JP2003531627A

JP2003531627A - カンジダ・アルビカンスおよびカンジダ・デュブリニエンシスの検出および定量化のためのポリヌクレオチドプローブ

Info

Publication number: JP2003531627A
Application number: JP2001580431A
Authority: JP
Inventors: ミリマン，カート・エル; ホーガン，ジェームス・ジェイ; ビー，ゲイリー・ジー
Original assignee: ジェン−プローブ・インコーポレーテッド
Priority date: 2000-05-01
Filing date: 2001-05-01
Publication date: 2003-10-28
Anticipated expiration: 2021-05-01
Also published as: WO2001083824A2; CA2407244A1; JP4956699B2; EP1294940A2; US20020038015A1; DE60132454T2; CA2407244C; ATE384138T1; EP1294940B1; US6495327B2; AU2001259329B2; WO2001083824A3; AU5932901A; DE60132454D1

Abstract

(57)【要約】カンジダ・アルビカンスおよび／またはカンジダ・デュブリニエンシス由来のリボソーム核酸を検出するのに有用なハイブリダイゼーションアッセイプローブおよび補助オリゴヌクレオチド。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】関連出願本出願は、米国仮出願第６０／２０１，２４７号、２０００年５月１日出願の
優先権を請求する。この関連出願の全開示は、本明細書に援用される。

【０００２】発明の分野本発明は、病原性酵母種、カンジダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａａｌｂ
ｉｃａｎｓ）およびカンジダ・デュブリニエンシス（Ｃａｎｄｉｄａｄｕｂｌ
ｉｎｉｅｎｓｉｓ）を検出するための組成物および方法に関する。より具体的に
は、本発明は、これらの種のリボソーム核酸に特異性を有する、ハイブリダイゼ
ーションプローブおよび補助ポリヌクレオチドに関する。

【０００３】発明の背景酵母、カンジダ・アルビカンス（Ｃ．アルビカンス）は、ヒトに感染する、最
も一般的な真菌病原体の１つである。カンジダ・アルビカンスは、気道、胃腸管
および女性生殖器官の粘膜の正常フロラ（ｆｌｏｒａ）の一部であるが、この日
和見病原体は、これらの位置で優位を獲得し、そして疾患状態を生じる可能性が
ある。実際、そうでなければ健康な個体のＣ．アルビカンス感染が致死であるこ
とはまれであるが、例えばＡＩＤＳ患者、化学療法を受けている癌患者、および
免疫抑制薬剤を投与されている臓器移植患者などの、損なわれた免疫系を有する
個体では、感染は、生命を脅かす異常につながる可能性がある。散在性（全身性
）カンジダ症は、免疫抑制された個体で最も一般的であり、そして通常、該生物
が粘膜上皮を通過して血流に出た後に、確立される。ひとたび血流に入ると、こ
の生物は、血栓静脈炎、心内膜炎、または眼の感染を引き起こす可能性がある。
さらに、Ｃ．アルビカンスは、例えば管、針または麻薬乱用を介して、静脈内に
導入されると、実質的にいかなる器官または組織にも侵入しうる。

【０００４】カンジダは、酵母の不均一な属である。少なくとも６つのカンジダ種がヒト病
原体として関連付けられてきているが、カンジダ感染の大部分は、Ｃ．アルビカ
ンスおよびＣ．トロピカリスによって引き起こされる。Ｃ．アルビカンス感染の
適切な診断および早期治療は、医学的治療に関して、明らかな利点を提供するた
め、この生物の広範囲の異なる株を検出するのに利用可能な方法を有することが
非常に望ましい。

【０００５】新規日和見病原体、カンジダ・デュブリニエンシスの発見が、ヒト疾患に関与
する生物の範囲に加えられた（Ｓｕｌｌｉｖａｎら，Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇ
ｙ１４１：１５０７（１９９５）を参照されたい）。この酵母種の単離体は口
腔カンジダ症の臨床症状を伴い、そして伴わず、主に、ＨＩＶ感染患者の口腔か
ら、回収されている。しかし、Ｃ．デュブリニエンシスはまた、はるかにより少
ない度合いであるが、無症候性および症候性免疫適格個体の口腔からも回収され
ている。痰、血液、糞便および膣標本からのＣ．デュブリニエンシスの単離もま
た、いくつか報告されている。ＯｄｄｓらによってＪ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒ
ｏｂｉｏｌ．３６：２８６９（１９９８）に報告された研究では、もともとＣ
．アルビカンスと同定された酵母の約２％は、ＤＮＡフィンガープリンティング
に基づいて、Ｃ．デュブリニエンシスと再同定された。

【０００６】デオキシリボ核酸（「ＤＮＡ」）またはリボ核酸（「ＲＮＡ」）の２つの一本
鎖は、互いに会合または「ハイブリダイズ」し、相補塩基対間の水素結合によっ
て共に保持される２つの鎖を有する二本鎖構造を形成可能であることが、よく確
証されている。核酸の個々の鎖は、塩基：アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、チ
ミン（Ｔ）、グアニン（Ｇ）、ウラシル（Ｕ）およびイノシン（Ｉ）を含むヌク
レオチドから形成される。核酸の二重らせん構造において、塩基アデニンは、塩
基チミンまたはウラシルと水素結合し、塩基グアニンは、塩基シトシンと水素結
合し、そして塩基イノシンは、アデニン、シトシンまたはウラシルと水素結合す
る。したがって、鎖沿いのいかなる点でも、古典的な「ワトソン−クリック」塩
基対、Ａ：ＴまたはＡ：Ｕ、Ｔ：ＡまたはＵ：Ａ、およびＧ：ＣまたはＣ：Ｇが
見出される可能性がある。しかし、伝統的な（「規範的な（ｃａｎｏｎｉｃａｌ
）」）塩基対に加え、Ａ：Ｇ、Ｇ：Ｕおよび他の「ゆらぎ（ｗｏｂｂｌｅ）」ま
たはミスマッチ塩基対もまた、見出される可能性がある。

【０００７】第一の一本鎖ポリヌクレオチドが、ハイブリダイゼーション促進条件下で、第
一のポリヌクレオチドの配列に相補的な、十分な数の近接する塩基を有する、第
二の一本鎖ポリヌクレオチドと接触すると、二本鎖核酸ハイブリッドが生じるで
あろう。適切な条件下で、ＤＮＡ／ＤＮＡ、ＲＮＡ／ＤＮＡまたはＲＮＡ／ＲＮ
Ａハイブリッドが形成可能である。

【０００８】一般的に、プローブは、検出しようとする核酸配列（「標的配列」）とある程
度の相補性を有する一本鎖ポリヌクレオチドである。プローブは、一般的に、放
射性同位体、抗原または化学発光部分などの検出可能部分で標識される。

【０００９】特定の核酸配列を検出する方法としての核酸ハイブリダイゼーションの説明は
、Ｋｏｈｎｅらによって米国特許第４，８５１，３３０号に、そしてＨｏｇａｎ
らによって米国特許第５，５４１，３０８号および第５，６８１，６９８号に提
供される。これらの参考文献はまた、ＲＮＡ含有生物を含む可能性がある試料中
の、こうした生物の存在を決定するための方法も記載する。これらの方法は、１
以上の非ウイルス生物または非ウイルス生物群のリボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）
に十分に相補的なプローブを必要とする。該方法にしたがって、試験しようとす
る試料由来の核酸および適切なプローブをまず混合し、そしてその後、明記され
るハイブリダイゼーション条件下でインキュベーションする。必ずというわけで
はないが、慣用的に、プローブは、検出可能標識で標識されるであろう。生じた
ハイブリダイゼーション反応をその後、アッセイし、試験試料中に含まれるｒＲ
ＮＡの存在を検出するため、二重鎖構造を形成した標識プローブを検出し、そし
てその量を定量化する。

【００１０】ウイルスを例外とし、すべての原核生物は、原核５Ｓ、１６Ｓおよび２３Ｓ
ｒＲＮＡ分子の相同体（ｈｏｍｏｌｏｇ）をコードするｒＲＮＡ遺伝子を含む。
真核生物では、これらのｒＲＮＡ分子は、原核生物分子に実質的に類似の５Ｓ
ｒＲＮＡ、５．８ＳｒＲＮＡ、１８ＳｒＲＮＡおよび２８ＳｒＲＮＡであ
る。試料中の特定の生物または生物群における、特異的にターゲッティングされ
たｒＲＮＡ下位配列を検出するためのプローブは、先に記載されてきている。こ
れらの非常に特異的なプローブ配列は、好適に、適切なストリンジェンシー条件
下で、いかなる他の細菌種または感染性病原体由来の核酸とも交差反応しない。

【００１１】本発明は、非常に特異的な方式で、広範囲のカンジダ・アルビカンス株および
カンジダ・デュブリニエンシスを検出するのに使用可能なポリヌクレオチドプロ
ーブを提供する。

【００１２】発明の概要本発明の第一の側面は、１００ヌクレオチドまでの長さおよび配列番号６また
はその相補体由来の少なくとも１７の近接するヌクレオチドを含む配列を有する
、オリゴヌクレオチドに関する。オリゴヌクレオチドの配列は、配列番号１また
はその相補体、配列番号２またはその相補体、配列番号３またはその相補体、配
列番号４またはその相補体、あるいは配列番号５またはその相補体のいずれか１
つを含むことが可能である。これらの場合の各々で、オリゴヌクレオチドは、１
００ヌクレオチドまでの長さを有するよりむしろ、わずか６０ヌクレオチドまで
の長さを有することが可能である。特定の態様において、オリゴヌクレオチドは
ＤＮＡで作成される。本発明の特定の他の態様において、オリゴヌクレオチドの
配列は、正確に、配列番号１またはその相補体、配列番号２またはその相補体、
配列番号３またはその相補体、配列番号４またはその相補体、および配列番号５
またはその相補体のいずれか１つに提供される。この場合、オリゴヌクレオチド
は、所望により、検出可能標識を含むことが可能である。非常に好ましい態様に
おいて、オリゴヌクレオチドの配列は、配列番号１または配列番号４のいずれか
に提供される。さらにより非常に好ましい態様において、配列番号１または配列
番号４いずれかの配列を有するオリゴヌクレオチドは、検出可能標識をさらに含
む。検出可能標識の例には、アクリジニウムエステルなどの化学発光標識が含ま
れる。

