JP2002519009A - 外来性因子および毒素を減弱するための方法ならびにそれにより産生される細胞培養試薬。 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、目的のサンプル中に存在する外来性因子または毒素を減弱、実質的に減弱、不活化または排除するためにサンプルを処理することに関する。これらの目的は、このサンプルを乾燥することまたは実質的に乾燥することによって達成される。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 （発明の分野） 本発明は、一般に、任意のサンプル（液体サンプルまたは乾燥サンプルを含む
）において、外来性因子（例えば、ウイルス、細菌、マイコプラズマ、および、
急性または慢性の毒性／疾患を生じるタンパク質（すなわち、プリオン）のよう
な非細胞性化合物）を減弱、実質的に減弱または排除するための方法に関する。
従って、本発明は、このようなサンプルの滅菌または実質的な滅菌に関する。よ
り詳細には、本発明は、細胞培養において細胞により利用される栄養素または成
分を含む液体および粉末の細胞培養試薬、およびこのような方法により産生され
る栄養培地処方物（特に、細胞のインビトロ培養を容易にする必須栄養因子の全
てを含む細胞培養培地処方物）を提供する。このような栄養素または成分は、１
つ以上のタンパク質、炭水化物、脂質、アミノ酸、ビタミン、核酸、ＤＮＡ、Ｒ
ＮＡ、微量金属および緩衝液を、単独かまたは組み合わせて含み得る。本発明は
また、本発明の方法により産生された、液体および粉末培地補充物（例えば、血
清（例えば、ウシ胎仔血清または他の動物（すなわち、ブタ、ウマ魚類など）ま
たはヒト起源血清）のような液体または乾燥粉末の血液由来産物）に関する。本
発明はまた、本発明の方法により産生された、液体および乾燥粉末の緩衝液処方
物ならびに培地サブグループに関する。本発明はまた、本発明により産生された
サンプルを含有するキット、特に栄養素、培地、培地補充物、培地サブグループ
のような細胞培養試薬、ならびにこれらの細胞培養試薬を用いる原核生物細胞お
よび真核生物細胞の培養方法に関する。

【０００２】 （発明の背景） （細胞培養培地） 細胞培養培地は、制御され、人工的なそしてインビトロの環境で、細胞を維持
し、そして増殖させるために必要な栄養素を提供する。細胞培養培地の特徴およ
び組成は、特定の細胞要件に依存して変化する。重要なパラメーターとしては浸
透圧、ｐＨおよび栄養素の処方が挙げられる。

【０００３】 培地処方物が、動物細胞、植物細胞、酵母細胞および原核生物細胞（細菌細胞
を含む）を含む多数の細胞型を培養するために用いられてきた。培養培地におい
て培養された細胞は、利用可能な栄養素を異化し、そしてモノクローナル抗体、
ホルモン、成長因子、ウイルスなどのような有用な生物学的物質を産生する。こ
のような産物は、治療的適用を有し、そして組換えＤＮＡ技術の出現とともに、
細胞が、大量のこれらの産物の産生するように操作され得る。従って、インビト
ロにおいて細胞を培養する能力は、細胞生理学の研究に重要であるだけでなく、
そうでなければ、経済的な手段では獲得され得ない有用物質を産生するためにも
必要である。

【０００４】 細胞培養培地処方物は、文献中において十分に考証されており、そして多数の
培地が市販されている。初期の細胞培養の研究において、培地処方物は、血液の
化学的組成および物理化学的な特性（例えば、浸透圧、ｐＨなど）に基いており
、そして「生理学的溶液」と呼ばれていた（Ｒｉｎｇｅｒ，Ｓ．，Ｊ．Ｐｈｙｓ
ｉｏｌ．，３：３８０〜３９３（１８８０）；Ｗａｙｍｏｕｔｈ，Ｃ．Ｉｎ：Ｃ
ｅｌｌｓ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅｓ ｉｎ Ｃｕｌｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．１，Ａｃ
ａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ，９９〜１４２頁（１９６５）；Ｗａ
ｙｍｏｕｔｈ，Ｃ．，Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ ６：１０９〜１２７（１９７０））。
しかし、哺乳動物の身体の異なる組織における細胞は、酸素／二酸化炭素分圧、
ならびに栄養素、ビタミン、および微量金属の濃度に関して異なる微小環境に曝
露される；従って、異なる細胞型の首尾良いインビトロ培養は、異なる培地処方
物の使用を必要とし得る。細胞培養培地の代表的構成要素としては、アミノ酸、
有機塩類および無機塩類、ビタミン、微量金属、糖、脂質および核酸が挙げられ
る。これらの型および量は、所定の細胞または組織型の特定の要件に依存して変
化し得る。

【０００５】 代表的には、細胞培養培地処方物は、ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）（１０〜２０％
ｖ／ｖ）または動物の胚、器官もしくは腺からの抽出物（０．５〜１０％ ｖ
／ｖ）のような規定されない成分を含むある範囲の添加物で補充される。ＦＢＳ
は、動物細胞培養培地に最も通常に適用される補充物であるが、ウシ、ウマおよ
びヒトの新生児を含む他の血清供給源がまた、慣用的に用いられる。培養培地の
補充のための抽出物を調製するために用いられてきた器官または腺としては、顎
下腺（Ｃｏｈｅｎ，Ｓ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２３７：１５５５〜１５６
５（１９６１））、下垂体（Ｐｅｅｈｌ、Ｄ．Ｍ．，およびＨａｍ，Ｒ．Ｇ．，
Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ １６：５１６〜５２５（１９８０）；米国特許第４，６７３
，６４９号）、視床下部（Ｍａｃｉａｇ，Ｔ．，ら．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａ
ｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７６：５６７４〜５６７８（１９７９）；Ｇｉｌｃｈ
ｒｅｓｔ，Ｂ．Ａ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２０：３７７〜３８
３（１９８４））、眼の網膜（Ｂａｒｒｅｔａｕｌｔ，Ｄ．ら、Ｄｉｆｆｅｒｅ
ｎｔｉａｔｉｏｎ １８：２９〜４２（１９８１））ならびに脳（Ｍａｃｉａｇ
，Ｔら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２１１：１４５２〜１４５４（１９８１））が挙げら
れる。細胞培養培地はまた、他の動物由来産物を含み得る。これには以下が挙げ
られるがこれらに限定されない：血液由来産物（例えば、血清、アルブミン、抗
体、フィブリノーゲン、第ＶＩＩＩ因子など）、組織もしくは器官抽出物、およ
び／または加水分解産物（例えば、ウシ下垂体抽出物（ＢＰＥ）、ウシ脳抽出物
、ニワトリ胚抽出物およびウシ胚抽出物）、および動物由来脂質、脂肪酸、タン
パク質、アミノ酸、ペプトン、Ｅｘｃｙｔｅ^TM、ステロール（例えば、コレステ
ロール）ならびにリポタンパク質（例えば、高密度リポ蛋白質および低密度リポ
蛋白質（それぞれ、ＨＤＬおよびＬＤＬ））。細胞培養培地はまた、例えば、以
下のような特異的な精製されたまたは組換えの成長因子を含み得る：インスリン
、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、トランスフェリン
、造血性増殖因子様エリスロポエチン、ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−
４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−
１１など、コロニー刺激因子様Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、組織型特異的増殖因
子様神経性増殖因子、ｃＡＭＰまたは他のシグナル伝達経路の特異的調節因子な
ど。これらの型の補充物は、細胞培養培地においていくつかの有用な機能を果た
す（Ｌａｍｂｅｒｔ，Ｋ．Ｊ．ら、Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎ
ｏｌｏｇｙ、第１巻、Ｓｐｉｅｒ、Ｒ．Ｅ．ら、編、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅ
ｓｓ Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、８５〜１２２頁（１９８５））。例えば、これらの添
加物は、不安定かまたは水に不溶性の栄養素のためのキャリアまたはキレーター
を提供し；毒性部分に結合しそして中和し；ホルモンおよび増殖因子、プロテア
ーゼインヒビターならびに必須のしばしば同定されてないかまたは規定されてな
い低分子量栄養素を提供し；そして物理的なストレスおよび損傷から細胞を保護
する。従って、動物由来産物は、動物細胞の培養のための至適培養培地を提供す
るための比較的低コストの補充物として一般的に用いられる。

【０００６】 不運にも、組織または細胞の培養の適用における、このような動物由来の成分
または栄養素の使用は、いくつかの欠点を有する（Ｌａｍｂｅｒｔ，Ｋ．Ｊ．ら
、Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，第１巻、Ｓｐｉｅｒ
，Ｒ．Ｅ．ら編．，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、８５〜
１２２頁（１９８５））。まずはじめは、外来性因子または毒素が組織または細
胞の培養物に混入する可能性である。実際、動物またはヒト由来の成分での培地
の補充は、これらの混入された補充物が細胞培養培地処方物において用いられる
場合、培養細胞の健常性を重篤に損ない得る感染性因子（例えば、マイコプラズ
マおよび／またはウイルス）または毒素を導入し得、そして感染性因子または毒
素が混入した生物学的物質（例えば、抗体、ホルモン、成長因子など）の産生を
生じ得る。従って、外来性因子または毒素による細胞または組織の培養物の混入
は、細胞治療において、および他の臨床適用において健康の危険性を引き起こし
得る。主な恐れは、疾患の病原性を有し得る非細胞性可溶性タンパク質、もしく
は非細胞性不溶性タンパク質または他のクラスの生物活性成分の存在、および特
には、ヒトまたは動物において海綿状脳障害を生じるプリオンの存在である。

【０００７】 従って、現在、細胞培養試薬（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブグル
ープ、緩衝液、ならびにタンパク質、炭水化物、脂質、アミノ酸、ビタミン、核
酸、ＤＮＡ、ＲＮＡ、微量金属、および緩衝液を単独でまたは組み合わせてのい
ずれかで含有する、細胞培養培地において見出され得る任意の栄養性成分または
溶液）からの外来性因子（例えば、感染性因子）および毒素を減弱または排除す
る必要性が存在する。外来性因子または毒素が減弱または排除されているこのよ
うな細胞培養試薬は、製薬学および医業に対して特に重要である。

【０００８】 （発明の要旨） 本発明は、この必要性に取り組む。一般に、本発明は、目的のサンプル中に存
在する外来性因子または毒素を、減弱、実質的に減弱、不活化または排除するよ
うに任意のサンプルを処置することに関する。より詳細には、本発明は、栄養培
地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝液（またはそれらを作製するた
めに用いられる任意の成分）のような細胞培養試薬に関する。

【０００９】 本発明に従って、混入する外来性因子または毒素のこのような減弱、不活化、
または排除は、目的のサンプルを乾燥することまたは実質的に乾燥することによ
り達成される。好ましくは、目的のサンプルは、サンプル中に存在する毒素およ
び／または外来性因子を減弱、実質的に減弱、不活化または排除するのに十分な
条件下で、空気または他のガス（またはガスの組み合わせ）に対して曝露される
。空気またはガスに曝露されるサンプルは、乾燥（例えば、粉末化）形態または
液体形態であり得る。好ましくは、このような条件は、空気もしくはガスまたは
ガスの組み合わせに対して曝露されたサンプルの表面面積を増加させることを包
含する。空気または他のガス（またはガスの組み合わせ）に対して曝露されるサ
ンプルの表面面積を増加させることは、空気またはガス中のサンプル（例えば、
液体形態または乾燥形態）の粒子サイズが減少され、そして／または空気もしく
はガスに曝露されるサンプルの容積が増加される任意の方法を包含し得る。サン
プルの表面面積曝露の増加は、空気またはガス中でのおよび／またはそれを通過
する乾燥または液体サンプルのアトマイジング（ａｔｏｍｉｚｉｎｇ）、微粉砕
（ｐｕｌｖｅｒｉｚｉｎｇ）、粉砕（ｇｒｉｎｄｉｎｇ）、分配（ｄｉｓｐｅｎ
ｓｉｎｇ）、噴霧（ｓｐｒａｙｉｎｇ）、蒸気化（ｍｉｓｔｉｎｇ）、点滴（ｄ
ｒｉｐｐｉｎｇ）、注ぎ（ｐｏｕｒｉｎｇ）、噴霧（ｓｐｒｅａｄｉｎｇ）など
によって達成され得る。あるいは、空気またはガスが、乾燥サンプルまたは液体
サンプル全体に、注入、バブリング、噴霧などをされ得る。好ましくは、空気／
ガスは、均一なまたは同質な分散および／または凝集を促進する、揮発性の激し
く渦巻く流れとして導入される。

【００１０】 本発明に従って、温度（例えば、加熱または冷却または凍結）、湿度、大気圧
、ガスまたは空気含量、曝露時間などのような他の環境条件が、外来性因子およ
び毒素の減弱または除去を促進するように、空気またはガスへのサンプルの曝露
中、調節または最適化され得る。好ましくは、冷却温度または凍結温度が、曝露
の間に適用され得るが、熱は、空気またはガス（またはガスの組み合わせ）への
サンプルの曝露中、サンプルからの外来性因子または毒素の減弱または除去を促
進するようにおよび／またはサンプルの乾燥を促進するように、適用される。別
の局面ではガスまたはガスの組み合わせの型、および存在するそれぞれのガスの
量（例えば、パーセンテージ）は、外来性因子または毒素の減弱または排除をさ
らに補助するよう変化または最適化され得る。このようなガス（単数または複数
）としては、オゾン、窒素、ヘリウム、空気、二酸化炭素、アルゴン、酸素、水
素などが挙げられるがこれらに限定されない。別の局面において、外来性因子ま
たは毒素に対して毒性または阻害性である化学的もしくは生物学的な化合物また
は条件が、このような因子または毒素を中和または不活化するプロセスの間また
はその後に添加され得る。添加または変化され得るこのような化合物または条件
としては、以下が挙げられるがこれらに限定されない：抗生物質、塩酸、水酸化
ナトリウム、抗体（モノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体またはその
フラグメント）、ヨウ素、ｐＨ処理、オゾン、α−γ線、ソラレンまたは類似の
試薬、ポルフィリンもしくはクロリンの誘導体、または他の光活性化試薬もしく
は化合物。

【００１１】 好ましくは、目的のサンプル（これは、好ましくは、任意の細胞培養試薬、特
に培地、培地補充物、培地サブグループまたは緩衝液である）は、空気またはガ
ス（またはガスの組み合わせ）を含むチャンバーまたは他の容器に、分散または
噴霧される。そして最も好ましくは、このサンプル（例えば、乾燥形態または液
体形態）は、当該分野で周知の手順により噴霧乾燥または凝集に供される。この
ような手順は、例えば、噴霧乾燥装置および／もしくは流動床装置またはそれら
の組み合わせ、あるいは当該分野で利用可能な類似の技術の使用を含み得る。好
ましい局面では、液体サンプルは、液体サンプルは、このサンプルを乾燥または
実質的に乾燥させるために十分な条件下で熱の存在下で噴霧される。一方、乾燥
または実質的に乾燥したサンプル（好ましくは、粉末化形態または顆粒形態であ
る）は、熱の存在下で吹きつけのまたは圧縮された空気またはガスを用いて分散
（例えば、チャンバー内で）される。好ましくは、このような分散または噴霧は
、サンプル中の外来性因子または毒素を減弱、実質的に減弱、不活化または排除
するのに十分な条件下で実施される。このような条件としては、毒素または外来
性因子の減弱、不活化または排除を促進するための、例えば、湿度の制御、大気
圧、用いるガスの含量および／または型、曝露時間、および化合物の添加が挙げ
られる。

【００１２】 従って、本発明は、サンプル中の外来性因子および／または毒素を減弱、実質
的に減弱、不活化、または排除するのに十分な条件下で、空気またはガス（また
はガスの組み合わせ）に対してこのサンプルを曝露する工程を包含する。より詳
細には、本発明は、以下の工程を包含する： １つ以上の細胞性または非細胞性の外来性因子および／または１つ以上の毒素
を含み得るサンプル（好ましくは、培地、培地サブグループ、培地補充物または
緩衝液）を、空気またはガス（またはガスの組み合わせ）に対して、好ましくは
この空気またはガス（またはガスの組み合わせ）中またはこれを通じて噴霧また
は分散することにより、そして好ましくは熱の存在下で曝露する工程；および 未処理のサンプルに比較して外来性因子および／または毒素を減弱、実質的に
減弱、不活化または排除されているサンプルを獲得する工程。生成されたこのよ
うなサンプルは好ましくは乾燥形態（例えば、粉末化）である。

【００１３】 目的のサンプル中の外来性因子または毒素の減弱、実質的な減弱、不活化また
は排除をさらに促進するため、本発明はさらに、本発明の方法により生成される
サンプルを滅菌する工程をさらに含み得る。このような滅菌は、照射または当業
者に周知の他の滅菌方法により達成され得る。好ましくは、本発明により（例え
ば、噴霧乾燥または凝集により）生成されるサンプルは、パッケージングの前ま
たは後に滅菌され得る。特に好ましい実施態様では、滅菌は、包装された材料の
γ線での照射によりパッケージング後に達成され得る。

【００１４】 本発明に従って生成され得る特に好ましい栄養培地としては、細菌培養培地、
酵母培養培地、植物培養培地および動物培養培地からなる群より選択される培養
培地が挙げられる。好ましい局面では、このような培養培地は、乾燥粉末化形態
で生成されるが、それらは、液体形態で生成されてもよい（例えば、１つ以上の
溶媒と混合することにより）。

【００１５】 本発明の方法により生成され得る特に好ましい培地補充物としては、以下が挙
げられる：ウシ血清を含む動物血清のような血液由来産物（例えば、ウシ胎仔血
清、新生仔ウシ血清または正常ウシ血清）、ヒト血清、ウマ血清、ブタ血清、サ
ル（ｍｏｎｋｅｙ）血清、類人猿（ａｐｅ）血清、ラット血清、マウス血清、ウ
サギ血清、ヒツジ血清など；サイトカイン（ＥＧＦ、ａＦＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧ
Ｆ、ＩＧＦ−１、ＩＧＦ−２、ＮＧＦなどのような増殖因子、インターロイキン
、コロニー刺激因子およびインターフェロンを含む）；付着因子または細胞外基
質成分（例えば、コラーゲン、ラミニン、プロテオグリカン、グリコサミノグリ
カン、フィブロネクチン、ビトロネクチンなど）；脂質（例えば、リン脂質、コ
レステロール、ウシコレステロール濃縮物、脂肪酸、Ｅｘｃｙｔｅ^TM、スフィン
ゴ脂質など）；ならびに動物、植物、昆虫、魚類、酵母、細菌または任意の他の
原核生物もしくは真核生物供給源由来の組織、細胞、器官または腺の抽出物また
は加水分解産物（例えば、ウシ下垂体抽出物、ウシ脳抽出物、ニワトリ胚抽出物
、酵母抽出物、ウシ胚抽出物、ニワトリ肉抽出物、アキレス腱およびその抽出物
など）。本方法により生成され得る他の培地補充物としては、以下が挙げられる
：種々のタンパク質（例えば、血清アルブミン、特にウシまたはヒトの血清アル
ブミン；免疫グロブリンおよびそのフラグメントまたは複合体；アプロチニン；
ヘモグロビン；ヘミンまたはヘマチン；酵素（例えば、トリプシン、コラゲナー
ゼ、パンクレアチニンまたはディスパーゼ（ｄｉｓｐａｓｅ）；リポタンパク質
；フェリチン；など））（これは、天然または組換えであり得る）ビタミン、ア
ミノ酸およびその改変体（Ｌグルタミンおよびシスチンを含むがこれに限定され
ない）であり得る）、酵素補因子、ならびに当業者に精通されたインビトロ化の
細胞の培養において有用な他の成分。好ましくは、このような補充物は、乾燥粉
末化形態で生成されるが、例えば、１つ以上の溶媒を目的の乾燥粉末化補充物と
混合することにより液体形態で生成され得る。

【００１６】 本発明により調製される栄養培地および培地補充物はまた、血清（好ましくは
、上記に記載の血清）、Ｌ−グルタミン、インスリン、トランスフェリン、１つ
以上の脂質（好ましくは、１つ以上のリン脂質、スフィンゴ脂質、脂肪酸、また
はコレステロール）、１つ以上のサイトカイン（好ましくは、上記のサイトカイ
ン）、１つ以上の神経伝達物質、組織、器官または腺の１つ以上の抽出物または
加水分解産物（好ましくは、上記のもの）、１つ以上のタンパク質（好ましくは
上記のタンパク質）、または１つ以上の緩衝液（好ましくは炭酸水素ナトリウム
）、あるいはそれらの組み合わせのようなサブグループを含み得る。

【００１７】 本発明の方法に従う調製に特に適切な緩衝液としては、緩衝化生理食塩水粉末
、最も特にリン酸緩衝化生理食塩水またはＴｒｉｓ−緩衝化生理食塩水、および
臨床または電解溶液において用いられる緩衝液（すなわち、リンゲル、乳酸リン
ゲル、非経口的な栄養溶液または粉末）が挙げられる。本発明に従って、このよ
うな緩衝液は、粉末化形態または液体形態であり得る。

【００１８】 本発明はまた、毒素、外来性因子または他の有害な成分のレベルが減弱または
排除された、細胞、細胞培養物または細胞調製物を調製する方法に関する。この
ような細胞としては、原核生物（例えば、細菌）および真核生物（例えば、真菌
（特に、酵母）動物（特にヒトを含む哺乳動物）ならびに植物の細胞）が挙げら
れる。従って、本発明の方法は、１つ以上の細胞を獲得する工程ならびに、１つ
以上の毒素および／または１つ以上の外来性因子を減弱、実質的に減弱、不活化
または排除するのに十分な条件下で、この細胞を本発明の方法に供する工程を含
み得る。本発明のこの局面において、用いられる条件（例えば、温度、湿度、大
気圧、ガスの型、ガス流およびガス流パターン（例えば、揮発性または激しく逆
巻く流れ）など）は、目的の細胞に有害に影響することを避けるかまたは実質的
に避けるように最適化または調節され得る。好ましくは、このような細胞の生存
度が減弱されないかまたは実質的に減弱されないな条件が、用いられる。従って
、本発明は、サンプルにおける毒素および／または外来性因子を減弱、排除また
は不活化するために、細胞を含有するサンプルを空気またはガス（またはガスの
組み合わせ）に曝露する工程に関する。本発明はまた、これらの方法により産生
される細胞（これは、乾燥形態（好ましくは粉末化）または液体形態であっても
よい）に関する。

