FR2797263A1 - Oligonucleotide immunostimulant - Google Patents

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Abstract

L'invention concerne un oligonucléotide capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une séquence nucléotidique ayant la formule suivante 5'T T N1 N2 T T 3', dans laquelle T signifie Thymine, N1 et N2 peuvent chacun représenter l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine, et en ce qu'il est dépourvu de dinucléotide CG dans lequel la Cytosine C n'est pas méthylée. En particulier, un oligonucléotide d'intérêt présente la séquence suivante : 5'TTAGTTCTTAGTTN3 TTAGTT 3'.Un tel oligonucléotide trouve une application particulièrement intéressante comme adjuvant vaccinal.

Description

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OLIGONUCLEOTIDE IMMUNOSTIMULANT La présente invention est relative au domaine des immunostimulants. Plus particulièrement, l'invention concerne des oligonucléotides capables de stimuler des cellules humaines intervenant dans le système immunitaire, et à leur utilisation comme adjuvant vaccinal.
Un grand nombre d'oligonucléotides ont déjà été décrits dans l'art antérieur, en relation avec leurs propriétés immonostimulantes. Ainsi, la demande EP 0 468 520 décrit des polynucléotides immunostimulants constitués par un simple brin d'ADN linéaire comprenant de 10 à 100 nucléotides s'enchaînant selon une séquence palindromique.
Selon la demande WO 96/02 555, l'activité immunostimulatrice d'oligonucléotides est liée à la présence d'une séquence dinucléotique 5' CG 3', dans laquelle ni C ni G ne sont méthylés, l'activité immunostimulante étant plus forte si le motif CG est précédé en 5' du dinucléotide GA et/ ou suivi en 3' du dinucléotide TC ou encore TT.
Au contraire, selon la demande de brevet WO 98/52 962, il n'est pas nécessaire que la séquence de l'oligonucléotide soit un palindrome, ni qu'elle comprenne le dinucléotide CG ; en effet, les 3 nucléotides décrits dans cette demande pour une utilisation en tant qu'adjuvant vaccinal ont les séquences suivantes : 5' GACGTT 3', 5' GAGCTT 3', ainsi que 5' TCCGGA 3'.
Selon le brevet US 5,663,153, l'activité immunostimulante d'oligonucléotides n'est pas liée à la séquence des nucléotides, mais à la nature de la liaison entre nucléotides, la présence d'au moins une liaison phosphorothioate permettant d'induire une stimulation du système immunitaire.
La plupart des tests de l'art antérieur pour évaluer l'activité immunostimulante des oligonucléotides proposés, sont effectués soit in vitro sur des cellules
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animales (essentiellement des cellules murines), soit in vivo sur des souris.
Cependant, les différences existant entre le système immunitaire de la souris et celui de l'être humain, ont conduit à des différences entre les résultats obtenus sur des cellules murines et ceux obtenus sur des cellules humaines.
Or l'industrie pharmaceutique a un grand besoin d'immunostimulants pouvant être administrés à l'homme, notamment dans le domaine des vaccins.
La présente invention a donc pour but de proposer des oligonucléotides capables de stimuler des cellules du système immunitaire de l'être humain.
Pour atteindre ce but, l'invention a pour objet un oligonucléotide capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire caractérisé en ce qu'il comprend au moins une séquence 5' T T N1 N2 T T 3' dans laquelle T est la Thymine, et N1 et N2 peuvent chacun représenter l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine, et en ce qu'il est dépourvu de dinucléotide CG dans lequel la Cytosine C n'est pas méthylée.
L'invention a également pour objet l'utilisation d'un tel oligonucléotide pour la fabrication d'un médicament.
Selon une caractéristique de l'invention, l'oligonucléotide comprend de 6 à 100 nucléotides.
Selon une caractéristique particulière, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce que Ni représente l'Adénine et en ce que N2 représente la Guanine.
Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce que le motif 5' T T N1 N2 T T 3' est répété au moins 1 fois.
Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce que le motif 5' T T N1 N2 T T 3' est répété 2 fois.
