FR2938333A1 - Modulateurs de cidea dans le traitement de l'acne, d'une dermatite seborrheique ou de l'hyperseborrhee - Google Patents

Abstract

L'invention concerne une méthode in vitro ou in vivo de criblage de composés candidats pour le traitement préventif ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée comprenant la détermination de la capacité d'un composé à moduler l'expression ou l'activité de la protéine CIDEA, ainsi que l'utilisation de modulateurs de l'expression ou de l'activité de cette protéine pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. L'invention concerne aussi des méthodes de diagnostic ou pronostic in vitro de ces pathologies.

Description

L'invention concerne l'identification et l'utilisation de composés modulateurs de la protéine CIDEA pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ainsi que des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Elle concerne aussi des méthodes de diagnostic in vitro ou pronostic in vitro de ces pathologies.

Une peau grasse hyperséborrhéique est caractérisée par une sécrétion et une excrétion exagérées de sébum. Classiquement, un taux de sébum supérieur à 200 g/cm2 mesuré au niveau du front est considéré comme caractéristique d'une peau grasse. Une peau grasse est souvent associée à un défaut de desquamation, un teint luisant, un grain de peau épais. En plus de ces désordres esthétiques, l'excès de sébum peut servir de support au développement anarchique de la flore bactérienne saprophyte (P. acnes en particulier), et provoquer l'apparition de comédons et/ou de lésions acnéiques. Cette stimulation de la production de glandes sébacées est induite par les androgènes. L'acné est, de fait, une maladie chronique du follicule pilosébacé sous dépendance hormonale. Une thérapie hormonale contre l'acné est une possibilité de traitement pour les femmes, le but étant de s'opposer aux effets des androgènes sur la glande sébacée. Dans ce cadre on utilise généralement des oestrogènes, des anti-androgènes, ou des agents diminuant la production d'androgènes par les ovaires ou la glande surrénale. Les anti-androgènes utilisés pour le traitement de l'acné incluent notamment la spironolactone, l'acétate de cyprotérone, et le flutamide. Cependant, ces agents présentent des effets secondaires potentiellement sévères. Ainsi, toute grossesse doit être absolument empêchée, du fait notamment d'un risque de féminisation pour le foetus mâle. Ces agents sont prohibés chez les patients masculins. La dermite séborrhéique est une dermatose inflammatoire cutanée fréquente se 25 présentant sous la forme de plaques rouges, recouvertes de squames grasses et jaunâtres, plus ou moins prurigineuses, prédominantes dans les zones séborrhéiques.

Il existe pour ces maladies un besoin d'identifier des médiateurs en aval de l'action des hormones stéroïdiennes, et de les moduler, pour obtenir un profil thérapeutique similaire, 30 mais avec des effets secondaires réduits.

La demanderesse a maintenant découvert que le gène codant pour la protéine CIDEA était exprimé préférentiellement dans les glandes sébacées humaines en comparaison avec l'épiderme, et que son expression était régulée in vitro par un cocktail favorisant la 35 différenciation de précurseurs de sébocytes, contenant un androgène (R1881 encore appelé méthyltriènolone à 1 nM) et un ligand PPARy (Rosiglitazone à 100 nM), dans une culture primaire de sébocytes humains.

La demanderesse a également démontré que cette même cible est présente dans un 5 modèle de pharmacologie animale, sur glande sébacée de rat.

Elle propose dès lors de cibler le gène CIDEA ou son produit d'expression, pour prévenir et/ou améliorer l'acné, la dermatite séborrhéique ainsi que les désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, notamment l'aspect de peau grasse. Il est par ailleurs connu que le traitement par un agoniste PPAR induit une forte diminution de la taille des glandes sébacées, et une réduction de l'hyperséborrhée induite par un androgène (WO2007/093747).

15 Comme la cible proposée est en aval du récepteur PPAR, c'est elle qui est responsable des effets observés au niveau des glandes sébacées et de l'excrétion en sébum.

Ainsi le gène identifié peut servir pour identifier les composés les plus actifs en tant que modulateurs PPAR, à les classer, et à les sélectionner. Sur cette base, il est donc 20 également proposé une utilisation du gène CIDEA ou de la protéine CIDEA comme marqueur pour cribler des modulateurs PPAR candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. Plus précisément, on peut déterminer la capacité d'un modulateur PPAR à moduler l'expression ou l'activité de CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un 25 de ses promoteurs.

Par acné, on entend toutes les formes d'acné, à savoir notamment les acnés vulgaires, comédoniennes, polymorphes, les acnés nodulokystiques, conglobata, ou encore les acnés secondaires telles que l'acné solaire, médicamenteuse ou professionnelle. La 30 demanderesse propose également des méthodes de diagnostic ou pronostic in vitro, in vivo et clinique basées sur la détection du niveau d'expression ou d'activité de la CIDEA.

