FI61192C - Foerfarande foer framstaellning av ett saosom diagnostiskt medel anvaendbart vaevnadsprotein - Google Patents

Foerfarande foer framstaellning av ett saosom diagnostiskt medel anvaendbart vaevnadsprotein Download PDF

Info

Publication number
FI61192C
FI61192C FI772641A FI772641A FI61192C FI 61192 C FI61192 C FI 61192C FI 772641 A FI772641 A FI 772641A FI 772641 A FI772641 A FI 772641A FI 61192 C FI61192 C FI 61192C
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
protein
tissue
solution
tissue protein
precipitated
Prior art date
Application number
FI772641A
Other languages
English (en)
Other versions
FI772641A (fi
FI61192B (fi
Inventor
Hans Bohn
Wilhelm Winckler
Original Assignee
Behringwerke Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Behringwerke Ag filed Critical Behringwerke Ag
Publication of FI772641A publication Critical patent/FI772641A/fi
Publication of FI61192B publication Critical patent/FI61192B/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI61192C publication Critical patent/FI61192C/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • C07K14/4701Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
    • C07K14/4715Pregnancy proteins, e.g. placenta proteins, alpha-feto-protein, pregnancy specific beta glycoprotein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/806Antigenic peptides or proteins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/827Proteins from mammals or birds
    • Y10S530/85Reproductive organs or embryos
    • Y10S530/851Placenta; amniotic fluid