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Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce que les motifs répétés 5' T T Ni N2 T T 3' sont séparés par un nucléotide N3 qui peut être à chaque fois identique ou différent et qui peut représenter A, C, T ou G.
Selon une caractéristique particulière, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce que le nucléotide N3 séparant les 2 premiers motifs T T N1 N2 T T lus lorsque la séquence est orientée 5'#3' représente la Cytosine.
Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est caractérisé en ce qu'il comprend la séquence 5' TTAGTTCTTAGTTN3TTAGTT 3', dans laquelle A représente l'Adénine, T la Thymine, G la Guanine, et C la Cytosine, et dans laquelle N3 peut signifier A, T, C ou G Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est capable d'induire la prolifération des lymphocytes humains.
Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est capable d'accroître l'expression des marqueurs d'activation CD25 et CD86 des lymphocytes B humains.
Selon une autre caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est capable d'induire la sécrétion de cytokines, en particulier l'IL 10 et l'Interféron [gamma].
L'invention a également pour objet un adjuvant vaccinal caractérisé en ce qu'il comprend au moins un oligonucléotide capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire possédant au moins une séquence 5' T T N1 N2 T T 3' dans laquelle T est la Thymine et, N1 et N2 peuvent chacun représenter l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine, l'oligonucléotide étant dépourvu de séquence dinucléotidique CG dans laquelle la Cytosine C ne serait pas méthylée.
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L'invention a également pour objet une composition vaccinale à usage humain comprenant au moins un antigène vaccinal caractérisée en ce qu'elle comprend en outre au moins un oligonucléotide capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire possédant au moins une séquence
5' T T N1 N2 T T 3' dans laquelle T signifie Thymine et, N1 et N2 peuvent chacun représenter l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine, l'oligonucléotide étant dépourvu de séquence dinucléotidique CG dans laquelle la Cytosine C ne serait pas méthylée.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture de la description qui va suivre, en référence aux figures 1 à 11qui illustrent les résultats obtenus lors des tests décrits aux exemples 2 à 7 En particulier, les Figures 1 et 2 indiquent le nombre de Coups par Minutes obtenus dans le test de l'Exemple .
Les Figures 3 et 5 indiquent le pourcentage de cellules CD20+ exprimant le marqueur CD25, pour les oligonucléotides obtenus selon l'exemple 1. De même, les Figures 4 et 6 indiquent le pourcentage de cellules CD20+ exprimant le marqueur CD86.
La Figure 7 indique le nombre de Coups par Minute obtenus dans le test de l'exemple 4.
La Figure 8 indique le pourcentage de cellules CD20+ exprimant le marqueur CD25, pour les oligonucléotides obtenus selon l'exemple 4 De même, la Figure 9 indique le pourcentage de cellules CD20+ exprimant le marqueur CD86.
La Figure 10 indique le nombre de spots mesurés pour la sécrétion d'Interféron y par des cellules stimulées en présence des oligonucléotides ayant les séquences 9 à 12 décrites à l'Exemple 4 La Figure 11 indique le nombre de spots mesurés pour la sécrétion d'IL 10 par des cellules stimulées en présence des oligonucléotides ayant les séquences 9 à 12 décrites à l' Exemple4.
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Par oligonucléotide au sens de la présente invention, on entend un polynucléotide comprenant au moins 6 nucléotides. En effet, contrairement à l'enseignement de l'article intitulé "CpG motifs in bacterial DNA trigger direct Bcell activation", Krieg et al., Nature 1995, on a remarqué qu'il n'était pas nécessaire que l'oligonucléotide ait au moins 8 nucléotides. Par contre, la limite supérieure de la taille des oligonucléotides n'est pas vraiment déterminée. On peut cependant noter que, plus l'oligonucléotide sera long, plus sa purification sera difficile à effectuer lors des étapes de synthèse , et plus le prix de revient en sera élevé. D'autre part, il est probable qu'un oligonucléotide de grande longueur aura plus de difficultés à pénétrer dans les cellules. Aussi, pour les besoins de la présente invention, on considère qu'une limitation de la taille de l'oligonucléotide à 100 nucléotides est appropriée. Cet oligonucléotide est de préférence un oligonucléotide simple brin; il peut s'agir d'un oligodésoxyribonucléotide ou d'un oligoribonucléotide. On a obtenu de particulièrement bons résultats en utilisant un oligodésoxyribonucléotide. Les oligonucléotides convenant aux fins de l'invention peuvent se présenter sous forme de phosphodiester ou, afin d'être plus stables, sous forme de phosphorothioates ou d'hybrides phosphodiester / phosphorothioates Les oligonucléotides phosphorothioates sont ceux préférés.
