JP2003284585A - Method for producing interleukin 12 - Google Patents

Method for producing interleukin 12

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JP2003284585A
JP2003284585A JP2002090161A JP2002090161A JP2003284585A JP 2003284585 A JP2003284585 A JP 2003284585A JP 2002090161 A JP2002090161 A JP 2002090161A JP 2002090161 A JP2002090161 A JP 2002090161A JP 2003284585 A JP2003284585 A JP 2003284585A
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interleukin
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ser
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Japanese (ja)
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Koji Igarashi
浩司 五十嵐
Takayoshi Ido
隆喜 井戸
Masanari Yamada
勝成 山田
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Toray Industries Inc
Original Assignee
Toray Industries Inc
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To establish a method for producing interleukin 12 in a large amount and in a good efficiency. <P>SOLUTION: This method for producing the interleukin 12 by infecting insect cells with a gene recombinant virus encoding the interleukin 12 is provided by culturing the insect cells with agitation for making it possible to perform a large scale culture and to produce the interleukin 12 in a large amount. Also, in culturing the insect cells, it is preferable to add a surfactant, and that is especially effective in producing the interleukin 12. <P>COPYRIGHT: (C)2004,JPO

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明はインターロイキン1
2を遺伝子操作技術によって量産して、以て医薬品とす
ることを目的としたインターロイキン12を製造する方
法に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to interleukin 1
The present invention relates to a method for producing interleukin 12 for the purpose of producing 2 as a drug by mass-producing 2 by genetic engineering technology.

【0002】[0002]

【従来の技術】遺伝子操作技術の進歩により、各種疾病
の治療に有望な生体内に存在するサイトカインなどの有
用タンパク質が次々に発見され、医薬品としての用途開
発研究が盛んに行われている。なかでもインターロイキ
ン12はP40とP35という2つのタンパク質から構
成される(文献1)サイトカインであり、昆虫細胞に遺
伝子組み替えウイルスを感染させる方法などで製造が可
能になった。昆虫細胞は一般にモノレイヤーフラスコ等
を用いて平面培養を行う。(文献2)
2. Description of the Related Art With the progress of gene manipulation technology, useful proteins such as cytokines existing in the living body, which are promising for the treatment of various diseases, have been discovered one after another, and researches for developing applications as pharmaceuticals have been actively conducted. Among them, interleukin 12 is a cytokine composed of two proteins, P40 and P35 (Reference 1), and can be produced by a method of infecting insect cells with a genetically modified virus. Insect cells are generally subjected to flat culture using a monolayer flask or the like. (Reference 2)

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】インターロイキン12
を医薬品として製造する場合、インターロイキン12を
効率よく大量に製造するために昆虫細胞を大量培養する
必要がある。しかしながら平面培養ではその大量培養が
困難であった。昆虫細胞を大量に培養する方法を見出す
ことができれば、インターロイキン12の大量製造法が
確立され、インターロイキン12の医薬品としての開発
の途が開かれる。
Interleukin 12
In the case of producing the drug as a drug, it is necessary to culture a large amount of insect cells in order to efficiently produce the interleukin 12 in a large amount. However, large-scale culture was difficult in flat culture. If a method for culturing a large amount of insect cells can be found, a method for mass-producing interleukin 12 will be established, and development of interleukin 12 as a drug will be opened.

【0004】[0004]

【課題を解決するための手段】本発明者らは昆虫細胞の
大量培養法を確立することを目的とし、昆虫細胞を培養
する際に撹拌培養をすることで大量培養を可能とした。
DISCLOSURE OF THE INVENTION The present inventors aimed to establish a method for mass-cultivating insect cells, and made it possible to carry out mass-culturing by stirring culture when culturing insect cells.

【0005】すなわち本発明は「昆虫細胞にインターロ
イキン12をコードする遺伝子組換えウイルスを感染さ
せてインターロイキン12を製造する際に、昆虫細胞を
攪拌培養することを特徴とするインターロイキン12の
製造法。」である。
That is, the present invention "manufactures interleukin 12 characterized by culturing an insect cell by stirring when the insect cell is infected with a gene recombinant virus encoding interleukin 12 to produce interleukin 12. Law. "

【0006】[0006]

【発明の実施の形態】本発明の製造法で得られるインタ
ーロイキン12としてはヒトインターロイキン12、ほ
乳類のインターロイキン12などがあげられ、特にイヌ
インターロイキン12の製造に好ましく本発明が適用で
きる。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Examples of the interleukin 12 obtained by the production method of the present invention include human interleukin 12 and mammalian interleukin 12, and the present invention is particularly preferably applied to the production of dog interleukin 12.

