FR2754823A1 - Nouveaux derives du chitosan, compositions comportant du chitosan ou ses derives et application de ces compositions sur le transfert d'acide nucleique dans une cellule hote - Google Patents
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Abstract
La présente invention a pour objet un composé chitosan présentant de 5 à 300 résidus glucosamine, une préparation substantiellement pure de chitosan, une composition en comprenant ainsi que l'utilisation thérapeutique de cette dernière pour le transfert d'une substance thérapeutiquement active dans une cellule hôte. La présente invention concerne également un procédé pour préparer un tel composé ou une telle préparation.
Description
La présente invention a pour objet des composés de chitosan comprenant de 5 à 300 répétitions d'unités glucosamines et une composition pharmaceutique comprenant de tels composés. Plus particulièrement, la présente invention concerne un procédé de préparation de chitosan selon l'invention et son utilisation pour le transfert d'un acide nucléique dans une cellule hôte.
Le transfert de gènes dans une cellule donnée est à la base même de la thérapie génique. Cette nouvelle technologie dont le champ d'application est vaste, permet d'envisager le traitement de maladies graves pour lesquelles les alternatives thérapeutiques classiques sont peu efficaces voire inexistantes et concerne aussi bien les maladies génétiques (hémophilie, mucoviscidose, myopathie ...) qu'acquises (cancer, syndrome d'immunodéficience acquise SIDA...).
L'approche la plus pratiquée consiste à utiliser un vecteur viral pour introduire l'acide nucléique thérapeutique dans les cellules à traiter et, en particulier rétroviral et adénoviral. En effet, les virus ont développé des mécanismes sophistiqués pour traverser les membranes cellulaires, échapper à la dégradation au niveau des lysosomes et faire pénétrer leur génome dans les noyaux afin d'assurer l'expression du gène thérapeutique. Cependant, l'approche virale a ses limitations, notamment une capacité de clonage restreinte, une production potentielle de particules virales compétentes pour la replication susceptibles de dissemination dans l'organisme hôte et l'environnement, un risque de mutagénèse insertionnelle dans le cas des vecteurs rétroviraux et une induction de réponses immunitaires et inflammatoires chez l'hôte qui entravent les répétitions de traitement dans le cas des vecteurs adénoviraux.
Ces inconvénients importants pour un usage humain justifient la recherche de systèmes alternatifs de transfert d'acides nucléiques. A cet égard, de nombreux composés amphiphiles et cationiques ont déjà été décrits dans la litérature (voir par exemple Behr et al. 1994, Bioconj Chem 5, 382-389).
Dans cette optique, il peut également être avantageux d'avoir recours à des polymères (répétition d'unités monomèriques). Cependant, les polymères protéiques sont à éviter du fait de leur nature potentiellement immunogène. Les polymères neutres tels que les dextrans, polyvinylpyrrolidone (PVP) et polyéthylèneglycol (PEG) ont l'avantage d'être peu toxiques in vivo mais, du fait de l'absence de charges positives, ne complexent pas les acides nucléiques de façon satisfaisante. Enfin, les polymères cationiques, tels que les dendrimères (WO 95/24221), le polyéthylène imine (WO 96/02655) et la polylysine (WO 95/33061) pourraient présenter une activité hémolytique après administration intraveineuse.
Un autre polymère cationique est constitué par le chitosan, un polysaccharide naturel formé par la répétition linéaire de résidus de glucosamine. 11 existe d'ores et déjà des préparations commerciales de chitosan obtenues par déacylation de la chitine. D'une manière générale, elles comportent une longue chaîne d'unités de glucosamine et présentent une masse moléculaire moyenne élevée pouvant atteindre 2000 kDa. A titre indicatif, les préparations de plus faible masse moléculaire disponibles à l'heure actuelle ont environ 70 kDa et comportent en moyenne 430 résidus glucosamine (une unité glucosamine à une masse moléculaire de 161 Da).
Quelques documents de l'art antérieur reportent l'usage du chitosan pour le transfert de substances médicamenteuses et de polypeptides (Berscht et al., 1994,
Biomaterials 15, 593-600 ; Chandry et Sharma, 1990, Biomater. ArtifCells Artif
Organs 18, 1-24 et Illum et al., 1994, Pharm. Res. 11, 1186-1189) et plus récemment d'acides nucléiques (Murata et al., 1996, Carbohydrate Polymers 29, 69-74). Ce dernier document décrit la mise en oeuvre de chitosan dont les résidus amines sont quaternisés par triméthylation et conjugué à du galactose pour cibler plus particulièrement les cellules hépatiques. Ce document ne mentionne pas la possibilité de lier l'ADN sans quaternisation préalable.
Biomaterials 15, 593-600 ; Chandry et Sharma, 1990, Biomater. ArtifCells Artif
Organs 18, 1-24 et Illum et al., 1994, Pharm. Res. 11, 1186-1189) et plus récemment d'acides nucléiques (Murata et al., 1996, Carbohydrate Polymers 29, 69-74). Ce dernier document décrit la mise en oeuvre de chitosan dont les résidus amines sont quaternisés par triméthylation et conjugué à du galactose pour cibler plus particulièrement les cellules hépatiques. Ce document ne mentionne pas la possibilité de lier l'ADN sans quaternisation préalable.
En outre, les préparations de l'état de la technique présentent certains inconvénients qui compromettent leur utilisation pour le transfert de gènes, notamment chez l'homme. En particulier, elles contiennent des pigments et d'autres contaminants qui même en faible quantité peuvent être nocifs. De plus, leur solubilité dans l'eau ou les tampons de conditionnement acceptables d'un point de vue pharmaceutique est médiocre et nécessite l'ajout d'au moins 0,1 % d'acide acétique et la solution obtenue reste visqueuse. Enfin, il est fort probable que la complexation de ces longues chaînes de polycations (en moyenne 430 unités pour les préparations de plus faible masse moléculaire) avec une longue chaîne de polyanions (acide nucléique) favorise les liaisons interchaînes et donc la formation de complexes de grande taille susceptibles de précipiter en solution. La présente invention apporte une solution avantageuse à ces différents problèmes.
On a maintenant généré par hydrolyse acide, des fragments de chitosan de faible masse moléculaire. : inférieure à 5 kDa, comprise entre 5 et 10 kDa et : supérieure à 10 kDa/et montré leurs propriétés particulièrement avantageuses pour le transfert de gênes. Les fragments de chitosan de la présente invention ont une taille suffisante pour former avec l'acide nucléique thérapeutique un complexe d'une stabilité adéquate pour permettre son transport dans la cellule hôte mais également sa libération iw vivo. En outre, le procédé mis en oeuvre permet de réduire les pigments qui contaminent les préparations de l'art antérieur et d'améliorer la solubilité dans l'eau.
C'est pourquoi la présente invention a pour objet un composé de formule générale [X]n dans laquelle n représente un nombre entier de 5 à 300 et X a la formule (I) suivante:
Un premier objet de l'invention concerne un composé comprenant une répétition linéaire de 5 à 300 résidus glucosamines de formule (I) telle que définie ci-dessus.
Un composé selon l'invention est avantageusement utilisé pour son pouvoir transfectant pour le transfert d'un gène ou d'un vecteur intérêt dans une cellule hôte. On préfère tout particulièrement le cas où deux résidus de glucosamine sont liés de la manière suivante:
De manière avantageuse, dans la formule générale [X]n, n représente un nombre entier de 5 à 150, de manière préférée, de 5 à 75 et, de manière tout à fait préférée, n est compris entre 5 et 50.
Les composés particulièrement préférés dans le cadre de la présente invention sont les suivants (i) un composé présentant une masse moléculaire moyenne inférieure à 5 kDa, (ii) un composé présentant une masse moléculaire moyenne comprise entre 5
et l0 lDa, et (iii) un composé présentant une masse moléculaire moyenne supérieure à 10
kDa et inférieure à 50 kDa.
et l0 lDa, et (iii) un composé présentant une masse moléculaire moyenne supérieure à 10
kDa et inférieure à 50 kDa.
Bien entendu, un composé selon l'invention peut être modifié chimiquement par addition, délétion et/ou substitution de radicaux ou groupements chimiques de manière à améliorer sa stabilité, sa demi-vie, la complexation avec l'acide nucléique et/ou son pouvoir transfectant. La modification peut porter, sur une partie (modification partielle) ou l'ensemble (modification complète) des résidus glucosamines et sur un ou plusieurs radical(aux) de chacun des résidus glucosamines. Selon un mode de réalisation avantageux, un composé selon l'invention est modifié par N-, C- et/ou O-alkylation, -acylation, -amino-alkylation et/ou -polyoxyéthylénation (voir par exemple Dunn et al., 1993, J. Applied
Polymer Science 50, 353-365 ; Boullanger et al., 1995, Carbohydr. Res. 278, 91101; Muzzarelli et al., 1983, J. Memb. Science 16, 295-308). A cet égard, les composés particulièrement préférés sont la poly-N-dodécyl-polygluco samine dans lequel le radical NH2 de la formule (I) est remplacé par NH-(CH2)1l-CH3 et la mono-Ca-octadécyl-polyglucosamine dans lequel le radical OH du composé selon l'invention en bout de chaîne est remplacé par O-(CH2)17-CH3. Mais il est également possible de greffer un résidu alkyl de type hexyl à octadécyl ou un résidu alkyl mono non saturé de type oléoyl.
