FR3107064A1 - Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson - Google Patents
Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson Download PDFInfo
- Publication number
- FR3107064A1 FR3107064A1 FR2001242A FR2001242A FR3107064A1 FR 3107064 A1 FR3107064 A1 FR 3107064A1 FR 2001242 A FR2001242 A FR 2001242A FR 2001242 A FR2001242 A FR 2001242A FR 3107064 A1 FR3107064 A1 FR 3107064A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- additive
- protease
- drink
- protein
- wine
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 239000000654 additive Substances 0.000 title claims abstract description 137
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 title claims abstract description 117
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 113
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 113
- 239000004365 Protease Substances 0.000 claims abstract description 75
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 claims abstract description 73
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 claims abstract description 61
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 32
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 claims abstract description 21
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 claims abstract description 17
- 230000032683 aging Effects 0.000 claims abstract description 13
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 10
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 claims description 108
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 claims description 53
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 claims description 32
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 30
- 150000002989 phenols Chemical class 0.000 claims description 25
- 108010051210 beta-Fructofuranosidase Proteins 0.000 claims description 20
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 20
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 claims description 20
- 235000011073 invertase Nutrition 0.000 claims description 19
- 239000001573 invertase Substances 0.000 claims description 18
- 235000013824 polyphenols Nutrition 0.000 claims description 16
- 102100024023 Histone PARylation factor 1 Human genes 0.000 claims description 15
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 claims description 15
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 claims description 15
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 claims description 15
- 150000008442 polyphenolic compounds Chemical class 0.000 claims description 15
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 claims description 15
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 claims description 15
- 101710130006 Beta-glucanase Proteins 0.000 claims description 14
- 229930002877 anthocyanin Natural products 0.000 claims description 13
- 235000010208 anthocyanin Nutrition 0.000 claims description 13
- 239000004410 anthocyanin Substances 0.000 claims description 13
- 150000004636 anthocyanins Chemical class 0.000 claims description 13
- 108010059892 Cellulase Proteins 0.000 claims description 12
- 101710121765 Endo-1,4-beta-xylanase Proteins 0.000 claims description 12
- 102000004139 alpha-Amylases Human genes 0.000 claims description 12
- 108090000637 alpha-Amylases Proteins 0.000 claims description 12
- 229940024171 alpha-amylase Drugs 0.000 claims description 12
- 229940106157 cellulase Drugs 0.000 claims description 12
- 101001047783 Homo sapiens Histone PARylation factor 1 Proteins 0.000 claims description 11
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 claims description 8
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 claims description 7
- 229930003935 flavonoid Natural products 0.000 claims description 7
- 150000002215 flavonoids Chemical class 0.000 claims description 7
- 235000017173 flavonoids Nutrition 0.000 claims description 7
- 108010005843 Cysteine Proteases Proteins 0.000 claims description 6
- 102000005927 Cysteine Proteases Human genes 0.000 claims description 6
- 229920001503 Glucan Polymers 0.000 claims description 6
- 230000001747 exhibiting effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 5
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 3
- 229920002101 Chitin Polymers 0.000 claims description 2
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 claims description 2
- 235000014101 wine Nutrition 0.000 description 79
- 235000019419 proteases Nutrition 0.000 description 49
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 28
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 23
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 17
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 14
- XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N cysteine Natural products SCC(N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 12
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 12
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 11
- 241000219095 Vitis Species 0.000 description 10
- 235000009754 Vitis X bourquina Nutrition 0.000 description 10
- 235000012333 Vitis X labruscana Nutrition 0.000 description 10
- 235000014787 Vitis vinifera Nutrition 0.000 description 10
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 10
- 235000020097 white wine Nutrition 0.000 description 10
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 8
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 8
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 8
- 229910000278 bentonite Inorganic materials 0.000 description 8
- 239000000440 bentonite Substances 0.000 description 8
- SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N bentoquatam Chemical compound O.O=[Si]=O.O=[Al]O[Al]=O SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 8
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 8
- PXUQTDZNOHRWLI-OXUVVOBNSA-O malvidin 3-O-beta-D-glucoside Chemical compound COC1=C(O)C(OC)=CC(C=2C(=CC=3C(O)=CC(O)=CC=3[O+]=2)O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)=C1 PXUQTDZNOHRWLI-OXUVVOBNSA-O 0.000 description 7
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 230000009471 action Effects 0.000 description 6
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 6
- 238000002803 maceration Methods 0.000 description 6
- 238000009928 pasteurization Methods 0.000 description 6
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 6
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 5
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 5
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 5
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 5
- 230000006920 protein precipitation Effects 0.000 description 5
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 5
- REFJWTPEDVJJIY-UHFFFAOYSA-N Quercetin Chemical compound C=1C(O)=CC(O)=C(C(C=2O)=O)C=1OC=2C1=CC=C(O)C(O)=C1 REFJWTPEDVJJIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- YTMNONATNXDQJF-UBNZBFALSA-N chrysanthemin Chemical compound [Cl-].O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=CC2=C(O)C=C(O)C=C2[O+]=C1C1=CC=C(O)C(O)=C1 YTMNONATNXDQJF-UBNZBFALSA-N 0.000 description 4
- 238000011161 development Methods 0.000 description 4
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 4
- 108010005335 mannoproteins Proteins 0.000 description 4
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 4
- 239000008213 purified water Substances 0.000 description 4
- 240000006439 Aspergillus oryzae Species 0.000 description 3
- 235000002247 Aspergillus oryzae Nutrition 0.000 description 3
- 241001249696 Senna alexandrina Species 0.000 description 3
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 3
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 3
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 3
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- 150000003436 stilbenoids Chemical class 0.000 description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 3
- HBKZHMZCXXQMOX-YATQZQGFSA-N (2s,3r,4s,5s,6r)-2-[2-(3,4-dihydroxy-5-methoxyphenyl)-5,7-dihydroxychromenylium-3-yl]oxy-6-(hydroxymethyl)oxane-3,4,5-triol;chloride Chemical compound [Cl-].OC1=C(O)C(OC)=CC(C=2C(=CC=3C(O)=CC(O)=CC=3[O+]=2)O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)=C1 HBKZHMZCXXQMOX-YATQZQGFSA-N 0.000 description 2
- 108010004032 Bromelains Proteins 0.000 description 2
- RKWHWFONKJEUEF-GQUPQBGVSA-O Cyanidin 3-O-glucoside Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=CC2=C(O)C=C(O)C=C2[O+]=C1C1=CC=C(O)C(O)=C1 RKWHWFONKJEUEF-GQUPQBGVSA-O 0.000 description 2
- 229930192627 Naphthoquinone Natural products 0.000 description 2
- CCQDWIRWKWIUKK-QKYBYQKWSA-O Petunidin 3-O-beta-D-glucopyranoside Natural products OC1=C(O)C(OC)=CC(C=2C(=CC=3C(O)=CC(O)=CC=3[O+]=2)O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)=C1 CCQDWIRWKWIUKK-QKYBYQKWSA-O 0.000 description 2
- ZVOLCUVKHLEPEV-UHFFFAOYSA-N Quercetagetin Natural products C1=C(O)C(O)=CC=C1C1=C(O)C(=O)C2=C(O)C(O)=C(O)C=C2O1 ZVOLCUVKHLEPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HWTZYBCRDDUBJY-UHFFFAOYSA-N Rhynchosin Natural products C1=C(O)C(O)=CC=C1C1=C(O)C(=O)C2=CC(O)=C(O)C=C2O1 HWTZYBCRDDUBJY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000013405 beer Nutrition 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- ZYGHJZDHTFUPRJ-UHFFFAOYSA-N benzo-alpha-pyrone Natural products C1=CC=C2OC(=O)C=CC2=C1 ZYGHJZDHTFUPRJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000019835 bromelain Nutrition 0.000 description 2
- 235000019987 cider Nutrition 0.000 description 2
- 238000005352 clarification Methods 0.000 description 2
- 235000001671 coumarin Nutrition 0.000 description 2
- 150000004775 coumarins Chemical class 0.000 description 2
- 230000007123 defense Effects 0.000 description 2
- 230000008260 defense mechanism Effects 0.000 description 2
- XENHPQQLDPAYIJ-PEVLUNPASA-O delphinidin 3-O-beta-D-glucoside Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=CC2=C(O)C=C(O)C=C2[O+]=C1C1=CC(O)=C(O)C(O)=C1 XENHPQQLDPAYIJ-PEVLUNPASA-O 0.000 description 2
- 238000011037 discontinuous sequential dilution Methods 0.000 description 2
- 230000001516 effect on protein Effects 0.000 description 2
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 2