【0007】イヌインターロイキン12の2つのサブユ
ニットをそれぞれコードするDNAを組み込んだプラス
ミドは例えば次のようにして製造することができる。す
なわち、イヌの細胞からポリ(A)RNAを抽出した
後、cDNAを合成し、それぞれのサブユニットをコー
ドする遺伝子配列を元にしたプライマーを用いてポリメ
ラーゼ連鎖反応(以下PCRと略す)を行うことによっ
て、イヌインターロイキン12の2つのサブユニットを
それぞれコードする遺伝子を得ることができる。イヌの
細胞、例えばマイトジェンなどで刺激されたイヌリンパ
球などによりRNAを得る方法としては、通常の方法、
例えば、ポリソームの分離、ショ糖密度勾配遠心や電気
泳動を利用した方法などがあげられる。上記イヌ細胞よ
りRNAを抽出する方法としては、グアニジ・チオシア
ネート処理後CsCl密度勾配遠心を行うグアニジン・
チオシアネート−塩化セシウム法(文献3)バナジウム
複合体を用いてリボヌクレアーゼインヒビター存在下に
界面活性剤で処理したのちフェノール抽出を行う方法
(文献4)、グアニジン・チオシアネート−ホット・フ
ェノール法、グアニジン・チオシアネート−グアニジン
塩酸法、グアニジン・チオシアネート−フェノール・ク
ロロホルム法、グアニジン・チオシアネートで処理した
のち塩化リチウムで処理してRNAを沈殿させる方法な
どの中から適当な方法を選んで行うことができる。
[0007] A plasmid incorporating DNAs encoding the two subunits of canine interleukin 12 can be produced, for example, as follows. That is, after extracting poly (A) RNA from canine cells, synthesizing cDNA and performing a polymerase chain reaction (hereinafter abbreviated as PCR) using a primer based on a gene sequence encoding each subunit. It is possible to obtain a gene encoding each of the two subunits of canine interleukin 12. As a method for obtaining RNA from dog cells, for example, dog lymphocytes stimulated with mitogen or the like, a conventional method,
For example, polysome separation, a method using sucrose density gradient centrifugation, or electrophoresis can be used. As a method for extracting RNA from the above dog cells, guanidine / thiocyanate-treated CsCl density gradient centrifugation is performed.
Thiocyanate-cesium chloride method (Reference 3) A method of treating with vanadium complex in the presence of a ribonuclease inhibitor with a surfactant and then performing phenol extraction (Reference 4), guanidine thiocyanate-hot phenol method, guanidine thiocyanate- An appropriate method can be selected from guanidine hydrochloride method, guanidine thiocyanate-phenol chloroform method, a method of treating with guanidine thiocyanate and then treating with lithium chloride to precipitate RNA.

【0008】イヌリンパ球などより通常の方法、例えば
塩化リチウム/尿素法、グアニジン・イソチオシアネー
ト法、オリゴdTセルロース法などによりmRNAを単
離し、得られたmRNAから通常の方法、例えば Gu
blerらの方法(文献5)、H.Okayamaらの
方法(文献6)などによりcDNAを合成する。得られ
たmRNAからcDNAを合成するには基本的にはトリ
骨芽球ウイルス(AMV)などの逆転写酵素などを用い
るほか1部プライマーを用いてDNAポリメラーゼなど
を用いる方法を組み合わせてよいが、市販の合成あるい
はクローニング用キットを用いるのが便利である。この
cDNAを鋳型としてイヌインターロイキン12の2つ
のサブユニットをそれぞれコードする遺伝子の塩基配列
を基にしたプライマーを用いてPCRを行うことによっ
てイヌインターロイキン12の2つのサブユニットをそ
れぞれコードするDNAを得ることができる。
[0008] From dog lymphocytes and the like, mRNA is isolated by a conventional method such as lithium chloride / urea method, guanidine isothiocyanate method, oligo dT cellulose method and the like, and the obtained mRNA is isolated by a conventional method such as Gu.
Bler et al. (5), H. CDNA is synthesized by the method of Okayama et al. (Reference 6). In order to synthesize cDNA from the obtained mRNA, basically, reverse transcriptase such as avian osteoblast virus (AMV) and the like may be used, and a method using a DNA polymerase or the like with a part of primer may be combined. It is convenient to use a commercially available synthetic or cloning kit. By using this cDNA as a template and performing PCR using a primer based on the nucleotide sequence of a gene encoding each of the two subunits of canine interleukin 12, DNA encoding each of the two subunits of canine interleukin 12 can be obtained. Obtainable.

【0009】宿主として昆虫細胞、例えばヨトウガ細胞
(Spodoptera frugiperda)、キ
ャベツルーパー細胞(Trichoplusiani)
等を使用することができる。
Insect cells such as Spodoptera frugiperda, Cabbage looper cells (Trichoplusiani) are used as hosts.
Etc. can be used.

