JP2001510054A - リステリア属病原性細菌検出用培養培地およびこの細菌の同定方法 - Google Patents
リステリア属病原性細菌検出用培養培地およびこの細菌の同定方法Info
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Abstract
Description
にする培養培地ならびにこの培地を用いる方法に関する。
び同定は、農食物衛生学および医学的細菌学のモニターにおける主要な問題であ
る。リステリア属細菌の中で、種モノサイトジェネスのみがヒトに病原性である
ことが知られている。リステリアの他の種は病原性でないか、または動物のみに
病原性である。これは特にリステリア・イヴァノヴィ(Listeria ivanovii)の 場合にそうである。さらに、バクテリオシンを使用することによってリステリア
・モノサイトジェネスの増殖を阻害することが可能であることが知られている。
例えば、特許出願EP 326 062は、ペディオコッカス・アシディラクテ
ィシ(Pediococcus acidilactici)起源のバクテリオシンを用いるリステリア・
モノサイトジェネスの阻害法を記載している。
。従って、農食物経路の端から端まで(原料から製造施設の環境を通過して消費
が意図される完成品まで)をリステリア・モノサイトジェネスの検出に供するこ
とが必要である。
スを、病原体でないリステリア属の他の細菌の中から識別することも同様に重要
である。
いる。Oxford(Curtisら, Lett. Appl. Micro
biol. (1989), 8, 85−98頁)およびPalcam(Va
n Nettenら, J. Food Microbiol. (1988)
, 6, 187−188頁)選択培地が現在最も使用されている。これらの培
地は、リステリア属の全ての種の検出を可能にする。従って、モノサイトジェネ
ス種の所属を確立するためには、観察された代表的なコロニーを、補助的同定(
顕微鏡試験および/または生化学的試験および/または免疫学的試験および/ま
たは遺伝学的試験)に供しなければならない。しかし、リステリア・モノサイト
ジェネスの同定に必要な補助的操作は分析の長さおよび費用を増加させる。これ
らの操作は、多数の試薬および適格人員の使用を必要とする。さらに、同定に供
されるコロニーの回収は不確かであり、補助的操作はしばしば間違いのもとであ
るか、または少なくともより低い正確さおよび信頼性の原因である。これは特に
単離培地上のリステリア・モノサイトジェネスのコロニーが、リステリアの他の
種によって形成されるコロニーに比較して非常に少ない場合にそうである。
リア属の他の細菌から識別する細菌学的分析法を記載している。
素原基質または蛍光原基質を含む同定培地を使用する。使用する培地に、その化
学的変換によって分析しようとする試料中に存在するリステリア種の特徴付けを
可能にする発酵基質および/または還元可能基質および/または酵素的に加水分
解可能な基質(α−マンノシダーゼの基質のような)を含有させることも可能で
ある。
の特異的ホスファチジルイノシトール活性を示すことによって、リステリアの病
原性種であるリステリア・モノサイトジェネスおよびリステリア・イヴァノヴィ
を、他のリステリアから識別することも可能であることが知られている。
ネスおよびリステリア・イヴァノヴィのような)の培養培地中に分泌されている
ことが示されている(Leimeister−Wachterら, Mol.
Microbiol. (1991) 5(2), 361−366頁; J.
Mengaudら, Mol. Microbiol. (1991) 5(
2), 367−372頁、およびGoldfineら, Infection
and Immunity (1992) 60(10), 4059−40
67頁)。これら2つの病原性種を間接的方法によって同定することが可能であ
ることも知られている(Notermansら, App. and Env.