L'oligonucléotide selon l'invention est capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire. Cette stimulation est appréciée notamment par la lymphoprolifération ou par l'expression de marqueurs d'activation, tels que les marqueurs CD25 et CD86 des lymphocytes B Il est possible de sélectionner les oligonucléotides d'intérêt au moyen de tests différents de ceux proposés dans la présente demande, à condition cependant qu'il s'agisse de tests évaluant la capacité de stimulation de cellules humaines, et non pas comme dans la plupart des documents de l'art antérieur, de tests évaluant la capacité de la stimulation de cellules murines. Il serait notamment possible de tester l'expression d'autres marqueurs d'activation des lymphocytes B tels que les marqueurs CD69 ou CD56, ou l'expression de marqueurs de prolifération tels que le marqueur KI67, des tests relatifs à l'augmentation des marqueurs
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d'activation et de maturation des cellules dendritiques pourraient également être utilisés. De même, des tests permettant l'appréciation de l'augmentation de production de certaines cytokines telles que par exemple IL6, IL12, IL10, IFNy, TNFa. peuvent également être utilisés.
Selon une caractéristique de l'invention, l'oligonucléotide comprend au moins une séquence nucléotidique 5' T T N1 N2 T T 3' dans laquelle T signifie Thymine et, N1 et N2 peuvent représenter chacun l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine. Cette formule couvre ainsi 16 possibilités. Cette séquence peut être 5' terminale, 3' terminale ou être entourée par d'autres nucléotides. Elle peut être unique ou répétée plusieurs fois à l'identique à l'intérieur d'un même oligonucléotide. Un oligonucléotide selon l'invention peut également comprendre plusieurs séquences différentes correspondant chacune au motif 5' T T N1 N2 T T 3'.
Selon l'invention, l'oligonucléotide ne comporte pas de séquence palindromique. Malgré cette absence de séquence palindromique, un tel oligonucléotide est capable de stimuler des cellules humaines du système immunitaire Selon une caractéristique, l'oligonucléotide selon l'invention est dépourvu de dinucléotide CG dans lequel la Cytosine n'est pas méthylée. Cette exclusion s'applique également au motif N1N2. La capacité des oligonucléotides de l'art antérieur à être immunostimulants a presque toujours été interprétée comme liée à la présence de motifs CpG non méthylés (Cf. notamment l'article de Krieg et al dans Nature d'avril 1995 cité ci-dessus), cette interprétation étant en cohérence avec l'observation selon laquelle la fréquence de ce dinucléotide était 4 fois plus importante dans le génome des bactéries et des virus que dans celui des vertébrés. De façon surprenante, on a maintenant trouvé que des oligonucléotides entièrement dépourvus de ce motif dinucléotidique étaient cependant parfaitement capables de stimuler le système immunitaire humain.
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Selon un mode particulier de réalisation de la présente invention, le motif N1N2 correspond au dinucléotide AG, dans lequel A signifie Adénine et G signifie Guanine.
Selon une caractéristique avantageuse, le motif 5' TTAGTT 3' est répété au moins une fois dans l'oligonucléotide, et de préférence au moins 2 fois De préférence encore, les motifs répétés sont séparés par au moins un nucléotide N3, qui représente l'Adénine, la Cytosine, la Guanine ou la Thymine. A l'intérieur d'un oligonucléotide, ce nucléotide de séparation peut être toujours le même, ou être différent à chaque fois. De préférence, le nucléotide séparant les 2 premiers motifs TTAGTT de l'oligonucléotide, (lorsque l'on considère le sens de lecture 5'3') est constitué par la Cytosine.