【００１３】本発明の第二の側面は、Ｃ．アルビカンスまたはＣ．デュブリニエンシスのい
ずれかである酵母の核酸を検出するのに使用可能な組成物に関する。この組成物
は、１００ヌクレオチド塩基までの長さおよび配列番号６またはその相補体由来
の少なくとも１７の近接するヌクレオチドを含む配列を有する、オリゴヌクレオ
チドプローブを含む。特定の例では、１００ヌクレオチドまでの長さを有するよ
りむしろ、オリゴヌクレオチドプローブの長さは、わずか６０ヌクレオチドまで
である。本発明の組成物において、プローブは、好適に、ＤＮＡで作成可能であ
る。本発明のオリゴヌクレオチドプローブの特定の好ましい態様において、検出
可能標識が含まれ、該標識は、化学発光標識または放射標識であり、そしてプロ
ーブの長さは、６０ヌクレオチド以下である。オリゴヌクレオチドプローブの配
列が、正確に配列番号１または配列番号４いずれかによって提供される場合、そ
してさらに、プローブが検出可能標識を含む場合、検出可能標識は、化学発光標
識または放射標識であることが可能である。特定の例として、検出可能標識は化
学発光標識であり、そしてこの化学発光標識はアクリジニウムエステルである。
あるいは、オリゴヌクレオチドプローブの配列が、正確に配列番号１または配列
番号４いずれかによって提供される場合、そしてさらに、プローブが検出可能標
識を含む場合、組成物中に少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが含ま
れていてもよい。本発明の１つの非常に好ましい態様にしたがって、オリゴヌク
レオチドプローブの配列は、配列番号１に提供され、そしてヘルパーオリゴヌク
レオチドは、配列番号２および配列番号３からなる群より選択される。別の非常
に好ましい態様にしたがって、オリゴヌクレオチドプローブの配列は、配列番号
４に提供され、そしてヘルパーオリゴヌクレオチドは、配列番号２および配列番
号５からなる群より選択される。

【００１４】本発明の第三の側面は、試験試料が、Ｃ．アルビカンスまたはＣ．デュブリニ
エンシスいずれかである生物を含むかどうか決定する方法に関する。この方法は
、１００ヌクレオチド塩基までの長さおよび配列番号６またはその相補体由来の
少なくとも１７の近接するヌクレオチドを含む配列を有するオリゴヌクレオチド
プローブを含む、プローブ組成物を、試験試料に提供する、第一の工程を含む。
方法の第二の工程は、プローブ：標的二重鎖を形成するため、高ストリンジェン
シー条件下で、試験試料中に存在する可能性があるいかなる核酸も、該プローブ
組成物とハイブリダイズさせることを含む。最後に、プローブ：標的二重鎖を検
出する工程がある。こうした二重鎖が検出されることは、Ｃ．アルビカンスまた
はＣ．デュブリニエンシスいずれかである生物が、試験試料中に存在することを
示す。この方法は、配列番号１または配列番号４いずれかによって提供される配
列を有するオリゴヌクレオチドプローブを用いて行うことが可能である。この場
合、試験試料は酵母細胞を含む可能性があり、そして上述の第一の工程の前に、
該試験試料中に存在する可能性がある、いかなる酵母細胞由来の核酸も遊離させ
る予備的工程がある。あるいは、試験試料は、溶解物として開始することも可能
である。方法の第二の工程で使用可能な、有用な高ストリンジェンシーハイブリ
ダイゼーション条件の例は：（ａ）０．４８Ｍリン酸ナトリウム緩衝液、０．１
％ドデシル硫酸ナトリウム、各１ｍＭのＥＤＴＡおよびＥＧＴＡ；または（ｂ）
０．６ＭＬｉＣｌ、１％ラウリル硫酸リチウム、６０ｍＭコハク酸リチウム、
並びに各１０ｍＭのＥＤＴＡおよびＥＧＴＡのいずれかを含む。オリゴヌクレオ
チドプローブの配列が、配列番号１または配列番号４のいずれかからなる場合、
オリゴヌクレオチドプローブがまた、検出可能標識も含むことが好ましい。本発
明の方法の１つの態様において、この検出可能標識は、アクリジニウムエステル
であり、そして「検出」工程は、いかなるプローブ：標的二重鎖も検出するため
、発光測定を行うことを含む。本発明の方法の別の態様において、プローブ組成
物は、少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドをさらに含む。例えば、オ
リゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号１に提供され、そしてさらに、少な
くとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが、配列番号２または配列番号３に提
供される配列を有することが、非常に好ましい。あるいは、オリゴヌクレオチド
プローブの配列が配列番号４に提供され、そしてさらに、少なくとも１つのヘル
パーオリゴヌクレオチドが、配列番号２または配列番号５に提供される配列を有
することが、非常に好ましい。

【００１５】定義本明細書において、以下の用語は、反対に言及されない限り、既定の意味を有
する。

【００１６】「ヌクレオチド」は、リン酸基、５炭糖および窒素性塩基からなる核酸のサブ
ユニットである。ＲＮＡに見られる５炭糖はリボースである。ＤＮＡでは、５炭
糖は２’−デオキシリボースである。５’−ヌクレオチドの糖は、５’−炭素−
５位にヒドロキシル基（−ＯＨ）を含む。該用語はまた、天然存在ヌクレオチド
の類似体も含み、そして特に、リボースの２’位にメトキシ基（ＯＭｅ）を有す
る類似体を含む。本明細書において、「Ｔ」残基を含むメトキシオリゴヌクレオ
チドは、リボース部分の２’位にメトキシ基を有し、そしてヌクレオチドの塩基
位にウラシルを有する。「ＯＭｅＴ」と特に特定される場合、ヌクレオチドの塩
基位がチミン残基に占められることを意味する。

【００１７】「非ヌクレオチド単位」は、ポリマーのハイブリダイゼーションに重要には参
加しない単位である。こうした単位は、例えば、ヌクレオチドとのいかなる重要
な水素結合にも参加してはならず、そして構成要素として、５つのヌクレオチド
塩基またはその類似体の１つを有する単位を排除するであろう。

【００１８】「オリゴヌクレオチド」は、共に共有結合する、２以上のヌクレオチドサブユ
ニットを有するヌクレオチドポリマーである。オリゴヌクレオチドは、一般的に
、長さ約１０から約１００ヌクレオチドである。ヌクレオチドサブユニットの糖
基は、リボース、デオキシリボース、またはＯＭｅなどのその修飾された誘導体
であってもよい。ヌクレオチドサブユニットは、ホスホジエステル連結、修飾連
結などの連結によって、または、相補標的ヌクレオチド配列へのオリゴヌクレオ
チドのハイブリダイゼーションを妨げない、非ヌクレオチド部分によって、連結
されてもよい。修飾連結は、標準的ホスホジエステル連結が、ホスホロチオエー
ト連結、メチルホスホネート連結、または中性ペプチド連結などの異なる連結で
置き換えられたものを含む。窒素性塩基類似体もまた、本発明にしたがったオリ
ゴヌクレオチドの構成要素であることが可能である。

【００１９】「標的核酸」は、標的核酸配列を含む核酸である。「標的核酸配列」、「標的ヌクレオチド配列」または「標的配列」は、オリゴ
ヌクレオチドがハイブリダイズすることが可能な特定のデオキシリボヌクレオチ
ドまたはリボヌクレオチド配列である。

【００２０】「オリゴヌクレオチドプローブ」は、高ストリンジェンシーハイブリダイゼー
ション条件下で、検出可能ハイブリッドプローブ：標的二重鎖を形成することが
可能な、標的核酸配列に十分に相補的なヌクレオチド配列を有するオリゴヌクレ
オチドである。オリゴヌクレオチドプローブは、単離化学種であり、そして高ス
トリンジェンシーハイブリダイゼーション条件下でのハイブリダイゼーションを
妨げない限り、ターゲッティングされる領域の外側に、さらなるヌクレオチドを
含んでもよい。非相補配列、例えばプロモーター配列、制限エンドヌクレアーゼ
認識部位、または触媒活性部位などの望ましい二次もしくは三次構造を与える配
列を用いて、本発明のプローブを用いた検出を促進することが可能である。オリ
ゴヌクレオチドプローブは、所望により、標的配列へのプローブハイブリダイゼ
ーションを検出するかまたは確認するのに使用可能な検出可能部分、例えば放射
性同位体、蛍光部分、化学発光部分、酵素またはリガンドで標識可能である。オ
リゴヌクレオチドプローブは、長さ１０から１００ヌクレオチドの範囲の大きさ
であることが好ましい。

【００２１】「検出可能部分」は、核酸プローブに付着した、または核酸プローブの一部と
して合成された分子である。この分子は、特有に検出可能でなければならず、そ
して、その結果、プローブが検出されるのを可能にするであろう。これらの検出
可能部分は、しばしば、放射性同位体、化学発光分子、酵素、ハプテン、または
特有のオリゴヌクレオチド配列でさえある。

【００２２】「ハイブリッド」または「二重鎖」は、２つの一本鎖核酸配列の間に、相補塩
基間のワトソン−クリック塩基対形成または非規範的塩基対形成によって形成さ
れる複合体である。

【００２３】「ハイブリダイゼーション」は、核酸の２つの相補鎖が組み合わされ、二本鎖
構造（「ハイブリッド」または「二重鎖」）を形成する過程である。「相補性」は、各鎖上のワトソン−クリック塩基対の間の水素結合を通じて、
ハイブリッドあるいは二本鎖ＤＮＡ：ＤＮＡ、ＲＮＡ：ＲＮＡまたはＤＮＡ：Ｒ
ＮＡを形成することが可能な、ＤＮＡまたはＲＮＡの一本鎖の塩基配列によって
与えられる特性である。アデニン（Ａ）は通常、チミン（Ｔ）またはウラシル（
Ｕ）を相補し、一方、グアニン（Ｇ）は通常、シトシン（Ｃ）を相補する。

【００２４】「ミスマッチ」は、ハイブリッドにおいて、規範的なワトソン−クリック水素
結合を形成しない２つのヌクレオチドのいかなる対形成も指す。さらに、以下の
議論の目的には、ミスマッチは、非対形成ヌクレオチド（類）を生じる、ハイブ
リッドの１つの鎖における挿入または欠失も含む可能性がある。

【００２５】用語「ストリンジェンシー」は、ハイブリダイゼーションおよび続くプロセシ
ング工程中に存在する温度および溶媒組成を記載するのに用いられる。高ストリ
ンジェンシー条件下では、非常に相補的な核酸ハイブリッドのみが形成されるだ
ろうし；十分な度合いの相補性を持たないハイブリッドは形成されないであろう
。したがって、アッセイ条件のストリンジェンシーは、ハイブリッドを形成する
２つの核酸鎖の間に必要な相補性の量を決定する。ストリンジェンシー条件は、
標的および非標的核酸を用いて形成されるハイブリッド間の安定性の相違を最大
にするよう選択する。典型的な高ストリンジェンシー条件を実施例に提供する。

【００２６】用語「プローブ特異性」は、プローブの特性を指し、標的および非標的配列の
間を区別する能力を記載する。用語「可変領域」は、試料中に含まれる標的生物および非標的生物の間で、少
なくとも１つの塩基が異なる、ヌクレオチドポリマーを指す。

【００２７】「保存領域」は、少なくとも２つの異なるポリヌクレオチドの間で可変でない
核酸下位配列である。用語「配列分散（ｄｉｖｅｒｇｅｎｃｅ）」は、ヌクレオチドポリマーが、進
化中、より似なくなる過程を指す。

【００２８】用語「配列収束（ｃｏｎｖｅｒｇｅｎｃｅ）」は、ヌクレオチドポリマーが、
進化中、より似てくる過程を指す。「Ｔｍ」は、プローブの５０％が、ハイブリダイズ型から非ハイブリダイズ型
に変換される温度を指す。