Microbiology (1991), 第57巻 第9号, 2666
−2670頁)。Notermansらによって提唱された方法によれば、試験
しようとするリステリアの株(事前に単離されている)を、TY(トリプトン酵
母エキス)寒天の表面上にスポットとして接種する。24〜48時間37℃でイ
ンキュベートした後、第2の寒天層をペトリ皿に注ぐ。この第2の層は、アガロ
ース、クロラムフェニコールおよびL−α−ホスファチジルイノシトール(PI
PLCの天然基質)を含有する。次いでディッシュを再度37℃でインキュベー
トし、5日間観察する。従って、この方法は、株の単離、寒天上へのスポットと
しての接種およびPIPLC基質を含有する寒天の第2の層の分配のようないく
つかの工程を必要とする。さらに、この方法によって、ヒトに病原性であるリス
テリア・モノサイトジェネス細菌を、上記で示したようにヒトに病原性でないリ
ステリア・イヴァノヴィ細菌から識別することはできない。
培地である。
接同定を可能にする特異的培養培地に関し、この培地はPIPLCによって特異
的に切断される合成色素原基質、詳細には5−ブロモ−4−クロロ−3−インド
リルホスファチジルミオイノシトールを含有する。この色素原基質は、好ましく
は塩形態、例えば、ナトリウム、カリウムまたはアンモニウム塩形態で使用され
る。塩の中でアンモニウム5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルミオイノシ
トール−1−イルホスフェートが好ましい。
ジェネスおよびリステリア・イヴァノヴィ、ならびに他方でコロニーが着色しな
いリステリアの他の種の間の直接的な区別を可能にする。
ルホスファチジルミオイノシトールを使用することによって、青色コロニーを形
成する種リステリア・モノサイトジェネスおよびリステリア・イヴァノヴィの検
出が可能になり、リステリアの他の種は着色しないままである。
ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシトールを100
〜500mg/lの濃度、好ましくは150〜300mg/lの濃度で含有する
。
なければならない。例えば、ペプチド、デンプン、塩化ナトリウムおよび寒天か
ら作製され、当業者に周知のColumbia寒天を使用することが可能である
。
シトールまたはその塩の1つの、リステリア属の病原性種、詳細には細菌リステ
リア・モノサイトジェネスの研究、単離、計数および直接同定を可能にする特異
的培養培地の製造のための使用にも関する。
を培養培地に添加することによって、非常に明確な色を有する陽性PIPLCコ
ロニーを得ることが可能になることも見出された。
ェネスの研究、単離、計数および直接同定を可能にする特異的栄養寒天培養培地
にも関し、この培地は5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジル
ミオイノシトールまたはその塩の1つおよび血液またはその誘導体の1つ(好ま
しくは血清)を含有する。
当り20〜80ml、より特定すると40〜60ml、好ましくは50mlであ
り得る。100〜200mg/mlの濃度の5−ブロモ−4−クロロ−3−イン
ドリルホスファチジルミオイノシトールまたはその塩の1つおよび1リットルの
培地当り40〜60mlの割合の血清を含有する培養培地が好ましい。
コロニーの培養物の陽性着色の増感に寄与し、従って試験の判断をより容易にす
る。
4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシトールまたはその塩の1
つ、血清および粉状薬剤(カオリンまたはシリカのような)を含有する、本発明
による栄養寒天培養培地も本発明の一部である。
〜30g/l、好ましくは15〜25g/lで変動し得る。
得るが、リステリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物(
例えばキシロースのような)も含有し得る。そのような炭水化物を5−ブロモ−
4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシトールまたはその塩の1
つを含有する培養培地へ添加すると、一方で純粋な青色のコロニーを形成するリ
ステリア・モノサイトジェネス、および他方で薄い青色から緑色のコロニーを形
成するリステリア・イヴァノヴィ、ならびに最後にコロニーが着色しないリステ
リアの他の種の間の区別が可能になる。リアステリア・モノサイトジェネスによ
って代謝されるいくつかの炭水化物は、Manual of Clinical