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Description

RSrTI Γβί ku ulutusjulkaisu ^11Q9 LBJ (11) UTLÄGGN I NOSSKRIFT & I l 7 1 C ..Patentti myönnetty 10 06 1902 patent meddelat ^ ^ ^ (51) Kv.ik.3/im.ci.3 C 07 G 7/00 SUOM I — Fl N LAN D (21) P»Mntt»MAumu» — PatuntamMuiinf 7726Ul (22) H«k«mtopUvl — Anieknlnfatf«f 06.09.77 (23) Alkupllv· —Glitlfhatadtf 06.09.77 (41) Tullut luikituksi — Bllvlt offuntllf 09.03.78
Fttmtl· j. »UNvIbUlltu. «λν·*·*— |.l-U-l-»~p~-
PatWlt- och r*fi«toratyr«la«n Anekin uthfd och utl.»krtftun publkurtd 2o.02.o2 (32)(33)(31) Pyydttty atuoikuui —Bugird prlorltut 08.09.76
Saksan Liittotasavalta-Förbundsrepubliken lyskland(DE) P 261+0387.2 (71) Behringwerke Aktiengesellschaft, D-3550 Marburg/Lahn, Saksein Liittotasa- valta-Forbundsrepubliken Tyskland(DE) (72) Hans Bohn, Marburg/Lahn, Wilhelm Winckler, Wenkbach, Saksan Liittotasa-valta-Förbundsrepubliken Tyskland(DE) (7I+) Oy Kolster Ab (5I+) Menetelmä diagnostisena aineena käytettävän kudosproteiinin valmistamiseksi - Förfarande för framställning av ett säsom diagnostiskt medel användbart vävnadsprotein
Keksintö koskee menetelmää diagnostisena aineena käytettävän kudosproteiinin valmistamiseksi nisäkkään sikiön, sydämen, maksan, munuaisten, keuhkojen, vatsan tai aivojen kudos-uutteesta, tai aikuisen nisäkkään sydämen, keuhkojen, ihon, vatsan, munuaisten, istukan, maksan, pernan, lisämunuaisten, paksusuolen, peräsuolen tai virtsarakon kudosuutteesta, jossa menetelmässä a) kudosuutteesta saostetaan ei—halutut aineet lisäämällä noin 0,8 % akridiini- tai kinoliiniemäksen vesiliukoista johdannaista pH-alueella 5 - 10, b) suodokseen lisätään neutraalisuolaa, kuten ammonium-sulfaattia, kudosproteiinin saostamiseksi, c) saostettu kudosproteiini liuotetaan veteen ja se adsorboidaan heikosti emäksiseen ioninvaihtimeen ja eluoidaan siitä, d) eluaatti fraktioidaan käyttäen molekyyliseulaa, 2 61192 e) proteiini saostetaan käyttämällä neutraalisuolaa, f) adsorboidaan epäpuhtaudet uudelleen liuotetusta proteiinista hydroksyyliapatiitille ja lopuksi g) kromatografoidaan kudosproteiinia sisältävä liuos di-etyyliaminoetyyli-Sephadex ®:lla.
Imettäväisten liuotetuista elimistä voidaan eristää useita sinänsä tunnettuja aineita suhteellisen puhtaina; tunnettu on esim. rautapitoinen proteiini ferritiini, jota voidaan valmistaa istukkakudoksesta, mutta joka on todettavissa myös mahassa, pernassa, maksassa, munuaisissa, kohdussa ja keuhkoissa. On myös tunnettua, että istukkauutteesta voidaan fraktioida mm. kudosspesifisiä proteiineja (Arch. Qynäk 215 (1973) 263, ibid 218 (1975) 131, ibid 221 (1976) 73, ibid 222 (1977) 5 - 13, ja Protides of the Biol. Fluids, Proc. 24th Colloquium, Brtigge 1976, 117 - 124). Uutta erikoista, diagnostisesti käytettävää proteiinia ei ole aiemmin eristetty.
Keksinnön mukaisella menetelmällä valmistettu kudospro-teiini sisältää 94 - 3 % lähinnä Oi-aminohapoista muodostuvia proteiineja ja 5,4 - 0,5 % hiilihydraatteja, joista 3,0 t 1 % on heksooseja, 1,2 - 0,5 % heksoosiamiinia, 0,2 - 0,2 fukoosia ja 1,0 - 0,5 % neuramiinihappoa, sen sedimentoitumiskerroin . on 3,5 S - 0,5 S, isoelektrinen piste on 4,9 - 0,3 h v 0 V 6 S X ^ mitattuna polyakryyliamidigeelilevyillä ja 4,5 - 0,3 mitattuna elektrofokusoimispylväässä, elektroforeettinen liikkuvuus on
Oi2- 3a /i|-globuliinien välissä, ekstinktiokerroin (278 nm) on 11,9 - 1,0, ja molekyylipaino on 37100 - 1400 määritettynä ultrasentrifugin avulla,ja se koostuu kahdesta alayksiköstä, joiden molekyylipaino on 22000 - 2000 määritettynä nat-riumdodekyylisulfaattia sisältävän polyakryyliamidigeelin avulla. Uuden kudosproteiinin erityispiirteenä on, että se voidaan todeta imettäväisillä sekä sikiöasteen elimissä että täysikasvuisten elimissä. Kädellisten lahkossa ja erityisesti ihmisessä proteiini voidaan todeta sikiöasteella sydämessä, maksassa, munuaisissa, keuhkoissa, mahassa ja aivoissa ja täysikasvuisilla sydämessä, keuhkoissa, ihossa, mahassa, munuaisissa, kohdussa, maksassa, pernassa, lisämunuaisissa, paksusuolessa, peräsuolessa ja virtsarakossa. Tällöin voidaan yleensä kvantitatiivisin immunologisin menetelmin osoittaa vähintään 10 mg proteiinia 100 gsssa kudosta. Myös istukassa tuotetta on n. 10 mg/100 g kudosta. Istukka onkin erityisen sopiva ko. proteiinin eristämiskohde. Punasoluissa voidaan osoittaa 1 mg tätä proteiinia/100 ml punasoluja, mutta ter- 3 61192 veiden henkilöiden plasmassa tai seerumissa proteiinia ei voida osoittaa.
Sedimentoitumiskerroin määritettiin analyyttisessä ultra-sentrifugissa kierrosnopeudella 60 000 kierr/min kaksoissektori-kyveteissä aineen UV-alueella aallonpituudella 280 nm esiintyvän huipun avulla liuottimen ollessa vettä ja proteiinikonsentraa-tion ollessa 1 mg/ml analyyttisen ultrasentri£ugin kerroskyvetis-sä Vinogradin mukaan, Proc. Acad. Sei. USA, 49 (1963) 902.
Molekyylipaino laskettiin toisaalta määrittämällä ultraa sentrifugilla sedimentoitumistasapaino Yphantis'in mukaan, Ann.
New York Acad, Sei., 88 (1960) 586. Toisaalta tutkittaessa proteiinia 0,1 % natriumdodekyylisulfaattia sisältävässä polyakryy-liamidikantajageeIissä proteiini voitiin suurimmaksi osaksi hajottaa kahdeksi alayksiköksi, joiden molekyylipaino oli 22 000 - 2000. Siitä saadaan alkuperäisen proteiinin molekyylipainoksi 44 000 - 4000.
