FR2883296A1 - Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes - Google Patents

Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes Download PDF

Info

Publication number
FR2883296A1
FR2883296A1 FR0502553A FR0502553A FR2883296A1 FR 2883296 A1 FR2883296 A1 FR 2883296A1 FR 0502553 A FR0502553 A FR 0502553A FR 0502553 A FR0502553 A FR 0502553A FR 2883296 A1 FR2883296 A1 FR 2883296A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
particles
microorganisms
medium
magnetic
microorganism
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR0502553A
Other languages
English (en)
Other versions
FR2883296B1 (fr
Inventor
Nicolas Bara
Thierry Bernardi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Biofilm Control SAS
Original Assignee
Individual
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to FR0502553A priority Critical patent/FR2883296B1/fr
Application filed by Individual filed Critical Individual
Priority to CA002601366A priority patent/CA2601366A1/fr
Priority to US11/886,082 priority patent/US20080213856A1/en
Priority to RU2007137792/13A priority patent/RU2007137792A/ru
Priority to CNA2006800084091A priority patent/CN101156070A/zh
Priority to PCT/FR2006/000578 priority patent/WO2006097631A1/fr
Priority to BRPI0609830-4A priority patent/BRPI0609830A2/pt
Priority to MX2007011380A priority patent/MX2007011380A/es
Priority to EP06743578A priority patent/EP1859281A1/fr
Priority to AU2006224472A priority patent/AU2006224472A1/en
Publication of FR2883296A1 publication Critical patent/FR2883296A1/fr
Application granted granted Critical
Publication of FR2883296B1 publication Critical patent/FR2883296B1/fr
Priority to NO20075157A priority patent/NO20075157L/no
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/24Methods of sampling, or inoculating or spreading a sample; Methods of physically isolating an intact microorganisms
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/54326Magnetic particles
    • G01N33/54333Modification of conditions of immunological binding reaction, e.g. use of more than one type of particle, use of chemical agents to improve binding, choice of incubation time or application of magnetic field during binding reaction

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Coating Of Shaped Articles Made Of Macromolecular Substances (AREA)

Abstract

L'invention a pour objet une nouvelle méthode d'isolement de microorganisme basée sur la capacité desdits microorganisme à adhérer à la surface de particules.