Polymer Science 50, 353-365 ; Boullanger et al., 1995, Carbohydr. Res. 278, 91101; Muzzarelli et al., 1983, J. Memb. Science 16, 295-308). A cet égard, les composés particulièrement préférés sont la poly-N-dodécyl-polygluco samine dans lequel le radical NH2 de la formule (I) est remplacé par NH-(CH2)1l-CH3 et la mono-Ca-octadécyl-polyglucosamine dans lequel le radical OH du composé selon l'invention en bout de chaîne est remplacé par O-(CH2)17-CH3. Mais il est également possible de greffer un résidu alkyl de type hexyl à octadécyl ou un résidu alkyl mono non saturé de type oléoyl.
De manière particulièrement avantageuse, le composé selon l'invention est un sel de chitosanium, notamment un sulphate, un phosphate et, plus préférentiellement, un chlorure.
Les composés selon l'invention peuvent être obtenus de différentes manières. Bs peuvent par exemple être synthétisés chimiquement à partir du monomère de glucosamine par polymérisation ou à partir d'une préparation de haute masse moléculaire par hydrolyse enzymatique ménagée. Mais on préfère tout particulièrement mettre en oeuvre un procédé d'hydrolyse acide des préparations de chitosan de l'état de la technique suivi d'une diafiltration différentielle, tel que décrit ci-après.
La présente invention concerne également une préparation substantiellement pure de chitosan. Elle est en particulier obtenue par toute technique de purification classique et notamment, par extraction des pigments et autres contaminants résiduels. Cette étape de purification peut être réalisée sur les préparations commerciales de chitosan pour générer une préparation substantiellement pure de masse moléculaire élevée ou non qui peut être utilisée pour complexer un acide nucléique.
La présente invention concerne également une composition comprenant au moins un composé ou une préparation selon l'invention et une substance thérapeutiquement active. n s'agit préférentiellement d'une substance chargée négativement et, en particulier, d'un acide nucléique. Par acide nucléique, on entend aussi bien un acide désoxyribonucléique (ADN) qu'un acide ribonucléique (ARN) sens ou antisens. Par ailleurs, l'acide nucléique peut être homologue ou hétérologue à la cellule hôte. fi peut s'agir de séquences naturelles, hybrides ou synthétiques dérivées d'ADN génomique, d'ADNc, d'ARNm, d'ARNr, d'ARNt, d'ARN viral, d'une origine quelconque (procaryote, eucaryote, virus, parasite, plante ...). Elles peuvent être obtenues par les techniques conventionnelles de biologie moléculaire (clonage, PCR pour Polymerase Chain Reaction en anglais...) ou par synthèse chimique.
Selon un mode de réalisation particulier, l'acide nucléique mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention est un vecteur pour l'expression d'un gène d'intérêt thérapeutique. Le vecteur d'expression est avantageusement sous forme de plasmide mais on peut également avoir recours à un vecteur viral (dérivé d'un rétrovirus, adénovirus, poxvirus, virus de l'herpès, virus associé à l'adénovirus...).
S'agissant du mode préféré, le choix des plasmides utilisables dans la présente invention est vaste. On peut employer un plasmide/vecteur de l'état de la technique ou le construire par les techniques de manipulations génétiques (Maniatis et al., 1989, Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring
Harbor NY). Avantageusement, il possède les éléments génétiques lui permettant de se repliquer et de se maintenir dans un microorganisme et/ou une cellule hôte, comme par exemple au moins une origine de replication et un gène de sélection.
Harbor NY). Avantageusement, il possède les éléments génétiques lui permettant de se repliquer et de se maintenir dans un microorganisme et/ou une cellule hôte, comme par exemple au moins une origine de replication et un gène de sélection.
Dans ce dernier cas, il peut s'agir d'un gène codant pour une auxotrophie ou conférant une résistance à un antibiotique (ampicilline, tétracycline, puromycine,
G418, chloramphénicol ...). Bien entendu, le plasmide en usage dans la présente invention peut également comprendre des éléments supplémentaires améliorant son maintien, sa stabilité dans la cellule hôte ou encore son intégration dans les chromosomes de l'hôte. D'une manière générale, de tels éléments sont connus de l'homme de l'art.
G418, chloramphénicol ...). Bien entendu, le plasmide en usage dans la présente invention peut également comprendre des éléments supplémentaires améliorant son maintien, sa stabilité dans la cellule hôte ou encore son intégration dans les chromosomes de l'hôte. D'une manière générale, de tels éléments sont connus de l'homme de l'art.
Conformément aux buts poursuivis par la présente invention, le gène d'intérêt thérapeutique en usage dans la présente invention peut coder pour un ribozyme, un ARN antisens ou encore un ARNm qui sera ensuite traduit en polypeptide. n peut s'agir d'un polypeptide mature, d'un précurseur et notamment un précurseur destiné à être secrété et comprenant un peptide signal, d'un polypeptide natif, tronqué, chimère provenant de la fusion de séquences d'origines diverses ou d'un polypeptide muté présentant des propriétés biologiques améliorées et/ou modifiées.
Parmi les polypeptides auxquels on peut envisager d'avoir recours, on peut citer plus particulièrement: - les cytokines ou lymphokines (interférons a, P et y, interleukines et
notamment l'1L-2, l'1L-6, l'1L-10 ou l'IL-12, facteurs nécrosant des tumeurs
(TNF), facteurs stimulateurs de colonies (GM-CSF, C-CSF, M-CSF...); - les récepteurs cellulaires ou nucléaires (récepteurs reconnus par des
organismes pathogènes (virus, bactéries, ou parasites) et, de préférence,
par le virus VIH (Virus de l'Immunodéficience Humain) ou leurs ligands; - les protéines capables de complémenter une activité cellulaire déficiente
notamment dans le cadre d'une maladie génétique (facteur VII, facteur
VIII, facteur DZ, dystrophine ou minidystrophine, insuline, protéine CFTR
(Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator), hormones de
croissance (hGH) - les enzymes (uréase, rénine, thrombine...); - les inhibiteurs d'enzymes (al-antitrypsine, antithrombine III, inhibiteurs de
protéases virales...); - les polypeptides à effet anti-tumoral capables d'inhiber au moins
partiellement l'initiation ou la progression de tumeurs ou cancers (ARN
anti-sens, anticorps, inhibiteurs agissant au niveau de la division cellulaire
ou des signaux de transduction, produits d'expression des gènes
suppresseurs de tumeurs, par exemple p53 ou Rb, polypeptides ou peptides
stimulant le système immunitaire...); - les protéines du complexe majeur d'histocompatibilité des classes I ou II ou
protéines régulatrices agissant sur l'expression des gènes correspondants; - les polypeptides capables d'inhiber une infection virale, bactérienne ou
parasitaire et/ou son développement (polypeptides antigéniques ayant des
propriétés immunogènes, épitopes antigéniques, anticorps, variants trans
dominants susceptibles d'inhiber l'action d'une protéine native par
compétition ...); - les toxines (thymidine kinase de virus simplex de l'herpès l (TK-HSV-1),
ricine, toxine cholérique, diphtérique ...) ou immunotoxines; et - les marqueurs (p-galactosidase,luciférase...).
notamment l'1L-2, l'1L-6, l'1L-10 ou l'IL-12, facteurs nécrosant des tumeurs
(TNF), facteurs stimulateurs de colonies (GM-CSF, C-CSF, M-CSF...); - les récepteurs cellulaires ou nucléaires (récepteurs reconnus par des
organismes pathogènes (virus, bactéries, ou parasites) et, de préférence,
par le virus VIH (Virus de l'Immunodéficience Humain) ou leurs ligands; - les protéines capables de complémenter une activité cellulaire déficiente
notamment dans le cadre d'une maladie génétique (facteur VII, facteur
VIII, facteur DZ, dystrophine ou minidystrophine, insuline, protéine CFTR
(Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator), hormones de
croissance (hGH) - les enzymes (uréase, rénine, thrombine...); - les inhibiteurs d'enzymes (al-antitrypsine, antithrombine III, inhibiteurs de
protéases virales...); - les polypeptides à effet anti-tumoral capables d'inhiber au moins
partiellement l'initiation ou la progression de tumeurs ou cancers (ARN
anti-sens, anticorps, inhibiteurs agissant au niveau de la division cellulaire
ou des signaux de transduction, produits d'expression des gènes
suppresseurs de tumeurs, par exemple p53 ou Rb, polypeptides ou peptides
stimulant le système immunitaire...); - les protéines du complexe majeur d'histocompatibilité des classes I ou II ou
protéines régulatrices agissant sur l'expression des gènes correspondants; - les polypeptides capables d'inhiber une infection virale, bactérienne ou
parasitaire et/ou son développement (polypeptides antigéniques ayant des
propriétés immunogènes, épitopes antigéniques, anticorps, variants trans
dominants susceptibles d'inhiber l'action d'une protéine native par
compétition ...); - les toxines (thymidine kinase de virus simplex de l'herpès l (TK-HSV-1),
ricine, toxine cholérique, diphtérique ...) ou immunotoxines; et - les marqueurs (p-galactosidase,luciférase...).