Isoelektrinen piste määritettiin isoelektrisen fokusoimis-menetelmän avulla, mihin käytettiin ruotsalaisen toiminimen LKB toimittamia laitteita ja reagensseja. Pylvään tilavuus oli 440 ml.
(S)
Niinsanotun Ampholin -seoksen pH-alue oli glykoproteiinitutki-muksessa 4, 0 - 6,0.
Käytettäessä toiminimen LKB polyakryyliamidigeelilevyjä •f isoelektriseksi pisteeksi saadaan 4,9 - 0,3, mutta käytettäessä saman toiminimen elektrofokusoimispylvästä ja tähän suositeltavia reagensseja saadaan keksinnön mukaisella menetelmällä valmistetun kudosproteiinin isoelektriseksi pisteeksi 4,5 - 0,3.
Elektroforeettinen liikkuvuus määritettiin käyttäen sellu-loosa-asetaattia kantajakaIvona. Käytettiin Backman Instrumentsin laitetta Microzone R 200 selluloosa-asetaattikalvojen (Fa. Sarto-rius) päällä käyttäen natriumdietyylibarbituraattipuskuria, pH 8,6.
Hiilihydraatit määritettiin Schultze, H.E., Schmidtberger, R., Haupt, H., Untersuchungen iiber die gebundenen Kohlenhydrate in isolierten Plasmaproteinen, Biochem. Z., 329 (1958) 490 mukaan.
Aminohappoanalyysi suoritettiin Moore, S., Spackman, D.H., Stein, W.H., Chromatography of amino acids on sulfonated polystyrene resins, Anal. Chem., 30 (1958) 1185 mukaan käyttäen neste-kromatografiaa. Tällöin osoittautui, että peptidiketjun tavallisimmat aminohapot ovat leusiini, glutamiinihappo, aspargiinihappo ja glysiini.
Aineen immunologinen tunnistaminen tapahtuu yksinkertaisem- 4 61192 min tunnetun diffuusiomenetelmän avulla, jossa antigeeni (vasta-aineen synnyttäjä), so. proteiini, ja proteiinin vasta-aine tai vastaseerumi, johon vasta-aineet eivät ole rikastuneet, diffun-doituvat vastakkaisiin suuntiin kantaja-aineessa, esim. agarissa. Jos molemmat reaktiokomponentit kohtaavat edullisissa olosuhteissa, muodostuu näkyvä sakka. Tämän perusteella asiantuntijalle on selvää, että kaikkia immunologisia menetelmiä voidaan köyttää sekä uuden kudosproteiinin että sen vasta-aineiden osoittamiseksi ja määrittämiseksi.
Kudosproteiini voidaan saostaa neutraalisuoloilla. Tällaisissa saostuksissa tavallisesti käytetyllä ammoniumsulfaatilla kudosproteiini saostetaan kyllästymiskonsentraatiossa 30 - 60 % olevalla suolalla lähellä neutraalia olevalla pH-alueella.
Kudosproteiini voidaan eristää menetelmillä, jotka sopi-r vat molekyylipainoltaan 35 000 - 50 000 olevien aineiden eristämiseksi. Edullisia menetelmiä ovat geelisuodatus ja ultrasuoda- tus.
Keksinnön mukaisella menetelmällä valmistettu kudosproteiini adsorboidaan neutraaleissa tai heikosti emäksisissä olosuhteissa heikosti emäksiseen ioninvaihtimeen. On edullista käyttää suhteellisen laimeaa puskuriliuosta, koska suolakonsentraation kohottaminen tai pH-arvon alentaminen voi estää adsorptiota. Toisaalta on mahdollista adsorboida kudosproteiini ja eluoida se uudelleen käyttäen väkevämpiä suolaliuoksia tai puskuriliuoksia, joilla on alhaisempi pH.
On osoittautunut, että kudosproteiinia ei voida saostaa akridiini- ja kinoliinisarjän vesiliukoisilla orgaanisilla emäksillä, joita tavallisesti käytetään proteiinien saostukseen. Näissä menetelmissä käytetyissä tavanomaisissa konsentraatioissa proteiini jää liuokseen. Täten esim. akridiiniemästä, kuten 2-etoksi-r 6,9-diaminoakridiinilaktaattia, tai kinoliiniemästä, kuten bis-(2-metyyli-4-aminokinolyyli-6)-karbamidihydrokloridia, voidaan käyttää muiden proteiinien saostamiseen, jolloin keksinnön mukaisella menetelmällä valmistettu kudosproteiini jää liuokseen.
Hydroksyyliapatiittia voidaan käyttää proteiini-adsorbent-tina puhdistusprosessissa, koska kudosproteiini ei siihen sitoudu, mutta sensijaan useat muut proteiinit adsorboituvat siihen.
Elektroforeettisten liikkuvuusarvojen perusteella voidaan kudosproteiinin rikastamiseksi tai eristämiseksi käyttää prepara- 5 61192 tiivistä vyöhyke-elektroforeesia.
Kudosproteiinin immunologisen affiniteetin perusteella voidaan rikastaa ns. immunoadsorptiomenetelmän avulla. Tunnettuun tapaan voidaan käyttää immunoadsorbenttia, so. kantajaan sidottua kudosproteiinin vasta-ainetta, joka pystyy sitomaan kudosproteiinin spesifisesti. Muuttamalla ympäristöolosuhteita proteiini voidaan eluoida erilleen.
Yhdistämällä tietyllä tavalla menetelmiä, joilla toisaalta rikastetaan kudosproteiinia ja toisaalta poistetaan muut proteiinit, uusi kudosproteiini voidaan eristää.
Seuraavassa selitetään keksinnön mukaista menetelmää yksityiskohtaisesti .
a) Lisätään akridiini- tai kinoliiniemäksen vesiliukoista johdannaista, edullisesti 2-etoksi-6,9-diaminoakridiinilaktaattia, pH-alueella 5 - 10, edullisesti pH-arvossa n. 8, lopullisen kon-sentraation ollessa n. 0,8 % (p/t), jolloin ei-halutut aineet saostuvat ja kudosproteiini jää suurimmaksi osaksi liuokseen.
b) Suodokseen lisätään, neutraalisuoloja, edullisesti am-moniumsulfaattia, kudosproteiinin saostamiseksi liuoksen pH:n ollessa noin. 7, lopullisen neutraalisuolan konsentraatio on 30 - 60 % kyllästyskonsentraatiosta.
c) Saostettu kudosproteiini liuotetaan veteen ja se adsorboidaan heikosti emäksiseen ioninvaihtimeen, esim. dietyyli-aminoetyyliselluloosaan, liuoksen johtokykyarvon ollessa 0 2 mS neutraaleissa tai heikosti emäksisissä olosuhteissa käyttäen esim. n. 0,01-m puskuria, pH n. 8. Suositeltava puskuri on tris-hydroksimetyyliaminometaani-HCl. Kudosproteiinin eluointi voidaan suorittaa alentamalla pH arvoon alle 7,0, tai nostamalla johtokykyä yli 5 mS:een.
