JP2002544508A - 未修飾生体高分子のフッ化アシル活性化基質への固定化 - Google Patents
未修飾生体高分子のフッ化アシル活性化基質への固定化Info
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Abstract
Description
には、未修飾生体高分子が固定化された固形支持体と、未修飾生体高分子を固形
支持体に固定化する方法とに関する。
る必要がしばしばある。例えば、有機および無機材料が、ペプチド、オリゴヌク
レオチドおよび低分子有機分子の固相合成に利用される。この合成は、アミノ酸
誘導体または核酸誘導体のような活性化モノマーを、固形支持体に一方の端が結
合した成長中のオリゴマー鎖に1つずつ付加していくことを伴う。合成が完了す
ると、新たに合成された生体高分子は前記固形支持体から切断されて、生化学的
な研究または診断への応用に利用され、あるいは、前記固形支持体から生体高分
子を切断せずに利用される。
合される。ブロッティング技術では、天然の生体高分子はまず膜の上に捕捉され
、その後、熱、放射線または化学的な技術により前記膜上に固定化される。こう
して固定化された生体高分子は、サザンブロット法と逆ハイブリダイゼーション
解析技術のような分析に利用することができる。
オチドを固形支持体に共有結合で結合することにより固定化されている。核酸を
固形支持体(基質)に共有結合で結合するための現在の方法は、DNA(または
RNA)の修飾を伴う。例えば、オリゴヌクレオチドは通常5’−アミノ末端に
変化した誘導体となり、前記DNAを活性化した表面に共有結合するうえでより
反応しやすくなる。他の結合方法は、末端のリン酸基またはスルフィドラル基と
表面のカルボジイミドその他の活性化合物との反応を用いている(Lundら、
Nucleic Acid Res.16巻、10861−80頁、1988年
およびBischoffら、Analyt.Biochem.164巻、336
−344頁、1987年を参照せよ)。
に理解されている。さらに、天然オリゴヌクレオチドが反応性が高い表面の原子
団に曝されると、過剰な架橋が起こりうる。この架橋は、結合した核酸が完全に
ハイブリダイゼーションに参加することを阻む。これらの条件は2本鎖DNAの
短い断片やオリゴヌクレオチドの場合には最も著しい。そこで、オリゴヌクレオ
チドは、効率的な結合のために、例えば5’−アミノ末端に変化した誘導体とな
るといった修飾を加えられなければならないことが多い。前記5’−アミノリン
カーにより、アミノ基を含むDNAは、シリル化されたスライドにチップ表面の
アルデヒド基とシッフ基反応により選択的に結合することが可能になる。天然の
未修飾DNAに比べてアミノ基が修飾されたDNAの選択性はcDNAでは約1
0:1で、1本鎖15量体については約10,000:1である。これらの中間
の長さのDNA分子はこれらの中間の選択比を示す。さらに、前記5’末端での
アミノ基を介するDNAとチップとの結合により、ハイブリダイゼーション反応
の間に結合した分子に立体的に接近することが許容される。したがって、後から
修飾することは、例えばオリゴヌクレオチドプローブをアレイ作成のために結合
させるためには必須だと考えられてきた。かかる事後修飾の過程には相当な費用
と時間のかかる追加のステップが必要である。
り効率的な方法を開発することが望ましい。ポリヌクレオチドのような未修飾生
体高分子を固形支持体に直接結合する方法を開発することが特に望ましい。
ーサーアームなしで、かつ、これらのポリヌクレオチドを修飾せずに、直接フッ
化アシルで活性化された支持体に効率よく結合することができるという発見に基
づいている。本発明はまた、プロテインA、抗体、ストレプトアビジン等のよう
な他の生体高分子もこれらの生体高分子を修飾することなく固形支持体に結合す
ることができるという発見にも基づいている。
る方法を提供することである。この方法は、(a)未修飾の生体高分子を用意す
ること、(b)フッ化アシル官能基側鎖を含む少なくとも1つの表面がある固形
支持体を用意すること、(c)前記未修飾生体高分子と前記固形支持体との結合
が起こるのに十分な条件下で、前記生体高分子と前記固形支持体を接触させるこ
とを含む。
質およびこれらの類似体でもかまわない。本発明の1の実施態様では、前記生体
高分子はオリゴヌクレオチドであり、該オリゴヌクレオチドは、合成されたオリ
ゴヌクレオチド、増幅されたDNA、cDNA、1本鎖DNA、2本鎖DNA、
PNA、RNAまたはmRNAであってもよい。また、本発明の実施態様による
と、前記固形支持体は、高分子材料、カラス、セラミック、天然繊維、シリコン
、金属およびこれらの複合材料であってもよい。
提供することである。この方法は、(a)フッ化アシル基側鎖を少なくとも1つ
の表面に有する材料で作製された固形支持体を用意すること、(b)前記生体高
分子のターゲットと複合体を形成することができ、第2の生体高分子を含む試薬
を用意すること、(c)未修飾試薬または未修飾生体高分子のいずれかが前記固
形支持体と結合できる条件下で、前記固形支持体を前記未修飾試薬または前記未
修飾生体高分子のターゲットと接触させること、(d)前記試薬と前記生体高分
子のターゲットを含む複合体が形成できる条件下で、前記未修飾試薬と結合した
固形支持体を前記生体高分子のターゲットと接触させるか、あるいは前記未修飾
生体高分子のターゲットと結合した固形支持体を前記試薬と接触させること、(
e)前記サンプル中に含まれる前記生体高分子のターゲットの有無または量の測
定値として、前記複合体の存在を検出し測定することを含む。
置を提供することである。前記固形支持体はフッ化アシル官能基側鎖を含む少な
くとも1つの表面を有し、前記生体高分子は前記フッ化アシル官能基側鎖との反
応によって前記固形支持体を結合している。
ようなポリヌクレオチドアレイと、差次的遺伝子発現マイクロアレイのようなそ
の他のアレイを基本とするシステムの製作に利用するのに好適である。前記ポリ
ヌクレオチドアレイは、生物活性を評価し同定するために使用される。本発明は
、ポリヌクレオチドの配列決定を目的とするポリヌクレオチドアレイの製作にも
利用できる。さらに、本発明はハイブリダイゼーションアッセイおよびイムノア
ッセイに利用できる。
持体に直接結合することが可能になる。よって、本発明は、生体高分子のアレイ
を作るための過程を簡単にし、さらに多目的に利用できるようにする。
されたDNAのような、修飾された生体高分子をコストをかけて生産することを
回避できる。オリゴヌクレオチドを事後修飾する作業は時間がかかり、コストも
2倍と相当増大する。第2に、事後修飾の過程がもはや不要になるため、アレイ
をつくる仕事が非常に簡単になる。
ることである。この方法は、(a)未修飾生体高分子を用意すること、(b)フ
ッ化アシル官能基側鎖を含む少なくとも1つの表面を有する固形支持体を用意す
ること、(c)前記未修飾生体高分子が前記固形支持体と結合できる条件下で、
前記生体高分子を前記固形支持体と接触させることを含む。
リペプチド、タンパク質、糖質、脂質およびこれらの類似体を指す。ここで用い
られる「ポリヌクレオチド」という用語は、分離した断片として、またはより大
