JP2001045897A - ササ培養方法及び緑地形成方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【課題】 従来のササ培養方法は、順化期の移植後に光
合成を十分行えず成長が抑制されてしまうという問題点
があり、ササ培養体の光合成能力を活性化し、根の発達
を促進させて移植後の成長抑制を防ぎ、活着率を向上さ
せ、植栽作業を効率的に行うことができるササ培養方法
及び緑地形成方法を提供する。 【解決手段】 ササ培養体の成長期に無糖培地を用い、
成長期及び順化期にＣＯ _２濃度１５００μmol mol^-1以
上、ＰＰＦ１８０μmolm^-2 s^-1以上の環境条件とし、成
長期に支持材としてバーミキュライトを用いてササを培
養するササ培養方法としており、また、順化期に、複数
のポット部が２次元的に配列されたコンテナに培養体を
移植して栽培し、コンテナ毎植栽する緑地形成方法とし
ている。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、ササ苗を大量に生
産する植物組織培養を用いたササ培養方法及び緑地形成
方法に係り、特に順化期における移植後の成長抑制を防
いで活着率を向上させることができ、大面積の場所に迅
速に苗を植栽できるササ培養方法及び緑地形成方法を提
供する。

【０００２】

【従来の技術】従来、ササ苗生産は、自然環境下で、１
本の地下茎を数本に切り分けてその各々から苗を増殖さ
せる栄養増殖が行われている。切り分けに適した時期
は、気温が高くなり、地下茎が成長して定芽をつける頃
から定芽が地上に出るまでの間に行う必要があり、関東
地方では１１月から４月までが切り分けの時期となる。

【０００３】この方法では、増殖を年に１度しか行えな
いために苗の増殖速度が小さく（生産速度：年間約１０
０苗／ｍ²）、広大な面積に植栽するのに十分な数の苗
を供給することは困難である。

【０００４】そこで、ササ苗生産の別の方法として、植
物組織培養が提案されている。従来の植物組織培養（組
織培養）を用いたササ培養方法について図６を用いて説
明する。図６は、従来のササ培養方法を示す説明図であ
る。図６に示すように、ササの組織培養は、ササ組織片
からシュート塊を増殖させる増殖期、増殖したシュート
塊を分割して外植体として培養器内で成長させる成長
期、培養体を培養器外の環境に慣らしていく順化期の３
つの期間に分けられる。

【０００５】まず、増殖期には、環境条件をコントロー
ルできる培養室（人工気象器）１内にて、光源（白色蛍
光灯）２からの光量や温度、湿度等を適切に設定し、培
養室１内に設置した培養器３′内にて、糖と植物成長調
整物質である6-benzylaminopurine（ＢＡ）を添加した
液体培地を用いてササの地下茎を培養し、シュートを増
殖させてシュートの集合体（シュート塊）を生成する。
次に、植物成長調整物質であるindol-3-butyric acid
（ＩＢＡ）を添加した培地を用いてシュート塊を発根さ
せる。

【０００６】そして、発根したシュートの基部を分割し
て培養器３′に１つずつ植え付け、培養室１内に設置し
て成長させる。増殖期及び成長期に用いる培養器３′
は、換気用穴（換気穴）が１つ開けられたものを用いて
いる。培養室１内の環境条件は、大気中と同様のＣＯ_２
濃度（４００μmol mol^-1）で、光量は、光合成有効光
量子束（ＰＰＦ）１００μmol m^-2 s^-1の低光量として
いる。湿度（相対湿度）は７０〜８０パーセント程度で
ある。

【０００７】次に、培養器３′から取りだして培養土を
入れたポット（またはトレー）４に植え付け（移植）、
培養室１内にて更に成長させると共に培養器３′外の環
境に慣れさせる（順化期）。

【０００８】その後、培養体を培養室１の外にて栽培を
続け、外部環境に適応可能な大きさに成長した培養体を
所望の場所に植え付けて（定植）、緑地の形成を行う。
従来の緑地の形成方法は、培養した苗を１苗ずつポット
から手作業にて取りだして植え付けを行うようになって
いる。