Description

PROCEDE ET DISPOSITIF PERMETTANT D'ISOLER DES
MICROORGANISMES
La présente invention se rapporte à l'isolement des 5 microorganismes.
Nombre de microorganismes se développent en synthétisant un biofilm. Outre les bactéries les champignons, les algues, les protozoaires s'organisent également en biofilms.
Les biofilms sont donc omniprésents dans de nombreux domaines, présentant des risques sanitaires et causant des dommages relativement importants,.
Lorsqu'un biofilm se développe, il y a d'abord adhésion des bactéries sur un support puis colonisation de ce support. Les bactéries en se multipliant forment rapidement un film constitué par des strates de corps cellulaires sécrétant une gangue d'exopolysaccharide qui les protège des agressions du milieu environnant (Costerton et al. Bacterial Biofilms. Sciences1999; 284-6). La cinétique de formation d'un biofilm peut être subdivisée en 5 étapes (figure 1): - Conditionnement de la surface: Les molécules organiques ou minérales présentes dans la phase liquide vont s'adsorber sur la surface, pour y former un film conditionnant .
- L'adhérence ou adhésion réversible: Les microorganismes présents se rapprochent des surfaces par gravimétrie, mouvements browniens ou par chimiotactisme s'ils possèdent des flagelles. Au cours de cette première étape de fixation, faisant intervenir uniquement des phénomènes purement physiques et des interactions physico-chimiques faibles, les microorganismes peuvent encore être facilement décrochés.
- L'adhésion: Cette étape plus lente fait intervenir des interactions de plus forte énergie ainsi que le métabolisme microbien et les appendices cellulaires du microorganisme (flagelles, pilis,....). L'adhésion est un phénomène actif et spécifique. Les premiers colonisateurs vont s'attacher de manière irréversible à la surface grâce notamment à la synthèse d'exopolysaccharides (EPS). Ce processus est relativement lent et dépend des facteurs environnementaux et des microorganismes en présence.
La maturation du biofilm (développement et colonisation de la surface) : Après avoir adhéré à une surface, les bactéries se multiplient et se regroupent pour former des microcolonies entourées de polymères. Cette matrice de polymères (ou glycocalyx) va agir comme un ciment et renforcer l'association des bactéries entre-elles et avec la surface pour finalement former un biofilm et atteindre un état d'équilibre. Le biofilm se développe généralement en une structure tridimensionnelle qui constitue un lieu de confinement. Ce micro-environnement va être le siège de nombreuses modifications physiologiques et moléculaires par rapport au mode de croissance planctonique.
Le biofilm ainsi formé va occuper toute la surface qui lui est offerte si les conditions le lui permettent. Généralement la maturation du biofilm est corrélée à la production d'EPS même si certaines espèces de microorganismes ne synthétisant pas ou peu de polymères peuvent également adhérer et former des biofilms sur des surfaces.
Décrochement: Les biofilms sont des structures en perpétuel équilibre dynamique et évoluent en fonction du support, des microorganismes, et de l'environnement. Cette évolution peut se traduire par des décrochements de cellules ou d'agrégats.
Selon la présente invention, la propriété d'adhésion, de fixation des microorganismes est utilisée pour permettre l'isolement de ceux-ci.
Le principe de l'invention consiste à ajouter dans un prélèvement brut, plus ou moins liquide d'un milieu dont on veut étudier la contamination par un microorganisme des particules, particulièrement des billes, magnétiques ou magnétisables, à laisser les billes en contact avec le milieu pendant un temps suffisant à l'adhésion des microorganismes à la surface des particules, à isoler lesdites particules du milieu par tout moyen approprié, particulièrement à 'aide d'un aimant et à étaler lesdites particule sur un milieu de culture solide adéquat afin de réaliser une culture desdits microorganismes piégés avec les particules.
Ainsi l'invention à pour objet un procédé d'isolement d'au moins un microorganisme à partir d'un milieu les contenant, comprenant les étapes suivantes: a) introduction dans un prélèvement dudit milieu 20 d'une quantité donnée de particules magnétiques ou magnétisables b) incubation des particules et du milieu pendant un temps suffisant à l'adhésion des microorganismes à la surface desdites particules; c) séparation desdites particules du milieu d) étalement desdites particules sur un support compatible avec le développement des microorganismes; e) incubation desdites particules sur un support pendant un temps suffisant au développement de colonies correspondant au microorganisme isolé.
Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, le procédé peut comprendre une étape préalable de pré-culture du prélèvement dudit milieu contenant le microorganisme que l'on veut isoler. Pour cela on porte ledit prélèvement à une température compatible avec la viabilité des microorganismes. On sait parfaitement qu'outre les organismes vivants à des températures classiques (20 à 50 degrés Celsius), il existe des microorganismes vivants dans des conditions extrêmes en températures, en pression partielle de gaz (Oxygène, Azote, gaz carbonique, ...), en salinité, en pH (acide, basique), en conditions d'oxydoréductions, en conditions aérobies ou anaérobies. Dès Lors, l'Homme du Métier adaptera la température de culture aux exigences de l'organisme qu'il cultive. De la manière la plus courante, les températures de culture peuvent être comprises entre 20 et 50 degrés Celsius, de préférence entre 30 et 40 degrés Celsius. Cette étape de préculture qui a pour objectif d'enrichir le milieu de culture en microorganismes peut s'effectuer pendant un temps très variable en fonction des microorganismes, qui peut-être compris entre 20 minutes et 7 à 10 jours, de préférence entre 1 et 48 heures, éventuellement sous agitation.