【００１９】 本発明はさらに、無菌または実質的に無菌のサンプル（好ましくは、細胞培養
試薬および詳細には培養培地、培地補充物、培地サブグループおよび緩衝液）を
調製する方法に関する。このような方法の１つは、、サンプルに存在し得る不要
な細菌、真菌、胞子、ウイルスなどを複製または増殖が不可能にまたは実質的に
不可能にするように、サンプル（例えば、上記の培養培地、培地補充物、培地サ
ブグループおよび緩衝液）を照射（好ましくは、γ照射）に曝露する工程を含む
。好ましいこのような方法では、サンプル（例えば、培地、培地補充物、培地サ
ブグループおよび緩衝液を含む細胞培養試薬）は、総線量約１０〜１００キログ
レイ（ｋｉｌｏｇｒａｙ）（ｋＧｙ）で、好ましくは総線量約１５〜７５ｋＧｙ
、１５〜５０ｋＧｙ、１５〜４０ｋＧｙ、または２０〜４０ｋＧｙで、より好ま
しくは、総線量約２０〜３０ｋＧｙ、そして最も好ましくは、総線量約２５ｋＧ
ｙで、約１時間〜約７日、好ましくは約１時間〜約５日、より好ましくは約１時
間〜約３日、約１時間〜約２４時間または約１〜５時間、そして最も好ましくは
約１〜３時間γ照射される。好ましくは、培養培地、培地補充物、培地サブグル
ープおよび緩衝液のような粉末化サンプルは、パッケージングの前または後にこ
のような照射に供される。他の滅菌プロセスはまた、単独でか、または本発明と
組み合わせて用いられ得る（例えば、濾過、エチレンオキサイド滅菌、オートク
レーブ、および化学的または物理的プロセス（例えば、加熱、ｐＨ処理、化学処
理、ヨード処理、またはポルフィリン、ソラレンなどのような光活性化化合物）
）。

【００２０】 本発明はさらに、１つ以上の細胞を操作または培養する方法を提供し、この細
胞を本発明の細胞培養試薬（特に、栄養培地、培地補充物、培地サブグループま
たは緩衝液）に接触させる工程、およびこの細胞（複数または単数）を細胞（複
数または単数）の培養または操作に都合の良い条件下でインキュベートする工程
、を包含する。任意の細胞（特に細菌細胞、酵母細胞、植物細胞または動物細胞
）が本発明に従って培養または操作され得る。好ましい動物細胞としては、昆虫
細胞（最も好ましくは、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌｉａ細胞、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ細
胞およびＴｒｉｃｈｏｐｌｕｓａ細胞）、線形動物細胞（最も好ましくは、Ｃ．
ｅｌｅｇａｎｓ細胞）および哺乳動物細胞（最も好ましくは、ＣＨＯ細胞、ＣＯ
Ｓ細胞、ＶＥＲＯ細胞、ＢＨＫ細胞、ＡＥ−１細胞、ＳＰ２／０細胞、Ｌ５．１
細胞、ハイブリドーマ細胞またはヒト細胞、胚性幹細胞（ＥＳ細胞））、ウイル
スまたはベクターの産生に用いられる細胞（すなわち、ＰｅｒＣ６）、細胞治療
または遺伝子治療に用いられる初代ヒト部位由来の細胞、すなわち、リンパ球、
造血細胞、他の白血球（ＷＢＣ）、マクロファージ、好中球、ならびに樹状細胞
が挙げられる。本発明はまた、組織または器官の移植または操作のための細胞お
よび／または組織（すなわち、肝細胞、ランゲルハンス島、骨芽細胞、骨芽細胞
／軟骨細胞、皮膚もしくは筋肉または他の結合組織、上皮細胞、組織様ケラチノ
サイト、神経起源の細胞、角膜、皮膚、器官）、ならびにワクチンとして用いら
れる細胞（すなわち、血球、造血細胞、他の幹細胞または前駆細胞、および種々
の組織型の不活性かまたは改変された腫瘍細胞）の操作または培養に関係する。
本発明のこの局面に従って培養または操作される細胞は、正常細胞、疾患細胞、
形質転換された細胞、変異細胞、体細胞、生殖細胞、幹細胞、前駆細胞または胎
児性細胞であり得る。これらはいずれも樹立された細胞株または天然の供給源か
ら得られた細胞であり得る。

【００２１】 本発明はさらに、１つ以上の細胞または組織の培養または操作における使用の
ためのキットに関する。本発明によるキットは、本発明の１つ以上のサンプル、
好ましくは、栄養培地、培地補充物、培地サブグループもしくは緩衝液またはそ
れらの任意の組み合わせを含む、１つ以上の細胞培養試薬を含む１つ以上の容器
を含み得る。このキットはまた、本発明の乾燥された細胞を含む１つ以上の細胞
もしくは細胞型または組織を含み得る。

【００２２】 本発明の別の局面は、本発明の細胞培養試薬、栄養培地、培地補充物、培地サ
ブグループまたは緩衝液、および１つ以上の細胞または組織を含む組成物に関す
る。このような組成物は、粉末化形態または液体形態であり得る。

【００２３】 本発明の好ましい他の実施態様は、以下の図面および発明の詳細な説明、なら
びに特許請求の範囲に照らして、当業者に明白である。

【００２４】 （発明の詳細な説明） （定義） 以下の説明において、細胞培養培地の分野において従来的に使用される多くの
用語が、広範に利用される。明細書および請求の範囲、ならびにそのような用語
に与えられる範囲の明確かつ一貫性のある理解を提供するために、以下の定義が
提供される。

【００２５】 本明細書で使用される用語「粉末」は、顆粒形態で存在する組成物をいい、そ
の組成物は、水または血清のような溶媒と複合体化されるか、または凝集されて
いてもいなくてもよい。用語「乾燥粉末」は、用語「粉末」と互換的に使用され
得るが、本明細書で使用される「乾燥粉末」は、顆粒化された材料の明らかな（
ｇｒｏｓｓ）外観を単にいい、そして特に示さない限り、その材料が、完全に複
合体化したか、または凝集した溶媒を含まないことを意味することを意図しない
。

【００２６】 用語「成分」は、化学物質起源であろうと生物学的起源であろうと、細胞の増
殖の成長を維持するためか、または促進するために細胞培養培地において使用さ
れ得る任意の化合物をいう。用語「成分（ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）」、「栄養物質
」、および「成分（ｉｎｇｒｅｄｉｅｎｔ）」は、互換的に使用され得、そして
全て、このような化合物をいうことが意図される。細胞培養培地において使用さ
れる代表的な成分には、アミノ酸、塩、金属、糖、炭水化物、脂質、核酸、ホル
モン、ビタミン、脂肪酸、タンパク質などが含まれる。細胞の培養をエキソビボ
で促進または維持するその他の成分は、特定の必要性に従って、当業者により選
択され得る。

【００２７】 用語「サイトカイン」は、細胞において生理学的な応答（例えば、増殖、分化
、老化、アポトーシス、細胞傷害性、もしくは抗体分泌）を誘導する化合物をい
う。成長因子、インターロイキン、コロニー刺激因子、インターフェロン、およ
びリンホカインは、「サイトカイン」のこの定義に含まれる。

【００２８】 「細胞培養」または「培養」により、人工的な（例えば、インビトロの）環境
における細胞の維持を意味する。しかし、用語「細胞培養」は総称であり、そし
て個々の原核生物（例えば、細菌）または真核生物（例えば、動物、植物、およ
び真菌）の細胞だけでなく、組織、器官、器官系、または生物体全体の培養を包
含するために使用され得ること、そして、それらについての用語「組織培養」、
「器官培養」、「器官系培養」、または「器官型培養」が、ときどき、用語「細
胞培養」と互換的に使用され得ることが理解されるべきである。

【００２９】 「培養」により、細胞の活性または静止の状態での、増殖、分化、または連続
する生存度に有利な条件下での人工的な環境における細胞の維持を意味する。従
って、「培養」は、「細胞培養」または上記の任意のその同義語と互換的に使用
され得る。

【００３０】 「培養容器」により、細胞の培養のための無菌環境を提供し得るガラスの、プ
ラスチックの、または金属の容器を意味する。

【００３１】 句「細胞培養培地」、「培養培地」、「栄養培地」、および「培地処方物」（
各々の場合において、複数形の「培地」）は、細胞の培養および／または増殖を
支持する栄養溶液をいう；これらの句は、互換的に使用され得る。

【００３２】 「抽出物」により、物質のサブグループの濃縮調製物を含む組成物を意味し、
代表的には、物質（代表的には、生物学起源のサンプル、例えば、組織または細
胞）の機械的（例えば、圧力処理）または化学的（例えば、蒸留、沈殿、酵素作
用、または高塩処理）のいずれかの処理によって形成される。

【００３３】 「酵素消化」により、抽出物の分化した（ｓｐｅｃｉａｌｉｚｅｄ）型を含む
組成物を意味し、すなわち、抽出されるべき（例えば、植物成分または酵母細胞
）物質（代表的には、生物学起源のサンプル、例えば、組織または細胞）を、そ
の物質の成分を単純な形態へ（例えば、単糖または二糖類、および／またはモノ
ペプチド、ジペプチド、もしくはトリペプチドを含む調製物へ）と分解し得る少
なくとも１つの酵素で処理することによって調製されるものを意味する。この文
脈において、かつ本発明の目的のために、用語「加水分解産物」は、用語「酵素
消化物」と互換的に使用され得る。

【００３４】 「外来性因子（ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ ａｇｅｎｔ）」により、１つ以上
の細菌、１つ以上の病原性微生物、１つ以上の微生物病原体、１つ以上のウイル
ス、１つ以上のマイコプラズマ、１つ以上の酵母細胞、１つ以上の真菌、急性ま
たは慢性の毒性または疾患をもたらす１つ以上の非細胞性化合物などのような任
意の因子であって、目的のサンプルを汚染し得る因子を意味する。外来性因子は
、細胞培養試薬において使用される任意の数の動物由来の産物または成分に存在
し得る。本発明によって減弱、排除、不活化、または死滅させられる好ましい外
来性因子は、サイズは無関係に、動物ウイルス、ヒトウイルス、植物ウイルス、
魚ウイルス、昆虫ウイルス、哺乳動物ウイルス、ＤＮＡウイルス、ＲＮＡウイル
ス、エンベロープウイルスおよび非エンベロープウイルスであり得るウイルスで
ある。このようなウイルスには、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、ポックス
ウイルス、パポバウイルス（ｐｏｐｏｖａｖｉｒｕｓ）、レトロウイルス、オル
ソミクソウイルス（インフルエンザウイルス）、パラミクソウイルス（パライン
フルエンザ、おたふくかぜ、はしか、およびＲＳウイルス）、ピコルナウイルス
（エンテロウイルス、カーディオウイルス、ライノウイルス、およびアフトウイ
ルス）、トガウイルス、アレナウイルス、レオウイルス、ロタウイルス、オルビ
ウイルス、ラブドウイルス、コロナウイルス、マルブルクウイルス、エボラウイ
ルス、および肝炎ウイルス（「Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ Ｄｉａｇｎｏｓｉｓ
ｏｆ Ｖｉｒａｌ Ｄｉｓｅａｓｅｓ」（Ｅ．ＫｕｒｓｔａｋおよびＣ．Ｋｕｒ
ｓｔａｋ編）、Ｉ−ＩＶ巻、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ
および「Ｍｅｄｉｃａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉ
ｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅｓ」（Ａ．Ｓａｍｉｙ，Ｌ．Ｓｍｉｔｈ，Ｊｒ．，Ｊ．
Ｗｙｎｇａａｒｄｅｎ編）、ＩＩ巻、Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ Ｃｏ．，Ｐｈ
ｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ）を参照のこと）が挙げられる。このようなウイル
スの例には、以下の表に示されるものが含まれるがこれらに限定されない：

【００３５】

【表１】

【００３６】

【表２】 細菌の例には、以下が含まれるが、これらに限定されない：グラム陰性および
グラム陽性細菌、好ましくは、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ、Ｓｔｒｅｐｔｏ
ｃｏｃｃｕｓ、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｎｅｉｓ
ｓｅｒｉａ、Ｓｈｉｇｅｌｌａ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌ
ａ、Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ、Ｐｒｏｔｅｕｓ、Ｅｒｗｉｎｉａ、Ｖｉｂｒｉｏ、
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ、Ｂｒｕｃｅｌｌａ、Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ、Ｈａｅｍ
ｏｐｈｉｌｕｓ、Ｙｅｒｓｉｎｉａの属の細菌、そして特にＣｏｒｙｎｅｂａｃ
ｔｅｒｉｕｍ ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａｅ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｉａ ｃｏｌｉ、Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ
ａｕｒｅｕｓ、およびＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉａ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ
。マイコプラズマの例には、以下が含まれるが、これらに限定されない：Ｍ．ｂ
ｏｖｉｍａｓｕｔｉｄｉｓ、Ｍ．ｃａｎｉｓ、Ｍ．ｈｏｍｉｎｉｓ、Ｍ．ｈｙｏ
ｒｈｉｎｉｓ、Ｍ．ｕｒｅａｌｙｔｉｃｕｍ、Ｍ．ｏｒａｌｅ、Ｍ．ｓａｌｉｖ
ａｒｉｕｍ、Ｍ．ｌａｉｄｌａｗｉ、およびＭ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ。酵母細
胞の例には、以下が含まれるが、これらに限定されない：Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙ
ｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｎｅｏｆｏｒｍａ
ｎｓ、Ｂｌａｓｔｏｍｙｃｅｓ ｄｅｒｍａｔｉｔｉｄｉｓ、Ｈｉｓｔｏｐｌａ
ｓｍａ ｃａｐｓｕｌａｔｕｍ、Ｐａｒａｃｏｃｃｉｄｉｏｄｅｓ ｂｒａｓｉ
ｌｉｅｎｓｉｓ、およびＣａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｕｓ。真菌の例には、以
下が含まれるが、これらに限定されない：Ｃｏｃｃｉｄｉｏｉｄｅｓ ｉｍｍｉ
ｔｉｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｆｕｍｉｇａｔｉｓ、Ｍｉｃｒｏｓｐｏｒｕ
ｍ ａｕｄｏｕｉｎｉ、Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ ｍｅｎｔａｇｒｏｐｈｙｔ
ｅｓ、およびＥｐｉｄｅｒｍｏｐｈｙｔｏｎ ｆｌｏｃｃｏｓｔｕｍ。「Ｍｅｄ
ｉｃａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓ
ｅａｓｅｓ」（Ａ．Ｓａｍｉｙ，Ｌ．Ｓｍｉｔｈ，Ｊｒ．，Ｊ．Ｗｙｎｇａａｒ
ｄｅｎ編）、ＩＩ巻、Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ Ｃｏ．，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐ
ｈｉａ，ＰＡを参照のこと。

【００３７】 「毒素」により、細胞機能または細胞増殖を阻害する任意の生物学的または化
学的化合物（タンパク質を含む）またはそれらの組み合わせを意味する。従って
、細胞培養における１つ以上の毒素の存在は、細胞増殖または機能の阻害をもた
らすか、またはこのような培養物中の全てまたは多数の細胞を死滅させ得る。毒
素の例には、以下が含まれるが、これらに限定されない：内毒素、外毒素、ヘビ
毒、コレラ毒素、ブドウ球菌性のエンテロトキシン、ロイコチジン、リシンＡ、
動物由来の毒物、神経毒、および発赤毒素。「Ｍｅｄｉｃａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉ
ｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅｓ」（Ａ．Ｓａｍ
ｉｙ，Ｌ．Ｓｍｉｔｈ，Ｊｒ．Ｊ．Ｗｙｎｇａａｒｄｅｎ編）、ＩＩ巻、Ｗ．Ｂ
．Ｓａｕｎｄｅｒｓ Ｃｏ．，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡを参照のこと。

【００３８】 用語「実質的に減弱した」は、サンプル（特に、細胞培養試薬、栄養培地、培
地上清、培地サブグループ、および緩衝液）中の外来性因子および／または毒素
の量の減少をいう。このような減少は、本発明に従う処理の前のサンプル中の外
来性因子および／または毒素のレベルと比較して、好ましくは、５０％を超える
、より好ましくは、６０％を超える、なおより好ましくは、７０％を超える、な
おより好ましくは、８０％を超える、なおより好ましくは、９０％を超える、そ
して最も好ましくは、９５％を超える減少である。本発明は、目的のサンプル中
の毒素および／または外来性因子のレベルにおける、少なくとも１ｌｏｇの、好
ましくは、少なくとも２ｌｏｇの、より好ましくは、少なくとも３ｌｏｇの、な
おより好ましくは、少なくとも４ｌｏｇの、なおより好ましくは、少なくとも５
ｌｏｇの、そして最も好ましくは、少なくとも６ｌｏｇの減少を提供する。

【００３９】 用語「接触させる」は、培養されるべき細胞を、その細胞が培養される培地を
有する培養容器中に配置することをいう。用語「接触させる」には、細胞を培地
と混合すること、培地を培養容器中の細胞上にピペットで滴下すること、および
培養培地中に細胞を浸すことが含まれる。

【００４０】 用語「合わせる」は、細胞培養培地処方物中の成分を混合すること（ｍｉｘｉ
ｎｇ）、または混合すること（ａｄｍｉｘｉｎｇ）をいう。

【００４１】 細胞培養培地は、多くの成分から構成され、そしてこれらの成分は、培養培地
によって様々である。「１×処方物」は、作用濃度で細胞培養培地中に見出され
るいくつかまたは全ての成分を含有する任意の水溶液をいうことが意図される。
「１×処方物」とは、例えば、細胞培養培地またはその培地の成分の任意のサブ
グループのことをいい得る。１×溶液中の成分の濃度は、細胞をインビトロで維
持または培養するために使用される細胞培養処方物中に見出されるその成分の濃
度とほぼ同じである。細胞のインビトロ培養に使用される細胞培養培地は、定義
上、１×処方物である。多数の成分が存在する場合、１×処方物中の各成分は、
細胞培養培地中の成分の濃度にほぼ等しい濃度を有する。例えば、ＲＰＭＩ−１
６４０培養培地は、成分の中でとりわけ、０．２ｇ／Ｌ Ｌ−アルギニン、０．
０５ｇ／Ｌ Ｌ−アスパラギン、および０．０２ｇ／Ｌ Ｌ−アスパラギン酸を
含有する。これらのアミノ酸の「１×処方物」は、溶液中にほぼ同じ濃度のこれ
らの成分を含有する。従って、「１×処方物」をいう場合、溶液中の各成分が、
記載される細胞培養培地中に見出されるものと同じか、またはほぼ同じ濃度を有
することが意図される。細胞培養培地の１×処方物中の成分の濃度は、当業者に
周知である。Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｆｏｒ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｅｄ
ｉａ，Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｓ ａｎｄ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ Ｆｏｒ Ｓｅｒ
ｕｍ−Ｆｒｅｅ Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ａｌｌｅｎ Ｒ．
Ｌｉｓｓ，Ｎ．Ｙ．（１９８４）（これは、その全体が本明細書中に参考として
援用される）を参照のこと。しかし、浸透圧および／またはｐＨは、培養培地と
比較して、特に、１×処方物中に含まれる成分がより少ない場合、１×処方物中
で異なり得る。

【００４２】 「１０×処方物」は、その溶液中の各成分が、細胞培養培地中の同じ成分より
も、約１０倍濃縮されている溶液をいうことが意図される。例えば、ＲＰＭＩ−
１６４０培養培地の１０×処方物は、成分の中でとりわけ、２．０ｇ／Ｌ Ｌ−
アルギニン、０．５ｇ／Ｌ Ｌ−アスパラギン、および０．２ｇ／Ｌ Ｌ−アス
パラギン酸（１×処方物、上記と比較）を含有し得る。「１０×処方物」は、１
×培養培地に見出されるものの約１０倍の濃度で多くのさらなる成分を含有し得
る。容易に明らかなように、「２０×処方物」、「２５×処方物」、「５０×処
方物」、および「１００×処方物」は、１×細胞培養培地と比較して、それぞれ
、約２０、２５、５０、または１００倍濃度の成分を含有する溶液を示す。再び
、その培地処方物および濃縮溶液の浸透圧およびｐＨは、様々であり得る。米国
特許第５，４７４，９３１号（培養培地濃縮技術に関する）を参照のこと。

【００４３】 （概説） 本発明は、外来性因子および／または毒素を減弱したまたは排除したサンプル
（好ましくは、生物または動物由来要素または成分を含むサンプル）を生成する
方法、およびより詳細には、外来性因子または毒素を減弱した、実質的に減弱し
た、不活性化した、または除去した細胞培養栄養素、細胞培養試薬、栄養培地、
培養補充物、培養サブグループまたは緩衝液に関する。本発明はまた、これらの
方法により生成された薬学的または臨床的組成物または溶液にも関する。

【００４４】 本発明の方法によって生成される栄養培地、培地補充物、および培地サブグル
ープは、細胞の増殖を操作するまたは支持するために使用され得る任意の培地、
培地補充物、または培地サブグループ（無血清または血清含有）である。ここで
細胞は、細菌細胞、真菌細胞（特に、酵母細胞）、植物細胞、または動物細胞（
特に、昆虫細胞、線虫細胞、または哺乳動物細胞、最も好ましくはヒト細胞）で
あり得、そのいずれもが、体細胞、生殖細胞、正常細胞、疾患細胞、形質転換細
胞、変異細胞、幹細胞、前駆細胞、または胚細胞であり得る。このような好まし
い栄養培地は、細胞培養培地、最も好ましくは細菌細胞培養培地、植物細胞培養
培地、または動物細胞培養培地を含むが、これらに限定されない。好ましい培地
補充物は、規定されない補充物（例えば、細菌、動物、または植物の細胞、腺、
組織または器官の抽出物もしくは加水分解物）（特に、ウシ脳下垂体抽出物、ウ
シ脳抽出物、およびニワトリ胚抽出物）；および生物学的液体または血液由来産
物（特に、動物血清、および最も好ましくは、ウシ血清（特に、胎仔ウシ、新生
児ウシまたは通常（ｎｏｒｍａｌ）ウシ血清）、ウマ血清、ブタ血清、ラット血
清、マウス血清、ウサギ血清、サル血清、類人猿血清、またはヒト血清、これら
のいずれもが胎児血清であり得る）ならびにそれらの抽出物（より好ましくは、
血清アルブミンおよび最も好ましくは、ウシ血清アルブミンもしくはヒト血清ア
ルブミン）を包含するが、これらに限定されない。培地補充物はまた、規定の置
換物（例えば、ＬｉｐｏＭＡＸ（登録商標）、ＯｐｔｉＭＡｂ（登録商標）、Ｋ
ｎｏｃｋ−Ｏｕｔ^TMＳＲ、（各々は、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉ
ｎｃ．、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄより入手可能））などを包含し
得、これらは、上記の規定されない培地補充物の代わりとして使用され得る。こ
のような補充物はまた、規定の要素を含み得、この要素としては、ホルモン、サ
イトカイン、神経伝達物質、脂質、付着因子、タンパク質、アミノ酸などが挙げ
られるが、これらに限定されない。