d) Suoritetaan erotus molekyylikoon perusteella (mole-kyyliseulafraktiointi). Erityisen sopiva on geelisuodatus pylväässä, jossa on polymeeriä, jonka huokoskoko vastaa erotettavan molekyylikokoa, esim. epikloorihydriinillä verkkoutettua dekst-
C1D
raania, valmistaja Pharmacia, Uppsala nimellä Sephadex Väfc. Tällöin rikastetaan proteiineja, joiden molekyylipaino on n. 50 000.
e) Saostetaan kudosproteiini lisäämällä neutraalisuolaa, kuten edellä on esitetty.
, 61192 f) Adsorboidaan hydroksyyliapatiitille. Koska hydroksyy- liapatiitti preparatiivisen biokemian tavanomaisissa olosuhteissa ei sido kudosproteiinia, hydroksyyliapatiitti sopii poistamaan muut proteiinit liuoksesta. Kudosproteiiniliuoksen pH säädetään sopivimmin suunnilleen neutraaliksi, ja liuoksen johtokyky pidetään arvossa n. 1 mS. __ (g) g) Kromatografoidaan dietyyliaminoetyyli-Sephadex llä käyttäen tris-HCl-puskuria, pH = 7,0; eluoinnissa käytetään suola-gradienttina 0 - 2 % suolaliuosta.
Seuraavassa kuvataan kudosproteiinin eristämistä elin-kudoksesta.
Hienonnetaan esim. ihmisistukolta, ja ne uutetaan vedellä tai laimealla, sopivimmin alle 10-% suolaliuoksella, edullisesti 0,5-% neutraalisuolaliuoksella, esim. natriumkloridiliuoksella. Sopivimmin käytetään n. 1 - 5 1 uuttoliuoksia 1 kg:a kohti istu-koita. Liukenematon aines erotetaan uutteesta linkoamalla tai suodattamalla.
On osoittautunut edulliseksi valmistaa kudosproteiini alle huoneen lämpötilan olevassa lämpötilassa, esim. 10°C:ssa. Neutraaliksi tai heikosti emäksiseksi, edullisesti pH-arvoon n. 8 säädettyyn istukkauutteeseen lisätään akridiiniemäksen vesiliukoista johdannaista, esim. 2-etoksi-6,9-diaminoakridiinilaktaattia, lopullisen konsentraation ollessa 0,8 - 0,4 %, tai kinoliiniemäksen vesiliukoista johdannaista, edullisesti bis-(2-metyyli-4-amino-kinolyyli-6)-karbamidihydrokloridia, konsentraatioon 0,3 - 0,15 %. Muodostunut sakka erotetaan ja heitetään pois. Liuos sisältää rikastettavan kudosproteiinin pääosan. Sen jälkeen on edullista poistaa saostukseen käytetty aine liuoksesta lisäämällä yhdisteitä, jotka saostavat tämän. Akridiiniemäkset muodostavat esim. haloge-nidien kanssa niukkaliukoisia yhdisteitä, joten akridiiniemäksen poistamiseksi voidaan käyttää natriumkloridia.
Tyydyttävä erotus saavutetaan konsentraatiolla n. 3 - 7 % (p/t) natriumkloridia. Jäljelle jääneeseen proteiiniliuokseen lisätään niin paljon proteiineja saostavaa suolaa, että se syrjäyttää kudosproteiinin liuoksesta. Suolana on edullista käyttää ammonium-sulfaattia, ja sopiva pitoisuus on 30 - 60 %, erityisesti 40 - 50 % kyllästyskonsentraatiosta.Ammoniumsulfaattilisäyksen johdosta muodostunut sakka eristetään linkoamalla tai suodattamalla ja liuote- 61192 7 taan uudelleen veteen. Koska tällaiset suolasaostuksella saadut sakat sisältävät yleensä saostintakin, on suositeltavaa suorittaa dialyysi. Liuos, jonka avulla proteiiniliuos dialysoidaan, on sopivimmin laimea puskuriliuos. Tällöin on edullista käyttää ioninvaihtokromatografiässä tavanomaisia puskuriliuoksia, joiden avulla on mahdollista adsorboida kudosproteiini heikosti emäksiseen ioninvaihtimeen.
Sitten kudosproteiinin dialysoitu liuos sekoitetaan lai-? meassa puskurissa heikosti emäksiseen ioninvaihtimeen, esim. di-etyyliaminoetyyliselluloosaan, ja kun kudosproteiini on adsorboitunut ioninvaihtimeen, tämä erotetaan liuoksesta esim. suodattamalla. Suoritettaessa adsorptio heikosti emäksisissä olosuhteissa (pH n. 8,0) puskurikonsentraation ollessa n. 0,01 moolia/1,ioninvaihdin voidaan pestä 0,02-m puskuriliuoksella hieman alemmassa pH-arvossa (n. 6 - 7). Eluointipuskuriliuoksen kokonaissuolakonsentraatio on n. 0,2 moolia/1.
On edullista lisätä eluaattiin niin paljon neutraalisuolaa,' että proteiini saadaan laimeasta liuoksesta saostuneena ja sen jälkeen uudelleenliuotettuna konsentroidussa muodossa. Liuotetun proteiinin puhdistusta voidaan jatkaa geelisuodattamalla. Fraktioita, joihin haluttu kudosproteiini on erittäin suuresti rikastunut, saadaan käyttämällä Pharmacian verkkoutettua dekstraa-nia, Sephadex® tyyppi G-150, sopivimmin pylväskromatografioimalla. Eluointi-voidaan suorittaa tavanomaisella puskuriliuoksella, johon fraktioimistehon lisäämiseksi voidaan lisätä neutraalisuoloja, jollainen on esimerkiksi 0,01 - 0,1-m tris-hydroksimetyyliamino-metaanisuolahappopuskuri, johon on lisätty 0-5 moolia natrium-kloridia lähes neutraaleissa tai emäksisissä olosuhteissa. Tässä eluointimenetelmässä kudosproteiini todetaan eluoiduista fraktioista sopivimmin immunologisin menetelmin, minkä jälkeen uutta kudosproteiinia sisältävät fraktiot eristetään ja yhdistetään.
Koska myös geelisuodatuksessa saadut eluaatit sisältävät vain vähän kudosproteiinia, on tässäkin tapauksessa paikallaan suorittaa rikastus neutraalisuolasaostuksen avulla.
Kudosproteiiniliuos, joka on saatu liuottamalla neutraali-suolasaostuma, säädetään dialysoimalla erittäin laimean puskuri-liuoksen avulla sellaiseksi, että hydroksyyliapatiitti pystyy adsorboimaan mahdollisimman paljon vielä jäljellä olevia epäpuhtauk- 8 611 92 siä. Sopivia ovat erityisesti laimeat fosfaattipuskuriliuokset, esim. n. 0,005-m natriumfosfaattipuskuriliuos, jonka pH on n.