II est à signaler que cette liste n'est pas limitative et que d'autres gènes peuvent également être employés.
Avantageusement, le gène thérapeutique est placé sous le contrôle des éléments nécessaires à son expression dans la cellule hôte. Par "éléments nécessaires" on entend l'ensemble des éléments permettant sa transcription en ARN et la traduction d'un ARNm en polypeptide. Parmi ceux-ci, le promoteur revêt une importance particulière. II peut dériver d'un gène quelconque (eucaryote, viral, promoteur naturel du gène d'intérêt en question ...) ou peut être hybride. Par ailleurs, il peut être constitutif ou régulable. Alternativement; il peut être modifié de manière à améliorer l'activité promotrice, supprimer une région inhibitrice de la transcription, modifier son mode de régulation, introduire un site de restriction... On peut mentionner, à titre d'exemples, les promoteurs viraux CMV (Cytomegalovirus), du gène TK du virus HSV-I, précoce du virus SV40 (Simian Virus 40), adénoviral précoce (ElA) ou tardif (MLP pour Major Late Promoter) ou encore les promoteurs eucaryotes des gènes PGK (Phospho Glycerate kinase) murin ou humain, a l-antitrypsine (foie-spécifique), immunoglobulines (lymphocytespécifique).
Bien entendu, l'acide nucléique peut en outre comprendre des éléments additionnels tels que séquence intronique, séquence signal, séquence de localisation nucléaire, séquence terminatrice de la transcription, site d'initiation de la traduction de type
IRES ou autre... On indique également que le vecteur peut comporter plusieurs gènes d'intérêt placés sous le contrôle d'éléments de régulation indépendants ou communs.
IRES ou autre... On indique également que le vecteur peut comporter plusieurs gènes d'intérêt placés sous le contrôle d'éléments de régulation indépendants ou communs.
Selon un mode de réalisation optimal, les proportions respectives du composé selon l'invention et de l'acide nucléique sont de préférence déterminées de sorte que le rapport en charge dudit acide nucléique audit composé (R ADN/composé) est
compris entre 10/1 et 1J10 et, de manière préférée, entre 1/1 et 1/5.
compris entre 10/1 et 1J10 et, de manière préférée, entre 1/1 et 1/5.
Une composition selon l'invention peut être utilisée telle qu'elle ou en association avec d'autres composés et, en particulier un adjuvant capable d'améliorer son pouvoir transfectant. Les adjuvants utilisés préférentiellement dans la composition selon l'invention sont les composés amphiphiles cationiques et/ou les lipides neutres ou zwitterioniques. Dans le premier cas, on préfère un composé mono, di ou tri alkylé ou acylé portant de 1 à 4 charges positives tel qu'un lipide cationique. A titre d'exemples, on peut citer le 5-carboxyspermylglycine dioctadécylamide (DOGS), le 3 p [N-(N, N'-diméthylaminoéthane)-carbamoyl] cholestérol (DC-Chol), le (2,3droléylocyl-N-[2(sperminecarboxamido) éthyl] N, N-diméthyl-l-propanaminium trifluoroacétate) (DOPA), la spermine cholestérol et la spermidine cholestérol.
S'agissant d'un lipide neutre ou zwitterionique, on peut mentionner les phosphatidyl éthanolamine, phosphatidylcholine, phosphocholine, sphyngomyéline, céramide et cérébroside ou leurs dérivés. De préférence, il s'agit de la dioléyl phosphatidyl éthanolamine (DOPE).
Une composition selon l'invention est plus particulièrement caractérisée en ce que le rapport de charge lipide sur ADN est compris entre 25/1 et 1/1 et de préférence 5/1 et 2/1.
Il est également possible de combiner à la composition selon l'invention d'autres substances pour améliorer encore l'efficacité transfectionnelle ou la stabilité des complexes.
La présente invention concerne également l'utilisation d'une composition selon l'invention, pour préparer un médicament à but curatif, préventif ou vaccinal destiné au transfert d'acide nucléique dans une cellule hôte in vivo, ex vivo ou in vitro. Une composition selon l'invention peut être utilisée dans divers types de cellules hôtes, par exemple une cellule de microorganisme, de levure, d'insecte, de plante mais il s'agit de préférence d'une cellule de mammifère et, en particulier d'une cellule humaine. Ladite cellule peut être une cellule primaire ou tumorale d'une origine hématopofétique (cellule souche totipotente, leucocyte, lymphocyte, monocyte, macrophage ...), hépatique, rénale, du système nerveux central, fibroblaste, épithéliale et notamment une cellule épithéliale pulmonaire, ou musculaire (myocyte, myoblaste, cardiomyocyte, cellule satellite ...).
Une composition selon l'invention peut être administrée par voie systémique ou par aérosol. On peut envisager plus particulièrement la voie gastrique, sous-cutanée, intracardiaque, intramusculaire, intraveineuse, intrapéritonéale, intratumorale, intrapulmonaire, intranasale ou intratrachéale. L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage appropriés varient en fonction de différents paramètres, par exemple de l'individu ou de la maladie à traiter ou encore du ou des gènes(s) à transférer. La formulation peut également inclure un excipient acceptable d'un point de vue pharmaceutique.
Une composition selon l'invention est en particulier destinée au traitement préventif ou curatif de maladies génétiques (hémophilie, mucoviscidose, myopathie de
Duchenne et Becker ...), cancers et maladies virales (SIDA, infections à papillome, virus de l'herpès...).
Duchenne et Becker ...), cancers et maladies virales (SIDA, infections à papillome, virus de l'herpès...).
Enfin, la présente invention concerne également un procédé pour préparer un composé selon l'invention à partir d'une préparation de chitosan de haute masse moléculaire par hydrolyse acide, précipitation à !'méthanol et extraction des pigments en présence d'un solvant organique.
Les préparations de chitosan de haute masse moléculaire sont accessibles commercialement (par exemple Fluka, références 22741, 22742 et 22743). Dans le cadre de la présente invention, on préfère mettre en oeuvre une préparation d'une masse moléculaire moyenne d'environ 70 kDa qui correspond à la plus faible masse moléculaire disponible sur le marché (Fluka référence 22741). L'hydrolyse acide est réalisée en présence d'acide chlorhydrique à une molarité d'environ 4 M à une température d'environ 100"C et pendant environ 4 heures. Bien entendu, l'homme du métier est capable d'adapter les conditions expérimentales d'hydrolyse selon la préparation de départ. Après filtration grossière pour éliminer les insolubles et refroidissement, l'hydrolysat est précipité par de l'éthanol à une concentration finale d'environ 50% à froid. Le matériel précipité est récolté par centrifugation ou tout moyen classique. I1 est préférable de procéder à plusieurs lavages dans de l'éthanol 50% avant de le reprendre dans de l'eau ou un tampon approprié.
Le matériel dissous est soumis à une extraction en présence de solvant. Tout solvant polaire et non miscible à l'eau peut être utilisé et, notamment, des alcools
C4 à Cs et des esters de ces derniers. Un solvant préféré dans le cadre de l'invention est le butanol-2. Cette étape qui présente l'avantage de réduire considérablement les pigments contenus dans la préparation de départ, comprend de préférence une première extraction par un tiers de volume de butanol-2 puis une seconde extraction réalisée sur la phase aqueuse par un tiers de volume d'un mélange butanol-2/hexane (50/50).
C4 à Cs et des esters de ces derniers. Un solvant préféré dans le cadre de l'invention est le butanol-2. Cette étape qui présente l'avantage de réduire considérablement les pigments contenus dans la préparation de départ, comprend de préférence une première extraction par un tiers de volume de butanol-2 puis une seconde extraction réalisée sur la phase aqueuse par un tiers de volume d'un mélange butanol-2/hexane (50/50).
Selon un mode de réalisation particulièrement avantageux, le procédé selon l'invention comprend une étape supplémentaire visant à séparer les composés de l'invention selon leur taille. Bien que différentes méthodes de fractionnement puissent être envisagées (gel perméation, filtration sur membrane ...), on préfère avoir recours à une diafiltration différentielle utilisant des membranes de seuil de coupure croissant. Le composé de l'invention ayant une masse moléculaire moyenne inférieure à 5 kDa est obtenu dans le filtrat résultant d'une première diafiltration à travers une membrane ayant un seuil de coupure de 5 kDa. Le concentré est alors récupéré et soumis à une seconde diafiltration à travers une membrane ayant un seuil de coupure de 10 kDa afin d'obtenir dans le filtrat le composé ayant une masse moléculaire moyenne de S à 10 kDa et, dans le concentré, le composé de l'invention ayant une masse moléculaire moyenne supérieure à 10 kDa et inférieure au chitosan de départ. Bien entendu, l'homme du métier est capable d'adapter la technique en fonction de la masse moléculaire moyenne désirée. I1 est également possible de procéder à une ou plusieurs diafiltration(s) supplémentaire(s) sur le dernier concentré généré. Par exemple, le passage de ce dernier à travers une membrane ayant un seuil de coupure de 15 kDa permettra de récolter des composés selon l'invention ayant une masse moléculaire moyenne de 10 à 15 kDa.
La présente invention est plus particulièrement décrite en référence aux Figures suivantes:
La Figure 1 illustre un graphe de cytotoxicité sur cellules L132Obtenues avec les polymères pcTG12 NI, pcTG12 N2, pcTG12 N3, le dextran et la polylysine.