【0010】発現ベクターとしては、ウイルス(バキュ
ロ(昆虫))などが使用できる。発現ベクター中のプロ
モーターは昆虫プロモーターとしてはバキュロウイルス
ポリヘドリンプロモーター、p10プロモーターなどが
あげられる。発現ベクターによる宿主の形質転換は、当
業界においてよく知られている常法により行うことがで
き、これらの方法は例えば、カレント プロトコールス
イン モレキュラーバイオロジー(Current
Protocols in Molecular Bi
ology)、ジョン ウィリー アンド サンズ(J
ohn W−iley & Sons)社、に記載され
ている。形質転換体の培養も常法に従って行うことがで
きる。
A virus (baculo (insect)) or the like can be used as the expression vector. Examples of insect promoters in the expression vector include baculovirus polyhedrin promoter and p10 promoter. Transformation of a host with an expression vector can be performed by a conventional method well known in the art, and these methods include, for example, Current Protocols in Molecular Biology (Current).
Protocols in Molecular Bi
Johnny Willy and Sons (J)
ohn W-iley & Sons). Cultivation of the transformant can also be performed according to a conventional method.

【0011】産生されたイヌインターロイキン12は非
還元下、ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動(SDS−PAGE)により決定すると、見
かけの分子量が約70〜80kDである。
The dog interleukin 12 produced has an apparent molecular weight of approximately 70-80 kD as determined by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) under non-reducing conditions.

【0012】SDS−PAGEでは、70〜80kDの
バンドが還元条件下では分子量約40kDと約35kD
の2つのサブユニットを生じる。
In SDS-PAGE, the band of 70-80 kD has a molecular weight of about 40 kD and about 35 kD under reducing conditions.
Results in two subunits of

【0013】イヌインターロイキン12は、以下の参考
例4で示すようにin vitroでイヌ白血球からの
インターフェロンγの誘導能により主に特性化される。
Canine interleukin 12 is mainly characterized by its ability to induce interferon γ from canine leukocytes in vitro as shown in Reference Example 4 below.

【0014】本発明では、昆虫細胞を攪拌培養すること
が重要である。昆虫細胞を攪拌培養することでより大量
のインターロイキン12を効率よく製造することができ
る。
In the present invention, it is important to carry out stirring culture of insect cells. By stirring and culturing the insect cells, a larger amount of interleukin 12 can be efficiently produced.

【0015】本発明の昆虫細胞の培養方法で用いる培養
容器としてジャーファーメンターやエーレンマイヤーフ
ラスコなどがあるが、好ましくはスピナーフラスコなど
が用いられる。昆虫細胞培養用の培地をスピナーフラス
コ容量の最大1/2量を加え、界面活性剤を添加し、昆
虫細胞を1〜10×105cells/mLになるよう
に懸濁し、25℃〜30℃で100〜300rpmで攪
拌しながらコンフルエントになるまで4〜7日間培養す
る。撹拌の方法としては振騰培養器を用いる方法やマグ
ネティックスターラーを用いる方法などがあるが、好ま
しくは撹拌翼を用いて撹拌する。本発明の培養方法で
は、昆虫細胞を撹拌培養する際に界面活性剤を添加する
ことが重要である。培養液に界面活性剤を添加すること
で細胞の凝集などが抑制され、昆虫細胞の撹拌培養が可
能になる。界面活性剤としては陰イオン系、陽イオン
系、両性イオン系、非イオン系などがあるが、好ましく
は非イオン系の界面活性剤、例えばPLURONIC
F68(GIBCO社製)などが好ましく用いられる。
また、界面活性剤の添加量は培養液1Lあたり10〜2
0mL添加するのが好ましい。
The culture vessel used in the method for culturing insect cells of the present invention includes a jar fermenter, an Erlenmeyer flask and the like, but a spinner flask is preferably used. A medium for culturing insect cells is added to a spinner flask at a maximum volume of 1/2, a surfactant is added, and insect cells are suspended at 1 to 10 × 10 5 cells / mL, and the temperature is 25 ° C to 30 ° C. Culturing at 100 to 300 rpm for 4 to 7 days until confluent. The stirring method includes a method using a shake incubator and a method using a magnetic stirrer, but stirring is preferably performed using a stirring blade. In the culture method of the present invention, it is important to add a surfactant when stirring and culturing insect cells. By adding a surfactant to the culture solution, cell aggregation and the like are suppressed, and insect cells can be stirred and cultured. Examples of the surfactant include anionic, cationic, zwitterionic and nonionic surfactants, preferably nonionic surfactants such as PLURONIC.
F68 (manufactured by GIBCO) and the like are preferably used.
The amount of the surfactant added is 10 to 2 per 1 L of the culture solution.
It is preferable to add 0 mL.

【0016】攪拌培養してコンフルエントとした昆虫細
胞に組み替えバキュロウイルスを感染させ、さらに4〜
7日間培養することにより、産生したインターロイキン
12を含む培養液を得ることができる。
Insect cells that had been cultivated with stirring to be confluent were infected with recombinant baculovirus, and
By culturing for 7 days, a culture solution containing the produced interleukin 12 can be obtained.