【０００９】尚、植物組織培養の従来技術としては、平
成６年９月２０日公開の特開平６−２６１６４５号「培
養由来幼植物体の育成方法」（出願人：株式会社ナーサ
リーテクノロジー、発明者：瀬古往子他）がある。この
従来技術は、幼植物体の育苗の初期段階の終了時におけ
る二酸化炭素濃度が特定濃度以上となるように二酸化炭
素を育苗開始時に封入した閉鎖的気相空間内において幼
植物体を培養する培養由来幼植物体の育成方法であり、
これにより、特別な無菌空間や二酸化炭素を気相内に通
気する大がかりな装置を必要とせず、経済性、簡便性、
及び作業安全性に優れる植物苗を作出できるものであ
る。

【００１０】

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、上記従
来のササ培養方法によれば、培養体が、成長に必要な炭
素源を培地中に添加した糖に依存してしまうため、光合
成能力が発達せず、移植後に十分な光合成を行うことが
できずに、成長が抑制され、活着率が低下してしまうと
いう問題点があった。

【００１１】また、上記従来のササ培養方法によれば、
培養器に換気用穴が１つしか設けられていないために、
換気が不十分で培養器内の湿度が高く、培養体の葉のク
チクラワックス層が発達せず表皮が薄くなり、培養器外
に移植した後、低湿度環境に適応できずに培養体の成長
が抑制され、活着率が低下するという問題点があった。

【００１２】更に、従来のササ培養方法によれば、発根
を促進する植物成長物質を添加した液体培地を用いてい
るため、根の根毛が発達せず、順化期に培養土へ移植す
ると培養土中の水分を吸収することができず、成長が抑
制されたり枯死してしまい、活着率が低下するという問
題点があった。

【００１３】更にまた、従来の緑地形成方法では、培養
した苗を１つずつポットから取りだして手作業で植え付
けを行わなければならず、広範囲にわたって植栽を行う
場合には、膨大な労力と時間がかかるという問題点があ
った。

【００１４】本発明は上記実情に鑑みて為されたもの
で、移植後の枯死や成長抑制を防ぎ、活着率を向上させ
ることができるササ培養方法及び苗の植え付け作業の能
率を大幅に向上させることができる緑地形成方法を提供
することを目的とする。

【００１５】

【課題を解決するための手段】上記従来例の問題点を解
決するための本発明は、成長期に培地として糖無添加の
培地を用い、成長期及び順化期に、培養室内の二酸化炭
素濃度を１５００μmol mol^-1以上、光合成有効光量子
束（ＰＰＦ）を１８０μmol m^-2 s^-1以上の環境条件下
で培養体を培養するササ培養方法としており、培養体が
成長に必要な糖を培地に依存できないため必然的に光合
成能力が活性化し、また、二酸化炭素濃度及び光量をサ
サの光合成に適した環境条件として更に光合成を促進す
ることにより、培養土への移植後も、培養体が順調に光
合成を行って成長を続けることができ、移植後の成長抑
制を防ぎ、活着率を向上させることができる。

【００１６】本発明は、成長期に、培地と、培養体を支
持する支持材としてのバーミキュライトとの混合物を入
れた培養器中にてササを培養するササ培養方法としてい
るので、バーミキュライトの粒子間に適度な大きさの空
隙ができ、植物成長調整物質を添加しなくても、ササ培
養体の根及び根毛が発達して、培養土に移植した後も十
分吸水することができ、移植後の成長抑制や枯死を防
ぎ、活着率を向上させることができる。

【００１７】また、本発明は、培養器内の湿度が培養室
内の湿度に近くなるように換気される培養器にて培養体
を培養するササ培養方法としているので、培養器内の湿
度を低く抑えることにより葉の表皮層を発達させ、気孔
の開閉能力及び蒸散作用を活性化することができる。