De façon particulière, les oligonucléotides dont les séquences nucléotidiques répondent à la formule 5' TTAGTTCTTAGTTN3TTAGTT 3', dans laquelle N3 représente A, T, C ou G, sont ceux préférés au sens de la présente invention Selon une caractéristique particulière, l'oligonucléotide selon l'invention est dépourvu ou appauvri en séquence nucléotidique capable d'inhiber les cellules du système immunitaire humain. En effet, afin d'obtenir un effet global immunostimulant, si des motifs inhibiteurs ou neutralisants tels que, par exemple, ceux décrits dans la demande WO 98/52 581 sont présents, il faut que leur effet soit supprimé ou réduit, grâce à la présence d'une séquence à effet immunostimulant plus prononcé, ou grâce à la présence d'un plus grand nombre de séquences 5'TTN, N2TT3'.
La présente invention a également pour objet un adjuvant vaccinal comprenant au moins un oligonucléotide immunostimulant ayant au moins un motif 5' T T N1 N2 T T 3' tel que mentionné ci-dessus. Par adjuvant vaccinal, on entend un produit qui permet d'accroître ou de modifier la réponse du système immunitaire d'un organisme vis à vis de l'administration d'un antigène. En particulier, il peut s'agir d'une augmentation de la réponse humorale ou de la réponse cellulaire.
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L'action d'un adjuvant vaccinal peut également être, non pas une augmentation de la réponse qui se produirait en l'absence d'adjuvant, mais une orientation différente de la réponse produite : par exemple, orientation vers une réponse cellulaire plutôt qu'une réponse humorale, production de certaines cytokines plutôt que d'autres, production de certains types ou sous-types d'anticorps plutôt que d'autres, stimulation de certaines cellules plutôt que d'autres, etc...
L'oligonucléotide immunostimulant de la présente invention peut être utilisé comme adjuvant vaccinal quelle que soit la nature de l'antigène administré et quel que soit le nombre de valences utilisées. Il peut être le seul adjuvant utilisé ou, au contraire, être un élément d'une combinaison adjuvante.
L'action adjuvante de l'oligonucléotide selon l'invention peut être obtenue, soit lorsqu'il est associé à l'antigène ou aux antigènes lors de leur administration, i.e. lorsqu'ils font partie de la même composition vaccinale, soit lorsqu'il est administré séparément de l'antigène ou des antigènes. On préfère cependant l'utiliser dans la même composition vaccinale que l'antigène ou les antigènes à administrer.
L'oligonucléotide selon l'invention peut avantageusement être administré par toutes les voies susceptibles d'être utilisées pour une composition vaccinale: voie muqueuse ou voie systémique.
L'un des objets de l'invention est une composition vaccinale comprenant au moins un oligonucléotide immunostimulant ayant une séquence 5' T T N1N2 T T 3' telle que décrite ci-dessus.
Une composition vaccinale selon l'invention peut être destinée à l'immunisation contre une seule maladie, ou destinée à l'immunisation contre plusieurs maladies. Il peut s'agir d'une composition vaccinale liquide ou lyophilisée Elle peut comprendre, outre les antigènes, tout ou partie des composants habituellement présents dans un vaccin tels que tampons, stabilisants, conservateurs, ... etc. Elle peut également comprendre un ou plusieurs adjuvant (s) autre (s) que ceux objets de la présente invention. Elle peut
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également comprendre plusieurs adjuvants objets de la présente invention, constitués soit par des oligonucléotides ayant tous le même motif 5' T T Ni N2 T T 3' mais se différenciant par les nucléotides en 5' et/ou en 3', soit par des oligonucléotides ayant des motifs 5' T T N1 N2 T T 3' différents, dont les séquences en 5' et en 3' sont identiques ou différentes.
La composition vaccinale selon l'invention peut être destinée à une administration prophylactique ou à une administration thérapeutique.
La composition vaccinale selon l'invention peut être formulée de manière à optimiser l'action adjuvante de l'oligonucléotide objet de l'invention. Ainsi, l'oligonucléotide peut être couplé à un lipide, tel que le cholestérol ; il peut être intégré dans une émulsion de type huile / eau ou formulé sous forme de liposomes.