La Figure 1 illustre un graphe de cytotoxicité sur cellules L132Obtenues avec les polymères pcTG12 NI, pcTG12 N2, pcTG12 N3, le dextran et la polylysine.
La Figure 2 illustre un graphe de cytotoxicité sur cellules CCRF-CEM obtenues avec les polymères pcTG12 Ni, pcTG12 N2, pcTG12 N3, le dextran et la polylysine.
La Figure 3 illustre l'activité hémolytique testée sur des globules rouges de rat des polymères pcTG12 Ni, pcTG12 N2, pcTG12 N3, du dextran et de la polylysine après 1 heure de contact.
La Figure 4 illustre l'activité hémolytique testée sur des globules rouges de rat des polymères pcTG12 NI, pcTG12 N2, pcTG12 N3, du dextran et de la polylysine après 5 heures de contact.
La Figure 5 illustre l'expression de la luciférase dans les cellules A549 transfectées avec le plasmide pTG11033 complexé à du DC Chol/DOPE (contrôle) ou du DC
Chol/DOPE/chitosan à une concentration de 10, 30 et 60 %.
Chol/DOPE/chitosan à une concentration de 10, 30 et 60 %.
La Figure 6 illustre l'expression de la luciférase dans des myoblastes primaires transfectés avec le plasmide pTGl 1033 complexé à du DC ChoVDOPE (contrôle) ou du DC Chol/DOPE/chitosan à une concentration de 10, 30 et 60 %.
EXEMPLES
EXEMPLE 1 : préparation des fragments de chitosan.
EXEMPLE 1 : préparation des fragments de chitosan.
De manière générale, les préparations commerciales de chitosan de masse
moléculaire variée peuvent etre utilisées et les plus appropriées à la mise en oeuvre
de la présente invention, sont celles de faible masse moléculaire (par exemple la
préparation Fluka sous la référence 22741 dont la masse moléculaire moyenne est
d'environ 70 kDa). L'hydrolyse acide est réalisée dans une bouteille Schott
DURAN de contenance 1 litre munie d'un agitateur magnétique. Après pesée, 25
g de chitosan (lot 340315/1 295) sont mis en présence de 625 ml d'acide chlorhydrique: (HCl) 4 M (HCI de qualité analytique tel que R.P Normatur, Prolabo
20 252.290, min 36%). Après avoir procédé à l'échange de la phase gazeuse
pendant 5 min avec de l'azote (pour éviter toute oxydation) et à la fermeture de la
bouteille, le mélange réactionnel est placé sous agitation magnétique régulière (500
rpm) dans un bain d'huile maintenu à 100"C. Après équilibration de la température
(15 min dans les conditions expérimentales précitées), on laisse la réaction se
poursuivre pendant 4 heures à 100 C. On observe que ce traitement s'accompagne
d'un changement de coloration de la solution qui apparaît brun clair. Bien entendu,
les conditions d'hydrolyse sont adaptées à la préparation de chitosan de départ. Si
celle-ci présente une masse moléculaire élevée (Fluka, 750 ou 2000 kDa),
I'hydrolyse sera plus stringente (augmentation de la concentration en HCI ou du
temps de réaction).
moléculaire variée peuvent etre utilisées et les plus appropriées à la mise en oeuvre
de la présente invention, sont celles de faible masse moléculaire (par exemple la
préparation Fluka sous la référence 22741 dont la masse moléculaire moyenne est
d'environ 70 kDa). L'hydrolyse acide est réalisée dans une bouteille Schott
DURAN de contenance 1 litre munie d'un agitateur magnétique. Après pesée, 25
g de chitosan (lot 340315/1 295) sont mis en présence de 625 ml d'acide chlorhydrique: (HCl) 4 M (HCI de qualité analytique tel que R.P Normatur, Prolabo
20 252.290, min 36%). Après avoir procédé à l'échange de la phase gazeuse
pendant 5 min avec de l'azote (pour éviter toute oxydation) et à la fermeture de la
bouteille, le mélange réactionnel est placé sous agitation magnétique régulière (500
rpm) dans un bain d'huile maintenu à 100"C. Après équilibration de la température
(15 min dans les conditions expérimentales précitées), on laisse la réaction se
poursuivre pendant 4 heures à 100 C. On observe que ce traitement s'accompagne
d'un changement de coloration de la solution qui apparaît brun clair. Bien entendu,
les conditions d'hydrolyse sont adaptées à la préparation de chitosan de départ. Si
celle-ci présente une masse moléculaire élevée (Fluka, 750 ou 2000 kDa),
I'hydrolyse sera plus stringente (augmentation de la concentration en HCI ou du
temps de réaction).
Le mélange réactionnel est immédiatement filtré (filtre de pores d'environ 0,6 mm)
afin d'éliminer les impuretés et aggrégats insolubles. Le filtrat est transvasé dans
une bouteille Schott DURAN de 2 litres et refroidi pendant environ I heure dans
de la glace avant d'être précipité par ajout de 625 ml d'éthanol absolu (de qualité
analytique, par exemple sds, référence 013A0516) et conservé une nuit à 2-40C.
afin d'éliminer les impuretés et aggrégats insolubles. Le filtrat est transvasé dans
une bouteille Schott DURAN de 2 litres et refroidi pendant environ I heure dans
de la glace avant d'être précipité par ajout de 625 ml d'éthanol absolu (de qualité
analytique, par exemple sds, référence 013A0516) et conservé une nuit à 2-40C.
Le lendemain, le matériel précipité est récolté par centrifugation (10000 g, 2-40C,
10 min) et soumis à deux lavages dans un mélange éthanol/eau (50/50). Les culots
sont repris dans 20 à 60 ml d'eau déminéralisée sur cartouche Milli Q (eau Milli Q),
congelés à -800C en attendant d'être lyophilisés. On obtient habituellement 12 à 16
g de fragments de chitosan sous forme de sels d'hydrochlorure.
10 min) et soumis à deux lavages dans un mélange éthanol/eau (50/50). Les culots
sont repris dans 20 à 60 ml d'eau déminéralisée sur cartouche Milli Q (eau Milli Q),
congelés à -800C en attendant d'être lyophilisés. On obtient habituellement 12 à 16
g de fragments de chitosan sous forme de sels d'hydrochlorure.
On procède ensuite à l'extraction des pigments de la préparation de chitosan x
nHCI de la façon suivante. 14,9 g de la préparation lyophilisée précédente sont
dissous dans 300 ml d'eau Milli Q puis traités par 100 ml de butanol-2 (qualité
analytique). Le mélange est alors agité vigoureusement et laissé à température
ambiante dans une ampoule à décanter jusqu'à séparation des phases. La phase
supérieure de coloration brunâtre est éliminée et la phase aqueuse est soumise à
une nouvelle extraction en présence de 100 ml d'un mélange butanol-2/hexane
(50/50). Comme précédemment, on récupère la phase inférieure dont on évapore
le milieu aqueux par rotation sous vide.
nHCI de la façon suivante. 14,9 g de la préparation lyophilisée précédente sont
dissous dans 300 ml d'eau Milli Q puis traités par 100 ml de butanol-2 (qualité
analytique). Le mélange est alors agité vigoureusement et laissé à température
ambiante dans une ampoule à décanter jusqu'à séparation des phases. La phase
supérieure de coloration brunâtre est éliminée et la phase aqueuse est soumise à
une nouvelle extraction en présence de 100 ml d'un mélange butanol-2/hexane
(50/50). Comme précédemment, on récupère la phase inférieure dont on évapore
le milieu aqueux par rotation sous vide.
Le matériel séché est finalement mis en solution dans 50 à 100 ml d'eau Milli Q et
soumis à deux étapes de diafiltration consécutives mettant en oeuvre des
membranes de seuil de coupure croissant afin de purifier des fragments de chitosan
de masse moléculaire correspondante. La solution est tout d'abord filtrée à travers
une membrane de seuil de
soumis à deux étapes de diafiltration consécutives mettant en oeuvre des
membranes de seuil de coupure croissant afin de purifier des fragments de chitosan
de masse moléculaire correspondante. La solution est tout d'abord filtrée à travers
une membrane de seuil de
Les préparations ainsi générées peuvent être caractérisées par les méthodes analytiques conventionnelles, par exemple par dosage des groupes amines libres (Curotto et Aros, 1993, Analytical Biochemistry 211, 240-241). On a également determiné la longueur des polymères par spectrométrie de masse desorption laser et on observe une distribution en courbe de Gausse. Les polymères de la préparation pcTG12 Ni ( < 5 kDa) sont formés d'une répétition de 5 à 35 résidus glucosamines, le maximum se situant aux environs de 10. Les polymères de la préparation pcTGl2 N2 (5-10 kDa) présentent une répétition de 10 à 50 monomères, le maximum étant compris entre 30 et 35. Pour ce qui est de la préparation pcTGl2 N3, on observe un nombre de résidus glucosamines supérieur à 15.
EXEMPLE 2 : Complexation avec 1'ADN et résultats sur gel
On évalue la capacité des préparations polymériques précédentes à complexer le plasmide reporter pCHl lON. n comporte le bloc promoteur/enhancer du virus
SV40 dirigeant l'expression du gène LacZ codant pour la p-galactosidase dlEscheichia coli munie en N-terminal d'un signal de localisation nucléaire issu de
SV40.