Selon encore un autre mode de réalisation particulier de l'invention, le procédé peut comprendre une étape supplémentaire intercalée entre les étapes c) et d) du procédé selon l'invention, consistant en l'immersion facultative des billes obtenues à l'étape c) dans une solution de rinçage avantageusement aqueuse permettant d'éliminer le précédent milieu et permettant d'éliminer les microorganismes non adhérents (présents dans le liquide d'imbibition des billes). Cette étape permet de sélectionner les microorganismes les plus adhérents, dont l'adhésion est la plus irréversible. Cette étape peut aussi être l'occasion de traitements rapides ou prolongés pour tester les propriétés d'adhésion des microorganismes (traitements préventifs ou curatifs dans la solution de rinçage).
L'Homme du Métier sait déterminer sans difficulté la quantité de billes qu'il introduit dans le milieu.
Selon l'invention, l'incubation de l'étape b se poursuit pendant un temps qui peut être compris entre quelques secondes et quelques heures, de préférence entre 15 secondes et 45 minutes en fonction des microorganismes.
Après ce temps d'incubation, les microorganismes ont pu adhérer sur les particules (billes).
Selon l'invention, la séparation des particules et du milieu à l'étape c peut être réalisée selon toute méthode connue de l'Homme du Métier. Par exemple on pourrait prélever ces particules par centrifugation et élimination du milieu de culture, ou encore et préférentiellement selon l'invention, en utilisant un système générant un champ magnétique ou électrique capable d'attirer les particules, particulièrement un aimant. Selon cette forme de réalisation particulièrement préférée, les particules sont prélevées à l'aide d'un aimant qui est plongé dans le prélèvement.
Selon un mode de réalisation avantageux, le système générant un champ magnétique ou électrique capable d'attirer les particules, particulièrement un aimant, peut être protégé par tout système, particulièrement un revêtement amovible ou un capot, réalisé en tout matériau, par exemple du plastique, qui n'interfère pas avec les ondes magnétiques ou électriques. Encore plus avantageusement ledit capot est jetable après utilisation. On pourrait alors réutiliser cet aimant.
Selon encore un mode de réalisation particulier de l'invention, le procédé peut comporter une étape supplémentaire de lavage du système générant un champ magnétique ou électrique afin d'éliminer les microorganismes non adhérents présents dans le liquide de mouillage, ou les microorganismes faiblement adhérents. Au cours de cette étape supplémentaire, on plonge ledit système dans une solution de lavage qui peut par exemple être du milieu de culture stérile. L'Homme du Métier comprend que cette étape en principe ne dure pas plus de quelques secondes, tout au plus quelques minutes, le temps nécessaires à l'élimination des microorganismes nos adhérent à la surface du système.
Selon l'invention, l'étalement desdites particules sur un support compatible avec le développement des microorganismes peut être réalisé par dépôt desdites particules à la surface d'un dispositif de culture de microorganisme, par exemple une boîte de Pétri contenant un milieu de culture adéquat au développement des microorganismes.
Selon un mode de réalisation particulier, le dépôt peut-être réalisé en retirant l'aimant du capot plastique tout en rapprochant le capot plastique de la surface du dispositif de culture de microorganismes.
Selon un autre mode de réalisation de l'invention, les billes peuvent être déposées en utilisant un autre aimant placé sous la surface du dispositif de culture.
Pour étaler et disperser les billes, on peut utiliser tout système connu de l'Homme du Métier, comme par exemple un étaleur manuel. Selon un mode de réalisation particulier, on utilise un aimant rotatif placé sous la surface du dispositif de culture de microorganismes.
La dispersion des billes peut être obtenue aussi par un vortex liquide généré par la rotation dispositif de culture 25 de microorganisme.
Une fois les particules (billes) dispersées, le dispositif de culture est placé dans un incubateur pendant un temps suffisant au développement des microorganismes à la surface du dispositif. Ici l'Homme du métier adaptera le temps d'incubation et la température au microorganisme qu'il désire isoler. Ce temps peut être compris entre quelques heures et plusieurs jours, de préférence entre 4 heures et 48 heures. La température d'incubation peut être comprise entre 30 et 40 degrés Celsius.
D'autres avantages de l'invention apparaîtront dans les figures annexées dans lesquelles la figure 1 représente une comparaison des méthodes 5 traditionnelles de prélèvement des microorganismes (A) et la méthode selon l'invention (B).
la figure 2 représente les étapes de prélèvement et de rinçage des particules; la figure 3 représente le dépôt des particules à la 10 surface d'une boîte de Pétri; la figure 4 représente la dispersion des particules à la surface de la boîte de Pétri à l'aide d'un aimant rotatif.

