ES2700161T3 - Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas - Google Patents

Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas Download PDF

Info

Publication number
ES2700161T3
ES2700161T3 ES07758643T ES07758643T ES2700161T3 ES 2700161 T3 ES2700161 T3 ES 2700161T3 ES 07758643 T ES07758643 T ES 07758643T ES 07758643 T ES07758643 T ES 07758643T ES 2700161 T3 ES2700161 T3 ES 2700161T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
hydrogel
crosslinking
tray
lyophilization
precursor components
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
ES07758643T
Other languages
English (en)
Inventor
Amarpreet Sawhney
Steven Bennett
Suresh Pai
Scott Sershen
Fred Co
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Incept LLC
Original Assignee
Incept LLC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=38477048&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=ES2700161(T3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Incept LLC filed Critical Incept LLC
Application granted granted Critical
Publication of ES2700161T3 publication Critical patent/ES2700161T3/es
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/001Use of materials characterised by their function or physical properties
    • A61L24/0031Hydrogels or hydrocolloids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/04Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
    • A61L24/046Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/04Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
    • A61L24/10Polypeptides; Proteins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
    • A61B17/0057Implements for plugging an opening in the wall of a hollow or tubular organ, e.g. for sealing a vessel puncture or closing a cardiac septal defect
    • A61B2017/00646Type of implements
    • A61B2017/0065Type of implements the implement being an adhesive

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Processes Of Treating Macromolecular Substances (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)

Abstract

Un método para obtener hidrogel superabsorbente, que comprende: formar una mezcla combinando componentes precursores para iniciar la reticulación covalente de los componentes precursores, que son un primer precursor electrófilo y un segundo precursor nucleófilo; congelar la mezcla después de que ha comenzado la reticulación covalente de los componentes precursores y antes de que la reticulación covalente de los componentes precursores esté completada, en el que entre 15% y 90% de la reticulación está completada antes de congelar la mezcla; y liofilizar la mezcla congelada para formar el hidrogel; opcionalmente acondicionar el hidrogel tras la liofilización.

Description

DESCRIPCIÓN
Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas
CAMPO DE LA INVENCIÓN
La presente invención se refiere generalmente a métodos para obtener materiales de hidrogel, y más particularmente a métodos para obtener materiales de hidrogel liofilizados.
ANTECEDENTES
Los hidrogeles son materiales que absorben disolventes (tales como agua), sufren un hinchamiento rápido sin disolución discernible, y mantienen redes tridimensionales capaces de una deformación reversible. Los hidrogeles pueden estar no reticulados o reticulados. Los hidrogeles no reticulados son capaces de absorber agua, pero no se disuelven debido a la presencia de regiones hidrófobas e hidrófilas.
El documento US 2004/063206 A1 describe un método para obtener hidrogeles que se reticulan y después se congelan y liofilizan. Algunos de los grupos carboxi se reticulan, y se pueden modificar.
El documento WO 97/39781 A describe un método para preparar un hidrogel, que comprende las etapas de formar una mezcla de compuestos precursores, y liofilizar la mezcla antes de que la reticulación esté completada.
El documento US 2004/121905 A1 describe métodos para preparar superabsorbancia, en los que la polimerización de los precursores se lleva a cabo antes o después de la congelación.
SUMARIO DE LA INVENCIÓN
La presente invención se refiere a métodos para obtener materiales de hidrogel. Más particularmente, la presente invención se refiere a métodos para obtener materiales de hidrogel superabsorbentes y liofilizados. Se describe la formación de tales materiales en dispositivos o estructuras para la introducción en un cuerpo. Además, la presente descripción se refiere a dispositivos y métodos para suministrar tales materiales al cuerpo de un paciente, por ejemplo, para forrar y/o sellar punciones, luces corporales, u otros conductos en un cuerpo.
Se describe un hidrogel biodegradable superabsorbente que se forma reticulando componentes precursores. El hidrogel se puede formar mediante un procedimiento que incluye secar por congelación o “liofilizar” el hidrogel antes de que la reticulación esté completada. El hidrogel se puede reticular en una fase acuosa, por ejemplo, mediante reticulación covalente. Los mecanismos de polimerización usados pueden ser electrófilo-nucleófilo o iniciados mediante radicales libres. El hidrogel puede ser degradable cuando se implante en un tejido o de otro modo en un cuerpo, por ejemplo, mediante hidrólisis, o sustancialmente no degradable. El hidrogel comprende al menos una especie macromolecular y/o polimérica, por ejemplo, una o más moléculas a base de polietilenglicol (PEG), una proteína, o un polisacárido. Por ejemplo, un precursor de PEG activo muy ramificado se puede mezclar con un oligopéptido con dos o más grupos lisina, por ejemplo, di-, tri- o tetralisina, para formar el hidrogel.
Según una realización, se proporciona un método según la reivindicación 1 para obtener hidrogel liofilizado, que incluye combinar componentes precursores para iniciar la reticulación de los componentes precursores para formar un hidrogel, congelar el hidrogel cuando se logra un porcentaje deseado de reticulación total, liofilizar el hidrogel hasta que se elimine del hidrogel una cantidad deseada de humedad, y formar el hidrogel en una o más estructuras. En una realización, el hidrogel se reticula parcialmente antes de la congelación, y la reticulación puede estar completada después de la liofilización, por ejemplo, mediante una o más etapas o procesos de acondicionamiento. En otra realización, el hidrogel se reticula parcialmente antes de la congelación, y la reticulación se puede completar durante la liofilización. En todavía otra realización, la reticulación se puede completar tras la liofilización y/o el acondicionamiento.
Según todavía otra realización, se proporciona un método para obtener hidrogel, que incluye formar una mezcla combinando componentes precursores para iniciar la reticulación de los componentes precursores para formar un hidrogel. Los componentes precursores combinados, la mezcla, y/o el hidrogel se pueden colocar en una bandeja u otro recipiente congelado hasta una temperatura de congelación predeterminada, por ejemplo, por debajo del punto de congelación de los componentes precursores combinados. Se puede dejar que los componentes precursores combinados o la mezcla se reticulen antes y/o después de colocarlos en un recipiente.
El hidrogel se puede congelar en el recipiente, por ejemplo, exponiendo el hidrogel y/o el recipiente a una temperatura de congelación por debajo del punto de congelación de los componentes precursores combinados, durante una duración predeterminada de congelación. El hidrogel se puede congelar cuando se logre un porcentaje predeterminado de reticulación completa, es decir, como máximo 90 por ciento completa. Como se usa aquí, “reticulación completa” se define como aquella que ha ocurrido después de que ha transcurrido un tiempo suficiente en la que el hidrogel no tiene sustancialmente grupos terminales éster reactivos sin reaccionar que pueden permitir la reticulación posterior.