6,5 - 7,0.Hydroksyyliapatiitin joutuessa kosketukseen käsiteltävänä olevan proteiiniliuoksen kanssa uusi kudosproteiini jää suurimmaksi osaksi liuokseen, joten edullisesti pylväässä olevaa hydroksyyliapatiittla ei tarvitse jatkokäsittelyssä ottaa huomioon. Hydroksyyliapatiittipylvään läpi valunut liuos sisältää haluttua kudosproteiinia hyvin rikastuneessa ja puhtaassa muodossa.
Toistamalla ioninvaihtokromatografia, jolloin poiketen aikaisemmin kuvatusta vaiheesta ioninvaihdin on pylväässä, johon kudosproteiinia sisältävä liuos kaadetaan, ja eluointi suoritetaan konsentraatioltaan kasvavalla suolaliuoksella(gradientilla), kudos-proteiini rikastuu edelleen. Näiden esimerkkien mukaan suoritetussa puhdistusmenetelmässä saadun kudcrsproteiinin puhtausaste on yli 99 %.
Keksinnön mukaisesti valmistetulla kudosproteiinilla on anti-geeniominaisuuksia. Sillä suoritettu eläinimmunisointi tunnetuin menetelmin johti spesifisten vasta-aineiden muodostumiseen immunisoitujen eläimien veressä. Niistä seerumit voidaan eristää ja seerumeissa olevat vasta-aineet rikastaa tavalliseen tapaan. Spesifisten vastaseerumien avulla voidaan veressä oleva kudosproteiini määrittää herkkien immunologisten menetelmien, kuten esim. radio-immuunimäärityksen, avulla. Sairaustiloissa seerumin kudosproteiini-pitoisuus nousee usein moninkertaiseksi. Seerumissa olevan proteiinin määrittämistä voidaan siis sen vuoksi käyttää sairauksien toteamiseen sekä sairauden kulun ja tietyn hoitomenetelmän valvomiseen.
Keksinnön mukaisella menetelmällä valmistetun kudospro-teiinin osoitetulla kudosspesifisyydellä on diagnostinen merkitys. Kudossairauksia voidaan osoittaa verestä proteiinin joutuessa verenkiertoon. Tällöin tulevat lähinnä kysymykseen tunnetut immunologiset toteamismenetelmät, joissa käytetään spesifisiä kudos-proteiinin vasta-aineita.
Seuraavat esimerkit valaisevat keksintöä
Esimerkki 1
Hienonnettiin 150 kg syväjäädytettyjä istukoita ja uutettiin 150 litralla 0,5-% natriumkloridiliuosta. Uutteen pH säädettiin arvoon 8 2-n natriumhydroksidiliuoksella, ja lisättiin 50 1 diaminoetoksiakridiinilaktaatin 3-% vesiliuosta. Tunnin kuluttua pintaan noussut kudosproteiinia sisältävä neste poistettiin dekan- 3 61192 toimalla, lisättiin 5 % (11 kg) kiinteätä natriumkloridia liuokseen jääneen diaminoetoksiakridiinilaktaatin poistamiseksi, suodatettiin, lisättiin 30 % kiinteätä ammoniumsulfaattia (nesteen painosta laskettuna), ja sekoitettiin hyvin. Tunnin kuluttua sakka poistettiin suodattamalla.
Liuotettiin 500 g suodattimelle jäänyttä sakkaa 500 ml:aan tislattua vettä, ja dialysoitiin 0,01 -m tris-(oksimetyyli)-amino-metaanisuolahappopuskuriliuoksen avulla, pH 7,0, jossa oli 0,05 % natriumatsidia. Dialysoitu liuos lingottiin, päällä oleva neste-kerros erotettiin ja laimennettiin samalla puskuriliuoksella 2000 ml:ksi, liuoksen pH säädettiin arvoon 8,0 0,1-n natriumhydrok- sidiliuoksella, lisättiin 500 g kosteaa dietyyliaminoetyylisellu-loosaa (toiminimi Serva, Heidelberg), ja sekoitettiin tunnin ajan.
Sitten dietyyliaminoetyyliselluloosa erotettiin suodattamalla liuoksesta, pestiin kahdesti 1 litran annoksilla 0,01-m tris-(oksimetyyli)-aminometaanisuolahappopuskuria, pH 8,0, ja eluoitiin kolmasti 500 ml:n annoksilla 0,02-m tris-(oksimetyyli)-aminometaanisuolahappopuskuria, pH 6,5, jossa oli 0,85 % natriumkloridia ja 0,Q5 % natriumatsidia.
Yhdistettyihin eluaatteihin lisättiin 30 % ammoniumsulfaattia (nesteen painosta laskettuna) ja sekoitettiin. Kudosproteiinia sisältävä sakka liuotettiin 300 ml:aan tislattua vettä ja geeli-suodatettiin Sephadex G-150:llä käyttäen 0,1-m tris-(oksimetyyli) -aminometaanisuolahappopuskuria , pH 8,0, johon oli lisätty 1,0 moolia natriumkloridia/1 (pylväs 100 x 20 cm). Tris-puskuri toimii lähinnä suspendoimisväliaineena, joka sisälsi geelisuodatuksen kantajan eli Sephadex^ G-150:n. Tislattuun veteen liuotettu ku- (S) dosproteiini kaadettiin Sephadex llä täytettyyn pylvääseen ja eluoitiin tris-puskurilla.
Tämän jälkeen eluaatteja testattiin spesifisellä kudospro-teiinivastaseerumilla, kudosproteiinipitoiset fraktiot otettiin talteen ja proteiinit saostettiin niistä uudelleen yllä kuvatulla tavalla 30 %:lla kiinteätä ammoniumsulfaattia.
Puhdistusta jatkettiin hydroksyyliapatiitilla (pylväs 3 x 23 cm) käyttäen 0,005-m fosfaattipuskuria, pH 6,8, ja tämän jälkeen
Ciö kromatografoimalla dietyyli-aminoetyyli-Sephadex :11a (Pharmacia) (pylväs 3 x 23 cm) käyttäen tris-HCl-puskuria, pH 7,0. Eluoinnissa 10 61192 käytettiin suolagradienttina 0 - 2 % natriumkloridiliuosta.
Tämän jälkeen dialysoitiin, ja lopuksi kylmäkuivatuin proteiinin sisältävä liuos. Saatiin 40 mg uutta kudosproteiinia, puhtaus 99/5 %.
Aminohappoanalyysi antoi seuraavat arvot (mooli-%): lysiiniä 5,64 alaniinia 7/51 histidiinia 1/05 kystiiniä/2 2,11 arginiinia 3,83 valiinia 6,68 aspargiinihappoa 9,84 metioniinia 0,98 treoniinia 4,33 isoleusiinia 3,32 seriinia 4,78 leusiinia 14,43 glutamiinihappoa 11,29 tyrosiinia 5,10 proliinia 6,41 fenyylialaniinia 3,08 glysiiniä 8,65 tryptofaania 1,14
Esimerkki 2
Meneteltiin kuten esimerkissä 1 on selitetty, mutta käy-!· tettiin istukan sijasta ihmisen maksa-, keuhko- tai munuaiskudosta, joka murskattiin, käsiteltiin 0,5-% natriumkloridiliuok-sella, ja erotettiin uuteliuos; jatkokäsittely oli sama kuin esimerkissä 1.