Claims (1)

  1. 8 REVENDICATIONS
    1. Procédé d'isolement d'au moins un microorganisme à partir d'un milieu les contenant, comprenant les étapes suivantes: a) introduction dans un prélèvement dudit milieu d'une quantité donnée de particules magnétiques ou magnétisables; b) incubation des particules et du milieu pendant un temps suffisant au développement et à l'adhésion des microorganismes à la surface desdites particules; c) séparation desdites particules du milieu; d) étalement desdites particules sur un support compatible avec le développement des microorganismes; e) incubation desdites particules sur un support pendant un temps suffisant au développement de colonies correspondant au microorganisme isolé.
    2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend en outre une étape préalable de pré-culture du prélèvement dudit milieu contenant le microorganisme que l'on veut isoler, éventuellement sous agitation.
    3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'on porte ledit prélèvement à une température compatible avec la viabilité des microorganismes, particulièrement à une température comprise entre 20 et 50 degrés Celsius, de préférence entre 30 et 40 degrés Celsius.
    4. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'étape de préculture à une durée comprise entre 20 minutes et 10 jours, de préférence entre 1 heure et 48 heures.
    5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend en outre une étape supplémentaire entre les étapes c) et d), consistant en l'immersion facultative des billes obtenues à l'étape c) dans une solution de rinçage avantageusement aqueuse.
    6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que l'incubation de l'étape b se poursuit pendant un temps qui peut être compris entre quelques secondes et quelques heures, de préférence entre 15 secondes et 45 minutes en fonction des microorganismes.
    7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la séparation des particules et du milieu à l'étape c est réalisée par centrifugation et élimination du milieu de culture, ou encore en utilisant un système générant un champ magnétique ou électrique capable d'attirer les particules.
    8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la séparation des particules et du milieu à l'étape c est réalisée à l'aide d'un aimant.
    9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'aimant est plongé dans le prélèvement.
    10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le système générant un champ magnétique ou électrique capable d'attirer les particules, est protégé, particulièrement par un revêtement amovible, ou un capot.
    11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que ledit revêtement amovible ou capot est jetable.
    12. Procédé selon la revendication 7 ou 10, caractérisé en ce qu'il comporte une étape supplémentaire de lavage du système générant un champ magnétique ou électrique.
FR0502553A 2005-03-15 2005-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes Expired - Fee Related FR2883296B1 (fr)

Priority Applications (11)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR0502553A FR2883296B1 (fr) 2005-03-15 2005-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes
EP06743578A EP1859281A1 (fr) 2005-03-15 2006-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler des microorganismes
RU2007137792/13A RU2007137792A (ru) 2005-03-15 2006-03-15 Способ и устройство для изоляции микроорганизмов
CNA2006800084091A CN101156070A (zh) 2005-03-15 2006-03-15 用于分离微生物的方法和装置
PCT/FR2006/000578 WO2006097631A1 (fr) 2005-03-15 2006-03-15 Procede et dispositif permettant d’isoler des microorganismes
BRPI0609830-4A BRPI0609830A2 (pt) 2005-03-15 2006-03-15 processo de isolamento de pelo menos um microorganismo
CA002601366A CA2601366A1 (fr) 2005-03-15 2006-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler des microorganismes
US11/886,082 US20080213856A1 (en) 2005-03-15 2006-03-15 Method and Device for Isolating Micro-Organisms
AU2006224472A AU2006224472A1 (en) 2005-03-15 2006-03-15 Method and device for isolating micro-organisms
MX2007011380A MX2007011380A (es) 2005-03-15 2006-03-15 Metodo y dispositivo que permite aislar microorganismos.
NO20075157A NO20075157L (no) 2005-03-15 2007-10-10 Fremgangsmate og innretning for a isolere mikroorganismer

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR0502553A FR2883296B1 (fr) 2005-03-15 2005-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2883296A1 true FR2883296A1 (fr) 2006-09-22
FR2883296B1 FR2883296B1 (fr) 2007-05-18