El hidrogel congelado se puede liofilizar entonces hasta que se elimina una cantidad deseada de humedad del hidrogel. La liofilización se puede completar en una única etapa o en múltiples etapas sucesivas, por ejemplo, que incluyen temperaturas de liofilización y/o presiones de vacío diferentes y/o variables. Tras la liofilización, el hidrogel se puede formar en una o más estructuras. Por ejemplo, el hidrogel se puede enrollar, plegar, comprimir, y/o trabajar a máquina en una o más estructuras.
Opcionalmente, antes de su uso médico pretendido, el hidrogel se puede acondicionar tras la liofilización, por ejemplo, antes o después de formarlo en una o más estructuras. El acondicionamiento del gel puede incluir una o más etapas de exponer durante un tiempo predeterminado el hidrogel a un entorno de temperatura y/o humedad controladas, secar el hidrogel usando calor, exponer durante un tiempo predeterminado el hidrogel a un entorno de gas controlado, exponer durante un tiempo predeterminado el hidrogel a una disolución amortiguadora aerosolizada, y/o secar el hidrogel. El hidrogel se puede acondicionar durante una sola etapa o durante múltiples etapas sucesivas, por ejemplo, para lograr una o más características de comportamiento deseadas para la estructura o estructuras finales. En una realización, la reticulación del hidrogel se puede completar durante la una o más etapas de acondicionamiento, por ejemplo, de manera que el hidrogel final esté reticulado totalmente hasta el grado en que el hidrogel ya no tiene una cantidad sustancial de grupos terminales éster sin reaccionar disponibles para la reticulación posterior.
La variación del grado de reticulación en el hidrogel en el momento de la congelación puede permitir el ajuste de la morfología global de la red macroporosa formada tras la liofilización cuando se procesa la composición. Por lo tanto, reticular parcialmente los hidrogeles antes de la liofilización proporciona diversas ventajas. Por ejemplo, el tamaño de poros, la cantidad de poros, la distribución de poros, la densidad, y/o la estructura física de la red polimérica formada tras liofilizar un hidrogel parcialmente reticulado son parámetros que se pueden optimizar para adecuarse a los requisitos o aplicaciones específicos. La manipulación de estos parámetros reticulando parcialmente el hidrogel antes de la congelación puede permitir el control de las propiedades de comportamiento o funcionalidad del material deseadas. Estas propiedades pueden incluir, pero no se limitan a, resistencia a la tracción, módulo de compresión, resistencia al cizallamiento, resistencia a la fluencia, relajación de la tensión, velocidad de hinchamiento del hidrogel, y/o magnitud del hinchamiento del hidrogel. En una realización, una cantidad baja a moderada de reticulación en el momento de la congelación del hidrogel puede producir una red polimérica macroporosa más flexible, más blanda, de densidad baja a moderada, capaz de un hinchamiento rápido, de mayor magnitud, al exponerla a un entorno acuoso. En otra realización, una cantidad moderada a alta de reticulación en el momento de la congelación del hidrogel puede producir una red polimérica porosa o microporosa más rígida, de alta densidad, capaz de un hinchamiento gradual, de menor magnitud, al exponerla a un entorno acuoso. Estos tipos de materiales pueden ser deseables y ventajosos para uso en diversas aplicaciones médicas. Además, el ajuste o variación del grado de reticulación en el momento de la congelación puede facilitar la fabricación y/o procesamiento de composiciones con capacidades de comportamiento inherentes adaptadas o personalizadas para proporcionar propiedades deseadas del material y satisfacer requisitos de comportamiento deseados de aplicaciones médicas individuales.
Otros aspectos y características de la presente invención serán manifiestos al considerar la siguiente descripción, tomada junto con los dibujos que se acompañan.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS
Las FIGS. 1-3 son diagramas de operaciones lógicas, que muestran métodos ejemplares para obtener hidrogel liofilizado. La FIG. 1 no está de acuerdo con la invención.
La FIG. 4 es una vista en perspectiva de una estructura ejemplar que se puede formar a partir de un hidrogel liofilizado.
La FIG. 5 es una vista en perspectiva de un dispositivo de suministro ejemplar para suministrar una estructura, tal como la mostrada en la FIG. 4, a un cuerpo de un paciente.
DESCRIPCIÓN DETALLADA
Volviendo a los dibujos, las FIGS. 1-3 (la FIG. 1 no está de acuerdo con la invención) muestran un método ejemplar para obtener hidrogel liofilizado y/o para formar una o más estructuras a partir de un material de hidrogel liofilizado que se pueden introducir en un cuerpo. En general, el hidrogel puede ser un hidrogel superabsorbente y/o biodegradable formado usando uno o más de los procedimientos descritos en cualquier otra parte aquí. El hidrogel se puede implantar o de otro modo suministrar a un cuerpo de un paciente, por ejemplo, en un tejido, una luz corporal, u otra localización, de manera que el hidrogel esté expuesto a fluidos corporales u otro medio acuoso, como se describe además en cualquier otra parte aquí. Como se usa aquí, “superabsorbente” define un hidrogel que absorbe rápidamente fluido cuando se expone a un entorno acuoso, por ejemplo, que sufre entre alrededor de quinientos y tres mil por ciento (500-3000%) de incremento másico (ganancia de peso húmedo frente a peso seco) debido a la absorción del fluido en alrededor de cinco a sesenta (5-60) segundos de exposición a sangre completa. El hidrogel obtenido usando los métodos descritos aquí puede tener una densidad entre alrededor de 0,05 y 0,30 gramos por centímetro cúbico (g/cc). La densidad, junto con los componentes precursores y/u otros parámetros del procedimiento, puede afectar a una o más de las propiedades del material de hidrogel, por ejemplo, velocidad de hinchamiento, magnitud de hinchamiento, módulo compresivo, y similar. Por ejemplo, el hidrogel se puede hinchar rápidamente cuando se expone a un entorno acuoso, por ejemplo, hinchamiento entre alrededor de quinientos y tres mil por ciento (500-3000%) de la masa inicial en alrededor de cinco a sesenta (5-60) segundos (“velocidad de hinchamiento”). Además, o como alternativa, el hidrogel se puede expandir entre alrededor de cinco y cincuenta (5­ 50) veces en volumen desde su estado deshidratado después de ser formado hasta su estado totalmente hidratado (“magnitud de hinchamiento”). Una vez hidratado, el hidrogel se puede absorber o de otro modo degradar en el cuerpo a lo largo de un período de tiempo, por ejemplo, entre alrededor de uno y noventa (1-90) días, o entre alrededor de cinco y sesenta (5-60) días. Como alternativa, el hidrogel puede ser sustancialmente no degradable, es decir, puede no degradarse sustancialmente en uno o dos años en un entorno fisiológico.