On évalue la capacité des préparations polymériques précédentes à complexer le plasmide reporter pCHl lON. n comporte le bloc promoteur/enhancer du virus
SV40 dirigeant l'expression du gène LacZ codant pour la p-galactosidase dlEscheichia coli munie en N-terminal d'un signal de localisation nucléaire issu de
SV40.
500 ng d'ADN plasmidique sont mis en présence de quantités croissantes de chacune des préparations pcTG12 N selon un rapport en masse ADN/chitosan variant de 1/0,5 à 1/4 (les rapports ADN/chitosan précis sont : 1/0,5, 1/1, 1/1,5, 1/2, 1/3 et 1/4) dans un volume total de l0p1 éventuellement complété par du TE (Tris 10 mM, EDTA 1 mM) pH 7,5. Le témoin négatif est constitué par de l'ADN plasmidique repris simplement dans du TE. Les mélanges sont analysés sur gel d'agarose 0,9% (tampon de migration TAEx1 pH 7,8 et migration 2 heures à 50V) et révélés par le bromure d'éthidium. L'ADN plasmidique libre migre sous la forme de plusieurs bandes correspondant aux différents topoisomères (ADN circulaire, superenroulé) alors qu'une fois compléxé au chitosan, il ne pénètre plus dans le gel et est visualisé dans les poches de dépôt.
Les résultats montrent que l'ADN piasmidique est entièrement compléxé aux
polymères pcTG12 Ni et N2 à partir d'un rapport ADN/chitosan de 1/2 et 1/3
respectivement. La formation du complexe est plus rapide avec les polymères de
masse moléculaire supérieure à 10 kDa pour lesquels l'absence d'ADN libre est
observée dès l'équimolarité (R 1/1). Dans leur ensemble, ces résultats montrent la
capacité des 3 préparations de l'invention à lier l'ADN plasmidique.
polymères pcTG12 Ni et N2 à partir d'un rapport ADN/chitosan de 1/2 et 1/3
respectivement. La formation du complexe est plus rapide avec les polymères de
masse moléculaire supérieure à 10 kDa pour lesquels l'absence d'ADN libre est
observée dès l'équimolarité (R 1/1). Dans leur ensemble, ces résultats montrent la
capacité des 3 préparations de l'invention à lier l'ADN plasmidique.
EXEMPLE 3: Essais cytotoxiques
A. Iti vitre
La cytotoxicité des polymères pcTG12 Ni, N2 et N3 a été évaluée iii vitro à
l'égard des lignées cellulaires humaines L132 (ATCC CCLS) issuesde poumons
embryonnaires humains et CCRF-CEM (ATCC CCL1 19) issues; d'un
lymphoblastome humain. Ces lignées ont été retenues sur la base de leur
comportement différent en culture cellulaire, la première poussant de manière
adhérente (L132) et la seconde en suspension (CCRF-CEM).
A. Iti vitre
La cytotoxicité des polymères pcTG12 Ni, N2 et N3 a été évaluée iii vitro à
l'égard des lignées cellulaires humaines L132 (ATCC CCLS) issuesde poumons
embryonnaires humains et CCRF-CEM (ATCC CCL1 19) issues; d'un
lymphoblastome humain. Ces lignées ont été retenues sur la base de leur
comportement différent en culture cellulaire, la première poussant de manière
adhérente (L132) et la seconde en suspension (CCRF-CEM).
Les cellules CCRF-CEM sont mises en culture dans une plaque de microtitration
à 96 puits ayant un fond en forme de "v" (Costar) à raison de lux104 cellules par puits: et cultivées à 37"C en atmosphère CO2 5% dans du milieu RPMI 1640 (Gibco
BRL) contenant 10 % de sérum de veau foetal (FCS) (Gibco BRL). Après 24
heures, les cellules sont centrifugées à 1000g pendant 10 min et le culot cellulaire
est repris dans le même milieu en présence des polymères à tester (dissolution d'une
quantité adéquate de chacun des polymères dans du milieu RPMI 1640-10% FCS
de manière à obtenir une concentration finale de 0,1 ,ug/ml à I mg/ml puis filtration
stérilisante sur filtres 0,2 ,lm (Acrodisk)). On utilise du milieu contenant du dextran
de masse moléculaire 72 kDa (Sigma) à des concentrations identiques à celles
utilisées pour les molécules pcTG12A à titre de témoin négatif et de la polylysine
de masse moléculaire 30-70 kDa (Sigma) à titre de témoin positif. Les cellules
contrôles sont cultivées dans les mêmes conditions mais en l'absence de polymères.
à 96 puits ayant un fond en forme de "v" (Costar) à raison de lux104 cellules par puits: et cultivées à 37"C en atmosphère CO2 5% dans du milieu RPMI 1640 (Gibco
BRL) contenant 10 % de sérum de veau foetal (FCS) (Gibco BRL). Après 24
heures, les cellules sont centrifugées à 1000g pendant 10 min et le culot cellulaire
est repris dans le même milieu en présence des polymères à tester (dissolution d'une
quantité adéquate de chacun des polymères dans du milieu RPMI 1640-10% FCS
de manière à obtenir une concentration finale de 0,1 ,ug/ml à I mg/ml puis filtration
stérilisante sur filtres 0,2 ,lm (Acrodisk)). On utilise du milieu contenant du dextran
de masse moléculaire 72 kDa (Sigma) à des concentrations identiques à celles
utilisées pour les molécules pcTG12A à titre de témoin négatif et de la polylysine
de masse moléculaire 30-70 kDa (Sigma) à titre de témoin positif. Les cellules
contrôles sont cultivées dans les mêmes conditions mais en l'absence de polymères.
Les cellules L132 sont mises en culture dans une plaque de microtitration à 96 puits (Costar) à raison de IxlO4cellules par puits et cultivées à 370C en atmosphère CO2 5% dans du milieu E199 (Gibco BRL, référence 22340-012) contenant 5% de FCS. Après 24 heures, le surnageant de culture est remplacé par du milieu frais
E199-5 % FCS dans lequel ont été dissous des concentrations appropriées de chacun des polymères de l'invention ou des témoins comme indiqué ci-dessus.
E199-5 % FCS dans lequel ont été dissous des concentrations appropriées de chacun des polymères de l'invention ou des témoins comme indiqué ci-dessus.
La viabilité des cellules L132 et CCRF-CEM est déterminée après 67 heures d'exposition aux différents polymères par le test MTT selon la technique décrite dans Sgouras et Ducan (1990, J. ofMaterials Science: Materials in Medecine 1, 61-68). Après une période d'incubation de 5 heures, le surnageant cellulaire est éliminé (éventuellement après centrifugation à basse vitesse dans le cas des lignées en suspension) et remplacé par 100 ttl de DMSO de grade optique (Sigma) et on détermine l'absorbance à 550 nm au niveau de chaque puits de culture (lecteur de plaque Titerteck). Une faible absorbance est signe d'une mortalité importante. La viabilité est exprimée en pourcentage par rapport à l'absorbance lue pour les cellules cultivées en absence de polymères.
Les Figures 1 et 2 présentent les résultats obtenus pour les cellules L132 et CCRF
CEM respectivement et montrent que les 3 polymères selon l'invention (fragments de chitosan de masse moléculaire < 5, 5-10 et > 10 kDa) affectent peu la viabilité cellulaire et ceci à des doses aussi élevées que 0,5 mg/ml, tout comme le dextran (non toxicité reconnue). A 1 mg/ml, on observe une réduction de la viabilité d'un facteur environ 20%. L'IC50 soit 50 % de cellules viables correspond à une concentration d'environ 2 mg/ml. En revanche, la polylysine excerce un effet cytotoxique à des doses 100 fois inférieures (IC50 atteinte à une concentration de 10 ,ug/ml).
CEM respectivement et montrent que les 3 polymères selon l'invention (fragments de chitosan de masse moléculaire < 5, 5-10 et > 10 kDa) affectent peu la viabilité cellulaire et ceci à des doses aussi élevées que 0,5 mg/ml, tout comme le dextran (non toxicité reconnue). A 1 mg/ml, on observe une réduction de la viabilité d'un facteur environ 20%. L'IC50 soit 50 % de cellules viables correspond à une concentration d'environ 2 mg/ml. En revanche, la polylysine excerce un effet cytotoxique à des doses 100 fois inférieures (IC50 atteinte à une concentration de 10 ,ug/ml).
Dans leur ensemble, ces données confirment l'absence de cytotoxicité des préparations de chitosan de l'invention prérequise à leur utilisation pour le transfert de matériel génétique chez l'homme.
Des données récemment publiées (Carrino-Gomez et Ducan, 1996,Proc. lst
International Symposium on Polymer Therapeutics : From the Laboratory to
Clinical Practise. Janvier 10-12 1996, Londres) semblent indiquer une certaine cytotoxicité des préparations de chitosan de masse moléculaire élevée. Cet effet cytotoxique pourrait être dû à la masse moléculaire ou à un effet de charge. On indique également que le conjugué chitosan-galactose décrit par Murata et al.