Claims (1)

11 61192 Patenttivaatimus: Menetelmä diagnostisena aineena käytettävän kudosproteii-nin valmistamiseksi nisäkkään sikiön sydämen, maksan, munuaisten, keuhkojen, vatsan tai aivojen kudosuutteesta, tai aikuisen nisäkkään sydämen, keuhkojen, ihon, vatsan, munuaisten, istukan, maksan, pernan, lisämunuaisten, paksusuolen, peräsuolen tai virtsarakon kudosuutteesta, jossa menetelmässä a) kudosuutteesta saostetaan ei-halutut aineet lisäämällä noin 0,8 % akridiini- tai kinoliiniemäksen vesiliukoista joh-r dannaista pH-alueella 5 - 10, b) suodokseen lisätään neutraalisuolaa, kuten ammonium-sulfaattia, kudosproteiinin saostamiseksi, c) saostettu kudosproteiini liuotetaan veteen ja adsorboidaan heikosti emäksiseenioninvaihtimeen ja eluoidaan siitä, d) eluaatti fraktioidaan käyttäen molekyyliseulaa, e) proteiini saostetaan lisäämällä neutraalisuolaa, f) adsorboidaan epäpuhtaudet uudelleen liuotetusta proteiinista hydroksyyliapatiitille ja lopuksi g) kromatografoidaan kudosproteiinia sisältävä liuos di-etyyliaminoetyyli-Sephadej^: 11a, tunnettu siitä, että lopputuotteena saadaan kudosproteiini, jolla on seuraavat tunnusmerkit: h) se sisältää 94- 3 % proteiinia ja 5,4 - 2,2 % hiilihydraatteja, joista 3,0 - 1 % heksooseja, 1,2 - 0,5 % heksoosiamiinia, 0,2 - 0,2 % fukoosia ja 1,0 - 0,5 % neuramiinihappoa, i) sen sedimentoitumiskerroin . on 3,5 S - 0,5 S, 2 0/ _^vesi j) sen isoelektrinen piste on 4,9 - 0,3 mitattuna poly» akryyliamidigeelilevyillä, ja 4,5 - 0,3 mitattuna elektrofokusoimis-pylväässä, k) sen elektroforeettinen liikkuvuus on ja /3^-giobu-liinien välissä, 1 | + l) sen ekstinktiokerroin E* _ (278 nm) on 11,9 - 1,0, ja icra + m) sen molekyylipaino on 37 100 - 1400 määritettynä ultra-sentrifugin avulla, ja n) se koostuu kahdesta alayksiköstä, joiden molekyyli-paino on 22 000 - 2000 määritettynä natriumdodekyylisulfaattia sisältävän polyakryyliamidigeelin avulla.
FI772641A 1976-09-08 1977-09-06 Foerfarande foer framstaellning av ett saosom diagnostiskt medel anvaendbart vaevnadsprotein FI61192C (fi)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2640387 1976-09-08
DE2640387A DE2640387C3 (de) 1976-09-08 1976-09-08 Gewebespezifisches Protein und Verfahren zu dessen Herstellung