Family

ID=35276220

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR0502553A Expired - Fee Related FR2883296B1 (fr) 2005-03-15 2005-03-15 Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes

Country Status (11)

Country Link
US (1) US20080213856A1 (fr)
EP (1) EP1859281A1 (fr)
CN (1) CN101156070A (fr)
AU (1) AU2006224472A1 (fr)
BR (1) BRPI0609830A2 (fr)
CA (1) CA2601366A1 (fr)
FR (1) FR2883296B1 (fr)
MX (1) MX2007011380A (fr)
NO (1) NO20075157L (fr)
RU (1) RU2007137792A (fr)
WO (1) WO2006097631A1 (fr)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012001312A1 (fr) * 2010-07-02 2012-01-05 Biofilm Control Procede de detection d'interactions moleculaires

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2866707A1 (fr) * 2004-02-23 2005-08-26 Thierry Bernardi Procede et dispositif permettant de detecter la formation et le developpement de biofilms dans un milieu de culture
EP2646564A4 (fr) * 2010-12-03 2014-05-07 Blood Cell Storage Inc Procédés d'isolement de microorganismes
FR3056929B1 (fr) * 2016-09-30 2021-01-22 Univ Claude Bernard Lyon Dispositif de nettoyage d’au moins un biofilm et procede de nettoyage dudit au moins un biofilm

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5491068A (en) * 1991-02-14 1996-02-13 Vicam, L.P. Assay method for detecting the presence of bacteria
WO2000001462A1 (fr) * 1998-07-01 2000-01-13 The Board Of Governors For Higher Education, State Of Rhode Island And Providence Plantations Dispositif continu a paroi rotative avec gradient de champ magnetique hybride pour perfectionnement des separations par affinite magnetique colloidale
WO2004003231A2 (fr) * 2002-07-01 2004-01-08 Sinvent As Fixation d'une substance cible
US20040224359A1 (en) * 2002-04-12 2004-11-11 Madonna Angelo J. Method for detecting low concentrations of a target bacterium that uses phages to infect target bacterial cells

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1118676A2 (fr) * 2000-01-21 2001-07-25 Chemagen AG Méthode pour l'isolation des cellules
DE10230147A1 (de) * 2001-10-09 2004-01-15 Profos Ag Verfahren zur unspezifischen Anreicherung von Bakterienzellen
WO2004111264A1 (fr) * 2003-06-13 2004-12-23 University Technologies International Inc. Essai de biofilm bacterien utilisant des billes magnetiques
FR2866707A1 (fr) * 2004-02-23 2005-08-26 Thierry Bernardi Procede et dispositif permettant de detecter la formation et le developpement de biofilms dans un milieu de culture

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5491068A (en) * 1991-02-14 1996-02-13 Vicam, L.P. Assay method for detecting the presence of bacteria
WO2000001462A1 (fr) * 1998-07-01 2000-01-13 The Board Of Governors For Higher Education, State Of Rhode Island And Providence Plantations Dispositif continu a paroi rotative avec gradient de champ magnetique hybride pour perfectionnement des separations par affinite magnetique colloidale
US20040224359A1 (en) * 2002-04-12 2004-11-11 Madonna Angelo J. Method for detecting low concentrations of a target bacterium that uses phages to infect target bacterial cells
WO2004003231A2 (fr) * 2002-07-01 2004-01-08 Sinvent As Fixation d'une substance cible

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MITCHELL BARBARA A ET AL: "Use of immunomagnetic capture on beads to recover Listeria from environmental samples", JOURNAL OF FOOD PROTECTION, vol. 57, no. 8, 1994, pages 743 - 745, XP009059144, ISSN: 0362-028X *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012001312A1 (fr) * 2010-07-02 2012-01-05 Biofilm Control Procede de detection d'interactions moleculaires
FR2962221A1 (fr) * 2010-07-02 2012-01-06 Biofilm Control Procede de detection d'interactions moleculaires
FR2962222A1 (fr) * 2010-07-02 2012-01-06 Biofilm Control Procede de detection d'interactions moleculaires
AU2011273229B2 (en) * 2010-07-02 2014-09-18 Biofilm Control Method for detecting molecular interactions
AP3750A (en) * 2010-07-02 2016-07-31 Biofilm Control Method for detecting molecular interactions
US9746407B2 (en) 2010-07-02 2017-08-29 Biofilm Control Method for detecting molecular interactions
EA028391B1 (ru) * 2010-07-02 2017-11-30 Биофильм Контроль Способ детекции молекулярных взаимодействий