【００１８】更に、本発明は、順化期に、培養体を培養
可能な凹部を２次元的に複数配列したコンテナに培養体
を移植して栽培し、培養体の成長後、培養体をコンテナ
ごと所望の場所に植栽する緑地形成方法としているの
で、苗を一つずつ栽培ポットから取り出して植え付ける
作業が不要となり、一度に広い面積にササを植栽するこ
とができ、植栽作業の効率を大幅に向上させることがで
きる。

【００１９】

【発明の実施の形態】本発明の実施の形態について図面
を参照しながら説明する。本発明に係るササ培養方法
は、培養体の成長期に無糖培地を用い、成長期及び順化
期に、ササの光合成に適した環境条件にて培養すること
により、培養体自身の光合成能力を活性化し、また、支
持材としてバーミキュライトを用いて発根を促進し、更
に培養器の換気口を増やすことにより培養器内の換気を
促進して低湿度環境とし、順化期における成長抑制を防
ぎ、活着率を向上させることができるものである。

【００２０】また、本発明に係る緑地形成方法は、順化
期のササ培養体を栽培する際に、育苗用のポットを２次
元的に複数つなげてマット状または多段式に形成した大
型のコンテナにて栽培しておき、苗が十分成長したらコ
ンテナごと所望の場所に植え付けるようにしており、植
え付けに要する労力と時間を大幅に低減することができ
るものである。

【００２１】本発明の実施の形態に係るササ培養方法
（本培養方法）について図１を用いて具体的に説明す
る。図１は、本発明の実施の形態に係るササ培養方法
（本培養方法）を示す説明図である。図１に示すよう
に、本培養方法の基本的な流れは従来のササ培養方法と
同様であり、光源（白色蛍光灯）２により人工光を照射
可能な培養室１内に設置した培養器３内にて増殖させた
ササのシュート塊を分割し、培養器３内で成長させ、そ
の後培養器３外の環境に順化させるものである。そし
て、本方法は、増殖期の培養方法は従来と同様である
が、成長期と順化期の培養方法を従来と異なるものとし
ている。

【００２２】本培養方法では、成長期において、培養体
が成長に必要な炭素を培養体自身の光合成にて取得する
独立栄養となるように、培地として無糖培地を用いるも
のとした点が特徴となっている。それと共に、ササの光
合成能力を最大限に引き出して成長を促進させるため
に、ササ培養体の純光合成速度が最大となる環境条件を
求め、成長期及び順化期には求められた環境条件にて培
養を行うようにした点が特徴となっている。環境条件に
ついては後で詳細に説明する。

【００２３】これにより、炭素源は空気中のＣＯ_２とな
り、ササは、ＣＯ_２から光合成により同化を行うことに
なるため光合成能力が活性化され、また、環境条件を純
光合成速度が最大となるように整えることにより、糖が
添加されていなくても植物体の成長に必要な炭素は十分
まかなえるものである。そして、培養器３内にある時期
から十分な光合成を行うことにより、順化期において培
養器３外に移植した場合でも、それまでと同様に光合成
を行って成長を続けることができるものである。

【００２４】更に、本培養方法では、成長期において、
成長や発根を促進するための植物成長調整物質は添加せ
ず、その代わりに支持材としてバーミキュライトを用い
る点が特徴となっている。バーミキュライトは、ヒル石
を焼成して薄板状に剥離したもので、培養土の肥持ちや
水はけをよくするために用いられる調整用土であり、珪
酸含有量が多く、珪酸植物であるササの支持材として適
当であると考えられる。

【００２５】本培養方法では、バーミキュライト中に液
体培地を注入したものを培養器３内に入れ、これに培養
体を植え付けて培養する。バーミキュライトを支持体に
用いた培地は通気性がよく、根の発達に必要な空気を十
分含むことができるため、根の成長が促進され、根毛も
発達することができるものである。そのため、順化期に
おいて培養土に移植しても発達した根毛から十分な吸水
を行うことができ、成長抑制や枯死は発生しないもので
ある。

【００２６】更にまた、本培養方法では、成長期におい
て用いる培養器３の換気用穴を増やして培養器３内の換
気を促進し、培養器３内の湿度を培養室１内と同程度に
低く保つ点が特徴となっており、葉の表皮組織を低湿度
に耐え得るよう十分発達させると共に、蒸散作用を活性
化させることができるものである。