Les exemples qui suivent illustrent des modes de réalisation particuliers de la présente invention Exemple 1 :Synthèse des oliqonucléotides On synthétise 15 oligonucléotides ayant chacun un des motifs suivants :
Figure img00090001

5' TTAATT 3' 5' TTACTT 3' Série A 5' TTATTT 3' 5' TTAGTT 3' 5' TTTTTT 3' 5' TTTATT 3' Série T 5' TTTCTT 3' JE. . Sent 5' TTTGTT 3'
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Figure img00100001

5' TTCCTT 3' 5' TTCATT 3' Série C 5' TTCTTT 3' 5'TTGGTT 3' 5' TTGATT3' t Série G 5' TTGTTT 3' 5'TTGCTT 3' Et ayant 4 Adénine en 5' et 5 Adénine en 3'.
La synthèse de ces oligonucléotides est réalisée au moyen d'un automate synthétiseur fourni par Applied Biosystems qui met en #uvre la méthode chimique standard au phosphoramidite et qui comporte à chaque cycle une étape d'oxydation, qui est réalisée au moyen d'une solution tétraéthylthiuram / acétonitrile pour obtenir une liaison phosphorothioate.
On prépare en outre, de la même façon, un oligonucléotide A15(S) qui ne comprend que des A et qui est phosphorothioate sur toute sa longueur. Cet oligonucléotide est un témoin négatif car il n'entraîne ni prolifération ni augmentation de l'expression des marqueurs d'activation des lymphocytes B On prépare également un oligonucléotide 3Db (S) dont la séquence est identifiée dans la demande de brevet W096/02555 sous SEQ ID N 15 (5'GAGAACGCTCGACCTTCGAT3' ); cet oligonucléotide comporte des liaisons phosphorothioates sur toute sa longueur et est utilisé comme témoin positif.
Tous les oligonucléotides sont maintenus en solution dans du tampon PBS.
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Exemple 2 :Test de Lymphoprolifération On isole des lymphocytes à partir du sang périphérique d'un donneur, en procédant à une centrifugation sur un gradient de Ficoll. Ces lymphocytes sont ajustés à 2.106 cellules / ml dans du milieu de culture (RPMI 1640 + 10% de Sérum de Veau Foetal ainsi que de la Glutamine, de la Streptomycine et de la Pénicilline).
Les cellules sont distribuées en plaques 96 puits (fond rond) sous 100 l, soit 2.105 cellules par puits. On ajoute ensuite 100 l d'une solution 4 M d'oligonucléotides à tester produites à l'exemple 1 (1 seul type d'oligonucléotide par puits) afin d'obtenir une concentration finale 2 M Les cellules sont incubées pendant 48 à 72 heures.
La Thymidine tritiée (Amersham TRK 120) est diluée dans du milieu de culture puis distribuée dans les plaques à raison de 1 Ci par puits sous 50 l Après 7 à 8 heures d'incubation à l'étuve (5% CO2, 37 C), les plaques peuvent être congelées à -80 C et traitées plus tard A l'aide du "Harvester", on récolte le contenu des puits sur des plaques Unifilter GF/C et on réalise 6 lavages en eau distillée puis un lavage en éthanol 70% afin de précipiter l'ADN.
Après séchage des plaques, 25 l de liquide scintillant (Microscint-40, Packard) sont distribués dans chaque puits et permettent de quantifier la radioactivité (rayonnements émis par le tritium) en mesurant le nombre de coups / minute (cpm) émis par chaque puits sur le compteur Top Count (Packard) Les résultats obtenus pour chacun des oligonucléotides testés sont représentés sur les figures 1 et 2, qui indiquent, pour chaque oligonucléotide testé le nombre de coups par minute; on remarque que tous les
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oligonucléotides selon l'invention ont un résultat nettement supérieur au résultat obtenu avec le milieu seul ou le témoin négatif A15(S), ce qui signifie qu'ils sont tous capables de stimuler la prolifération des lymphocytes.