Also Published As

Publication number Publication date
WO2006097631A1 (fr) 2006-09-21
MX2007011380A (es) 2008-03-18
CN101156070A (zh) 2008-04-02
FR2883296B1 (fr) 2007-05-18
BRPI0609830A2 (pt) 2010-04-27
NO20075157L (no) 2007-10-10
AU2006224472A1 (en) 2006-09-21
EP1859281A1 (fr) 2007-11-28
CA2601366A1 (fr) 2006-09-21
RU2007137792A (ru) 2009-04-20
US20080213856A1 (en) 2008-09-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Salama et al. Characterization, structure, and function of extracellular polymeric substances (EPS) of microbial biofilm in biological wastewater treatment systems: a review
Wang et al. Biofilm formation enables free-living nitrogen-fixing rhizobacteria to fix nitrogen under aerobic conditions
Flemming The perfect slime
Herzberg et al. Physiology and genetic traits of reverse osmosis membrane biofilms: a case study with Pseudomonas aeruginosa
Pires et al. Online monitoring of biofilm growth and activity using a combined multi-channel impedimetric and amperometric sensor
Aldred et al. The effects of a serine protease, Alcalase®, on the adhesives of barnacle cyprids (Balanus amphitrite)
Srinandan et al. Nutrients determine the spatial architecture of Paracoccus sp. biofilm
Zheng et al. Correlation of carotenoid accumulation with aggregation and biofilm development in Rhodococcus sp. SD-74
Dzionek et al. Fluorescein diacetate hydrolysis using the whole biofilm as a sensitive tool to evaluate the physiological state of immobilized bacterial cells
Fletcher Bacterial biofilms and biofouling
Lyu et al. Cultivation and diversity analysis of novel marine thraustochytrids
FR2883296A1 (fr) Procede et dispositif permettant d'isoler les microorganismes
Liu et al. Bioluminescent nanopaper for rapid screening of toxic substances
Villalobos et al. A BOD monitoring disposable reactor with alginate-entrapped bacteria
Wadhawan et al. A new method to determine initial viability of entrapped cells using fluorescent nucleic acid staining
Nagano et al. Cold-adapted yeasts in deep-sea environments
Ebrahimi et al. A microbial biosensor for hydrogen sulfide monitoring based on potentiometry
Romero et al. A novel method to reveal a ureolytic biofilm attachment and in situ growth monitoring by electrochemical impedance spectroscopy
Wagner et al. Initial phases of microbial biofilm formation on opaque, innovative anti‐adhesive surfaces using a modular microfluidic system
Sun et al. Monitoring early stages of bacterial adhesion at silica surfaces through image analysis
Vázquez-Nion et al. Response surface optimization of a method for extracting extracellular polymeric substances (EPS) from subaerial biofilms on rocky substrata
Maksimova et al. Biofilms of nitrile-hydrolyzing bacteria: Dynamics of growth, resistance to toxic substances, and biotechnological potential
Prieur et al. Piezophilic prokaryotes
Roy et al. Methods of sample preparation and assay of bacterial biofilms with special reference to their significance in agriculture and extreme environments
Djemai-Zoghlache et al. Electrochemical behavior of the 316L steel type in a marine culture of microalgae (Porphyridium purpureum) under the 12/12 h photoperiod and effect of different working electrode exposure conditions on the biofilm–metal interface

Legal Events

Date Code Title Description
PLFP Fee payment

Year of fee payment: 12

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 13

TP Transmission of property

Owner name: BIOFILM CONTROL, FR

Effective date: 20161202

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 14

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 16

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 17

ST Notification of lapse

Effective date: 20221105