【００４５】 栄養培地はまた、種々のサブグループに分割され得る（例えば、米国特許第５
，４７４，９３１号を参照のこと）。これらは、本発明の方法によって調製され
得、そしてそれに従って使用され得る。このようなサブグループは、本発明の栄
養培地を生成するために組み合わされ得る。本発明の別の局面において、個々の
成分（または成分の組み合わせ）、特に動物起源の成分が、本発明において使用
され得る。次いで、このような成分またはサンプルは、任意の栄養培地、培地補
充物、培地サブグループまたは緩衝液の調製において使用され得る。

【００４６】 本発明の方法によって、任意のサンプル、特に薬学的または臨床的組成物およ
び溶液、細胞培養試薬、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝
液は、生成され得、そして生物学的活性および生化学的活性の有意な損失を伴う
ことなく延長された期間にわたって保存され得る。「生物学的活性および生化学
的活性の有意な損失を伴うことなく」とは、生成されたばかりのサンプルに比較
して、目的のサンプルの生物学的活性または生化学的活性の約３０％未満、好ま
しくは約２５％未満、より好ましくは約２０％未満、さらにより好ましくは約１
５％未満、および最も好ましくは約１０％未満の減少をいう。従って、薬学的組
成物について、この薬学的組成物は、目的の薬学的特性（例えば、薬物効率）に
ついて試験され得、一方、培地は、細胞増殖または当業者に周知の他のパラメー
ターについて試験される。「延長された期間」とは、ボールミリング（ｂａｌｌ
−ｍｉｌｌｉｎｇ）のような伝統的な方法によって調製された場合にサンプル（
例えば、薬学的組成物、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝
液）が保存されるよりも長い期間のことをいう。従って、本明細書中で使用され
る「延長された期間」とは、約１〜３６ヶ月、約２〜３０ヶ月、約３〜２４ヶ月
、約６〜２４ヶ月、約９〜１８ヶ月、または約４〜１２ヶ月、所定の保存条件下
にあることをいう。これは、約−７０℃〜約２５℃、約−２０℃〜約２５℃、約
０℃〜約２５℃、約４℃〜約２５℃、約１０℃〜約２５℃、または約２０℃〜約
２５℃の温度での保存であり得る。薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養
試薬、栄養素、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝液の生物
学的特性または生化学的特性を決定するためのアッセイは、当該分野で周知であ
り、そして当業者に十分に知られている。

【００４７】 （薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養試薬、培地、培地補充物、培地
サブグループ、および緩衝液の処方） 任意の薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養試薬、栄養培地、培地補充
物、培地サブグループ、または緩衝液（またはこのようなサンプルにおいて使用
されるもしくは存在する任意の成分）が、本発明の方法によって調製され得る。
本発明に従って調製され得る特に好ましい栄養培地、培地補充物、および培地サ
ブグループは、動物細胞、植物細胞、細菌細胞、または酵母細胞の増殖を支持す
る細胞培養培地、培地補充物、および培地サブグループを包含する。本発明に従
って調製され得る特に好ましい緩衝液は、動物細胞、植物細胞、細菌細胞または
酵母細胞に等張性の均衡塩類溶液を包含する。このような溶液は、１×処方物と
して、または濃縮された（例えば、高張濃度で）（例えば、１０×、２５×、５
０×、１００×などの）処方物で作製され得る。

【００４８】 本発明に従って調製され得る動物細胞培養培地の例としては、ＤＭＥＭ、ＲＰ
ＭＩ−１６４０、ＭＣＤＢ１３１、ＭＣＤＢ１５３、ＭＤＥＭ、ＩＭＤＭ、ＭＥ
Ｍ、Ｍ１９９、ＭｃＣｏｙ’ｓ ５Ａ、Ｗｉｌｌｉａｍ培地Ｅ、Ｌｅｉｂｏｖｉ
ｔｚ’ｓ Ｌ−１５培地、Ｇｒａｃｅ’ｓ昆虫培地、ＩＰＬ−４１昆虫培地、Ｔ
Ｃ−１００昆虫培地、Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ’ｓ Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ培地、Ｗ
ｏｌｆ ＆ Ｑｕｉｍｂｙ’ｓ両生類培養培地、Ｆ１０栄養混合物、Ｆ１２栄養
混合物、および細胞特異的無血清培地（ＳＦＭ）（例えば、ケラチノサイト、内
皮細胞、肝細胞、メラニン形成細胞、ＣＨＯ細胞、２９３細胞、ＰｅｒＣ６細胞
、ハイブリドーマ、造血細胞、胚細胞、神経細胞などの培養物を支持するように
設計された培地）が挙げられるが、これらに限定されない。本発明による調製に
適した他の培地、培地補充物、および培地サブグループは、市販されている（例
えば、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．；Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、
Ｍａｒｙｌａｎｄ、およびＳｉｇｍａ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉよ
り）。これらの培地、培地補充物、および培地サブグループ、ならびに多くの他
の一般的に使用される動物細胞培養培地、培地補充物、および培地サブグループ
についての処方は、当該分野で周知であり、そして例えば、ＧＩＢＣＯ／ＢＲＬ
Ｃａｔａｌｏｇｕｅ ａｎｄ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｇｕｉｄｅ（Ｌｉｆｅ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．；Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ
）およびＳｉｇｍａ Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃａｔａｌｏｇｕｅ（Ｓｉｇｍ
ａ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉ）において見出され得る。

【００４９】 本発明に従って調製され得る植物細胞培養培地の例としては、Ａｎｄｅｒｓｏ
ｎ’ｓ植物培養培地、ＣＬＣ基本培地、Ｇａｍｂｏｒｇ’ｓ培地、Ｇｕｉｌｌａ
ｒｄ’ｓ海洋植物培養培地、Ｐｒｏｖａｓｏｌｉ’ｓ海洋培地、Ｋａｏ ａｎｄ
Ｍｉｃｈａｙｌｕｋ’ｓ培地、Ｍｕｒａｓｈｉｇｅ ａｎｄ Ｓｋｏｏｇ培地
、ＭｃＣｏｗｎ’ｓ木本植物培地、Ｋｎｕｄｓｏｎラン培地、Ｌｉｎｄｅｍａｎ
ｎラン培地、およびＶａｃｉｎ ａｎｄ Ｗｅｎｔ培地が挙げられるが、これら
に限定されない。これらの培地（これらは、市販されている）ならびに多くの他
の一般に使用される植物細胞培養培地についての処方は、当該分野で周知であり
、そして例えば、Ｓｉｇｍａ Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃａｔ
ａｌｏｇｕｅ（Ｓｉｇｍａ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉ）において見
出され得る。

【００５０】 本発明に従って調製され得る細菌細胞培養培地の例としては、トリプティケー
スソイ培地、ブレインハートインフュージョン培地、酵母抽出物培地、ペプトン
−酵母抽出物培地、ウシインフュージョン（ＢｅｅｆＩｎｆｕｓｉｏｎ）培地、
チオグリコール酸培地、硝酸インドール培地、ＭＲ−ＶＰ培地、Ｓｉｍｍｏｎ’
ｓクエン酸培地、ＣＴＡ培地、胆汁エスクリン培地、Ｂｏｒｄｅｔ−Ｇｅｎｇｏ
ｕ培地、炭酵母抽出物（ＣＹＥ）培地、マンニトール塩培地、ＭａｃＣｏｎｋｅ
ｙ’ｓ培地、エオシン−メチレンブルー（ＥＭＢ）培地、Ｔｈａｙｅｒ−Ｍａｒ
ｔｉｎ培地、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ−Ｓｈｉｇｅｌｌａ培地、およびウレアーゼ
培地が挙げられるが、これらに限定されない。これらの培地（これらは、市販さ
れている）ならびに多くの他の一般に使用される細菌細胞培養培地についての処
方は、当該分野で周知であり、そして例えば、ＤＩＦＣＯ Ｍａｎｕａｌ（ＤＩ
ＦＣＯ；Ｎｏｒｗｏｏｄ、Ｍａｓｓａｃｈｕｓｅｔｔｓ）およびＭａｎｕａｌ
ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏ
ｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ、ＤＣ
）において見出され得る。

【００５１】 本発明に従って調製され得る真菌細胞培養培地（特に酵母細胞培養培地）の例
としては、Ｓａｂｏｕｒａｕｄ培地および酵母形態培地（Ｙｅａｓｔ Ｍｏｒｐ
ｈｏｌｏｇｙ Ｍｅｄｉａ）（ＹＭＡ）が挙げられるが、これらに限定されない
。これらの培地（これらは、市販されている）ならびに多くの他の一般に使用さ
れる酵母細胞培養培地についての処方は、当該分野で周知であり、そして例えば
、ＤＩＦＣＯ Ｍａｎｕａｌ（ＤＩＦＣＯ；Ｎｏｒｗｏｏｄ、Ｍａｓｓａｃｈｕ
ｓｅｔｔｓ）およびＭａｎｕａｌ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏ
ｌｏｇｙ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ
ｇｙ）、Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ、ＤＣ）において見出され得る。

【００５２】 当業者が理解するように、本発明の上記培地のいずれもまた、１つ以上のさら
なる要素を含み得る。このような要素としては、指示剤または選択剤（例えば、
色素、抗生物質、アミノ酸、酵素、基質など）、フィルタ（例えば、炭）、塩、
多糖類、イオン、界面活性剤、安定剤などが挙げられる。

【００５３】 本発明の特に好ましい実施態様では、上記培養培地は、この培養培地について
至適な緩衝能を提供するのに十分な濃度で、１つ以上の緩衝塩、好ましくは炭酸
水素ナトリウムを含み得る。

【００５４】 本発明の方法によって調製され得る培地補充物の例は、限定することなく、動
物血清（例えば、ウシ血清（例えば、胎仔ウシ、新生児ウシおよび子ウシ血清）
、ヒト血清、ウマ血清、ブタ血清、サル血清、類人猿血清、ラット血清、マウス
血清、ウサギ血清、ヒツジ血清など）；規定の置換物（例えば、ＬｉｐｏＭＡＸ
（登録商標）、ＯｐｔｉＭＡｂ（登録商標）、Ｋｎｏｃｋ−Ｏｕｔ^TMＳＲ（各々
は、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．；Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍ
ａｒｙｌａｎｄから入手可能）、ホルモン（ステロイドホルモン（例えば、コル
チコステロイド、エストロゲン、アンドロゲン（例えば、テストステロン））お
よびペプチドホルモン（例えば、インスリン）を含む）、サイトカイン（増殖因
子（例えば、ＥＧＦ、ａＦＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＩＧＦ−１、ＩＧＦ−２、
ＮＧＦなど）、インターロイキン、コロニー刺激因子、インターフェロンなどを
包含する）、神経伝達物質、脂質（リン脂質、スフィンゴ脂質、脂肪酸、Ｅｘｃ
ｙｔｅ^TM、コレステロールなどを含む）、付着因子（細胞外基質要素（例えば、
フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン、コラーゲン、プロテオグリカン
、グリコサミノグリカンなどのような細胞外基質要素を含む）、および動物、植
物、または細菌の組織、細胞、器官、または腺の抽出物または加水分解物（例え
ば、ウシ脳下垂体抽出物、ウシ脳抽出物、ニワトリ胚抽出物、ウシ胚抽出物、ト
リ肉抽出物、アキレス腱およびその抽出物）など）を包含する。本発明の方法に
よって生成され得る他の培地補充物は、種々のタンパク質（例えば、血清アルブ
ミン、特にウシまたはヒト血清アルブミン；免疫グロブリンおよびそれらのフラ
グメントまたは複合体；アプロチニン；ヘモグロビン；ヘミンもしくはヘマチン
；酵素（例えば、トリプシン、コラゲナーゼ、パンクレアチニン（ｐａｎｃｒｅ
ａｔｉｎｉｎ）、またはジスパーゼ（ｄｉｓｐａｓｅ））；リポタンパク質；フ
ェチュイン（ｆｅｔｕｉｎ）；フェリチン；など）、これは、天然または組換え
であり得る）；ビタミン；アミノ酸およびそれらの改変体（Ｌ−グルタミンおよ
びシスチンを包含するが、これらに限定されない）、酵素補因子；多糖類；塩ま
たはイオン（微量元素（例えば、モリブデン、バナジウム、コバルト、マンガン
、セレンなどの塩またはイオン）を包含する）；および当業者に十分に知られる
インビトロで細胞を培養する際に有用である他の補充物および組成物を包含する
。本発明の方法により生成される好ましい培地補充物は、動物または哺乳動物（
例えば、ヒト、魚類、ウシ、ブタ、ウマ、サル、類人猿、ラット、マウス、ウサ
ギ、ヒツジ、昆虫など）由来補充物、成分または産物を包含する。これらの血清
および他の培地補充物は、市販されている（例えば、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌ
ｏｇｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ、およびＳｉｇ
ｍａ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、Ｍｉｓｓｏｕｒｉから）
；あるいは、上記の血清および他の培地補充物は、それらの天然供給源から単離
され得るか、または当業者に慣用の当該分野で公知の方法によって組換え生成さ
れ得る（例えば、Ｆｒｅｓｈｎｅｙ、Ｒ．Ｉ．、Ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ａｎｉ
ｍａｌ Ｃｅｌｌｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ、Ｉｎｃ．、
７４〜７８頁（１９８３）およびその中の引用文献を参照のこと；また、Ｈａｒ
ｌｏｗ、Ｅ．およびＬａｎｅ、Ｄ．、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａ
ｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎｅｗ Ｙ
ｏｒｋ：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、１１
６〜１２０頁（１９８８）を参照のこと）。

【００５５】 本発明に従って調製され得る緩衝液の例としては、リン酸緩衝化生理食塩水（
ＰＢＳ）処方物、Ｔｒｉｓ緩衝化生理食塩水（ＴＢＳ）処方物、ＨＥＰＥＳ緩衝
化生理食塩水（ＨＢＳ）処方物、ハンクス平衡塩類溶液（ＨＢＳＳ）、ダルベッ
コＰＢＳ（ＤＰＢＳ）、アール平衡塩類溶液、Ｐｕｃｋ’ｓ平衡塩類溶液、Ｍｕ
ｒａｓｈｉｇｅ ａｎｄ Ｓｋｏｏｇ植物基本塩類溶液、Ｋｅｌｌｅｒ’ｓ海洋
植物基本塩類溶液、Ｐｒｏｖａｓｏｌｉ’ｓ海洋植物基本塩類溶液およびＫａｏ
ａｎｄ Ｍｉｃｈａｙｌｕｋ’ｓ基本塩類溶液が挙げられるが、これらに限定
されない。これらの緩衝液（これらは、市販されている）ならびに多くの他の一
般に使用される緩衝液についての処方は、当該分野で周知であり、そして例えば
、ＧＩＢＣＯ／ＢＲＬ Ｃａｔａｌｏｇｕｅ ａｎｄ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｇ
ｕｉｄｅ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．；Ｒｏｃｋｖｉｌｌ
ｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）、ＤＩＦＣＯ Ｍａｎｕａｌ（ＤＩＦＣＯ；Ｎｏｒｗｏ
ｏｄ、Ｍａｓｓａｃｈｕｓｅｔｔｓ）、およびＳｉｇｍａ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔ
ｕｒｅ Ｃａｔａｌｏｇｕｅｓ ｆｏｒ ａｎｉｍａｌ ａｎｄ ｐｌａｎｔ
ｃｅｌｌ ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｓｉｇｍａ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉ
）において見出され得る。

【００５６】 本発明に従って調製され得る薬学的組成物または溶液の例としては、薬学的特
性を有する任意の組成物が挙げられる。このような特性としては、例えば、痛み
、感染、熱、神経障害、循環系障害、呼吸障害、栄養障害、代謝障害などを処置
、緩和、または減弱する能力が挙げられる。このような薬学的組成物は、１つ以
上の薬物、化学物質、タンパク質、抗体またはそのフラグメント、抗生物質など
、あるいはそれらの組み合わせを含み得る。このような薬学的組成物はさらに、
１つ以上の薬学的キャリアを含み得、これは、脂質、アジュバント、安定剤など
を含む。本発明はまた、臨床溶液、特に非経口栄養摂取のために使用される臨床
溶液、電解質平衡または静脈内（ＩＶ）溶液に関する。このような臨床溶液は、
例えば、Ｂａｘｔｅｒ ｃａｔａｌｏｇ（Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ、ＩＬ）において
見出され得、そしてリンゲル溶液、リンゲル乳酸加溶液、５％デキストロース水
溶液、通常生理食塩水（０．９％ ＮａＣｌ）、低張生理食塩水（０．４５％
ＮａＣｌ）５％デキストロース生理食塩水溶液などを包含し得るが、これらに限
定されない。臨床溶液はさらに、上記の１つ以上の薬学的組成物またはそれらの
成分を含み得る。

【００５７】 （薬学的組成物および臨床的組成物、細胞培養試薬、培地、培地補充物、培地
サブグループおよび緩衝液の調製） 本発明の方法は、上記のサンプルを含む任意のサンプルの調製を提供する。好
ましくは、このようなサンプルは、粉末化形態で調製される。薬学的組成物およ
び臨床的組成物、細胞培養試薬、培地、補充物、サブグループ、および緩衝液を
含むこれらの粉末化サンプルは、好ましくは、流動床技術（すなわち、凝集（ａ
ｇｇｌｏｍｅｒａｔｉｏｎ））を用いておよび／または噴霧乾燥を介して調製さ
れるが、他の技術も、このようなサンプルから外因性因子または毒素を減弱させ
るために使用され得る。このような他の技術は、当業者によって認識される。

【００５８】 本発明の１つの局面において、サンプル（例えば、栄養培地、培地補充物、培
地サブグループおよび緩衝液）は、培地、培地補充物、培地サブグループ、また
は緩衝液の溶液を凝集させるために、流動床技術を用いて調製されて、それによ
りそれらの乾燥粉末化形態が生成される。流動床技術は、出発物質から特徴（特
に、例えば、溶解度）が変化した凝集粉末を生成するプロセスである。本発明に
従う技術の適用の際、粉末を、空気、気体、または気体の組み合わせの上方に動
くカラム中に懸濁する。同時に、必要に応じて、制御されたかつ規定された量の
液体を粉末流に注入し、湿った状態の粉末を生成し；次いで、必要に応じて、加
熱または穏やかな加熱を用いて、材料を乾燥させ、凝集粉末を生成する。本発明
の局面において、注入される液体は、毒素および／または外因性因子の減弱、不
活性化、または排除を容易にする気体または化合物（生物学的もしくは化学的）
を含み得る。

【００５９】 流動床技術によって粒子状材料を生成および／または加工するための装置は、
市販されており（例えば、Ｎｉｒｏ，Ｉｎｃ．／Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌ
ｄｅｒ；Ｃｏｌｕｍｂｉａ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）、そして、例えば、米国特許第
３，７７１，２３７号；同第４，８８５，８４８号；同第５，１３３，１３７号
；同第５，３５７，６８８号；および同第５，３９２，５３１号；ならびにＷＯ
９５／１３８６７に記載されている（前出の特許および特許出願の全ての開示
は、それらの全体が、本明細書中に参考として援用されている）。このような装
置は、種々の材料の凝集粉末を調製するために使用されている。これら材料には
、乳清（米国特許第５，００６，２０４号）、酸味加工（ａｃｉｄｕｌａｔｅｄ
）肉乳濁液（米国特許第４，５１１，５９２号）、プロテアーゼ（米国特許第４
，６８９，２９７号）および他のタンパク質（ＤＫ１６７０９０ Ｂ１）、なら
びに炭酸水素ナトリウム（米国特許第５，３２５，６０６号）が含まれる。

【００６０】 本発明のこの局面に従って、流動床技術は、バルク凝集サンプル（特に、栄養
培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝液）を調製するために使用さ
れ得る。本発明のこの局面の実施において、乾燥粉末化サンプル（例えば、栄養
培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝液、あるいはそれらの混合物
もしくは組み合わせ）を流動床装置中に配置し、そしてその中で凝集させる。粉
末化した栄養培地（特に、粉末化した細胞培養培地）、粉末化した培地補充物（
特に、粉末化した動物血清）、および粉末化した緩衝液（特に、粉末化した緩衝
化生理食塩水）は、商業供給源（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ
．；Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）から予備作製されて得られ得る。
あるいは、粉末化したサンプル（栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、ま
たは緩衝液を含む）は、上記の処方物に従って、個々の要素または要素のセット
を混合することにより作製され得る。このような処方物は、その不安定性に起因
して粉末化した栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝液処方物
中に代表的には存在しない要素、例えば、血清、Ｌ−グルタミン、シスチン、イ
ンスリン、トランスフェリン、脂質（特に、リン脂質、スフィンゴ脂質、Ｅｘｃ
ｙｔｅ^TM、脂肪酸、およびコレステロール）、特定の炭水化物、サイトカイン（
特に、増殖因子、インターロイキン、コロニー刺激因子、およびインターフェロ
ン）、神経伝達物質および緩衝液（特に炭酸水素ナトリウム））を含み得る。Ｌ
−グルタミンが処方物に添加される場合、二価カチオン（例えば、カルシウムま
たはマグネシウム）との複合体の形態であり得る（米国特許第５，４７４，９３
１号を参照のこと）。別の例では、２つ以上の粉末化要素が混合され得、次いで
凝集されて、複合体混合物（例えば、培地、培地補充物、培地サブグループ、ま
たは緩衝液）を生成し得る。例えば、粉末化した栄養培地は、約０．１％、０．
２％、０．５％、１％、２％、２．５％、５％、７．５％、１０％、１５％、２
０％、２５％、５０％またはそれ以上の血清濃度（粉末化した培地の百分率とし
てｗ／ｗ）の粉末化した血清（例えば、以下に記載のように噴霧乾燥することに
よって生成される）（例えば、ＦＢＳ）と混合され得る；次いで、得られる粉末
化した培地−血清混合物が凝集され、凝集した培地−血清複合体を生成し得る。
この複合体は、再構成溶媒中に容易に溶解し、そして従ってさらなる補充を行う
ことなく使用に即する。