International Symposium on Polymer Therapeutics : From the Laboratory to
Clinical Practise. Janvier 10-12 1996, Londres) semblent indiquer une certaine cytotoxicité des préparations de chitosan de masse moléculaire élevée. Cet effet cytotoxique pourrait être dû à la masse moléculaire ou à un effet de charge. On indique également que le conjugué chitosan-galactose décrit par Murata et al.
(1996, supra) présente une activité cytotoxique supérieure aux composés de la présente invention (50 % de cytotoxicité pour environ 200 Rg/ml si l'on se reporte à la Figure 1).
B. In vivo 200 cl de chacune des préparations de chitosan de l'invention ont été administrés à des lapins par voie intraveineuse et on n'observe aucun effet toxique.
EXEMPLE 4 : Essais d'hématocompatibilité
A. Hémolyse de globules rouges
Les polymères pcTG12 2 N1, N2 et N3 sont dilués à des concentrations allant de 1 à 107 ng/ml dans du tampon PBS, mis en présence d'une suspension fraîche de globules rouges de rat (2 % poids/volume) et incubés à 37"C pendant 1 et 5 heures. Le mélange est centrifugé à 1500g pendant 10 min à température ambiante et la quantité d'hémoglobine présente dans le surnageant est évaluée par dosage spectophotométrique à 550 nm. On procède de même avec les témoins dextran et polylysine. Les résultats sont exprimés en pourcentage de lyse par rapport à un contrôle traité par du Triton X-100 (Sigma) qui correspond à 100 % de lyse.
A. Hémolyse de globules rouges
Les polymères pcTG12 2 N1, N2 et N3 sont dilués à des concentrations allant de 1 à 107 ng/ml dans du tampon PBS, mis en présence d'une suspension fraîche de globules rouges de rat (2 % poids/volume) et incubés à 37"C pendant 1 et 5 heures. Le mélange est centrifugé à 1500g pendant 10 min à température ambiante et la quantité d'hémoglobine présente dans le surnageant est évaluée par dosage spectophotométrique à 550 nm. On procède de même avec les témoins dextran et polylysine. Les résultats sont exprimés en pourcentage de lyse par rapport à un contrôle traité par du Triton X-100 (Sigma) qui correspond à 100 % de lyse.
Les données obtenues après 1 et 5 heures de contact sont illustrées par les Figures 3 et 4. Les trois polymères de l'invention ne montrent pas d'activité membranaire jusqu'à 100 ug/ml (105 ng/ml) et au delà une activité lytique inférieure à 10 % après 5 heures de contact. Dans les mêmes conditions, la polylysine à une concentration supérieure à 10 ,ug/ml affecte l'intégrité membranaire.
B. Etudes de nzicrocopie électronique
Les hématies de rats sont incubées pendant 1 ou 5 heures en présence de 10 ,ug/ml de pcTG12 N1, N2, N3, dextran ou polylysine puis mises en suspension une nuit dans une solution de glutaraldéhyde (0,25 % vol/vol) reconstituée dans du PBS (Oxoide). Les cellules sont centrifugées à faible vitesse (1200g 1 min à température ambiante; centrifugeuse MSE Microcentour) et, après élimination du surnageant, reprises dans du tétroxyde d'osmium 1 % (poids/vol) dans du PBS. Après 1 heure à température ambiante, on procède à une centrifugation dans les mêmes conditions que précédemment et les cellules sont traitées par de l'éthanol 50 % dilué dans du PBS pendant 30 min. Cette dernière opération est répétée avec de l'éthanol 60 %, 70 %, 80 %, 90 % et enfin de l'éthanol absolu. Le culot cellulaire est mis en suspension dans de l'héxaméthyldisilazane (HMDS, Sigma) et, après évaporation du HMDS, les échantillons sont recouverts d'or (50 A EMTECH
Gold Coater). L'examen en microscopie électronique (Philips XL) montre que les polymères de l'invention ne perturbent pas la morphologie des hématies (morphologie comparable aux cellules traitées par du PBS seul ou du dextran) alors qu'un grand pourcentage des cellules incubées en présence de polylysine présente une morphologie altérée (en forme d'étoile).
Les hématies de rats sont incubées pendant 1 ou 5 heures en présence de 10 ,ug/ml de pcTG12 N1, N2, N3, dextran ou polylysine puis mises en suspension une nuit dans une solution de glutaraldéhyde (0,25 % vol/vol) reconstituée dans du PBS (Oxoide). Les cellules sont centrifugées à faible vitesse (1200g 1 min à température ambiante; centrifugeuse MSE Microcentour) et, après élimination du surnageant, reprises dans du tétroxyde d'osmium 1 % (poids/vol) dans du PBS. Après 1 heure à température ambiante, on procède à une centrifugation dans les mêmes conditions que précédemment et les cellules sont traitées par de l'éthanol 50 % dilué dans du PBS pendant 30 min. Cette dernière opération est répétée avec de l'éthanol 60 %, 70 %, 80 %, 90 % et enfin de l'éthanol absolu. Le culot cellulaire est mis en suspension dans de l'héxaméthyldisilazane (HMDS, Sigma) et, après évaporation du HMDS, les échantillons sont recouverts d'or (50 A EMTECH
Gold Coater). L'examen en microscopie électronique (Philips XL) montre que les polymères de l'invention ne perturbent pas la morphologie des hématies (morphologie comparable aux cellules traitées par du PBS seul ou du dextran) alors qu'un grand pourcentage des cellules incubées en présence de polylysine présente une morphologie altérée (en forme d'étoile).
EXEMPLE 5 : Transfection des complexes chitosanlacide nucléique
Le plasmide pTGl 1033 (1 mg/ml) est utilisé pour évaluer l'efficacité transfectionnelle des composés de l'invention. 11 comporte le gène reporter luc qui code pour la luciférase placé sous le contrôle du promoteur CMV et le gène de résistance à la kanamycine. Mais tout autre plasmide peut également être employé.
Le plasmide pTGl 1033 (1 mg/ml) est utilisé pour évaluer l'efficacité transfectionnelle des composés de l'invention. 11 comporte le gène reporter luc qui code pour la luciférase placé sous le contrôle du promoteur CMV et le gène de résistance à la kanamycine. Mais tout autre plasmide peut également être employé.
Le DC-Chol est obtenu par synthèse chimique à une échelle de 20 g selon le procédé décrit par Gao et al. (1991, BBRC 179, 280-285). Le colipide DOPE est disponible commercialement (Sigma, référence P5078). Les solutions stock des préparations de chitosan pcTGl2N sont conservées à 10 mg/ml dans du chloroforme. Le mélange DC-Chol/DOPE est obtenu par mélange des deux composés selon un rapport en poids de 1/1 et une solution stock est établie dans du chloroforme à raison de 10 mg/ml.
A. Transfection de cellules pulmonaires
Les transfections sont réalisées en plaques de 96 puits dans lesquels sont mises en culture 2x104 cellules A 549 (ATCC CCLl85) dérivées de carcinome pulmonaire humain, dans du milieu Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) contenant 10 % de
FCS. Après 24 heures de culture à 37"C en atmosphère CO2 (5 %), les cellules sont mises en présence de complexes ADN/DC Chol/DOPE en absence ou en présence des polymères pcTGl2 N1. La préparation des complexes se fait dans des tubes Nunc en polypropylène et sous hotte à flux laminaire afin de préserver la stérilité des préparations. Brièvement, on procède tout d'abord au mélange des lipides au polymère par injection du DC-Chol/DOPE soit dans de l'eau (témoin 0 % de chitosan) ou dans de l'eau additionnée de chitosan (10, 30 ou 60 %) à l'aide d'une seringue Hamilton et en maintenant l'ensemble sous agitation lente. On indique que les pourcentages de chitosan sont calculés par rapport à la charge apportée par le lipide cationique DC-Chol. L'ADN est ensuite ajouté au mélange lipide/polymère.
Les transfections sont réalisées en plaques de 96 puits dans lesquels sont mises en culture 2x104 cellules A 549 (ATCC CCLl85) dérivées de carcinome pulmonaire humain, dans du milieu Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) contenant 10 % de
FCS. Après 24 heures de culture à 37"C en atmosphère CO2 (5 %), les cellules sont mises en présence de complexes ADN/DC Chol/DOPE en absence ou en présence des polymères pcTGl2 N1. La préparation des complexes se fait dans des tubes Nunc en polypropylène et sous hotte à flux laminaire afin de préserver la stérilité des préparations. Brièvement, on procède tout d'abord au mélange des lipides au polymère par injection du DC-Chol/DOPE soit dans de l'eau (témoin 0 % de chitosan) ou dans de l'eau additionnée de chitosan (10, 30 ou 60 %) à l'aide d'une seringue Hamilton et en maintenant l'ensemble sous agitation lente. On indique que les pourcentages de chitosan sont calculés par rapport à la charge apportée par le lipide cationique DC-Chol. L'ADN est ensuite ajouté au mélange lipide/polymère.