Exemple 3 : Test relatif aux marqueurs d'activation Le test est effectué à partir de lymphocytes isolés d 'un donneur comme décrit à l'exemple précédent, et ajustés à 2 106 cellules/ml dans le même milieu de culture Les cellules sont ensuite distribuées en plaques 12 puits sous un volume de 2 ml, soit 4.106 cellules / puits. On ajoute dans chaque puits une quantité d'oligonucléotides à tester préparées à l'exemple 1 (1 oligonucléotide / puits) suffisante pour obtenir une concentration en oligonucléotide 2 M. Puis les cellules sont incubées pendant 72 heures à 37 C. Les cellules sont ensuite doublement marquées au moyen de CD25PE / CD20FITC ou CD86PE / CD20FITC puis analysées sur FACScan. Les résultats obtenus sont illustrés sur les figures 3,4, 5 et 6 qui représentent pour chaque oligonucléotide testé, le pourcentage de cellules B (CD20+) qui expriment le marqueur CD25 ( celles qui sont CD25+)ou le marqueur CD86(celles qui sont CD86+). Les résultats représentés sur les figures 3 et 4 ont été obtenus lors d'un test réalisé à un moment différent du test dont les résultats sont illustrés sur les figures 5 et 6, ce qui explique la différence d'ordre de grandeur du nombre de coups par minute mesuré En effet, dans ce genre de manipulations, les tests sont très variables d'un dosage à l'autre, seule la comparaison des différents résultats obtenus lors d'un même test sont comparables entre eux, d'où la nécessité d'inclure lors de chaque test, un oligonucléotide-témoin ainsi qu'un dosage du milieu seul.
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On remarque que tous les oligonucléotides objets de l'invention activent les lymphocytes B qui expriment leur marqueur d'activation CD25 et CD86.
Exemple 4 : On prépare, de la même manière qu'à l'exemple 1, une série de 16 oligonucléotides dont les séquences sont les suivantes : Seq Id 1 : 5' TTAGTTATTAGTTATTAGTT 3' Seq Id 2 : 5' TTAGTTATTAGTTTTTAGTT 3' Seq Id 3 : 5' TTAGTTATTAGTTCTTAGTT 3' Seq Id 4 : 5' TTAGTTATTAGTTGTTAGTT 3' Seq Id 5 5' TTAGTTTTTAGTTATTAGTT 3' Seq Id 6 : 5' TTAGTTTTTAGTTTTTAGTT 3' Seq Id 7 : 5' TTAGTTTTTAGTTCTTAGTT 3' Seq Id 8 : 5' TTAGTTTTTAGTTGTTAGTT 3' Seq Id 9 : 5' TTAGTTCTTAGTTATTAGTT 3' Seq Id 10 : 5' TTAGTTCTTAGTTTTTAGTT 3' Seq Id 11 5' TTAGTTCTTAGTTCTTAGTT 3' Seq Id 12 5' TTAGTTCTTAGTTGTTAGTT 3' Seq Id 13 . 5' TTAGTTGTTAGTTATTAGTT 3' Seq Id 14 : 5' TTAGTTGTTAGTTTTTAGTT 3' Seq Id 15 5' TTAGTTGTTAGTTCTTAGTT 3' Seq Id 16 5' TTAGTTGTTAGTTGTTAGTT 3' Ces oligonucléotides sont de type phosphorothiate sur toute leur longueur
<Desc/Clms Page number 14>
Exemple 5 : On évalue la capacité qu'ont les oligonucléotides préparés à l'exemple 4 d'induire la prolifération des lymphocytes humains grâce à un test de lymphoprolifération tel que celui décrit à l'exemple 2. De la même façon qu'à l'exemple 2, la concentration en oligonucléotide par puits est 2 M, et les témoins sont constitués par le milieu seul, l'oligonucléotide A15(S) ainsi que l'oligonucléotide 3Db(S).