【0017】なお、昆虫細胞の培養、組み替えバキュロ
ウイルスの感染における、培地の量、界面活性剤の添加
量、ウイルス液の添加量等は特に限定されるものではな
く、最適な条件は培養容器の容量、細胞濃度などに応じ
て適宜決定される。
The amount of medium, the amount of surfactant added, the amount of virus solution added, etc. in culturing insect cells and infecting recombinant baculovirus are not particularly limited, and the optimum conditions are those of the culture vessel. It is appropriately determined according to the volume, cell concentration and the like.

【0018】[0018]

【実施例】以下、実施例をあげて本発明を更に具体的に
説明する。ただし、本発明は以下の実施例に限定される
ものではない。
EXAMPLES The present invention will be described in more detail below with reference to examples. However, the present invention is not limited to the following examples.

【0019】[参考例1] イヌインターロイキン12
P40、P35遺伝子の取得 (1)イヌcDNAの調製 イヌ肝臓、LPS(50μg/mL)で48時間刺激し
たイヌ末梢血単核球及びニワトリニユーキャッスル病ウ
イルスで7時間処理した(107pfu/mL)イヌ脾
臓由来リンパ球よりISOGEN(ニッポンジーン社)
を用いて総RNAを調製した。得られたRNAを1mM
EDTAを含む10mM トリス塩酸緩衝液(pH
7.5)(以下TEと略する)に溶解し、70℃で5分
間処理した後、1M LiClを含むTEで平衡化した
オリゴdTセルロースカラムにRNA溶液をアプライ
し、同緩衝液にて洗浄した。さらに0.3M LiCl
を含むTEで洗浄後、0.01%SDSを含む1mM
EDTA(pH7.0)で吸着したポリ(A)RNAを
溶出した。こうして得られたポリ(A)RNAを用いて
一本鎖cDNAを合成した。すなわち滅菌した0.5m
Lのミクロ遠心チューブに5μgのポリ(A)RNAと
0.5μgのオリゴdTプライマー(12−18me
r)を入れ、ジエチルピロカルボネート処理滅菌水を加
えて12μLにし、70℃で10分間インキュベートし
たのち氷中に1分間つけた。これに200mM MgC
l2を2μL、10mM dNTPを1μLおよび0.
1M DTTを2μLそれぞれ加え、42℃で5分間イ
ンキュベートしたのち200ユニットのGibcoBR
L社製Super Script II RTを1μL加
え、42℃でさらに50分間インキュベートしてcDN
A合成反応を行った。さらに70℃で15分間インキュ
ベートして反応を停止し、氷上に5分間おいた。この反
応液に1μLのE.coli RNaseH(2uni
ts/mL)を加え、37℃で20分間インキュベート
した。
[Reference Example 1] Canine interleukin 12
Acquisition of P40 and P35 genes (1) Preparation of canine cDNA Treated with dog liver, canine peripheral blood mononuclear cells stimulated with LPS (50 μg / mL) for 48 hours and chicken Newcastle disease virus for 7 hours (10 7 pfu / mL) ) ISOGEN (Nippon Gene) from dog spleen-derived lymphocytes
Was used to prepare total RNA. Obtained RNA is 1 mM
10 mM Tris-HCl buffer containing EDTA (pH
7.5) (hereinafter abbreviated as TE) and treated at 70 ° C. for 5 minutes, and then the RNA solution is applied to an oligo dT cellulose column equilibrated with TE containing 1 M LiCl and washed with the same buffer solution. did. Further 0.3M LiCl
After washing with TE containing 0.01 mM SDS containing 1 mM
The poly (A) RNA adsorbed with EDTA (pH 7.0) was eluted. Single-stranded cDNA was synthesized using the poly (A) RNA thus obtained. Ie 0.5m sterilized
L microcentrifuge tube with 5 μg of poly (A) RNA and 0.5 μg of oligo dT primer (12-18me).
r) was added, diethylpyrocarbonate-treated sterilized water was added to make 12 μL, and the mixture was incubated at 70 ° C. for 10 minutes and then placed on ice for 1 minute. 200 mM MgC
12 2 μL, 10 mM dNTP 1 μL and 0.
After adding 2 μL each of 1M DTT and incubating at 42 ° C. for 5 minutes, 200 units of GibcoBR were added.
1 μL of Super Script II RT manufactured by L Co. was added, and the mixture was incubated at 42 ° C. for 50 minutes to obtain cDN.
A synthesis reaction was performed. The reaction was stopped by further incubating at 70 ° C for 15 minutes, and the plate was placed on ice for 5 minutes. 1 μL of E. coli RNaseH (2uni
(ts / mL) was added and incubated at 37 ° C. for 20 minutes.