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 2
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 2
- 235000015203 fruit juice Nutrition 0.000 description 2
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 2
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 229930013032 isoflavonoid Natural products 0.000 description 2
- 150000003817 isoflavonoid derivatives Chemical class 0.000 description 2
- 235000012891 isoflavonoids Nutrition 0.000 description 2
- MWDZOUNAPSSOEL-UHFFFAOYSA-N kaempferol Natural products OC1=C(C(=O)c2cc(O)cc(O)c2O1)c3ccc(O)cc3 MWDZOUNAPSSOEL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 150000002791 naphthoquinones Chemical class 0.000 description 2
- 238000004848 nephelometry Methods 0.000 description 2
- ZZWPMFROUHHAKY-OUUKCGNVSA-O peonidin 3-O-beta-D-glucoside Chemical compound C1=C(O)C(OC)=CC(C=2C(=CC=3C(O)=CC(O)=CC=3[O+]=2)O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)=C1 ZZWPMFROUHHAKY-OUUKCGNVSA-O 0.000 description 2
- 150000007965 phenolic acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000009048 phenolic acids Nutrition 0.000 description 2
- 125000001997 phenyl group Chemical group [H]C1=C([H])C([H])=C(*)C([H])=C1[H] 0.000 description 2
- 230000007065 protein hydrolysis Effects 0.000 description 2
- 235000005875 quercetin Nutrition 0.000 description 2
- 229960001285 quercetin Drugs 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 210000005253 yeast cell Anatomy 0.000 description 2
- 208000035404 Autolysis Diseases 0.000 description 1
- 241000722885 Brettanomyces Species 0.000 description 1
- 206010057248 Cell death Diseases 0.000 description 1
- 108010022172 Chitinases Proteins 0.000 description 1
- 102000012286 Chitinases Human genes 0.000 description 1
- 101000749287 Clitocybe nebularis Clitocypin Proteins 0.000 description 1
- 101000767029 Clitocybe nebularis Clitocypin-1 Proteins 0.000 description 1
- 229940094664 Cysteine protease inhibitor Drugs 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- 229930091371 Fructose Natural products 0.000 description 1
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 1
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 102000001554 Hemoglobins Human genes 0.000 description 1
- 108010054147 Hemoglobins Proteins 0.000 description 1
- 108090000526 Papain Proteins 0.000 description 1
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 1
- 239000004721 Polyphenylene oxide Substances 0.000 description 1
- 101000730001 Rattus norvegicus Advillin Proteins 0.000 description 1
- 241000235070 Saccharomyces Species 0.000 description 1
- 206010048625 Skin maceration Diseases 0.000 description 1
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 description 1
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 235000019568 aromas Nutrition 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- RQFQJYYMBWVMQG-IXDPLRRUSA-N chitotriose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](N)[C@H](O)O[C@H](CO)[C@H]1O[C@H]1[C@H](N)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)N)[C@@H](CO)O1 RQFQJYYMBWVMQG-IXDPLRRUSA-N 0.000 description 1
- 239000004927 clay Substances 0.000 description 1
- 230000002860 competitive effect Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 230000001186 cumulative effect Effects 0.000 description 1
- 230000001627 detrimental effect Effects 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 230000006862 enzymatic digestion Effects 0.000 description 1
- 238000005189 flocculation Methods 0.000 description 1
- 230000016615 flocculation Effects 0.000 description 1
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 1
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 description 1
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 229930182470 glycoside Natural products 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N iodoacetamide Chemical compound NC(=O)CI PGLTVOMIXTUURA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 238000009533 lab test Methods 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 238000009329 organic farming Methods 0.000 description 1
- 229940055729 papain Drugs 0.000 description 1
- 235000019834 papain Nutrition 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000570 polyether Polymers 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 230000029983 protein stabilization Effects 0.000 description 1
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 description 1
- 229940024999 proteolytic enzymes for treatment of wounds and ulcers Drugs 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 230000028043 self proteolysis Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 229940083575 sodium dodecyl sulfate Drugs 0.000 description 1
- 235000019333 sodium laurylsulphate Nutrition 0.000 description 1
- 230000006641 stabilisation Effects 0.000 description 1
- 238000013112 stability test Methods 0.000 description 1
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 108090000346 stem bromelain Proteins 0.000 description 1
- 235000021286 stilbenes Nutrition 0.000 description 1
- 150000001629 stilbenes Chemical class 0.000 description 1
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 125000001174 sulfone group Chemical group 0.000 description 1
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 1
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 1
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 1
- 230000008685 targeting Effects 0.000 description 1
- 239000003643 water by type Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
- C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
- C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
- C12G1/0203—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12H—PASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
- C12H1/00—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
- C12H1/003—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Physiology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Non-Alcoholic Beverages (AREA)
Abstract
La présente demande a pour objet un additif pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit additif comprenant au moins une protéase active, caractérisé en ce qu’en présence dudit additif le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié. La présente demande a également pour objet un procédé pour augmenter la stabilité protéique dans une boisson à base de moût végétal, ledit procédé étant dépourvu de toute étape de chauffage. Figure à publier avec l’abrégé : Fig. 1
Description
La présente invention a pour objet un additif pour améliorer la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal. La présente invention a également pour objet un procédé pour évaluer et améliorer la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal. L’invention se situe donc dans le domaine des procédés de préparation et de conservation de boissons à base de moût végétal, notamment le vin.
Etat de la technique
Les protéines sont à l’origine d’une instabilité dans les boissons à base de moût végétal, telles que le vin, la bière, le cidre et les jus de fruit. En effet, lors de variations brutales de température et/ou lors du stockage, selon la durée et les conditions de celui-ci, les protéines thermosensibles présentes dans la boisson peuvent floculer ou précipiter, occasionnant l’apparition d’un trouble dans la boisson qui peut être préjudiciable à sa consommation. En œnologie, l’expression «casse protéique» désigne le phénomène lors duquel les protéines de la boisson précipitent et provoquent l’apparition d’un trouble. Dans le cas du vin, l’instabilité protéique est favorisée par l’augmentation de la température du vin lors du transport ou du stockage. Présentes à faibles concentrations (de 15 à 300 mg.L-1) dans les vins blancs, les protéines s’agrègent et précipitent. Les risques afférant à l’instabilité protéique dépendent d’un grand nombre de facteurs tels que le cépage, Sauvignon et Gewurztraminer étant plus susceptibles d’instabilité, l’origine géographique et le millésime. Les vins issus de l’agriculture biologique sont également exposés. En France, 34% des vins blancs souffrent d’instabilité protéique.
Le traitement usuel, notamment pour stabiliser les vins blancs ou rosés, est l’élimination des protéines du vin au moyen d’une argile présentant des propriétés colloïdales, la bentonite. L’un des principaux inconvénients liés à l’utilisation de la bentonite est la perte d’arômes, fortement dommageable pour les qualités organoleptiques du vin. D’autre part, le mode de fonctionnement de la bentonite vis-à-vis des protéines instables mène à de fortes pertes volumétriques: les pertes volumétriques associées à l’emploi de bentonite sont estimées à près de 200 millions d’euros dans le monde, soit l’équivalent de la production annuelle néo-zélandaise de vin blanc (2,85 millions d’hectolitres en 2017).
De nombreuses alternatives à la bentonite ont été testées sans qu’aucune ne réponde de façon satisfaisante aux attentes des producteurs de vin. Parmi les alternatives possibles à la bentonite, l’emploi de protéases conduisant à l’hydrolyse des liaisons peptidiques des protéines pour les décomposer en différents peptides et acides aminés de moindre taille, a connu un vif intérêt. L’efficacité partielle de protéases fongiques utilisées de manière isolée a été montrée avec deux enzymes protéolytiques de type Apergillopepsine I et II (Marangon et al, «Degradation of white wine haze proteins by Argillopepsin I and II during juice flash pasteurization», Food Chemistry, Vol. 135, issue 3, p. 1157-65, 2012). L’effet stabilisant de ces protéases est dû au fait qu’elles hydrolysent les protéines du vin, réduisant ainsi leur précipitation lors de changements thermiques. Une flash pasteurisation à 70-75°C pendant une minute, suivie d’un refroidissement, sont nécessaires, préalablement à l’ajout de 1 à 3 g/hl de protéases. Cette étape de chauffage permet notamment de dénaturer les protéines, le changement de la conformation des protéines les rendant ainsi plus accessibles aux protéases. Selon une autre approche, l’addition de protéases suivie d’une flash pasteurisation a également été testée.