El hidrogel formado usando los materiales y métodos descritos aquí puede constituir una red macroporosa, una red microporosa o “espuma”, es decir, un sistema sólido-gaseoso bifásico que incluye una red cristalina sólida de material que es sustancialmente continua a lo largo del hidrogel. La fase gaseosa (por ejemplo, aire) puede estar distribuida sustancialmente de forma uniforme a lo largo de la red cristalina en espacios vacíos o “poros”. La espuma puede ser de “celda abierta”, es decir, los poros pueden incluir aberturas que permiten la comunicación fluida de un poro a otro a través de la red cristalina que define los poros.
Como se muestra en la FIG. 1, un método para obtener un hidrogel biodegradable superabsorbente, tal como los descritos aquí, incluye generalmente tres etapas: combinar dos o más materiales precursores para iniciar la creación del material de hidrogel (etapa 110), liofilizar el material de hidrogel (etapa 120), y formar el material de hidrogel en una o más estructuras (etapa 130). La estructura o estructuras resultantes se pueden introducir subsiguientemente en un cuerpo de un paciente, por ejemplo, en una punción, una luz corporal, u otro conducto a través de un tejido, como se describe posteriormente más abajo. Aunque las etapas o subetapas de los métodos ejemplares son descritas aquí como llevadas a cabo en un orden particular, las etapas se pueden proporcionar en diferentes secuencias a las descritas.
Volviendo a la FIG. 2, se muestra un método ejemplar para combinar materiales precursores, por ejemplo, durante la etapa 110 del método de la FIG. 1. Inicialmente, en la etapa 112, los componentes poliméricos se pueden proporcionar en forma de polvo, por ejemplo, prefabricados por un proveedor. En realizaciones ejemplares, los componentes poliméricos pueden incluir moléculas a base de polietilenglicol (PEG) con grupos terminales reactivos, polipéptidos, etc. Los grupos terminales reactivos pueden englobar cualquier conjunto de grupos químicos que puedan formar un enlace en condiciones medioambientales específicas, tales como grupos terminales amina y/o éster. Se pueden usar múltiples tipos de polímero base (PEG lineal de pesos moleculares variables, PEG de estrella con números variables de brazos y pesos moleculares, etc.).
En una realización ejemplar, los componentes en polvo pueden ser simplemente un sistema de dos (2) partes. Un ejemplo de tal sistema puede incluir un solo PEG-nucleófilo y un solo PEG-electrófilo. El sistema puede incluir formulaciones, tales como las descritas en las patentes U.S. nos 6.566.406 o 7.009.034. Los ejemplos de un sistema adecuado pueden incluir una combinación de PEGs electrófilos ramificados y una o más di-, tri- o tetralisinas, que tienen grupos funcionales amina.
Por ejemplo, el sistema puede incluir un primer precursor electrófilo y un segundo precursor nucleófilo, de manera que los dos precursores se pueden hacer reaccionar entre sí para formar un hidrogel reticulado. Por ejemplo, un precursor puede ser un PEG de múltiples brazos (por ejemplo, con dos a doce (2-12) brazos) con grupos funcionales electrófilos o nucleófilos. Los pesos de los precursores pueden oscilar significativamente dependiendo de las propiedades pretendidas, por ejemplo, con brazos en el intervalo de alrededor de cinco a cien kiloDaltons (5-100 kDa). Los ejemplos de grupos funcionales electrófilos son glutarato de succinimidilo (SG), carboximetilhidroxibutirano-N-hidroxisuccinimidilo (CM-HBA-NS), N-hidroxisuccinimidas, maleimidas, y ésteres de succinimidilo. Los ejemplos de grupos funcionales nucleófilos son aminas y tioles.
Los precursores se pueden escoger para que incluyan grupos biodegradables mediante hidrólisis al exponerlos a disolución acuosa y/o mediante degradación enzimática dirigida al incorporar secuencias de aminoácidos destinadas a ser degradadas por enzimas relevantes para el sitio de aplicación del hidrogel, por ejemplo, colagenasas. Los ejemplos de grupos hidrolíticamente degradables son ésteres.
Como alternativa, los componentes del polvo pueden ser más complicados, es decir, que incluyan más de dos componentes del polvo, por ejemplo, un sistema de cuatro (4) partes que incluye una PEG-amina, un polipéptido, un PEG-éster de bajo peso molecular, y un PEG-éster de alto peso molecular. Para los componentes poliméricos iniciales se puede proporcionar cualquier combinación de componentes poliméricos que puedan formar un hidrogel. En la etapa 112, los componentes del polvo se pesan individualmente hasta una masa pretendida para dar un porcentaje deseado de material polimérico sólido en el hidrogel final (después de que los polvos se reconstituyen y mezclan juntos). Por ejemplo, los componentes del polvo se pueden medir a partir de un recipiente a granel y se pueden colocar en botellas individuales u otros recipientes. Como alternativa, los componentes del polvo se pueden proporcionar medidos previamente a las masas deseadas en recipientes individuales proporcionados por el fabricante.
En la etapa 114, también se puede proporcionar una o más disoluciones amortiguadoras. Por ejemplo, se puede fabricar una disolución amortiguadora específica para facilitar el uso de cada uno de los componentes poliméricos individuales, tales como los descritos anteriormente. En realizaciones ejemplares, las disoluciones amortiguadoras pueden incluir un amortiguador de borato (por ejemplo, para un componente del polvo polimérico amínico) y/o un amortiguador de fosfato (por ejemplo, para un componente del polvo polimérico de éster).
Las disoluciones amortiguadoras se pueden medir a partir de uno o más recipientes a granel, o se pueden proporcionar en recipientes individuales, por ejemplo, en una cantidad que tiene una relación predeterminada, correspondiendo la cantidad de componentes del polvo a las disoluciones amortiguadoras respectivas. El agente amortiguador, la molaridad, y el pH de cada una de las disoluciones amortiguadoras se pueden ajustar para lograr un tiempo de gelación deseado (es decir, tiempo de reticulación total) cuando se combinan las disoluciones poliméricas reconstituidas.