【００２９】「ヘルパーオリゴヌクレオチド」は、オリゴヌクレオチドプローブが結合する
領域以外の標的核酸領域に結合するオリゴヌクレオチドである。ヘルパーオリゴ
ヌクレオチドは、一本鎖核酸のターゲッティングされる領域上に新たに二次およ
び三次構造を課し、オリゴヌクレオチドプローブの結合速度が加速されるように
する。ヘルパーオリゴヌクレオチドは、標識オリゴヌクレオチドプローブと組み
合わせて用いられる場合、検出可能標識で標識されないが、標識プローブの結合
を促進し、そしてしたがって、間接的にハイブリダイゼーションシグナルを増進
する。

【００３０】句「本質的になる」、または「本質的になっている」は、オリゴヌクレオチド
が、明記されるヌクレオチド配列に実質的に類似のヌクレオチド配列を有するこ
とを意味する。オリゴヌクレオチドが、請求される特性を有すること、例えば高
ストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件下で、非標的核酸より標的核酸
に優先的にハイブリダイズ可能であることを妨げない、いかなる付加または欠失
も、明記されるヌクレオチド配列の重要でない変動である。

【００３１】当業者は、本発明の実質的に対応するプローブは、言及される配列と異なり、
そしてなお同一の標的核酸配列にハイブリダイズ可能であることを理解するであ
ろう。核酸からのこの変動は、配列内の同一塩基の割合、またはプローブおよび
その標的配列間の完全に相補的な塩基の割合に関して、述べることが可能である
。本発明のプローブは、これらの割合が、１００％から８０％、または１０ヌク
レオチド標的配列における０塩基ミスマッチから１０ヌクレオチド標的配列にお
ける２塩基ミスマッチである場合、核酸配列に実質的に対応する。好ましい態様
において、該割合は、１００％から８５％である。より好ましい態様において、
この割合は、９０％から１００％であり；他の好ましい態様において、この割合
は、９５％から１００％である。

【００３２】「十分に相補的」または「実質的に相補的」により、高ストリンジェンシーハ
イブリダイゼーション条件下で、検出のため安定であるハイブリッドを形成する
、十分な量の近接する相補ヌクレオチドを有する核酸を意味する。

【００３３】「核酸ハイブリッド」または「プローブ：標的二重鎖」により、二本鎖、水素
結合構造で、好ましくは、長さ１０から１００ヌクレオチド、より好ましくは、
長さ１４から５０ヌクレオチドである構造を意味する。構造は、化学発光または
蛍光検出、オートラジオグラフィー、電気化学的解析またはゲル電気泳動などの
手段によって検出するのに十分に安定である。こうしたハイブリッドは、ＲＮＡ
：ＲＮＡ、ＲＮＡ：ＤＮＡ、またはＤＮＡ：ＤＮＡ二重鎖分子を含む。

【００３４】「負のセンス」により、レファレンス（すなわち、センス）核酸分子に完全に
相補的な核酸分子を意味する。「ＲＮＡおよびＤＮＡ均等物（ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ）」は、同じ相補塩基対
ハイブリダイゼーション特性を有する、ＲＮＡおよびＤＮＡ分子を指す。ＲＮＡ
およびＤＮＡ均等物は、異なる糖基（すなわち、リボース対デオキシリボース）
を有し、そしてＲＮＡにはウラシル、そしてＤＮＡにはチミンが存在する点が異
なる可能性がある。ＲＮＡおよびＤＮＡ均等物の間の相違は、均等物が、特定の
配列に対し、同じ度合いの相補性を有するため、実質的に対応する核酸配列にお
ける相違に貢献しない。

【００３５】「優先的にハイブリダイズする」により、高ストリンジェンシーハイブリダイ
ゼーション条件下で、オリゴヌクレオチドプローブが、その標的核酸にハイブリ
ダイズし、（他の生物由来の非標的核酸の存在を示すであろう）安定なプローブ
：非標的ハイブリッドを形成することなく、（それにより標的核酸の存在を示す
）安定なプローブ：標的ハイブリッドを形成可能であることを意味する。したが
って、プローブは、非標的核酸に対するより、標的核酸に対し、十分により高い
度合いでハイブリダイズし、当業者が、Ｃ．アルビカンスおよび／またはＣ．デ
ュブリニエンシスの存在を正確に検出し、そして他の生物とこれらの種を区別す
ることを可能にする。優先的ハイブリダイゼーションは、当該技術分野に知られ
、そして本明細書に記載する技術を用いて、測定可能である。

【００３６】「標的核酸配列領域」は、他の種の核酸に存在しない、生物の核酸に存在する
核酸配列またはそれに相補的な配列を指す。標的配列に相補的なヌクレオチド配
列を有する核酸は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）または転写仲介増幅（例え
ば、ＫａｃｉａｎおよびＦｕｌｔｚ、核酸配列増幅法、米国特許第５，８２４，
５１８号）などの標的増幅技術によって生成可能である。

【００３７】発明の詳細な説明本明細書において、我々は、他の微生物またはヒトのリボソーム核酸を実質的
に検出することなく、カンジダ・アルビカンスおよびカンジダ・デュブリニエン
シスのｒＲＮＡまたはｒＤＮＡを検出し、そして同定するのに使用可能な、オリ
ゴヌクレオチドプローブの好ましい標的ヌクレオチド配列およびヘルパーオリゴ
ヌクレオチドを開示する。Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスを特
異的に検出する、非常に好ましいポリヌクレオチドプローブおよび補助ヘルパー
オリゴヌクレオチドを、特に開示する。２８ＳｒＲＮＡの特定のｒＲＮＡ配列
に相補的であるプローブは、好適に、これらの種を、既知の系統的に最も近い近
縁種（ｎｅｉｇｈｂｏｒ）と区別することが可能である。

【００３８】Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスのリボソームＲＮＡ（ｒＲＮ
Ａ）またはＤＮＡ（ｒＤＮＡ）配列に対するハイブリダイゼーションを可能にす
る核酸配列を有するのに加え、本発明のオリゴヌクレオチドは、配列番号７に同
定する、記載するＲＮＡ標的配列領域の少なくとも一部に、少なくとも９０％相
補的であり、好ましくは、完全に相補的である。該部分は、好ましくは、少なく
とも長さ１５ヌクレオチドであり、より好ましくは、少なくとも長さ１７ヌクレ
オチドであり、さらにより好ましくは、少なくとも長さ２３ヌクレオチドであり
、さらにより好ましくは、少なくとも長さ２５ヌクレオチドであり、そしてさら
により好ましくは、少なくとも長さ３４ヌクレオチドである。

【００３９】上述のように、本発明のオリゴヌクレオチドは、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．
デュブリニエンシスの核酸配列をターゲッティングする。これらのオリゴヌクレ
オチドは、核酸標的領域に優先的にハイブリダイズし、Ｃ．アルビカンスまたは
Ｃ．デュブリニエンシスいずれかの存在を示す、検出可能二重鎖を形成するプロ
ーブとして使用可能である。あるいは、本発明のオリゴヌクレオチドは、高スト
リンジェンシーハイブリダイゼーション条件下で、核酸標的領域にハイブリダイ
ズし、そして標識オリゴヌクレオチドプローブおよびその相補標的核酸間の二重
鎖の形成を増進することが可能である、ヘルパーオリゴヌクレオチドとして使用
可能である。

【００４０】好ましい態様において、本明細書に記載するオリゴヌクレオチドプローブは、
高ストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件下で、他の生物由来のものよ
り、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシス由来の核酸に、選択的にハ
イブリダイズする。本発明のいくつかの態様において、オリゴヌクレオチドプロ
ーブは、アクリジニウムエステルまたは放射性同位体などの検出可能部分を含む
。

【００４１】Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスの存在を検出するのに好まし
い方法は、高ストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件下で、他の生物の
核酸配列より、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシス標的核酸配列に
優先的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブと、試験試料を接触さ
せる工程を含む。好ましくは、標的核酸配列は、配列番号７に提供する配列の、
少なくとも１５の近接するヌクレオチド、より好ましくは、少なくとも１７の近
接するヌクレオチド、さらにより好ましくは、少なくとも２３の近接するヌクレ
オチド、さらにより好ましくは、少なくとも２５の近接するヌクレオチド、そし
てさらにより好ましくは、少なくとも３４の近接するヌクレオチドを有する。し
たがって、ｒＲＮＡ標的にハイブリダイズするのに有用なオリゴヌクレオチドは
、長さ１００ヌクレオチドまで、またはより好ましくは、長さ６０ヌクレオチド
までであり、そして配列番号６の配列内に含まれる、少なくとも１５の近接する
ヌクレオチド、より好ましくは、少なくとも１７の近接するヌクレオチド、さら
により好ましくは、少なくとも２３の近接するヌクレオチド、さらにより好まし
くは、少なくとも２５の近接するヌクレオチド、そしてさらにより好ましくは、
少なくとも３４の近接するヌクレオチドを有する。しかし、ｒＤＮＡにハイブリ
ダイズするのに有用な他のプローブは、長さ１００ヌクレオチドまで、またはよ
り好ましくは、長さ６０ヌクレオチドまでであり、そして配列番号６の相補体に
提供される配列の、少なくとも１５の近接するヌクレオチド、より好ましくは、
少なくとも１７の近接するヌクレオチド、さらにより好ましくは、少なくとも２
３の近接するヌクレオチド、さらにより好ましくは、少なくとも２５の近接する
ヌクレオチド、そしてさらにより好ましくは、少なくとも３４の近接するヌクレ
オチドを有する。

【００４２】序論および背景本発明の開発において、関連および非関連生物のコレクション由来のｒＲＮＡ
配列を並列させ、カンジダ・アルビカンスを他の生物と区別するのに使用可能な
、２８ＳｒＲＮＡに存在する候補保存配列を同定した。カンジダ・アルビカン
スおよび系統的に遠い近縁種のｒＲＮＡまたはｒＤＮＡ配列を並列させ、最大相
同性の領域を明らかにした。他の近い関連属および遠い関連属とミスマッチを示
すｒＲＮＡ配列を同定するため、配列変動に関して、相同領域を調べた。最後に
、以下に記載する方法にしたがって、候補プローブと推定される配列を、一団の
ｒＲＮＡ標準およびｒＲＮＡ含有細胞溶解物に対して試験し、実験室条件下での
プローブとしての有用性を立証した。

【００４３】ｒＲＮＡのポリヌクレオチド配列は、ジデオキシヌクレオチド配列決定法を用
いて、最も好適に決定する。この方法において、長さ約１０−１００塩基で、そ
してリボソームサブユニットいずれか由来のｒＲＮＡの保存領域に相補的なオリ
ゴヌクレオチドプライマーを、逆転写酵素によって、伸長することが可能である
。生じたＤＮＡ伸長産物をその後、化学分解またはジデオキシヌクレオチド配列
決定いずれかによって、配列決定することが可能である（Ｌａｎｅら，Ｐｒｏ
ｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８２：６９５５（１９８５
））。別の好ましい方法にしたがって、ｒＲＮＡをコードするゲノム配列もまた
、決定可能である。