CIDEA Le terme "CIDEA" pour "Cell Death Inducible DFF-like Effector A" désigne l'effecteur A 35 DFF-like (Facteur de Fragmentation de l'ADN) induisant la mort cellulaire, encore appelé activateur de la mort cellulaire (Cell Death Activator) ou CIDE-A. 10 Le gène CIDEA est exprimé dans de nombreux tissus dont le tissu adipeux blanc chez l'homme et appartient à une famille de protéines activant l'apoptose (Inohara et al, 1998, EMBO Journal, 17(9):2526-2533). CIDEA pourrait jouer un rôle dans l'obésité (Gummesson et, 2007, J ClinEndocrinol Metab, 92(12):4759-65). Bien que les mécanismes moléculaires médiés par CIDEA dans les adipocytes soient encore peu connus, il est aujourd'hui clairement établie que CIDEA active DFF45 ce qui induit une fragmentation de l'ADN conduisant à l'apoptose (Nordstrôm et al, 2005, Diabetes, 54 :1726-1734). Les souris perdant la fonction CIDEA ont un taux métabolique plus élevé, une lipolyse accrue dans le tissu adipeux brun et une température corporelle élevée en conditions de froid. Ces observations suggèrent que chez la souris, l'homologue de CIDEA joue un rôle de régulation des processus de thermogenèse et de lipogenèse, et serait ainsi impliqué dans l'obésité et le diabète (Zhou et al, 2003, Nat Genet, 35 :49-56).

Dans le contexte de l'invention, le terme gène CIDEA ou acide nucléique CIDEA signifie le gène ou la séquence d'acide nucléique qui code pour la protéine CIDEA. Si la cible visée est de préférence le gène humain ou son produit d'expression, l'invention peut également faire appel à des cellules exprimant un effecteur A analogue au DFF induisant la mort cellulaire hétérologue, par intégration génomique ou expression transitoire d'un acide nucléique exogène codant pour la protéine. Il existe deux transcrits alternatifs du gène CIDEA codant pour deux isoformes de CIDEA différentes. Les séquences d'ADNc humain de la CIDEA sont reproduites en annexe (SEQ ID No.1 et SEQ ID No.2). Il s'agit respectivement de la séquence NM_001279 (Genbank) dont le cadre de lecture ouvert contient 1099 paires de bases et de la séquence NM 198289 (Genbank) dont le cadre de lecture ouvert contient 1324 paires de bases. Le terme "CIDEA" inclut ces deux isoformes.

Applications diagnostiques Un objet de l'invention concerne une méthode in vitro de diagnostic ou de suivi de l'évolution de lésions acnéiques, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée chez un sujet, comprenant la comparaison de l'expression ou d'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle.

L'expression de la protéine peut être déterminée par un dosage de la protéine CIDEA selon une des méthodes telles que le Western-Blot, l'immunohistochimie, l'analyse par spectrométrie de masse (Maldi-TOF et analyse LC/MS), le radioimmunoessai (RIA) et l'ELISA ou toute autre méthode connue de l'homme du métier. Une autre méthode, notamment pour mesurer l'expression du gène CIDEA, est de mesurer la quantité d'ARNm correspondant, par toute méthode telle que décrit plus haut. Un dosage de l'activité de la CIDEA peut être également envisagé.

Dans le cadre d'un diagnostic, le sujet contrôle est un sujet sain .

Dans le cadre d'un suivi de l'évolution des lésions acnéiques, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané lié à une hyperséborrhée, le sujet contrôle fait référence au même sujet à un temps différent, qui correspond de préférence au début du traitement (To). Cette mesure de la différence d'expression ou d'activité de la CIDEA, ou d'expression de son gène ou d'activité d'au moins un de ses promoteurs, permet notamment de suivre l'efficacité d'un traitement, notamment un traitement par un modulateur de la CIDEA, tel qu'envisagé plus haut, ou un autre traitement contre l'acné, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. Un tel suivi peut conforter le patient quant au bien fondé, ou à la nécessité, de poursuivre ce traitement.

Un autre aspect de la présente invention concerne une méthode in vitro de détermination d'une susceptibilité d'un sujet à développer des lésions acnéiques, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle. Là encore, l'expression de la protéine CIDEA peut être déterminée par un dosage de cette protéine par immunoessai, par exemple par dosage ELISA ou par toute autre méthode citée plus haut. Une autre méthode, notamment pour mesurer l'expression du gène CIDEA, est de mesurer la quantité d'ARNm correspondant par toute méthode telle que décrit plus haut. Un dosage de l'activité de la CIDEA peut être également envisagé. Le sujet testé est ici un sujet asymptomatique, ne présentant aucun trouble cutané lié à une hyperséborrhée, une dermatite séborrhéique ou une acné. Le sujet contrôle dans cette méthode, signifie un sujet ou une population de référence saine . La détection de cette susceptibilité permet la mise en place d'un traitement préventif et/ou d'une surveillance accrue des signes liés à l'acné, une dermatite séborrhéique ou à un désordre cutané associé à une hyperséborrhée.

Dans ces méthodes de diagnostic ou pronostic in vitro, l'échantillon biologique testé peut être n'importe quel échantillon de liquide biologique ou un échantillon d'une biopsie. De préférence l'échantillon peut être une préparation de cellules de la peau, obtenues par exemple par desquamation ou biopsie. Il peut également s'agir de sébum.

Méthodes de criblage Un objet de l'invention est une méthode in vitro ou in vivo de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou tout désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la détermination de la capacité d'un composé à moduler l'expression ou l'activité de CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs, ladite modulation indiquant l'utilité du composé pour le traitement préventif ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou tout désordre cutané associé à une hyperséborrhée. La méthode permet donc de sélectionner les composés capables de moduler l'expression ou l'activité de la CIDEA, ou l'expression de son gène, ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs.