Les résultats obtenus, exprimés en Coups par Minute, sont représentés à la Figure 7 qui montre que tous les oligonucléotides selon l'invention sont capables d'induire la prolifération des lymphocytes et que de particulièrement bons résultats sont obtenus lorsque les séquences des oligonucléotides sont celles identifiées par les Seq Id 9 à 12, i e lorsque la Cytosine sépare les 2 premiers motifs TTN,N2TT de l'oligonucléotide Exemple 6 ' On évalue la capacité qu'ont les oligonucléotides préparés à l'exemple 4 d'induire l'expression des marqueurs d'activation CD25 et CD86 des lymphocytes B. Cette évaluation est effectuée grâce au test décrit à l'exemple 3 Les résultats obtenus avec les oligonucléotides préparés selon l'exemple 4 sont représentés sur les Figures 8 et 9 qui illustrent les pourcentages de cellules B (CD20+) qui expriment également le marqueur CD25 (Figure 8) ou le marqueur CD86 (Figure 9).
Les résultats obtenus dans ce test confirment ceux obtenus dans le test de lymphoprolifération: tous les oligonucléotides selon l'invention induisent l'expression de marqueurs d'activation des lymphocytes B humains, de particulièrement bons résultats sont obtenus lorsque les 2 premiers motifs TTN1N2TT de l'oligonucléotide sont séparés par une Cytosine.
<Desc/Clms Page number 15>
Exemple 7 : On évalue la capacité qu'ont les oligonucléotides selon la présente invention à induire la sécrétion de cytokines.
Pour cette évaluation, on isole des lymphocytes à partir du sang périphérique d'un donneur, en procédant à une centrifugation sur un gradient de Ficoll. Ces lymphocytes sont ajustés à 2.106 cellules / ml dans du milieu de culture (milieu AIM V + streptomycine + penicilline).
Les plaques 96 puits ELISPOT (fond plat en nitrocellulose) sont pré-incubées la veille avec une solution d'anticorps de capture de cytokines (IL-10 ou IFNy suivant le test réalisé ), puis saturées avec du milieu de culture.
On distribue ensuite 100 l de cellules dans les plaques ELISPOT, soit 2.105 cellules par puits, puis on ajoute 100 l d'une solution 4 M en oligonucléotides à tester, produits selon l'exemple 4 (1 seul type d'oligonucléotide par puits) afin d'obtenir une concentration finale 2 M. Le test est réalisé avec les oligonucléotides ayant les séquences décrites sous Seq Id 9, Seq Id 10, Seq Id 11 et Seq Id 12.
Les plaques sont incubées à 37 C, sous atmosphère à 5% de CO2. Au bout de 72 heures d'incubation, les cellules sont éliminées par lavage en présence de détergent (Tween 1 %) et les cytokines fixées sur les anticorps de capture sont révélées par l'addition successive d'anticorps de détection biotynylés (anti-IL- 10 ou anti-IFNy suivant le test réalisé), de streptavidine-HRP, et du substrat AEC Les spots (1 spot correspondant à 1 cellule sécrétrice de cytokine) sont compté à l'aide d'un compteur automatique. Les résultats sont exprimés en nombre de spots (nombre de cellules sécrétrices) par million de cellules.
Les résultats obtenus pour chacun des oligonucléotides testés sont représentés sur les figures 10 et 11, qui indiquent, pour chaque oligonucléotide testé le nombre de cellules sécrétrices de cytokines par million de cellules
<Desc/Clms Page number 16>
totales , on remarque que tous les oligonucléotides selon l'invention ont un résultat nettement supérieur au résultat obtenu avec le milieu seul ou le témoin négatif A15(S), ce qui signifie qu'ils sont tous capables d'induire la sécrétion de cytokines, notamment d'IL 10 et d'Interféron y.