Sous l’impulsion des attentes des consommateurs, les protéases d’origine végétale constituent une voie préférentielle pour les boissons alimentaires. La papaïne et la bromélaïne purifiées commerciales ont été utilisées pour la stabilisation protéique du vin (Benucci et al, «Effect of free and immobilised stem bromelain on protein haze in white wine», Australian Journal of Grape and Wine Research, Vol. 20, issue 3, pp 347-352, 2014), la bromélaïne étant préalablement immobilisée sur un support constitué par du chitosan. Les résultats montrent que l’activité de l’enzyme est peu maîtrisée et aboutit à une réduction partielle et limitée du taux de protéines.
La chitine-glucane est principalement utilisée sur les vins blancs pour la clarification des moûts et des vins, ainsi que le traitement préventif des casses protéiques. Le chitosan est majoritairement utilisé pour la réduction de micro-organismes indésirables de types Brettanomyces. Ces deux composés précipitent et sédimentent, entraînant les composés indésirables. Utilisés de manière simultanée, ils facilitent le débourbage et la clarification des moûts et des vins.
La mannoprotéine MP32, d’un poids moléculaire de 31.8 KDa, est issue d’un fragment d’invertase de S.cerevisiae qui serait généré lors de l’autolyse des lies de levures par l’action combinée de béta-glucanase de la paroi cellulaire des levures et de protéase vacuolaire. La production industrielle de MP32 serait possible par digestion enzymatique de la paroi cellulaire de levures grâce à une béta-glucanase commerciale, la GlucanexTM. Des essais laboratoires ont été réalisés et les mannoprotéines extraites ont permis une réduction totale de l’instabilité protéique d’un vin à ~40NTU (Néphélometric Turbidity Unit) mais le mécanisme de protection n’est pas connu. (V. Moine et D. Dubourdieu, «An invertase fragment responsible for improving the protein stability of dry white wines» 1999, E. Waters «A Saccharomyces mannoprotein that protects wine from protein haze» 1994). Le procédé de production de la protéine MP32 est cependant extrêmement coûteux, l’utilisation de cette protéine en tant que telle n’est donc pas viable économiquement.
Actuellement, il n’existe donc aucune solution industrielle satisfaisante alternative à la bentonite, et aucune protéase n’agit de manière efficace sur le vin dans les conditions œnologiques sans nécessiter de traitement thermique de type flash pasteurisation.
Il existe donc un besoin d’un additif permettant de résoudre le problème de l’instabilité protéique dans les boissons à base de moût végétal. Il existe également le besoin de disposer d’un moyen simple permettant d’évaluer la probabilité d’instabilité protéique, et de disposer d’un procédé simplifié d’augmenter la stabilité protéique des boissons, en particulier un procédé ne requérant pas d’étape de chauffage de la boisson.
La présente invention répond à ces objectifs. Les inventeurs ont en effet mis au point un groupe d’additifs efficaces permettant d’améliorer la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal. De façon surprenante, un additif selon l’invention comprenant au moins une protéase et caractérisé en ce qu’en sa présence, le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié, améliore très sensiblement la stabilité protéique dans une boisson à base de moût végétal pour un coût économiquement raisonnable et sans nécessiter de flash pasteurisation. Par rapport aux compositions de l’état de l’art, un additif selon l’invention permet de réduire jusqu’à 80 ou 90 % du trouble lié à la casse protéique, tel que mesuré dans un test classique de trouble à la chaleur effectué sur du vin blanc, qui représente la boisson typiquement sensible à la casse protéique. Ce résultat est démontré avec plusieurs échantillons différents de vins particulièrement sensibles à la casse protéique.
Un additif selon l’invention présente l’originalité d’inhiber la précipitation d’au moins une partie des protéines présentes dans ladite boisson sans toutefois entraîner l’hydrolyse des protéines de la boisson. Plus particulièrement, l’activité protéase de l’additif est différente d’une activité de type protéase à cystéine.
La présente invention a également pour objet un procédé pour améliorer la stabilité protéique, à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit procédé étant dépourvu de toute étape de chauffage de ladite boisson et comprenant l’ajout d’un additif comprenant une protéase, l’additif étant caractérisé en ce qu’en sa présence, le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié. L’invention a également pour objet l’utilisation d’un additif comprenant au moins une protéase active et tel qu’en présence dudit additif le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié, pour améliorer la stabilité protéique, à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal.
Selon un premier objet, l’invention concerne un additif pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit additif exerçant une activité inhibitrice de la précipitation d’au moins une partie des protéines présentes dans ladite boisson et comprenant au moins une protéase active, et caractérisé en ce qu’en sa présence le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié.
Par «stabilité protéique» on entend le fait que les protéines présentes dans la boisson ne précipitent pas et restent solubles, c’est-à-dire qu’on n’observe pas ou peu de précipité ou de trouble de la boisson notamment dû à la floculation des protéines dans la boisson. Ce trouble peut être évalué par toute méthode connue de mesure de la turbidité, observée à l’œil nu ou par une technique de néphélométrie qui mesure la teneur de particules en suspension d’un milieu, et dont le résultat est exprimé en unités de turbidité néphélométrique, soit UTN ou NTU (Nephelometry Turbidity Unit) en anglais.
Par «augmentation de la stabilité protéique» on entend la diminution de l’apparition du trouble, caractérisée notamment par la comparaison du trouble dans la boisson, traitée et non traitée, tel qu’observé dans un test à la chaleur au cours duquel ladite boisson est soumise à une température élevée puis caractérisée pour sa turbidité.
Par «profil protéique» on entend la représentation des différentes protéines présentes dans un échantillon et séparées en fonction de leur masse molaire. Une telle représentation peut notamment être obtenue grâce à une analyse par électrophorèse en conditions dénaturantes, notamment de type SDS-PAGE(Sodium-Dodecyl-Sulfate PolyAmide Gel Electrophoresis) et/ou par électrophorèse automatique mettant en oeuvre un dispositif de type LabChip®. La modification de la masse moléculaire apparente d’une ou plusieurs protéines indique notamment la dégradation protéolytique de ladite ou lesdites protéines.
Un additif selon la présente invention améliore la stabilité protéique, autrement dit il inhibe de la précipitation d’au moins une partie des protéines présentes dans l’échantillon, sans toutefois entraîner une modification du profil protéique, témoin de la dégradation ladite ou lesdites protéine.
Selon un premier aspect particulier, un additif selon l’invention comprend au moins une protéase active. Selon cet aspect, par «protéase active» on entend une enzyme présentant une activité hydrolytique des liaisons peptidiques d’une protéine, mesurable in vitro selon des techniques bien connues par un homme du métier. Plus particulièrement, un additif selon l’invention comprend au moins une protéase active et est caractérisé en ce qu’en sa présence, le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié. En d’autres termes, un additif selon l’invention présente une activité de type protéase cependant, en présence d’un échantillon d’une boisson à base de moût végétal, l’hydrolyse des protéines de ladite boisson n’est pas observée, notamment par électrophorèse.
L’activité enzymatique d’une protéase d’un additif selon l’invention peut être caractérisée par tout moyen connu d’une personne du métier, comme par exemple un test de dégradation de l’hémoglobine pendant 1h, à pH 3 et à 37°C.
Selon un aspect plus particulier, l’activité enzymatique de ladite protéase active dans un additif selon l’invention n’est pas inhibée par un inhibiteur de protéases à cystéines, comme par exemple l’iodoacétamide à une concentration de 1 ou 5 mM, et/ou cette activité enzymatique n’est pas améliorée en présence de cystéine.Selon cet aspect particulier, une protéase active d’un additif selon l’invention n’est pas une protéase à cystéine.
Selon un aspect particulier, un additif selon l’invention comprend au moins une protéase d’origine eucaryote ou procaryote, plus particulièrement une protéase d’origine fongique ou végétale. Plus particulièrement, un additif selon l’invention comprend une préparation enzymatique d’origine fongique ou végétale, cette préparation enzymatique présentant au moins une activité de type protéase.
Parmi les protéases présentes dans une composition d’origine fongique, on peut citer les protéases présentes dans une préparation enzymatique d’origine fongique, plus particulièrement une préparation enzymatique obtenue à partir de Aspergillus oryzae, telle que notamment le produit vendu sous la dénomination de Sumizyme LPL®, sous forme granulaire ou sous forme de poudre. Ce produit présente une activité protéase et les activités béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase. Selon cet aspect, un additif selon l’invention comprend un additif fongique obtenu à partir de Aspergillus oryzae présentant une activité protéase.
