剤に適したキャリアーは、水、ポリオール、スクロース、転化糖およびグルコースである。注射液に適したキャリアーは、水、アルコール、ポリオール、グリセロールおよび植物油である。坐剤に適したキャリアーは、植物油および硬化油、ワックス、油脂および半固体ポリオールである。該医薬製剤はまた、保存剤、溶媒,安定剤、湿潤剤、乳化剤、甘味料、着色剤、矯味矯臭剤、浸透圧を改変するための塩、緩衝剤、コーティング剤、抗酸化剤、および、必要に応じて、その他の治療上活性な物質を含んでもよい。
【0053】
好ましい投与形態は、局所投与であり、例えば、カテーテルを用いた、または、吸入、注射もしくは注入による局所投与、および経口投与である。注射については、オリゴヌクレオチド誘導体は、溶液中に、好ましくは生理学的に許容できる緩衝液(例えば、ハンクス液またはリンガー液)中に処方される。しかしながら、オリゴヌクレオチドを固形状に処方して、使用前に溶解または懸濁してもよい。全身投与に好ましい投与量は、約0.01mg/kg〜約50mg/kg体重・1日である。
その上本発明は、オリゴヌクレオチドおよび/または生理学的に許容されるそれらの塩、加えて製薬上適切なキャリアーおよび/または添加物を含む医薬製剤に関する。
【0054】
オリゴヌクレオチドおよび/または生理学的に許容されるそれらの塩は、そのものを医薬として、互いを含む混合物として、または、局所的、経皮、非経口または経腸の適用が可能であり、活性成分として活性な用量の少なくとも1つのオリゴヌクレオチド、それに加えて一般的な製薬上適切なキャリアーおよび添加物を含む医薬製剤の形態で、動物、好ましくは哺乳動物、特にヒトに投与することができる。製剤は、通常、約0.1〜90重量%の治療上活性な化合物を含む。例えば、乾癬または白斑のような皮膚疾患の治療に関しては、例えば軟膏、ローションもしくはチンキ、乳濁液、または懸濁液の形態での局所適用が好ましい。該医薬製剤は、製薬上不活性な無機および/または有機キャリアーを用いて、それ自体既知の方法で製造される(例えばRemingtons Pharmaceutical Sciences,Mack Publ.Co.,Easton,PA.)。丸剤、錠剤、コーティング錠剤およびハードゼラチンカプセルの製造に関しては、例えばラクトース、コーンスターチおよび/またはそれらの誘導体、タルク、ステアリン酸および/またはそれらの塩などが用いることができる。ソフトゼラチンカプセルおよび/または坐剤のためのキャリアーの例は、油脂、ワックス、半固体および液体ポリオール、天然油および/または硬化油などである。液剤および/またはシロップの製造に適したキャリアーの例は、水、スクロース、転化糖、グルコース、ポリオールなどである。注射液の製造に適したキャリアーは、水、アルコール、グリセロール、ポリオール、植物油などである。マイクロカプセル、インプラントおよび/またはロッドに適したキャリアーは、グリコール酸と乳酸との混合ポリマーである。当業者既知のリポソーム製剤(N.Weiner,Drug Develop Ind Pharm15(1989)1523;”Liposome Dermatics,Springer Verlag 1992)、例えばHVJリポソーム(Hayashi,Gene Therapy3(1996)878)もまた適切である。皮膚への投与もまた、例えばイオノフォア法および/またはエレクトロポレーションを用いて可能である。加えて、リポフェクチン、およびその他のキャリアーシステム、例えば遺伝子治療で用いられるキャリアーシステムを用いることができる。特に適切なシステムは、優れた効率でオリゴヌクレオチドを真核細胞に導入するのに用いることができるシステムである。
【0055】
活性物質およびキャリアーに加えて、医薬製剤はまた、添加物、例えば、充填剤、増量剤、崩壊剤、結合剤、潤滑剤、湿潤剤、安定剤、乳化剤、保存剤、甘味料、着色剤、矯味矯臭剤、または芳香剤、増粘剤、希釈剤、緩衝物質、さらに、溶媒および/または可溶化剤および/または持続性を達成するための物質、さらに、浸透圧を改変するための塩、コーティング剤および/または抗酸化剤を含ませることができる。これらはまた、2またはそれ以上の異なるオリゴヌクレオチドおよび/またはそれらの生理学的に許容される塩も含ませることができ、さらにその上、少なくとも1つのオリゴヌクレオチドに加えて、1またはそれ以上のその他の治療上活性な物質を含ませることができる。