【0020】(2)イヌインターロイキン12P40遺
伝子の取得 イヌインターロイキン12P40のN末端およびC末端
の塩基配列(文献7)をもとに、 5’ATGCATCCTCAGCAGTTGGTCAT
CTCCTGG3’(配列番号1) と 5’CTAACTGCAGGACACAGATGCCC
AGTCGCT3’(配列番号2) の2種類のプライマーをDNAシンセサイザーにて合成
した。上記(1)のイヌ肝臓より得られたcDNAを
0.5mLのミクロ遠心チューブに2μL添加し、各プ
ライマーを20pmol,20mMトリス塩酸緩衝液
(pH8.0)、1.5mM MgCl2,25mM
KCL,100μg/mLゼラチン、50μM各dNT
P、4単位 TaqDNAポリメラーゼとなるように各
試薬を加え、全量100μLとした。DNAの変性条件
を94℃、1分、プライマーのアニーリング条件を55
℃、2分、プライマーの伸長条件を72℃、3分の各条
件でPerkin−Elmer Cetus社のDNA
サーマルサイクラーを用い、35サイクル反応させた。
これを1%アガロースゲルにて電気泳動し、約990b
pのDNA断片を常法(文献8)に従って調製した。
(2) Acquisition of canine interleukin 12P40 gene Based on the N-terminal and C-terminal nucleotide sequences of canine interleukin 12P40 (Reference 7), 5'ATGCATCCCTCAGCAGTTGGTCAT was prepared.
CTCCTGGG 3 '(SEQ ID NO: 1) and 5'CTAACTGCAGGACACAGATGCCC
Two kinds of primers of AGTCCGCT3 '(SEQ ID NO: 2) were synthesized with a DNA synthesizer. 2 μL of the cDNA obtained from the dog liver of the above (1) was added to a 0.5 mL microcentrifuge tube, and each primer was 20 pmol, 20 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0), 1.5 mM MgCl 2, 25 mM.
KCL, 100 μg / mL gelatin, 50 μM each dNT
P, 4 units Each reagent was added so as to become Taq DNA polymerase, and the total amount was 100 μL. The denaturing condition of DNA is 94 ° C for 1 minute, and the annealing condition of primer is 55
DNA from Perkin-Elmer Cetus under the conditions of 2 ° C., 2 min.
Using a thermal cycler, 35 cycles of reaction were performed.
This was electrophoresed on a 1% agarose gel to give about 990b
A DNA fragment of p was prepared according to a conventional method (Reference 8).

【0021】このDNA断片をInvitrogen社
のT−Vectorに宝酒造(株)のDNA Liga
tion Kit Ver.1を用いて連結した。これ
を用いて常法に従い大腸菌を形質転換し、得られた形質
転換体よりプラスミドDNAを常法により調製した。次
にこのプラスミドにPCR断片が挿入されていることを
前述と同じ条件のPCRによって確認後、蛍光DNAシ
ーケンサーを用い、その添付プロトコルに従ってパーキ
ンエルマー社のダイターミネーターサイクルシーケンシ
ングキットを用いて得られたDNA断片がイヌインター
ロイキン12P40をコードする配列であることを確認
した。(配列番号3)
This DNA fragment was added to T-Vector of Invitrogen and DNA Liga of Takara Shuzo Co., Ltd.
section Kit Ver. 1 was used for ligation. Escherichia coli was transformed with this using a conventional method, and a plasmid DNA was prepared from the obtained transformant by a conventional method. Next, after confirming that the PCR fragment was inserted in this plasmid by PCR under the same conditions as described above, it was obtained using a fluorescent DNA sequencer and a dye terminator cycle sequencing kit of Perkin Elmer Co. according to the attached protocol. It was confirmed that the DNA fragment was a sequence encoding canine interleukin 12P40. (SEQ ID NO: 3)

【0022】(3)イヌインターロイキン12P35遺
伝子のクローニング イヌインターロイキン12P35遺伝子のN末端及びC
末端の塩基配列(文献6)を基に、 5’ATGTGCCCGCCGCGCGGCCTCCT
CCTTGT3’(配列番号4) と 5’TTAGGAAGAATTCAGATAACTCA
TCATTCT3’(配列番号5) の2種類のプライマーをDNAシンセサイザーにて合成
した。上記(1)のニワトリニューカッスル病ウイルス
で処理したイヌ脾臓由来リンパ球より得られたcDNA
を鋳型として上記(2)と同様にして約670bpのD
NA断片を得、T−Vectorに挿入し、イヌインタ
ーロイキン12P35をコードする配列であることを確
認した。(配列番号6)
(3) Cloning of canine interleukin 12P35 gene N-terminal and C of canine interleukin 12P35 gene
Based on the terminal base sequence (Reference 6), 5'ATGTGCCCGCCGCGCGCGCCTCCT
CCTTGT 3 ′ (SEQ ID NO: 4) and 5 ′ TTAGGAAGAATTCAGATAACTCA
Two types of TCATTTCT3 '(SEQ ID NO: 5) primers were synthesized with a DNA synthesizer. CDNA obtained from dog spleen-derived lymphocytes treated with the chicken Newcastle disease virus of (1) above
As a template in the same manner as in (2) above, with a D of about 670 bp.
An NA fragment was obtained, inserted into T-Vector, and confirmed to be a sequence encoding canine interleukin 12P35. (SEQ ID NO: 6)