Microbiology(第6版 − 1995)ASM Press W
ashington D.C. 343−344頁に記載されている。
定を可能にする特異的栄養寒天培養培地にも関し、この培地はPIPLCによっ
て特異的に切断される合成色素原基質としての5−ブロモ−4−クロロ−3−イ
ンドリルホスファチジルミオイノシトールまたはその塩の1つ、血液誘導体(好
ましくは血清)、粉状薬剤(カオリンまたはシリカのような)およびリステリア
・イヴァノヴィによっては代謝または発酵され得るが、リステリア・モノサイト
ジェネスによっては代謝または発酵され得ない炭水化物(好ましくはキシロース
)を含有する。
テリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物の濃度は5〜1
5g/lの間で変動し得、もちろん使用する炭水化物に依存する。
生物学において現在使用されているもの(例えば、アリザリンスルホン酸、メチ
ルレッド、クロロフェノールレッド、リトマス、ブロモクレゾールパープル、ブ
ロモフェノールレッド、ブロモキシレノールブルー、アリザリン、ブロモチモー
ルブルー、フェノールレッドなど)に言及することが可能である。もちろん、p
H指示薬は調整した濃度で培養培地において使用しなければならない。後者は指
示薬の性質に依存し、50〜300mg/lで変動し得る。異なるpH指示薬の
中で、フェノールレッドを使用することが好ましい。この指示薬は、リステリア
・モノサイトジェネスとリステリア・イヴァノヴィとの間の区別をさらに改善す
る。培地が5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシ
トールまたはその塩の1つを含有する場合、コロニーはそれぞれ、リステリア・
モノサイトジェネスについては指示薬の変色なしに純粋な青色であり、リステリ
ア・イヴァノヴィについては薄い青色で黄色円に囲まれ、この現象は指示薬の変
色に関連する。
スファチジルミオイノシトールまたはその塩の1つ、血液誘導体(好ましくは血
清)、粉状薬剤(カオリンまたはシリカのような)、リステリア・イヴァノヴィ
によっては代謝され得るが、リステリア・モノサイトジェネスによっては代謝さ
れ得ない炭水化物(好ましくはキシロース)およびpH指示薬(フェノールレッ
ドのような)を含有する栄養寒天培養培地である。
イヴァノヴィに排他的に存在するのではない。この酵素活性は特に、バチルス(
Bacillus)(Griffithら, Methods Enzymol. (1
991) 197, 493−502頁)およびクロストリディウム(Clostrid
ium)(Taguchiら, Arch. Biochem. Biophys . (1978), 186, 196−201頁)の特定の種において見出さ
れる。さらに、培養培地上での顕著な雑菌叢(細菌または酵母)の発達は、競合
現象によって、リステリア・モノサイトジェネスの検出に有害であり得る。従っ
て、偽陽性(リステリア・モノサイトジェネス以外の細菌によって形成される青
色コロニー)または偽陰性(他の汚染物の顕著な発達によるリステリア・モノサ
イトジェネスのコロニーの青色着色のマスキング)の危険性を排除するためには
、妨害微生物の増殖を阻害することが望ましい。これらの現象を回避するために
は、リステリア種がさほど感受性ではないかまたは非感受性である抗菌剤および
/または抗真菌剤を用いて培養培地を作製することが推奨される。これらの薬剤
を単独でか、または組合せて使用することができる。これらの薬剤の中で、例え
ば、塩化リチウム、塩酸アクリフラビン、ナリジクス酸、ポリミキシンB、セフ
ォタン、硫酸コリスチン、ホスホマイシン、セフタジジム、モキサラクタム、シ
クロヘキシミドおよびアムホテリシンBに言及することが可能である。
たはその塩の1つ、血液誘導体(好ましくは血清)、粉状薬剤(カオリンまたは
シリカのような)、リステリア・イヴァノヴィによっては代謝され得るが、リス
テリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物(好ましくはキ
シロース)、pH指示薬(特にフェノールレッドのような)および抗菌剤または
抗真菌剤を含有する栄養寒天培養培地も本発明の一部である。
基質を含有する寒天培養培地上に接種する工程、 − 上記試料を接種した培養培地をインキュベートする工程、および − 基質の特徴的着色によってリステリア属の病原性細菌の存在を決定する工程
を包含する。リステリア属の病原性細菌を含有しそうな試料を、粗形態で接種す
るか、または上記で定義するような培養培地上に接種する前に事前に希釈するか