用量は広い範囲で変えることができ、個々のケースにおいて、個々の状況に応じて調節するべきである。
【実施例】
【0056】
1.式Iで示されるオリゴヌクレオチドの合成
a)3′aaaaaaCUUCGCUUCCAACACCUAGAC(小文字で示された塩基は2′5′インターヌクレオシド結合を有する)
ABI 394 DNAまたはExpediteシンセサイザー(Applied Biosystems,Weiterstadt,Germany)で合成を行った。製造元が推奨する合成サイクルを用いたが、ただしリボヌクレオシド−2′−O−ホスホロアミダイトに関しては、濃縮工程を2回行い(カップリング時間はそれぞれ400秒であった)、ヨウ素酸化工程の長さを30秒に増やした。用いられた固相は、糖の2′または3′位で5′−O−ジメトキシトリチル−N−6−ベンゾイルアデノシン(NSS−6101−10A,Chemgenes,Waltham,MA)を結合させた1000Åに調整された多孔質ガラス(CPG)支持体である。トリクロロ酢酸で開裂させて5′−O−ジメトキシトリチル基を除去した後、5′−O−ジメトキシトリチル−N−6−ベンゾイル−3′−O−tert−ブチルジメチルシリルアデノシン−2′−O−ホスホロアミダイト(ANP−5681,Chemgenes)で5回の濃縮により2′5′−結合オリゴヌクレオチド部分を合成した。これに続いて、対応する5′−O−ジメトキシトリチル−2′−O−tert−ブチルジメチルシリルヌクレオシド−3′−O−ホスホロアミダイト(ANP−5671〜ANP−5680,Chemgenes)で繰り返し濃縮することによって、3′5′−結合オリゴヌクレオチド部分を合成した。支持体からオリゴマーを分離し、リン酸基およびアミノ保護基脱保護するために、CPG支持体を、750μlの濃アンモニア/エタノール(3:1、v:v)で30℃で24時間振盪しながらインキュベートした。上清を支持体から分離し、次に、支持体を150μlの濃アンモニア/エタノール(3:1、v:v)で更に2回洗浄した。合わせた上清を減圧下で濃縮し、シリル保護基を除去するために、残留物を1200μlのトリエチルアミン×3HF(非常に毒性)中で振盪しながら30℃で24時間インキュベートした。これに続いて、700μlのn−ブタノールを加え、ドライアイス上で30分間混合物を冷却し、遠心分離した。ペレットをブタノールで更に2回洗浄した。加えて、塩化ナトリウム沈殿を次に行った。ゲル電気泳動において唯一の主要なバンドを示す112 OD(260)の粗生成物が得られた。生成物をさらにHPLCおよびエレクトロスプレーマススペクトロメトリー(ネガティブモード)で特徴付けた(計算値 8527.2,実測値 8527.5)。
【0057】
b)3′a*a*aa−C*U*U*CGC*U*UC*CAA*CAC*C*UAGA*C
実施例1のa)と同様にして合成を行い、5′−O−ジメトキシトリチル−N−6−ベンゾイル−3′−O−tert−ブチルジメチルシリルアデノシン−2′−O−ホスホロアミダイト(ANP−5681,Chemgenes)で3回の濃縮により2′5′−結合オリゴヌクレオチド部分を合成した。特定の酸化工程においてヨード液ではなくBeaucage試薬(RN−1535,Chemgenes,Waltham,MA)を用いることによって、ホスホロチオエート残基を導入した。ゲル電気泳動において唯一の主要なバンドを示す128 OD(260)の粗生成物が得られた。生成物をさらにHPLCおよびエレクトロスプレーマススペクトロメトリー(ネガティブモード)で特徴付けた(計算値 8061.6,実測値 8062.8)。
【0058】
2.SL−3細胞におけるルシフェラーゼ発現の阻害
生物活性に関して試験するために、実施例1で説明したような以下のオリゴヌクレオチドを調製し、ルシフェラーゼ活性の阻害に関して試験した。
a)3′aaaaaaCUUCGCUUCCAACACCUAGAC
【0059】