【0023】[参考例2] イヌインターロイキン12
産生組み替えバキュロウイルスの作製バキュロウイルス
トランスファーベクターpAcAB3(ファーミンジェ
ン社製)のプロモーター下流の制限酵素XBaIおよび
SmaI切断部位にそれぞれP40およびP35サブユ
ニットcDNAを常法に従って連結し、組み換えトラン
スファーベクターを得た。さらにファーミンジェン社製
のバキュロウイルストランスフェクションキットを用い
てその添付マニュアルに従って、組み換えバキュロウイ
ルスを作製した。
[Reference Example 2] Canine interleukin 12
Production of Recombinant Baculovirus Production P40 and P35 subunit cDNAs were ligated to the restriction enzyme XBaI and SmaI cleavage sites downstream of the promoter of the baculovirus transfer vector pAcAB3 (Pharmingen) in accordance with a conventional method to obtain a recombinant transfer vector. . Further, a recombinant baculovirus was prepared using a baculovirus transfection kit manufactured by Pharmingen Co. according to the attached manual.

【0024】[実施例1] イヌインターロイキン12
の攪拌培養での製造1000mL容量のスピナーフラス
コにファーミンジェン社製のTNM−FHInsect
o Medium500mLを加え、GIBCO社製の
PLURONIC F68を5mL添加したものにSf
21細胞(SpondopteraFlugiperd
a由来、ファーミンジェン社より入手)を5×105
ells/mLの濃度で懸濁し、180rpmで攪拌し
ながら28℃で5〜6日培養してコンフルエントにし
た。スピナーフラスコから培養液を抜き取り、0.9K
で5分間遠心分離して上清を廃棄し、ファーミンジェン
社製のProtein−Free Insecto M
edium500mLとPLURONIC F68 5
mLを加えたスピナーフラスコにSf21細胞を再び懸
濁し、参考例2で得られた組み換えバキュロウイルスを
感染させ、180rpmで攪拌しながら28℃で4〜5
日間培養しイヌインターロイキン12が産生された培養
上清500mLを得た。
[Example 1] Canine interleukin 12
Production by stirring culture of TNM-FHInsect manufactured by Pharmingen in a spinner flask having a capacity of 1000 mL.
o Medium 500mL was added, and 5mL of PLURONIC F68 manufactured by GIBCO was added to Sf.
21 cells (Spondoptera Flugiperd
a), obtained from PharMingen) 5 x 10 5 c
The cells were suspended at a concentration of ells / mL and cultured at 28 ° C. for 5 to 6 days with stirring at 180 rpm to make them confluent. Remove the culture solution from the spinner flask and set it to 0.9K.
Centrifuge for 5 minutes, discard the supernatant, and remove Protein-Free Insecto M from Pharmingen.
EDIUM 500mL and PLURONIC F685
Sf21 cells were resuspended in a spinner flask containing mL, infected with the recombinant baculovirus obtained in Reference Example 2, and stirred at 180 rpm for 4-5 at 28 ° C.
After culturing for a day, 500 mL of a culture supernatant in which canine interleukin 12 was produced was obtained.

【0025】[比較例1] イヌインターロイキン12
の平面培養での製造 150cm2のモノレイヤーフラスコにTNM−FHI
nsecto Medium20mLを加え、Sf21
細胞を5×105cells/mLの濃度で懸濁し28
℃で4〜5日間平面培養してコンフルエントにした。モ
ノレイヤーフラスコから培地を抜き取って廃棄し、Pr
otein−Free InsectoMedium2
0mLを加え、参考例2で得られた組換えバキュロウイ
ルスを感染させ28℃で4〜5日間培養した後、イヌイ
ンターロイキン12が産生された培養上清20mLを得
た。
[Comparative Example 1] Canine interleukin 12
Production in flat culture of TNM-FHI in a 150 cm 2 monolayer flask
Add 20 mL of nsecto Medium, add Sf21
Suspend the cells at a concentration of 5 × 10 5 cells / mL and
The plate was cultured at 4 ° C. for 4 to 5 days to be confluent. Remove the medium from the monolayer flask and discard.
otain-Free Insecto Medium2
After adding 0 mL and infecting the recombinant baculovirus obtained in Reference Example 2 and culturing at 28 ° C. for 4 to 5 days, 20 mL of a culture supernatant in which canine interleukin 12 was produced was obtained.