【００２７】ここで、ササ植物体の純光合成速度が最大
となる環境条件を求める方法について具体的に説明す
る。純光合成速度に影響を与える因子であるＣＯ_２濃度
と光合成有効光量子束（ＰＰＦ）を変えて、ササ植物体
の純光合成速度を算出し、最適なＣＯ_２濃度及びＰＰＦ
を求めた。ササとしてはオロシマチク（Pleioblastus p
ygmaea Miff.,cv.Orosimatiku）を用いた。

【００２８】まず、培養器内外のＣＯ_２濃度をガスクロ
マトグラフを用いて測定し、純光合成速度を［数１］
（富士原ら，１９８７）で算定した。測定は、無糖培
地、気温２５℃、湿度８０％の条件で行った。

【００２９】

【数１】

【００３０】［数１］において、Ｐnは純光合成速度、
Ｋは換算係数（μmol cm^-3）、Ｎは培養器の換気回数
（ｈ^-1）、Ｖは培養器の空気容積（cm³）、Ｃoutは培養
器外のＣＯ_２濃度（μmol mol^-1）、Ｃinは培養器内の
ＣＯ_２濃度（μmol mol^-1）である。

【００３１】更に、さまざまなＰＰＦにおける純光合成
速度（Ｐn）と培養器内のＣＯ_２濃度（Ｃin）との関係
を［数２］のパラメータを最小二乗法で算定することに
より求める。

【００３２】

【数２】

【００３３】［数２］において、ＰmはＣＯ_２飽和点に
おけるＰn、ｆcはＣＯ_２補償点におけるＣin−Ｐn曲線
の傾き、ＣcはＣＯ_２補償点を示している。

【００３４】解析結果を図２〜図５に示す。図２は、光
合成有効光量子束（ＰＰＦ）３２（μmol m^-2 s^-1）に
おける培養器内のＣＯ_２濃度と純光合成速度との関係を
示すグラフ図であり、図３は、ＰＰＦ１０２（μmol m
^-2 s^-1）における培養器内のＣＯ_２濃度と純光合成速度
との関係を示すグラフ図であり、図４は、ＰＰＦ１８０
（μmol m^-2 s^-1）における培養器内のＣＯ_２濃度と純
光合成速度との関係を示すグラフ図であり、図５は、Ｐ
ＰＦ３２０（μmol m^-2 s^-1）における培養器内のＣＯ
_２濃度と純光合成速度との関係を示すグラフ図である。

【００３５】図２〜図５に示すように、いずれのＰＰＦ
においても、ＣＯ_２濃度５００μmol mol^-1以下におい
ては呼吸によるＣＯ_２放出が光合成によるＣＯ_２同化を
上回っているため、見かけ上の光合成速度はほとんど０
であり、５００μmol mol^-1を過ぎるとＣＯ_２濃度に応
じて光合成速度も増加していく。そして、ＣＯ_２濃度が
２０００μmol mol^-1以上になると、純光合成速度の増
加率が減少し、次第に頭打ちになる可能性が大きいこと
がわかる。従って、ＣＯ_２濃度は２０００μmol mol^-1
以上とすれば、どのようなＰＰＦ条件であっても、当該
ＰＰＦ条件においてほぼ最大の光合成速度が得られると
考えられる。

【００３６】ちなみに、従来の環境条件である大気中の
ＣＯ_２濃度は約４００μmol mol^-1であり、成長期のサ
サ培養体の場合、この濃度では、ＰＰＦの値に関わら
ず、呼吸によるＣＯ_２放出が光合成によるＣＯ_２同化を
上回っている。