【００６１】 一旦、粉末化したサンプル（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブグルー
プ、または緩衝液）（あるいはそれらの混合物もしくは組み合わせ）を流動床装
置中に配置すると、これを、気体、好ましくは、大気または不活性気体（例えば
、窒素）の上方に動くカラム中に懸濁させ、そして１つ以上の粒子フィルタに通
過させる。あるいは、使用される気体、または気体の組み合わせは、サンプル中
に存在する外因性因子または毒素に対して毒性または阻害性であり得る。ほとん
どの乾燥粉末、凝集されない栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および
緩衝液は、比較的小さな粒子サイズであるので、本発明で使用されるべきフィル
タは、空気は素通りさせるが粉末を保持するメッシュ篩であるべきである。これ
は、例えば、約１〜１００メッシュ、好ましくは、約２〜５０メッシュ、より好
ましくは、約２．５〜３５メッシュ、なおより好ましくは、約３〜２０メッシュ
または約３．５〜１５メッシュ、そして最も好ましくは、約４〜６メッシュのフ
ィルタである。他のフィルタは、必要性および用いるサンプルに依存して使用さ
れ得、そして当業者によって決定され得る。

【００６２】 流動床チャンバー内に配置した後、次いで、栄養培地、培地補充物、培地サブ
グループまたは緩衝剤（または、これらの混合物もしくは組み合わせ）を含有す
る乾燥粉末サンプルを、必要に応じて、湿らせた粉末を生成するために、好まし
くは流動床装置の噴霧ノズルを用いて、規定されかつ制御された量の溶媒をこの
粉末に注射することによって処理する。本発明の用途に好ましい溶媒は、目的の
サンプルに適合性である任意の溶媒である。別の局面において、使用される溶媒
は、サンプル中の外来性因子または毒素の含有量を減弱させることを補助するた
めの、このような因子または毒素に対して毒性または阻害性の溶媒であり得る。
「適合性」とは、この溶媒が、サンプルの物理的特性または性能特性において不
可逆性の有害な変化（例えば、栄養培地の栄養成分の分解もしくは凝集化、また
は緩衝液のイオン特性における変化、または薬学的組成物の薬学的特性における
変化）を誘導しないことを意味する。本発明の用途に特に好ましい溶媒は、水（
最も詳細には、蒸留水および／または脱イオン水）、血清（詳細には、ウシ血清
またはヒト血清、そして最も詳細には、ウシ胎仔血清または子ウシ血清）、有機
溶媒（詳細には、ジメチルスルホキシド、アセトン、エタノールなど）、血液由
来産物、組織、器官、腺、または細胞の抽出物または加水分解産物、動物由来産
物あるいは任意の他の培地補充物または成分、緩衝剤、酸もしくは塩基（ｐＨ調
整剤）（これらはいずれも、１つ以上のさらなる成分（例えば、塩、ポリサッカ
リド、イオン、界面活性剤、安定剤など）を含み得る）である。

【００６３】 本発明のいくつかの局面において、最終産物において必要とされる成分の濃度
に起因して、ボールミリング（ｂａｌｌ−ｍｉｌｌｉｎｇ）のような他の方法に
よってはこの産物中に最適には組込まれ得ない１つ以上の成分を、溶媒中に含ま
せることが、所望され得るかまたは有利であり得る。１つのそのような局面にお
いて、成分は、粉末化されたサンプル（例えば、培地、培地補充物、培地サブグ
ループ、または緩衝剤）の凝塊形成に溶媒を使用する前に、所望される濃度にて
溶媒中に溶解、懸濁、コロイド化、またはさもなけれは導入され得る。本発明の
局面に従ってこの溶媒中に有利に組込まれ得る成分としては、１つ以上の上記の
血清、ホルモン、サイトカイン、神経伝達物質、脂質、炭水化物、接着因子、タ
ンパク質、アミノ酸、ビタミン、酵素補因子、動物由来産物、血液由来産物、組
織、器官、腺、または細胞の抽出物または加水分解産物、ポリサッカリド、塩、
イオン、緩衝剤などが挙げられるが、これらに限定されない。

【００６４】 溶媒は、凝集形成される粉末化サンプルの質量に依存した容量で、乾燥粉末中
に導入されるべきである。サンプル（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブ
グループ、または緩衝剤）５００グラムあたりの溶媒の好ましい容量は、約５〜
１００ｍｌ、より好ましくは約１０〜５０ｍｌ、さらにより好ましくは約２５〜
５０ｍｌ、そして最も好ましくは約３５ｍｌである。サンプル（例えば、栄養培
地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）５００グラムあたりの好ま
しい溶媒導入速度は、約１〜１０ｍｌ／分、好ましくは約２〜８ｍｌ／分、より
好ましくは約４〜８ｍｌ／分、そして最も好ましくは約６ｍｌ／分の速度である
。いくつかの場合において、約１分間溶媒を添加する工程と、次いで約１分間溶
媒を添加しない工程（装置のチャンバー内の粉末を乾燥させる工程）との間を循
環させて、凝集形成の間の粉末の凝集を防ぐことが所望され得る。

【００６５】 本来の凝集形成されていない粉末の粒子サイズよりも大きい粒子サイズによっ
て証明されるように、および凝集形成された粉末における微細な粉塵粒子の欠如
によって証明されるように、一旦、粉末の凝集形成が完了すると、この粉末は、
装置内で実質的に乾燥され、そして好ましくは完全に乾燥される。凝集形成され
た粉末の乾燥のための好ましい装置温度は、約５０〜８０℃、より好ましくは約
５５〜７５℃、そして最も好ましくは約６０〜６５℃であり；粉末は、５００グ
ラムの粉末あたり好ましくは約３〜１０分間、そして最も好ましくは約５〜７分
間、装置内で乾燥される。

【００６６】 本発明の別の局面において、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、およ
び緩衝剤を含有する粉末化サンプルは、噴霧乾燥によって調製され得る。本発明
のこの局面において、その液状形態において目的のサンプルは、噴霧乾燥装置内
に配置され；次いで、この液体は、粉末が形成されるまで適切な条件下で（例え
ば、制御された温度および湿度の下で）装置内のチャンバーにこの溶液を噴霧す
ることによって、対応する粉末に変換される。いくつかの場合、２つ以上の上記
のサンプルもしくは成分、またはそれらの組み合わせの複合混合物を噴霧乾燥さ
せることが、所望され得るか、または有利であり得る。例えば、所望の濃度にて
動物血清を含有する液体栄養培地、または所望の濃度にて栄養培地成分を含有す
る液体動物血清を混合し得、次いで、本発明の方法に従って、噴霧乾燥された粉
末として調製され得る。

【００６７】 代表的な噴霧乾燥アプローチにおいて、栄養培地、培地補充物、培地サブグル
ープ、および緩衝剤を含む液体サンプルは、装置内に吸引され、そして回転型噴
霧器またはノズル型噴霧器を用いて、スプレーへと噴霧される。次いで、得られ
る噴霧化された液体スプレーを、気体（例えば、窒素、またはより好ましくは大
気）と混合し、そしてエバポレーションおよび粉末化産物の生成を促進するのに
十分な条件下にある乾燥チャンバー内に噴霧する。本発明の好ましい局面におい
て、このような条件は、チャンバー内の温度および湿度の電子的制御を含み得、
その結果、産物の最終乾燥が促進される。このような条件下で、液体中の溶媒は
、制御された様式でエバポレートされ、それによって目的のサンプル（例えば、
栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）の自由に流動する（
ｆｒｅｅ−ｆｌｏｗｉｎｇ）粒子（すなわち、粉末）を形成する。次いで、粉末
は、乾燥チャンバーから排出され、サイクロン遠心分離系かまたは１枚以上のフ
ィルター（例えば、流動床調製について上記されたメッシュふるい）を通して通
過され、そしてさらなる加工（例えば、包装、滅菌など）のために収集される。
いくつかの適用（特に、熱感受性の処方物またはサンプルから粉末を生成する場
合）において、噴霧乾燥装置は、乾燥チャンバー内に組み込まれた流動床装置と
組み合わされ得る。これは、上記のような凝集形成溶媒を、噴霧乾燥された粉末
に導入して、凝集形成された噴霧乾燥粉末サンプルを形成することを可能にする
。このようなプロセスの組み合わせは、サンプル中の毒素または外来性因子の除
去または不活化を容易にし得る。

【００６８】 噴霧乾燥によって液体物質から粒子状物質を生成するための装置（組込まれた
流動床技術を有しても、または有さなくとも）は、市販され（例えば、Ｎｉｒｏ
，Ｉｎｃ．／Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ；Ｃｏｌｕｍｂｉａ，Ｍａｒ
ｙｌａｎｄから）、そして例えば、Ｎｉｒｏ，Ｉｎｃ．／Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−
Ｆｉｅｌｄｅｒの技術パンフレット「噴霧乾燥（Ｓｐｒａｙ Ｄｒｙｉｎｇ）」
、「噴霧乾燥による粉末化された薬品（Ｐｏｗｄｅｒｅｄ Ｐｈａｒｍａｃｅｕ
ｔｉｃａｌｓ ｂｙ Ｓｐｒａｙ Ｄｒｙｉｎｇ）」、および「乾燥の際の新た
な選択（Ｆｒｅｓｈ Ｏｐｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｄｒｙｉｎｇ）」（これらの開示
は、その全体において本明細書中で参考として援用される）に記載される。この
製造業者に従って、このような装置は、種々の物質（日用品、鎮痛剤、抗生物質
、ワクチン、ビタミン、酵母、植物性タンパク質、卵、化学物質、食品調味料等
を含む）の粉末を調製するために使用されている。本発明において、噴霧乾燥は
、粉末化された培地補充物（例えば、血清、そして詳細には、上記の血清、最も
詳細には、ヒト血清およびウシ血清（例えば、ウシ胎仔血清および子ウシ血清）
）の調製のために、特に有用であることが見い出された。これはまた、粉末化さ
れた薬学的または臨床的な組成物または溶液を調製することに特に適している。

【００６９】 本発明のこの局面の実施において、液体サンプル（例えば、栄養培地、培地補
充物、培地サブグループ、緩衝剤、またはｐＨ調整剤）は、約２５〜１００ｇ／
分の噴霧速度にて、好ましくは、約３０〜９０ｇ／分、約３５〜８５ｇ／分、約
４０〜８０ｇ／分、約４５〜７５ｇ／分、約５０〜７５ｇ／分、５５〜７０ｇ／
分、または約６０〜６５ｇ／分の噴霧速度にて、そしてより好ましくは、約６５
ｇ／分で、噴霧器を通してチャンバー内に噴霧されるべきである。乾燥チャンバ
ー内の入口の大気温度は、好ましくは、約１００〜３００℃、より好ましくは約
１５０〜２５０℃、そして最も好ましくは約２００℃に設定される。これは、約
５０〜１００℃、より好ましくは約６０〜８０℃、そして最も好ましくは約７０
℃の出口温度を伴う。噴霧器内の空気の流れは、好ましくは、約５０〜１００ｋ
ｇ／時間、より好ましくは約７５〜９０ｋｇ／時間、そして最も好ましくは約８
０．０ｋｇ／時間で、約１〜５バール、より好ましくは約２〜３バール、そして
最も好ましくは約２．０バールのノズル圧にて設定される。これらの条件および
設定は、噴霧乾燥による種々の栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、およ
び緩衝剤粉末の生成について、特に、上記の粉末化された血清の生成に好適であ
ることが本発明において見出された。乾燥に続いて、噴霧乾燥された粉末化サン
プルは（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）は
、サイクロン系または１枚以上のフィルターを通して（好ましくは、流動床につ
いて上記されたフィルター）、乾燥チャンバー内に収集され得る。

【００７０】 この調製後には、上記の流動床方法および／または噴霧乾燥方法（または、そ
れらの組み合わせ）によって調製された本発明の粉末は、出発の粉末または液体
から物理的特徴が改変されている。例えば、加工されていない粉末または凍結乾
燥された粉末は、しばしば、使用される場合にかなりの粉塵を生成し、そして種
々の溶媒中に不十分にかまたは緩徐に溶解する。一方、凝集形成された粉末また
はいくつかの噴霧乾燥された粉末は、実質的に粉塵がなく、および／または迅速
に溶解する。代表的に、本発明の溶液の粉末化された培地、培地補充物、培地サ
ブグループ、緩衝剤、および薬学的または臨床的組成物は、ボールミリングのよ
うな標準的技術によって調製されるそれらの粉末化された対応物よりも、低減さ
れた粉塵形成およびより迅速な溶解の両方を示す。実質的に粉塵がないが、増強
された溶解を示さないかもしれないいくつかの粉末において、この粉末は、粉末
の迅速な機械的溶媒和によって（例えば、機械的インペラーを使用して）、また
は粉末上に溶媒ミストをまず与えることによって（例えば、噴霧溶媒和によって
）、迅速に溶解され得る。さらに、本発明に従って、生成された粉末化サンプル
は、外来性因子および／または毒素が低減されているか、実質的に低減されてい
るか、または不活化されているかもしくは除去されている。このような試薬は、
産業的プロセスまたは生物医学的プロセスにおいて使用され得る細胞を操作また
は増殖させるための成分を有利に提供し、そして医学分野に重要な薬学的または
臨床的な組成物または溶液を提供する。

【００７１】 本発明の別の局面において、上記された噴霧乾燥アプローチおよび凝集形成ア
プローチは、凝集形成された噴霧乾燥サンプル（例えば、栄養培地、培地補充物
、培地サブグループ、および緩衝剤粉末）を生成するために、組み合わせられ得
る。この局面において、噴霧乾燥によって調製された粉末化サンプルは、噴霧乾
燥された後に、次いで、得られる産物（例えば、培地補充物、サブグループ、ま
たは緩衝剤）の性能および物理学的特徴をさらに改善するために、溶媒（例えば
、上記の溶媒）で凝集形成され得る。例えば、動物血清の粉末が、上記のような
液体動物血清を噴霧乾燥することによって調製され得、次いで、この噴霧乾燥さ
れた血清粉末は、乾燥粉末の栄養培地（噴霧乾燥またはボールミリングのような
標準的技術によって調製される）に混合され得る；次いで、この混合された粉末
は、上記のように凝集形成され得る。あるいは、噴霧乾燥された栄養培地、培地
補充物、培地サブグループ、および緩衝剤粉末は、上記のように凝集形成されて
この粉末の溶解特性が改善され得る。このアプローチは、少ない（約１〜１０％
）固体含有量を有する液体（例えば、液体の動物血清）を噴霧乾燥する場合に、
特に有利であり得る。当業者が理解するように、これらのアプローチは、所望の
濃度であるが、凝集形成という上記の利点が得られる濃度にて、粉末化された培
地補充物、サブグループ、または緩衝剤に添加するためのストックとして使用さ
れる１つ以上の成分（例えば、血清、または他の培地補充物）の大量回分の調製
を容易にする。さらに、このアプローチは、特定の培地補充物（特に動物血清）
に伴う問題であり得るロット毎の変動性を低減させ得、そして本発明に従って、
毒素および／または外来性因子の減弱を促進する。

【００７２】 次いで、凝集形成された粉末化サンプルおよび／または噴霧乾燥された粉末化
サンプル（特に、上記のように調製される栄養培地、培地補充物、培地サブグル
ープ、緩衝剤、または薬学的もしく臨床的な組成物もしくは溶液）は、以下に記
載されるような最適な滅菌の前または後に、例えば、バイアル、チューブ、瓶、
バッグ、小袋、箱、カートン、ドラムなどのような容器内に包装され得る。本発
明の１つのそのような局面において、培地、培地補充物、培地サブグループ、ま
たは緩衝剤を含む粉末化サンプルは、コンパクトな真空包装形態（例えば、「ブ
リック包装（ｂｒｉｃｋ−ｐａｃｋ）」として当該分野で公知の真空包装形態（
ここで、粉末は、排気されながらシールされる可撓性容器（例えば、バッグまた
は小袋）内に包装される））に包装され得る。他のそのような包装は、包装内に
直接溶媒（例えば、水、血清、培地、または他の水性もしくは有機性の溶媒もし
くは溶液）を導入して粉末の迅速な溶解の促進を可能にする１つ以上のアクセス
ポート（例えば、弁、ルーアーロックポート（ｌｕｅｒ−ｌｏｃｋ ｐｏｒｔ）
など）を、有利に備え得る。関連する局面において、この包装は、２つ以上の隣
接区画を備え得、これらの区画のうちの１つ以上は本発明の乾燥粉末サンプル（
例えば、培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）の１つ以上を含
み得、そして他のこれらの区画のうちの１つ以上は、１つ以上の無菌であり得る
水性または有機性の溶媒を含み得る。この局面において、次いで乾燥粉末は、理
想的には無菌性を損なうことなく、区画間の障壁を単純に除去または破壊し、粉
末および溶媒の混合を可能にすることによって溶解され得、その結果、粉末は溶
解され、そして所望の濃度で栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または
緩衝剤のような滅菌サンプルを生成する。

【００７３】 本発明の培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝剤を含む包装され
たサンプルは、好ましくは、長期間そして上述のような温度にて、代表的には約
１〜２４ヶ月間約３０℃未満の温度にて、より好ましくは約２０℃〜２５℃未満
の温度にて、使用まで保存される。伝統的な粉末化された培地、培地補充物、培
地サブグループ、または緩衝剤とは異なり、低減された温度（例えば、０〜４℃
）での保存は、本発明の方法によって調製された培地、培地補充物、培地サブグ
ループ、および緩衝剤の性能特性を維持するためには必要でないかもしれない。
もちろん、包装がまた１つ以上の溶媒を含む分離された区画を備える本発明の局
面について、他の保存温度が必要とされ得る；これらの場合、最適な保存条件は
、当業者に公知である溶媒の保存必要条件によって指示される。

【００７４】 （滅菌および包装） 本発明はまた、本発明の栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩
衝剤を含むサンプルを、滅菌または実質的に滅菌するためのさらなる方法を提供
する。そのようなさらなる方法としては、濾過、熱滅菌、照射、または他の化学
的方法もしくは物理的方法が挙げられ得る。好ましくは、栄養培地、培地補充物
、培地サブグループ、または緩衝剤（好ましくは、噴霧乾燥および／または凝集
形成によって上記のように調製された粉末）は、滅菌に好都合な条件下で照射さ
れ得る。好ましくは、この照射は、バルクで（すなわち、サンプルの包装の後に
）達成され、そして最も好ましくは本発明のバルクの包装されたサンプル（例え
ば、培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）を、粉末化サンプル
中に存在し得る細菌、真菌、胞子、またはウイルスが不活化される（すなわち、
複製が妨害される）ような条件下でγ線源に暴露することによって達成される。
あるいは、照射は、包装の前に、サンプル（例えば、培地、培地補充物、培地サ
ブグループ、または緩衝剤）を、γ線源または紫外光源に暴露することによって
達成され得る。あるいは、本発明のサンプル（例えば、培地、培地補充物、培地
サブグループ、および緩衝剤）は、加熱処理（栄養培地、培地補充物、培地サブ
グループ、または緩衝剤のようなサンプルのサブグループまたは成分が、熱に安
定である場合）によって（例えば、瞬間殺菌またはオートクレーブによって）滅
菌され得る。当業者によって理解されるように、滅菌に必要とされる照射線量ま
たは加熱の用量、および暴露の時間は、滅菌されるべき物質のかさに依存する。

【００７５】 本発明の特に好ましい局面において、バルクサンプル（例えば、栄養培地、培
地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）（これらは、好ましくは粉末化形
態である）は、総線量約１０〜１００キログレイ（ｋＧｙ）で、好ましくは総線
量約１５〜７５ｋＧｙ、約１５〜５０ｋＧｙ、約１５〜４０ｋＧｙ、約２０〜４
０ｋＧｙ、または約２５〜４５ｋＧｙで、より好ましくは総線量約２０〜３０ｋ
Ｇｙで、そして最も好ましくは総線量約２５〜３５ｋＧｙで、約１時間〜約７日
間、より好ましくは約１時間〜約５日間、１時間〜約３日間、約１〜２４時間、
または約１〜５時間、そして最も好ましくは約１〜３時間、γ照射源に暴露され
る（「通常線量率」）。あるいは、バルクサンプルは、約１〜５日間の期間にわ
たり約２５〜１００ｋＧｙの「低線量率」の総累積用量で滅菌され得る。照射の
間、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤（これらは、好ま
しくは粉末化形態にある）を含むサンプルは、好ましくは、約−７０℃〜ほぼ室
温（約２０〜２５℃）の温度で、最も好ましくは、約−７０℃で保存される。も
ちろん、当業者は、放射線量および暴露時間は、照射される物質のバルクおよび
／または質量に依存して調整され得ることを理解する；照射または加熱処理によ
るバルクの粉末化物質の滅菌に必要とされる、代表的な最適照射線量、暴露時間
、および保存温度は、当該分野において周知である。

【００７６】 滅菌後に、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝剤を含む包
装されていないサンプルは、例えば、サンプルを滅菌チューブ、バイアル、瓶、
バッグ、小袋、箱、カートン、ドラムなどのような容器内に、または上記のよう
な真空包装もしくは組込み型粉末／溶媒包装に包装することによって、無菌条件
下で包装され得る。次いで、滅菌包装されたサンプル（例えば、培地、培地補充
物、培地サブグループ、および緩衝剤）は、上記のように、長期間保存され得る
。

【００７７】 （薬学的組成物および臨床的組成物、栄養培地、培地補充物、培地サブグル
ープ、ならびに緩衝剤の使用） 従って、本発明は、外来性因子および／または毒素が減衰されているか、実質
的に減衰されているか、不活化されているかまたは除去されている、薬学的およ
び臨床的な組成物／溶液、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩
衝剤（これらは、好ましくは粉末化される）を含むサンプルを提供する。粉末化
形態において、このようなサンプルは、再水和溶媒中で容易に可溶性であり、そ
して実質的に粉塵を含まない。使用のためには、本発明によって生成されたサン
プルは、溶媒和したサンプル（例えば、培地、培地補充物、培地サブグループ、
または緩衝剤）の特定の使用のために必要とされる所望の濃度条件、栄養素条件
、電解質条件、イオン条件、およびｐＨ条件を生成するのに十分な溶媒の容量に
おいて、水和され得る（すなわち、「再構成され得る」）。この再構成は、本発
明において特に促進される。なぜなら、凍結乾燥サンプルまたはボールミリング
サンプル（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または緩衝剤）
とは異なり、この粉末化サンプルは迅速に溶液中に入り、そして粉塵も不溶性物
質も、あったとしてもほとんど生成しない。