Selon un premier aspect particulier, un additif selon l’invention comprend une protéase active et est caractérisé en ce qu’en sa présence le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié, ledit additif présente en outre au moins une activité enzymatique choisie parmi les suivantes : béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase. La présence de chacune de ces activités enzymatiques est aisément caractérisable par une personne du métier, suivant des techniques classiques.
Selon un autre aspect particulier, un additif selon l’invention comprend une protéase active et au moins un oligosaccharide ou un polyoside. Plus particulièrement, un additif selon l’invention comprend i) une protéase active et présente en outre au moins une activité enzymatique choisie parmi les suivantes : béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase, et ii) au moins un oligosaccharide ou un polyoside.
Selon cet aspect, par «oligosaccharide» et «polyoside» on entend respectivement un oligomère ou un polymère formé de plusieurs oses, notamment fructose, galactose, glucose et/ou mannose, liés par une liaison glycosidique alpha ou bêta. Parmi les oligosaccharides et les polyosides, on peut citer le chitosan, les oligosides de chitosan et la chitine-glucane. Selon un aspect encore plus particulier, un additif selon l’invention comprend au moins une protéase active et présente une activité béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et/ou invertase, et au moins un oligosaccharide ou un polyoside, choisi parmi le chitosan et les oligomères de chitosan.
Selon un autre aspect particulier, un additif selon l’invention comprend une protéase active et un composé phénolique, comprenant un ou plusieurs cycles benzéniques portant une ou plusieurs fonctions hydroxyles, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols. Parmi les polyphénols, on peut citer les acides phénoliques, les coumarines, les naphtoquinones, les stilbénoïdes, les flavonoïdes, les isoflavonoïdes et les anthocyanes. Parmi les anthocyanes, on peut citer: la chrysanthémine (ou cyanidine-3-glucoside), le delphinidine-3-glucoside, le pétunidine-3-glucoside, le péonidine-3-glucoside, le malvidine-3-glucoside.
Plus particulièrement, un additif selon cet aspect de l’invention comprend i) une protéase active et présente en outre au moins une activité enzymatique choisie parmi les suivantes : béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase, et ii) au moins un composé phénolique, comprenant un ou plusieurs cycles benzéniques portant une ou plusieurs fonctions hydroxyles, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols, plus particulièrement un compose choisi parmi les acides phénoliques, les coumarines, les naphtoquinones, les stilbénoïdes, les flavonoïdes, les isoflavonoïdes et les anthocyanes, encore plus particulièrement un composé choisi parmi la chrysanthémine (ou cyanidine-3-glucoside), le delphinidine-3-glucoside, le pétunidine-3-glucoside, le péonidine-3-glucoside, le malvidine-3-glucoside.
Selon un troisième aspect particulier, un additif selon l’invention comprend au moins une protéase active, au moins un oligosaccharide ou un polyoside et au moins un composé phénolique, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols. Plus particulièrement, un additif selon l’invention comprend i) une protéase active et présente en outre au moins une activité enzymatique choisie parmi les suivantes : béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase, ii) au moins un oligosaccharide ou un polyoside et iii) un composé phénolique, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols.
Selon un autre aspect particulier, un additif selon l’invention comprend en outre une composition comprenant une mannoprotéine ou un fragment d’invertase. Dans un additif selon l’invention, ladite mannoprotéine est de préférence la protéine MP32, une protéine de masse molaire 32 kDa qui correspond à un fragment d’invertase de Saccharomyces cerevisiae. Par «mannoprotéines» on entend des polysaccharidiques liés à des protéines, issus de levure et notamment obtenus industriellement par digestion des parois de levures, en particulier Saccharomyces cerevisiae.
Selon un aspect encore plus particulier, un additif selon l’invention comprend au moins : i) une protéase active, ii) du chitosan et/ou un oligoside de chitosan, et iii) un composé choisi parmi les polyphénols, de préférence un composé choisi parmi les anthocyanes, et présente en outre une activité béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et/ou invertase.
Chacun des éléments dudit additif peut être ajouté de façon séparée à ladite boisson lors de sa préparation, ou bien au moins deux des additifs sont mélangés puis ajoutés simultanément à la boisson.
Selon ledit premier aspect de l’invention, la concentration dans l’additif de chacun des éléments précédemment cités est compatible avec une concentration finale dans ladite boisson telle qu’indiquée ci-dessous: additif fongique entre 0,01 et 2000 g/hectolitre, de préférence entre 0,1 et 200 g/hectolitre, de préférence entre 1 et 200 g/hectolitre, de préférence 20 g/hectolitre; oligoside entre 1 et 200 g/hectolitre et de préférence entre 5 et 50 g/hectolitre; mannoprotéines entre 1 et 200 g/hectolitre et de préférence entre 25 et 50 g/hectolitre.
Par «boisson à base de moût végétal» on entend le moût, le vin, la bière, le cidre et les jus de fruit. Selon un aspect particulier, l’invention a pour objet un additif, un procédé et une utilisation destinés à améliorer la stabilité protéique dans le vin, de préférence le vin blanc et le vin rosé, produit à partir de tout cépage connu, et notamment Gewurtzstraminer et Sauvignon.
Selon un deuxième objet, l’invention concerne un procédé pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit procédé étant dépourvu de toute étape de chauffage de ladite boisson et comprenant au moinsune étape d’ajout à ladite boisson d’un additif comprenant au moins une protéase active, ledit additif étant caractérisé en ce qu’en sa présence le profil protéique de la boisson traitée n’est pas modifié.
Par «procédé dépourvu de toute étape de chauffage» on entend un procédé dépourvu d’un chauffage de type «flash pasteurisation», soit notamment un chauffage à une température comprise entre 65°C et 75°C pendant une courte durée, notamment de 1 minute, ou une étape de chauffage équivalente.
Selon un aspect particulier, l’invention concerne un procédé, dépourvu de toute étape de chauffage de ladite boisson, pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit procédé comprenant au moins i) une étape de mesure dans ladite boisson de la concentration d’au moins un composé phénolique, de préférence un polyphénol, de préférence un polyphénol choisi parmi les flavonoïdes, plus préférentiellement parmi les anthocyanes, et le cas échéant, une étape d’ajustement de la concentration dudit au moins un composé phénolique pour atteindre une valeur comprise entre 0,001 µg.L-1 et 10 000 mg.L-1 dans ladite boisson et ii) une étape d’addition à ladite boisson d’une composition comprenant au moins une protéase active, ledit additif étant caractérisé en ce qu’en sa présence le profil protéique de la boisson traitée n’est pas modifié.
Dans un procédé selon l’invention, la mesure de la concentration d’au moins un composé phénolique, de préférence un polyphénol, de préférence choisi parmi les flavonoïdes, plus préférentiellement choisi parmi les anthocyanes, est effectuée de préférence au stade du pressurage. Le cas échéant, l’étape d’ajustement de la concentration dudit au moins un composé phénolique pour atteindre une valeur comprise entre 0,001 µg.L-1 et 10 000 mg.L-1 dans ladite boisson est effectuée après le pressurage ou pendant la phase de macération. De préférence, ledit composé phénolique est un anthocyane et sa concentration est ajustée pour atteindre une valeur comprise entre 0,001 µg/L et 10 000 mg/L, de préférence entre 0,1 µg.L-1 et 100 mg.L-1.
Selon un aspect particulier, un procédé selon l’invention comprend l’addition d’une composition comprenant une protéase active et/ou d’un oligosaccharide ou un polyoside. Plus particulièrement, un procédé selon l’invention comprend l’addition d’un oligosaccharide ou un polyoside et d’une composition comprenant une protéase active. Encore plus particulièrement, un procédé selon l’invention comprend l’addition d’un oligosaccharide ou un polyoside, et d’une composition comprenant une protéase active et présentant au moins une autre activité enzymatique telle que béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase. Dans un procédé selon l’invention, ladite composition comprenant une protéase active est notamment choisie parmi les compositions d’origine fongique comprenant une protéase active et éventuellement présentant au moins une autre activité enzymatique telle que béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase, une telle composition est notamment la Sumizyme LPL®.
Dans un procédé selon l’invention, le ou les composés sont ajoutés à dans ladite boisson à une concentration finale respective de: composition comprenant une protéase active entre 1 et 200 g/hectolitre et de préférence 20 g/hectolitre; oligoside entre 1 et 200 g/hectolitre et de préférence entre 5 et 50 g/hectolitre; mannoprotéine entre 1 et 200 g/hectolitre et de préférence entre 25 et 50 g/hectolitre.