【００３７】また、ＰＰＦを大きくした場合も純光合成
速度は大きくなるが、ＰＰＦ１８０μmol m^-2 s^-1とＰ
ＰＦ３２０μmol m^-2 s^-1でのＣＯ_２濃度２０００μmol
mol^{- 1}における純光合成速度を比較すると、あまり大き
な差がないことがわかる。高いＰＰＦを得るためには照
明コストがかかることを考慮すると、ＰＰＦが１８０μ
mol m^-2 s^-1以上でも光合成能力は十分活性化できると
考えられる。

【００３８】そこで、本方法では、成長期におけるササ
の光合成を促進するためには、ＣＯ _２濃度１５００μmo
l mol^{- １}以上、ＰＰＦ１８０μmol m^-2 s^-1以上を適切
な環境条件とし、ＣＯ_２濃度２０００μmol mol^{- １}±１
０％、ＰＰＦ２００μmol m^{- 2} s^-1±１０％を最適な環
境条件とした。以下に示す本方法の実験例では、ＣＯ _２
濃度２０００μmol mol^{- １}、ＰＰＦ２００μmol m^-2 s
^-1の条件を用いている。

【００３９】次に、本発明のササ培養方法を用いた実験
例について説明する。まず、従来と同様の方法によりサ
サシュート塊を生成し、基部を分割して複数のシュート
小塊（生体重：0.9-1.0g）を得る。得られたシュート小
塊を培地を入れた培養器に植え付け、人工気象器内で成
長期の培養を行う。比較のために半数は本発明の方法で
培養し、残りの半数は従来の培養方法にて培養した。

【００４０】ここで、表１を用いて本発明のササ培養方
法の環境条件を従来の培養方法と比較しながら説明す
る。表１は、従来のササ培養方法と本方法の成長期にお
ける環境条件を示した説明図である。

【００４１】

【表１】

【００４２】表１に示すように、本発明の培養方法で
は、培地としては糖を添加しないＭＳ（Murashige and
Skoog 1962）培地を用い、成長及び発根を促進する植物
成長調整物質を無添加とし、支持材としてバーミキュラ
イトを用いる。支持材のバーミキュライトは、５mm四方
の目のふるいでふるった後、６０℃の恒温乾燥機内に２
４時間置いたものを１培養器あたり１０gずつ入れる。
バーミキュライトを入れた培養器にＭＳ培地を４０mlず
つ分注した後、培養器ごと１２１℃で２０分間の蒸気加
圧滅菌する。

【００４３】本培養方法に用いられる培養器３は、ポリ
カーボネート製容器であり、培養器３の側面上部には直
径１０mmの穴が３つ開けられ、通気性フィルタが貼られ
ている。通気性フィルタは微生物を通さず通気のみを行
って、培養器３内の無菌状態を保持できるものである。

【００４４】換気用穴を多くすることにより、換気量を
増やして培養器内の湿度を低下させ、また、光合成によ
って消費されたＣＯ_２を培養器３外（培養室１内）から
供給することができるものである。換気を良好にするに
は、換気用穴を複数にするほか、換気用穴を大きくす
る、ファンを回す等が考えられる。

【００４５】そして、クリーンベンチ内でシュート小塊
を各培養器に１つずつ植え付け（培養開始０日目）、培
養室内で４０日間培養する。培養室１内の環境条件はＣ
Ｏ_２濃度２０００μmol mol^-1、ＰＰＦは２００μmol m
^-2 s^-1とする。但し、急激な環境の変化を避けるため
に、培養開始０日目から３日目までは培養器の換気用穴
は１つ、ＰＰＦは１００μmol m^-2 s^-1とし、４日目以
降上記の条件とする。４日目以降の環境条件は、ササの
特性によって決まる最適条件であり、純光合成速度を最
大にするものである。

【００４６】そして、本培養方法と従来の方法とを比較
するために、成長期４０日目における成長の具合と光合
成能力とを調べた。結果は後で説明する。

【００４７】次に、順化期に移行して、培養開始４０日
目にササ培養体を培養器から取りだして、根を水で洗っ
た後、市販の培養土（ヤンマー農機（株）、ナプラ用
土）を充填したトレー（１９０×１４５×２５mm)に移
植する（移植後０日目）。移植後ササ培養体を表１に示
した環境条件下で２５日間成長させる。毎日トレー当た
り４０mlの灌水をする。但し、順化期においてはバーミ
キュライトは用いないものとする。このようにして、本
発明の実施の形態に係るササ培養方法が行われるもので
ある。