【００７８】 本発明の粉末化サンプルを再構成する際の使用について好ましい溶媒としては
、例えば、水（最も詳細には、蒸留水および／または脱イオン水）、血清（詳細
には、ウシ血清またはヒト血清、そして最も詳細には、ウシ胎仔血清または子ウ
シ血清）、有機溶媒（詳細には、ジメチルスルホキシド、アセトン、エタノール
など）、またはそれらの任意の組み合わせ（これらのうちのいずれも、１つ以上
のさらなる成分（例えば、塩、ポリサッカリド、イオン、界面活性剤、安定剤な
ど）を含み得る）のような上記の溶媒が挙げられる。例えば、粉末化された培地
補充物（例えば、動物血清）および緩衝剤は、ストック溶液の調製のためまたは
保存のために、好ましくは、１×最終濃度に、または必要に応じてより高い濃度
（例えば、２×、２．５×、５×、１０×、２０×、２５×、５０×、１００×
、５００×、１０００×など）に水中に再構成される。あるいは、粉末化培養培
地は、水中の培地補充物（例えば、血清（例えば、ＦＢＳ））の溶液（例えば、
培地補充物が、水中で容量／容量にて０．５％、１％、２％、２．５％、５％、
７．５％、１０％、１５％、２０％、２５％、５０％、またはそれ以上の濃度で
存在する溶液）中に再構成され得る。

【００７９】 粉末化サンプル（例えば、栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、または
緩衝剤）の再構成は、再構成されたサンプルの無菌性を維持するために、好まし
くは無菌条件下で達成されるが、再構成されたサンプルは、好ましくは、濾過ま
たは当該分野で周知の他の滅菌方法によって、再水和の後に、さらに滅菌され得
る。それらの再構成後に、培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝剤
、または他のサンプルは、約１０℃未満の温度にて、好ましくは約０〜４℃の温
度にて、使用まで保存されるべきである。

【００８０】 再構成された栄養培地、培地補充物、培地サブグループ、および緩衝剤が使用
されて、当業者に周知の標準的な細胞培養技術に従って、細胞を培養または操作
し得る。このような技術において、培養されるべき細胞は、細胞の培養または操
作に有利な条件（例えば、制御された温度条件、湿度条件、照明条件、および大
気条件）下で、再構成された本発明の培地、培地補充物、培地サブグループ、ま
たは緩衝剤と接触される。このような方法による培養に特に従順な細胞としては
、細菌細胞、魚類細胞、酵母細胞、植物細胞および動物細胞が挙げられるが、こ
れらに限定されない。そのような細菌細胞、酵母細胞、植物細胞および動物細胞
は、公知の培養物寄託機関（例えば、アメリカンタイプカルチャーコレクション
（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ）、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｌａ Ｊ
ｏｌｌａ、Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ）および当業者に周知の他の寄託機関から商業
的に利用可能である。これらの方法による培養のために好ましい動物細胞として
は、昆虫細胞（最も好ましくは、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ細胞、Ｓｐｏｄｏｐｔｅ
ｒａ細胞、およびＴｒｉｃｈｏｐｌｕｓａ細胞）、線虫細胞（最も好ましくは、
Ｃ．ｅｌｅｇａｎｓ細胞）、および哺乳動物細胞（ＣＨＯ細胞、ＣＯＳ細胞、Ｖ
ＥＲＯ細胞、ＢＨＫ細胞、ＡＥ−１細胞、ＳＰ２／０細胞、Ｌ５．１細胞、ハイ
ブリドーマ細胞、および最も好ましくはヒト細胞（例えば、２９３細胞、Ｐｅｒ
Ｃ６細胞、およびＨｅＬａ細胞）が挙げられるが、これらに限定されない）が挙
げられるが、これらに限定されない。これらのうちのいずれも、体細胞、生殖細
胞、正常細胞、疾患細胞、形質転換細胞、変異細胞、幹細胞、前駆細胞、または
胚細胞であり得、そしてこれらのうちのいずれも、足場依存性細胞または足場非
依存性（すなわち、「懸濁」）細胞であり得る。

【００８１】 （細胞） 別の局面において、本発明は、１つ以上の細胞を含む乾燥細胞粉末組成物を生
成する方法、およびこれらの方法によって生成される乾燥細胞粉末に関する。従
って、本発明は、本発明の方法による１つ以上の細胞を含むサンプル由来の外来
性因子または毒素を減弱することに関する。従って、これらの方法は、細胞を含
む組成物を生成し（ここで、この細胞は保存されている）、そして使用するまで
の長期間の間所蔵され得、そしてこのような細胞組成物は、外来性因子および毒
素が減弱または排除されている。この場合において、本発明の方法は、細胞保存
の伝統的方法（例えば、凍結）のいくつかの欠点（例えば、低温保存装置の必要
および細胞に対して毒性であり得る特定の低温保存剤（ｃｒｙｏｐｒｅｓｅｒｖ
ａｔｉｖｅ）の使用）を克服する。

【００８２】 本発明のこの局面に従う方法は、１以上の工程を包含し得る。例えば、１つの
このような方法は、目的の１つ以上の細胞を得る工程、水溶液中にこの１つ以上
の細胞を懸濁することによって水性細胞懸濁液を形成する工程、および外来性因
子または毒素を減弱するかまたは実質的に減弱するために十分な条件下で（この
ような細胞の生存率に実質的に影響を与えることなく）、好ましくは、乾燥した
粉末（好ましくは、噴霧乾燥による）の生成物に有利な条件下でこの細胞懸濁液
を実質的に乾燥することにより、本発明に従ってこの細胞を処理する工程を包含
し得る。これらの方法は、１つ以上の細胞を、１つ以上の安定化化合物または保
存化合物（例えば、ポリサッカライド（トレハロースを含むがこれに限定されな
い））と接触させる工程をさらに包含し得る。この細胞懸濁液を形成するために
使用される水溶液は、好ましくは、１つ以上の成分（例えば、上記の栄養培地、
培地補充物、培地部分群、塩または緩衝液の１つ以上）を含む。好ましくは、こ
の細胞懸濁液を形成するために使用される水溶液は、乾燥される細胞型について
最適な張度および浸透圧重量モル濃度、または実質的に最適な張度および浸透圧
重量モル濃度に調整される。この水溶液は、必要に応じて、１つ以上のさらなる
成分（例えば、１つ以上のポリサッカライド、イオン、界面活性剤、安定化化合
物または保存化合物（トレハロースを含む）など）を含み得る。１つ以上の細胞
が１つ以上の安定化化合物または保存化合物と接触される本発明の局面において
、この安定化化合物または保存化合物は、使用される水溶液に組み込まれて水性
細胞懸濁液を形成する。あるいは、この安定化化合物または保存化合物は、乾燥
細胞粉末の形成後に、この粉末上に噴霧され得るか、または凝集され得る。

【００８３】 一旦、乾燥細胞粉末が上記の方法によって形成されると、この粉末は、必要に
応じて、乾燥粉末の凝集のための上記の方法に従って溶媒と共に凝集され得る。
乾燥される細胞型と適合性の任意の溶媒（水、栄養培地溶液、栄養培地補充物溶
液（血清、特にウシ血清（最も好ましくは、ウシ胎仔血清および仔ウシ血清）お
よびヒト血清を含む）、緩衝液、塩溶液、ならびにそれらの組み合わせを含むが
これらに限定されない）を使用して、乾燥細胞粉末を凝集させ得る。別の局面に
おいて、本発明の細胞粉末は、１つ以上の乾燥培地、培地補充物、培地部分群ま
たは緩衝液（これらは、本発明の方法によるか、または標準的技術によって生成
される）と混合され得、そしてそのような混合物は、必要に応じて、本発明の方
法によって溶媒と共に凝集され得る。

【００８４】 種々の細胞が、本発明の方法に従って乾燥され得る。この細胞には、原核生物
（例えば、細菌）細胞および真核生物（例えば、真菌（特に、酵母）、動物（特
に哺乳動物（ヒトを含む））および植物）細胞、特にこれらの細胞、組織、器官
、器官系、ならびに上記の生物が挙げられる。一旦、乾燥した細胞が生成される
と、これらは、長期間の間（例えば、数ヶ月から数年）、好ましくは使用するま
で、約０〜３０℃、４〜２５℃、１０〜２５℃、または２０〜２５℃の温度（す
なわち、「室温」）で、無菌的にパッケージングされ得、そして貯蔵され得る。
生細胞の培養物を調製する際の使用について、この乾燥細胞粉末は、水性溶媒（
例えば、滅菌水、緩衝液、培地補充物、培養培地、またはそれらの組み合わせ）
と共に、１つ以上の生存可能な細胞を含む細胞懸濁液へ無菌的に再構成され得、
そして当該分野で公知の標準的プロトコルに従って培養され得る。あるいは、こ
の乾燥細胞粉末は、例えば、動物の免疫のために使用される免疫原の調製のため
に、細胞の生存率が重要でない細胞懸濁液へ再構成され得る。このような場合に
おいて、この乾燥細胞粉末は、標準的な免疫プロトコルと適合性である任意の溶
媒（例えば、１つ以上の界面活性剤、アジュバントなどを含み得る水溶性溶媒ま
たは有機溶媒）を用いて再構成され得る。

【００８５】 （キット） 本発明によって提供される薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養試薬、
培地、培地補充物、培地部分群、緩衝液および細胞は、理想的には、キットの調
製に適切である。このようなキットは、１つ以上の容器（例えば、バイアル、試
験管、ビン、パッケージ、小袋、ドラムなど）を含み得る。各々の容器は、上記
の１つ以上の本発明の薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養試薬、栄養培
地、培地補充物、培地部分群、緩衝液または細胞、あるいはそれらの組み合わせ
を含み得る。このような薬学的組成物または臨床的組成物、細胞培養試薬、栄養
培地、培地補充物、培地部分群、緩衝液または細胞は、水和されてもよいし、あ
るいは脱水されてもよいが、代表的には、本発明の方法によって生成される調製
物は脱水される。このような調製物は、本発明の方法に従って、滅菌され得るか
、または実質的に滅菌され得る。

【００８６】 第１の容器は、例えば、本発明の栄養培地、培地補充物、培地部分群または緩
衝液、あるいはそれらの任意の成分または部分群（例えば、上記の本発明の任意
の栄養培地、培地補充物、培地部分群または緩衝液）を含み得る。さらなる栄養
培地、緩衝液、抽出物、補充物、成分または部分群が、本発明のキット中のさら
なる容器に含まれ得る。このキットはまた、１つ以上のさらなる容器、１つ以上
の細胞（例えば、上記の細菌細胞、酵母細胞、植物細胞または動物細胞）を含み
得る。このような細胞は、凍結乾燥、乾燥、凍結または別の方法で保存され得る
か、あるいは本発明の方法（例えば、噴霧乾燥）によって処理され得る。加えて
、本発明のキットはさらに、例えば、必要に応じて１つ以上の二価カチオンと複
合体化されるＬ−グルタミンを含む、１つ以上のさらなる容器を含み得る（米国
特許第５、４７４、９３１号を参照のこと）。このキットはさらに、１つ以上の
さらなる容器を含み得、この容器は、乾燥粉末の薬学的組成物もしくは臨床的組
成物、細胞培養試薬、栄養培地、培地補充物、培地部分群および／または緩衝液
を再構成する際に使用されるべき溶媒を含む；このような溶媒は、水性（緩衝液
、生理食塩水、栄養培地溶液、栄養培地補充物溶液（血清（例えば、ウシ血清（
特に、ウシ胎仔血清および仔ウシ血清）またはヒト血清を含む））、またはそれ
らの組み合わせ）あるいは有機性であり得る。本発明の栄養培地、緩衝液、薬学
的組成物、抽出物、補充物、成分、部分群などを有する混合剤に適合性ではない
他の成分は、１つ以上のさらなる容器中に含まれて、不適合性の成分の混合を回
避し得る。このようなキットはまた、トランスフェクション試薬（例えば、脂質
またはカチオン性脂質）を含み得る。

【００８７】 所定のキットに含まれる容器の数および型は、調製されるべき薬学的組成物ま
たは臨床的組成物、培地、培地補充物、培地部分群または緩衝液の所望の生成物
あるいは型に依存して変更され得る。代表的に、このキットは、特定の薬学的組
成物または臨床的組成物、培地、培地補充物、培地部分群または緩衝液を作製す
るために必要な成分または補充物を含む別個の容器を含む。しかし、さらなる容
器が本発明のキットに含まれ得、その結果、異なる薬学的組成物または臨床的組
成物、培地、培地補充物、培地部分群または緩衝液が、異なる量の種々の成分、
補充物、部分群、緩衝液、溶媒などを混合することによって調製されて、異なる
薬学的組成物または臨床的組成物、培地、培地補充物、培地部分群または緩衝液
の処方物を作製し得る。

【００８８】 本明細書中に記載される方法および適用に対する他の適切な改変および適応は
自明であり、本発明の範囲またはその任意の実施態様から逸脱することなくなさ
れ得ることは、当業者に容易に明らかである。ここで、本発明は詳細に記載され
ているので、本発明は、以下の実施例を参照することによってより明確に理解さ
れる。以下の実施例は、例示の目的のみのために本明細書に含まれ、そして本発
明の限定を意図しない。

【００８９】 （実施例１：代表的な乾燥粉末培地（ＤＰＭ）の凝集） １．研究室用卓上流動床装置（ｂｅｎｃｈ ｔｏｐ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
ｆｌｕｉｄ ｂｅｄ ａｐｐａｒａｔｕｓ）（Ｓｔｒｅａ−１；Ｎｉｒｏ，Ｉｎ
ｃ．／Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ；Ｃｏｌｕｍｂｉａ，Ｍａｒｙｌａ
ｎｄ）を用いる；１００〜５００ｇのＤＰＭをチャンバ内に配置する。装置を配
置し、そしてレバーを使用してユニットを密封する ２．空気流を開始してＤＰＭを流動化（浮揚）させる。伝統的なＤＰＭは、比
較的微細な粒子サイズであるので、設定４〜６が必要である。微細ＤＰＭ粒子を
捕獲するために真空デバイスのスイッチを入れ、上部のフィルターを通過させる
。下部の篩目および上部のフィルターに関して、流動化した粉末がチャンバ内の
およそ中央にあることを確認する ３．まず、圧縮したエアラインにおけるプラッギングにより、次いで水源に接
続されるポンプを開始することによって、圧入（注入）デバイス（噴霧ユニット
）を開始する。この目標は、１分間あたり約６ｍｌの水を許容することである（
ＲＰＭおよび管の直径に基づく所定の任意の流速は、既知でなければならない）
。ＤＰＭの凝集を防止するために、あるいは、水を約１分間添加し、次いで約１
分間停止して、このチャンバで乾燥が生じることを可能にする ４．作動中にフィルターがＤＰＭでコートされ、その結果ブローバックが粉末
を移動させない場合、全てのフィルターが明らかに送風されるまでファンの速度
を設定２〜３へ落とす。次いで、作動するファンの速度を以前のレベルまで上昇
させる ５．約３５ｍｌの水を各５００ｇのＤＰＭに添加した場合に、凝集を完了する
。この容量は、ＤＰＭ処方物に依存して変化する。比較的大きな凝集顆粒の下方
流動により、チャンバ（底）において作業が終了に向っていることが理解される
。目に見えてより大きな粒子および微細塵の非存在は、このプロセスが完了した
ことを示す ６．凝集したＤＰＭを、５〜７分間、徹底的に乾燥させる ７．作動の終了において、フィルターを４回吹き飛ばす ８．ユニットを止め、水管を止め、そして凝集したＤＰＭを気密容器に回収す
る。

【００９０】 これらのアプローチは、プロセススケールまたは生成物スケールの流体床装置
を使用する場合に調整されるべきである。例えば、ＭＰ−１（Ｎｉｒｏ，Ｉｎｃ
．／Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ；Ｃｏｌｕｍｂｉａ，Ｍａｒｙｌａｎ
ｄ）装置を使用して、以下のプロトコルによって満足な結果を生じた。

【００９１】 １．ユニットを密封する（ガスケットを膨張させる） ２．予熱するためにファンを開始する ３．吸気温度が設定点と等しい時点でファンを停止する ４．ガスケットを収縮させ、材料を負荷し、ガスケットを膨張させる 工程５〜８は、１分以内に全て達成されるべきである： ５．バッチを開始する ６．ファンを開始し、そしてフィルタークリーニングのスイッチを入れる ７．ノズルの噴霧空気圧の％出力を設定する（真空についてノズルをチェック
する） ８．液体供給線を接続する ９．画面上でポンプを開始し、そしてポンプでのポンプを開始する １０．バッチ時間を初期化する １１．設定速度で全液体を噴霧する（２６ｇ／分）。２ｋｇの粉末につき約２
５０ｍｌの水を使用する １２．全液体が添加される時点でポンプを停止させ、そして画面上でポンプを
停止する １３．乾燥値に対して空気流を減弱する（例えば、１００から６０へ） １４．生成物が所望の温度（約４０℃）に到達した時点で、「初期設定」画面
に行き、そして本発明の「バッチ時間」よりも２〜３分間長い「バッチ期間」を
設定する １５．バッチを停止する １６．ガスケットを収縮させる。

【００９２】 （代表的な器具の設定（ベンチスケール、プロセススケールおよび生成スケー
ル装置について））： 乾燥温度：６０〜６５℃ 排気温度：約３３℃ 流出圧力：５ｂａｒ 噴霧圧力：１．５〜２．０ｂａｒ 空気流：６０〜１２０ＣＭＨ ブローバックドウェル：噴霧後は１、噴霧中は２ ファンの能力：作動の開始時は５、凝集が明らかになった後は６ マグナへリックス（ｍａｇｎａｈｅｌｉｃｓ）：フィルター抵抗１５０〜２５
０、多孔制御プレートの抵抗約５０、空気容量：５０未満。

【００９３】 （実施例２：ＤＰＭの構成要素としての炭酸水素ナトリウムの添加） 炭酸水素ナトリウムは、代表的に、ボールミルまたは凍結乾燥による製造の間
、ＤＰＭに添加されない。これは、乾燥した培地の貯蔵の際に遭遇される潜在的
な気体発生（ｏｆｆ−ｇａｓｉｎｇ）および緩衝能の複雑化に起因する。従って
、この標準的な生成プロセスは、この培地の再構成に際して、炭酸水素ナトリウ
ムの添加、およびｐＨの調整を必要とする。しかし、本発明の方法を用いると、
これらのさらなる工程を、製造の間に炭酸水素ナトリウム（または任意の緩衝塩
）をこの粉末培地に直接的に添加することによって除去し得る。

【００９４】 ＤＰＭ内に炭酸水素ナトリウム（または任意の緩衝塩）を含ませる２つの方法
が存在する：（ａ）注入デバイスを介して、および（ｂ）ＤＰＭの一部として。

【００９５】 （ａ）注入デバイス 代表的な哺乳動物細胞培養培地に添加することが一般的に必要な炭酸水素ナト
リウムの可溶性およびその量のために、相当に大容量の液体が、粉末へ注入され
る必要がある（上述した３５ｍｌの水よりも有意に多い）。これは今なお起こり
得ることであり、そして実際、例えば血清を用いる場合と同様に、ＤＰＭに添加
されるために比較的大容量の液体を必要とする別の成分を添加する場合に、好ま
しくあり得る。この場合において、連続的に液体を添加し、ＤＰＭがデバイス内
に凝集されるようにならないことを保証するために多数回、乾燥などをさせるこ
とに注意をしなければならない。約１分間、１分あたり６ｍｌを使用し、次いで
さらに２分間乾燥させることが概して適切である。

【００９６】 添加する液体の量を、以下のように決定する：水中で炭酸水素ナトリウムを７
５ｇ／Ｌで調製する。例：凝集されるべきチャンバ中で２５０ｇのＤＰＭ。１０
．０ｇのＤＰＭが１Ｌの１×液体培地に必要であると仮定する。従って、２５０
ｇは、２５Ｌの１×液体培地に相当する。液体の各Ｌについて、（例えば）２ｇ
の炭酸水素ナトリウムの必要性を仮定する。これは、５０ｇの炭酸水素ナトリウ
ムが必要であることを意味する。ここで、炭酸水疎ナトリウムは７５ｇ／Ｌであ
るので、０．６７Ｌの炭酸水素ナトリウムを、２５０ｇのＤＰＭに添加しなけれ
ばならない。

【００９７】 炭酸水素ナトリウム溶液は、サイクル間のより長い乾燥時間を必要とすること
を除いて、上記の「代表的ＤＰＭの凝集」のためのプロセスと同様に添加される
。なぜなら、炭酸水素ナトリウム溶液のｐＨは、培地成分を分解し得る約８．０
０であるからである。非常に迅速であり、サイクル間で十分な時間徹底的に炭酸
水素塩粉末を乾燥させることなく、炭酸水素ナトリウム溶液の添加によってこの
粉末が決して「浸漬」されないことが、重要である。また、最終的な水分含有量
を可能な限り低く有することが重要であるので、より長い流体乾燥時間が必要で
ある。なぜなら、水分は、粉末がフォイルポケットにある場合に緩衝能および「
枕状（ｐｉｌｌｏｗ）」処方物の喪失を生じる二酸化炭素ガスの遊離を生じるか
らである。

【００９８】 （ｂ）ＤＰＭの一部として 炭酸水素ナトリウムを、流体床処理の前に他の培地成分について同様の様式で
ＤＰＭへ粉砕する。しかし、この粉砕プロセスにおいては、炭酸水素塩を最終成
分として添加すべきである。他の培地成分は全て従来どおり粉砕すべきであり、
次いで、この粉砕を停止し、そして炭酸水素塩を最後に添加し、適切なサイズの
粒子に達するまでさらに粉砕する。全ての粉砕後処理（容器への配置など）は、
操作的に可能な程度に低い湿度制御環境設定（約２０〜４０％）においてなされ
ることが、重要である。次いで、流体床処理を、粉砕後可能な限り速やかに実施
するべきである（同日に処理しない場合は、ＤＰＭを二重包装し、そして密封し
た容器内に水分吸収剤と共に配置しなければならない）。