きな構築体の構成部分となった、デオキシリヌクレオチドまたはリボヌクレオチ
ドのポリマーを指す。ここで用いられる「ポリヌクレオチド」は、DNA、RN
A、PNA(ペプチド核酸)のようなDNAの類似体または合成されたオリゴヌ
クレオチドであってもよい。前記DNAは、1本鎖または2本鎖か、あるいはP
CR技術により増幅されたDNAであってもよい。前記RNAはmRNAであっ
てもよい。前記オリゴヌクレオチドの長さは3bpないし10kbでよい。本発
明の1の実施態様に従うと、ポリヌクレオチドの長さは約50bpないし10k
bの範囲内であり、100bpないし1.5kbであることが好ましい。本発明
の別の実施態様に従うと、合成されたオリゴヌクレオチドの長さは、約3ないし
100個のヌクレオチドの範囲内である。本発明のさらなる実施態様に従うと、
前記オリゴヌクレオチドの長さは約15ないし20個のヌクレオチドの範囲内で
ある。
別のアミノ酸のα−アミノ基とペプチド結合により結合している、アミノ酸のポ
リマーを指す。タンパク質はジスルフィド結合で結びつけられた1つまたは複数
のポリペプチドを含むこともある。前記タンパク質の例には、抗体、抗原、リガ
ンド、レセプター等が含まれるが、これらに限られない。
ることが、本発明の発見である。例えば、本発明の1の実施態様に従うと、オリ
ゴヌクレオチド、プロテインA、抗体またはストレプトアビジンのような、しか
しこれらに限らない、生体高分子は、該生体高分子を何ら修飾することなく固形
支持体に結合することができる。
つの表面にフッ化アシル官能基を形成するために誘導体とすることができるいか
なる材料であってもよい。固形支持体の例には、高分子材料、ガラス、セラミッ
ク、天然繊維、シリコン、金属およびこれらの複合材料が含まれるが、これらに
限られない。
側鎖を有する少なくとも1つの表面がある高分子材料で作製されてもよい。前記
固形支持体の詳しい説明および前記固形支持体の製造方法は、「生体高分子を固
定化するためのポリマー試薬」という名称の出願中の米国特許出願第08/79
7,222号明細書に記載されており、関連する内容は引用によりここにその全
体が取り込まれている。
くとも1つの表面にフッ化アシル官能基側鎖を形成することができるように誘導
体とすることができるいかなる材料でもかまわない。例えば、カルボキシル官能
基側鎖を有するポリマー材料またはカルボキシル基を支持するように改変するこ
とができるポリマー材料は、適当な試薬を用いてフッ化アシル官能基を形成する
ように反応させることができる。本発明の1の実施態様では、固形支持体はエチ
レンアクリル酸コポリマー、エチレンメタクリル酸コポリマーまたは誘導ポリプ
ロピレンで製造される。本発明の技術分野の通常の技量を有する者は、カルボキ
シル基を支持するように誘導体とすることができるポリマー材料で、前記カルボ
キシル基が表面のフッ化アシル官能基を提供するように改変することができる材
料には、広範囲の材料が含まれることを認識するはずである。例えば、フッ化ア
シルに変換するのに適したカルボキシル基を提供するために、無水コハク酸のよ
うな環状無水物と反応させられたアミノ化ポリプロピレンは特に有用である。
たメチルメタクリレートまたはメチルアクリレートが含まれる。
易に分子の一部を変更できるものは、水酸化ポリアクリロニトリルまたは水酸化
ポリメタクリロニトリルである。
基を形成するための適当な試薬には、カルボキシル反応性のフッ素化試薬が広く
含まれる。最も好ましい試薬は、以下の反応でカルボキシル基側鎖と反応する、
ジエチルアミノ硫黄トリフルオリド((diethylaminosulphu
r)trifluoride(DAST))である。
エチレンアクリル酸コポリマーまたはエチレンメタクリル酸コポリマーの少なく
とも1つの表面を、5%のDAST溶液に数時間曝して修飾する。ジクロロメタ
ンとアセトニトリルの洗浄を用いた反応停止後、このフィルムは、以下に記載の
とおり、生体高分子を固定化または合成するためにいつでも使用できる。有利な
ことには、フッ化アシルで活性化されたポリマー材料は常温で驚異的に安定であ
り、涼しく乾いた環境で保存すると、貯蔵寿命が無限であることが発見された。
リル酸コポリマー製の固形支持体を用意すること、該固形支持体の少なくとも1
つの表面を活性化試薬と反応させることにより、該表面を誘導体にすることを含
む方法により準備されてもよい。適当な活性化試薬はアクリルまたはメタクリル
のカルボキシル基と反応して、例えば活性化アシル官能基のような、反応性のあ
る側鎖の官能基を形成することができる試薬である。
にフッ化アシル官能基側鎖を含むポリマー材料でコーティングすることにより調
製してもよい。例えば、ポリグルタミン酸のカルボキシル基は、DASTのよう
な適当なフッ化試薬によりフッ化アシルに変換されうる。この変換されたポリマ
ー材料をマイクロタイタープレート等の固形支持体にコーティングするために使
用してもよい。
調製に特に有用であるため、前記固形支持体は少なくとも1つの平らな表面を有
する素子の形状とすることが好ましい。前記固形支持体のサイズはいろいろであ
ってもよいが、固定化生体高分子の最終的な用途に依存する。本発明の技術分野
の通常の技量を有する者は、小型化された固形支持体上に固定化された生体高分
子のアレイが多年にわたり開発中であることを承知している。これらの固形支持
体は平方ミリメートルの単位で計測でき、異なる生体高分子が前記小型化された
固形支持体の異なる部位特異的な場所に結合した、多数の異なる固定化生体高分
子をこれらの固形支持体は有することができる。ディップスティック形状の固形
支持体も本発明の範囲に含まれる。本発明の技術分野に知られているとおり、デ
ィップスティックは各辺が数センチメートルの矩形をしているのが典型的である
。反対に、ゲノム全体の配列決定に用いられるポリヌクレオチドアレイのような
大きな生体高分子アレイは、1メートル以上の単位の大きさであってもかまわな
い。
持体はさまざまな形状のいずれの形をとってもよい。例えば、固形支持体の作製
用と同じポリマー材料で生体高分子アレイホルダーを成形することは有利である
。かかるシステムでは、前記ホルダーは固形支持体であり、ロボットアームが反
応ステーションと検出ステーションの間で生体高分子アレイを移動する自動診断
システムによって容易に取り扱われる形状を含めて、いかなる形状であってもよ
い。かかるホルダーが固形支持体のときには、該ホルダーは生体高分子を結合す
るために適した平らなまたは連続的な表面を取り込んでいることが好ましい。
材料でできたものであってもよい。本発明の別の実施態様に従うと、本発明の固
形支持体は、糸、シート、フィルム、ゲル、膜、ビーズ、板等の構造の形状をと
ることができる。本発明のさらなる実施態様に従うと、固形支持体は、ウェルか
、槽か、台か、疎水性または親水性のパッチか、打ち抜き接着性貯留部か、ウェ
ルまたはその他の液体の流れの物理的な障壁を形成する積層された打ち抜きガス
ケットかの形状をした隔離された領域を有する平らな素子の形状をしたプラスチ
ックで作製されていてもよい。かかる固形支持体の例には、マイクロプレートま
たはこれに類するものが含まれるが、これらに限られない。
合ができる条件下で、前記生体高分子を前記固形支持体と接触させることにより