【0026】[参考例3] イヌインターロイキン12
の検出 実施例1および比較例1で得られた昆虫細胞の培養上清
中のイヌインターロイキン12をウエスタンブロッティ
ング法によって検出した。培養液をアトー(株)社製の
パジェル中、SDS−PAGEに供した。その後アトー
(株)社製のクリアブロットメンブランに常法に従って
ブロッティング後、メンブランを抗イヌP40ポリクロ
ーナル抗体およびP35ポリクローナル抗体を含むウサ
ギ血清を含むブロックエース(大日本製薬(株)製)溶
液に6時間反応させ、0.02%Tween20を含む
PBSにて3回洗浄し、さらにペルオキシダーゼ標識ヤ
ギ抗ウサギIgG(バイオラッド(株)製)を含むブロ
ックエース溶液に6時間反応させ、同様に洗浄した後、
コニカ製のコニカイムノステインHPR1000にて発
色を行った。その結果、実施例1および比較例1で得ら
れた培養上清から、約40kD、約75kDおよび約8
0kDの3本のバンドが検出された。このうち約75k
DのバンドがイヌP40とP35のヘテロダイマーから
なるイヌインターロイキン12であり、約40kDのバ
ンドはイヌP40モノマー、約85kDのバンドはイヌ
P40ホモダイマーである。
[Reference Example 3] Canine interleukin 12
Detection of canine interleukin 12 in the culture supernatant of the insect cells obtained in Example 1 and Comparative Example 1 was detected by Western blotting. The culture solution was subjected to SDS-PAGE in a pagel manufactured by Atto Co., Ltd. After blotting according to a conventional method on a clear blot membrane manufactured by Atto Co., Ltd., the membrane was immersed in a block ace (manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) solution containing rabbit serum containing anti-dog P40 polyclonal antibody and P35 polyclonal antibody for 6 hours. After reacting and washing with PBS containing 0.02% Tween 20 three times, and further reacting with a block ace solution containing peroxidase-labeled goat anti-rabbit IgG (manufactured by Bio-Rad Co., Ltd.) for 6 hours, and similarly washing,
Color was developed with Konica Immunostain HPR1000 manufactured by Konica. As a result, about 40 kD, about 75 kD and about 8 kD were obtained from the culture supernatants obtained in Example 1 and Comparative Example 1.
Three bands of 0 kD were detected. About 75k of this
The D band is canine interleukin 12, which is a heterodimer of canine P40 and P35, the approximately 40 kD band is the canine P40 monomer, and the approximately 85 kD band is the canine P40 homodimer.

【0027】[参考例4] イヌインターロイキン12
の活性測定 実施例1および比較例1で製造したイヌインターロイキ
ン12の活性測定は以下のようにして行った。イヌリン
パ球からのイヌインターフェロンγ誘導活性測定のため
に、抗ウイルス活性を測定した。イヌ脾臓よりリンパ球
を分離し、10%FBS−ERDFに106cells
/mLの細胞密度で懸濁し、このうち2.5mLとヒト
インターロイキン12(Genzyme社製)250U
を6cmデッシュに添加した。これに実施例1および比
較例1で得られた培養上清2.5mLとヒトインターロ
イキン2(Genzyme社製)250Uを加え、5%
炭酸ガス、37℃の条件で2日間培養し、ウイルスとし
てVesicular Stomatitis Vir
us、感受性細胞としてMDCK(ATCCCCL−3
4)を用い、文献9のCPE法に従ってこれらの培養液
の抗ウイルス活性を測定した。その結果、実施例1およ
び比較例1で得た培養上清はいずれも107希釈単位/
mL以上の抗ウイルス活性を測定した。
[Reference Example 4] Canine interleukin 12
Activity measurement of the dog interleukin 12 produced in Example 1 and Comparative Example 1 was measured as follows. Antiviral activity was measured for the determination of canine interferon-γ inducing activity from canine lymphocytes. Lymphocytes were isolated from dog spleen and 10 6 cells were added to 10% FBS-ERDF.
Suspended at a cell density of / mL, of which 2.5 mL and human interleukin 12 (Genzyme) 250U
Was added to a 6 cm dish. To this, 2.5 mL of the culture supernatant obtained in Example 1 and Comparative Example 1 and 250 U of human interleukin 2 (Genzyme) were added, and 5% was added.
After culturing for 2 days under the condition of carbon dioxide gas and 37 ° C, the virus was used as Vesicular Stomatitis Vir
us, MDCK (ATCCCCL-3 as sensitive cells
4) was used to measure the antiviral activity of these cultures according to the CPE method of Reference 9. As a result, the culture supernatants obtained in Example 1 and Comparative Example 1 were 10 7 dilution units /
The antiviral activity of not less than mL was measured.