【００９９】 流体床プロセス自体を、水注入（約６ｍｌ／分）後の乾燥時間がさらに延長さ
れるべき（１分間の水の注入および２分間の乾燥サイクル）であることを除いて
、上記に与えられた例と同様に（５００ｇのＤＰＭあたり３５ｍｌの使用を伴っ
て）行う。ＤＰＭの色は、フェノールレッドの存在に起因して深赤色−薄紫色で
あるが、淡橙色であり得ることに留意する。ＤＰＭは本質的に水分を含有しない
ので、これは、分解条件を表さず、そして流体床処理が必須であることの理由で
ある。

【０１００】 （実施例３：緩衝塩（例えば、炭酸水素ナトリウム）を含み、そして処方され
、その結果、再構成された（１×）培地のｐＨは使用者が努力することなく自動
的に所望のｐＨである、ＤＰＭ） 上記のように、全ての市販されている哺乳動物細胞培養物の粉末培地は、１×
液体を調製する場合に、１つ以上の緩衝塩（例えば、炭酸水素ナトリウム）の添
加、次いで、ｐＨの調整を必要とする。その結果、この溶液は、適切なｐＨであ
る。しかし、本発明の方法を使用して、炭酸水素ナトリウムの添加（上記の実施
例２のように）およびｐＨ調整の必要性の両方を除去し得る。本発明のこの局面
において、流体床技術を使用して、１つ以上の緩衝塩を含む乾燥粉末培地に酸ま
たは塩基（その必要性に依存する）を導入する。本発明のこの局面に従って、任
意の緩衝塩またはそれらの組み合わせ、および任意の酸または塩基を、最終的な
再構成細胞培養培地における所望のｐＨおよび緩衝能に依存して、使用し得る。

【０１０１】 炭酸水素ナトリウムを粉末としてＤＰＭに直接添加する場合、末端の使用者は
、すでに炭酸水素塩（上記を参照のこと）を含み、そして適切なｐＨである溶液
を得るために、単に水を添加し、そして混合することが可能である。まず、どの
程度のｐＨ調整を必要とするかを決定することが必要である。（１）ビーカー中
に１Ｌの水を入れる。ＤＰＭをその液体に添加し、そして混合する（１Ｌあたり
の添加量は、その粉末についての特異性によって与えられる。例えば、１０ｇ／
Ｌ、１３ｇ／Ｌ）。この場合において、炭酸水素ナトリウムの重量もまた、１リ
ットルあたりにどのくらい添加するかを決定する際に考慮し得る。（２）粉末を
溶解した後、５Ｎ ＨＣｌを添加して、この溶液を所望のｐＨに調整する。その
量を記録する。（３）この数を１Ｎ ＨＣｌの量に変換する。凝集される全粉末
の調節のためにどの程度１Ｎ ＨＣｌの量が必要であるか算出する（例：１Ｌの
１×培地Ａを、未調整のｐＨ７．９からｐＨ７．２へ調整するためには、５ｍｌ
の１Ｎ ＨＣｌが必要である）。この１Ｌの１×培地は、例えば、１３．０ｇの
ＤＰＭを表す。従って、１３．０ｇのＤＰＭの各々について、５ｍｌの１Ｎ Ｈ
Ｃｌが必要である。本発明者らが２５０ｇのＤＰＭのｐＨを調整することを望む
場合、２５０÷１３．０＝１９．２×５ｍｌすなわち９６ｍｌの１Ｎ ＨＣｌが
、その粉末を自動的にｐＨ調整するために、それに添加される必要がある。

【０１０２】 ここで、この１Ｎ ＨＣｌは、ＤＰＭに添加されなければならない。そのため
の最良の方法は、注入デバイスを使用し、水に代えて１Ｎ ＨＣｌを添加するこ
とである。一般に、このプロトコルは、以下の例外はあるが上記と類似する：（
１）１Ｎ ＨＣｌは、炭酸水素ナトリウムを含む培地にゆっくりと添加されなけ
ればならない。あまりにもすばやく添加されると、二酸化炭素を追い払って最適
以下の緩衝能を生じ得る。一般に必要とされる１Ｎ ＨＣｌの容量のために、数
回の１分オン、２分オフのサイクルが必要である。乾燥粉末状態は、各サイクル
の終りに得られなければならない、その結果、動的な系は、ＤＰＭが流体プロセ
スの特徴を有するが現実的には乾燥した粉末である場合に、存在する（驚くこと
に、この系にある頻繁なエバポレーションに起因して、粉末が全ての時間で本質
的に乾燥したままであるにもかかわらず、大部分の色は、ＨＣｌを粉末に添加す
るので、深赤紫から淡黄−橙色へ変化する）。ＨＣｌの総量は、本質的に中性ｐ
Ｈを生じるように計算されるので、この粉末は、流体床が適切に調整される限り
、決して実際に「酸性」条件に曝露されない（上記を参照のこと；操作の間のチ
ャンバ内の粉末粒子の配置）。この粉末の全てがこの系（すなわち、連続的に上
昇し、凝集し、そして沈降する）を通じて移動し、そしてこのチャンバ内に不感
帯を有しないことを確かめることが、重要である。

【０１０３】 一旦、この粉末を作動後に収集すると、それを水に添加し得、それが適切な「
乾燥」パッケージングおよび位置に保たれる限り何時でも再構成し得る。ｐＨの
調整は必要ない。従って、本発明は、自動的にｐＨを調整する乾燥粉末の培地を
提供する。ここで、この乾燥粉末の培地を再構成することによって作製される液
体培地のｐＨは、ｐＨの調整を必要としない。

【０１０４】 （実施例４：ＤＰＭ自体内への血清、アルブミン、Ｈｙ−Ｓｏｙなどのような
高分子量補充物の包含） これまでは、血清を含む乾燥粉末培地は商業的に入手可能ではなかった。本発
明の方法（流体床および噴霧乾燥技術を介する）を用いることにより、本発明者
らは、機能性（細胞培養）が維持される様式で粉末に血清を添加することに成功
した。

【０１０５】 流体床装置の注入デバイスは、血清および濃縮アルブミンで霧を形成し得る。
本発明者らは、ＤＰＭに添加され、この様式で乾燥された血清が機能するか否か
を調べることを試みた。

【０１０６】 血清を添加する手順：（１）塊状化するべき標準的ＤＰＭの重量を決定する。
（２）このことから、特定の粉末についてのｇ／Ｌに基づいて、そのｇの粉末が
作製する１×培地の容積を算出する。（３）所定の割合レベルの補充物で必要と
される血清の容積を算出する（例えば、１０ｇ／Ｌで使用される１００ｇの粉末
は、１０Ｌ等量の粉末を生じる）。５％血清補充において、５００ｍｌの血清が
、注入デバイスにより添加されることが要求される。

【０１０７】 血清添加のためのプロトコル：血清およびアルブミンは非常に粘稠性である、
ノズルスプレーパターンでは、小滴サイズおよびパターンをチェックしなければ
ならない。粉末に添加される溶液中においてサンプルチューブを用いて、カード
ボードもしくは他の背景幕（ｂａｃｋｄｒｏｐ）に対して試験噴霧する。均質性
および小さな小滴サイズについてチェックする。「霧」にならなければ、０．５
バールだけ噴霧圧を増大させ、再び試験する。十分な圧力により微細な霧状パタ
ーンを生じるまで、これを行う。

【０１０８】 細胞培養適用における使用のために、１×培地の１Ｌあたり使用される血清−
ＤＰＭの重量／ｍｌを知ることが必要である。これを行うために、乾燥の間に血
清を保持してバイアルまたは試験管の重量を正確に量る。一定（既知）量の血清
を各バイアルに入れる。次いで、バイアルをＳｐｅｅｄ Ｖａｃまたは凍結乾燥
器に入れる。乾燥するまで水を取り除く。次いで、凍結乾燥した血清を含有する
バイアルの重量を再び量る。血清の重量を計算し、そして本来の容積の１ｍｌあ
たりとして表す。次いで、１Ｌあたりで使用するための血清で塊状化したＤＰＭ
の重量は、所定のレベルでの標準的なＤＰＭ「使用」重量＋血清重量である。

【０１０９】 例えば、培地Ａ（ＤＰＭ）が１０ｇ／ｌで使用されると仮定すると、血清補充
物は５％ ｖ／ｖであるべきである。これは、標準的なＤＰＭの重量に加えて、
血清重量が培地１Ｌあたりに添加される５％＝５０ｍｌに等しいことを意味する
。血清粉末が０．０６ｇ／ｍｌであると仮定すると、粉末化血清＝５０×０．０
６ｇ／Ｌ＝３ｇである。従って、１Ｌの水に添加される血清含有ＤＰＭの重量は
、１Ｌあたり、血清粉末の重量（３ｇ）＋標準的ＤＰＭの重量（１０ｇ）＝１３
ｇ／Ｌである。

【０１１０】 （実施例５：ＤＰＭを製造する場合の製粉技術（ミクロンサイズの粒子にまで
構成成分を砕く高エネルギー投入システム）の低減または排除） 上記のように、乾燥粉末化培地は、代表的には、製粉プロセス（これは、骨が
折れることであり、かつ多くの問題がある）によって製造される。本発明の方法
は、流体床技術を使用する乾燥粉末化培地の生成を提供し、この方法により、こ
れらの労働および技術的な制約を克服する。

【０１１１】 （Ａ．外部デバイスでの最初のブレンド、次なる流体床処理） 通常に製粉されたＤＰＭを、炭酸水素ナトリウム（供給業者から直接受け取っ
たとき、さらなるボールミルは必要ない）とブレンドする。［２ｇ／Ｌ等量の炭
酸水素ナトリウムを含むＲＰＭＩ １６４０］。この混合物を、２０分間ブレン
ドする。次いで、この粉末を流体床チャンバー内に配置し、そして炭酸水素塩含
有培地または自動ｐＨ制御つきの炭酸水素塩含有培地を流体化させる。

【０１１２】 （Ｂ．流体床チャンバー中への直接ブレンド、次なる塊状化） 炭酸水素ナトリウムを、製粉ＤＰＭとともに直接チャンバーに入れ、そして短
時間ブレンド（混合）して、次いで塊状化する。これは、別々のユニットでのブ
レンドを排除する。

【０１１３】 （Ｃ．ボールミルプロセスの完全排除） ＤＰＭ化学製品の全てを流体床チャンバーに直接添加し、そして予め混合し、
次いで、塊状化するか、むしろ、粗粒子化剤（ｃｏａｒｓｅｒ）、「固着剤（ｓ
ｔｉｃｋｅｒ）」などの化学製品のいくつかを、回転式グラインダーにおいて短
時間粉砕処理し、次いで、ブレンドおよび最終的な塊状化のために流体床に入れ
る。

【０１１４】 （実施例６：この同じＤＰＭ内に上記の特性の全てを有するための方法） 本発明者らは、「規格品」の炭酸水素ナトリウムの添加と、製粉ＤＰＭおよび
自動ｐＨ制御とを組み合わせた。本発明者らはまた、血清とＤＰＭとを組み合わ
せた。

【０１１５】 血清と、自動ｐＨ制御つきの炭酸水素ナトリウム含有ＤＰＭとを組み合わせる
ために、１つのプロトコルは、以下である： １．炭酸水素ナトリウム（粉末、供給業者から）をＤＰＭ（製粉されたか、ま
たは粉砕されている）に添加する ２．成分をブレンドする（外部ユニットもしくは流体床のいずれかで混合する
） ３．別々の容器中で、１ＬのＤＰＭ（炭酸水素塩含有）を水（１×）で再構成
し、溶液のｐＨを７．５に合わせるために必要な１Ｎ ＨＣｌまたは１Ｎ Ｎａ
ＯＨの量を決定する。リットルベースでは、塊状化される粉末の質量（従ってＬ
の当量）を知ることにより、上記で算出した量で塊状化する総粉末についての１
Ｎ ＨＣｌまたは１Ｎ ＮａＯＨの量を計算する。流体床デバイス（注入ノズル
）を介してこの量を添加する（ＤＰＭは「流体」ではないが、粉末が中性にでき
る限り近いことが重要である。しかし血清を添加するときに炭酸水素ナトリウム
が遊離するような酸性ｐＨではない。なぜなら、このプロセスには水分が関与し
ているからである。ｐＨ７．６以上では、炭酸水素ナトリウムの濃縮溶液はＣＯ ₂ ガスを放出しないが、低ｐＨでは放出する） ４．塊状化するべき補充物割合およびグラム（ｇ）に基づいて、血清を添加（
塊状化の拡大） ５．上記（３）からの同じ１Ｌの１×液体を使用して、ｐＨを所望のｐＨ（例
えば、７．２）に調整するために必要な１Ｎ ＨＣｌまたは１Ｎ ＮａＯＨの量
を決定する。この情報を用いて、血清ととも塊状化させた粉末の重量（ｇ／Ｌの
詳細は知っているとして）について使用される量を計算する。この量を流体デバ
イス（注入ノズル）により添加する ６．γ線照射を用いて粉末化培地を滅菌する。

【０１１６】 同様の方法において、血清含有ＤＰＭを、特定の量のＤＰＭと特定の量の粉末
化血清（例えば、以下の実施例８において記載される噴霧乾燥により調製された
）とを合わせることにより生成し得、次いで、混合物を塊状化する。例えば、１
０％粉末化ＦＢＳ含有培地の調製のために、５５．５ｇの粉末化ＦＢＳを５００
ｇの粉末化培養培地に添加し得、そしてこの粉末を攪拌により十分に混合する。
次いで、この混合物を上記のように水塊状化し、そして再構成の際に、自動ｐＨ
調整されうる１０％ＦＢＳ含有培養培地を得る。

【０１１７】 （実施例７：流体床加工による１００％血清粉末の生成（噴霧乾燥をシミュレ
ートするため）） （方法論） １）本発明者らは、卓上型実験用流体床装置（Ｓｔｒｅａ−１）を使用した。
粉末化血清の生成については、チャンバー中に何も入れなかった。レバーを用い
てこのユニットを密閉した ２）血清を注入デバイス（噴霧ユニット）により添加した。血清をチャンバー
に添加したとき、水が蒸発し、そして血清がチャンバー内で迅速に粉末形成する
ほど十分に乾燥するように空気流を十分に増大させ、そして血清流を十分遅くし
た。チャンバー内にどこにも水分または流体コーティングは存在しなかった ３）ポンプ速度を、チャンバーへ約１ｍｌ／分になるように設定した ４）空気流の速度を約８〜９の設定に設定した ５）断続的にフィルターを洗浄するために、ファンスピードを約２〜３に減弱
させた。これは、５〜１０分毎にルーチン的に行った。（８〜９の空気流設定は
非常に高いために、フィルターは粉末を吹き飛ばさず、それら自体がきれいにな
らない） ６）１回のフィルターの吹き飛ばしの後に、ファン速度を前のレベルまで増大
させ、そしてポンプのスイッチを入れた。（一旦これらのパラメーターを設定し
たら、このポンプを、示されたようにフィルターをクリーニングするとき以外は
連続運転した） ７）血清液体の全てがアグロメレーター（ａｇｇｌｏｍｅｒａｔｏｒ）に添加
された後、最後の乾燥を５分にわたり行った ８）次いで、フィルターを吹き飛ばして、可能な限り多くの粉末を採取し、そ
して機器の電源を切り、そして生成物を取り出した。粉末化血清を密閉容器（ａ
ｉｒ−ｔｉｇｈｔ ｃｏｎｔａｉｎｅｒ）に入れ、そし遮光した。

【０１１８】 （代表的な機器設定） 乾燥温度：６０〜６５℃ 出口空気温度：約３３℃ 吹き出し圧：５バール 噴霧圧：２．０〜２．５バール ブローバックドエル（ｂｌｏｗ ｂａｃｋ ｄｗｅｌｌ）：２（噴霧と噴霧と
の間） ファンの能力：運転の間中８〜９ マグナヘリックス（ｍａｇｎａｈｅｌｉｃｓ）：フィルター抵抗（ｒｅｓｉｓ
ｔａｎｃｅ）１５０〜２５０、穿孔制御プレートの抵抗約５０、空気容積５０未
満。

【０１１９】 ＦＢＳの塊状化がタンパク質構造または分布に影響を及ぼすか否かを決定する
ために、塊状化したＦＢＳおよび液体ＦＢＳのサンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥで泳
動し、タンパク質について染色し、デンシトメトリーでスキャンした。図１に示
されるように、本発明の方法に従って調製した塊状化したＦＢＳ（図１Ａ）は、
液体ＦＢＳ（図１Ｂ）で観察されたプロファイルとほぼ同じタンパク質プロファ
イルを示した。これらの結果は、本発明の方法により乾燥粉末化されたＦＢＳの
制御された生成は、血清の主要成分の構造または分布には実質的に影響を及ぼさ
ないことを示す。

【０１２０】 ＦＢＳの塊状化が細胞増殖および継代を支持する能力に影響を及ぼすか否かを
決定するために、ＳＰ２／０細胞を、２％塊状化（「乾燥」）ＦＢＳまたは２％
液体ＦＢＳのいずれかを含有するＤＭＥＭにプレートし、そして増殖速度および
継代回復を試験した。図２Ａに示されるように、塊状化ＦＢＳを含有する培地に
プレートした細胞は、液体ＦＢＳを含有する培地にプレートした細胞と同様の増
殖速度論を示した。同様に、塊状化ＦＢＳを含有する培地中の細胞は、継代から
回復し、液体ＦＢＳを含有する培地中の細胞と実際的に同じ増殖速度であった（
図２Ｂ）。まとめると、これらの結果は、培養細胞の増殖および継代を支持する
において、本発明の塊状化ＦＢＳが液体ＦＢＳとほぼ等価に機能することを示す
。

【０１２１】 （実施例８：噴霧乾燥による１００％血清粉末の生成） 流体床加工の代替として、噴霧乾燥技術による乾燥粉末化血清の生成実行可能
性（ｆｅａｓｉｂｉｌｉｔｙ）を試験した。３フィートの直径の実験用噴霧乾燥
機（Ｍｏｂｉｌｅ Ｍｉｎｏｒ Ｓｐｒａｙ Ｄｒｙｅｒ；ＮＩＲＯ，Ｃｏｌｕ
ｍｂｉａ，Ｍａｒｙｌａｎｄ）を使用して、粉末化血清を調製した。液体ＦＢＳ
を、噴霧乾燥機に吸引し、そしてエアディスペンサーの中央に配置されたＳｃｈ
ｌｉｃｋ ９４０ノズルを通して霧状にした。そして乾燥空気をこの装置の上部
のエアディスペンサーを通して噴霧器に導入した。噴霧乾燥を以下の条件で行っ
た：入口空気温度＝２００℃；出口空気温度＝７０℃、ノズルの噴霧空気圧＝２
バール；空気流＝８０．０ｋｇ／時間；噴霧速度＝６５ｇ／分。これらの方法の
開発の間に、６０℃という最初の出口空気温度を使用した；しかしこの温度では
低すぎることが分かり、そして噴霧速度は、約７０℃の出口温度を達成するため
のレベルに調製しなおし、これが最適であることが分かった。噴霧乾燥の後に、
粉末化血清を、装置のサイクロンで収集し、そして処理空気を、装置内を再循環
させる前に、排気フィルターを通して濾過した。

【０１２２】 製造後、粉末化血清を、同じ供給ロット由来の液体ＦＢＳと比較して、その物
理学的特性に関して特徴づけた。製造ロット（サンプル「Ａ」および「Ｂ」）の
異なる段階から採取したサンプルを、エンドトキシンを含まない蒸留水（Ｌｉｆ
ｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．）中に６０．４４ｇ／Ｌの濃度で再構
成し、そしてエンドトキシンのレベルについてはＬｉｍｕｌｕｓ Ａｍｏｅｂｏ
ｃｙｔｅ Ｌｙｓａｔｅ試験（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．
）を使用して試験し、ヘモグロビンレベルについては（５２５ｎｍでの吸光度を
分光光度計で測定することにより）、そしてＵＶ／Ｖｉｓ分光光度計により試験
した。結果を表１、図３Ａおよび３Ｂに示す。

【０１２３】

【表３】 表１に示されるように、粉末化ＦＢＳは、粉末化ＦＢＳの生成についての供給
源物質として働く液体ＦＢＳのエンドトキシンレベルおよびヘモグロビンレベル
と同様のレベルを示した。さらに、生成プロセスの異なる段階から採取したサン
プルは、ほぼ同一のエンドトキシンレベルおよびヘモグロビンレベルを示した。
これは、本発明の方法が製品ロットにわたりほぼ均質な、物理学的に一貫性を有
する材料の生成を生じることを示す。粉末化ＦＢＳおよび液体ＦＢＳのサンプル
がＵＶ／可視光分光光度計により試験された場合（図３）、粉末化ＦＢＳについ
て観察された微量物質（ｔｒａｃｅ）（図３Ａ）は、供給源液体ＦＢＳ（図３Ｂ
）について得られたものとは区別不可能であった。まとめると、これらの結果は
、本発明の噴霧乾燥法により調製された血清粉末が、この粉末が調製された液体
血清の物理学的特性とほぼ同じ物理学的特性を有することを示す。上記の実施例
７の物理学的特性と合わせて考えると（例えば、図１を参照のこと）、これらの
結果は、本発明により提供される方法が供給源液体血清の物理学的特性とは変わ
らない物理学的特性を有する粉末化血清の生成を生じることを実証する。予測外
なことに、実施例１８に示されるように、血清中のエンドトキシンレベルは噴霧
乾燥工程により減弱されることが見出された。ここでこのような減弱が検出され
なかったことは、サンプル中に存在するエンドトキシンの低レベルおよび／また
はアッセイの感受性が原因であるかもしれない。

【０１２４】 （実施例９：自動的にｐＨ調整した粉末化培養培地の生成） 炭酸水素ナトリウムが粉末化培地に決して含められない１つの理由は、たとえ
空気中にある水分であっても、任意の水分が、パウチ内に酸性状況を生じ得るこ
とであり、これはＣＯ₂ガスの遊離を生じる。このパウチは膨らみ、そして「枕
」とよばれる状態を生じる。流体床加工により、装置内の湿度は、プロセスの終
了前に、本質的に無視できるレベルまで減弱される。本発明者らは、炭酸水素ナ
トリウム含有ＲＰＭＩ １６４０の粉末化培地を作製したが、「枕」形成の証拠
は認められなかった。