、該固形支持体と結合される。前記未修飾生体高分子を固形支持体に共有結合で
結合するための条件は、前記生体高分子が前記固形支持体のフッ化アシルと反応
することができる場合に十分である。理論に拘束されることを望むわけではない
が、本発明の条件下では未修飾生体高分子は固形支持体に含まれるフッ化官能基
が生体高分子の求核官能基と置換することにより、前記固形支持体と結合するの
かもしれない。
反応を起こさせるような条件下で、前記固形支持体のフッ化アシルで活性化され
た表面を接触させるステップは、pHが好ましくは中性または塩基性の水性バッ
ファーの存在下で、前記固形支持体の表面を前記未修飾ポリヌクレオチドに曝す
ことにより達成される。中性または塩基性のpH条件下で前記フッ化アシル官能
基を前記未修飾ポリヌクレオチドと接触させることにより、前記オリゴヌクレオ
チドは前記固形支持体の表面に直接結合されることになる。本発明の目的のため
には、塩基性のpH条件とは、8より高いpH条件をいう。塩基性のpH条件に
より前記ポリヌクレオチドの前記固形支持体への結合が可能になるとき、この塩
基性のpH条件は十分である。本発明の1の実施態様に従うと、本発明の塩基性
のpH条件とは、約9ないし12のpHである。用いる方法に応じて前記塩基性
pH条件は異なることを理解すべきである。本発明の技術分野の通常の技量を有
する者は、本発明の開示を考慮して、特定の結合反応の塩基性のpH条件を容易
に確かめることができる。
触することができる。例えば、接触のステップは、ジェットプリント法、固形素
子または開放キャピラリー素子接触プリント法、マイクロフルイディックチャン
ネルプリント法、シルクスクリーン法、および電気化学的または電磁的な力に基
づく印刷素子を用いる技術によって実行されるものでもかまわない。代替策とし
ては、前記接触のステップは前記未修飾生体高分子を前記固形支持体にスポット
をすることにより実行されるものでもかまわない。
り未修飾オリゴヌクレオチドに曝される。手作業でのスポットの例には、ピペッ
ターまたはビオメックのピンツールでの手作業のスポットが含まれるが、これら
に限られない。この場合には、好ましい水溶性塩基は、pHが9ないし10の範
囲の炭酸水素ナトリウム−炭酸である。他の実施態様では、前記固形支持体はジ
ェットプリント法の技術により未修飾ポリヌクレオチドに曝される。商業的に入
手可能なジェットプリンターを使用する熱インクジェットプリント技術と、米国
特許第4,877,745号明細書に記載の圧電マイクロジェットプリント技術
とが、未修飾ポリヌクレオチドを固形支持体にスポットするのに利用できる。こ
の場合には、水溶性塩基はpHが約10ないし12のLiCl塩溶液である。
、いかなる方法によって前記生体高分子に曝されてもかまわないことを理解すべ
きである。ここに明示的に記載されていない他の水性バッファーシステムであっ
ても、ひとたび生体高分子と固形支持体が互いに接触すると両者の結合が起こる
のに十分な条件をかかる水性バッファーが提供するものであるかぎり、本発明に
用いてもかまわないことも理解すべきである。
分子のタイプ、分子のサイズ、分子の構造および前記分子の溶解度に影響を与え
うる他の因子に応じて、異なるものであってもよい。例えば、結合したポリマー
がポリヌクレオチドのときには、該ポリヌクレオチドは5nMないし40:Mの
範囲であることが好ましい。5nMないし5:Mの範囲であることがより好まし
い。
応を防ぐために未反応のフッ化アシル官能基をブロックすることが好ましい。本
発明の目的のためには、前記固形支持体に残存するフッ化アシル基は、残存する
表面の反応基を不活性化できるいかなる化学物質によってブロックされてもよい
。例えば、未反応のフッ化アシル官能基は、カルボキシアミドを形成する水酸化
アンモニウムまたはエステルを形成するエタノールと反応させてもかまわない。
しかし、本発明の技術分野の通常の技量を有する者は、多くのブロック反応が可
能であることを認識している。
形支持体表面の部位特異的な場所に固定化されることが要求される。グリッドと
、各生体高分子が部位特異的な場所に位置する1xnの碁盤の目状の固定化生体
高分子とを含む、規則正しい生体高分子のアレイを調製するためには、前記活性
化ポリマー材料の予め選択された部位が、所望の未修飾生体高分子溶液に曝され
る。本発明に従うと、これは、ある量の未修飾生体高分子溶液を前記固形支持体
の予め選択された位置に、手作業でアプライ、すなわち適用することにより達成
することができる。代替策として、商業的に入手可能なジェットプリンターを使
用する熱インクジェットプリント技術と、米国特許第4,877,745号明細
書に記載の圧電マイクロジェットプリント技術とが、選択された固形支持体表面
の部位に選択された未修飾生体高分子をスポットするために利用できる。
修飾生体高分子を、本発明の固形支持体の少なくとも1ないし約1536箇所の
別々の隔離された領域に結合することができる。
、ジェノセンサーおよび差次的遺伝子発現マイクロアレイのようなアレイに基づ
くシステムの構築に利用するのに好適である。本発明の未修飾生体高分子が結合
した固形支持体は、リガンド結合アッセイ用あるいは逆ハイブリダイゼーション
法(プローブが結合したもの)またはサザンブロット法(ターゲットが結合した
もの)のいずれかのよるハイブリダイゼーションアッセイ用の装置として使用し
てもかまわない。かかる装置はイムノアッセイ法にも使用できる。
るための方法を提供する。この方法は、(a)少なくとも1つの表面にフッ化ア
シル官能基側鎖を有する材料でできた固形支持体を用意すること、(b)前記生
体高分子ターゲットと複合体を形成できる第2の生体高分子を含む試薬を用意す
ること、(c)前記試薬と前記生体高分子ターゲットはともに未修飾であり、前
記試薬または前記生体高分子ターゲットのいずれかが前記固形支持体に結合でき
る条件下で、前記固形支持体を前記試薬または前記生体高分子ターゲットのいず
れかと接触させること、(d)前記未修飾試薬と前記未修飾生体高分子ターゲッ
トとの複合体が形成できる条件下で、前記試薬と結合した固形支持体を前記生体
高分子ターゲットと接触させることあるいは前記生体高分子ターゲットと結合し
た固形支持体を前記試薬と接触させること、(e)サンプル中に含まれる前記生
体高分子ターゲットの有無または量の測定値として前記複合体の有無を検出し測
定することを含む。
が本発明の固形支持体と結合できる。例えば、サザンブロット法またはノザンブ
ロット法では、生体高分子ターゲットが先に固形支持体と結合する。好ましくは
標識されたプローブが、前記生体高分子ターゲットの存在を検出するために、前
記固形支持体と接触するために用いられる。反対に、リガンド結合アッセイ法ま
たはアフィニティ精製アッセイ法では、プローブが先に固形支持体と結合するこ
とが好ましい。
し前記生体高分子ターゲットと結合することができる生体高分子を含む。試薬は
、核酸、ポリペプチド、タンパク質、糖質、脂質およびこれらの類似体からなる
グループから選択される生体高分子を含む。例えば、前記生体高分子ターゲット
がポリヌクレオチドのときには、前記試薬はこのターゲットのポリヌクレオチド
と相補的なポリヌクレオチドを含む。前記生体高分子ターゲットがレセプターま