Plus précisemment 2 mg de DC-Chol/DOPE (200 Cll de solution stock) sont séchés et les lipides secs repris dans 150 p1 d'éthanol jusqu'à dissolution complète (une sonication de 10 secondes peut améliorer la dissolution) et on génère les mélanges suivants:
DC Chol/DOPE/ADN : 40,5 Ill (540,5 ssg) de la solution lipidique
précédente sont ajoutés à 500 ,ul d'eau dont 455 ul (soit 455 pg) sont mis
en présence de 30 g de pTG11033 dissous dans un volume de 145 p1
d'eau,
DC Chol/DOPE/10 % Chitosan/ADN : 40,5 Cil (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 498 l d'eau et 2 pi (20 pg) de chitosan
dont 455 pi sont mis en présence de 30 g de pTG11033 dissous dans un
volume de 145 pi d'eau,
DC Chol/DOPE/30 % Chitosan/ADN : 40,5 l (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 494 l d'eau et 6 ,u1 (60 pg) de chitosan
dont 455 pi sont mis en présence de 30 g de pTGl 1033 dissous dans un
volume de 145 pi d'eau,
DC Chol/DOPE/60 % Chitosan/ADN : 40,5 pi (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 488 pI d'eau et 12 pi (120 pg) de
chitosan dont 455 pi sont mis en présence de 30 pg de pTGl 1033 dissous
dans un volume de 145 pi d'eau.
DC Chol/DOPE/ADN : 40,5 Ill (540,5 ssg) de la solution lipidique
précédente sont ajoutés à 500 ,ul d'eau dont 455 ul (soit 455 pg) sont mis
en présence de 30 g de pTG11033 dissous dans un volume de 145 p1
d'eau,
DC Chol/DOPE/10 % Chitosan/ADN : 40,5 Cil (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 498 l d'eau et 2 pi (20 pg) de chitosan
dont 455 pi sont mis en présence de 30 g de pTG11033 dissous dans un
volume de 145 pi d'eau,
DC Chol/DOPE/30 % Chitosan/ADN : 40,5 l (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 494 l d'eau et 6 ,u1 (60 pg) de chitosan
dont 455 pi sont mis en présence de 30 g de pTGl 1033 dissous dans un
volume de 145 pi d'eau,
DC Chol/DOPE/60 % Chitosan/ADN : 40,5 pi (540,5 pg) de la solution
lipidique précédente sont ajoutés à 488 pI d'eau et 12 pi (120 pg) de
chitosan dont 455 pi sont mis en présence de 30 pg de pTGl 1033 dissous
dans un volume de 145 pi d'eau.
Après 24 heures à 4 C, on ajoute aux mélanges précédents 19 pi de NaCI S M afin d'ajuster la concentration à 0,9 % (154 mM). On prélève 86 pI de chacun des mélanges ainsi générés qui sont placés dans la ligne A d'une plaque de microtitration de 96 puits, complétés à 100 pi à l'aide du milieu DMEM et dilués au 1/2 en cascade dans du milieu DMEM. Le volume dans chaque puits est complété à 235 pi avec le milieu de culture et 225 pi prélevés et ajoutés aux cellules A549 en culture depuis 24 heures. 25 pi de FCS sont ajoutés 4 heures après le début de la transfection. La culture est poursuivie pendant 48 heures, le milieu éliminé et après avoir été lavées par 100 pi de tampon PBS, les cellules sont lysées par 50 pi de tampon de lyse (Promega) et congelées à -80 C jusqu'à mesure de l'activité luciférase. L'activité luciférase est révélée sur 20 pl (soit 2/5 de l'échantillon) par mesure de l'émission de photons à l'aide d'un luminomètre (LB96P, Berthold). Les résultats sont exprimés en RLU/mn/échantillon. A titre indicatif, la concentration en protéine de l'échantillon mesuré est de 24 à 32 g.
Comme montré dans la Figure 5, la présence de chitosan dans les complexes DC
Chol/DOPE/ADN s'avère avantageuse, le taux de transfection reflété par l'activité luciférase étant supérieur avec les complexes contenant du chitosan qu'avec les complexes qui en sont dépourvus. En effet, l'activité luciférase est significativement plus élevée d'un facteur environ 1,5 en présence de 10% de chitosan et d'un facteur 2 en présence de quantités plus importantes (30 et 60%).
Chol/DOPE/ADN s'avère avantageuse, le taux de transfection reflété par l'activité luciférase étant supérieur avec les complexes contenant du chitosan qu'avec les complexes qui en sont dépourvus. En effet, l'activité luciférase est significativement plus élevée d'un facteur environ 1,5 en présence de 10% de chitosan et d'un facteur 2 en présence de quantités plus importantes (30 et 60%).
B. Tz a?sfectiosz de nzyob/astes primail es
Les myoblastes sont obtenus de biopsies pratiquées sur des muscles quadriceps de chiens mâles. Les prélèvements sont fragmentés en segments d'environ 1 mm3 et mis en culture dans des boîtes de Pétri (Falcon) recouvertes de gélatine plasmatique humaine I %. La culture est effectuée dans du milieu Ham F14 (Gibco
BRL) additionné de facteurs de croissance [Glutamine 2 mM (BioMérieux), FGF 10 ng/ml (Peprotech-TEBU), EGF 10 ng/ml (Sigma), insuline 10 pg/ml (Sigma)], de gentamicine 40 ,lg/ml (Scherring Plough) et de sérum de veau à une concentration de 10 %. Dans ces conditions, on observe une croissance extensive des cellules mononuclées, principalement des myoblastes (confirmé par des études cytochimiques). Après élimination des fragments tissulaires, la couche de myoblastes est dissociée en présence de trypsine (0,25 %) ceci avant la fusion en fibres musculaires ou myotubes. La culture est poursuivie pendant au plus 15 passages et les cellules congelées en azote liquide dans du milieu DMEM contenant 10 % de FCS et 8 % de DMSO.
Les myoblastes sont obtenus de biopsies pratiquées sur des muscles quadriceps de chiens mâles. Les prélèvements sont fragmentés en segments d'environ 1 mm3 et mis en culture dans des boîtes de Pétri (Falcon) recouvertes de gélatine plasmatique humaine I %. La culture est effectuée dans du milieu Ham F14 (Gibco
BRL) additionné de facteurs de croissance [Glutamine 2 mM (BioMérieux), FGF 10 ng/ml (Peprotech-TEBU), EGF 10 ng/ml (Sigma), insuline 10 pg/ml (Sigma)], de gentamicine 40 ,lg/ml (Scherring Plough) et de sérum de veau à une concentration de 10 %. Dans ces conditions, on observe une croissance extensive des cellules mononuclées, principalement des myoblastes (confirmé par des études cytochimiques). Après élimination des fragments tissulaires, la couche de myoblastes est dissociée en présence de trypsine (0,25 %) ceci avant la fusion en fibres musculaires ou myotubes. La culture est poursuivie pendant au plus 15 passages et les cellules congelées en azote liquide dans du milieu DMEM contenant 10 % de FCS et 8 % de DMSO.
Pour les transfections, après décongélation, les cellules sont réparties dans des plaques de 96 puits à raison de 5x 103 cellules par puits et cultivées dans des conditions standards pendant 24 heures. avant d'être transfectées en milieu sans sérum par des quantités variables d'ADN plasmidique (2, 1, 0,5, 0,25, 0,125, 0,063, 0,032 ou 0,016 pg) complexé au DC ChoVDOPE seul (à titre de comparaison) ou au mélange DC Chol/DOPE/Chitosan à une concentration en chitosan de 10, 30 ou 60 %. Comme précedemment, on met en oeuvre la préparation pcTG12Nl et les pourcentages de chitosan sont exprimés par rapport à la charge apportée par le DC-Chol. Les différents complexes sont préparés dans du milieu Ham F14 supplémenté en gentamicine et glutamine selon les méthodes conventionnelles ou comme indiqué à l'exemple précédent. Une fois le milieu de culture aspiré, les cellules sont transfectées par 225 ,ul de chaque échantillon à tester. Quatre heures après la transfection, les cellules sont replacées en présence de sérum par ajout de 25 yl de FCS dans chaque puit. L'activité luciférase est déterminée 48 heures posttransfection après lavage des cellules dans du tampon phosphate et lyse (tampon
Proméga). La mesure est réalisée à l'aide d'un luminomêtre Microlumat LB96P (Berthold).
Proméga). La mesure est réalisée à l'aide d'un luminomêtre Microlumat LB96P (Berthold).
Les résultats reportés dans la Figure 6 montrent que les meilleurs taux de transfection sont obtenus avec les complexes incorporant du chitosan, l'activité luciférase étant 4 à 9 fois plus élevée que lorsque la transfection met en oeuvre 1'ADN complexé au DC Chol/DOPE seul. En conclusion, l'effet transfectionnel bénéfique du chitosan a été observé dans une lignée cellulaire d'adénocarcinome de poumon et, à un niveau encore plus élevé, dans une lignée primaire de myoblastes.
Claims (30)
1. Composé de formule [X]n dans laquelle n représente un nombre entier de 5 à 300 et X a
la formule (1) suivante:
2. Composé selon la revendication 1, caractérisé en ce que n représente un nombre entier de S à 150.
3. Composé selon la revendication 2, caractérisé en ce que n représente un nombre entier de
5 à 75, et notamment, 5 à 50.
4. Composé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il présente une masse
moléculaire moyenne inférieure à 5 kDa.
5. Composé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il présente une masse
moléculaire moyenne comprise entre 5 et 10 kDa.