【００４８】一方、従来のササ培養方法では、成長期に
おいては、有糖ＭＳ培地を用い、培養器の換気用穴１
つ、ＰＰＦ１００μmol m^-2 s^-1、ＣＯ_２無施用、支持
材無しの環境条件としており、順化期においては、培養
土を用い、ＰＰＦ１００μmolm^-2 s^-1、ＣＯ_２無施用
（４００μmol mol^-1）の環境条件で培養している。

【００４９】また、本培養方法において、培養苗が緑地
形成に用いられることを考慮して、培養体を移植する際
に、トレーではなくより大型のコンテナに移植すること
も可能である。コンテナは、例えば、培養体を移植可能
なポット状の凹部（ポット部）が２次元的に複数配列さ
れており、順化期の培養体を各ポット部に移植して成長
させるものが考えられる。

【００５０】ここで、コンテナは紙又は木又は布又は金
網若しくはこれらの組み合わせから成るもので、なるべ
く土壌内で分解される材料及び構造とすることが好まし
い。また、ササは根が横に張るので、横方向に隙間の多
い構造とすれば根の成長を阻害することが少なくより好
ましいと考えられる。

【００５１】そして、本発明の実施の形態に係る緑地形
成方法は、このコンテナを用いたものであり、コンテナ
内で培養した苗が十分成長した場合には、植栽しようと
する場所にコンテナ毎取り付ければよい。このようにす
れば、ポットから１つずつ苗を取り出す必要が無く、能
率的に植栽作業を行うことができるものである。また、
コンテナの材質や形状を機械化に対応できるものにすれ
ば、植栽作業を機械化することができ、植栽作業を大幅
に効率化することができるものである。

【００５２】また、植栽場所が斜面等の場合には、コン
テナにおけるポット部を多段式に配列して、段の角度を
斜面の角度に合わせて自由に変えられるようにしておく
ことも可能である。

【００５３】次に、上述した成長期の実験結果について
表２を用いて説明する。表２は、成長期４０日目におけ
るササ培養体のシュートと根の乾物重及び純光合成速度
を表したものである。試験区Ａ区は本培養方法により培
養された培養体、試験区Ｃ区は従来の方法により培養さ
れた培養体の結果である。シュート乾物重及び根乾物重
はシュート及び根の成長量を示すものであり、純光合成
速度は光合成能力を示すものである。

【００５４】

【表２】

【００５５】表２に示すように、本培養方法を施したＡ
区の培養体の純光合成速度は、従来の方法であるＣ区の
培養体の約１０倍と有意に大となった。また、根乾物重
はＡ区の培養体がＣ区の培養体の１５倍と、有意に大と
なった。このことから、光合成能力を活性化し、植物成
長調整物質を添加せず、バーミキュライトを支持材とし
て用いた本培養方法は、十分根の発達を促進することが
明らかとなった。但し、シュート乾物重は従来の方法に
よるＣ区の方が大であり、成長期におけるシュート成長
量は従来の培養方法のほうが大きい傾向がある。

【００５６】次に、順化期の実験結果について表３を用
いて説明する。表３は、移植後２５日目における増加総
生体重を示すものである。ここで、増加総生体重は、移
植後２５日目における培養体あたりの総生体重から移植
後０日目における培養体あたりの総生体重を差し引いた
ものである。

【００５７】

【表３】

【００５８】従来の方法によるＣ区の培養体の増加総生
体重は−９０mgであり、移植直後に比べて総生体重が減
少しており、移植後に成長が著しく阻害されていること
がわかる。これに対して、本培養方法を施したＡ区では
５０８０mg増加しており、移植によって成長が阻害され
ることなく順調に生育を続けたことが認められる。ま
た、シュートの成長も、成長期（移植直後）にはＣ区の
方が良好であったが、移植後２５日目にはＡ区がＣ区を
上回っていることが認められた。