Plus particulièrement, l'objet de l'invention est une méthode in vitro de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, comprenant les étapes suivantes : a. préparation d'au moins deux échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; b. mise en contact d'un des échantillons ou mélanges réactionnels avec un ou plusieurs des composés à tester ; c. mesure de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans les échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; d. sélection des composés pour lesquels une modulation de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, est mesurée dans l'échantillon ou le mélange traité en b), par rapport à l'échantillon ou au mélange non traité. 30 35 Une méthode de criblage in vivo peut être réalisée chez tout animal de laboratoire, par exemple un rongeur. Selon un mode de réalisation préféré, la méthode de criblage comprend l'administration à l'animal, de préférence par application topique, du composé à tester, puis éventuellement l'euthanasie de l'animal, et le prélèvement d'un feuillet épidermique, avant évaluation de l'expression du gène dans le feuillet épidermique, par toute méthode décrite ici.

Par modulation , on entend tout effet sur l'expression ou l'activité de la protéine, l'expression du gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs, à savoir une stimulation ou une inhibition, partielle ou complète. Ainsi, les composés testés à l'étape d) ci-dessus inhibent de préférence l'expression ou l'activité de la protéine CIDEA, l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs. La différence d'expression obtenue avec le composé testé par rapport à un contrôle réalisé en l'absence du composé est significative à partir de 25% ou plus.

Dans l'ensemble du présent texte, à moins qu'il ne soit spécifié autrement, par expression d'un gène on entend la quantité d'ARNm exprimé ; Par expression d'une protéine , on entend la quantité de cette protéine ; Par activité de la protéine CIDEA , on entend la capacité de la protéine à induire l'apoptose en activant des protéines DFF.

Par activité d'un promoteur , on entend la capacité de ce promoteur à déclencher la transcription de la séquence d'ADN codée en aval de ce promoteur (et donc indirectement la synthèse de la protéine correspondante). Les composés testés peuvent être de tout type. Ils peuvent être d'origine naturelle ou avoir été produits par synthèse chimique. Il peut s'agir d'une banque de composés chimiques structurellement définis, de composés ou de substances non caractérisés, ou d'un mélange de composés.

En particulier, l'invention vise l'utilisation du gène CIDEA ou de la protéine CIDEA comme marqueur pour cribler des modulateurs PPAR ou AR (récepteur aux androgènes) candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ainsi que des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Plus précisément, on détermine la capacité d'un modulateur PPAR ou AR à moduler l'expression ou l'activité de CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs. De manière préférentielle, le modulateur est un modulateur PPARy. Le modulateur PPAR est un agoniste ou un antagoniste PPAR, de préférence un agoniste. Le modulateur AR est un agoniste ou un antagoniste AR, de préférence un agoniste.

Différentes techniques peuvent être mises en oeuvre pour tester ces composés et identifier les composés d'intérêt thérapeutique, modulateurs de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA.

Selon un premier mode de réalisation, les échantillons biologiques sont des cellules transfectées avec un gène rapporteur lié de manière opérante à tout ou partie du promoteur du gène codant pour la protéine CIDEA, et l'étape c) décrite ci-dessus consiste à mesurer l'expression dudit gène rapporteur. Le gène rapporteur peut notamment coder pour une enzyme qui, en présence d'un substrat donné, conduit à la formation de produits colorés, telle que CAT (chloramphenicol acétyltransférase), GAL (beta galactosidase), ou GUS (beta glucuronidase). Il peut également s'agir du gène de la luciférase ou de la GFP (Green Fluorescent Protein). Le dosage de la protéine codée par le gène rapporteur, ou de son activité, est réalisé classiquement, par des techniques colorimétriques, fluorométriques, ou de chimioluminescence, entre autres.

Selon un deuxième mode de réalisation, les échantillons biologiques sont des cellules exprimant le gène codant pour CIDEA, et l'étape c) décrite ci-dessus consiste à mesurer l'expression dudit gène. La cellule utilisée ici peut être de tout type. Il peut s'agir d'une cellule exprimant le gène CIDEA de manière endogène, comme par exemple une cellule cardiaque, une cellule musculaire lisse, ou encore mieux un sébocyte. On peut également utiliser des organes d'origine humaine ou animale, comme par exemple la glande préputiale, clitoridienne, ou encore la glande sébacée de la peau. Il peut également s'agir d'une cellule transformée par un acide nucléique hétérologue, codant pour la protéine CIDEA, de préférence humaine, ou de mammifère. Une grande variété de systèmes de cellules hôtes peut être utilisée, telle que par exemples les cellules Cos-7, CHO, BHK, 3T3, HEK293. L'acide nucléique peut être transfecté de manière stable ou transitoire, par toute méthode connue de l'homme du métier, par exemple par phosphate de calcium, DEAE-dextran, liposome, virus, électroporation, ou microinjection.