たはリガンドのときには、前記試薬は、前記生体高分子を認識し、前記生体高分
子と結合することができるリガンドまたはレセプターを含む。生体高分子ターゲ
ットが抗原のときには、前記試薬は前記抗原を認識する抗原を含むものであって
もよく、その逆であってもよい。さらに、前記生体高分子ターゲットは結合試薬
で標識されてもよい。この場合には、前記試薬は標識された生体高分子を認識す
る結合試薬を含む。例えば、本発明の生体高分子はビオチンで標識されてもよい
。この場合には、前記試薬は前記生体高分子ターゲットのビオチンと結合可能な
ストレプトアビジンを含む。
合して複合体を形成することができる場合には十分である。かかる条件は、分子
のタイプと結合のタイプに応じて異なる。本発明の技術分野の通常の技量を有す
る者は、本発明の開示を考慮して、適当な結合条件を容易に決定することができ
る。
とも、レポーター分子で標識することができる。レポーター分子の例には、化学
発光化合物、酵素、蛍光化合物、金属複合体、磁性粒子、ビオチン、ハプテン、
電波発信器および放射発光化合物が含まれるが、これらに限られない。本発明の
技術分野の通常の技量を有する者は、ひとたび生体高分子ターゲットが決定され
ると、使用すべきレポーター分子のタイプを決定することが容易にできる。
その他のアッセイ法を実行するための素子を提供することでもある。本発明の素
子は、複数の未修飾生体高分子と固形支持体とを含む。前記固形支持体はフッ化
アシル官能基側鎖を含む少なくとも1つの表面を有し、前記生体高分子は、前記
フッ化アシル官能基側鎖との反応により、前記固形支持体と結合する。
るものであってもよい。前記生体高分子が異なる場合には、アレイを形成する固
形支持体の別々の隔離された領域に位置することが好ましい。例えば、固形支持
体はマイクロプレートであってもよい。アレイを形成するために、異なる生体高
分子をマイクロプレートの異なるウェルに結合してもよい。本発明の1の実施態
様に従うと、プローブのような、少なくとも1ないし1536個の未修飾生体高
分子が、マイクロプレートの少なくとも1ないし1536個のウェルに結合して
もよい。
理された表面であってもよく、生体高分子を前記フッ化アシル官能基側鎖との反
応によって前記固形支持体に結合してもよい。代替策として、本発明の生体高分
子はフッ化アシル官能基側鎖を含むプラスチックディスクの表面にプリントされ
たものであってもよく、前記ディスクは前記マイクロプレートの底に挿入されて
もよい。
るものではない。かかる実施例は使用されるであろうものの典型的なものである
が、本発明の技術分野の通常の技量を有する者に知られた他の手順が代替的に使
用されてもかまわない。実際、本発明の技術分野の通常の技量を有する者は、本
明細書の開示に基づき、過度の実験を伴うことなく、さらなる実施態様を予見し
作成することが容易にできる。
未修飾オリゴヌクレオチドプライマーを、LiCl:水を体積比60:25でお
およそ飽和した飽和LiCl、pH12のストック溶液に希釈することにより調
製した。得られたプリントインクは、オリゴヌクレオチドの最終濃度が10μM
であった。BioDot Dispenserシステムを使用して、それぞれの
インクを12.5nlジェット噴射することにより、フッ化アシルで活性化され
たエチレンメタクリル酸コポリマー(EMA)製の成形されたピース(バイオチ
ップ)の上にプライマーを付着してアレイを形成した。9x8のアレイは、4個
の遺伝子について3’と5’のプライマーの対のそれぞれを9回繰り返してスポ
ットしたものからなる(9x2x4=72個のスポット)。プリント後、前記ア
レイは終夜真空乾燥し、残存する表面の反応基を2時間エタノール中で不活性化
(ブロック)した。ハイブリダイゼーションに使用する準備として、前記アレイ
を短時間水でリンスした。
リントした。cDNAはビオチン標識を取り込むことなく第1鎖DNAをPCR
で増幅した。cDNAのPCR産物(cDNAアンプリコン)は、プライマーと
、dNTPsと、補助因子と、Taq酵素とを除去するために、ゲル濾過スピン
カラム(Xtreme、Pierce Chemical)を使用して精製した
。前記アンプリコンは脱イオン水で前記カラムから溶出し、1M LiCl、p
H12に希釈して、cDNAの最終濃度5nMでLiCl:水が体積比1:1の
インクができるようにプリント用に調製した。アレイがアクチンcDNA、ベー
タミクログロブリンcDNA、G3PDHcDNA、p53cDNA、トランス
フェリンcDNAおよびTNFアルファcDNAという6個の遺伝子について9
回の繰り返しからなる(9x6=54個のスポット)ことを除いて、プライマー
プリントについて記載したのと同じスポット手順が用いられた。分注された液滴
のサイズは約16nlであった。
、15分間200μlの変性剤(0.15M NaCl、0.5M NaOH)
中で変性し、ストリンジェンシーバッファー(2xSSC、0.01% SDS
、pH7.0)でリンスした。プライマーアレイのバイオチップの場合には、変
性のステップは用いられなかった。以下のとおり、第1鎖cDNAのプール(肝
臓)由来のアクチン、G3PDH、p53およびTNFアルファのビオチン標識
されたPCR産物を、プライマーアレイまたはcDNAアレイとのハイブリダイ
ゼーションのために調製した:10μlのPCR溶液を10μlの水で希釈し5
0μlの変性剤を加えた。この溶液を10分間常温でインキュベーションして、
その後、150μlの中和バッファー(0.3M Tris、pH 7.5、2
.4xSSC、0.02% SDS)を添加した。混合した後、この溶液を24
穴ポリプロピレン細胞培養プレートのウェルに入れ、前記バイオチップを浸した
。ハイブリダイゼーションは、cDNAアレイについては60分間25°C、プ
ライマーアレイについては60°C60分間、加湿チャンバー中で振盪しながら
行った。前記バイオチップはその後ハイブリダイゼーション溶液から取り出して
、2xSSC、0.01% SDSを含む別のウェルに(ハイブリダイゼーショ
ンに用いたのと同じ温度での)10分間のストリンジェンシーリンスのために移
した。前記ストリンジェンシーバッファーでの最後のリンスの後、前記バイオチ
ップは過剰の溶液を除くためにブロットし、すなわち吸い取り紙で乾かし、スト
レプトアビジン−アルカリフォスファターゼ結合体中で30分間常温で静置した
。ストリンジェンシーバッファー中での大量のリンスの後、前記バイオチップを
再度ブロットし、ELF試薬(アルカリフォスファターゼ用の蛍光基質、Mol
ecular Probe、Inc.)中に置いてシグナルを現像した。前記シ
グナルは30分間現像した。短時間の水でのリンスの後、このアレイのシグナル
はCCDカメラシステムを用いて読みとられた。
NAはこれらに対応する固相のプライマーと特異的なハイブリダイゼーションを
したが、p53由来のcDNAはG3PDHプライマーと交差的なハイブリダイ
ゼーションを示した。TNFアルファもアクチンおよびp53の3’プライマー
と交差的なハイブリダイゼーションをした。これらの結果は、同じ手順で固定化
したプローブcDNAとハイブリダイゼーションをした標識cDNAターゲット
を用いた結果と同様である(図1b)。
ーは、0.5M 炭酸水素ナトリウムバッファー、pH9中で、以下のスポット