【００４４】ｒＲＮＡ分子の二次構造および機能の強い相互依存が公知である。実際、ｒＲ
ＮＡの一次配列における進化上の変化は、分子の二次構造が維持されるであろう
ように、有効に制限されている。例えば、ｒＲＮＡ分子のらせんの一方の側で塩
基が変化すると、相補性を保存するため、らせんの逆側で、相殺する変化が行わ
れるであろう（これは共変異（ｃｏｖａｒｉａｎｃｅ）と呼ばれる）。この関係
によって、２つの非常に異なるｒＲＮＡ配列を、保存された一次配列および二次
構造の保存要素に基づいて、「並列させる」ことが可能になる。配列が並列され
たら、ｒＲＮＡ配列の保存および可変領域を同定することが可能になる。

【００４５】ｒＲＮＡの可変領域は、公表されたｒＲＮＡ配列および本発明の開発中に決定
した配列を用いた比較解析によって同定した。商業的に入手可能なソフトウェア
を用いても、または本明細書に開示する目的に適応させたものを用いてもよい。
ｒＲＮＡの可変領域（例えば、最低１０ヌクレオチドに広がる）の各々での配列
進化は、大部分、分散性であり、そして収束性でないため、標的生物およびその
系統的に最近である類縁種（ｒｅｌａｔｉｖｅ）の間で異なるいくつかのｒＲＮ
Ａ配列に基づいて、自信を持ってプローブを設計することが可能である。実際、
我々は、単一試料において、多くの標的生物およびその系統的に最近である類縁
種のｒＲＮＡ配列間の十分な変動を検出し、以下に示す方法にしたがって使用可
能なプローブの設計を可能にした。

【００４６】プローブ選択指針本発明にしたがった、望ましい特性を有するプローブを設計するのに、以下の
一般的な指針が使用可能である。ハイブリダイゼーション反応の度合いおよび特
異性に影響を与える多くの要因の１以上を操作すると、特定のプローブの感受性
および特異性を決定することが可能である。これは、プローブが、その標的ポリ
ヌクレオチド配列の全長に渡って、完全に相補的であってもなくても、あてはま
る。本発明と関連して有用なプローブを調製するための指針を以下に記載する。

【００４７】まず、プローブ：標的核酸ハイブリッドの安定性がアッセイ条件に適合するよ
うに選択しなければならない。これは、長いＡおよびＴリッチ配列を避け、ハイ
ブリッドをＧ：Ｃ塩基対で終結させ、そしてＴｍが、アッセイに使用しようとす
る標準的条件に適切であろうような方式で、プローブを設計することによって、
達成可能である。プローブのヌクレオチド配列は、長さ並びに％Ｇおよび％Ｃが
、最終アッセイが行われるであろう温度より、約２−１０℃高いＴｍを有するプ
ローブを生じるように、選択しなければならない。Ｇ：Ｃ塩基対は、Ａ：Ｔ塩基
対と比較した際、より高い熱安定性を示すため、プローブの塩基組成は重要であ
る。したがって、高Ｇ：Ｃ含量を有する相補核酸を伴うハイブリッドは、より低
いＧ：Ｃ含量を有するハイブリッドと比較した際、より高い温度で安定であろう
。

【００４８】ヌクレオチド間のホスホジエステル連結によって提供されるであろうような、
陰性荷電主鎖を有するプローブを設計する際、ハイブリダイゼーション反応が行
われるであろう、イオン強度および温度条件もまた、考慮しなければならない。
ハイブリダイゼーション速度は、反応混合物のイオン強度が増加するにつれ、増
加することが、一般的に知られる。同様に、ハイブリッドの熱安定性は、イオン
強度の増加と共に増加する。逆に、ホルムアミド、尿素、ＤＭＳＯおよびアルコ
ールなどの水素結合破壊試薬は、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシー
を増加させる。この種の試薬による水素結合の不安定化は、Ｔｍを非常に減少さ
せることが可能である。一般的に、長さ約１０−５０塩基の合成オリゴヌクレオ
チドプローブの最適ハイブリダイゼーションは、既定の二重鎖の融解温度のおよ
そ５℃下で起こる。最適温度以下で行われるハイブリダイゼーション反応は、ミ
スマッチ塩基配列がハイブリダイズすることを可能にする可能性があり、そして
プローブ特異性の減少を生じる可能性がある。

【００４９】第二に、プローブがその標的ポリヌクレオチドに結合する位は、プローブ：非
標的ポリヌクレオチド間に形成されるハイブリッドの安定性を最小にするよう選
択しなければならない。これは、非標的生物のポリヌクレオチドとの完全な相補
性の長さを最小限にし、非標的配列と相同なＧ：Ｃリッチ領域を回避し、そして
可能な限り多くの不安定化ミスマッチに渡るよう、プローブを配置することによ
って、達成可能である。プローブ配列が、特定の種類の生物のみを検出するのに
有用であるかどうかは、主に、プローブ：標的ハイブリッドおよびプローブ：非
標的ハイブリッド間の熱安定性相違に依存する。非常に特異的なプローブを産生
するため、Ｔｍの相違は、可能な限り大きくなければならない。

【００５０】標的核酸配列の長さおよび対応するプローブ配列の長さもまた、プローブを設
計する際、考慮すべき重要な要因である。完全に相補的でないポリヌクレオチド
が互いにハイブリダイズすることは可能であるが、完全に相同な塩基配列の最長
の範囲が、通常、ハイブリッド安定性の主な決定要因であろう。

【００５１】第三に、プローブのハイブリダイゼーションに阻害性である強い内部構造を形
成することが知られるｒＲＮＡの領域は、標的としてより好ましくない。広範囲
の自己相補性を有するプローブもまた、避けなければならない。上述のように、
ハイブリダイゼーションは、水素結合二本鎖構造を形成する、相補核酸の２つの
一本鎖の会合である。２つの鎖の１つが、完全にまたは部分的に二本鎖を形成し
ている場合、これは、新たなハイブリッドの形成に、より参加しにくいであろう
。重要なことに、すべてのｒＲＮＡ分子は、非常に安定な分子内ハイブリッドを
形成する。

【００５２】プローブおよびその標的の間のハイブリダイゼーションの速度および度合いは
、目的の配列のかなりの部分が一本鎖であるように、プローブを設計することに
よって、実質的に増加させることが可能である。検出しようとする標的核酸が、
ｒＲＮＡをコードするゲノム配列である場合、標的は、当然、二本鎖型で存在す
るであろう。これはまた、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）の産物にもあてはま
る。これらの二本鎖標的は、当然、プローブとのハイブリダイゼーションに阻害
性である。最後に、十分な自己相補性があれば、単一のプローブ分子内でまたは
異なるプローブ分子間で、望ましくない分子内および分子間ハイブリッドが形成
される可能性がある。したがって、プローブ配列内の広範囲の自己相補性は、避
けなければならない。

【００５３】好ましくは、以下に記載する方法を行うのに有用なプローブは、高ストリンジ
ェンシーの条件下で、ハイブリダイズするであろう。これらの条件下では、非常
に相補的な核酸ハイブリッド（すなわち、一連の近接する塩基の、１７塩基のう
ち少なくとも１４が相補的であるもの）のみが、形成されるであろう。十分な度
合いの相補性が存在しなければ、ハイブリッドは形成されないであろう。したが
って、アッセイ条件のストリンジェンシーは、ハイブリッドを形成する２つの核
酸鎖の間に必要な相補性の量を決定する。ストリンジェンシーは、標的および非
標的核酸で形成されるハイブリッド間の安定性の相違を最大にするよう選択する
。以下に示す実施例では、典型的な高ストリンジェンシー条件を使用する。

【００５４】異なる長さおよび塩基組成のオリゴヌクレオチドプローブを、Ｃ．アルビカン
スおよびＣ．デュブリニエンシス検出に用いることが可能であるが、本発明の好
ましいプローブは、１００ヌクレオチドまで、そしてより好ましくは、６０ヌク
レオチドまでの長さを有する。本発明のオリゴヌクレオチドの好ましい長さの範
囲は、長さ１０から１００塩基、より好ましくは、長さ１５および６０塩基の間
、またはさらにより好ましくは、長さ１５および５０塩基の間である。好ましい
プローブは、標的核酸に対して、以下に記載する実施例に使用するような、高ス
トリンジェンシー条件下でのハイブリダイゼーションを可能にするのに十分に相
同である。しかし、以下に記載する特定のプローブ配列はまた、核酸クローニン
グベクター中に提供可能であり、そしてなお、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュ
ブリニエンシスを検出するのに使用可能である。

【００５５】オリゴヌクレオチドの化学構造本発明のすべてのオリゴヌクレオチドは、その性能を増進するため、化学基で
修飾可能である。したがって、「オリゴヌクレオチドプローブ」または「ヘルパ
ーオリゴヌクレオチド」または単に「オリゴヌクレオチド」は、天然ヌクレオチ
ドのポリマーと共に、少なくとも１つのヌクレオチド類似体を含むポリマーも含
むと理解すべきである。

【００５６】ホスホロチオエートまたはメチルホスホネート基を有するものなどの主鎖修飾
オリゴヌクレオチドが、本発明のオリゴヌクレオチドと組み合わせて使用可能な
類似体の例である。これらの修飾は、オリゴヌクレオチドに、特定のポリメラー
ゼまたはヌクレアーゼ酵素の核酸溶解活性に対する耐性を与える。本明細書に開
示するオリゴヌクレオチドの構造に取り込み可能な他の類似体には、ペプチド核
酸、または「ＰＮＡ」が含まれる。ＰＮＡは、ホスホジエステル主鎖でなくペプ
チド主鎖に連結したリガンドを含む化合物である。代表的なリガンドには、適切
なリンカーを通じて、ペプチド主鎖に付着した、４つの主な天然存在ＤＮＡ塩基
（すなわち、チミン、シトシン、アデニンまたはグアニン）または他の天然存在
核酸塩基（例えば、イノシン、ウラシル、５−メチルシトシンまたはチオウラシ
ル）または人工的塩基（例えば、ブロモチミン、アザアデニン類またはアザグア
ニン類など）のいずれかが含まれる。ＰＮＡは、相補ｓｓＤＮＡおよびＲＮＡ鎖
に結合可能である。ＰＮＡを作成しそして用いるための方法は、米国特許第５，
５３９，０８２号に開示される。本明細書に記載する配列を有するオリゴヌクレ
オチドを作成するのに使用可能な修飾の別の種類は、プライマーのハイブリダイ
ゼーションまたは伸長に干渉しない、核酸鎖中のヌクレオチド間に取り込まれた
、非ヌクレオチドリンカーの使用を伴う（例えば、本明細書に援用される、Ａｒ
ｎｏｌｄら、「ヌクレオチドプローブのための非ヌクレオチド連結試薬」、米国
特許第６，０３１，０９１号）。