Dans ces méthodes, l'expression du gène CIDEA ou du gène rapporteur peut être déterminée en évaluant le taux de transcription dudit gène, ou son taux de traduction. Par taux de transcription d'un gène, on entend la quantité d'ARNm correspondant produite. Par taux de traduction d'un gène, on entend la quantité de protéine produite. L'homme du métier est familier des techniques permettant la détection quantitative ou semi-quantitative de l'ARNm d'un gène d'intérêt. Les techniques basées sur l'hybridation de l'ARNm avec des sondes nucléotidiques spécifiques sont les plus usuelles (Northern Blot, RT-PCR (Reverse Transcriptase Polymerase Chain Reaction), RT-PCR quantitative (qRT-PCR), protection à la RNase). Il peut être avantageux d'utiliser des marqueurs de détection, tels que des agents fluorescents, radioactifs, enzymatiques ou autres ligands (par exemple, avidine/biotine).

En particulier, l'expression du gène peut être mesurée par PCR en temps réel ou par protection à la RNase. Par protection à la RNase, on entend la détection d'un ARNm connu parmi les ARN-poly(A) d'un tissu qui peut se faire à l'aide d'une hybridation spécifique avec une sonde marquée. La sonde est un ARN complémentaire marqué (radioactif) du messager à rechercher. Elle peut être construite à partir d'un ARNm connu dont l'ADNc, après RT-PCR, a été cloné dans un phage. De l'ARN-poly(A) du tissu où la séquence est à rechercher est incubé avec cette sonde dans des conditions d'hybridation lente en milieu liquide. Il se forme des hybrides ARN:ARN entre l'ARNm recherché et la sonde antisens. Le milieu hybridé est alors incubé avec un mélange de ribonucléases spécifiques de l'ARN simple brin, de telle sorte que seuls les hybrides formés avec la sonde peuvent résister à cette digestion. Le produit de digestion est ensuite déprotéinisé et repurifié, avant d'être analysé par électrophorèse. Les ARN hybrides marqués sont détectés par autoradiographie.

Le taux de traduction du gène est évalué par exemple par dosage immunologique du produit dudit gène. Les anticorps utilisés à cet effet peuvent être de type polyclonal ou monoclonal. Leur production relève de techniques conventionnelles. Un anticorps polyclonal antiûCIDEA peut, entre autres, être obtenu par immunisation d'un animal tel qu'un lapin ou une souris, à l'aide de la protéine entière. L'antisérum est prélevé puis épuisé selon des méthodes en soi connues de l'homme du métier. Un anticorps monoclonal peut, entre autres, être obtenu par la méthode classique de Kôhler et Milstein (Nature (London), 256: 495- 497 (1975)). D'autres méthodes de préparation d'anticorps monoclonaux sont également connues. On peut, par exemple, produire des anticorps monoclonaux par expression d'un acide nucléique clone à partir d'un hybridome. On peut également produire des anticorps par la technique d'expression sur phage ("phage display"), en introduisant des ADNc d'anticorps dans des vecteurs, qui sont typiquement des phages filamenteux qui présentent des banques de gènes V à la surface du phage (par exemple fUSE5 pour E.coli). Le dosage immunologique peut être réalisé en phase solide ou en phase homogène; en un temps ou en deux temps; en méthode sandwich ou en méthode compétitive, à titre d'exemples non limitatifs. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture est immobilisé sur une phase solide. On peut utiliser, à titre d'exemples non limitatifs de phase solide, des microplaques, en particulier des microplaques de polystyrène, ou des particules ou des billes solides, des billes paramagnétiques. Des dosages ELISA, des radioimmunoessais, ou toute autre technique de détection peuvent être mis en oeuvre pour révéler la présence des complexes antigènes-anticorps formés. La caractérisation des complexes antigène/anticorps, et plus généralement des protéines isolées ou purifiées mais également recombinantes (obtenues in vitro et in vivo) peut être réalisée par analyse en spectrométrie de masse. Cette identification est rendue possible grâce à l'analyse (détermination de la masse) des peptides générée par l'hydrolyse enzymatique des protéines (trypsine en générale). De façon générale, les protéines sont isolées selon les méthodes connues de l'homme du métier, préalablement à la digestion enzymatique. L'analyse des peptides (sous forme d'hydrolysat) est effectuée par séparation des peptides par HPLC (nano-HPLC) basé sur leurs propriétés physico-chimique (phase inverse). La détermination de la masse des peptides ainsi séparés est réalisée par ionisation des peptides et soit par couplage direct au spectromètre de masse (mode electrospray ESI), soit après dépôt et cristallisation en présence d'une matrice connue de l'homme de l'art (analyse en mode MALDI). Les protéines sont ensuite identifiées grâce à l'utilisation d'un logiciel approprié (par exemple Mascot).

Selon un troisième mode de réalisation, la méthode de criblage comprend la mise en contact d'un composé avec une protéine CIDEA et la détermination de la capacité du composé à moduler l'activité de la protéine CIDEA, une différence d'activité, par rapport à un contrôle réalisé en l'absence du composé, indiquant l'utilité du composé pour le traitement préventif ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée.

De préférence, on évalue également la capacité du composé à se lier à la protéine CIDEA.

La détermination de l'activité de CIDEA peut être réalisée de différentes manières, notamment par une mise en évidence de l'apoptose induite par CIDEA.

Les composés sélectionnés par les méthodes de criblage définies ici peuvent ensuite être testés sur d'autres modèles in vitro et/ou in vivo (chez l'animal ou l'homme) pour leurs effets sur l'acné, la dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée.