Dans un procédé selon l’invention, le ou les composés phénoliques sont ajoutés à dans ladite boisson à une concentration finale respective de: chrysanthémine entre 1 et 500 microgrammes/litre, de préférence entre 50 et 300 microgrammes/litre et de préférence 100 microgrammes/litre; quercétine entre 1 et 10.000 microgrammes/litre, de préférence entre 50 et 5.000 microgrammes/litre et de préférence 2.500 microgrammes/litre
Dans un procédé selon l’invention, ladite étape d’ajustement de la concentration d’au moins un composé phénolique peut être réalisée de différentes manières, et notamment : l’augmentation de la durée de macération dudit moût végétal au cours de la préparation de ladite boisson, l’addition audit moût d’au moins une enzyme dont l’activité conduit à l’augmentation de la biodisponibilité dudit au moins un composé phénolique, et/ou l’addition audit moût d’une composition comprenant au moins un composé phénolique. L’homme du métier choisira une ou plusieurs de ces possibilités d’ajustement de la concentration dudit composé phénolique.
Dans un procédé selon l’invention, ladite étape d’ajustement de la concentration d’au moins un composé phénolique peut être réalisée de différentes manières. Un moyen possible est d’augmenter la durée de la macération pelliculaire, le temps de pressurage et/ou l’utilisation d’enzymes lors de la macération. L’addition audit moût d’au moins une enzyme dont l’activité conduit à l’augmentation de la biodisponibilité dudit composé phénolique consiste en l’addition d’une enzyme traditionnellement utilisée pour la macération des vins blancs et rosés, utilisée directement sur la vendange lors du pressurage ou lors d’une étape de macération, à une dose de 1 à 10g/ 100 kg de vendange. L’addition audit moût végétal d’une composition comprenant au moins un composé phénolique est effectuée de préférence lors de l’étape de macération. L’homme du métier choisira une ou plusieurs de ces possibilités d’ajustement de la concentration dudit composé phénolique.
Selon un aspect particulier, l’invention a pour objet un procédé comprenant l’addition à un moût végétal ou à une boisson à base de moût végétal d’un additif comprenant au moins : i) une première composition comprenant au moins une protéase active en combinaison avec au moins un oligosaccharide ou un polyoside, et/ou ii) une deuxième composition comprenant au moins un composé phénolique, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols.
Selon un troisième objet, l’invention concerne l’utilisation pour augmenter la stabilité protéique, dans une boisson à base de moût végétal, à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, d’un additif ou d’une composition comprenant au moins une protéase active, caractérisé en ce qu’en présence dudit additif le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié. Plus particulièrement, l’invention concerne l’utilisation d’un additif ou d’une composition comprenant un additif comprenant au moins une protéase active, caractérisé en ce qu’en présence de cet additif le profil protéique de ladite boisson n’est pas modifié. Plus particulièrement, l’invention a pour objet l’utilisation d’un additif ou d’une composition comprenant au moins une protéase active, et au moins l’un des éléments suivants: i) un oligosaccharide ou un polyoside, ii) un composé phénolique, de préférence un composé choisi parmi les polyphénols, iii) une mannoprotéine, ledit additif ou composition présentant éventuellement en outre au moins une activité enzymatique telle que béta-glucanase, cellulase, xylanase, alpha-amylase et invertase.
Description des figures et modes de réalisation
D’autres avantages et caractéristiques apparaîtront à l’examen de la description détaillé d’un mode de réalisation nullement limitatif, et des dessins annexés, dans lesquels:
La Figure 1 représente le résultat de l’analyse par SDS-PAGE de différents échantillons avec, de gauche à droite: marqueur (1), GW519 (2), GW519 et cystéine (3), GW510 et additif fongique avec protéase (4), GW510, additif fongique avec protéase et cystéine (5), GW123B (6), GW123B et cystéine (7), GW123B et additif fongique avec protéase (8), GW123B et additif fongique avec protéase et cystéine (9).
Les Figures 2A et 2B représentent respectivement le résultat de l’analyse par électrophorèse automatique d’échantillons de vin Gewurztraminer GW123B ou GW519 traités par un additif fongique. Sur la figure 2A, les tracés représentent, de gauche à droite, GW123B (bleu), GW123B et cystéine (rouge), GW123B et additif fongique avec protéase (marron), GW123B, cystéine et additif fongique avec protéase (vert). Sur la figure 2B, les tracés représentent, de gauche à droite, GW519 (bleu), GW519 et cystéine (rouge), GW519 et additif fongique avec protéase (marron), GW519, cystéine et additif fongique avec protéase (vert).
Il est bien entendu que les modes de réalisation qui seront décrits par la suite ne sont nullement limitatifs. On pourra notamment imaginer des variantes de l’invention ne comprenant qu’une sélection de caractéristiques décrites par la suite isolées des autres caractéristiques décrites, si cette sélection de caractéristiques est suffisante pour conférer un avantage technique ou pour différencier l’invention par rapport à de l’état de la technique antérieur.
La présente invention se comprendra mieux à la lecture des exemples suivants, qui sont donnés pour illustrer l’invention et non pour en limiter la portée.
Exemple 1:
Développement
de compositions pour
améliorer la stabilité protéique des moûts végétaux.
Des tests de stabilité ont été réalisés sur deux cépages principaux connus pour leur forte instabilité protéique: 4 échantillons différents de cépages Gewurztraminer(GW) : GW 520, GW 219, GW 123 B et GW 519, et 2 échantillons de Sauvignon blanc: Sauvignon 1 et Sauvignon. Les vins sont stockés à 21°C. Les additifs sont évalués après fermentation, sur des vins n’ayant pas subi de traitement à la bentonite. Les vins ne subissent aucune flash fermentation au cours des tests.
L’électrophorèse SDS-PAGE permet de faire migrer des protéines sous l’influence d’un courant électrique, dans un gel de 14% de polyacrylamide, permettant la séparation des protéines selon leur poids moléculaire. Les résultats sont interprétables grâce à l’utilisation d’un marqueur contenant des protéines de 14,4 à 97 kDa. L’électrophorèse automatique consiste en la détermination des poids moléculaires de protéines par électrophorèse automatique grâce à l’appareil LabChip® GR de PerkinElmer. Les échantillons sont préparés selon le protocole décrit par le fournisseur et la réponse en fluorescence lors de la mesure permet de dénombrer les protéines présentes et leur concentration respective.
Le pH des vins a été rigoureusement noté mais n’a pas été ajusté après ajout des additifs. Il est connu que plus le pH de la boisson est élevé, plus les protéines précipitent. Il est connu que certaines molécules, comme la cystéine, sont connues pour leur capacité à modifier le pH du vin, selon leur concentration.
Les caractéristiques des échantillons sont définies dans le tableau 1 qui suit.
Les additifs sont préparés à partir de compositions sous forme granulaire ou de poudre, à partir desquelles une solution mère est préparée le jour du lancement de l’incubation. L’additif est ajouté au vin, une incubation sans agitation pendant 24 à 48h à 21°C est réalisée.
Les additifs testés sont les suivants:
L’additif fongique est une préparation enzymatique granulaire dérivée de Aspergillus oryzae, de type Sumizyme LPL®, cette préparation comprend une protéase active ainsi que d’autres activités enzymatiques, observées lorsque l’additif fongique est présent à une concentration minimale dans le vin, respectivement indiquée entre parenthèses: activités béta-glucanase (20 g/L) cellulase (20 g/L), xylanase (2 kg/L), alpha amylase (200 g/L) et invertase (20 g/L). Une solution mère de Sumizyme LPL® à 50 g.L-1 est préparée, puis diluée lors de l’inoculation pour une concentration finale, par exemple, de 20 g/hectolitre.
Le chitosan en poudre (Laffort) est préparé sous forme d’une solution mère à 5% W/v dans de l’eau purifiée, qui est ensuite diluée comme indiqué.
Le chitosan liquide pH 3,5 est préparé sous forme d’une solution mère à 5% W/v dans de l’eau purifiée, la solution est préparée à partir de chitosan en poudre dilué dans de l’HCl (solution d’HCl concentré 36%) jusqu’à obtention d’un pH 3,5 (MilliQ).
La chitine-glucane(Lallemand) est préparé sous forme d’une solution mère à 5% w/v dans de l’eau purifiée. (MilliQ).