【００５７】ｒＲＮＡまたはｒＤＮＡを検出する、核酸に基づく方法オリゴヌクレオチドプローブを含む組成物は、単独で、あるいは１以上のヘル
パーオリゴヌクレオチドと組み合わせて、ハイブリダイゼーションアッセイにお
いて、Ｃ．アルビカンスまたはＣ．デュブリニエンシスいずれかのｒＲＮＡまた
はｒＤＮＡを検出するのに使用可能である。本発明を実施するのに使用可能な明
示したオリゴヌクレオチドは、シアノエチルホスホラミダイト前駆体を用いた自
動化固相化学合成（Ｂａｒｏｎｅら，ＮｕｃｌＡｃｉｄｓＲｅｓ１２：
４０５１（１９８４））を含む、いくつかの公知の方法のいずれによっても、産
生可能である。合成オリゴヌクレオチドを調製するための他の公知の方法もまた
、使用可能である。

【００５８】標識プローブが望ましい場合、本質的に、特異的な核酸ハイブリダイゼーショ
ンを監視するのに使用可能な、いかなる標識および検出系を、本明細書に開示す
るプローブと組み合わせて用いてもよい。有用な標識のコレクションに含まれる
のは：同位体標識、酵素、ハプテン、連結オリゴヌクレオチド、化学発光分子お
よび電気化学的検出法になじみやすい酸化還元活性部分である。標識オリゴヌク
レオチドを産生するのに使用可能な標準的同位体標識には、³Ｈ、³⁵Ｓ、³²Ｐ、¹ ²⁵ Ｉ、⁵⁷Ｃｏおよび¹⁴Ｃが含まれる。放射標識プローブを用いる場合、ハイブリ
ッドは、オートラジオグラフィー、シンチレーション計測またはガンマ計測によ
って、検出可能である。

【００５９】非同位体成分もまた、オリゴヌクレオチドプローブを標識するのに使用可能で
ある。これらの非同位体標識は、オリゴヌクレオチドプローブの内部に、または
末端に配置可能である。修飾ヌクレオチドは、プローブ合成中または合成後に行
われる、プローブの修飾を用いて、例えば非ヌクレオチドリンカー基の使用によ
って、酵素的または化学的に取り込み可能である。非同位体標識には、蛍光分子
、化学発光分子、酵素、補因子、酵素基質、ハプテンまたは他のリガンドが含ま
れる。

【００６０】実際、本発明にしたがって、標識オリゴヌクレオチドを調製するのに、いかな
る数の異なる非同位体標識を用いてもよい。好ましい化学発光分子には、Ａｒｎ
ｏｌｄらによって、米国特許第５，２８３，１７４号に開示される、均質保護ア
ッセイと関連して使用するための種類の、そしてＷｏｏｄｈｅａｄらによって、
米国特許第５，６５６，２０７号に開示される、単一反応中で、多数の標的を定
量化するアッセイと関連して使用するための種類の、アクリジニウムエステルが
含まれる。これらの特許文書に含まれる開示は、本明細書に援用される。米国特
許第５，９９８，１３５号は、蛍光測定を用いて、プローブ上に配置されたラン
タニド金属標識からの蛍光発光を検出する、本発明のプローブを標識しそして検
出するのに使用可能な、さらに別の方法を開示し、ここで、これらの標識からの
発光は、エネルギー移動パートナーにごく近接した際、増進される。好ましい電
気化学的標識および検出アプローチは、米国特許第５，５９１，５７８号および
第５，７７０，３６９号、並びに公開国際特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ９８／１２０
８２号に開示され、これらの開示は、本明細書に援用される。本発明において、
電気化学標識として有用な酸化還元活性部分は、Ｃｄ、Ｍｇ、Ｃｕ、Ｃｏ、Ｐｄ
、Ｚｎ、ＦｅおよびＲｕなどの遷移金属を含む。

【００６１】一般の当業者は、本発明のプローブを用い、標識プローブまたは非標識プロー
ブいずれかを用いて、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスの核酸を
検出する代替法を行うことが可能であると認識するであろう。例えば、標識プロ
ーブの使用に頼らないハイブリダイゼーションアッセイ法が米国特許第５，９４
５，２８６号に開示され、該特許は、ペプチド核酸（ＰＮＡ）で作成された非標
識プローブの固定、および二本鎖ＰＮＡプローブ／標的核酸二重鎖に結合可能な
検出可能に標識された挿入（ｉｎｔｅｒｃａｌａｔｉｎｇ）分子を記載する。こ
れらの方法と共に、公開国際特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ９８／１２０８２号、表題
「再構成エネルギーを用いた解析物の検出」、公開国際特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ
９８／１２４３０号、表題「解析物検出のための電気的方法」、および公開国際
特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ９７／２００１４号、表題「伝導性オリゴマーを介して
核酸に連結された電極」に開示されるものなどの特定の電気化学的検出法におい
て、オリゴヌクレオチドプローブは、検出可能標識を宿する必要がない。

【００６２】オリゴヌクレオチドの合成および精製後の最終産物の許容性は、いくつかの方
法のいずれによっても、確認可能である。第一に、ポリアクリルアミドゲル電気
泳動を用い、標準的実験室法（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，Ｓａｍｂｒｏｏｋら監修，Ｃｏｌｄ
ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂＰｕｂｌ．，１１．５１（１９８９）
を参照されたい）にしたがって、オリゴヌクレオチドの大きさおよび純度を決定
することが可能である。あるいは、この同じ目的に、高圧液体クロマトグラフィ
ー（「ＨＰＬＣ」）法が使用可能である。

【００６３】以下に記載する方法において、標識オリゴヌクレオチドプローブおよび標的核
酸間のハイブリダイゼーションは、Ｈｏｇａｎらによって、米国特許第５，０３
０，５５７号、表題「核酸ハイブリダイゼーションを増進するための手段および
方法」に開示される方法にしたがって、非標識「ヘルパーオリゴヌクレオチド」
の使用を通じて、増進可能である。上述のように、ヘルパーオリゴヌクレオチド
は、アッセイプローブが結合する領域以外の標的核酸領域に結合する。この結合
は、一本鎖核酸のターゲッティングされる領域上に新たな二次および三次構造を
課し、そしてプローブ結合速度を加速する。本発明の標識オリゴヌクレオチドプ
ローブと組み合わせて使用可能であるヘルパーオリゴヌクレオチドは、好ましく
は、長さ１５から１００ヌクレオチドであり、そして配列番号６またはその相補
体の配列内に含まれる、少なくとも１５の近接するヌクレオチド、より好ましく
は、少なくとも２５の近接するヌクレオチド、またはさらにより好ましくは、少
なくとも３４の近接するヌクレオチドを含む配列を有する。

【００６４】一般の当業者は、プローブ：標的ハイブリッドの熱安定性に影響を与える要因
はまた、プローブ特異性に影響を与える可能性もあることを認識するであろう。
したがって、プローブ：標的ハイブリッドの融解温度（Ｔｍ）を含む融解プロフ
ィールは、各プローブ：標的の組み合わせに関し、実験的に決定しなければなら
ない。この決定を行うのに好ましい方法は、Ａｒｎｏｌｄらによって、米国特許
第５，２８３，１７４号、表題「均質保護アッセイ」に記載される。

【００６５】プローブ：標的ハイブリッドのＴｍを測定するための１つのアプローチは、ハ
イブリダイゼーション保護アッセイを行うことを伴う。このアッセイの方法にし
たがって、ラウリル硫酸リチウムを含むコハク酸リチウム緩衝溶液中、標的過剰
の条件下で、プローブ：標的ハイブリッドを形成する。「あらかじめ形成された
」ハイブリッドのアリコットを、ハイブリダイゼーション緩衝液で希釈し、そし
て予期されるＴｍ（典型的には５５℃）以下で始まり、そして２−５度増分で増
加する、多様な温度で、５分間インキュベーションする。その後、この溶液を、
穏やかなアルカリホウ酸緩衝液で希釈し、そしてより低い温度（例えば５０℃）
で１０分間インキュベーションする。一本鎖プローブに連結したアクリジニウム
エステル（ＡＥ）は、これらの条件下で加水分解されるであろうが、ハイブリダ
イズプローブに連結したアクリジニウムエステルは、比較的「保護される」であ
ろう。この方法は、ハイブリダイゼーション保護アッセイ（「ＨＰＡ」）と称さ
れる。残存する化学発光の量は、ハイブリッドの量に比例し、そして過酸化水素
に続き、アルカリの添加によって、発光測定装置中で測定する。データは、温度
に対する最大シグナル（通常、最低温度からのもの）のパーセントとしてプロッ
トする。Ｔｍは、最大シグナルの５０％が残存する点と定義される。

【００６６】別のアプローチにおいて、同位体標識したプローブを用いて、プローブ：標的
ハイブリッドのＴｍを決定することが可能である。すべての場合で、既定のハイ
ブリッドのＴｍは、ハイブリダイゼーション溶液に含まれる塩、界面活性剤およ
び他の溶質の濃度に応じて異なるであろう。これらの要因はすべて、熱変性中の
相対ハイブリッド安定性に影響を与える（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌＳａｍｂｒｏｏｋら監修，Ｃ
ｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂＰｕｂｌ．，９．５１（１９８
９））。

【００６７】プローブがその標的にハイブリダイズする速度は、プローブ領域における標的
二次構造の熱安定性の測定値であり、そしてＣ₀ｔ_1/2測定値を用いて、決定可能
である。ハイブリダイゼーション速度のこれらの動力学的測定値は、（１リット
ルあたりのヌクレオチドのモル数）ｘ（秒）の単位を有する。より簡単に表現す
ると、Ｃ₀ｔ_1/2値は、プローブ濃度にその濃度でのハイブリダイゼーションの半
減期を乗じたものである。この値は、多様な量のプローブを、一定の量の標的核
酸に、固定した時間、ハイブリダイズさせることによって、決定可能である。例
えば、０．０５ｐｍｏｌの標的を、０．０１２、０．０２５、０．０５、０．１
および０．２ｐｍｏｌのプローブと３０分間インキュベーションする。Ｃ₀ｔ_1/2 値はまた、標的過剰の条件下で、標的およびプローブをハイブリダイズさせ、そ
してその後、時間に渡る二重鎖形成の増加を測定することによっても、決定可能
である。存在するハイブリッドの量は、上述のＨＰＡ法を用いて、または方法に
放射標識プローブを用いた場合、シンチレーション計測によって、測定可能であ
る。その後、ＡＥ標識プローブを用いた場合、プローブ濃度（１リットルあたり
のヌクレオチドのモル数）に対して、最高プローブ濃度からの最大相対光単位（
「ＲＬＵ」）のパーセントの対数として、測定シグナルをプロットする。Ｃ₀ｔ₁ _/2 は、最大ハイブリダイゼーションの５０％に対応する濃度に秒でのハイブリダ
イゼーション時間を乗じて、グラフ的に決定する。これらの値は、９ｘ１０^-6か
ら９ｘ１０^-5の範囲であり、好ましい値は、３．５ｘ１０^-5未満である。同様の
値は、放射能を測定し、そして最大の度合いに対して、既定の時点での％ハイブ
リダイゼーションをプロットすることによって、得ることが可能である。