Modulateurs de CIDEA L'invention a également pour objet l'utilisation d'un modulateur de la protéine humaine CIDEA, susceptible d'être obtenu par l'une des méthodes ci-dessus, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Il est ainsi décrit ici une méthode de traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, méthode comprenant l'administration d'une quantité thérapeutiquement efficace d'un modulateur de CIDEA, à un patient nécessitant un tel traitement. L'invention vise enfin l'utilisation cosmétique d'un modulateur de CIDEA, pour le traitement esthétique des peaux grasses. De manière préférentielle, le modulateur est un inhibiteur de CIDEA. Le terme inhibiteur se réfère à un composé ou une substance chimique qui élimine ou réduit substantiellement l'activité biologique de la protéine CIDEA. Le terme substantiellement signifie une réduction d'au moins 25%, de préférence d'au moins 35%, de préférence encore d'au moins 50%, et de manière plus préférée d'au moins 70% ou 90%. Un inhibiteur préféré interagit avec CIDEA en solution à des concentrations en inhibiteur de moins de 20 M, moins de 10 M, moins de 5 M, moins de 1 M, de préférence moins de 0,1 M, de préférence encore moins de 0,01 M. Le composé modulateur peut être un anticorps inhibiteur anti-CIDEA, de préférence un anticorps monoclonal. De manière avantageuse, un tel anticorps inhibiteur est administré en une quantité suffisante pour obtenir une concentration plasmatique d'environ 0.01 g par ml à environ 100 g/ml, de préférence d'environ 1 g par ml à environ 5 g/ml.

Le composé modulateur peut également être un polypeptide, un polynucleotide antisens d'ADN ou d'ARN, un si-ARN, ou un PNA ("Peptide nucleic acid", chaîne polypeptidique substituée par des bases puriques et pyrimidiques, dont la structure spatiale mime celle de l'ADN et permet l'hybridation à celui-ci).

Le composé modulateur peut également être un aptamère. L'aptamère est une classe de molécules représentant en termes de reconnaissance moléculaire une alternative aux anticorps. Ce sont des séquences d'oligonucléotides ayant la capacité de reconnaître pratiquement toutes le classes de molécules cibles avec haute affinité et spécificité. De tels ligands peuvent être isolés par évolution systématique de ligand par enrichissement exponentiel (SELEX) d'une banque de séquence aléatoire comme décrit par Tuerk et Gold, 1990. La banque de séquences aléatoires peut être obtenue par synthèse chimique combinatoire d'ADN. Dans cette banque, chaque membre est un oligomère linéaire, éventuellement chimiquement modifié, d'une séquence unique. De possibles modifications, utilisations et avantages de cette classe de molécules ont été revus dans Jayasena, ,1999, Clinical Chemistry 45(9):1628-1650.

Plusieurs modulateurs de CIDEA sont connus et proposés pour la régulation de l'homéostasie énergétique et métabolique (Christian et al, 2005, Mol Cell Biol, 25(21):9383-91). L'invention comprend l'utilisation de tels composés inhibiteurs de CIDEA pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. D'autres composés modulateurs identifiés par la méthode de criblage décrite plus haut sont également utiles.

Les composés modulateurs sont formulés au sein de composition pharmaceutique, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Ces compositions peuvent être administrées par exemple par voie orale, entérale, parentérale, ou topique. De préférence, la composition pharmaceutique est appliquée par voie topique. Par voie orale, la composition pharmaceutique peut se présenter sous forme de comprimés, de gélules, de dragées, de sirops, de suspensions, de solutions, de poudres, de granules, d'émulsions, de suspensions de microsphères ou nanosphères ou de vésicules lipidiques ou polymériques permettant une libération contrôlée. Par voie parentérale, la composition pharmaceutique peut se présenter sous forme de solutions ou suspensions pour perfusion ou pour injection.

Par voie topique, la composition pharmaceutique est plus particulièrement destinée au traitement de la peau et des muqueuses et peut se présenter sous forme d'onguents, de crèmes, de laits, de pommades, de poudres, de tampons imbibés, de solutions, de gels, de sprays, de lotions ou de suspensions. Elle peut également se présenter sous forme de suspensions de microsphères ou nanosphères ou de vésicules lipidiques ou polymériques ou de patchs polymériques ou d'hydrogels permettant une libération contrôlée. Cette composition pour application topique peut se présenter sous forme anhydre, sous forme aqueuse ou sous la forme d'une émulsion. Dans une variante préférée, la composition pharmaceutique se présente sous la forme d'un gel, d'une crème ou d'une lotion.

La composition peut comprendre une teneur en modulateur de la CIDEA allant de 0,001 à 10 % en poids, notamment de 0,01 à 5 % en poids par rapport au poids total de la composition.

La composition pharmaceutique peut en outre contenir des additifs inertes ou des combinaisons de ces additifs, tels que - des agents mouillants; - des agents d'amélioration de la saveur; - des agents conservateurs tels que les esters de l'acide parahydroxybenzoïque; - des agents stabilisants; - des agents régulateurs d'humidité; - des agents régulateurs de pH; - des agents modificateurs de pression osmotique; - des agents émulsionnants; - des filtres UV-A et UV-B - et des antioxydants, tels que l'alpha-tocophérol, le butylhydroxyanisole ou le butylhydroxytoluene, la Super Oxyde Dismutase, l'Ubiquinol ou certains chelatants de métaux.