En la etapa 116, los componentes del polvo se pueden reconstituir con las disoluciones amortiguadoras para crear disoluciones precursoras. En particular, cada uno de los componentes del polvo se puede reconstituir con sus disoluciones amortiguadoras respectivas, y se puede almacenar en recipientes individuales. Por ejemplo, cada una de las disoluciones amortiguadoras se puede verter en los recipientes respectivos que incluyen los componentes del polvo correspondientes. Los recipientes se pueden agitar entonces o mezclar de otro modo para disolver sustancialmente los componentes del polvo en las disoluciones amortiguadoras. En las patentes U.S. nos 6.152.943 y 6.606.294 se puede encontrar información adicional sobre componentes para disoluciones precursoras y métodos para obtenerlas.
Dependiendo de los compuestos usados para los componentes del polvo y disoluciones amortiguadoras, la reconstitución se puede completar previamente al balance del proceso, o inmediatamente antes de completar el proceso. Por ejemplo, algunas disoluciones precursoras pueden permanecer sustancialmente estables durante un período de tiempo prolongado después de que se reconstituyen los componentes del polvo. De este modo, tales disoluciones precursoras se pueden preparar previamente a completar el procedimiento de hidrogel, por ejemplo, horas o incluso días previamente. Por el contrario, otras disoluciones precursoras, tales como aquellas que incluyen PEG-ésteres, pueden necesitar ser reconstituidas inmediatamente antes del uso, debido a la naturaleza hidrolítica de los PEG-ésteres, por ejemplo, alrededor de un minuto antes de completar el procedimiento del hidrogel.
En la etapa 118, después de que se reconstituye cada una de las disoluciones precursoras, se pueden combinar juntas en un único recipiente. A medida que se combinan, o después de combinarlas, se pueden mezclar a conciencia para iniciar una reacción de reticulación y la creación del material de hidrogel. El método de mezclamiento se puede escoger de acuerdo con los tipos de polímero usados y/o el volumen total de las disoluciones precursoras usadas. Por ejemplo, se puede mezclar un volumen relativamente pequeño de material no espumante usando una centrifugadora o una máquina de vórtice, que mezcla las disoluciones con agitación vibratoria. Como alternativa, un gran volumen de disoluciones precursoras se puede mezclar usando una placa de agitación u otro tipo de mezclamiento sin agitación. El mezclamiento activo se puede mantener durante un tiempo de mezclamiento predeterminado, por ejemplo, entre alrededor de diez y sesenta (10-60) segundos, para asegurar que las disoluciones precursoras combinadas se mezclan juntas suficientemente.
A continuación, en la etapa 119, las disoluciones precursoras combinadas se pueden dejar reposar durante un tiempo de reticulación predeterminado, por ejemplo, para permitir que las disoluciones precursoras combinadas se reticulen al menos parcialmente.
En realizaciones ejemplares, el tiempo de reticulación predeterminado puede estar entre alrededor de medio minuto a dos minutos y medio (0,5-2,5) para una disolución polimérica con un tiempo de reticulación total de alrededor de cuatro a ocho (4-8) minutos. Esta etapa permite que las disoluciones precursoras combinadas se reticulen hasta un porcentaje deseado de reticulación completa antes de iniciar el procedimiento de liofilización, es decir, entre 15% y 90% de la reticulación está completada antes de congelar la mezcla, incluyendo quince a cuarenta por ciento (15-40%), alrededor de veinte a sesenta por ciento (20-60%), alrededor de cuarenta a ochenta por ciento (40-80%), y alrededor de cincuenta a noventa por ciento (50-90%). Se describen además entre alrededor de uno y noventa y nueve (1-99%), incluyendo alrededor de uno a quince por ciento (1-15%), alrededor de cinco a veinte por ciento (5-20%), alrededor de diez a treinta por ciento (10-30%), y sesenta a noventa y nueve (60-99%) de reticulación total. En una realización, las disoluciones precursoras combinadas se pueden verter en una bandeja enfriada u otro recipiente, como se describe anteriormente, y se pueden dejar reposar a temperaturas sustancialmente ambiente. Como alternativa, la bandeja se puede mantener a la temperatura de enfriamiento predeterminada, por ejemplo, colocando la bandeja con los materiales precursores combinados en ella en la máquina de liofilización o una placa ajustada a la temperatura de enfriamiento predeterminada (pero que sigue estando a presiones sustancialmente ambientales). A medida que se enfrían las disoluciones precursoras combinadas, la velocidad de reticulación puede ralentizarse y/o cesar a un porcentaje deseado antes de que haya ocurrido la reticulación completa.
En una alternativa adicional, la bandeja se puede proporcionar inicialmente a temperatura ambiente, y las disoluciones precursoras combinadas se pueden dejar reposar a temperaturas sustancialmente ambientales durante el tiempo de reticulación predeterminado, o se pueden colocar en la máquina de liofilización o en una placa ajustada a una temperatura deseada. En todavía otra alternativa, las disoluciones precursoras combinadas se pueden dejar reticular durante el tiempo de reticulación predeterminado antes de verterlas sobre la bandeja (que puede estar enfriada o no, como se describe anteriormente).
Volviendo a la FIG. 1 (la FIG. 1 no está de acuerdo con la invención), una vez que las disoluciones precursoras se mezclan adecuadamente y/o se reticulan al menos parcialmente, el material de hidrogel resultante se puede liofilizar, en la etapa 120, por ejemplo, en una máquina de liofilización. La máquina de liofilización puede ser cualquier dispositivo convencional que incluya una cámara capaz de ser mantenida a una o más temperaturas deseadas y/o a presiones de vacío durante uno o más períodos de tiempo deseados. Si el proceso de liofilización incluye múltiples etapas secuenciales, es decir, teniendo cada etapa una temperatura, presión, y/o duración predeterminadas, que se pueden controlar manualmente o programar previamente en la máquina de liofilización.
Volviendo a la FIG. 3, se muestra un método ejemplar para liofilizar las disoluciones precursoras combinadas y/o el material de hidrogel. Inicialmente, en la etapa 122, se puede proporcionar una bandeja de congelación a una temperatura de enfriamiento predeterminada. La temperatura de enfriamiento predeterminada se puede seleccionar para proporcionar una velocidad deseada de enfriamiento de las disoluciones precursoras combinadas, por ejemplo, entre alrededor de menos veinte a setenta grados Celsius (-20 a -70°C). En una realización ejemplar, la bandeja se puede enfriar hasta una temperatura sustancialmente equivalente a la temperatura de liofilización inicial, por ejemplo, no más caliente que alrededor de menos cuarenta grados Celsius (-40°C). Por ejemplo, la bandeja se puede enfriar a una temperatura predeterminada escogida colocando simplemente la bandeja en el estante de la máquina de liofilización durante un tiempo suficiente para permitir que la bandeja logre la temperatura de liofilización de la máquina de liofilización. Como alternativa, la bandeja se puede enfriar previamente en un congelador, refrigerador, en una placa controlada de temperatura, u otro equipo.