【０１２５】 ｐＨ調整粉末化培地を作製するために、ｐＨ調整化学薬品（通常はＨＣｌまた
はＮａＯＨ）を粉末に添加して、水に添加する際に、ｐＨを約７．０〜７．４に
することが必要である。一旦炭酸水素ナトリウムが粉末に添加されると、多くの
粉末化培地は中性の塩基性側にある水で再構成され、そしてＨＣｌ添加が必要で
ある。ＨＣｌを炭酸水素ナトリウム含有培地に添加することは、問題があると予
測される。しかし、添加された液体（この場合は５Ｎ ＨＣｌ）は、流体床装置
内部で湿らせた状態もしくは「液体」状態を生じないので、炭酸水素ナトリウム
はＣＯ₂ガスを発生せず、その緩衝化能は十分に残っている。このことを、ｐＨ
滴定実験により本研究において試験した。２つの別個の実験において（図４Ａお
よび４Ｂ）、等量の酸は、炭酸水素ナトリウムが再構成の時点で液体に添加され
た場合、塊状化培地および自動ｐＨ調整塊状化培地のｐＨを、標準的な培地のｐ
Ｈと同じ量だけ低減させることが見出された。これらの結果は、塊状化に続くｐ
Ｈ調整および塊状化プロセスの間のｐＨ調整を伴う塊状化の両方が等しく十分に
機能して、有意な緩衝化能を有する粉末化培養培地を生成することを示す。

【０１２６】 （実施例１０：培養培地の溶解速度に対する塊状化の効果） 培養培地の溶解速度に対するその培地の塊状化の効果を試験するために、Ｏｐ
ｔｉ−ＭＥＭＩ^TMまたはＤＭＥＭのサンプルを水またはＦＢＳで塊状化させた（
Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉについては２％のみ；ＤＭＥＭについては、２％または１
０％）。塊状化した培地の水での再構成の際に、その塊状化Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ
Ｉの時間溶解は、標準的な粉末化Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉの溶解よりはるかに迅速
に生じた（図５Ａ）；結果は、水塊状化Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ ＩおよびＦＢＳ塊状
化Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉについて同一であった。しかし、興味深いことに、水塊
状化ＤＭＥＭは、標準的な粉末化ＤＭＥＭよりはるかに迅速に水に溶解したが、
ＦＢＳ塊状化ＤＭＥＭはそうではなかった（図５Ｂ）。

【０１２７】 塊状化粉末化培地の開放構造（ｏｐｅｎ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）（伝統的な粉
末化培地とは対照的に）に起因して、毛管現象により水が粉末粒子の全てに非常
に接近する。これは、粉末「ボール」の出現を妨げる。この粉末ボールは、大部
分の標準的な粉末化培地の再構成の際に観察される厄介な問題であり、これによ
り溶解時間が長くなる。より迅速な溶解に加え、塊状化培地は、粉塵化（ｄｕｓ
ｔｉｎｇ）の減弱もまた実証した。これらの結果は、水塊状化培養培地およびい
くつかのＦＢＳ塊状化培養培地が、伝統的な粉末化培養培地よりはるかに迅速に
溶解し、かつあまり粉塵化しないことを示す。

【０１２８】 （実施例１１：再構成された塊状化培養培地における細胞増殖および継代培養
） 培養培地の多くの使用には、高分子量タンパク質（例えば、血清またはアルブ
ミン）の添加が必要である。これらの分子は、溶液の形態であり得、アルブミン
の場合には粉末でさえあり得る。しかし、粉末化培地を確実に均質性にするため
に、これらのタンパク質は、通常、粉末としてはではなく、大量の粉末化培地を
液体培地へと再構成した後の液体として、添加される。これは、いくらか不便で
ある。なぜなら、例えば、血清は経時的に能力を維持するために冷凍庫中で保存
しなければならないからである。このことは、血清を無菌的に培地に添加しなけ
ればならずこのことにより夾雑の機会が増大するために、費用および不便さが加
わる。血清を添加した後に濾過が行われる場合、別の加工工程が必要とされる。
従って、粉末化培地と一体化した一部として血清を提供しうることは有利である
。

【０１２９】 従って、培養培地を水で塊状化するか、または種々の濃度のＦＢＳで塊状化し
た。ＦＢＳを、上記に概説されるように、高蒸発率で空気懸濁した乾燥粉末化培
地に注入することにより粉末化培地に添加した。血清補充のレベルはＯｐｔｉ−
ＭＥＭ Ｉ培地中２％、およびＤＭＥＭ中２％または１０％であった。次いで、
これらの培地における種々の細胞株の増殖および継代の結果を評価した。

【０１３０】 図６に示されるように、ＳＰ２／０細胞は、水またはＦＢＳのいずれかで塊状
化したＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ中で増殖させた場合（図６Ａ）、従来の培養条件下
（液体血清を水で再構成した粉末化培地に添加した）で増殖させた細胞と比較し
て、同様な増殖速度を示した。２％ＦＢＳを補充した水塊状化ＤＭＥＭおよびＦ
ＢＳ塊状化ＤＭＥＭ中で培養したＳＰ２／０細胞で、同様の結果が観察され（図
６Ｂ）、そして１０％ＦＢＳを補充した水塊状化ＤＭＥＭおよびＦＢＳ塊状化Ｄ
ＭＥＭ中で培養したＳＰ２／０細胞（図７Ａ）、ＡＥ−１細胞（図７Ｂ）および
Ｌ５．１細胞（図７Ｃ）でも観察された。さらに、ＳＰ２／０細胞は、水塊状化
Ｏｐｔｉ−ＭＥＭおよび２％ＦＢＳを補充したＤＭＥＭ中で培養した場合（それ
ぞれ、図８Ａおよび８Ｂ）、１０％ＦＢＳを補充した水塊状化ＤＭＥＭおよびＦ
ＢＳ塊状化ＤＭＥＭ中で培養したＳＰ２／０細胞、ＡＥ−１細胞およびＬ５．１
細胞で観察されたもの（それぞれ、図９Ａ、９Ｂ、および９Ｃ）ならびに５％Ｆ
ＢＳを補充した水塊状化ＤＭＥＭ中で培養したＳＰ２／０細胞（図１０）と、ほ
ぼ同様な継代からの回復率を示した。さらに、ＳＰ２／０細胞は、５％ＦＢＳを
補充した標準的液体ＤＭＥＭにおいて示されたように、大きなバッチで生成され
た水塊状化培地および炭酸水素ナトリウムを含有する自動的にｐＨ調整する粉末
化ＤＭＥＭにおいて同一な継代特性を示した。

【０１３１】 まとめて、これらの結果は、培養培地補充物（例えば、動物血清（例えば、Ｆ
ＢＳ））が培養培地へ直接塊状化され得、そしてこのようにして塊状化の間の培
養培地の補充物が、種々の培養細胞の増殖および継代の最適な支持を提供する培
養培地を生成することを示す。さらに、これらの結果は、炭酸水素ナトリウムを
含む、本発明の自動的にｐＨを調整する培地を含む本発明の培養培地粉末が、大
きなバッチで首尾よく生成され得ることを示す。

【０１３２】 （実施例１２：噴霧乾燥した血清粉末を補充した培養培地中での細胞増殖） 実施例７に示される実験に付随するものとして、ＡＥ−１細胞およびＳＰ２／
０細胞を、実施例８において記載されるように調製した２％もしくは１０％のい
ずれかの噴霧乾燥したＦＢＳを含むか、または２％もしくは１０％の液状ＦＢＳ
を含むＤＭＥＭにプレートし、そして細胞の増殖速度および継代回収を試験した
。細胞を、三連の２５ｃｍ²フラスコに、１０ｍｌの培地中１×１０⁵細胞／ｍｌ
の密度で接種した。生存細胞密度を３〜７日目に決定し、そして各細胞株を２回
試験した。結果を図１１〜１３に示す。

【０１３３】 図１１に示されるように、粉末化ＦＢＳを含む培地中で培養したＡＥ−１細胞
は、標準的な液状ＦＢＳを含む培地中で培養された細胞に対して類似の増殖速度
論を示した。予測されるように、これらの細胞は、２％ＦＢＳを含む培地中にお
いてよりも、１０％ＦＢＳを含む培養培地中において、より高い密度にまでのよ
り迅速な増殖を示し、そして約４日でピーク増殖を示した。同様の速度論が、２
つの別々の実験について観察され（図１１Ａおよび１１Ｂ）、このことは、これ
らの結果が再現可能であることを示した。類似の結果が、２つの実験（ここで、
ＳＰ２／０細胞の増殖速度は、粉末化ＦＢＳまたは液状ＦＢＳを含む培地中で測
定された）（図１２Ａおよび１２Ｂ）で得られた。さらに、５％の粉末化ＦＢＳ
を含む培地中で培養されたＡＥ−１細胞は、液状ＦＢＳを含む培地中の細胞と同
じ増殖速度で継代から回収された（図１３）。

【０１３４】 これらの結果は、本発明の噴霧乾燥方法によって調製された粉末化ＦＢＳが、
培養細胞の増殖および継代を支持する際に、液状ＦＢＳとほぼ等価に機能するこ
とを示す。実施例７および８とともに、これらの結果は、本発明の方法が、流動
床技術または噴霧乾燥技術によって、液状ＦＢＳとほぼ同一の物理学的特徴およ
び機能特徴を示す粉末化ＦＢＳを生成するために使用され得ることを示す。

【０１３５】 （実施例１３：集塊した培地の機能に対する照射の効果） 近年、バイオプロダクションのため、特にバイオテクノロジー産業において使
用される培地および培地成分（補充物を含む）の生物学的純度についての関心が
上昇している。γ照射は、代表的には熱または毒性ガスへの曝露による滅菌に耐
性ではない特定の液体および粉末に対して良好に作用することが公知である滅菌
手順である。従って、水またはＦＢＳで集塊した培養培地のサンプルを、２５ｋ
Ｇｙでのコバルト源を用いて数日間までγ照射し、そして種々の細胞型の増殖速
度を試験した。

【０１３６】 １セットの実験において、ＳＰ２／０細胞を、種々の培地に１×１０⁵細胞／
ｍｌで接種し、そして３７℃にて培養した。種々の間隔で、サンプルを滅菌的に
得て、そして細胞カウントをＣｏｕｌｔｅｒカウンティングによって決定し、そ
して生存率をトリパンブルー除外法によって決定した。培地を、十分な粉末化培
地を溶解し、１Ｌの水中の１×溶液を作製し、攪拌し、そして０．２２μｍフィ
ルターを通して濾過することによって調製した。結果を、図１４中のグラフに示
す。グラフ上で「ｐｗｄｒＦＢＳ」と指定されるグラフ上での条件は、粉末化Ｆ
ＢＳ（上記の実施例７または８中のように調製する）を、標準的な粉末化培地ま
たは集塊した培地（照射または非照射）のいずれかから調製した再構成した１×
培地に添加することをいう。「Ｉｒｒａｄｉａ．ａｇｇｌｏｍ．ＤＭＥＭ＋ＦＢ
Ｓ」と指定されるグラフ上の条件は、流動床を使用して、粉末化培地（標準また
は集塊）にＦＢＳを噴霧し、ＦＢＳ集塊培地を作製することによって、集塊した
培地を作製することをいう。

【０１３７】 図１４に示されるように、標準的な粉末化基本培地および集塊基本培地のγ照
射は、これらの培地がＳＰ２／０細胞増殖を支持する能力に悪影響を及ぼさなか
った。さらに、照射は、粉末化ＦＢＳを含む粉末化培地、および粉末化ＦＢＳ自
体にネガティブに影響を及ぼしたが、この効果は血清濃度が増加するにつれて減
少した。

【０１３８】 これらのγ照射効果をより広範に試験するために、ＶＥＲＯ細胞のサンプルを
、上記のように従来的に再構成または集塊したＶＰ−ＳＦＭ^TMに接種した。しか
し、集塊の間に、集塊チャンバー中の粉末化培地に、この培地に対する伝統的な
補充物である上皮増殖因子（ＥＧＦ）およびクエン酸第２鉄キレートを、噴霧ノ
ズルを通じて添加した。次いで、培地を直接使用するか、または上記のようにγ
照射した。細胞を、Ｔ−２５フラスコ中に３×１０⁵細胞／フラスコで接種し、
そして３７℃にてインキュベートした。細胞カウントおよび生存率を、上記のよ
うに実施した。結果を図１５に示す。

【０１３９】 図１５において見られるように、ＶＥＲＯ細胞は、γ照射された集塊培地中で
培養された場合に、γ照射されていない集塊培地中とほぼ等価な増殖および継代
の成功を示した。さらに、培地の照射は、その培地中に存在する低レベルの培養
補充物ＥＧＦおよびクエン酸第２鉄キレートに対して効果を有さなかった。

【０１４０】 これらの結果は、γ照射が、本発明の方法による多くの大量の集塊化培養培地
（血清、ＥＧＦまたは他の補充物を含む培地を含む）の調製における滅菌技術と
して使用され得ることを示す。

【０１４１】 （実施例１４：粉末化培地補充物の機能に対する照射の効果） 滅菌性の培地補充物を生成することにおける本発明の効力を実証するために、
凍結乾燥したヒトホロトランスフェリンを、約３日間、−７０℃または室温にて
、２５ｋＧｙでのコバルトγ源に曝露することによって照射した。次いで、２９
３細胞を、照射したトランスフェリン、または照射されていないコントロールの
トランスフェリン（−７０℃または室温にて保存された）を補充した培地中で培
養し、そして細胞増殖を、標準的なトランスフェリン含有培養培地、またはトラ
ンスフェリンを含まない培地の細胞増殖と比較した。

【０１４２】 無血清２９３培地（２９３ＳＦＭ）において増殖している中対数期の２９３細
胞を収集し、そして２００×ｇで５分間１回洗浄し、そしてカウントおよび生存
率決定のために無トランスフェリン２９３ＳＦＭ中に再懸濁した。細胞を、三連
の１２５ｍｌ Ｅｈｒｌｅｎｍｅｙｅｒフラスコに、２９３ＳＦＭ（ポジティブ
コントロール）、無トランスフェリン２９３ＳＦＭ（ネガティブコントロール）
中、−７０℃もしくは室温にて保存された非照射トランスフェリン含有２９３Ｓ
ＦＭ中、または上記のように調製された照射トランスフェリン含有２９３ＳＦＭ
中、２０ｍｌの容量で、３×１０⁵細胞／ｍｌの密度でプレートした。フラスコ
を、８％ＣＯ₂／９２％空気の雰囲気で平衡化した３７℃インキュベーター中で
、約１２５ｒｐｍに設定した回転振盪器に置いた。毎日、細胞カウントをＣｏｕ
ｌｔｅｒ粒子カウンターを用いて決定し、そして生存率を標準的な手順に従って
トリパンブルー除外法によって決定した。これらの細胞が、１フラスコあたり約
１．２〜１．７×１０⁶の密度に達する場合、各サンプルのフラスコのうちの１
つの内容物を収集し、遠心分離し、新しい培地中に再懸濁し、そして３つの新し
いフラスコ中に継代した。次いで、前の継代および次の継代の細胞カウントおよ
び生存率を、上記のように行った。上記の条件下でインキュベートした細胞の連
続する４継代を試験した。

【０１４３】 図１６Ａ〜１６Ｄにおいて示されるように、−７０℃または室温のいずれかで
γ照射されたトランスフェリンを含む培地において培養された細胞は、第１継代
（図１６Ａ）、第２継代（図１６Ｂ）、第３継代（図１６Ｃ）および第４継代（
図１６Ｄ）において、標準的な２９３ ＳＦＭ中またはγ照射されていないトラ
ンスフェリンを含有する２９３ ＳＦＭ中で培養された細胞とほぼ同一の増殖速
度論および生存を示した。しかし、無トランスフェリン培地において培養された
細胞は、第１継代間に良好に生存した（図１６Ａ）が、増殖を停止し、そして継
代培養の際に生存率において有意な欠失を示した（図１６Ｂ）。

【０１４４】 これらの結果は、γ照射が、本発明の方法において、大量の粉末化培養培地補
充物（例えば、トランスフェリン）の調製における滅菌技術として使用され得る
ことを示す。さらに、これらのデータは、トランスフェリンのような培養培地補
充物が、活性の有意な損失を伴わずに、室温にてγ照射され得ることを示す。

【０１４５】 （実施例１５：粉末化血清の生化学的特徴に対する照射の効果） さらに、血清に対するγ照射の影響を決定するために、噴霧乾燥した粉末ＦＢ
Ｓのサンプルを、−７０℃または室温（ＲＴ）にて２５ｋＧｙで照射し、そして
血清中の種々の生化学的構成成分の濃度について商業的に分析した。コントロー
ルとして、照射していない噴霧乾燥したＦＢＳおよび液状ＦＢＳのサンプルもま
た分析した。結果を表２に示す。

【０１４６】

【表４】 これらの結果は、γ照射プロセスが、ＦＢＳの生化学的構成成分のほとんどの
濃度に有意に影響を及ぼさなかったことを示す。これらの結果はまた、噴霧乾燥
の際に、ＦＢＳの成分のいくつか（アルカリホスファターゼ、ＡＳＴおよびＬＤ
、ならびに可能性としてはグルコース）が、出発液状ＦＢＳ中でのそれらの濃度
と比較して、濃度の有意な減少を受けることを示す。

【０１４７】 （実施例１６：粉末化血清の機能に対する照射の効果） 乾燥した粉末血清が細胞増殖を支持する能力に対するγ照射の影響を試験する
ために、種々の条件下で照射した噴霧乾燥化ＦＢＳのサンプルを使用して、培養
培地を補充し、そして接着細胞および懸濁細胞を、これらの培地中で３継代まで
の間増殖させた。モデル懸濁細胞として、ハイブリドーマ株ＳＰ２／０およびＡ
Ｅ−１を使用し、一方で代表的な接着細胞として、ＶＥＲＯ培養物およびＢＨＫ
培養物を使用した。細胞を、上記の実施例１４において概説される一般的な手順
に従って、試験血清またはコントロール血清（噴霧乾燥したが、照射しなかった
）を含む培地中で、３継代までの間培養した。各継代点で、細胞を収集および継
代培養し、一方でアリコートを、生存細胞／ｍｌについて上記のようにカウント
した。各点での結果を、液状ＦＢＳを補充した培地中で得られた生存細胞カウン
トのパーセンテージとして示した。これを、図１７Ａ、１７Ｂ、１７Ｃおよび１
７Ｄに示す。

【０１４８】 いくつかの結果が、これらの研究結果から導かれ得る。第１に、ＦＢＳのγ照
射は、噴霧乾燥化ＦＢＳが、懸濁細胞および接着細胞の増殖を支持する能力を（
ほとんどの細胞株に関して）低減しないようである（各図における、照射データ
セットを非照射データセットと比較のこと）。すなわち、ほとんどの細胞株に関
して、増殖の促進は、照射された血清および非照射血清について類似する。第２
に、−７０℃で照射した血清は、室温で照射した血清よりも、（おそらくＶＥＲ
Ｏ細胞を除いて）細胞増殖を支持する能力においてより良好に機能するようであ
る（図１７Ｃ）。最終的に、これらの研究の結果は非常に細胞型特異的であり：
懸濁細胞（図１７Ａおよび１７Ｂ）は、接着細胞よりも噴霧乾燥化ＦＢＳ（照射
および非照射）においてより良好に増殖した（図１７Ｃおよび１７Ｄ）。

【０１４９】 これらの結果は、γ照射が、本発明の方法において大量の粉末化血清（例えば
、ＦＢＳ）の調製における滅菌技術として使用され得ることを示す。さらに、上
記の実施例１４におけるトランスフェリンについて報告されたデータとは異なり
、これらのデータは、血清の照射のための至適温度が、その血清が細胞増殖を支
持する能力を維持するために、室温未満であるようであることを示唆する。

【０１５０】 （実施例１７：噴霧乾燥によるウイルス力価の減少） 噴霧乾燥技術によってウイルス力価を低減することの実行可能性を試験した。
３フィート直径の実験室用噴霧乾燥器（Ｍｏｂｉｌｅ Ｍｉｎｏｒ Ｓｐｒａｙ
Ｄｒｙｅｒ，ＮＩＲＯ，Ｃｏｌｕｍｂｉａ，Ｍａｒｙｌａｎｄ）を使用して、
粉末化血清を調製した。液状ＦＢＳを、既知の濃度でウイルスに関してスパイク
した（ＩＢＲウイルス＠１０^6.5ＴＣＩＤ₅₀／ｍＬ、ＲＥＯウイルス＠１０⁵ＴＣ
ＩＤ₅₀／ｍＬ、そしてＢＶＤｖを天然に夾雑される＠ａ＋＋検出レベル）。ウイ
ルスをスパイクした液状ＦＢＳを、噴霧乾燥器に吸引させ、そして空気分散器の
中央部に配置したＳｃｈｌｉｃｋ９４０ノズルを通して霧状にし、そして乾燥し
ている空気を、その装置の頂部の空気分散器を通してチャンバーに導入した。噴
霧乾燥を、以下の条件下で行った：入口空気温度＝１４８℃〜２１５℃；出口温
度＝５０℃〜８０℃；ノズルについての霧状空気圧＝１．６〜２．０バール；空
気流＝８０．０ｋｇ／時間；噴霧速度＝２ｋｇ／時間。噴霧乾燥の後、粉末化血
清を、装置のサイクロンに回収し、そして処理空気を排出した。

【０１５１】 生成の後、粉末化血清を、蒸留水との１×液体に再構成した（６０ｇｍ粉末化
血清＝１リットルの液状ＦＢＳ）。この再構成した１×液状噴霧乾燥処理した血
清を、ウイルス力価に関して特徴付け、そして以下のウイルス力価検出手順を用
いて公知のウイルス濃度での同じウイルスでスパイクしたロット（ｌｏｔ）由来
の非処理液状ＦＢＳと比較した。アッセイしたウイルスに対して感受性であるこ
とが公知の細胞株を用いて、９６ウェルプレートの１ウェルあたり１×１０⁴細
胞をプレートする。アッセイされるべきサンプルを、一連の１０倍希釈物から１
０^-10まで希釈する。各希釈のアリコート（０．１ｍｌ）を、細胞株を接種した
プレートの複製ウェルに添加した。４〜７日後に、各ウェル中の細胞を、細胞変
性効果（ＣＰＥ）について評価する。結果を、Ｒｅｅｄ，ＬＪおよびＭｕｅｎｃ
ｈ，Ｈ．（Ａｍ．Ｊ．Ｈｙｇ．１９３８：２７：４９３）の方法を用いて評価し
、そして組織培養感染性用量（ＴＣＩＤ₅₀／ｍＬ）サンプル物質として表す。Ｂ
ＶＤｖを、３継代にわたる細胞培養方法によって、そして最終抗原検出を直接的
蛍光アッセイ（９ＣＦＲ）によって試験する。