【００６８】生物学的試料が、Ｃ．アルビカンスまたはＣ．デュブリニエンシスの存在を示
すであろうｒＲＮＡまたはｒＤＮＡを含むかどうか決定する好ましい方法におい
て、超音波破壊によって、例えばＭｕｒｐｈｙらにより米国特許第５，３７４，
５２２号に開示される方法にしたがって、細胞から核酸を遊離させることが可能
である。細胞を破壊する他の既知の方法には、酵素、浸透圧ショック、化学薬品
処理、およびガラスビーズでのボルテックスの使用が含まれる。本明細書に開示
されるハイブリダイゼーション法に供することが可能な、核酸を微生物から遊離
させるのに適した他の方法は、Ｃｌａｒｋらによって米国特許第５，８３７，４
５２号に、そしてＫａｃｉａｎらによって米国特許第５，３６４，７６３号に開
示されている。ｒＲＮＡの遊離に続き、またはそれと同時に、促進剤の存在下で
、標識プローブを添加し、そして有意なハイブリダイゼーション反応を達成する
のに必要な期間、最適ハイブリダイゼーション温度でインキュベーションするこ
とが可能である。

【００６９】配列ＣＧＧＣＣＡＴＡＡＡＧＡＣＣＴＡＣＣＡＡＧＣＧ（配列番号１）を有す
るオリゴヌクレオチドは、長さ、Ｔｍおよびヌクレオチド配列の規準によって、
性質決定され、そしてＣ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスのｒＲＮ
Ａに特異的であることが見出された。本明細書において、ＣａｌＢ２２０８と称
されるこのポリヌクレオチドは、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシ
スの２８ＳｒＲＮＡに見られる特有の部分に相補的である。該プローブは、長
さ２３塩基であり、６１．４℃のＴｍを有し、そしてＣ．アルビカンスおよびＣ
．デュブリニエンシスのｒＲＮＡに特異的にハイブリダイズする。

【００７０】ＣａｌＢ２２０８プローブの配列内に完全に含まれる、配列ＣＧＧＣＣＡＴＡ
ＡＡＧＡＣＣＴＡＣ（配列番号４）を有する第二のオリゴヌクレオチドもまた、
性質決定した。長さ１７塩基である、この後者のプローブは、ＣａｌＢ２２０８
プローブのものより低いＴｍを有し、そしてしたがって別のハイブリダイゼーシ
ョン温度条件を用いて、ハイブリダイゼーション法が行われるのを許容した。Ｃ
ａｌＢ２２０８プローブ同様、ＣａｌＢ２２１４プローブもまた、Ｃ．アルビカ
ンスのｒＲＮＡに結合するが、特定の他のカンジダ種には結合しなかった。

【００７１】ＣａｌＢ２２０８およびＣａｌＢ２２１４プローブはどちらも：（１）高スト
リンジェンシーハイブリダイゼーション条件下で標的核酸にハイブリダイズし、
（２）１００ヌクレオチド塩基までの長さを有し、そして（３）配列番号６また
はその相補体に同定される標的領域内に属する、少なくとも１５の近接するヌク
レオチドを含む、オリゴヌクレオチドの例である。これらの特性を有する他のオ
リゴヌクレオチドが、ハイブリダイゼーションアッセイ検出プローブとしての使
用に意図され、そして本発明に含まれる。

【００７２】同様に、配列番号２、配列番号３および配列番号５の配列を有するオリゴヌク
レオチドを、有用なヘルパーオリゴヌクレオチドの例として、本明細書に開示す
る。本明細書の実施例で使用するヘルパーオリゴヌクレオチド同様、本発明に含
まれる、他のヘルパーオリゴヌクレオチドもまた、長さ１００ヌクレオチドまで
の配列を有し、そしてさらに、配列番号６またはその相補体に同定される標的領
域内に含まれる、少なくとも１５、またはより好ましくは、少なくとも２５、ま
たはさらにより好ましくは、少なくとも３４の近接するヌクレオチドを有する。

【００７３】以下に示すように、ＣａｌＢ２２０８プローブは、ヘルパーオリゴヌクレオチ
ドの使用によって促進される方式で、Ｃ．アルビカンスｒＲＮＡにハイブリダイ
ズした。この測定を行うのに用いた方法にしたがって、５’端で放射標識した一
本鎖プローブオリゴヌクレオチドを、ヘルパーオリゴヌクレオチドの存在下また
は非存在下で、Ｃ．アルビカンス由来のｒＲＮＡと接触させた。ｒＲＮＡとハイ
ブリダイズし、二本鎖ハイブリッドを形成しているプローブ分子は、ヒドロキシ
アパタイト捕捉によって、一本鎖プローブ分子から分離した。二本鎖ハイブリッ
ドは、ヒドロキシアパタイトに結合させ、そしてシンチレーション計測によって
検出し、そして定量化した。その後、ハイブリダイゼーションの度合いを、割合
として計算した。プローブ：標的ハイブリッドのＴｍは、好適に、１以上のヘル
パーオリゴヌクレオチドの存在下で、有意に増加した。

【００７４】以下の実施例は、ＣａｌＢ２２０８プローブが、Ｃ．アルビカンス由来のｒＲ
ＮＡにハイブリダイズし、そしてこの相互作用が、ハイブリダイゼーション混合
物中にヘルパーオリゴヌクレオチドを含むことによって促進されたことを立証す
るのに用いた方法を記載する。

【００７５】

【実施例】

実施例１プローブ：標的ハイブリッドのＴｍ決定プローブ：標的およびヘルパー：標的ハイブリッドのＴｍ値は、配列番号１の
配列を有する末端標識ＣａｌＢ２２０８プローブ、並びに群：（Ａ）ＣａｌＢ２
２３３および（Ｂ）ＣａｌＢ２１７１より選択される末端標識ヘルパーオリゴヌ
クレオチドを用いて、決定した。ＣａｌＢ２２３３の配列は、ＣＣＡＧＴＴＣＴ
ＡＡＧＴＴＧＡＴＣＧＴＴＡＡＡＣＧＴＧＣＣＣＣＧＧＡ（配列番号２）であり
、そしてＣａｌＢ２１７１の配列は、ＴＧＴＣＴＡＣＡＧＣＡＧＣＡＴＣＣＡＣ
ＣＡＧＣＡＧＴＣＣＧＴＣＧＴＧ（配列番号３）であった。ヘルパーオリゴヌク
レオチド、ＡおよびＢは、プローブにすぐ隣接した分子領域でＣ．アルビカンス
ｒＲＮＡに結合するよう選択した。プローブおよびヘルパーオリゴヌクレオチド
は、本質的に、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（Ｓａｍｂｒｏｏｋら監修，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨ
ａｒｂｏｒＬａｂＰｕｂｌ．１０．５９（１９８９））に記載されるよう
に、リン酸ドナーとして［γ−³²Ｐ］ＡＴＰを、そしてリン酸移動反応を触媒す
るＴ４ポリヌクレオチドキナーゼを用いて、５’端標識した。末端標識ヘルパー
およびプローブオリゴヌクレオチドは、別個に、Ｃ．アルビカンス由来の精製ｒ
ＲＮＡと合わせ、標的過剰の条件を提供した。プローブおよびヘルパーオリゴヌ
クレオチド両方を含む試験では、プローブのみを末端標識し、そして各ヘルパー
オリゴヌクレオチドは、標的として働くＣ．アルビカンスｒＲＮＡより、少なく
とも１０倍モル過剰で存在した。すべての混合物は、０．４８Ｍリン酸ナトリウ
ム緩衝液、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム、１ｍＭＥＤＴＡおよび１ｍＭ
ＥＧＴＡを含む溶液中で、完全にハイブリダイズさせた。陰性対照として、プロ
ーブおよび／またはヘルパーオリゴヌクレオチドを、核酸標的の非存在下で、ハ
イブリダイズさせた。ハイブリダイゼーション過程が終了した際、混合物を希釈
し、そしてヒドロキシアパタイトカラムに通過させ、二本鎖ハイブリッドから一
本鎖核酸を分離した。カラムフロースルー中の放射能の量は、一本鎖プローブに
相当し、そしてシンチレーション計測によって測定した。ヒドロキシアパタイト
に結合した放射能の量は、シンチレーション計測によって、別個に測定した。ハ
イブリッド形成の度合いは、ヒドロキシアパタイトに結合したプローブの量（ｃ
ｐｍで測定）をカラムに適用したプローブ総量（ｃｐｍ）で割ることによって、
計算した。これらの方法の結果を表１に示す。

【００７６】表１標的ｒＲＮＡとＣａｌＢ２２０８プローブのハイブリダイゼーション

【００７７】

【表１】

【００７８】本方法の結果は、末端標識プローブが、Ｃ．アルビカンス由来のｒＲＮＡにハ
イブリダイズすることを確認し、そしてこの相互作用は、ヘルパーオリゴヌクレ
オチドによって、好適に促進されることを示した。両方のヘルパーオリゴヌクレ
オチドをハイブリダイゼーション反応に含むと、プローブ：標的複合体のＴｍが
、６１．４から６６．２℃に増加可能であることが、特に観察された。実際、ハ
イブリダイゼーション反応の度合いは、ＣａｌＢ２２０８プローブを、３’およ
び５’ヘルパーオリゴヌクレオチドと組み合わせて用いた場合、最大であった。
ハイブリダイゼーションアッセイにおいて、プローブを、単独で、または１以上
のヘルパーオリゴヌクレオチドと組み合わせて用いてもよいが、プローブを性質
決定する、以下に記載する実験は、配列番号２および配列番号３の配列を有する
ヘルパーオリゴヌクレオチドと組み合わせたプローブを用いて行った。本明細書
に記載する方法に有用なプローブおよびヘルパーオリゴヌクレオチドの組み合わ
せは、好ましくは、上述の条件下で、約６０−６８℃の範囲のプローブ：標的Ｔ
ｍ値を有する。

【００７９】プローブ特異性は、特異性パネル由来のｒＲＮＡに対する陽性ハイブリダイゼ
ーションを立証することによって、確認した。本方法の標的核酸の供給源として
用いた生物のコレクションは、生物の分類学上の代表的な一面および最近近縁種
群に相当した。以下の方法において、ＡＥ標識ハイブリダイゼーションプローブ
を用いた定量的結果を、陽性対照プローブを用いて、各試料に存在する真菌ｒＲ
ＮＡの量に比較した。広い範囲の真菌生物由来のｒＲＮＡにハイブリダイズする
、この陽性対照プローブは、ＣａｌＢ２２０８プローブにハイブリダイズしない
、試料中のｒＲＮＡの存在を確認するのに、特に有用であった。こうした場合、
陽性対照プローブは、ハイブリダイズ可能なｒＲＮＡの存在の確認を提供し、そ
してしたがって、陰性結果を立証した。

【００８０】以下の実施例は、ＣａｌＢ２２０８プローブが、Ｃ．アルビカンスと共にＣ．
デュブリニエンシス由来のｒＲＮＡにハイブリダイズすることを立証するのに用
いた方法を記載する。