b)3′a*a*aa−C*U*U*CGC*U*UC*CAA*CAC*C*UAGA*C
トランスフェクション:実験の前の日に、2×106細胞/mlを6ウェルプレートにプレーティングした。オリゴヌクレオチドを、100μlのSF 900II SFM(SF−900無血清昆虫細胞用培地II;Gibco BRL 10902−096)中に溶解した。トランスフェクションのために、10μlのリポフェクチン(1mg/ml;GibcoBRL)を100μlのSF 900II SFMと混合し、室温で15分間インキュベートした。これに続いて、リポフェクチンミックスと核酸とを共にピペッティングし、室温で15〜45分間インキュベートした。その間に、細胞を3mlの無血清培地で洗浄し、800μlのSF 900II SFMと核酸/リポフェクチン混合物とを連続的に細胞に加え、続いて、25℃で一晩インキュベートした。次の日、1mlの培地および血清(Gibco BRL 10122−166:最終濃度2%)を加える。
デュアル−ルシフェラーゼレポーター(DLR;プロメガE1960)アッセイシステム:( http://www.promega.com/catalog)。
【0060】
プロメガ社のDLRアッセイは、1つのサンプルから、異なる核酸配列を有するホタルルシフェラーゼおよびウミシイタケルシフェラーゼ活性を逐次的に決定することができる。測定しようとする式Iで示されるオリゴヌクレオチドは、ホタルルシフェラーゼに対して向けられた。従って、ウミシイタケルシフェラーゼ活性ではなくホタルルシフェラーゼ活性だけが阻害されるはずである。従って、阻害作用に加えて、特異性も試験され得る。
【0061】
ウェルプレート中での細胞の受動的な溶解は、初めに培地を除去し、PBS(リン酸緩衝食塩水(Gibco BRL 14200−067)で細胞を洗浄することにより行われた。培地を吸引により完全に除去し、続いて、PLB(受動的な溶解緩衝液、水で1:5に希釈;500μlのPLB(1×)が6ウェルプレートの1つのウェルに導入された)をそれに加えた。これに続いて、室温で振盪しながら15分間インキュベートした。
【0062】
10mlのルシフェラーゼ分析緩衝液II(LAB II)にルシフェラーゼ分析基質(LAS)再懸濁することにより、ルシフェラーゼ分析試薬II(LAR II)を調製した。Stop&GIo試薬の調製は、200μlのStop&Glo基質(溶液)を乾燥Stop&Glo基質を含むボトルに加え、ボルテクサーを用いて10秒間溶液を混合することによりなされた。1×Stop&Glo溶液を作製するために、20μlの50×Stop&Glo基質と、1mlのStop&Glo緩衝液を合わせる。これは、10回の分析に十分である。
【0063】
DLR−アッセイ:100μlのLAR IIを20μlの細胞溶解物と共にウェルに導入し、2〜3秒間上下にピペッティングすることにより混合した。ホタルルシフェラーゼ活性の照度測定の後、100μlのStop&Glo試薬を加え、溶液を混合し、続いて、ウミシイタケルシフェラーゼ活性を測定した。Fluoroskan Ascent FLルミノメーター(Thermo Labsystems,Frankfurt,Germany)を用いて発光を測定した。
【0064】
【表1】
【0065】
ホタルルシフェラーゼ相補的オリゴヌクレオチドa)は、非相補的オリゴヌクレオチドc)よりも実質的に相当な程度ホタルルシフェラーゼ活性を阻害した。オリゴマーの特定の位置におけるホスホロチオエート残基によるオリゴヌクレオチドの安定化(オリゴヌクレオチドb)により、顕著に改善された作用が得られた。3′5′−結合相補配列全体が2′−O−メチル誘導体として誘導体化された場合、実質的に活性は検出されなかった(オリゴヌクレオチドd)。
【0066】
3.ヒト初期臍帯細胞(HUVEC)におけるedg−1発現の阻害
ヒトの初期細胞における遺伝子発現の阻害に関して本発明のオリゴヌクレオチドを試験するために、前記オリゴヌクレオチドはまた、ヒト遺伝子または対応するRNAに対して向けられ、ヒト細胞(HUVEC、ヒト臍帯静脈内皮細胞)で試験された。