Les exemples suivants illustrent l'invention sans en limiter la portée. Exemples : DONNEES EXPERIMENTALES

Exemple 1 : Expression de la protéine CIDEA dans la glande sébacée humaine et dans l'épiderme humain 35 Des glandes sébacées humaines ont été séparées de l'épiderme humain par traitement à la dispase et dissection sous une loupe binoculaire. Des échantillons d'ARN totaux ont été préparés à partir des glandes sébacées et à partir de l'épiderme. L'expression des gènes a été analysée sur une station d'Affymetrix (module microfluidique; four à hybridation; scanner; ordinateur) en suivant les protocoles fournis par la société. En bref, l'ARN total isolé des tissus est transcrit en ADNc. A partir de l'ADNc double brin, on synthétise un ARNc marqué à la biotine en utilisant la polymérase T7 et un NTP précurseur conjugué à la biotine. Les ARNc sont ensuite fragmentés en fragments de petites tailles. Toutes les étapes de biologie moléculaire sont contrôlées en utilisant le système Lab on a chip d'Agilent pour confirmer les bonnes efficacités des réactions enzymatiques. La puce Affymetrix est hybridée avec l'ARNc biotinylé, rincée et ensuite marquée par fluorescence en utilisant un fluorophore conjugué à la Streptavidine. Après des lavages, la puce est scannée et les résultats sont calculés en utilisant le logiciel MAS5 fourni par Affymetrix. On obtient une valeur d'expression pour chaque gène ainsi que l'indication de la significativité de la valeur obtenue. Le calcul de la significativité de l'expression est basé sur l'analyse des signaux qui sont obtenus suite à l'hybridation de l'ARNc d'un gène donné avec un oligonucléotide hybridant parfaitement ( perfect match ) versus un oligonucléotide qui contient une mutation ( single mismatch ) dans la région centrale de l'oligonucléotide (voir tableau 1).

Tableau 1 : mesure de l'expression de la protéine CIDEA dans l'épiderme et dans la glande sébacée humaine via l'utilisation de la technologie des puces affymetrix. Identifiant Nom du Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix gène dans la dans de de glande l'épiderme l'expression* l'expression* sébacée humain dans la dans humaine glande épiderme sébacée humain humaine 221295 at cell death- 466 115 1 1 inducing DFFA-like effector a *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : présence (=1) ou absence (=0). Exemple 2 : Expression de la protéine CIDEA dans la qlande sébacée humaine et dans l'épiderme humain25 Les échantillons d'épiderme et de glande sébacée humaine ont été préparés par microdissection laser à partir de trois liftings de peaux humaines saines (donneurs femmes). L'expression de l'ARN messager codant pour la protéine CIDEA a été analysée par RT- PCR quantitative (qRT-PCR) en utilisant la technologie des Microfluidics Cards développée par Applied Biosystems. Le Ct correspond au nombre de cycles de PCR permettant d'atteindre un même niveau de fluorescence pour tous les échantillons. Le niveau d'expression est représenté dans chaque tissu par la moyenne des Ct et l'écart type obtenus sur les trois donneurs.

L'expression différentielle entre les deux tissus est mesurée par un facteur d'induction moyen (F.I) entre la glande sébacée et l'épiderme après normalisation des Ct par l'expression des trois gènes de ménage (ARN ribosomal 18S, Glyceraldehyde 3-phosphate deshydrogenase GAPDH, beta-actine).

Tableau 2 : mesure par qRT-PCR de l'expression de CIDEA dans l'épiderme et la glande sébacée humaine via l'utilisation de la technologie des Microfluidic Cards (Applied Biosystems). Nom du Nombre de Ecart Nombre de Ecart Facteur gène cycles type cycles type d'induction nécessaire nécessaire moyen de pour pour l'expression détecter le détecter le dans la niveau niveau glande d'expression d'expression sébacée moyen dans moyen dans versus la glande l'épiderme l'épiderme sébacée humain (Ct) humain (F.I) humaine (Ct) cell death- 26 0.82 31 1.04 32 inducing DFFA-like effector a Exemple 3 : Expression de la protéine CIDEA dans les sébocvtes humains en culture primaire

a. Isolement et culture des sébocytes humains La culture de sébocytes humains est réalisée à partir de liftings de donneurs sains humains d'après la méthodologie décrite par Xia et al. (J Invest Dermatol. 1989 Sep;93(3):315-21) après séparation de l'épiderme du derme sous l'action de la dispase et microdissection des glandes sébacées sous loupes binocculaire.

Les glandes sébacées sont ensemencées en plaque 6 puits sur une couche nourricière de fibroblastes 3T3 soumis à de la mitomycine en milieu DMEM-Ham's F12 (3:1) supplémenté en 10% Sérum Veau Foetal (SVF); 10ng/mI facteur de croissance de l'épiderme (EGF); 10-10M toxine cholerique (CT); 0.5 g/ml hydrocortisone (HG); 5 g/ml insuline (INS); 2mM L-Glutamine (GIn); 100UI/ml de penicilline-streptomycine (PS).