【００５９】すなわち、本培養方法では、成長期から光
合成能力が活性化しており、それに加えて根の根毛や葉
のクチクラワックス層が十分発達したために、移植後も
根からの水分吸収や葉からの蒸散作用が阻害されること
なく活発に作用して、十分に光合成を行うことができ、
これにより移植後も順調に成長を続けたと考えられるも
のである。

【００６０】本発明の実施の形態に係るササ培養方法
（本培養方法）によれば、ササ培養体の成長期に無糖培
地を用い、成長期及び順化期に、ＣＯ_２濃度２０００μ
mol mol^-1以上、ＰＰＦ１８０μmol m^-2 s^-1以上の環境
条件にて培養するようにしているので、光合成に適した
環境条件を与えることによりササ培養体の光合成能力を
活性化して、培地からの糖に依存しない独立栄養の確立
を促進することができ、順化期における移植後の成長抑
制を防ぐことができ、活着率を向上させることができる
効果がある。

【００６１】また、本培養方法によれば、支持材として
バーミキュライト用いているので、液体培地のみの場合
と比較して、培地中に空気を含む空隙が多いため、根の
成長が促進されると共に、根毛が十分発達し、順化期に
土壌へ移植した後も十分水分吸収を行うことができ、活
着率を向上させることができる効果がある。

【００６２】更に、本培養方法によれば、成長期におけ
る培養器の換気用穴を３個に増やしたので、培養器内の
換気が促進され、湿度が高くなりすぎないため、葉のク
チクラワックス層を発達させ、蒸散作用を促進させ、気
孔開閉能力を向上させることができる効果がある。

【００６３】従って本培養方法によれば、植物体自身の
水分吸収／蒸散能力、気体の吸収／排出能力を活性化す
ることにより、光合成機能を向上させることができ、順
化期に培養器外に移植した後も成長が抑制されず、順調
に成長することができる効果がある。

【００６４】また、本培養方法によれば、培養体の順化
期の活着率を向上させることができるので、ササ苗の生
産速度を向上させることができ（４３２苗／ｍ²／
年）、ササ苗を大量に生産して大面積に植栽できる効果
がある。

【００６５】また、本発明の実施の形態に係る緑地形成
方法によれば、順化期の培養体を、苗を２次元的に複数
植え付け可能なコンテナに移植して、コンテナ内にて複
数の苗を育苗し、苗が成長した場合には、コンテナ毎所
望の場所に取り付けて緑地を形成するようにしており、
苗の植え付け作業の能率を大幅に向上させることがで
き、緑地形成を容易に行うことができる効果がある。

【００６６】

【発明の効果】本発明によれば、成長期及び順化期に、
培地として糖無添加の培地を用い、培養室内の二酸化炭
素濃度を１５００μmol mol^-1以上、光合成有効光量子
束（ＰＰＦ）を１８０μmol m^-2 s^-1以上の環境条件下
で培養するササ培養方法としているので、培養体が成長
に必要な糖を培地に依存できないため必然的に光合成能
力が活性化し、また、二酸化炭素濃度及び光量をササの
光合成に適した環境条件として更に光合成を促進するこ
とにより、培養土への移植後も、培養体が順調に光合成
を行って成長を続けることができ、移植後の成長抑制を
防ぎ、活着率を向上させることができる効果がある。

【００６７】本発明によれば、成長期に、培地と、培養
体を支持する支持材としてのバーミキュライトとの混合
物を入れた培養器中にてササを培養するササ培養方法と
しているので、バーミキュライトの粒子間に適度な大き
さの空隙ができ、植物成長調整物質を添加しなくても、
ササ培養体の根及び根毛が発達して、培養土に移植した
後も十分吸水することができ、移植後の成長抑制や枯死
を防ぎ、活着率を向上させることができる効果がある。

【００６８】本発明によれば、培養器内の湿度が培養室
内の湿度に近くなるように換気される培養器にて培養体
を培養するササ培養方法としているので、培養器内の湿
度を低く抑えることにより葉の表皮層を発達させ、気孔
の開閉能力及び蒸散作用を活性化することができる効果
がある。