適切なオリゴヌクレオチドを合成した。最初の2つの配列はedg−1 RNAに相補的であり、一方で、第三のオリゴヌクレオチドはミスマッチ塩基を有する。
【0067】
【化8】
【0068】
用いられたコントロールオリゴヌクレオチドは、2′5′−オリゴアデニレートを有さない相補配列(センス方向)であった(*はホスホロチオエートであり、a*a*aaは2′5′−結合アデニレート(部分的に*で改変された)であり、tegはトリエチレングリコールホスフェートである)。
【0069】
ヒト細胞(HUVEC、ヒト臍帯静脈内皮細胞)においてEdg−1遺伝子発現を阻害するために、特定の位置がホスホチオエートで改変されたオリゴリボヌクレオチド類似体を、以下のようにヒト初期細胞に用いた。
【0070】
細胞(HUVEC)および細胞摂取の検出
トランスフェクション:実際のトランスフェクションの24時間前に、初期HUVEC(Jafee et al.,1973,J.Clin.Invest52,pp.2745に従って単離された第二世代)を密度2.5×105細胞/ウェルでラットのコラーゲン−I(Biocoat,#354400,Becton Dickinson)で被覆した6ウェルプレートにプレーティングした。トランスフェクションのために、6μlのリポフェクチン(1mg/ml;GibcoBRL,#18292−011)を200μlの無血清Opti−MEM 1培地(GibcoBRL,31985−047)と混合し、室温で15分間インキュベートした。パラレル反応において、10μM(→最終濃度0.1(J.m)または100μM(→最終濃度1μM)のオリゴヌクレオチド溶液(PBS中、pH7.4)を無血清Opti−MEM 1培地で1:10の割合に希釈し、同量のプレインキュベートしたリポフェクチン溶液と混合した。室温で15分間インキュベートした後、前記混合物の量を無血清Opti−MEM 1培地で2mlに増やし、回収された細胞をPBSで1回洗浄し、続いて、前記混合物と共に、37℃で、5%CO2および湿度95%で4時間インキュベートした。その後、回収された細胞を再びPBSで洗浄し、続いて、血清含有EGM培地(CellSystems,#CC−3024+EGMサプリメント#CC−3124)で被覆し、さらに24または48時間インキュベートした。蛍光標識したオリゴヌクレオチドを用いた摂取の研究の場合において、細胞を4時間インキュベートし、続いて5%パラホルムアルデヒド(PBS中、pH7.4)で固定し、倍率200倍の倒立蛍光顕微鏡(Zeiss Axiovert135M)で、冷却したCCDカメラ(ORCA−1,Bfi optilas)を用いて、FITCフィルターを通して励起させて(励起:490nm,放出:510nm)直接撮影し、AQM2000ソフトウェア(Kinetic Imaging)で加工した。
【0071】
ウェスタンブロット分析:回収された細胞をPBSで1回洗浄し、続いて、200μl/ウェルの2×Laemmli緩衝液(Bio−Rad#161−0737)でそれをオーバーレイすることにより細胞を溶解した。室温で5分間インキュベートした後、セルスクレーパー(Becton Dickinson,#3085)を用いて細胞溶解産物を回収し、不連続の12%SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE,Laemmli et al.,1970,Bio−Rad−Criterion−System#345−0014)の前に、95℃で5分間熱して、この溶液(45μl)を各スロットに適用した。ゲルを1×トリス/グリシン/SDS緩衝液(Bio−Rad#161−0732)で泳動した。免疫ブロットのために、Bio−Radクライテリオンウェスタンブロット装置(#170−4070)で、ニトロセルロース(NC)メンブレン(Amersham#RPN2020D)に、1×トリス/グリシン緩衝液(Bio−Rad#161−0732,+10%メタノール)中で、ゲルをトランスファーした。次に、5%粉乳(“Blotto”,Bio−Rad#170−6404)および0.1%Tween 20(Bio−Rad#170−6531)を含む1×TBS緩衝液(Bio−Rad#170−6435)を用いて、NCメンブレンを室温で1時間飽和させた。