用濃度で調製された。 プライマー μM(最終濃度) アクチン 3’ 5.01 アクチン 5’ 5.00 p53 3’ 3.73 p53 5’ 3.83 TNF 3’ 3.80 TNF 5’ 3.70
ラスチック支持体(EMA)上に、手動のピペッターを使用してスポットし、図
2に示すパターンと同様のアレイを作った。
ーションを行った。これらは、その後、前記チャンバーから取り出して、25分
間常温で風乾し、次に30°Cで10分間さらに乾燥した。前記プラスチック支
持体をエタノール中に60分間浸して残存する表面の反応基をブロックし、最後
に10分間脱イオン水中に浸した。
のビオチン標識PCR産物を以下のとおりプライマーアレイとのハイブリダイゼ
ーション用に調製した:10μlのPCR溶液を10μlの水で希釈し、30μ
lの変性剤を加えた。この溶液を10分間常温でインキュベーションした後、1
50μlの中和バッファーを加えた。混合した後、この溶液を24穴ポリプロピ
レン細胞培養プレートのウェルに入れて、バイオチップを浸した。ハイブリダイ
ゼーションは60分間60°Cで加湿チャンバー中で振盪しながら進行させた。
前記バイオチップはその後ハイブリダイゼーション溶液から取り出して、2xS
SC、0.01% SDSを含む別のウェルに置いて60°C10分間ストリン
ジェンシーリンスを行った。前記ストリンジェンシーバッファー中での最後のリ
ンスの後、前記バイオチップをブロットして余分な溶液を除き、ストレプトアビ
ジン−アルカリフォスファターゼ結合体中で30分間常温に置いた。ストリンジ
ェンシーバッファー中での大量のリンスの後、前記バイオチップを再度ブロット
して、シグナル現像用のELF試薬中に置いた。シグナルは30分間現像された
。短時間の水でのリンスに続いて、アレイのシグナルはCCDカメラシステムを
使用して読みとられた。
トは、対応する固定化プライマープローブに対して特異的にハイブリダイゼーシ
ョンをした。アクチンおよびp53のターゲットは表面につながれた非相補的な
プライマープローブに対してほとんど交差的なハイブリダイゼーションが見られ
なかった。しかし、TNFのターゲットは、特に3’プライマーに対して顕著な
交差的なハイブリダイゼーションを示した。
ローブは、飽和LiCl、pH12への希釈により、飽和LiCl:水が体積比
60:25となるプリント用インクで、最終濃度がFibについては10μMか
ら40μM、Fib−aについては10μMとなるように調製された。BioD
ot Dispenserシステムを使用して、各プローブについて9回の繰り
返しスポットを、それぞれのインクを16nlずつジェット噴射することにより
、フッ化アシルで活性化されたエチレンメタクリル酸コポリマー(EMA)製の
成形されたピース(バイオチップ)の上に付着してアレイを形成した。プリント
後、前記アレイは終夜真空乾燥し、残存する表面の反応基を2時間エタノール中
で不活性化(クエンチ)した。ハイブリダイゼーションに使用する準備として、
前記アレイを短時間水でリンスした。
30μlの変性剤を混合して調製した。前記ターゲットを10分間常温で変性条
件下に置いた後、150μlの中和バッファーを加えた。前記バイオチップを2
4穴ポリプロピレン細胞培養プレートのウェルに入れた前記溶液中に浸し、該プ
レートを60分間60°Cで加湿チャンバー中に置いた。2xSSC、0.01
% SDS、pH7.0のストリンジェンシーバッファー中での10分間のリン
スに続き、ストリンジェンシーバッファー中で調製されたストレプトアビジン−
アルカリフォスファターゼ結合体中で30分間常温でインキュベーションした。
ストリンジェンシーバッファー中での大量のリンスの後、前記バイオチップを2
回ストリンジェンシーバッファーでリンスして未結合の結合体を除き、シグナル
を現像するためにELF試薬中に30分間浸した。短時間の水でのリンスに続い
て、バイオチップのアレイのシグナルはCCDカメラシステムを使用して読みと
られた。
修飾および未修飾の両方の相補的なプローブに対してハイブリダイゼーションを
したことを示す。
3個の別々のバイオチップアレイについて行った。図5は、標準偏差から推測さ
れる数値範囲を考慮すると、アミノ修飾プローブと未修飾プローブに対するハイ
ブリダイゼーションがほぼ同レベルであったことを示す。
、アミン官能基を無水コハク酸との反応によりカルボキシル基に変換した。フッ
化アシルによる活性化は、共に出願中の米国特許出願第08/797,222号
出願明細書に既に記載のとおり、DAST試薬を使用して達成された。フッ化ア
シルで活性化されたポリプロピレンフィルムは、アルゴン存在下−20°Cで乾
燥状態で必要なときまで保存された。
ーと、dNTPsと、補助因子と、Taq酵素とを除去するために、ゲル濾過ス
ピンカラム(Xtreme、Pierce Chemical)を使用して精製
した。この精製cDNAは水でカラムから溶出され、カップリングのために0.
5M 炭酸水素ナトリウムバッファー、pH9で希釈された。384本ピンHD
RTシステムを備えたBiomek2000(登録商標)ロボットシステムが基
質にcDNA溶液をプリントするために使用された。BAPAマーカー、すなわ
ち5−(ビオチンアミド)ペンチルアミン(Pierce Chemical)
も前記フィルムの両端にプリントし、これにより結合したcDNAを挟んだ。ハ
イブリダイゼーションと無関係にストレプトアビジン−酵素結合体と結合するB
APAは、アッセイがうまくいっていること(robustness)について
の内部対照の役割を果たす。プリント後、前記フィルムを35°C15分間乾燥
してから、残存する表面の反応基をブロックするために2時間エタノール中に浸
した。前記フィルムを脱イオン水で短時間リンスして、風乾した。8cmx12
cmのフィルムを12枚に分割し、それぞれの短冊(strip)には各cDN
Aの3x3の繰り返しを2回と、前記BAPAマーカーの3x3の繰り返しを6
回とが含まれた。得られたcDNAアレイフィルムをハイブリダイゼーションま
で−20度または室温で乾燥状態で保存した。
ラス製スライド上に分注した150μlの変性剤中で15分間変性した。この変
性のステップに続いて、前記フィルムの短冊を前記スライドから取り出して、残
存する変性剤を除去するためにストリンジェンシーバッファー中でリンスした。
第1鎖cDNAのプール(肝臓腫瘍)由来のアクチン、G3PDHおよびTNF
アルファのビオチン標識されたPCR産物の混合物を、15mlポリプロピレン
試験管中で以下のとおりハイブリダイゼーション用に調製した:それぞれのcD
NAのPCR溶液15μlを混合し180μlの水で希釈した。そして337.
5μlの変性剤を添加した。変性を10分間常温で行い、1687.5μlの中
和バッファーを前記試験管に添加した。150μlのアリコートを顕微鏡用ガラ
ス製スライドに移し、フィルムアレイを、DNAの結合した面を下にして、この
溶液の上に載せた。ハイブリダイゼーションは加湿チャンバー中で振盪しながら
60分間60°Cで行った。前記フィルムの短冊を前記ハイブリダイゼーション
溶液から取り出し、50mlポリプロピレン製ねじ蓋付き培養試験管に移して、
まず短時間リンスした後、60°Cに予め加熱した40mlの2xSSC、0.