En la etapa 224, las disoluciones precursoras combinadas y/o el material de hidrogel se pueden verter sobre la bandeja. La bandeja puede tener cualquier forma deseada, seleccionada para proporcionar una forma final para el material de hidrogel que se va a formar en la una o más estructuras. Por ejemplo, la bandeja puede ser simplemente una bandeja plana, por ejemplo, que tiene una forma redonda, rectangular, cuadrada, u otra forma geométrica. Cuando las disoluciones precursoras combinadas se vierten sobre la bandeja, pueden asumir un grosor sustancialmente uniforme a lo largo del fondo de la bandeja, por ejemplo, entre alrededor de uno y veinticinco milímetros (1-25 mm). Como alternativa, la bandeja puede incluir uno o más rebajes para crear un grosor variable predeterminado o una configuración tridimensional para las disoluciones precursoras combinadas y/o el material de hidrogel final. En una alternativa adicional, la bandeja puede incluir múltiples cavidades en las que se pueden verter las disoluciones precursoras combinadas para crear múltiples estructuras sobre la bandeja, que están sustancialmente aisladas entre sí.
Opcionalmente, la bandeja puede incluir uno o más revestimientos de superficie, por ejemplo, para facilitar la eliminación del material de hidrogel de la bandeja antes o después de formarlo en una o más estructuras, como se describe más abajo. Por ejemplo, para este fin pueden ser útiles revestimientos de superficie que son hidrófobos, tales como Teflón, silicona, parileno, y similares.
Además, el material de la bandeja (por ejemplo, acero, aluminio, plástico, vidrio, etc.) se puede seleccionar para lograr los parámetros deseados del procedimiento y capacidad de fabricación. Por ejemplo, una bandeja de aluminio se puede enfriar rápidamente y tiene una tasa elevada de transferencia de calor, mientras que una bandeja de Teflón puede permanecer relativamente inalterada por cambios repentinos en la temperatura. El diseño de la bandeja puede incluir rebordes, aletas similares a radiadores, u otras de tales características (no mostradas) que actúan como sumideros de calor para disipar el calor de la disolución líquida en el entorno frío. De este modo, el material y/o el diseño de la bandeja se pueden seleccionar para ralentizar o acelerar el enfriamiento de las disoluciones precursoras combinadas. En una realización alternativa, la bandeja se puede proporcionar a temperaturas sustancialmente ambientales cuando las disoluciones precursoras combinadas se vierten sobre la bandeja, en lugar de enfriar la bandeja previamente. Esta alternativa puede acelerar la reticulación inicial, en comparación con el uso de una bandeja enfriada. El vertido sobre una bandeja por encima de la temperatura de congelación también permite que la disolución de la mezcla líquida se autonivele, dando como resultado un grosor más uniforme.
En la etapa 126, las disoluciones precursoras combinadas (y/o el material de hidrogel al menos parcialmente reticulado) se pueden enfriar hasta una temperatura de congelación, es decir, por debajo del punto de congelación de las disoluciones precursoras combinadas, para congelar las disoluciones precursoras combinadas y/o el material de hidrogel. Por ejemplo, la bandeja se puede colocar en un entorno frío controlado, por ejemplo, una habitación fría o una cámara fría, o en una placa u otra superficie de temperatura controlada, manteniendo de ese modo la bandeja a la temperatura de congelación durante un tiempo predeterminado suficiente para congelar las disoluciones precursoras combinadas.
Como alternativa, la bandeja se puede exponer a un medio de congelación tal como nitrógeno líquido, que puede congelar las disoluciones combinadas de forma relativamente rápida, o se puede exponer a un medio de congelación tal como hielo seco y disolución de acetona durante un período de tiempo predeterminado. Por ejemplo, las disoluciones combinadas se pueden “congelar instantáneamente”, es decir, exponer a una temperatura de congelación suficientemente baja para provocar que la temperatura de las disoluciones combinadas caigan por debajo de la temperatura de congelación al exponerlas al medio de congelación. La congelación instantánea puede detener sustancialmente, de forma rápida, la reticulación posterior, mientras que etapas de congelación más lenta pueden facilitar una reticulación lenta a lo largo de un período de tiempo más prolongado antes de detener sustancialmente la reticulación posterior. Si se usa la congelación instantánea, se debería tener cuidado de evitar grietas u otras imperfecciones que se formen en el material de hidrogel, por ejemplo, que pueden ocurrir cuando el hielo es raspado. Durante esta etapa, la bandeja y el material de hidrogel se pueden mantener a presiones sustancialmente ambientales.
Opcionalmente, si se desea, en la etapa 127, el hidrogel congelado se puede mantener durante un período de tiempo antes de la liofilización, por ejemplo, varios días. Esto puede permitir que se produzca la reticulación adicional, aunque a una velocidad mucho más reducida, lo que puede dar como resultado una estructura más elástica tras el acondicionamiento.
En la etapa 128, una vez que el material de hidrogel está sustancialmente congelado de manera completa, la bandeja se puede transferir a una máquina de liofilización, y se puede iniciar el proceso de liofilización. El proceso puede incluir reducir la presión en la máquina de liofilización hasta un vacío de liofilización predeterminado (es decir, presión manométrica por debajo de la presión ambiental), y/o mantener la temperatura en la máquina de liofilización a una temperatura de liofilización predeterminada durante uno o más períodos de tiempo. El proceso de liofilización se detiene una vez que se elimina del material de hidrogel una cantidad deseada de humedad. La etapa de liofilización puede completarse a una configuración única de presión y/o temperatura de la máquina de liofilización.
Como alternativa, la etapa de liofilización se puede completar en múltiples etapas, durante las cuales se ajustan la presión y/o la temperatura de manera deseada para lograr el nivel deseado de eliminación de humedad, es decir, la liofilización del material de hidrogel. Por ejemplo, durante una etapa inicial, la bandeja se puede mantener a una temperatura de liofilización significativamente por debajo del punto de congelación de las disoluciones precursoras combinadas, por ejemplo, no más de alrededor de menos cuarenta grados Celsius (-40°C), y a una aplicación apropiada de presión de vacío, por ejemplo, un vacío de alrededor de cincuenta milliTorr (5o mTorr), durante alrededor de diez minutos (10 min.). Opcionalmente, se pueden usar etapas adicionales para controlar adicionalmente la liofilización de los contenidos de la bandeja. Por ejemplo, durante una segunda etapa, la bandeja se puede mantener durante un tiempo prolongado a una temperatura ligeramente por debajo del punto de congelación de las disoluciones precursoras combinadas. Después, durante una tercera etapa, el vacío se puede mantener a alrededor de cincuenta milliTorr (50 mTorr), mientras que la temperatura se incrementa ligeramente por encima del punto de congelación de las disoluciones precursoras combinadas, por ejemplo, a una velocidad de alrededor de diez grados Celsius por hora (10°C/h) durante alrededor de ciento cincuenta minutos (150 min.).