Blotto非含有TBS−Tween(TBST)緩衝液でメンブレンを3回洗浄した後、TBST−Blottoでの1:50希釈液中の、抗hEDG−1一次抗体(EDG−1特異的ペプチド配列CKAHRSSVSDYVNYDで免疫化し、KLHとカップリングし、上述のペプチド配列に対する親和性で精製することによって得られたポリクローナルウサギ血清)で、メンブレンを4℃で一晩インキュベートした。TBSTで3回洗浄した後、二次抗体(アルカリホスファターゼをカップリングした抗ウサギ、Dianova#111−055−045)を、TBST−Blottoでの1:2000希釈液で室温で1時間インキュベートした。さらなる洗浄工程(上記参照)の後、ECF(「増強された化学蛍光」)検出反応(Amersham#RPN5785)を行い、ラップフィルムで被覆したNCメンブレンを、1mlのECF基質(Amersham Phamacia#RPN5785)で、室温で5分間インキュベートし、続いて、Fluor−Imager 595スキャナー(Amersham Pharmacia)を用いて検出した。ImageQuantソフトウェア(Amersham Pharmacia)を用いてシグナルを定量し、NCメンブレンを1回脱色し(Alpha Diagnostic Kit # 90100)、上述の方法に従ってβ−チューブリン特異的一次抗体(親和性で精製されたウサギ抗体、Santa Cruz # sc−9104)をインキュベートした後得られたβ−チューブリンシグナルに標準化した。
【0072】
【表2】
【0073】
本発明の化学修飾された一本鎖オリゴリボヌクレオチドで初期HUVEC細胞を処理することにより、edg−1発現の用量依存性の阻害が生じた。アンチセンス方向のオリゴリボヌクレオチド#3および#6のみが遺伝子発現を阻害したが、その一方で、センス方向のオリゴリボヌクレオチド#2および#5は、発現を阻害しなかった。edg−1特異的オリゴリボヌクレオチド#3および#6で処理した後、チューブリンレベルではなくEDG−1タンパク質レベルのみが減少したことから、阻害は、標的遺伝子特異的であることが証明された。edg−1相同オリゴリボヌクレオチド#3および#6のみがedg−1発現を阻害したが、一方で、5個のヌクレオチドがedg−1配列とは異なるアンチセンス方向のオリゴリボヌクレオチド#8は、edg−1発現を阻害しなかったことから、阻害は、用いられたオリゴリボヌクレオチドに関して配列特異的でもあることが証明された。
Claims (28)
- 式I:
5′−(N)x−(Z)n 式I
[式中、Nは、少なくとも部分的に標的RNAに対して相補的な天然に存在する、または天然に存在しないヌクレオチドであり、
xは、独立して、10〜100であり、
nは、2〜20であり、
Zは、2′5′インターヌクレオシド結合を介して結合した天然に存在する、または天然に存在しないヌクレオチドであり、
ただし、その相同標的RNAは以下の配列パターン:
5′−(U)v−(N)z−(U)w
5′−(U)v−(N)z−UX
5′−UX−(N)z−UX、および、
5′−(U)v−(N)z、
(式中、vは、独立して、2〜20であり、
wは、独立して、2〜20であり、
zは、独立して、15〜25であり、
Uはウリジンであり、Nはアデノシン(A)、グアノシン(G)、シチジン(C)またはUであり、Xは、A、GまたはC、好ましくはAである)
の1種を有する]
で示されるオリゴヌクレオチド、および、その生理学的に許容される塩。 - xが15〜45である、請求項1に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- xが16〜25である、請求項2に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- nが2〜10である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- nが3〜6である、請求項4に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- Nがリボヌクレオチドである