01% SDSバッファーに60°C10分間ストリンジェンシーリンスのため
に浸した。このストリンジェンシーバッファー中での最後のリンスの後、前記フ
ィルムをブロットして余分な溶液を除き、30分間常温でストレプトアビジン−
アルカリフォスファターゼ結合体の溶液を顕微鏡用ガラス製スライド上に置いた
。大量のストリンジェンシーバッファー中でのリンスに続き、前記フィルムを再
度ブロットして、シグナル現像用のELF試薬中に置いた。シグナルは30分間
現像した。短時間水でリンスした後、アレイシグナルはCCDカメラシステムを
使用して読みとられた。
、cDNAとBAPAマーカーのアレイをフッ化アシルで活性化されたポリプロ
ピレンフィルム上にプリントすることには成功していた(図6)。図6は、(3
枚の別々のフィルム短冊に7日目にハイブリダイゼーションを行った)フッ化ア
シルで活性化されたポリプロピレンフィルム上のcDNAとBAPAマーカーの
BiomekHDRTによるプリントを示す。フィルムアレイの保存は、常温で
も−20°Cでも、約3箇月の期間ではハイブリダイゼーションに悪影響を与え
なかった(図7)。図7は、ポリプロピレンを用いたcDNAアレイの安定性を
示す。長期にわたるアッセイ条件の相違を説明するために、シグナル強度をBA
PAマーカー強度に対して規格化(normalized)した。全てのcDN
Aプローブについて、どちらの保存条件でもハイブリダイゼーション効率が変わ
らなかった。TNFのシグナルはBAPAマーカーのシグナルよりもいつも弱か
ったが、他のcDNAハイブリダイゼーションシグナルはBAPAマーカーのシ
グナルとほぼ同じ強度のままであった。
e(登録商標)(ロット番号#95120774) 2.ウサギ抗ヤギIgG(H+L):Zymed Laboratories、
South San Francisco、カリフォルニア州(ロット番号#2
112098) 3.3. ヤギ抗ビオチンIgG:Sigma Chemical Co
.(ロット番号#116H8842)、アフィニティ精製抗体、PBS中に1m
g/mlで再構成。 4.プロテインA:Zymed Laboratories、South Sa
n Francisco、カリフォルニア州(ロット番号#21212416)
;脱イオン水2ml中に5mgを再構成(2.5mg/ml)。 5.ストレプトアビジン(S.avidinii由来):Zymed Labo
ratories、South San Francisco、カリフォルニア
州(ロット番号#70536128);脱イオン水1ml中に5mgを再構成(
5mg/ml)。 6.カゼイン:Hammersten(ロット番号#BDH44020) 7.カップリングバッファー:1M 炭酸ナトリウム、pH9または10をタン
パク質溶液で0.8Mに希釈 8.ELF(登録商標)試薬(ELF(登録商標)−97内在性フォスファター
ゼ検出キット):Molecular Probes、Eugene、オレゴン
州(ロット番号#6771) 9.高塩濃度バッファー:1.0M Tris、1.5M NaCl、pH7.
5(Digene Neutralizing Buffer);Digene Diagnostics、Beltsville、メリーランド州(ロット番
号#0094MX95) 10.クエンチ/ブロックバッファー:1mg/ml カゼイン、50mM 炭
酸、0.15M NaCl、pH8.5 11.TBS:50 mM Tris、0.15 M NaCl、pH7.5
M 炭酸バッファー、pH9または10で0.5−1.0mg/mlの濃度に希
釈した。これらのタンパク質溶液をフッ化アシルで活性化したプラスチック製バ
イオチップの表面に0.5μlの液滴として添加した。チップは加湿したチャン
バー中で25°C1時間インキュベーションをした。チップを前記チャンバーか
ら取り出し、完全に風乾した(約15分)後、クエンチ/ブロック溶液中に置い
た。チップを24穴プレート中で1.0mlの溶液に入れ、最小限30分間激し
くvortexで撹拌することにより、クエンチした。クエンチ後、チップを脱
イオン水で10分間振盪しながらリンスして、風乾した。
なわち19部の試薬Bを1部の試薬Aに加える)に従って50μlのELF試薬
を調製して、前記チップの表面に適用した。ELF試薬が付着したチップを、湿
度を維持するために水を半分満たした箱の中で30分間インキュベーションをし
た。その後、前記チップを脱イオン水で3回リンスした。前記チップを365n
mの紫外線励起光と520nmのレンズフィルターで写真撮影した。CCDカメ
ラの露出時間は10秒が典型的であった。
のヤギ抗ビオチンIgGで1時間、その後2xSSC、0.01% SDS中の
ビオチン−アルカリフォスファターゼ結合体で1時間、それぞれインキュベーシ
ョンした。ELFで現像した。固定化されたプロテインAはここに記載のサンド
イッチイムノアッセイ法においてウサギ(Rb)抗体を捕捉する機能があること
が証明された。
時間インキュベーションをした。異なるブロック試薬(1mg/ml)中でVo
rtexerにより1時間撹拌してクエンチした。
ン化アルカリフォスファターゼを1時間インキュベーションした。ELF試薬の
インキュベーションは30分間室温で行った。固定化ストレプトアビジンは、非
特異的結合を減少させることを目的とするさまざまなブロック条件下で、ビオチ
ン化酵素を特異的に捕捉する機能があることが証明された(図9)。
2.PBS、pH7.2中の1.0mg/ml、60分間のインキュベーション
3.0.8M 炭酸バッファー、pH10中の0.5mg/ml、30分間のイ
ンキュベーション 4.0.8M 炭酸バッファー、pH10中の0.5mg/ml、60分間のイ
ンキュベーション
ーゼ結合体と、抗体とのインキュベーションと同じ時間インキュベーションをし
た。ELF試薬による現像は室温で30分間行った。ヤギ抗ビオチンIgGとい
う抗体の固定化はpH7.2でもpH10でも成功したことが、ビオチン標識さ
れたレポーター酵素(アルカリフォスファターゼ)の特異的な捕捉により証明さ
れた。
を目的とするものではない。実際、本発明の技術分野の通常の技量を有する者は
、ここでの開示に基づいて過度の実験を伴うことなく、さらなる実施態様を予見
し作成することができる。
ことにより、より明確となり、最もうまく理解できる。これらの図面は本発明の
典型的な実施態様のみを描写しており、本発明の範囲を限定するものではない。
ットcDNAの、これらに対応する固相プライマーに対するハイブリダイゼーシ
ョンの結果を示す。 図1bは標識されたcDNAターゲットの、同じ手順で固定化されたこれらに
対応するプローブcDNAに対するハイブリダイゼーションの結果を示す。
スポットしたアレイに対するハイブリダイゼーションの結果を示す。
び未修飾の相補的なプローブに対するハイブリダイゼーションの結果を示す。
。
マーカーのBiomekHDRTによるプリントを示す。
Claims (71)
- 【請求項1】(a)未修飾生体高分子を用意するステップ、(b)フッ化ア
シル官能基側鎖を含む表面が少なくとも1つある固形支持体を用意するステップ
、(c)前記未修飾生体高分子と前記固形支持体とが結合できるのに十分な条件
下で、前記生体高分子を前記固形支持体と接触させるステップを含む、未修飾生