【0028】すなわち、同等のイヌインターロイキン1
2の活性量を有する培養上清が比較例1の平面培養では
20mL得られたのに対して、実施例1の撹拌培養では
500mL得られた。
That is, equivalent dog interleukin 1
20 mL of the culture supernatant having an activity amount of 2 was obtained in the flat culture of Comparative Example 1, while 500 mL was obtained in the stirring culture of Example 1.

【0029】[0029]

【発明の効果】本発明の方法によれば、インターロイキ
ン12を効率よく大量に製造することができる。
According to the method of the present invention, the interleukin 12 can be efficiently produced in a large amount.

【0030】参考文献: 1.Wolfら:J.Immunol.146,307
4−3081(1991) 2.石田功ら編:遺伝子発現実験マニュアル、(199
4).P236−237 3.Chirgwinら:Biochemistry,
18,5294(1979) 4.Bergerら:Biochemistry,1
8,5143(1979) 5.Gublerら:Geen.25,236−269
(1983) 6.Okayamaら:Mol.Cell.Bio
l.,2,161,(1982) 7.Okanoら:J.Interferon&Cyt
okine Res.,17,713−718(199
7) 8.Molecular Cloning.Cold
Spring Harbor Loboratory.
New York.1982. 9.日本製化学会編:続生化学実験講座第5巻、(19
86).P250−25 6、東京化学同人
References: 1. Wolf et al .: J. Immunol. 146,307
4-3081 (1991) 2. Isao Ishida et al .: Gene Expression Experiment Manual, (199
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18, 5294 (1979) 4. Berger et al .: Biochemistry, 1
8, 5143 (1979) 5. Gubler et al .: Gene. 25,236-269
(1983) 6. Okaya et al .: Mol. Cell. Bio
l. , 2, 161, (1982) 7. Okano et al .: J. Interferon & Cyt
kine Res. , 17, 713-718 (199
7) 8. Molecular Cloning. Cold
Spring Harbor Laboratory.
New York. 1982. 9. The Chemical Society of Japan, Vol. 5 (19)
86). P250-256, Tokyo Kagaku Dojin

【0031】[0031]

【配列表】 <110> 東レ株式会社 <120> 有用タンパク質の製造法 <130> 51E16570 <160> 6 <210> 1 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> atgtgtcacc agcagttggt catctcttgg ttt 33 <210> 2 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> ctaactgcag ggcacagatg ccca 24 <210> 3 <211> 990 <212> DNA PRT <213> dog <220> <221> CDS <222> (1)...(987) <220> <221> mat#peptide <222> (67)...(987) <400> atg tgt cac cag cag ttg gtc atc tct tgg ttt tcc ctc gtt ttg ctg 48 Met Cys His Gln Gln Leu Val Ile Ser Trp Phe Ser Leu Val Leu Leu gcg tct ccc ctc atg gcc ata tgg gaa ctg gag aaa gat gtt tat gtt 96 Ala Ser Pro Leu Met Ala Ile Trp Glu Leu Glu Lys Asp Val Tyr Val gta gag ttg gac tgg cac cct gat gcc ccc gga gaa atg gtg gtc ctc 144 Val Glu Leu Asp Trp His Pro Asp Ala Pro Gly Glu Met Val Val Leu acc tgc cat acc cct gaa gaa gat gac atc act tgg acc tca gcg cag 192 Thr Cys His Thr Pro Glu Glu Asp Asp Ile Thr Trp Thr Ser Ala Gln agc agt gaa gtc cta ggt tct ggt aaa act ctg acc atc caa gtc aaa 240 Ser Ser Glu Val Leu Gly Ser Gly 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───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き Fターム(参考) 4B064 AG03 CA10 CA19 CC12 CC24 DA04    ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continued front page    F-term (reference) 4B064 AG03 CA10 CA19 CC12 CC24                       DA04

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】昆虫細胞にインターロイキン12をコード
する遺伝子組換えウイルスを感染させてインターロイキ
ン12を製造する際に、昆虫細胞を攪拌培養することを
特徴とするインターロイキン12の製造法。
1. A method for producing interleukin 12, which comprises stirring and culturing insect cells when producing interleukin 12 by infecting insect cells with a recombinant virus encoding interleukin 12.
【請求項2】昆虫細胞を培養する際に界面活性剤を添加
することを特徴とする請求項1記載のインターロイキン
12の製造法。
2. The method for producing interleukin 12 according to claim 1, wherein a surfactant is added when culturing the insect cells.
【請求項3】インターロイキン12がイヌインターロイ
キン12であることを特徴とする請求項1または2記載
のインターロイキン12の製造法。
3. The method for producing interleukin 12 according to claim 1 or 2, wherein the interleukin 12 is dog interleukin 12.
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