La mannoprotéine MP32est préparée sous forme d’une solution mère de mannoprotéines MP32 selon le protocole décrit dans la demande internationale WO 97/49794 à 1% w/v dans de l’eau purifiée (MilliQ).
Selon les cas, de la cystéine en poudre est ajoutée, jusqu’à obtenir une concentration finale de 10 mM dans l’échantillon traité.
Un test à la chaleur permet de simuler l’effet du temps et des potentielles variations de température auxquelles un vin peut être exposé pendant son stockage et son transport. Pendant ce test, le vin est exposé à des températures définies pendant une durée précise, les tests sont réalisés en triplicata. Le test standard est réalisé sur des échantillons de 50 ml de vin. Les échantillons sont préalablement filtrés sur une membrane polyéther sulfone 0,45 micromètre. La turbidité, exprimée en NTU (Néphélometric Turbidity Unit) et mesurée avec un néphélomètre, est mesurée avant chauffage, puis les échantillons sont déposés comme suit: 1) flacons fermés pendant 30 min dans un bain-marie à 80°C, 2) flacons ouverts pendant 30 min à température ambiante, 3) flacons fermés pendant 15 min dans un bain-marie à 20°C. La turbidité est ensuite mesurée après ces différents chauffages.
Le calcul du ΔNTU = turbidité après chauffage – turbidité avant chauffage ainsi la valeur du trouble à la chaleur, représentative de l’instabilité protéique du vin. Un vin de type Sauvignon Blanc est considéré stable pour un ΔNTU = 2 NTU maximum. Le cépage Gewurztraminer (GW) étant plus difficile à stabiliser, les producteurs de vin GW se fixent une limite d’environ 10 à 20 NTU pour considérer le vin stable protéiquement.
Un test miniaturisé a été développé et permet de réduire les volumes de vins utilisés en utilisant, grâce à une gamme étalon établie préalablement, la lecture en cuve de 1.5mL de la Densité Optique à 600nm (OD600nm).
Les résultats sont exprimés en terme de % de diminution du trouble à la chaleur, soit(ΔNTU vin avec additif – ΔNTU vin témoin sans additif) / 100.
Le test à la chaleur est dans le monde de l’œnologie l’unique test qui permet de valider la stabilité d’un vin. Ainsi, dans le cadre de l’invention présentée, il a été utilisé comme test de référence pour démontrer l’efficacité de l’additif améliorant la stabilité protéique et réduisant donc le ΔNTU en comparaison avec le vin témoin. Le vin étant une matrice complexe et évoluant avec le temps, notamment chez un vin instable protéiquement, il est normal d’observer de légères variations entre plusieurs séries de données, d’où l’importance de systématiquement inclure un vin témoin (= n’ayant subi aucun traitement quel qu’il soit) à chaque série. Des analyses complémentaires ont été également réalisées pour notamment le suivi des protéines suite aux différents traitements appliqués, notamment par électrophorèse SDS-PAGE et électrophorèse automatique. Les résultats sont présentés dans le tableau 2 suivant.
Les résultats obtenus en présence d’additif fongique à 20 g/hL montrent que cet additif permet une réduction du trouble à la chaleur sur les échantillons Sauvignon, GW 519 et GW 123B. L’ajout de cystéine n’améliore pas significativement la performance de l’additif fongique, car on considère comme négligeable l’écart entre 15 et 13 NTU. Les protéases contenues dans l’additif fongique n’ont donc pas besoin du cofacteur cystéine pour réduire le trouble à la chaleur des vins testés. Il est reconnu que plus le pH du vin est haut, plus les protéines ont tendance à précipiter à la chaleur. L’ajout de cystéine, faisant baisser le pH de 0.3 unités de pH, ne conduit pas à une chute de la turbidité. Sans être lié par une théorie particulière, comme l’exemple 1 montre qu’après ajout de l’additif fongique le profil protéique de la boisson n’est pas modifié, la réduction de trouble à la chaleur observée en présence de l’additif fongique ne serait donc pas majoritairement lié à une hydrolyse des protéines du vin.
On note une différence d’activité en fonction des vins, et même au sein d’un même cépage. En effet une réduction de 58% du trouble à la chaleur est observée lors de l’ajout de l’additif fongique au GW 123B contre une réduction de 39% sur le GW 519. Cette différence s’explique par une variation, entre cépage et au sein d’un même cépage, de la répartition et de la concentration des protéines de défense, mais également d’autres paramètres pouvant rentrer en compte dans le mécanisme de précipitation à la chaleur.
Les échantillons des 2 GW ont été déposés sur gel SDS-PAGE (Figure 1), pour suivre l’évolution de l’ensemble des protéines du vin lors de la diminution du trouble à la chaleur après ajout de l’additif fongique. Dans la figure 1, les vins témoins des puits 2 et 6 ont un profil caractéristique des vins blancs avec notamment des bandes à 20, 32 et 70 KDa représentant respectivement les Thaumatin-Like Proteins, les glucanases et les Invertases. Les chitinases apparaissent de manière plus diffuse et étendue entre 10 et 35 kDa. Les puits 4 et 8 montrent bien que les protéines du vin sont inchangées lors de l’ajout de l’additif fongique. Des bandes supplémentaires correspondant aux protéines (enzymes) de la préparation fongique apparaissent.
Ces résultats montrent que l’additif fongique contenant plusieurs activités enzymatiques n’hydrolyse pas les protéines du vin. Il est envisageable que cet additif fongique agit probablement sur le mécanisme de précipitation des protéines du vin à la chaleur.
Les échantillons ont également été analysés par électrophorèse automatique (LabChip®) selon les instructions données par le fournisseur (Figures 2A et 2B). Dans le cas des deux vins, on observe une faible différence dans les profils protéiques entre vins témoins et vins traités avec l’additif fongique. L’additif fongique étant notamment composé de protéases il est normal de constater une très faible diminution des pics de fluorescence associés aux protéines du vin, observable sur le profil obtenu par LabChip® du GW 123B, cette diminution n’étant même pas visible sur gel SDS-PAGE.
Il apparaît clairement, en comparaison avec ce qui a pu être présenté dans des études précédentes, que la réduction de 57 et 39% du trouble à la chaleur sur les GW 123B et GW 519 respectivement n’est pas liée à une hydrolyse totale des protéines. Cela vient confirmer les résultats précédemment trouvés sur gel SDS-PAGE: l’additif fongique agit probablement sur le mécanisme de précipitation des protéines du vin à la chaleur.
Un deuxième essai a visé à évaluer pour 5 vins différents les additifs suivants: l’additif fongique, le chitosan sous forme de poudre réhydratée dans de l’eau MilliQ ou sous forme liquide acide (pH 3.5), la chitine-glucane et enfin la mannoprotéine MP32. Les résultats sont montrés dans le tableau 3 suivant.
Les résultats obtenus montrent une fois de plus une grande différence de comportement en fonction des vins. Chaque vin à une composition bien particulière, aussi bien au niveau des protéines, jusqu’à présent jugées responsables de l’instabilité des vins blancs et rosés à la chaleur, qu’au niveau des sucres, des tanins, des stilbènes et des anthocyanes, à titre d’exemple. Il existe un grand nombre de molécules entrant dans la composition du vin et certaines entrent en jeu dans le mécanisme de précipitation à la chaleur. D’un vin à l’autre ces molécules ne sont pas présentes dans les mêmes proportions.
Ainsi, l’additif fongique à 20 g/hL et la mannoprotéine MP32 à 25 g/hL ont un effet très important sur le Sauvignon menant respectivement à une réduction du trouble à la chaleur de 71 et 81%.
Le chitosan acidifié semble plus efficace que le chitosan pur, et mène à des réductions du trouble à la chaleur les plus importantes pour les échantillons GW 219 et 519. La chitine-glucane a un effet relativement similaire au chitosan pur.
Plusieurs gels électrophorèse SDS-PAGE ont été réalisés par vin (résultats non montrés). Dans chaque gel on note, pour les pistes correspondant aux conditions de test à la MP 32 et à la préparation fongique, l’apparition de bandes supplémentaires correspondant respectivement à la MP 32 et aux protéines de la préparation fongique.
D’autre part, si l’on compare chacune des pistes correspondant au vin traité avec l’un de ces additifs avec la piste correspondant au vin témoin, que le vin soit traité à l’additif fongique, au chitosan, à la chitine ou à la MP32, les bandes protéiques du vin demeurent inchangées. Chacun de ces additifs, ayant un degré d’action notable mais différent sur le trouble à la chaleur des vins, agit donc sur le mécanisme de précipitation des protéines à la chaleur, et non pas sur les protéines elles-mêmes.