体高分子を固形支持体と結合する方法。 - 【請求項2】前記生体高分子は、核酸、ポリペプチド、タンパク質、糖質、
脂質およびこれらの類似体からなるグループから選択される、請求項1に記載の
方法。 - 【請求項3】前記生体高分子は、ポリヌクレオチド、プロテインA、抗体ま
たはストレプトアビジンからなるグループから選択される、請求項2に記載の方
法。 - 【請求項4】前記生体高分子は、ポリヌクレオチドである。請求項3に記載
の方法。 - 【請求項5】前記ポリヌクレオチドは、合成オリゴヌクレオチド、増幅され
たDNA、cDNA、1本鎖DNA、2本鎖DNA、PNA、RNAまたはmR
NAからなるグループから選択される、請求項4に記載の方法。 - 【請求項6】前記ポリヌクレオチドの長さは約3bpないし10kbの範囲
内にある、請求項4に記載の方法。 - 【請求項7】前記ポリヌクレオチドの長さは約100bpないし1.5kb
の範囲内にある、請求項6に記載の方法。 - 【請求項8】前記オリゴヌクレオチドの長さは約3ないし100個のオリゴ
ヌクレオチドの範囲内にある、請求項5に記載の方法。 - 【請求項9】前記オリゴヌクレオチドの長さは約15ないし20個のオリゴ
ヌクレオチドの範囲内にある、請求項8に記載の方法。 - 【請求項10】前記固形支持体は、ポリマー材料、ガラス、セラミック、天
然繊維、シリコン、金属およびこれらの複合材料からなるグループから選択され
る、請求項1に記載の方法。 - 【請求項11】前記固形支持体は、エチレンアシル酸、エチレンメタルリル
酸、カルボキシ化PVDF、カルボキシ化ポリプロピレンまたはカルボキシ化ポ
リエチレンおよびこれらのコポリマーからなるグループから選択されるポリマー
材料である、請求項1に記載の方法。 - 【請求項12】前記(b)のステップには、さらに不活性の固形支持体を、
フッ化アシル官能基側鎖を含むポリマー材料か、あるいはフッ化アシル官能基側
鎖を支持することができるポリマー材料でコーティングすることを含む、請求項
1に記載の方法。 - 【請求項13】前記固形支持体の材料は多孔質または非孔質である、請求項
1に記載の方法。 - 【請求項14】前記固形支持体の形状は、糸、シート、フィルム、ゲル、膜
、ビーズ、板およびこれらに類する構造である、請求項14に記載の方法。 - 【請求項15】前記固形支持体は、ウェルか、槽か、台か、疎水性または親
水性のパッチか、打ち抜き接着性貯留部か、その他の液体の流れの物理的な障壁
かの形状をした隔離された領域を有する平らな素子の形状をしたプラスチックで
作製される、請求項1に記載の方法。 - 【請求項16】前記固形支持体はマイクロプレートである、請求項15に記
載の方法。 - 【請求項17】前記プラスチックはフッ化アシル官能基で処理された表面を
有するポリプロピレンである、請求項15に記載の方法。 - 【請求項18】前記接触のステップは、ジェットプリント法、固形素子また
は開放キャピラリー素子接触プリント法、マイクロフルイディックチャンネルプ
リント法、シルクスクリーン法および電気化学的または電磁的な力に基づく印刷
素子を用いる技術からなるグループから選択される技術により実行される、請求
項1に記載の方法。 - 【請求項19】前記接触のステップは前記未修飾生体高分子を前記固形支持
体にスポットすることにより実行される、請求項18に記載の方法。 - 【請求項20】前記条件は塩基性pH条件である、請求項1に記載の方法。
- 【請求項21】前記塩基性pH条件はプリント溶液をpH約8ないし13に
維持される、請求項20に記載の方法。 - 【請求項22】前記プリント溶液は塩を含む、請求項21に記載の方法。
- 【請求項23】前記塩はLiClである、請求項22に記載の方法。
- 【請求項24】前記プリント溶液は炭酸水素ナトリウム−炭酸バッファーを
含む、請求項21に記載の方法。 - 【請求項25】前記塩基性条件はpH9ないし12である、請求項20に記
載の方法。 - 【請求項26】前記生体高分子はポリヌクレオチドで、該ポリヌクレオチド
はpH9ないし10の条件下で前記固形支持体にスポットされる、請求項1に記
載の方法。 - 【請求項27】前記生体高分子はポリヌクレオチドで、該ポリヌクレオチド
をpH10ないし12の条件下でジェットプリントする、請求項1に記載の方法
。 - 【請求項28】サンプル中の生体高分子ターゲットを分析する方法であって
、(a)フッ化アシル基側鎖を少なくとも1つの表面に有する材料で作製された
固形支持体を用意するステップと、(b)前記生体高分子ターゲットと複合体を
形成でき、第2の生体高分子を含む試薬を用意するステップと、(c)前記試薬
および前記生体高分子ターゲットはともに未修飾で、前記試薬または前記生体高
分子ターゲットのいずれかを前記固形支持体と結合できる条件下で、前記未修飾
試薬または前記未修飾生体高分子ターゲットのいずれかと前記固形支持体を接触
させるステップと、(d)前記未修飾試薬と前記生体高分子ターゲットとが複合
体を形成できる条件下で、前記未修飾試薬と結合した前記固形支持体を前記生体
高分子ターゲットと接触させるステップまたは前記未修飾生体高分子と結合した
固形支持体を前記試薬と接触させるステップと、(e)前記サンプル中に含まれ
る前記生体高分子ターゲットの存在の測定値として、前記複合体の存在を検出し
測定するステップとを含む、サンプル中の生体高分子ターゲットを分析する方法
。 - 【請求項29】前記(c)のステップにおいて前記試薬は前記固形支持体の
表面に結合し、前記(d)のステップにおいて、前記試薬と前記生体高分子ター
ゲットを含まれる複合体を形成できる条件下で、前記未修飾試薬と結合した前記
固形支持体は前記生体高分子ターゲットと接触する、請求項28に記載の方法。 - 【請求項30】前記(c)のステップにおいて前記生体高分子ターゲットは
前記固形支持体の表面に結合し、前記(d)のステップにおいて、前記未修飾生
体高分子ターゲットと結合した前記固形支持体は、前記試薬と前記生体高分子タ
ーゲットを含む複合体を形成できる条件下で、前記試薬と接触する、請求項28
に記載の方法。 - 【請求項31】前記生体高分子ターゲットは、核酸、ポリペプチド、タンパ
ク質、糖質、脂質およびこれらの類似体からなるグループから選択される、請求
項28に記載の方法。 - 【請求項32】前記生体高分子ターゲットは、ポリヌクレオチド、プロテイ
ンA、抗体またはストレプトアビジンからなるグループから選択される、請求項
28に記載の方法。 - 【請求項33】前記試薬は、核酸、ポリペプチド、タンパク質、糖質、脂質
およびこれらの類似体からなるグループから選択される生体高分子を含む、請求
項28に記載の方法。 - 【請求項34】前記試薬は、ポリヌクレオチド、プロテインA、抗体または
ストレプトアビジンからなるグループから選択される生体高分子を含む、請求項
28に記載の方法。 - 【請求項35】前記生体高分子ターゲットはポリヌクレオチドで、前記試薬
は該ポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドプローブを含む、請求項28
に記載の方法。 - 【請求項36】前記複合体は前記ポリヌクレオチドと前記ポリヌクレオチド
プローブを含み、前記複合体は前記ポリヌクレオチドプローブと前記ポリヌクレ