【００６９】本発明によれば、順化期に、培養体を培養
可能な凹部を２次元的に複数配列したコンテナに培養体
を移植して栽培し、培養体の成長後、培養体をコンテナ
ごと所望の場所に植栽する緑地形成方法としているの
で、苗を一つずつ栽培ポットから取り出して植え付ける
作業が不要となり、一度に広い面積にササを植栽するこ
とができ、植栽作業の効率を大幅に向上させることがで
きる効果がある。

【図面の簡単な説明】

【図１】本発明の実施の形態に係るササ培養方法（本方
法）を示す説明図である。

【図２】光合成有効光量子束（ＰＰＦ）３２（μmol m
^-2 s^-1）における培養器内のＣＯ_２濃度と純光合成速度
との関係を示すグラフ図である。

【図３】ＰＰＦ１０２（μmol m^-2 s^-1）における培養
器内のＣＯ_２濃度と純光合成速度との関係を示すグラフ
図である。

【図４】ＰＰＦ１８０（μmol m^-2 s^-1）における培養
器内のＣＯ_２濃度と純光合成速度との関係を示すグラフ
図である。

【図５】ＰＰＦ３２０（μmol m^-2s^-1）における培養器
内のＣＯ_２濃度と純光合成速度との関係を示すグラフ図
である。

【図６】従来のササ培養方法を示す説明図である。

【符号の説明】

１…培養室、 ２…光源、 ３…培養器、 ４…ポット

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き Ｆターム(参考） 2B022 AB20 BA01 BA04 BA13 BA21 BA23 DA01 DA15 DA19 EA01 2B030 AA02 AB03 AD06 CD14 CD28 4B065 AA89X BB31 BC34 BC36 BC39 BC48 CA53

Claims (6)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 ササを植物組織培養にて増殖させる増殖
   期と、培養室に設置され、栄養成分を含む培地が注入さ
   れた培養器中にて前記増殖で得られた培養体を成長させ
   る成長期と、前記成長した培養体を培養土に移植して前
   記培養器外の環境に順応させる順化期とにわたってササ
   を培養するササ培養方法において、 前記成長期に前記培地として糖無添加の培地を用い、前
   記成長期及び前記順化期に、前記培養室内の環境条件
   を、二酸化炭素濃度を１５００μmol mol^-1以上、光合
   成有効光量子束（ＰＰＦ）を１８０μmol m^-2 s^-1以上
   として、前記環境条件下で前記培養体を培養することを
   特徴とするササ培養方法。
2. 【請求項２】 成長期及び順化期に、培養室内の環境条
   件を二酸化炭素濃度を２０００μmol mol^-1以上、光合
   成有効光量子束（ＰＰＦ）を２００μmol m^-2s^-1以上と
   して、前記環境条件下で前記培養体を培養することを特
   徴とする請求項１記載のササ培養方法。
3. 【請求項３】 成長期に、培地と、培養体を支持する支
   持材としてのバーミキュライトとの混合物を入れた培養
   器中にてササを培養することを特徴とする請求項１又は
   請求項２記載のササ培養方法。
4. 【請求項４】 成長期に、培養器内の湿度が培養室内の
   湿度に近くなるように換気される培養器にて培養体を培
   養することを特徴とする請求項１乃至請求項３記載のサ
   サ培養方法。
5. 【請求項５】 請求項１乃至請求項４記載のササ培養方
   法により培養されたササを植栽する緑地形成方法であっ
   て、 順化期に、培養体を培養可能な凹部を２次元的に複数配
   列したコンテナに培養体を移植して栽培し、前記培養体
   の成長後、前記培養体を前記コンテナごと所望の場所に
   植栽することを特徴とする緑地形成方法。
6. 【請求項６】 前記コンテナを紙又は木又は布又は金網
   若しくはこれらの組み合わせを用いて形成したことを特
   徴とする請求項５記載の緑地形成方法。