【０１５２】 粉末化ＦＢＳの噴霧乾燥処理によるウイルス力価の減少についての結果を、表
３、表４、表５および表６に示す。結果：噴霧乾燥プロセスは、少なくとも１０ ^-6 の総力価低減でＩＢＲウイルスの不活化、少なくとも１０^-5の総力価低減でＲ
ＥＯウイルスの不活化、および＋＋〜ネガティブの天然に夾雑するウイルスのＢ
ＶＤｖ不活化の不活化において有効であった。組み合わせて、これらの結果は、
本発明の噴霧乾燥方法によって調製される血清粉末が、有意に低減されたウイル
ス力価を有することを示す。これらの結果は、本発明によって提供される方法が
、ウイルス力価が１０^-6減少した粉末化血清の生成を生じることを示す。

【０１５３】

【表５】

【０１５４】

【表６】

【０１５５】

【表７】

【０１５６】

【表８】 （実施例１８：噴霧乾燥による内毒素の減少） 噴霧乾燥技術によって内毒素濃度を低減することの実行可能性を試験した。３
フィート直径の実験室用噴霧乾燥器（Ｍｏｂｉｌｅ Ｍｉｎｏｒ Ｓｐｒａｙ
Ｄｒｙｅｒ，ＮＩＲＯ，Ｃｏｌｕｍｂｉａ，Ｍａｒｙｌａｎｄ）を使用して、粉
末化血清を調製した。液状ＦＢＳのロットを、上昇した内毒素レベルに関して同
定した。内毒素含有液状ＦＢＳを、噴霧乾燥器に吸引させ、そして空気分散器の
中央部に配置したＳｃｈｌｉｃｋ９４０ノズルを通して霧状にし、そして乾燥し
ている空気を、その装置の頂部の空気分散器を通してチャンバーに導入した。噴
霧乾燥を、以下の条件下で行った：入口空気温度＝１４８℃〜２１５℃；出口温
度＝５０℃〜８０℃；ノズルについての霧状空気圧＝１．６〜２．０バール；空
気流＝８０．０ｋｇ／時間；噴霧速度＝２ｋｇ／時間。噴霧乾燥の後、粉末化血
清を、装置のサイクロンに回収し、そして処理空気を排出した。

【０１５７】 生成の後、粉末化血清を、蒸留水を用いて１×液体に再構成した（６０ｇｍ粉
末化血清＝１リットルの液状ＦＢＳ）。この再構成した１×液状噴霧乾燥処理し
た血清の内毒素濃度を決定し、そしてＬｉｍｕｌｕｓ Ａｍｅｂｏｃｙｔｅ Ｌ
ｙｓａｔｅ（ＬＡＬ）試験を用いて同じロット由来の非処理液状ＦＢＳの内毒素
レベルと比較した。簡潔には、ＬＡＬ試験は、ＬＡＬ試薬と試験サンプルとを混
合し、そして３７℃にて６０分後、ゲル化について観察することによって行うゲ
ル凝固試験である。一般に、「Ｐｙｒｏｇｅｎｓ，Ｅｎｄｏｔｏｘｉｎｓ，ＬＡ
Ｌ Ｔｅｓｔｉｎｇ，Ｄｅｐｙｒｏｇｅｎａｔｉｏｎ」（Ｊ．Ｒｏｂｉｎｓｏｎ
編）Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋを参照のこと。
ポジティブ応答（ゲル形成）は、感受性標識した試薬（ｔｈｅ ｒｅａｇｅｎｔ
ｓ ｌａｂｅｌｅｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ）に見合うまたはそれを超えるサ
ンプル中の内毒素の量が存在することを示す。結果を、１ｍＬあたり１内毒素単
位で報告する。すべての内毒素を、参照標準内毒素との比較によって、単位で測
定する。

【０１５８】 ＦＢＳの噴霧乾燥処理による内毒素濃度の減少についての結果を、以下の表に
示す。結果：噴霧乾燥プロセスは、内毒素濃度を低減することにおいて有効であ
った（５０％の内毒素濃度減少は、４８．０ＥＵ／ｍＬから２４．０ＥＵ／ｍＬ
である）。これらの結果は、本発明の噴霧乾燥方法によって調製される血清粉末
が、有意に低減された内毒素レベルを有することを示す。これらの結果は、本発
明によって提供される方法が、内毒素レベルが減少した粉末化血清の生成を生じ
ることを示す。

【０１５９】

【表９】 ここで、本発明を、理解の明瞭さの目的のために例示および実施例によって幾
分詳細に十分に記載したが、これを、本発明の範囲またはその任意の特定の実施
態様に影響を及ぼすことなく、広範かつ等価な範囲の条件、処方および他の変数
内で本発明を改変または変更することによって実施し得ること、およびこのよう
な改変または変更は、添付の特許請求の範囲の範囲内に含まれることは、当業者
に明らかである。

【０１６０】 本明細書中において言及されるすべての刊行物、特許および特許出願は、本発
明に関与する当業者のレベルを示し、そして各個々の刊行物、特許または特許出
願が、参考として援用されることが具体的かつ個別に示されるのと同じ程度で、
本明細書中において参考として援用される。

【図面の簡単な説明】

【図１】 図１は、本発明の方法（図１Ａ）および従来の液体ＦＢＳ（図１
Ｂ）によって粉末化形態で調製された胎仔ウシ血清（ＦＢＳ）のサンプルのＳＤ
Ｓ−ＰＡＧＥのデンシトメータースキャンのヒストグラムである。

【図２】 図２は、本発明の凝集法によって粉末化形態で調製された２％（
ｗ／ｖ）ＦＢＳを補充したダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）中のＳＰ２
／０細胞の増殖（図２Ａ）および継代の成功（図２Ｂ）の折れ線グラフの合成で
ある。

【図３Ａ】 図３は、本発明の方法に従うスプレー乾燥（図３Ａ）または標
準的な液体ＦＢＳ（図３Ｂ）によって調製された粉末化ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）
の分光学的スキャン（λ＝２００〜３５０ｎｍ）のヒストグラムの合成である。

【図３Ｂ】 図３は、本発明の方法に従うスプレー乾燥（図３Ａ）または標
準的な液体ＦＢＳ（図３Ｂ）によって調製された粉末化ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）
の分光学的スキャン（λ＝２００〜３５０ｎｍ）のヒストグラムの合成である。

【図４】 図４は、炭酸水素ナトリウムの添加あり、またはなしで、本発明
の方法によって、またはボールミルによって調製された種々の乾燥粉末化培地（
ＤＰＭ）の２つの異なる日付（図４Ａおよび４Ｂ）でのｐＨ滴定（緩衝能力）を
示す折れ線グラフの合成である。

【図５】 図５は、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ^TM（図５Ａ）またはＤＭＥＭ（図
５Ｂ）の溶解速度（水中）に対する凝集の効果を示す棒グラフの合成である。培
地は、示されたように、水もしくはＦＢＳで凝集した。

【図６】 図６は、凝集されたＯｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ^TM（図６Ａ）もしくは
ＤＭＥＭ（図６Ｂ）（いずれも２％ＦＢＳを含有する）における、ＳＰ２／０細
胞の７日間にわたる増殖を示す折れ線グラフの合成である。

【図７】 図７は、１０％ＦＢＳを含有する凝集されたＤＭＥＭ中でのＳＰ
２／０細胞（図７Ａ）、ＡＥ−１細胞（図７Ｂ）、およびＬ５．１細胞（図７Ｃ
）の７日間にわたる増殖を示す折れ線グラフの合成である。

【図８】 図８は、２％ＦＢＳを補充した水またはＦＢＳのいずれかで凝集
させた、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ Ｉ^TM（図８Ａ）またはＤＭＥＭ（図８Ｂ）でのＳＰ
２／０細胞の継代の成功を示す折れ線グラフの合成である。

【図９】 図９は、ＦＢＳおよび炭酸水素ナトリウムで凝集させ、そして１
０％ＦＢＳを補充したＤＭＥＭ中でＳＰ２／０細胞（図９Ａ）、ＡＥ−１細胞（
図９Ｂ）、およびＬ５．１細胞（図９Ｃ）の継代の成功を示す折れ線グラフの合
成である。

【図１０】 図１０は、標準的な水で再構成した粉末化培養培地（コントロ
ール培地）において、または本発明の方法に従って大規模量で調製した凝集した
粉末化培養培地において、４回の継代にわたってＳＰ２／０細胞の増殖を示す折
れ線グラフである。結果は、コントロール培地（白四角）、本発明の水で凝集し
た粉末化培養培地（黒菱形）、および本発明の水で凝集させた自己ｐＨ粉末化培
養培地（炭酸水素ナトリウムを含有する）（黒四角）について示される。

【図１１Ａ】 図１１は、２％（白三角）もしくは１０％（黒菱形）の液体
ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、または本発明のスプレー乾燥法によって調製した２％
（×）もしくは１０％（黒四角）の粉末化ＦＢＳを含有する培地において、６ま
たは７日にわたって培養させたＡＥ−１細胞の折れ線グラフである。二重の実験
を図１１Ａおよび図１１Ｂに示す。

【図１１Ｂ】 図１１は、２％（白三角）もしくは１０％（黒菱形）の液体
ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、または本発明のスプレー乾燥法によって調製した２％
（×）もしくは１０％（黒四角）の粉末化ＦＢＳを含有する培地において、６ま
たは７日にわたって培養させたＡＥ−１細胞の折れ線グラフである。二重の実験
を図１１Ａおよび図１１Ｂに示す。

【図１２Ａ】 図１２は、２％（白三角）もしくは１０％（黒菱形）の液体
ＦＢＳ、または本発明のスプレー乾燥法によって調製した２％（×）もしくは１
０％（黒四角）の粉末化ＦＢＳを含有する培地において７日にわたって培養させ
たＳＰ２／０細胞の折れ線グラフである。二重の実験を図１２Ａおよび１２Ｂに
示す。

【図１２Ｂ】 図１２は、２％（白三角）もしくは１０％（黒菱形）の液体
ＦＢＳ、または本発明のスプレー乾燥法によって調製した２％（×）もしくは１
０％（黒四角）の粉末化ＦＢＳを含有する培地において７日にわたって培養させ
たＳＰ２／０細胞の折れ線グラフである。二重の実験を図１２Ａおよび１２Ｂに
示す。

【図１３】 図１３は、５％の液体ＦＢＳ（黒菱形）または本発明のスプレ
ー乾燥法によって調製した５％の粉末化ＦＢＳ（黒四角）を含有する培地におい
て４回の継代にわたるＡＥ−１細胞増殖の折れ線グラフである。

【図１４】 図１４は、５日間にわたるＳＰ２／０細胞の増殖に対するγ照
射および凝集の効果を示す折れ線グラフである。

【図１５】 図１５は、凝集した培養培地のγ照射のＶＥＲＯ細胞の増殖に
対する効果を示す棒グラフである。

【図１６Ａ】 図１６は、４回の継代にわたって、２９３細胞の増殖を支持
するトランスフェリンの能力に対するγ照射の効果を示す一連の折れ線グラフで
ある。各グラフにおいて、細胞を、標準的な無血清２９３培地（黒菱形）、トラ
ンスフェリンを含まない培地（黒四角）、−７０℃（白三角）または室温（ ）
でγ照射されている粉末化トランスフェリンを含有する培地、あるいはγ照射さ
れていないが−７０℃（×）もしくは室温（黒丸）で保存されている粉末化トラ
ンスフェリンを含有する培地において培養した。各データ点の結果は、二連のフ
ラスコの平均である。図１６Ａ：一回継代の細胞。図１６Ｂ：二回継代の細胞。
図１６Ｃ：３回継代の細胞。図１６Ｄ：４回継代の細胞。

【図１６Ｂ】 図１６は、４回の継代にわたって、２９３細胞の増殖を支持
するトランスフェリンの能力に対するγ照射の効果を示す一連の折れ線グラフで
ある。各グラフにおいて、細胞を、標準的な無血清２９３培地（黒菱形）、トラ
ンスフェリンを含まない培地（黒四角）、−７０℃（白三角）または室温（ ）
でγ照射されている粉末化トランスフェリンを含有する培地、あるいはγ照射さ
れていないが−７０℃（×）もしくは室温（黒丸）で保存されている粉末化トラ
ンスフェリンを含有する培地において培養した。各データ点の結果は、二連のフ
ラスコの平均である。図１６Ａ：一回継代の細胞。図１６Ｂ：二回継代の細胞。
図１６Ｃ：３回継代の細胞。図１６Ｄ：４回継代の細胞。

【図１６Ｃ】 図１６は、４回の継代にわたって、２９３細胞の増殖を支持
するトランスフェリンの能力に対するγ照射の効果を示す一連の折れ線グラフで
ある。各グラフにおいて、細胞を、標準的な無血清２９３培地（黒菱形）、トラ
ンスフェリンを含まない培地（黒四角）、−７０℃（白三角）または室温（ ）
でγ照射されている粉末化トランスフェリンを含有する培地、あるいはγ照射さ
れていないが−７０℃（×）もしくは室温（黒丸）で保存されている粉末化トラ
ンスフェリンを含有する培地において培養した。各データ点の結果は、二連のフ
ラスコの平均である。図１６Ａ：一回継代の細胞。図１６Ｂ：二回継代の細胞。
図１６Ｃ：３回継代の細胞。図１６Ｄ：４回継代の細胞。

【図１６Ｄ】 図１６は、４回の継代にわたって、２９３細胞の増殖を支持
するトランスフェリンの能力に対するγ照射の効果を示す一連の折れ線グラフで
ある。各グラフにおいて、細胞を、標準的な無血清２９３培地（黒菱形）、トラ
ンスフェリンを含まない培地（黒四角）、−７０℃（白三角）または室温（ ）
でγ照射されている粉末化トランスフェリンを含有する培地、あるいはγ照射さ
れていないが−７０℃（×）もしくは室温（黒丸）で保存されている粉末化トラ
ンスフェリンを含有する培地において培養した。各データ点の結果は、二連のフ
ラスコの平均である。図１６Ａ：一回継代の細胞。図１６Ｂ：二回継代の細胞。
図１６Ｃ：３回継代の細胞。図１６Ｄ：４回継代の細胞。

【図１７Ａ】 図１７は、一回目（Ｐ×１）、二回目（Ｐ×２）、および３
回目（Ｐ×３）の継代での足場非依存性細胞（図１７Ａおよび１７Ｂ）および足
場依存性細胞（図１７Ｃおよび１７Ｄ）の増殖を支持するＦＢＳの能力に対する
、異なる照射条件下でのγ照射の効果を示す一連の棒グラフである。 図１７Ａ：ＳＰ２／０細胞。図１７Ｂ：ＡＥ−１細胞。図１７Ｃ：ＶＥＲＯ細胞
。図１７Ｄ：ＢＨＫ細胞。

【図１７Ｂ】 図１７は、一回目（Ｐ×１）、二回目（Ｐ×２）、および３
回目（Ｐ×３）の継代での足場非依存性細胞（図１７Ａおよび１７Ｂ）および足
場依存性細胞（図１７Ｃおよび１７Ｄ）の増殖を支持するＦＢＳの能力に対する
、異なる照射条件下でのγ照射の効果を示す一連の棒グラフである。 図１７Ａ：ＳＰ２／０細胞。図１７Ｂ：ＡＥ−１細胞。図１７Ｃ：ＶＥＲＯ細胞
。図１７Ｄ：ＢＨＫ細胞。

【図１７Ｃ】 図１７は、一回目（Ｐ×１）、二回目（Ｐ×２）、および３
回目（Ｐ×３）の継代での足場非依存性細胞（図１７Ａおよび１７Ｂ）および足
場依存性細胞（図１７Ｃおよび１７Ｄ）の増殖を支持するＦＢＳの能力に対する
、異なる照射条件下でのγ照射の効果を示す一連の棒グラフである。 図１７Ａ：ＳＰ２／０細胞。図１７Ｂ：ＡＥ−１細胞。図１７Ｃ：ＶＥＲＯ細胞
。図１７Ｄ：ＢＨＫ細胞。

【図１７Ｄ】 図１７は、一回目（Ｐ×１）、二回目（Ｐ×２）、および３
回目（Ｐ×３）の継代での足場非依存性細胞（図１７Ａおよび１７Ｂ）および足
場依存性細胞（図１７Ｃおよび１７Ｄ）の増殖を支持するＦＢＳの能力に対する
、異なる照射条件下でのγ照射の効果を示す一連の棒グラフである。 図１７Ａ：ＳＰ２／０細胞。図１７Ｂ：ＡＥ−１細胞。図１７Ｃ：ＶＥＲＯ細胞
。図１７Ｄ：ＢＨＫ細胞。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｆ２６Ｂ 3/08 Ｆ２６Ｂ 3/08 (72)発明者 ダディ， バーバラ エム． アメリカ合衆国 ニューヨーク 14052， イースト オーロラ， ブルックリア ドライブ 143 (72)発明者 ブレラ， トーマス イー． アメリカ合衆国 ニューヨーク 14086− 2704， ランカスター， ウィルクシャー プレイス 42

Claims (28)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 サンプル中の外来性因子または毒素を減弱するための方法で
   あって、該方法は以下： ａ）該サンプル中の１つ以上の外来性因子、１つ以上の毒素を減弱するのに十
   分な条件下で、空気もしくはガスまたはガスの組み合わせに対して該サンプルを
   曝露する工程；および ｂ）該サンプルを獲得する工程、 を包含する、方法。
2. 【請求項２】 前記ガスまたはガスの組み合わせが、前記毒素または外来性
   因子に対して毒性であるかまたは阻害性である、請求項１に記載の方法。
3. 【請求項３】 前記曝露が、前記空気もしくはガスまたはガスの組み合わせ
   に曝露された前記サンプルの表面領域を増大するのに十分な条件下で達成される
   、請求項１に記載の方法。
4. 【請求項４】 前記曝露の前または後の前記サンプルが、乾燥形態または液
   体形態である、請求項１に記載の方法。
5. 【請求項５】 前記曝露が、前記空気もしくはガスまたはガスの組み合わせ
   中でか、またはこれを通して前記サンプルを噴霧することまたは分散させること
   により達成される、請求項１に記載の方法。
6. 【請求項６】 前記曝露が、前記サンプルおよび／あるいは空気もしくはガ
   スまたはガスの組み合わせを加熱する工程をさらに含む、請求項５に記載の方法
   。
7. 【請求項７】 前記曝露が、噴霧乾燥または凝集により達成される、請求項
   ６に記載の方法。
8. 【請求項８】 前記外来性因子が動物ウイルス、ヒトウイルス、植物ウイル
   ス、魚類ウイルス、昆虫ウイルス、および哺乳動物ウイルスからなる群より選択
   される、請求項１に記載の方法。
9. 【請求項９】 前記毒素が内毒素、外毒素、ヘビ毒液もしくは動物の毒液、
   コレラ毒素、ブドウ球菌性のエンテロトキシン、ロイコチジン、リシンＡ、動物
   由来の毒物、神経毒、および発赤毒素からなる群より選択される、請求項１に記
   載の方法。
10. 【請求項１０】 前記サンプルが栄養培地、培地補充物、培地のサブグルー
    プおよび緩衝液からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。
11. 【請求項１１】 前記外来性因子がＤＮＡウイルスおよびＲＮＡウイルスか
    らなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
12. 【請求項１２】 前記外来性因子がエンベロープウイルスおよび非エンベロ
    ープウイルスからなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
13. 【請求項１３】 前記外来性因子が急性または慢性の疾患または毒性を生じ
    得る非細胞性化合物からなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
14. 【請求項１４】 前記外来性因子が微生物性の病原体、細菌および病原性微
    生物からなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
15. 【請求項１５】 前記獲得されるサンプルが乾燥形態である、請求項１に記
    載の方法。
16. 【請求項１６】 前記獲得されるサンプルが粉末化形態である、請求項１に
    記載の方法。
17. 【請求項１７】 前記獲得されるサンプルが乾燥粉末である、請求項１に記
    載の方法。
18. 【請求項１８】 前記サンプルが動物由来産物、細胞培養試薬、１つ以上の
    栄養素、培地、培地補充物、培地のサブグループおよび緩衝液からなる群より選
    択される、請求項１に記載の方法。
19. 【請求項１９】 前記栄養素が、１つ以上のタンパク質、１つ以上の炭水化
    物、１つ以上の脂質、１つ以上のアミノ酸、１つ以上のビタミン、１つ以上の核
    酸、ＤＮＡ、ＲＮＡ、１つ以上の微量金属および１つ以上の緩衝化塩からなる群
    より選択される、請求項１８に記載の方法。
20. 【請求項２０】 前記培地が、細菌培養培地、酵母培養培地、植物培養培地
    、および動物培養培地からなる群より選択される、請求項１８に記載の方法。
21. 【請求項２１】 前記培地補充物が、血清の血液由来産物、および組織、細
    胞、器官または腺の抽出物または加水分解産物からなる群より選択される、請求
    項１８に記載の方法。
22. 【請求項２２】 前記血清がウシ胎仔血清（ＦＢＳ）である、請求項２１に
    記載の方法。
23. 【請求項２３】 前記緩衝液が、リン酸緩衝化生理食塩水およびトリス緩衝
    化生理食塩水からなる群より選択される、請求項１８に記載の方法。
24. 【請求項２４】 前記動物由来産物が１つ以上の脂質、１つ以上の脂肪酸、
    １つ以上のタンパク質、１つ以上のアミノ酸、１つ以上のペプトン、１つ以上の
    ステロール、１つ以上のリポタンパク質、１つ以上の血液由来産物、１つ以上の
    組織、腺もしくは細胞の加水分解産物もしくは抽出物、またはそれらの組み合わ
    せからなる群より選択される、請求項１８に記載の方法。
25. 【請求項２５】 前記サンプルが薬学的組成物である、請求項１に記載の方
    法。
26. 【請求項２６】 前記サンプルが臨床的溶液である、請求項１に記載の方法
    。
27. 【請求項２７】 前記条件が、前記外来性因子または毒素を実質的に減弱す
    るのに十分である、請求項１に記載の方法。
28. 【請求項２８】 サンプル中の外来性因子または１つ以上の毒素を減弱する
    かまたは実質的に減弱するための方法であって、該方法は、以下： ａ）該サンプルを乾燥させるかまたは実質的に乾燥させるのに十分な条件下で
    該サンプルを処置する工程；および ｂ）減弱されたかまたは実質的に減弱された１つ以上の外来性因子または１つ
    以上の毒素を有するサンプルを獲得する工程、 を包含する、方法。