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- vが2〜10である、請求項1〜6のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- vが3〜6である、請求項7に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- wが2〜10である、請求項6〜8のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- wが3〜6である、請求項9に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- zが16〜23である、請求項1〜10のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- zが19〜21である、請求項11に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- Zがアデノシンまたは3′−デオキシアデノシンである、請求項1〜12のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴオリゴヌクレオチド。
- 1またはそれ以上の天然ホスホジエステル結合が、ヌクレアーゼ分解に対して安定な非天然のインターヌクレオチド結合で置換された、請求項1〜13のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- 1またはそれ以上の天然ホスホジエステル結合が、ホスホロチオエート結合で置換された、請求項1〜14のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- 複数の天然ホスホジエステル結合が、ホスホロチオエート結合で置換され、この改変は末端および内部ピリミジンヌクレオチドに位置する、請求項1〜15のいずれか一項に記載の式Iで示されるオリゴヌクレオチド。
- 初めに、適切な標的遺伝子に相補的なオリゴヌクレオチドを調製し、このオリゴヌクレオチドを細胞に導入し、この細胞をインキュベートし、次に、コントロール細胞中の対応するmRNAまたは対応する遺伝子産物の量を比較測定することにより、標的遺伝子の遺伝子発現阻害を測定する、請求項1〜16のいずれか一項に記載の、1またはそれ以上のオリゴヌクレオチドを用いて細胞での標的遺伝子の遺伝子発現を阻害する方法。
- 2′5′−オリゴアデニレートシンターゼが、コントロール細胞に比べて低く発現されるか、または、不完全である細胞中で標的遺伝子の遺伝子発現を阻害する、請求項17に記載の方法。
- 請求項1〜18のいずれか一項に記載のオリゴヌクレオチド、ならびに、添加物および/またはキャリアー、ならびに、必要に応じて、医薬を製造または処方するための賦形剤を含む医薬。
- 腫瘍治療における、請求項19に記載の医薬の使用。
- 感染症の治療または予防における、請求項19に記載の医薬の使用。
- ウイルス性疾患の治療または予防における、請求項19に記載の医薬の使用。
- 炎症または喘息の治療における、請求項19に記載の医薬の使用。
- 心臓血管性疾患または代謝性疾患の治療における、請求項19に記載の医薬の使用。
- 新規の治療用標的遺伝子を同定または確認するための、請求項1〜16のいずれか一項に記載のオリゴヌクレオチドの使用。
- 作物保護研究において、新規の標的遺伝子を同定または確認するための、請求項1〜16のいずれか一項に記載のオリゴヌクレオチドの使用。
- 初めに、オリゴヌクレオチドを溶液中または固相で、連続カップリングまたは一括したカップリングにより調製し、調製後に単離および精製する、請求項1〜16のいずれか一項に記載のオリゴヌクレオチドの調製方法。
- 請求項27に記載のオリゴヌクレオチド誘導体を調製し、必要に応じてさらなる添加物および/またはキャリアー、ならびに、必要に応じて賦形剤と混合する、医薬を調製する
方法。
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