または事前に濃縮する。
の試料を栄養寒天培養培地上で、希釈するか、または1つ以上の濃度相に供して
おく。この栄養寒天培養培地は、PIPLCによって特異的に切断される合成色
素原基質(5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシ
トールまたはその塩の1つ)、血液誘導体(血清のような)、粉状薬剤(カオリ
ンまたはシリカのような)、リステリア・イヴァノヴィによっては代謝され得る
が、リステリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物(好ま
しくはキシロース)、場合によってはpH指示薬(特にフェノールレッドのよう
な)および抗菌剤または抗真菌剤を含有する。リステリア・モノサイトジェネス
の存在は、そのコロニーの特徴的な着色によって決定される。
ではない。
オイノシトール この培地のg/lでの組成は培地1の組成と同一であるが、培地2はさらに3
00mg/lのアンモニウム塩形態の5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリル
ホスファチジルミオイノシトール(B−7404 5−ブロモ−4−クロロ−3
−インドリルミオイノシトール−1−イルホスフェートアンモニウム塩、Bio
synth Switzerland)を含有する。
l/ディッシュの割合で分配する。
0のトリプトンペプトンおよび8.5/1000の塩化ナトリウムから作製する
)中で希釈し;106〜107細胞/mlの懸濁物を得る。
ディッシュを用いる単離によって接種を実施する。ディッシュを37℃でインキ
ュベートする。24時間および48時間インキュベートした後、ディッシュを読
み取る。読み取りは、各々の培地において各々の株によって形成されるコロニー
の色の観察からなる。得られた結果を表Iに示す。
選択補助物は、細菌バチルス・セレウスおよびスタフィロコッカス・オーレウス
(培養培地において潜在的に偽陽性)の阻害を可能にする。
オイノシトール 培地2は実施例1に記載のとおりである。 培地3:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール 培地3の組成は上記の培地2の組成と同一であるが、この培地は300mg/
l(培地2)ではなく、150mg/lのアンモニウム塩形態の5−ブロモ−4
−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシトールを含有する。 培地4:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血液 培地4の組成は培地3の組成と同一であるが、この培地はさらに50ml/l
のウマ血液を含有する。培地の製造のために、血液を熱感受性成分として扱う。
培地5:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血清 培地5の組成は培地4の組成と同一であるが、この培地は血液ではなく50m
l/lのウマ血清を含有する。 培地6:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血清+シリカ 培地6の組成は培地5の組成と同一であるが、この培地はさらに20g/lの
シリカ(非熱感受性成分)を含有する。 各培地の製造を実施例1に記載のように実施する。
のとおりであった。得られた結果を表IIに示す。
病原性リステリア種と非病原性リステリアとの間の良好な区別を得るためには、
血液、血清または血清とシリカとの混合物を用いて培養培地を作製することが望
ましいことを示す。培地への血液、血清または血清とシリカとの混合物の添加は
、陽性PIPLCコロニーの青色着色を強力に増感し、従って培養培地における
5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオイノシトールの濃
度の非常に有意な低下を可能にする。
イヴァノヴィを含む)との間の識別 培養培地の製造 培地6:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血清+シリカ 培地6は実施例2に記載のとおりである。 培地7:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血清+シリカ+キシロース 培地7の組成はこの実施例に記載の培地6の組成と同一であるが、この培地は
さらに10g/lのキシロース(培地の製造のために熱感受性成分であるとみな