Opcionalmente, se pueden usar etapas adicionales para liofilizar adicionalmente los contenidos de la bandeja. Por ejemplo, durante una tercera etapa, la bandeja se puede mantener a una temperatura de liofilización de no más de alrededor de menos veinticinco grados Celsius (-25°C) y un vacío de al menos alrededor de cincuenta milliTorr (50 mTorr) durante al menos alrededor de 1.440 minutos. Durante una cuarta etapa, la temperatura se puede elevar nuevamente, por ejemplo, alrededor de diez grados Celsius por hora (10°C/h), durante alrededor de trescientos minutos (300 min.) a cincuenta milliTorr (50 mTorr) de vacío. Finalmente, durante una quinta etapa, la bandeja se puede mantener durante un período prolongado a una temperatura por encima de la temperatura de fusión de las disoluciones precursoras combinadas, a la vez que se mantiene la aplicación apropiada de presión de vacío, por ejemplo, a una temperatura de no más de alrededor de veinticinco grados Celsius (25°C) y un vacío de al menos alrededor de cincuenta milliTorr (50 mTorr) durante al menos alrededor de doscientos cuarenta minutos (240 min.).
A continuación, con referencia continuada a la FIG. 3, en la etapa 129, al terminar el ciclo de liofilización, el material de hidrogel liofilizado se puede someter a un acondicionamiento medioambiental adicional. Los parámetros del acondicionamiento, particularmente la temperatura, pueden afectar al material final con respecto al grosor, densidad, porosidad, y/o textura de la superficie. Por ejemplo, el material de hidrogel se puede someter a uno o más de los siguientes: exposición a un entorno de temperatura y humedad controladas, secado ayudado por calor, exposición a una disolución amortiguadora aerosolizada, secado ayudado por vacío, y/o exposición a un entorno de gas controlado (argón, nitrógeno, etc.). El material de hidrogel también se puede hacer pasar a través de diferentes fases de humidificación y secado del acondicionamiento medioambiental una o más veces. Por ejemplo, la humedad puede impulsar hasta la terminación la reacción previamente detenida por la liofilización del material.
El hidrogel liofilizado también se puede exponer a condiciones de temperatura, presión y/o humedades ambientales durante un período inicial (es decir, temperaturas ambientales, por ejemplo, entre alrededor de 20-25°C, presiones ambientales, y/o humedad ambiental, por ejemplo, entre alrededor de treinta y cincuenta por ciento (30-50%) de humedad relativa (“RH”) durante un primer tiempo de acondicionamiento, por ejemplo, al menos alrededor de veinticuatro horas (24 h). Después, la temperatura, presión, y/o humedad se pueden incrementar (por ejemplo, hasta al menos alrededor de treinta y cinco grados Celsius (35°C) y al menos alrededor de noventa por ciento de humedad relativa (90% de RH) durante un segundo tiempo de acondicionamiento, por ejemplo, al menos alrededor de dos horas (2 h). Opcionalmente, el hidrogel se puede exponer a etapas adicionales de acondicionamiento a temperaturas y/o humedades predeterminadas adicionales durante tiempos predeterminados para facilitar el rendimiento del material de hidrogel con las propiedades y morfología deseadas. Por ejemplo, durante una tercera etapa, el hidrogel se puede exponer hasta aproximadamente treinta grados Celsius (30°C) y entre alrededor de 20-30% de RH durante alrededor de dos horas (2 h); y durante una cuarta etapa, el hidrogel se puede exponer a condiciones ambientales (alrededor de 20-25°C) y humedad entre alrededor de 30-50% de RH durante al menos alrededor de ciento veinte horas (120 h).
Durante la una o más etapas de acondicionamiento, el hidrogel puede completar la reticulación adicional antes del uso médico. Por ejemplo, en una realización, al completar el acondicionamiento, el material de hidrogel completa sustancialmente la reticulación, por ejemplo, hasta el grado en el que el hidrogel ya no tiene una cantidad sustancial de grupos terminales éster sin reaccionar capaces de reticulación posterior.
Si se desea, se pueden completar uno o más ensayos para confirmar que se ha producido la reticulación sustancial en una muestra. Por ejemplo, se puede usar un colorante fluorescente, por ejemplo, fluoresceína (que puede tener tres grupos amina primaria que probablemente reaccionarán con cualesquiera grupos éster sin reaccionar en la muestra), para detectar si grupos terminales éster reactivos sin reaccionar sustanciales permanecen en una muestra. Tras aplicar el colorante a la muestra, se puede dejar un tiempo suficiente a la muestra para que reaccione. La muestra se puede aclarar entonces para eliminar cualquier exceso de colorante, y la muestra se puede exponer a luz ultravioleta. Si la muestra incluye grupos terminales éster reactivos sin reaccionar sustanciales, el colorante emitirá luz fluorescente cuando se exponga. De este modo, si la muestra está sustancialmente reticulada de forma completa, es decir, no incluye sustancialmente grupos terminales éster reactivos sin reaccionar, el colorante no emitirá sustancialmente ninguna fluorescencia cuando la muestra se exponga a luz ultravioleta.
Como alternativa, puede ser posible la reticulación sustancialmente completa durante la etapa de liofilización. Por ejemplo, un PEG activo muy ramificado se puede mezclar con trilisina, y se puede liofilizar, por ejemplo, usando las una o más etapas descritas en cualquier otra parte aquí. De este modo, un gel superabsorbente se puede crear simplemente mediante liofilización.
Volviendo a la FIG. 1, el material de hidrogel liofilizado se puede someter entonces a máquina, o se puede formar de otro modo en su forma final, en la etapa 130. Por ejemplo, el material de hidrogel se puede retirar de la bandeja, y después se puede cortar, maquinar, o seccionar de otro modo en múltiples estructuras, por ejemplo, una o más láminas, varillas, tubos, y similares. Además, o como alternativa, el material de hidrogel se puede enrollar, comprimir, y/o plegar en configuraciones o formas deseadas. Por ejemplo, las secciones separadas del material de hidrogel se pueden enrollar, comprimir, y/o plegar en una configuración que se puede cargar en un dispositivo de suministro, o de otro modo se pueden dimensionar para la introducción en un cuerpo de un paciente, como se describe posteriormente más abajo.