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI772641A FI772641A (fi) 1978-03-09
FI61192B FI61192B (fi) 1982-02-26
FI61192C true FI61192C (fi) 1982-06-10

Family

ID=5987430

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI772641A FI61192C (fi) 1976-09-08 1977-09-06 Foerfarande foer framstaellning av ett saosom diagnostiskt medel anvaendbart vaevnadsprotein

Country Status (20)

Country Link
US (1) US4254021A (fi)
JP (1) JPS5334913A (fi)
AT (1) AT365929B (fi)
AU (1) AU517607B2 (fi)
BE (1) BE858521A (fi)
CA (1) CA1092971A (fi)
DE (1) DE2640387C3 (fi)
DK (1) DK397677A (fi)
ES (1) ES462069A1 (fi)
FI (1) FI61192C (fi)
FR (1) FR2364225A1 (fi)
GB (1) GB1586240A (fi)
IE (1) IE45678B1 (fi)
IL (1) IL52899A (fi)
IT (1) IT1084741B (fi)
LU (1) LU78084A1 (fi)
NL (1) NL7709740A (fi)
NO (1) NO773093L (fi)
NZ (1) NZ185106A (fi)
SE (1) SE7710085L (fi)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2718325C2 (de) * 1977-04-25 1986-09-25 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Leucinreiches 3,1-S-α↓2↓-Glykoprotein sowie dessen Verwendung
DE2720704C2 (de) * 1977-05-07 1986-09-25 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Neues Glycoprotein, Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung
DE2842467A1 (de) * 1978-09-29 1980-04-10 Behringwerke Ag Neues ubiquitaeres gewebsprotein pp tief 8
DE2854759A1 (de) * 1978-12-19 1980-07-10 Behringwerke Ag Neues plazentaspezifisches gewebsprotein pp tief 10
DE2952792A1 (de) * 1979-12-31 1981-07-02 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Neues protein (pp(pfeil abwaerts)15(pfeil abwaerts)) mit immunsuppressiver wirkung
DE3013724A1 (de) * 1980-04-10 1981-10-15 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Neues protein pp (pfeil abwaerts)9(pfeil abwaerts), verfahren zu seiner anreicherung und gewinnung sowieseine verwendung
DE3109629A1 (de) * 1981-03-13 1982-09-23 Behringwerke Ag, 3550 Marburg "neues protein (pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)6(pfeil abwaerts)), verfahren zu seiner anreicherung und gewinnung sowie seine verwendung"
DE3228503A1 (de) * 1982-07-30 1984-02-02 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Neues protein (pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)7(pfeil abwaerts)), verfahren zu seiner anreicherung und gewinnung sowie seine verwendung
DE3230996A1 (de) * 1982-08-20 1984-02-23 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Neues protein (pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)3(pfeil abwaerts)), verfahren zu seiner anreicherung und gewinnung sowie seine verwendung
DE3315000A1 (de) * 1983-04-26 1984-10-31 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Gewebeprotein pp(pfeil abwaerts)4(pfeil abwaerts), verfahren zu seiner gewinnung sowie seine verwendung
DE3334405A1 (de) * 1983-09-23 1985-04-04 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Membranassoziierte proteine (mp(pfeil abwaerts)2(pfeil abwaerts)), verfahren zu ihrer gewinnung sowie ihre verwendung
DE3404563A1 (de) * 1984-02-09 1985-08-14 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Gewebeprotein pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)9(pfeil abwaerts), verfahren zu seiner gewinnung sowie seine verwendung
DE3418888A1 (de) * 1984-05-21 1985-11-21 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Gewebeprotein pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)8(pfeil abwaerts), verfahren zu seiner gewinnung sowie seine verwendung
CA1265446A (en) * 1985-09-30 1990-02-06 Masahiro Maki Anticoagulating substance, process for preparing same and anticoagulant comprising same as an effective component
JPH0689014B2 (ja) * 1986-01-21 1994-11-09 興和株式会社 トロンビン結合性物質およびその製法
RU94022543A (ru) * 1994-06-10 1996-05-20 АОЗТ "Научно-практический центр медикобиологических проблем" Основа лекарственного средства и способ ее изготовления