Les premiers foyers de sébocytes humains apparaissent 3 jours après ensemencement des glandes. Les cellules sont alors traitées pendant 6 jours par le cocktail sébogénique correspondant à l'association de l'agoniste PPARy Rosiglitazone (1 M) et de l'androgène R1881 (10nM), ou par le Dimethyl sulfoxide (DMSO) servant de véhicule. b. Données d'expression en PCR

L'expression de l'ARN messager codant pour la protéine CIDEA a été analysée par qRTPCR en utilisant la technologie des Microfluidics Cards développée par Applied Biosystems, comme décrit précédemment (exemple 2), sur une culture de sébocytes humains correspondant à un donneur. Le niveau d'expression (Ct) est représenté pour chaque condition de traitement. L'induction de l'expression de CIDEA par le cocktail sébogénique est mesurée par un facteur d'induction (F.I) versus le contrôle DMSO après normalisation des Ct par l'expression des trois gènes de ménage (ARN ribosomal 18S, Glyceraldehyde 3-phosphate deshydrogenase GAPDH, beta-actine).

Tableau 3 : mesure par qRT-PCR de l'expression de CIDEA dans une primoculture de sébocytes humains traités 6 jours par le cocktail sébogénique (association agoniste PPARy Rosiglitazone 1 M ; androgène R1881 10nM) ou par le DMSO, via l'utilisation de la technologie des Microfluidic Cards (Applied Biosystems). Nom du gène Nombre de Nombre de cycles Facteur d'induction cycles nécessaire pour de l'expression dans nécessaire pour détecter le niveau la condition traitée détecter le d'expression moyen par le mix niveau dans les sébocytes sébogénique versus d'expression humains traités par le la condition DMSO moyen dans les cocktail sébogénique (F.I) sébocytes (Ct) humains traités par le DMSO (Ct) cell death- 30 27 7.8 inducing DFFA- like effector a Exemple 4 : Expression de la protéine CIDEA dans la glande préputiale de rat en culture primaire Les cultures primaires de sébocytes de glandes préputiales de rat (Rosenfield et al., J.

Invest. Dermatol. 1999;112:226-32) ont été utilisées pour évaluer des cocktails de différenciation tels que la combinaison de PPARy et d'un agoniste des récepteurs aux androgènes. Après l'ensemencement sur plaques 24 puits, les cellules préputiales sont cultivées pendant 3 jours en milieu DMEM contenant 10% de Sérum de Veau Foetal (SVF), 10-10M de toxine cholérique (CT), 10-10M de cortisol, 5 g/ml d'insuline et des antibiotiques. Les cellules sont ensuite cultivées dans un milieu sans sérum (milieu Cellgro complet) et traitées avec l'agoniste PPARy (Rosiglitazone, 100nM) et l'agoniste des récepteurs aux androgènes (R1181, l nM) de 3 à 9 jours avec un changement de milieu tous les 2 jours. Les cellules sont récupérées au gème jour et l'analyse à grande échelle de l'expression des gènes est réalisée grâce à des puces Affymetrix RAE230A.

Tableau 4: mesure de l'expression de la protéine CIDEA dans les cellules de glandes préputiales de rat en culture en réponse à un cocktail d'un androgène (R1881 à 1 nM) et d'un ligand PPARy (Rosiglitazone à 100 nM) via l'utilisation de la technologie des puces Affymetrix. Le mélange est connu pour induire la différenciation cellulaire caractérisée par l'augmentation de la lipogenèse. Identifiant Nom du gène Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix dans la après de de condition traitement par l'expression* l'expression* contrôle R1881 et dans la après (DMSO) Rozigliatzone condition traitement par contrôle R1881 et rosiglitazone 1389179 at cell death- 79 312 1 1 inducing DNA fragmentation factor, alpha subunit-like effector A (predicted) *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : présence (=1) ou absence (=0).

Exemple 5 : Données d'expression dans la glande sébacée de rat après traitement 5 par un agoniste du récepteur PPARgamma : Matériels et méthodes : Animaux: Espèce: rat Souche: OFA-SD (TOPS Caw), Sexe: mâle 10 Age: 10 semaines

Nombre par lot : 40 (8 animaux par groupe) Traitement: Voie d'administration : topique Composé/lot : agoniste de PPARgamma (rosiglitazone) 15 Doses : 1% Véhicule : acétone (001) Durée 96 heures

Méthode d'évaluation : On réalise une pesée des animaux au début et à la fin de l'étude. 20 Des biopsies de peau sont effectuées (6 échantillons de peau excisées par rat) pour analyser l'expression des gènes (extraction d'ARN, transcriptase inverse et PCR en temps réel). Les échantillons sont conservés la nuit à 4°C avant incubation dans du bromure de sodium (NaBr) 1M pendant 2 heures à 37°C. Après incubation, les échantillons sont séparés en épiderme ou derme. Les échantillons épidermiques sont 25 conservés à 20°C. Dans ces conditions, les glandes sébacées se trouvent dans le feuillet épidermique. Des PCR sont réalisées en commençant par les ADNc provenant des feuillets épidermiques contenant des glandes sébacées de rats contrôle ou rats traités avec l'agoniste du PPARy : l'ARNm est extrait en utilisant une colonne et quantifié. La qualité des ARNm est mesurée et est représenté par le rapport 18S/28S. Les résultats 30 sont normalisés au 18S exprimés en induction relative versus animaux non traités (groupe véhicule). L'analyse statistique est obtenue en utilisant un logiciel interne basé sur une analyse statistique Monte-Carlo modifiée.