される成分)を含有する。 培地8:基本培地+5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミ
オイノシトール+血清+シリカ+キシロース+フェノールレッド 培地8の組成は上記の培地7の組成と同一であるが、この培地はさらに80m
g/lのフェノールレッド(非熱感受性成分)を含有する。 各培地の製造を実施例1に記載のように実施する。
のとおりであった。得られた結果を表IIIに示す。
株)。 (+):着色指示薬変色。コロニー周囲で黄色円(+キシロース株)。
培地に添加することによって、リステリア・モノサイトジェネスとリステリアの
全ての他の種(特にリステリア・イヴァノヴィ)との間の区別が可能になったこ
とを示す。
Pasteur Paris)から供給されるリステリア属214株を培地8上
で試験した。
のとおりであった。
ノヴィの全ての株が同定され、偽陽性の結果は同定されなかった。
Claims (16)
- 【請求項1】 リステリア属の病原性細菌の直接同定を可能にする栄養寒天
培養培地であって、該培地はホスファチジルイノシトール特異的ホスホリパーゼ
C(PIPLC)によって特異的に切断される合成色素原基質を含有する培養培
地。 - 【請求項2】 色素原基質が5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホス
ファチジルミオイノシトールまたはその塩の1つである、請求項1記載の培養培
地。 - 【請求項3】5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジルミオ
イノシトールまたはその塩の1つが100〜500mg/lの濃度、好ましくは
150〜300mg/lの濃度である、請求項2記載の培養培地。 - 【請求項4】 血液またはその誘導体の1つ、好ましくは血清をさらに含有
する、請求項1〜3のいずれか1項記載の培養培地。 - 【請求項5】 血液またはその誘導体の割合が培養培地1リットル当り20
〜80ml、より特定すると40〜60ml、好ましくは50mlである、請求
項4記載の培養培地。 - 【請求項6】 カオリンまたはシリカのような粉状薬剤をさらに含有する、
請求項1〜5のいずれか1項記載の培養培地。 - 【請求項7】 粉状薬剤の濃度が5〜30g/l、好ましくは15〜25g
/lである、請求項6記載の培養培地。 - 【請求項8】 リステリア・イヴァノヴィによっては代謝され得るが、リス
テリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物をさらに含有す
る、請求項1〜7のいずれか1項記載の培養培地。 - 【請求項9】 リステリア・イヴァノヴィによっては代謝され得るが、リス
テリア・モノサイトジェネスによっては代謝され得ない炭水化物がキシロースで
ある、請求項8記載の培養培地。 - 【請求項10】 炭水化物の濃度が5〜15g/lである、請求項8または
9記載の培養培地。 - 【請求項11】 pH指示薬、好ましくはフェノールレッドをさらに含有す
る、請求項1〜10のいずれか1項記載の培養培地。 - 【請求項12】 pH指示薬の濃度が50〜300mg/lである、請求項
11記載の培養培地。 - 【請求項13】 好ましくは塩化リチウム、塩酸アクリフラビン、ナリジク
ス酸、ポリミキシンB、セフォタン、硫酸コリスチン、ホスホマイシン、セフタ
ジジム、モキサラクタム、シクロヘキシミドおよびアムホテリシンBの中から選
択される1つ以上の抗菌剤および/または抗真菌剤をさらに含有する、請求項1
〜12のいずれか1項記載の培養培地。 - 【請求項14】 リステリア属の病原性細菌の同定方法であって: − リステリア属の病原性細菌を含有しそうな試料を、請求項1〜13のいずれ
か1項記載のPIPLC特異的色素原基質を含有する寒天培養培地上に接種する
工程、 − 該試料を接種した培養培地をインキュベートする工程、および − 基質の特徴的着色によってリステリア属の病原性細菌の存在を決定する工程
を包含する方法。 - 【請求項15】 病原性細菌を含有しそうな試料を請求項1〜13のいずれ
か1項記載の培養培地上に接種する前に事前に濃縮する、請求項14記載の方法
。 - 【請求項16】 5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスファチジル
ミオイノシトールまたはその塩の1つの、リステリア細菌の研究、単離、計数お
よび直接同定を可能にする寒天培養培地の製造のための使用。
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