Exemple 2: Développement d’additifs comprenant une ou plusieurs compositions
Les compositions décrites dans l’exemple 1 sont ensuite combinées pour tester leur effet sur la stabilité protéique à la chaleur dans différents échantillons de Gewurztraminer.
Les différents additifs et les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 4 suivant.
Les résultats montrent que, d’une manière générale, il est possible d’arriver à une stabilisation quasiment totale en combinant l’ensemble des additifs, notamment pour les GW 520 et GW 219. Le GW 219, malgré un profil protéique identique aux trois autres GW, semble avoir un comportement différent des autres vins, il semble notamment moins affecté par la MP32.
Si l’on regarde plus particulièrement la modalité «Chitosan pH 3.5 à 25 g/hL et additif fongique à 10g/hL», on peut noter que l’effet de ces deux additifs combinés (i.e 41 NTU pour le GW 520 et 57 NTU pour le GW 123B) n’est pas égal à la somme des effets des additifs utilisés séparément (36 + 32 = 67 NTU pour le GW 520 et 34 + 40 = 74 NTU pour le GW 123B). Il est envisageable que ces effets non cumulatifs s’expliquent, soit par des mécanismes d’actiondifférents mais liés: l’additif fongique bloquerait une molécule entrant en jeu dans le mécanisme de précipitation des protéines et inhiberait l’action de la MP32, ou l’inverse, soit par des mécanismes compétitifs: l’additif fongique bloquerait une molécule entrant en jeu dans le mécanisme de précipitation des protéines; la MP32 visant la même molécule deviendrait moins efficace de par l’indisponibilité partielle de sa cible. L’importance est de retenir ici une action conjuguée, même si elle n’est pas strictement additionnelle, de l’additif fongique et du chitosan.
Exemple 3: Développement d’additifs comprenant un oligomère du chitosan
Les compositions décrites dans l’exemple 1 sont ensuite combinées avec un oligomère du chitosan, pour comparer l’effet d’un oligomère du chitosan et du chitosan conforme au Codex oenologique sur la stabilité protéique à la chaleur dans différents échantillons de Gewurztraminer. Les oligomères de chitosan sont préparés à partir de GU3511 (Chitosan oligosaccharide, origine fongique, Glentham). Une solution mère à 5%w/v d’oligomère du chitosan est préparée et rajoutée directement dans le vin pour atteindre la concentration souhaitée. Les essais ont été réalisés sur les vins GW 123B et Sauvignon
Les résultats sont présentés dans le tableau 5 suivant.
Les résultats expérimentaux montrent que pour les combinaisons aux concentrations hautes (20 g/hL d’additif fongique et 25 g/hL de chitosan ou son oligomère), la réduction du trouble à la chaleur des deux vins lorsque les additifs sont utilisés de manière combinée est toujours inférieure (ou égale, dans un seul cas) à la réduction du trouble à la chaleur des additifs utilisés de manière isolée.
Ces essais confirment la série précédente et montrent que le chitosan et son oligomère ont une action semblable sur la réduction du trouble à la chaleur. Une concentration de 25 g/hL dans les deux cas est nécessaire pour observer un effet sur la réduction du trouble à la chaleur.
Les échantillons traités ont été analysés sur SDS-PAGE, les résultats montrent que quel que soit l’additif utilisé, aucune hydrolyse des proteines n’est observée dans l’échantillon.
Exemple 4: Développement d’additifs comprenant une ou plusieurs compositions
et un composé phénolique
Les différentes compositions décrites dans l’exemple 1 sont ensuite utilisées seules ou combinées, et additionnées d’une molécule choisie parmi les composés phénoliques issus de mécanisme de défense des plantes afin de tester leur effet sur la stabilité protéique à la chaleur vis-à-vis d’un échantillon de Gewurztraminer et d’un échantillon de Sauvignon. L’objectif était de voir l’influence de composés issus de mécanismes de défense des plantes (stilbénoïdes et flavonoïdes de type anthocyane, ou quercétine notamment) qui sont produits concomitamment aux protéines de défense. Ces molécules ont été testées aux doses décrites dans la littérature alors que leur teneur initiale dans les vins n’était pas connue. La chrysanthémine et le malvidine-3-glucoside (Sigma Aldrich) sont préparés de la façon suivante: des dilutions séquentielles sont réalisées à partir d’une solution mère préparée à 1 g/L pour chacun des produits, suivies de dilutions séquentielles pouvant aller jusqu’à 0.0001mg/L (dans le cas de la chrysanthémine) en fonction de la concentration visée dans le vin. De ce fait, si un vin contient naturellement en forte concentration l’un de ces composés, l’ajout de ladite molécule même à forte dose pourrait n’avoir aucun effet.
Les différents additifs et les résultats obtenus sont présentés dans les tableaux 6 à 8. Les tableaux 6 à 8 résument les effets observés.
Les résultats montrent que lorsqu’elle est utilisée seule, la chrysanthémine à 100 µg/L n’a aucun effet sur la turbidité du vin après chauffage. En revanche, lorsqu’elle est combinée à l’additif fongique elle augmente son efficacité de 10% vis-à-vis du GW 123B (de 49 à 60% de réduction du trouble à la chaleur), alors que lorsqu’elle est combinée au chitosan elle n’a aucun effet.
Le dépôt des échantillons traités sur SDS-PAGE montre qu’il n’y a aucune hydrolyse des protéines du vin y compris dans les modalités avec anthocyanes permettant une réduction du trouble à la chaleur.
Le malvidine-3-glucoside semble avoir un léger effet réducteur du trouble sur les 2 cépages. Dans le cas du GW 123 B, l’additif fongique permet de réduire de 59 % le trouble à la chaleur. Combiné au chitosan, qui seul, réduit de 44% le trouble à la chaleur, le trouble n’est pas davantage réduit. De même, le malvidine-3-glucoside combiné à l’additif fongique ne réduit pas plus le trouble à la chaleur. Par contre, l’ajout de malvidine-3-glucoside au couple additif fongique/chitosan permet d’atteindre 70% de réduction du trouble à la chaleur.
Dans le cas du Sauvignon, l’additif fongique permet de réduire de 45% le trouble à la chaleur. La combinaison au chitosan, qui seul, réduit de 53% le trouble à la chaleur, permet d’augmenter la réduction du trouble de manière significative à 77%. Le malvidine-3-glucoside combiné à l’additif fongique permet de réduire 55% du trouble, soit 10% de plus que l’additif fongique seul. Enfin, la combinaison des trois additifs permet d’atteindre 81% de réduction du trouble à la chaleur.
Claims (10)
- Additif pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit additif exerçant une activité inhibitrice de la précipitation d’au moins une partie des protéines présentes dans ladite boisson et comprenant au moins une protéase active, caractérisé en ce que ladite protéase n’est pas une protéase à cystéine et en ce que ledit additif présente en outre une activité enzymatique invertase.
- Additif selon la revendication 1, ledit additif présentant en outre au moins une activité enzymatique choisie parmi les suivantes : béta-glucanase, cellulase, xylanase et alpha-amylase.
- Additif selon la revendication 1 ou 2, ladite protéase active étant une protéase fongique.
- Additif selon l’une des revendications 1 à 3, ledit additif comprenant en outre au moinsi) un oligosaccharide ou un polyoside, et/ou ii) un composé phénolique, de préférence un composé choisi parmi les polyphenols.
- Additif selon la revendication 4, caractérisé en ce que ledit oligosacharide ou polyoside est choisi parmi : le chitosan, les oligosides de chitosan et la chitine glucane, et/ou ledit composé phénolique est un polyphénol choisi parmi les flavonoïdes, et de préférence parmi les anthocyanes.
- Additif selon l’une des revendications précédentes, ledit additif comprenant au moins une protéase fongique active, au moins un oligosaccharide ou un polyoside, et au moins un composé phénolique, de préférence un polyphénol, de préférence un composé choisi parmi les anthocyanes.
- Additif selon l’une quelconque des revendications précédentes, comprenant en outre une mannoprotéine et/ou un fragment d’invertase, ladite mannoprotéine étant de préférence la protéine MP32.
- Procédé pour augmenter la stabilité protéique à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, dans une boisson à base de moût végétal, ledit procédé étant dépourvu de toute étape de chauffage de ladite boisson et comprenant une étape d’ajout à ladite boisson d’un additif comprenant au moins une protéase active, ledit additif étant caractérisé en ce que ladite protéase n’est pas une protéase à cystéine.