Résultats: Traitement par un agoniste PPARgamma Voie topique, 0.3% dans l'acétone. Expression Basale - Variation versus vehicule Induction Relative Nombre de Ct (PCR après normalisation semi-quantititive) (AACt) PPARG (gene de référence) 23.28 0.72 1.65 CIDEA 24.25 2.64 6.38 HPRT1 (Normalisateur 1) 23.80 - 0.07 - 1.05 ACTB (Normalisateur 2) 19.93 0.23 1.18 18

Claims (25)

1. REVENDICATIONS1. Méthode in vitro ou in vivo de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, comprenant la détermination de la capacité d'un composé à moduler l'expression ou l'activité de la protéine CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs.
2. 2. Méthode in vitro de criblage de composés candidats pour le traitement préventif IO et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée selon la revendication 1, comprenant les étapes suivantes : a. Préparation d'au moins deux échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; 15 b. Mise en contact d'un des échantillons ou mélanges réactionnels avec un ou plusieurs des composés à tester ; c. Mesure de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans les échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; 20 d. Sélection des composés pour lesquels une modulation de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, ou une modulation de l'expression de son gène ou une modulation de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, est mesurée dans l'échantillon ou le mélange traité en b) par rapport à l'échantillon ou au mélange non traité. 25
3. 3. Méthode selon la revendication 2, caractérisée en ce que les composés sélectionnés à l'étape d) inhibent l'expression ou l'activité de la protéine CIDEA, l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs. 30
4. 4. Méthode selon la revendication 2 ou 3, caractérisée en ce que les échantillons biologiques sont des cellules transfectées avec un gène rapporteur lié de manière opérante à tout ou partie du promoteur du gène codant pour la protéine CIDEA, et en ce que l'étape c) consiste à mesurer l'expression dudit gène rapporteur.
5. 5. Méthode selon la revendication 2 ou 3, caractérisée en ce que les échantillons biologiques sont des cellules exprimant le gène codant pour la protéine CIDEA, et en ce que l'étape c) consiste à mesurer l'expression dudit gène.
6. 6. Méthode selon la revendication 4 ou 5, dans laquelle les cellules sont des sébocytes.
7. 7. Méthode selon la revendication 5, dans laquelle les cellules sont des cellules transformées par un acide nucléique hétérologue, codant pour la protéine CIDEA.
8. 8. Méthode selon l'une des revendications 2 à 7, dans laquelle l'expression du gène est déterminée en mesurant le taux de transcription dudit gène.
9. 9. Méthode selon l'une des revendications 2 à 7, dans laquelle l'expression du gène 15 est déterminée en mesurant le taux de traduction dudit gène.
10. 10. Méthode selon la revendication 1 comprenant la mise en contact d'un composé avec une protéine CIDEA et la détermination de la capacité du composé à moduler l'activité de la protéine CIDEA, une différence d'activité, par rapport à un contrôle 20 réalisé en l'absence du composé, indiquant l'utilité du composé pour le traitement préventif ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. 25
11. 11. Méthode in vitro de diagnostic ou de suivi de l'évolution d'une acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée chez un sujet, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon 30 biologique d'un sujet contrôle.
12. 12. Méthode selon la revendication 11, dans laquelle l'expression de la protéine est déterminée par un dosage de cette protéine par immunoessai. 35
13. 13. Méthode selon la revendication 12, dans laquelle l'immunoessai est un dosage ELISA.10
14. 14. Méthode selon la revendication 12, dans laquelle l'expression du gène est déterminée par mesure de la quantité d'ARNm correspondant.
15. 15. Méthode in vitro de détermination d'une susceptibilité d'un sujet à développer une acné, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité de la protéine CIDEA, de l'expression de son gène ou de l'activité d'au moins un de ses promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle.
16. 16. Méthode selon la revendication 15, dans laquelle l'expression de la protéine est déterminée par un dosage de cette protéine par un immunoessai.
17. 17. Méthode selon la revendication 16, dans laquelle l'immunoessai est un dosage ELISA ou un radioimmunoessai.
18. 18. Méthode selon la revendication 15, dans laquelle l'expression du gène est déterminée par mesure de la quantité d'ARNm correspondant.
19. 19. Utilisation du gène CIDEA ou de la protéine CIDEA comme marqueur pour cribler des modulateurs PPAR candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. 25
20. 20. Utilisation selon la revendication 19, comprenant la détermination de la capacité d'un modulateur PPAR à moduler l'expression ou l'activité de CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs.
21. 21. Utilisation selon la revendication 19 ou 20, dans laquelle le modulateur PPAR est 30 un modulateur PPARy.
22. 22. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 19 à 21, dans laquelle le modulateur est un agoniste du récepteur PPAR. 35
23. 23. Utilisation du gène CIDEA ou de la protéine CIDEA comme marqueur pour cribler des modulateurs AR (récepteur des androgènes) candidats pour le traitement de20l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée.
24. 24. Utilisation selon la revendication 23, comprenant la détermination de la capacité 5 d'un modulateur AR à moduler l'expression ou l'activité de CIDEA ou l'expression de son gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs.
25. 25. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 23 ou 24, dans laquelle le modulateur est un agoniste du récepteur AR.