オチドとのハイブリダイゼーションにより形成される、請求項35に記載の方法
。 - 【請求項37】前記生体高分子はタンパク質で、前記試薬は該蛋白質を認識
する抗体を含む、請求項28に記載の方法。 - 【請求項38】前記複合体は前記タンパク質と該タンパク質に対する抗体を
含み、前記複合体は前記抗体の前記タンパク質への結合により形成される、請求
項37に記載の方法。 - 【請求項39】前記生体高分子はリガンドで、前記試薬は該リガンドと結合
できるレセプターを含む、請求項28に記載の方法。 - 【請求項40】前記生体高分子はレセプターで、前記試薬は該レセプターと
結合できるリガンドを含む、請求項28に記載の方法。 - 【請求項41】前記複合体は前記リガンドと前記タンパク質を含み、前記複
合体は前記リガンドと前記レセプターとの結合により形成される、請求項39ま
たは40に記載の方法。 - 【請求項42】前記(c)のステップにおいて、前記試薬または前記生体高
分子ターゲットは前記固形支持体の表面に共有結合により結合する、請求項28
に記載の方法。 - 【請求項43】前記複合体はさらに色素、化学発光化合物、酵素、蛍光化合
物、金属複合体、磁性粒子、ビオチン、ハプテン、電波発信器および放射発光化
合物からなるグループから選択されるレポーター分子を含む、請求項28に記載
の方法。 - 【請求項44】前記固形支持体は、ポリマー材料、ガラス、セラミック、天
然繊維、シリコン、金属およびこれらの複合材料からなるグループから選択され
る、請求項28に記載の方法。 - 【請求項45】前記固形支持体は、エチレンアシル酸、エチレンメタルリル
酸、カルボキシ化PVDF、カルボキシ化ポリプロピレンまたはカルボキシ化ポ
リエチレンおよびこれらのコポリマーからなるグループから選択されるポリマー
材料である、請求項28に記載の方法。 - 【請求項46】前記(a)のステップには、さらに不活性の固形支持体を、
フッ化アシル官能基側鎖を含むポリマー材料か、あるいはフッ化アシル官能基側
鎖を支持することができるポリマー材料かでコーティングすることを含む、請求
項28に記載の方法。 - 【請求項47】前記固形支持体の形状は、糸、シート、フィルム、ゲル、膜
、ビーズ、板およびこれらに類する構造である、請求項28に記載の方法。 - 【請求項48】前記固形支持体は、ウェルか、槽か、台か、疎水性または親
水性のパッチか、打ち抜き接着性貯留部か、その他の液体の流れの物理的な障壁
かの形状をした隔離された領域を有する平らな素子の形状をしたプラスチックで
作製される、請求項28に記載の方法。 - 【請求項49】前記固形支持体はマイクロプレートである、請求項48に記
載の方法。 - 【請求項50】前記プラスチックはフッ化アシル官能基で表面処理されたポ
リプロピレンである、請求項48に記載の方法。 - 【請求項51】前記試薬または前記生体高分子ターゲットは、フッ化アシル
官能基側鎖を含むプラスチックディスクの表面にプリントされ、該ディスクは前
記マイクロプレートのウェルの底に挿入され、前記未修飾試薬または未修飾生体
高分子ターゲットと結合した固形支持体を形成する、請求項28に記載の方法。 - 【請求項52】同じまたは異なる未修飾試薬か、前記生体高分子ターゲット
かを前記平らな素子の異なる隔離された領域に結合してアレイを形成する、請求
項48に記載の方法。 - 【請求項53】少なくとも1ないし約1536個の未修飾試薬または生体高
分子を平らな素子の少なくとも1ないし約1536箇所別々の隔離された領域に
結合する、請求項48に記載の方法。 - 【請求項54】前記平らな素子はマイクロプレートで、前記隔離された領域
は該マイクロプレートのウェルである、請求項53に記載の方法。 - 【請求項55】複数の未修飾生体高分子と固形支持体を含む素子であって、
該固形支持体はフッ化アシル官能基側鎖を含む少なくとも1つの表面を有し、該
フッ化アシル官能基側鎖との反応により前記生体高分子は前記固形支持体と結合
する素子。 - 【請求項56】前記生体高分子は、核酸、ポリペプチド、タンパク質、糖質
、脂質およびこれらの類似体からなるグループから選択される、請求項55に記
載の素子。 - 【請求項57】前記生体高分子は、ポリヌクレオチド、プロテインA、抗体
またはストレプトアビジンからなるグループから選択される、請求項55に記載
の素子。 - 【請求項58】前記生体高分子はポリヌクレオチドである、請求項55に記
載の素子。 - 【請求項59】前記オリゴヌクレオチドは、合成オリゴヌクレオチド、増幅
されたDNA、cDNA、1本鎖DNA、2本鎖DNA、PNA、RNAまたは
mRNAからなるグループから選択される、請求項58に記載の素子。 - 【請求項60】前記生体高分子は同じものでも異なるものでもよい、請求項
55に記載の素子。 - 【請求項61】前記固形支持体は、ポリマー材料、ガラス、セラミック、天
然繊維、シリコン、金属およびこれらの複合材料である、請求項55に記載の素
子。 - 【請求項62】前記固形支持体は、エチレンアシル酸、エチレンメタルリル
酸、カルボキシ化PVDF、カルボキシ化ポリプロピレンまたはカルボキシ化ポ
リエチレンおよびこれらのコポリマーからなるグループから選択されるポリマー
材料である、請求項55に記載の素子。 - 【請求項63】前記固形支持体の形状は、糸、シート、フィルム、ゲル、膜
、ビーズ、板およびこれらに類する構造である、請求項55に記載の素子。 - 【請求項64】前記固形支持体は、ウェルか、槽か、台か、疎水性または親
水性のパッチか、打ち抜き接着性貯留部か、その他の液体の流れの物理的な障壁
かの形状をした隔離された領域を有する平らな素子の形状をしたプラスチックで
作製される、請求項55に記載の素子。 - 【請求項65】前記固形支持体はマイクロプレートである、請求項64に記
載の素子。 - 【請求項66】前記プラスチックはフッ化アシル官能基で表面処理されてい
る、請求項64に記載の素子。 - 【請求項67】前記プラスチックは、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリ
スルホン、ポリエチレンおよびこれらのコポリマーからなるグループから選択さ
れる、請求項66に記載の素子。 - 【請求項68】前記生体高分子は異なる隔離された領域に結合してアレイを
形成し、該生体高分子は同じものでも異なるものでもよい、請求項64に記載の
素子。 - 【請求項69】前記素子は、(a)複数の未修飾生体高分子を用意すること
、(b)フッ化アシル官能基側鎖を含む少なくとも1つの表面を揺する固形支持
体を用意すること、(c)前記複数の未修飾生体高分子のそれぞれが前記固形支
持体と該固形支持体の別々の場所で結合することができる条件下で、前記複数の
生体高分子と前記固形支持体を接触することを含む方法により調製される、請求
項55に記載の素子。 - 【請求項70】前記固形支持体は複数の隔離された場所を有し、前記生体高
分子は前記固形支持体とそれぞれの隔離された場所で結合する、請求項69に記
載の素子。 - 【請求項71】前記生体高分子は同じものまたは異なるものである、請求項
71に記載の素子。
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