Realización ejemplar del procedimiento
Para este ejemplo, se escoge un sistema de dos polímeros. El sistema incluye un PEG terminado en amina y un PEG terminado en éster. A continuación, se dan las características de los polímeros:
Polímero a base de amina: polímero de PEG en forma de estrella de 8 brazos, peso molecular total 20 kiloDaltons
Polímero a base de éster: polímero de PEG en forma de estrella de 4 brazos, peso molecular total 10 kiloDaltons.
Los componentes del polvo se pesan individualmente hasta una masa que dará como resultado cinco por ciento (5%) de la masa del hidrogel final del material polimérico existente como sólido.
A continuación, se escoge un amortiguador de borato para reconstituir el polímero amínico, y se escoge un amortiguador de fosfato para reconstituir el polímero de éster. Las molaridades y el pH de estas disoluciones amortiguadoras se escogen para optimizar las condiciones reactivas y el tiempo de trabajo de los materiales tras la reconstitución, por ejemplo, en base a las características dadas a continuación:
Amortiguador de borato: Borato de sodio en agua para inyección
Molaridad = 0,05M
pH = 7,63 ± 0,05
Amortiguador de fosfato: Fosfato de sodio en agua para inyección
Molaridad = 0,01M
pH = 4,0 ± 0,05.
A continuación, la PEG-amina se reconstituye con el amortiguador de borato, y el PEG-éster se reconstituye con el amortiguador de fosfato. Las disoluciones precursoras se combinan entonces juntas, por ejemplo, en un tubo de centrifugadora, y se mezclan vigorosamente, por ejemplo, usando una máquina de vórtice, durante alrededor de quince segundos (15 s).
A continuación, se pueden escoger una o más bandejas u otros recipientes con la geometría/dimensiones deseadas y revestimiento/revestimientos de superficie, por ejemplo, incluyendo un revestimiento de PTFE. La bandeja o bandejas se pueden preparar para recibir las disoluciones precursoras de hidrogel al enfriar previamente la bandeja o bandejas en el estante de la máquina de liofilización, que se puede ajustar a una temperatura de congelación predeterminada. En un método ejemplar, el área de la bandeja puede ser aproximadamente cinco centímetros por cinco centímetros (5 cm x 5 cm). La bandeja se enfría hasta alrededor de menos cuarenta grados Celsius (-40°C) antes del uso, permitiéndole que se equilibre en el estante de la máquina de liofilización.
Al alcanzar la cantidad deseada de reticulación, un volumen deseado de las disoluciones precursoras mezcladas se combina y se deja que alcance la reticulación deseada, por ejemplo, noventa segundos (90 s) para lograr veinticinco por ciento (25%) de reticulación con una disolución de seis minutos (6 min.), momento en el cual se vierten entonces alrededor de ocho mililitros (8 ml) sobre la bandeja enfriada a medida que se deposita en el estante de la máquina de liofilización.
Inmediatamente después de que las disoluciones precursoras se vierten en la bandeja, se cierra herméticamente la puerta de la máquina de liofilización. Las disoluciones se mantienen a esta temperatura durante un mínimo de dos minutos (2 min.). En este punto, se inicia el ciclo de liofilización. Se pueden emplear parámetros de liofilización típicos conocidos en la técnica, de manera que el agua libre y unida se elimine sin provocar retrofusión sustancial del material polimérico. Los parámetros ejemplares para la liofilización se dan a continuación:
Figure imgf000009_0001
Al completar el ciclo de liofilización, el material reticulado se somete a condiciones medioambientales adicionales. Los parámetros de acondicionamiento ejemplares se dan a continuación:
Figure imgf000009_0002
Los parámetros medioambientales (temperatura, presión y/o humedad) a los que se expone el hidrogel se pueden ajustar, por ejemplo, para cambiar el comportamiento de salida del material liofilizado final con respecto a la velocidad de hidratación, magnitud de expansión del volumen, y período de caducidad post-producción, como se explica en cualquier otra parte aquí. En general, al completar estas etapas de acondicionamiento, el material de hidrogel se reticulará totalmente hasta el grado en el que el hidrogel ya no tiene una cantidad sustancial de grupos terminales éster sin reaccionar disponibles para la reticulación posterior.
El hidrogel liofilizado se corta entonces en las dimensiones y/o masa deseadas. Por ejemplo, el hidrogel se puede formar en un tamaño de alrededor de quince milímetros de largo por alrededor de seis a ocho milímetros de ancho por alrededor de uno a uno y medio milímetros de grosor (15 mm x 6-10 mm x 1,0-1,5 mm), con una masa diana de alrededor de veinte miligramos (20 mg ± 6 mg). El material está listo entonces para ser procesado posteriormente para la aplicación médica deseada.
El material resultante se puede formar en una o más estructuras para la introducción y/o implante en un cuerpo. Se describe que las estructuras se pueden introducir en un cuerpo solas o como parte de otros dispositivos para una variedad de aplicaciones, por ejemplo, a través de conductos existentes (por ejemplo, vasos sanguíneos u otras luces corporales), o conductos creados quirúrgicamente (por ejemplo, punciones u otros tubos a través del tejido), aplicadas a superficies biológicas, y similares. Por ejemplo, las estructuras se pueden usar para aplicaciones embólicas, de cierre del sitio de acceso, por ejemplo, para cerrar o aislar malformaciones arteriovenosas, aneurismas, sitios tumorales, y similares. Las estructuras se pueden incorporar en otros dispositivos, por ejemplo, para proporcionar revestimientos sobre endoprótesis, muelles neurovasculares, implantes para el suministro de fármacos, u otros dispositivos implantables. Las estructuras también se pueden incorporar en parches hemostáticos u otros dispositivos que se pueden aplicar a superficies en un cuerpo. Los dispositivos pueden ser permanentes, o pueden ser bioabsorbibles, de manera que el hidrogel y/u otros componentes de los dispositivos se pueden absorber por el cuerpo a lo largo del tiempo. En la patente U.S. n° 6.605.294 se describen dispositivos y aplicaciones ejemplares que pueden incorporar los métodos y materiales descritos aquí.
Volviendo a la FIG. 4, se muestra un dispositivo o estructura 4 ejemplar que se puede formar a partir de material de hidrogel liofilizado, tal como los que resultan a partir de los métodos descritos anteriormente. Por ejemplo, la estructura 4 puede ser un tapón u otro dispositivo hemostático que se puede suministrar a una punción u otra luz corporal para sellar sustancialmente la luz corporal.