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LISTE DE SEQUENCES <110> PASTEUR MERIEUX SERUMS & VACCINS <120> OLIGONUCLEOTIDE IMMUNOSTIMULANT <130> PM9908FR <140> <141> <160> 16 <170> Patentln Ver 2. 1 <210> 1 <211>20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 1 ttagttatta gttattagtt 20 <210> 2 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 2 ttagttatta gtttttagtt 20 <210> 3 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle- oligonucleotide <400> 3 ttagttatta gttcttagtt 20
<Desc/Clms Page number 18>
<210> 4 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle. oligonucleotide <400> 4 ttagttatta gttgttagtt 20 <210>5 <211>20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 5 ttagttttta gttattagtt 20 <210> 6 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle oligonucleotide <400> 6 ttagttttta gtttttagtt 20 <210> 7 <211>20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle oligonucleotide <400> 7 ttagttttta gttcttagtt 20
<Desc/Clms Page number 19>
<210> 8 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 8 ttagttttta gttgttagtt 20 <210> 9 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 9 ttagttctta gttattagtt 20 <210> 10 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle oligonucleotide <400> 10 ttagttctta gtttttagtt 20 <210> 11 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle oligonucleotide <400> 11 ttagttctta gttcttagtt 20
<Desc/Clms Page number 20>
<210> 12 <211>20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 12 ttagttctta gttgttagtt 20 <210> 13 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 13 ttagttgtta gttattagtt 20 <210> 14 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle. oligonucleotide <400> 14 ttagttgtta gtttttagtt 20 <210> 15 <211> 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle oligonucleotide <400> 15 ttagttgtta gttcttagtt 20
<Desc/Clms Page number 21>
<210> 16 <211 > 20 <212> ADN <213> Séquence artificielle <220> <223> Description de la séquence artificielle: oligonucleotide <400> 16 ttagttgtta gttgttagtt 20

Claims (10)

    Revendications 1. Oligonucléotide immunostimulant , caractérisé en ce qu'il comprend au moins une séquence nucléotidique ayant la formule suivante 5' T T N1 N2 T T 3', dans laquelle T signifie Thymine, N1 et N2 peuvent chacun représenter l'Adénine, la Thymine, la Cytosine ou la Guanine, et en ce qu'il est dépourvu de dinucléotide CG dans lequel la Cytosine C ne serait pas méthylée.
  1. 2. Oligonucléotide selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend de 6 à 100 nucléotides.
  2. 3. Oligonucléotide selon la revendication 1, caractérisé en ce que N1 représente l'Adénine et en ce que N2 réprésente la Guanine.
  3. 4. Oligonucléotide selon une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le motif 5' T T N, N2 T T 3' est répété au moins 1 fois.
  4. 5. Oligonucléotide selon la revendication précédente caractérisé en ce que le motif motif 5' T T Ni N2 T T 3' est répété 2 fois.
  5. 6. Oligonucléotide selon une des revendications 4 et 5, caractérisé en ce que les motifs répétés 5' T T N1 N2 T T 3' sont séparés par un nucléotide N3 qui peut être à chaque fois identique ou différent et qui peut représenter A, C, T ou G.
  6. 7. Oligonucléotide selon la revendication précédente, caractérisée en ce que le nucléotide N3 séparant les 2 premiers motifs T T N1 N2 T T lus lorsque la séquence est orientée 5'->3' représente la Cytosine
    <Desc/Clms Page number 23>
    8 Oligonucléotide selon une des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'il comprend la séquence 5' TTAGTTCTTAGTTN3TTAGTT 3', dans laquelle A représente l'Adénine, T la Thymine, G la Guanine, et C la
    Cytosine, et dans laquelle N3 peut signifier A, T, C ou G.
  7. 9. Oligonucléotide selon une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est capable d'induire la prolifération des lymphocytes humains.
    10 Oligonucléotide selon une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est capable d'induire la sécrétion de cytokines 11.Oligonucléotide selon la revendication précédente, caractérisé en ce qu'il est capable d'induire la sécrétion d'IL 10 12.Oligonucléotide selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il est capable d'induire la sécrétion d'Interféron y.
  8. 13.Oligonucléotide selon une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est capable d'accroître l'expression des marqueurs d'activation
    CD25 et CD86 des lymphocytes B humains.
  9. 14. Utilisation d'un oligonucléotide selon une des revendications précédentes pour la fabrication d'un médicament 15 Utilisation d'un oligonucléotide selon une des revendications 1 à 10, pour la fabrication d'un immunostimulant humain 16. Utilisation d'un oligonucléotide selon une des revendications 1 à 10, pour la fabrication d'un adjuvant vaccinal.
    <Desc/Clms Page number 24>
  10. 17. Utilisation d'un oligonucléotide selon une des revendications 1 à 10, pour la fabrication d'une composition vaccinale 18. Composition vaccinale à usage humain, comprenant au moins un antigène vaccinal, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre au moins un oligonucléotide selon une des revendications 1 à 10
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