【００８１】実施例２プローブ特異性の立証真菌溶解物または精製ＲＮＡを、配列番号１の配列を有するプローブと共に、
配列番号２および配列番号３の配列を有するヘルパーオリゴヌクレオチドのハイ
ブリダイゼーションの核酸標的として用いた。本方法において、ｒＲＮＡの供給
源として使用した生物は、型決定された臨床的単離体であるか、またはアメリカ
ン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）より得た。すべての試料は
、Ｇｅｎ−ＰｒｏｂｅＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄのマスターログ番号により、
表２に同定される。大部分の単離体はＡＴＣＣより得た。各ｒＲＮＡの平行試料
を、配列ＧＴＣＴＧＧＡＣＣＴＧＧＴＧＡＧＴＴＴＣＣＣ（配列番号８）を有す
る標識陽性対照プローブ、並びに配列ＣＧＴＧＴＴＧＡＧＴＣＡＡＡＴＴＡＡＧ
ＣＣＧＣ（配列番号９）およびＧＣＴＣＴＣＡＡＴＣＴＧＴＣＡＡＴＣＣＴＴＡ
ＴＴＧＴ（配列番号１０）を有する非標識メトキシヘルパーオリゴヌクレオチド
とハイブリダイズさせた。ハイブリダイゼーション溶液は、０．６ＭＬｉＣｌ
、１％ラウリル硫酸リチウム、６０ｍＭコハク酸リチウム、並びに各１０ｍＭの
ＥＤＴＡおよびＥＧＴＡ、ｐＨ５．５を含んだ。ＣａｌＢ２２０８プローブおよ
び陽性対照プローブはどちらも、米国特許第５，１８５，４３９号、表題「アク
リジニウムエステル標識およびヌクレオチドプローブの精製」に開示される方法
に本質的にしたがって、アクリジニウムエステルで標識した。ハイブリダイゼー
ション反応が終了した際、非ハイブリダイズプローブに連結したアクリジニウム
エステルは、穏やかなアルカリ条件下で、非化学発光性となり、一方、ハイブリ
ダイズプローブに付着したアクリジニウムエステルは、不活性化に耐性のままで
あった。加水分解およびアクリジニウムエステルで標識されたハイブリダイズプ
ローブの検出の条件は、Ａｒｎｏｌｄらによって、Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．３
５：１５８８（１９８９）に記載される。これらの方法におけるプローブハイブ
リダイゼーションの大きさは、一般の当業者によく知られる方法を用いて、発光
測定によって、定量化した。ＣａｌＢ２２０８プローブシグナルの大きさをその
後、全真菌陽性対照シグナルの大きさで割り、研究結果を定量的に規準化した。
陽性対照シグナルの約１０％より大きいＣａｌＢ２２０８プローブシグナルを有
する試料は、ヘルパーを伴うＣａｌＢ２２０８プローブの特異的ハイブリダイゼ
ーションを示し、一方、より低い値は、陰性結果を示した。アッセイ結果を表２
に示す。

【００８２】表２ＣａｌＢ２２０８プローブおよびカンジダ種コレクション由来のｒＲＮＡ含有溶解物のハイブリダイゼーション

【００８３】

【表２】

【００８４】^* 「ＧＰ＃」記入項は、Ｇｅｎ−ＰｒｏｂｅＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄのマス
ターログ番号を示す。表２に示す結果によって、Ｃ．アルビカンスｒＲＮＡに対して向けられるプロ
ーブが、他のカンジダ種のｒＲＮＡに実質的にハイブリダイズすることなく、Ｃ
．アルビカンス種の多くの株と共にＣ．デュブリニエンシス由来のｒＲＮＡ試料
に、効率的にハイブリダイズしたことが確認された。

【００８５】系統的に多様な生物の広い範囲に相当する種のコレクションと、標識プローブ
をハイブリダイズさせることによって、ＣａｌＢ２２０８プローブの特異性をさ
らに調べた。本方法では、ＡＥ標識プローブを、非カンジダ生物由来の個々のｒ
ＲＮＡ含有溶解物と別個に混合した。以下の方法で、陽性対照プローブを用いて
得た陽性ハイブリダイゼーション結果、およびＣａｌＢ２２０８プローブを用い
て得た陰性結果は、ＣａｌＢ２２０８プローブが、好適に、Ｃ．アルビカンスお
よびＣ．デュブリニエンシスに非常に特異的であることをさらに示した。

【００８６】以下の実施例は、このプローブの特異性を示すのに用いた、さらなる方法を記
載する。より詳細には、以下の方法は、ＣａｌＢ２２０８プローブが、非カンジ
ダ生物のコレクション由来の溶解物に含まれるｒＲＮＡとクロス・ハイブリダイ
ズしないことを示した。

【００８７】実施例３系統的に関連しない生物とのクロス・ハイブリダイゼーションの欠如先の実施例に記載する方法にしたがい、ＡＥ標識プローブおよびヘルパーオリ
ゴヌクレオチドを用いて、ハイブリダイゼーションアッセイを行った。非カンジ
ダ生物由来のｒＲＮＡ標的を使用したハイブリダイゼーション法で得た結果を表
３に示す。

【００８８】表３非カンジダ生物のコレクション由来のｒＲＮＡとＣａｌＢ２２０８プローブのハイブリダイゼーション

【００８９】

【表３】

【００９０】^* 「ＧＰ＃」記入項は、Ｇｅｎ−ＰｒｏｂｅＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄのマス
ターログ番号を示す。表３に示す結果によって、ＣａｌＢ２２０８プローブが、多くの真菌種由来の
ｒＲＮＡと実質的にハイブリダイズしないことが確認された。表３に具体的に提
示しないが、ＣａｌＢ２２０８プローブは、ヒト細胞株由来の核酸と実質的にハ
イブリダイズしなかった。表２に示した陽性ハイブリダイゼーション結果と合わ
せると、このプローブが、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスのｒ
ＲＮＡに非常に特異的であることが明らかであった。

【００９１】ＣａｌＢ２２０８プローブに加え、ＣａｌＢ２２０８プローブ配列内に完全に
含まれる配列を有する、より短いプローブもまた試験し、そしてこれが、他の微
生物のｒＲＮＡより、Ｃ．アルビカンスのｒＲＮＡに優先的にハイブリダイズす
るのに有用であることが示された。このより短いプローブはＣａｌＢ２２１４と
称され、そして配列ＣＧＧＣＣＡＴＡＡＡＧＡＣＣＴＡＣ（配列番号４）を有し
た。ＣａｌＢ２２１４プローブを、単独で、または上述のＣａｌＢ２２３３ヘル
パーオリゴヌクレオチドおよび／または配列ＣＡＡＧＣＧＴＧＴＣＴＡＣＡＧＣ
ＡＧＣＡＴＣＣＡＣ（配列番号５）を有するＣａｌＢ２１８７ヘルパーオリゴヌ
クレオチドと組み合わせて用いた。このプローブ組成物の最初の性質決定は、Ｔ
ｍ値の決定に焦点を合わせた。

【００９２】以下の実施例は、ＣａｌＢ２２１４プローブがＣ．アルビカンス由来のｒＲＮ
Ａにハイブリダイズし、そしてこの相互作用を特徴付けるＴｍが、ハイブリダイ
ゼーション混合物中にヘルパーオリゴヌクレオチドを含むことによって改変可能
であることを立証するのに用いた方法を記載する。

【００９３】実施例４プローブ：標的ハイブリッドのＴｍ決定ＣａｌＢ２２１４プローブ単独の、そしてＣａｌＢ２１８７およびＣａｌＢ２
２２３ヘルパーオリゴヌクレオチドの１つまたは両方と組み合わせたＴｍ値は、
ハイブリダイゼーション保護アッセイ法を用いて決定した。プローブ：標的ハイ
ブリッドは、まず、コハク酸リチウム緩衝溶液（０．１Ｍコハク酸リチウム緩衝
液、ｐＨ５．０、２ｍＭＥＤＴＡ、２ｍＭＥＧＴＡ、１０％（ｗ／ｖ）ラウ
リル硫酸リチウム）中で、標的過剰の条件下で形成した。プローブおよび／また
はヘルパーの結合標的は、Ｃ．アルビカンス由来のｒＲＮＡであった。ＣａｌＢ
２２１４プローブを１以上のヘルパーオリゴヌクレオチドと組み合わせて試験し
た例では、ＣａｌＢ２２１４プローブのみをアクリジニウムエステルで標識した
。その後、あらかじめ形成したハイブリッドのアリコットをハイブリダイゼーシ
ョン緩衝液で希釈し、５０−７２℃の範囲の多様な温度で５分間インキュベーシ
ョンした。この溶液を、穏やかなアルカリホウ酸緩衝液（０．１５Ｍ四ホウ酸
ナトリウム、ｐＨ７．６、５％（ｖ／ｖ）ＴＲＩＴＯＮＸ−１００）で希釈し
、５０℃で７分間インキュベーションし、そしてその後、氷槽に１分間移した。
遊離プローブに連結したアクリジニウムエステルは、これらの方法によって加水
分解された。ハイブリダイズしたプローブに連結したアクリジニウムエステルは
、これらの条件下で加水分解されず、そして本質的に本明細書に記載される方法
にしたがって、過酸化水素に続き、アルカリの添加後に、発光測定装置中で定量
化した。数のデータを、温度に対して、最大シグナルのパーセントとしてプロッ
トし、そしてＴｍは最大シグナルの５０％が残る点と定義した。これらの方法の
表形式の結果を、表４に示す。

【００９４】表４標的ｒＲＮＡとＣａｌＢ２２１４プローブのハイブリダイゼーション

【００９５】

【表４】

【００９６】表４に示す結果は、ＣａｌＢ２２１４プローブおよびその標的間の相互作用を
性質決定するＴｍが、期待どおりに、１以上のヘルパーオリゴヌクレオチドの存
在によって、増加可能であることを示した。

【００９７】以下の実施例は、ＣａｌＢ２２１４プローブが、Ｃ．アルビカンス由来のｒＲ
ＮＡに特異的にハイブリダイズするが、他のカンジダ種由来のｒＲＮＡにハイブ
リダイズしないことを示すのに用いた方法を記載する。

【００９８】実施例５プローブ特異性の立証実質的に実施例２に記載された方法を用いて、ＣａｌＢ２２１４プローブの特
異性を調べた。ハイブリダイゼーション反応は、ＣａｌＢ２２１４プローブを含
む試料では、５５℃のハイブリダイゼーション温度を、そして該方法で用いたす
べての真菌種のｒＲＮＡにハイブリダイズする陽性対照プローブでは、６０℃の
温度を用いて行った。ハイブリダイゼーション反応は、９０μｌのｒＲＮＡ含有
溶解物および１０μｌのＡＥ標識プローブ組成物を含み、５００，０００ＲＬＵ
のプローブおよび１Ａ₂₆₀単位のＣａｌＢ２２３３およびＣａｌＢ２１８７ヘ
ルパーオリゴヌクレオチドを含んだ。混合物を５５℃で１５分間インキュベーシ
ョンした後、遊離プローブに会合したＡＥ標識を加水分解させ、そして本明細書
に記載される方法にしたがって、ハイブリダイズしたプローブの量を、発光測定
によって測定した。これらの方法の定量的結果を表５に示す。