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3409605A (en) * 1965-06-15 1968-11-05 American Cyanamid Co Concentration and purification of growth factor-placental origin (human)
US3497492A (en) * 1968-04-02 1970-02-24 American Cyanamid Co Preparation of placental albumin
US3931399A (en) * 1970-12-22 1976-01-06 Behringwerke Aktiengesellschaft Process for isolating a fibrin-stabilizing factor
US3904751A (en) * 1970-12-22 1975-09-09 Behringwerke Ag Process for isolating a fibrin stabilizing factor from human placenta
US4191533A (en) * 1971-09-29 1980-03-04 Behringwerke Aktiengesellschaft Pregnancy-specific β1 -glycoprotein and process for isolating it
DE2221261A1 (de) * 1972-04-29 1973-11-15 Behringwerke Ag Ap-glykoproteine und verfahren zu ihrer isolierung
FR2215944A1 (en) * 1973-02-01 1974-08-30 Bellon Labor Sa Roger Extracts of human placenta - free of proteases, and contg. histaminase, kininases and monoamine-oxidases for treating allergies
DE2353973C3 (de) * 1973-10-27 1979-10-04 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Steroid-bindendes Globulin und Verfahren zu dessen Herstellung
FR2261755A1 (en) * 1974-02-25 1975-09-19 Thomas Andre Glyco protein and mucopolysaccharides extraction - from naturally occuring materials fr use in cosmetics
US3910822A (en) * 1974-03-14 1975-10-07 Us Health Isolation of glucocerebrosidase from human placental tissue
DE2616984C3 (de) * 1976-04-17 1981-10-29 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Verfahren zur Isolierung und Reinigung eines plazentenspezifischen Glycoproteins

Also Published As

Publication number Publication date
DE2640387C3 (de) 1981-01-22
SE7710085L (sv) 1978-03-09
AU517607B2 (en) 1981-08-13
IE45678B1 (en) 1982-10-20
CA1092971A (en) 1981-01-06
ES462069A1 (es) 1978-06-01
IE45678L (en) 1978-03-08
NO773093L (no) 1978-03-09
IT1084741B (it) 1985-05-28
BE858521A (fr) 1978-03-08
AT365929B (de) 1982-02-25
ATA643777A (de) 1981-07-15
FI772641A (fi) 1978-03-09
DK397677A (da) 1978-03-09
LU78084A1 (fi) 1978-06-01
GB1586240A (en) 1981-03-18
AU2862177A (en) 1979-03-15
FI61192B (fi) 1982-02-26
NL7709740A (nl) 1978-03-10
FR2364225B1 (fi) 1982-11-19
IL52899A0 (en) 1977-11-30
NZ185106A (en) 1980-05-27
US4254021A (en) 1981-03-03
FR2364225A1 (fr) 1978-04-07
IL52899A (en) 1980-09-16
JPS5334913A (en) 1978-03-31
DE2640387B2 (de) 1980-05-22
DE2640387A1 (de) 1978-03-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI61192C (fi) Foerfarande foer framstaellning av ett saosom diagnostiskt medel anvaendbart vaevnadsprotein
US4217339A (en) Glycoprotein and process for isolating it
US4507229A (en) Tissue protein PP4, a process for isolating it and its use
US4269825A (en) New glycoprotein and process for isolating it
US4301064A (en) Ubiquitary tissue protein PP8
US4402872A (en) Protein and process for isolating it
US4468345A (en) Protein (PP17), a process for concentrating and isolating it and its use
US4500451A (en) New protein PP13 extracted from human placental tissues and use thereof
US4302385A (en) Placenta-specific tissue protein PP10
US4746731A (en) Isolated tissue protein PP18
CA1187076A (en) Protein pp.sub.9, process for its enrichment and its isolation and its use
US4592863A (en) Protein PP20, a process for obtaining it, and its use
CA1154437A (en) Protein, pp in11 xx, a process for its preparation and its use
US4594328A (en) Tissue protein PP21, a process for obtaining it and its use
US4599318A (en) Tissue protein PP19, a process for obtaining it, and its use
US4309339A (en) Leucine-rich 3,1-S-α2 -glycoprotein, process for isolating it and its use
Zinneman et al. Cryoglobulinemia in a patient with Sjögren's syndrome, and factors of cryoprecipitation
Robey et al. Isolation and characterization of a thymic factor
Bohn et al. Protein PP 20, a process for obtaining it, and its use
Bohn et al. Isolated tissue protein PP 18
Bohn et al. Tissue protein PP 21, a process for obtaining it and its use
Bohn et al. Ubiquitary tissue protein PP 8
Bohn et al. Tissue protein PP 4, a process for isolating it and its use
Bohn et al. Protein, PP 11, a process for its preparation and its use
Bohn et al. Placenta-specific tissue protein PP 10

Legal Events

Date Code Title Description
MM Patent lapsed

Owner name: BEHRINGWERKE AKTIENGESELLSCHAFT