6. Composé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il présente une masse
moléculaire moyenne supérieure à 10 kDa et inférieure à 50 kDa.
7. Composé selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que tout ou partie des
résidus X composant ledit composé est modifié par N-, C- et/ou O-alkylation, alcylation,
-amino-alkylation et/ou -polyoxyéthylénation.
8. Composé selon la revendication 7, sous la forme d'une poly-N-dodécyl-polyglucosamine
ou d'une mono-C a -octadécyl-polygiucosamine.
9. Composé selon l'une des revendications 1 à 8, sous forme de sel et plus particulièrement,
de chlorure, de sulphate ou de phosphate.
10. Une préparation substantiellement pure de chitosan dépourvue de pigment et impuretés
résiduelles.
11. Composition comprenant au moins un composé selon l'une des revendications 1 à 9 ou une
préparation selon la revendication 10 et une substance thérapeutiquement active.
12. Composition selon la revendication 11, caractérisée en ce que ladite substance
thérapeutiquement active est un acide nucléique.
13. Composition selon la revendication 12, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est un
vecteur pour l'expression d'un gène d'intérêt thérapeutique placé sous le controle des
éléments nécessaires à son expression dans une cellule hôte.
14. Composition selon la revendication 13, caractérisée en ce que le gène thérapeutique code
pour un ribozyme, un ARN antisens ou encore un polypeptide sélectionné parmi une
cytokine (interleukine-2, interleukine-12, interferon alpha, béta ou gamma, facteur
nécrosant des tumeurs, facteur stimulateur de colonies, antigène du complexe majeur
d'histocompatibilité ...), un recepteur de surface cellulaire ou nucléaire, un facteur de
coagulation (FVll, FVIII, Fiv ...), la protéine CFTR (pour Cystis Fibrosis Transmembrane
Conductance Regulator), la dystrophine, l'insuline, une hormone de croissance, une enzyme
(rénine, thrombine, uréase ...), un inhibiteur, un antigène viral, un épitope antigénique, un
polypeptide supresseur de tumeur, un anticorps, une toxine (thymidine kinase du virus
simplex-lde l'herpès, ricine, toxine diphtérique ...), un polypeptide ayant une activité
antitumorale ou antivirale et un polypeptide marqueur.
15. Composition selon l'une des revendications 12 à 14, caractérisée en ce que le rapport en
charge dudit acide nucléique audit composé est compris entre 10/1 et 1/10, et notamment,
entre 1/1 et 1/5.
16. Composition selon l'une des revendications 11 à 15, caractérisée en ce qu'elle comprend,
en outre, au moins un adjuvant capable d'améliorer le pouvoir transfectant de ladite
composition.
17. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce que ledit adjuvant est un
composé amphiphile cationique.
18. Composition selon la revendication 17, caractérisée en ce que ledit composé amphiphilique
cationique est un composé mono, di ou tri alkylé ou acylé portant de 1 à 4 charges
positives.
19. Composition selon la revendication 18, caractérisée en ce que ledit composé est un lipide
sélectionné parmi le 5-carboxyspermylglycine dioctadécylamide (DOGS), le 3 P [N-(N, N'
diméthylaminoéthane)-carbamoyl] cholestérol (DC-Chol), le (2,3 -droléylocyl-N-
[2(sperminecarboxamido) éthyl] N, N-diméthyl-1-propanaminium trifluoroacétate)
(DOSPA), la spermine cholestérol et la spermidine cholestérol.
20. Composition selon l'une des revendications 16 à 19, caractérisée en ce que ledit adjuvant
est un lipide neutre ou zwitterionique.
21. Composition selon la revendication 20, caractérisée en ce que ledit lipide neutre ou
zwitterionique est ou dérive d'une phosphatidyl éthanolamine, phosphatidylcholine,
phosphocholine, sphyngomyéline, céramide ou cérébroside.
22. Composition selon la revendication 21, caractérisée en ce que ledit lipide neutre ou
zwitterionique est la dioléyl phosphatidyl éthanolamine (DOPE).
23. Composition selon l'une des revendications 17 à 22, caractérisée en ce que le rapport de
charge lipide sur ADN est compris entre 25/1 et 1/1 et de préférence 5/1 et 2/1.
24. Utilisation d'une composition selon l'une des revendications 11 à 23, pour préparer un
médicament à but curatif, préventif ou vaccinal destiné au transfert dudit acide nucléique
dans une cellule hôte in vivo, ex vivo ou in vitro.
25. Utilisation selon la revendication 24, caractérisée en ce que ladite cellule hôte est une
cellule de microorganisme, de levure, d'insecte, de plante, humaine, animale et, notamment,
mammifère.
26. Utilisation selon la revendication 25,carctérisée en ce que ladite cellule hôte humaine est
une cellule musculaire ou une cellule épithéliale pulmonaire.
27. Procédé pour préparer un composé selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé en ce
qu'on soumet une préparation de chitosan de haute masse moléculaire à une hydrolyse
acide, une précipitation à l'éthanol et une étape d'extraction des pigments en présence d'un
solvant.
28. Procédé selon la revendication 27, caractérisé en ce que ledit solvant est du butanol-2.
29. Procédé selon la revendication 27 ou 28, caractérisé en ce qu'il comprend après l'étape
d'extraction des pigments, une étape de diafiltration différentielle.
30. Procédé selon la revendication 29, caractérisé en ce que ladite étape de diafiltration
différentielle comprend une première diafiltration à travers une membrane ayant un seuil
de coupure de 5 kDa permettant de récolter dans le filtrat un composé selon la
revendication 4 et une seconde diafiltration à travers une membrane ayant un seuil de
coupure de 10 kDa réalisée sur le concentré de ladite première diafiltration permettant de
récolter dans le filtrat un composé selon la revendication 5 et dans le concentré un composé
selon la revendication 6.
Priority Applications (12)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR9612894A FR2754823A1 (fr) | 1996-10-23 | 1996-10-23 | Nouveaux derives du chitosan, compositions comportant du chitosan ou ses derives et application de ces compositions sur le transfert d'acide nucleique dans une cellule hote |
| FR9702296A FR2754824B1 (fr) | 1996-10-23 | 1997-02-26 | Nouvelle composition contenant du chitosan |
| DE69709891T DE69709891T2 (de) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Chitosan enthaltende zusammensetzung |
| DK97912239T DK0934342T3 (da) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Præparat indeholdende chitosan |
| PCT/FR1997/001897 WO1998017693A1 (fr) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Composition contenant du chitosan |
| ES97912239T ES2170377T3 (es) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Composicion que contiene quitosana. |
| AU49505/97A AU725723B2 (en) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Composition containing chitosan |
| AT97912239T ATE211489T1 (de) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Chitosan enthaltende zusammensetzung |
| CA002268804A CA2268804A1 (fr) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Composition contenant du chitosan |
| EP97912239A EP0934342B1 (fr) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | Composition contenant du chitosan |
| JP10519049A JP2001502736A (ja) | 1996-10-23 | 1997-10-23 | キトサン含有組成物 |
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|---|---|---|---|
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Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| FR2754823A1 true FR2754823A1 (fr) | 1998-04-24 |
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Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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| FR9612894A Pending FR2754823A1 (fr) | 1996-10-23 | 1996-10-23 | Nouveaux derives du chitosan, compositions comportant du chitosan ou ses derives et application de ces compositions sur le transfert d'acide nucleique dans une cellule hote |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| FR (1) | FR2754823A1 (fr) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP2995627A1 (fr) * | 2014-09-09 | 2016-03-16 | Istanbul Universitesi Rektorlugu | Synthèse de systèmes de porteuse nanoparticulaire de gènes à base de chitosane |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6121103A (ja) * | 1984-07-10 | 1986-01-29 | Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk | キトサンオリゴ糖の製造方法 |
| US4970150A (en) * | 1988-07-06 | 1990-11-13 | Agency Of Industrial Science & Technology | Process for preparing chitosan oligosaccharides |
| JPH03198782A (ja) * | 1989-12-27 | 1991-08-29 | Bitamin Kenkyusho:Kk | 遺伝子導入用キャリアー、該キャリアーと遺伝子との複合体及び細胞への遺伝子導入法 |
-
1996
- 1996-10-23 FR FR9612894A patent/FR2754823A1/fr active Pending
Patent Citations (3)
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| JPS6121103A (ja) * | 1984-07-10 | 1986-01-29 | Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk | キトサンオリゴ糖の製造方法 |
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| Title |
|---|
| A. DOMARD ET AL.: "Glucosamine oligomers: 1. Preparation and characterization", INTERNATIONAL JOURNAL OF BIOLOGICAL MACROMOLECULES, vol. 11, no. 5, 1989, GB, pages 297 - 302, XP002034421 * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, vol. 115, no. 21, 25 November 1991, Columbus, Ohio, US; abstract no. 225479, "Molecular weight-low chitosan as gene carrier in molecular cloning" XP002034422 * |
| PATENT ABSTRACTS OF JAPAN vol. 010, no. 172 (C - 354) 18 June 1986 (1986-06-18) * |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP2995627A1 (fr) * | 2014-09-09 | 2016-03-16 | Istanbul Universitesi Rektorlugu | Synthèse de systèmes de porteuse nanoparticulaire de gènes à base de chitosane |
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