- Procédé selon la revendication précédente, ledit procédé comprenant au moinsla mesure dans ladite boisson de la concentration d’au moins un composé phénolique, de préférence un polyphénol, de préférence un composé choisi parmi les flavonoïdes, plus préférentiellement un composé choisi parmi les anthocyanes, et le cas échéant, une étape d’ajustement de ladite concentration dudit au moins un composé phénolique pour atteindre une valeur comprise entre 0,001 µg.L-1 et 10 000 mg.L-1, et l’ajout à ladite boisson d’un additif comprenant au moins une protéase active à une dose comprise entre 1 mg.L-1 et 10.000 mg.L-1, caractérisé en ce que ladite protéase n’est pas une protéase à cystéine et en ce que ledit additif présente en outre une activité enzymatique invertase.
- Utilisation pour augmenter la stabilité protéique, dans une boisson à base de moût végétal, à la chaleur, aux variations de température et/ou au vieillissement, d’un additif comprenant au moinsune protéase active, caractérisé en ce que ladite protéase n’est pas une protéase à cystéine et en ce que ledit additif présente en outre une activité enzymatique invertase.
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR2001242A FR3107064A1 (fr) | 2020-02-07 | 2020-02-07 | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson |
| PCT/EP2021/052859 WO2021156473A1 (fr) | 2020-02-07 | 2021-02-05 | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson |
| EP21705095.4A EP4100501A1 (fr) | 2020-02-07 | 2021-02-05 | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson |
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR2001242 | 2020-02-07 | ||
| FR2001242A FR3107064A1 (fr) | 2020-02-07 | 2020-02-07 | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| FR3107064A1 true FR3107064A1 (fr) | 2021-08-13 |
Family
ID=72266347
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| FR2001242A Pending FR3107064A1 (fr) | 2020-02-07 | 2020-02-07 | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP4100501A1 (fr) |
| FR (1) | FR3107064A1 (fr) |
| WO (1) | WO2021156473A1 (fr) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1997049794A1 (fr) | 1996-06-26 | 1997-12-31 | Societe D'applications De Recherches Et De Conseils Oenologiques (Sarco) | Produit de stabilisation proteique des vins |
-
2020
- 2020-02-07 FR FR2001242A patent/FR3107064A1/fr active Pending
-
2021
- 2021-02-05 EP EP21705095.4A patent/EP4100501A1/fr active Pending
- 2021-02-05 WO PCT/EP2021/052859 patent/WO2021156473A1/fr unknown
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1997049794A1 (fr) | 1996-06-26 | 1997-12-31 | Societe D'applications De Recherches Et De Conseils Oenologiques (Sarco) | Produit de stabilisation proteique des vins |
| FR2750434A1 (fr) * | 1996-06-26 | 1998-01-02 | Applic De Rech Et De Conseils | Produit de stabilisation proteique des vins |
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| "Advances in Food and Nutrition research", 1 January 2009, ISBN: 978-0-12-374440-1, article KARL J. SIEBERT: "Haze in Beverages", pages: 68 - 70, XP055758264, DOI: https://doi.org/10.1016/S1043-4526(09)57002-7 * |
| BENUCCI ET AL.: "Effect of free and immobilised stem bromelain on protein haze in white wine", AUSTRALIAN JOURNAL OF GRAPE AND WINE RESEARCH, vol. 20, no. 3, 2014, pages 347 - 352, XP055475560, DOI: 10.1111/ajgw.12093 |
| COLANGELO DONATO ET AL: "The use of chitosan as alternative to bentonite for wine fining: Effects on heat-stability, proteins, organic acids, colour, and volatile compounds in an aromatic white wine", FOOD CHEMISTRY, ELSEVIER LTD, NL, vol. 264, 17 May 2018 (2018-05-17), pages 301 - 309, XP085402618, ISSN: 0308-8146, DOI: 10.1016/J.FOODCHEM.2018.05.005 * |
| MARANGON ET AL.: "Dégradation of white wine haze proteins by Argillopepsin I and II during juice flash pasteurization", FOOD CHEMISTRY, vol. 135, no. 3, 2012, pages 1157 - 65, XP028935606, DOI: 10.1016/j.foodchem.2012.05.042 |
| MOINE-LEDOUX V ET AL: "AN INVERTASE FRAGMENT RESPONSIBLE FOR IMPROVING THE PROTEIN STABILITY OF DRY WHITE WINES", JOURNAL OF THE SCIENCE OF FOOD AND AGRICULTURE, WILEY & SONS, CHICHESTER, GB, vol. 79, no. 4, 1 January 1999 (1999-01-01), pages 537 - 543, XP000914016, ISSN: 0022-5142, DOI: 10.1002/(SICI)1097-0010(19990315)79:4<537::AID-JSFA214>3.0.CO;2-B * |
| THULILE NDLOVU: "Mannoprotein production and wine haze reduction by wine yeast strains", DISSERTATION PRESENTED FOR THE DEGREE OF DOCTOR OF PHILOSOPHY (SCIENCE) STELLENBOSCH UNIVERSITY INSTITUTE FOR WINE BIOTECHNOLOGY , FACULTY OF AGRISCIENCES, 1 December 2012 (2012-12-01), pages 1 - 150, XP055232504, Retrieved from the Internet <URL:http://scholar.sun.ac.za/bitstream/handle/10019.1/71938/ndlovu_mannoprotein_2012.pdf?sequence=2&isAllowed=y> [retrieved on 20151201] * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP4100501A1 (fr) | 2022-12-14 |
| WO2021156473A1 (fr) | 2021-08-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Guadalupe et al. | Maceration enzymes and mannoproteins: A possible strategy to increase colloidal stability and color extraction in red wines | |
| Kemp et al. | Effect of production phase on bottle-fermented sparkling wine quality | |
| Doco et al. | Effect of flash release and pectinolytic enzyme treatments on wine polysaccharide composition | |
| Pozo-Bayón et al. | Chemical and biochemical features involved in sparkling wine production: from a traditional to an improved winemaking technology | |
| Espejo | Role of commercial enzymes in wine production: A critical review of recent research | |
| Martínez-Lapuente et al. | Changes in polysaccharide composition during sparkling wine making and aging | |
| Mojsov | Use of enzymes in wine making: A review | |
| Del Barrio-Galán et al. | Effect of aging on lees and of three different dry yeast derivative products on Verdejo white wine composition and sensorial characteristics | |
| Fia et al. | Evaluation of potential side activities of commercial enzyme preparations used in winemaking | |
| Sahay | Wine enzymes: Potential and practices | |
| CA2203925A1 (fr) | Produit biologique pour la stabilisation physico-chimique des vins | |
| Masino et al. | Evaluation of the combined effects of enzymatic treatment and aging on lees on the aroma of wine from Bombino bianco grapes | |
| Alexandre | Aging on lees and their alternatives: Impact on wine | |
| CA3027731C (fr) | Utilisation d'un extrait proteique de levure pour stabiliser le trouble de la biere | |
| Hüfner et al. | Application of microbial enzymes during winemaking | |
| Theron et al. | Monitoring the impact of an aspartic protease (MpAPr1) on grape proteins and wine properties | |
| FR3107064A1 (fr) | Additif pour améliorer la stabilité protéique dans une boisson | |
| Perutka et al. | High‐proline proteins in experimental hazy white wine produced from partially botrytized grapes | |
| Lomolino et al. | Protein haze formation in white wines: effect of Saccharomyces cerevisiae cell wall components prepared with different procedures | |
| Oyón-Ardoiz et al. | Supramolecular study of the interaction between mannoproteins from Torulaspora delbrueckii and flavanols | |
| US20180208883A1 (en) | Wine additive | |
| Gómez-Plaza et al. | Use of enzymes for wineproduction | |
| EP1850682B1 (fr) | Procede de traitement d'une boisson en vue d'augmenter sa sucrosite et compose destine a etre ajoute a une boisson en vue d'augmenter sa sucrosite | |
| EP3288396B1 (fr) | Utilisation de cysteine endoprotéase pour diminuer le trouble de boissons | |
| Seidel et al. | Composition, ζ Potential, and Molar Mass Distribution of 20 Must and Wine Colloids from Five Different Cultivars Obtained during Four Consecutive Vintages |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 2 |
|
| PLSC | Publication of the preliminary search report |
Effective date: 20210813 |
|
| PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 3 |
|
| PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 4 |
|
| PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 5 |