【００９９】表５ＣａｌＢ２２１４プローブおよびカンジダ種コレクション由来のｒＲＮＡ含有溶解物のハイブリダイゼーション

【０１００】

【表５】

【０１０１】^* 「ＧＰ＃」記入項は、Ｇｅｎ−ＰｒｏｂｅＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄのマス
ターログ番号を示す。表５に示す結果によって、ＣａｌＢ２２１４プローブが、表に示す他の種のｒ
ＲＮＡより、Ｃ．アルビカンスｒＲＮＡに、優先的にハイブリダイズすることが
確認された。期待どおりに、全真菌プローブのハイブリダイゼーションは、方法
に用いた溶解物のすべてが、ｒＲＮＡを含むことを示した。全真菌プローブ読み
取り値に対するＣａｌＢ２２１４プローブ読み取り値の規準化によって、各Ｃ．
アルビカンス溶解物が、全真菌値の５％より大きいＣａｌＢ２２１４ハイブリダ
イゼーション読み取り値を生じることが示された。対照的に、他のカンジダ種由
来の溶解物は、いずれも、全真菌値の０．７％より高いＣａｌＢ２２１４ハイブ
リダイゼーション読み取り値を生じなかった。これは、ＣａｌＢ２２１４プロー
ブが、Ｃ．アルビカンスｒＲＮＡに優先的にハイブリダイズするが、表に示す他
のカンジダ種のｒＲＮＡにはハイブリダイズしないことを示した。

【０１０２】配列番号４の配列を有するＡＥ標識プローブ、並びに配列番号２および配列番
号５の配列を有する非標識ヘルパーオリゴヌクレオチドを用いて、さらなる試験
を行い、ＣａｌＢ２２１４プローブがＣ．デュブリニエンシスｒＲＮＡにハイブ
リダイズする能力を確認した。この評価を行うのに用いた方法は、ハイブリダイ
ゼーション反応が、１．０ｘ１０⁷ＲＬＵのＣａｌＢ２２１４プローブまたは陽
性対照プローブを含んだことを除いて、表５に示したデータを得るのに用いた方
法と、実質的に同じであった。この方法の結果を表６に示す。

【０１０３】表６ＣａｌＢ２２１４プローブおよびカンジダ種コレクション由来のｒＲＮＡ含有溶解物のハイブリダイゼーション

【０１０４】

【表６】

【０１０５】^* 「ＧＰ＃」記入項は、Ｇｅｎ−ＰｒｏｂｅＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄのマス
ターログ番号を示す。期待どおりに、表６に示す結果は、ＣａｌＢ２２１４プローブが、Ｃ．アルビ
カンスおよびＣ．デュブリニエンシスのｒＲＮＡに陽性にハイブリダイズするが
、近い関連のカンジダ種のｒＲＮＡに実質的にハイブリダイズしないことを示し
た。ＣａｌＢ２２１４プローブ読み取り値を、このデータに関する全真菌プロー
ブ読み取り値に対して規準化すると、Ｃ．アルビカンスおよびＣ．デュブリニエ
ンシスのみが、全真菌値の５％より高いハイブリダイゼーション読み取り値を生
じた。したがって、ＣａｌＢ２２１４およびＣａｌＢ２２０８プローブは、Ｃ．
アルビカンスおよびＣ．デュブリニエンシスのｒＲＮＡに優先的にハイブリダイ
ズし、そして該ｒＲＮＡを検出するのに有用であった。

【０１０６】本明細書に記載する結果によって、新規プローブが、Ｃ．アルビカンスおよび
Ｃ．デュブリニエンシスを検出可能であることが確認された。さらに、該プロー
ブは、これらの生物を、系統的に近い関連にある生物と区別することが可能であ
った。

【０１０７】本発明は、いくつかの特定の実施例およびその態様に関して、記載してきてい
る。もちろん、前述の詳細な説明を再吟味すると、一般の当業者には、本発明の
いくつかの異なる態様が示唆されるであろう。したがって、本発明の真の範囲は
、付随する請求項を参照し、決定されるべきものである。

【配列表】

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｇ０１Ｎ 33/58 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (72)発明者ビー，ゲイリー・ジーアメリカ合衆国カリフォルニア州92083，ビスタ，ゴルフクレスト 1561 Ｆターム(参考） 2G045 AA25 AA28 CB21 DA12 DA13 DA14 FB02 FB07 FB08 FB13 4B024 AA13 CA01 CA09 CA11 HA12 4B063 QA01 QA18 QA19 QQ07 QQ42 QQ52 QR08 QR42 QR55 QR62 QS25 QS34 QS36 QX02

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】配列番号６またはその相補体内に含まれる少なくとも１７
の近接するヌクレオチドを含む配列を有するオリゴヌクレオチドであって、１０
０ヌクレオチドまでの長さを有する、前記オリゴヌクレオチド。
【請求項２】前記オリゴヌクレオチドの配列が、配列番号１またはその
相補体、配列番号２またはその相補体、配列番号３またはその相補体、配列番号
４またはその相補体、および配列番号５またはその相補体のいずれか１つを含む
、請求項１のオリゴヌクレオチド。
【請求項３】前記オリゴヌクレオチドの長さが、６０ヌクレオチドまで
である、請求項２のオリゴヌクレオチド。
【請求項４】前記オリゴヌクレオチドがＤＮＡを含む、請求項３のオリ
ゴヌクレオチド。
【請求項５】前記オリゴヌクレオチドの配列が、配列番号１またはその
相補体、配列番号２またはその相補体、配列番号３またはその相補体、配列番号
４またはその相補体、および配列番号５またはその相補体のいずれか１つからな
る、請求項３のオリゴヌクレオチド。
【請求項６】検出可能標識をさらに含む、請求項５のオリゴヌクレオチ
ド。
【請求項７】前記配列が、配列番号１または配列番号４からなる、請求
項５のオリゴヌクレオチド。
【請求項８】前記オリゴヌクレオチドが検出可能標識をさらに含む、請
求項７のオリゴヌクレオチド。
【請求項９】検出可能標識が化学発光標識または放射標識である、請求
項８のオリゴヌクレオチド。
【請求項１０】検出可能標識が化学発光標識であり、そして化学発光標
識がアクリジニウムエステルである、請求項９のオリゴヌクレオチド。
【請求項１１】Ｃ．アルビカンス（Ｃ．ａｌｂｉｃａｎｓ）またはＣ
．デュブリニエンシス（Ｃ．ｄｕｂｌｉｎｉｅｎｓｉｓ）のいずれかである酵
母の核酸を検出する組成物であって、配列番号６またはその相補体内に含まれる
少なくとも１７の近接するヌクレオチドを含む配列を有するオリゴヌクレオチド
プローブを含み、前記オリゴヌクレオチドが１００ヌクレオチド塩基までの長さ
を有する、前記組成物。
【請求項１２】前記オリゴヌクレオチドプローブの長さが６０ヌクレオ
チドまでである、請求項１１の組成物。
【請求項１３】前記オリゴヌクレオチドプローブがＤＮＡを含む、請求
項１１の組成物。
【請求項１４】前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号１ま
たは配列番号４いずれかからなる、請求項１１の組成物。
【請求項１５】前記オリゴヌクレオチドプローブが検出可能標識をさら
に含む、請求項１２の組成物。
【請求項１６】前記オリゴヌクレオチドプローブが検出可能標識をさら
に含む、請求項１４の組成物。
【請求項１７】検出可能標識が化学発光標識または放射標識である、請
求項１５の組成物。
【請求項１８】検出可能標識が化学発光標識または放射標識である、請
求項１６の組成物。
【請求項１９】検出可能標識が化学発光標識であり、そして化学発光標
識がアクリジニウムエステルである、請求項１８の組成物。
【請求項２０】少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドをさらに
含む、請求項１６の組成物。
【請求項２１】前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号１か
らなり、そして前記の少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが、配列番
号２および配列番号３からなる群より選択される、請求項２０の組成物。
【請求項２２】前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号４か
らなり、そして前記の少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが、配列番
号２および配列番号５からなる群より選択される、請求項２０の組成物。
【請求項２３】試験試料が、Ｃ．アルビカンスまたはＣ．デュブリニエ
ンシスいずれかである生物を含むかどうか決定する方法であって：（ａ）配列番号６またはその相補体内に含まれる少なくとも１７の近接するヌク
レオチドを含む配列を有し、１００ヌクレオチド塩基までの長さを有するオリゴ
ヌクレオチドプローブを含む、プローブ組成物を、前記試験試料に提供し；（ｂ）プローブ：標的二重鎖を形成するため、高ストリンジェンシー条件下で、
試験試料中に存在する可能性があるいかなる核酸も、前記プローブ組成物とハイ
ブリダイズさせ；そして（ｃ）前記プローブ：標的二重鎖を検出し、それによって、Ｃ．アルビカンスま
たはＣ．デュブリニエンシスのいずれかである生物が試験試料中に存在すること
を決定する工程を含む、前記方法。
【請求項２４】工程（ａ）の前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が
配列番号１または配列番号４いずれかからなる、請求項２３の方法。
【請求項２５】前記試験試料が酵母細胞を含む可能性があり、そして工
程（ａ）の前に、前記試験試料中に存在する可能性がある、いかなる酵母細胞由
来の核酸も遊離させる工程がある、請求項２４の方法。
【請求項２６】前記試験試料が溶解物である、請求項２３の方法。
【請求項２７】工程（ｂ）の前記高ストリンジェンシー条件が、０．４
８Ｍリン酸ナトリウム緩衝液、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム、各１ｍＭのＥ
ＤＴＡおよびＥＧＴＡを含む、請求項２３の方法。
【請求項２８】工程（ｂ）の前記高ストリンジェンシー条件が、０．６
ＭＬｉＣｌ、１％ラウリル硫酸リチウム、６０ｍＭコハク酸リチウム、並びに
各１０ｍＭのＥＤＴＡおよびＥＧＴＡを含む、請求項２３の方法。
【請求項２９】工程（ａ）のオリゴヌクレオチドプローブが検出可能標
識を含む、請求項２４の方法。
【請求項３０】検出可能標識がアクリジニウムエステルであり、そして
工程（ｃ）がいかなる前記プローブ：標的二重鎖も検出するため、発光測定を行
うことを含む、請求項２９の方法。
【請求項３１】工程（ａ）の前記プローブ組成物が少なくとも１つのヘ
ルパーオリゴヌクレオチドをさらに含む、請求項２９の方法。
【請求項３２】前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号１か
らなり、そして前記の少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが、配列番
号２および配列番号３からなる群より選択される、請求項３１の方法。
【請求項３３】前記オリゴヌクレオチドプローブの配列が配列番号４か
らなり、そして前記の少なくとも１つのヘルパーオリゴヌクレオチドが、配列番
号２および配列番号５からなる群より選択される、請求項３１の方法。