Para formar la estructura 4, una lámina u otra sección de material de hidrogel cortado de una porción más grande se puede enrollar en una forma cilindrica que tiene extremos 6, 8 primero y segundo. La lámina se puede enrollar de manera que la estructura 4 incluye una luz central 10 que se extiende entre los extremos 6, 8 primero y segundo. Por ejemplo, la lámina se puede enrollar de manera que los bordes laterales longitudinales 12, 14 de la lámina solapen entre sí, como se muestra. Como alternativa, los bordes laterales 12, 14 se pueden empalmar o conectar entre sí.
En una alternativa adicional, la sección se puede enrollar, maquinar, o de otro modo formar en una varilla o barra sólida. Si se desea, se puede formar una luz central a través de tal varilla o barra, por ejemplo, taladrando, perforando, y similar. Además, o como alternativa, la sección de hidrogel (ya sea enrollada o no) se puede comprimir para proporcionar un diámetro u otra sección transversal deseados. En realizaciones ejemplares, la estructura 4 resultante puede tener un diámetro entre alrededor de 1,5-2,4 milímetros, y/o una longitud entre alrededor de trece a diecisiete milímetros (13-17 mm). La luz 10 puede tener un diámetro entre alrededor de 0,5-0,9 mm.
Opcionalmente, la estructura 4 puede incluir uno o más componentes para proporcionar una capa adherente alrededor de la estructura 4, por ejemplo, uno o más precursores de capa adherente. Además, o como alternativa, los precursores de la capa adherente se pueden infundir o entremezclar de otro modo sustancialmente a lo largo de la estructura 4. En los documentos US 7.790.192 y US 7.335.220 se puede encontrar información adicional sobre tales capas adherentes.
Además, o como alternativa, la estructura 4 puede incluir material protrombótico, por ejemplo, que incluye uno o más protrombóticos biológicos, tales como colágeno, fibrina, trombina, carboximetilcelulosa, celulosa oxidada, alginatos, gelatina, u otro material a base de proteína, y/o materiales sintéticos, tales como poliácidos glicólicos (PGAs), polilactidas (PLAs), polialcohol vinílico, y similares. Opcionalmente, la estructura 4 puede incluir agentes terapéuticos y/o farmacéuticos, por ejemplo, para tratar enfermedades particulares, promover la curación, prevenir la infección y/u otros sucesos médicos adversos, y similares. Tales agentes se pueden embeber en el material de la estructura 4 tras formarla, y/o se pueden aplicar como uno o más revestimientos o capas. Estos agentes también se pueden introducir en el procedimiento de fabricación del hidrogel, por ejemplo, en los polvos antes de la reconstitución, en las disoluciones precursoras en el momento del mezclamiento, en la torta del hidrogel en el momento del acondicionamiento, o en cualquier momento antes de su uso médico.
Opcionalmente, la estructura 4 puede incluir un agente para incrementar la velocidad de absorción de la disolución en el hidrogel liofilizado, por ejemplo, para reducir la tensión superficial de los poros y/o potenciar la eficacia del cierre. Tales agentes se pueden embeber en el material de la estructura 4 tras formarla, y/o se pueden aplicar como uno o más revestimientos o capas. Estos agentes también se pueden introducir en el procedimiento de fabricación del hidrogel, por ejemplo, en los polvos antes de la reconstitución, en las disoluciones precursoras en el momento del mezclamiento, en la torta del hidrogel en el momento del acondicionamiento, o en cualquier momento antes de su uso médico.
Opcionalmente, la estructura 4 puede incluir un agente radioopa
hidrogel bajo equipo de rayos X o equipo fluoroscópico usado normalmente. Tales agentes se pueden embeber en el material de la estructura 4 tras formarla, y/o se pueden aplicar como uno o más revestimientos o capas. Estos agentes también se pueden introducir en el procedimiento de fabricación del hidrogel, por ejemplo, los polvos antes de la reconstitución, en las disoluciones precursoras en el momento del mezclamiento, en la torta del hidrogel en el momento del acondicionamiento, o en cualquier momento antes de su uso médico.
En otra alternativa, la estructura 4 se puede formar a partir de una estructura compuesta o en láminas que incluye dos o más capas de material de hidrogel (no mostrado). Por ejemplo, cada una de las capas del material de hidrogel se puede formar como se describe anteriormente, y se pueden laminar, moldear o formar de otro modo juntas. Como alternativa, un material de hidrogel para una primera capa se puede verter o de otro modo suministrar sobre una bandeja u otro recipiente, similar a los métodos descritos en cualquier otra parte aquí. El material de hidrogel se puede verter sobre la bandeja en un estado líquido o fluido, de manera que adopta la forma de, o llena al menos parcialmente, la bandeja. Antes de completar la reticulación del material de hidrogel, un segundo material de hidrogel se puede verter sobre la primera capa, para crear una segunda capa sobre la primera capa. La segunda capa puede penetrar ligeramente en la primera capa de hidrogel, por ejemplo, para potenciar el enlace o laminar de otro modo las dos capas.
El material para la segunda capa puede ser diferente del material que forma la primera capa. Opcionalmente, se puede aplicar una tercera capa o capas adicionales sobre la segunda capa. A este respecto, se pueden crear múltiples capas de hidrogel distintas para formar una estructura en láminas.
Antes de completar la reticulación de la segunda capa y/o capas adicionales, la bandeja se puede congelar y después liofilizar, de forma similar a los métodos descritos en cualquier otra parte aquí. El laminado se puede retirar entonces de la bandeja y conformar en una geometría deseada, también como se describe en cualquier otra parte aquí.
En todavía otra alternativa, el hidrogel se puede modificar con un agente de bloqueo que limita o previene sustancialmente que el hidrogel se hinche. El agente de bloqueo puede ser transitorio, por cuanto se elimina vía difusión o en un campo de flujo fluido que permite el hinchamiento consistente y retrasado según se pueda necesitar para aplicaciones médicas que requieran la recolocación o recuperación antes del implante permanente y/o desconexión de un dispositivo de suministro.
Volviendo a la FIG. 5, un cartucho de suministro, catéter, u otro aparato 30 se puede proporcionar para suministrar la estructura 4 de la FIG. 4 (u otra configuración para la estructura 4), por ejemplo, para sellar una punción u otra luz corporal. En general, el aparato 30 puede incluir una vaina de suministro u otro elemento tubular 40, un émbolo u otro elemento 50 de empuje, y, opcionalmente, un elemento 60 de posicionamiento.
La vaina 40 de suministro puede ser un elemento sustancialmente rígido, semi-rígido, o flexible, que incluye un extremo proximal 42, un extremo distal 44 dimensionado para la introducción en una luz corporal u otro conducto a través del tejido, y una luz 46 dimensionada para recibir o de otro modo portar la estructura 4 en ella. El extremo distal 44 puede estar ahusado, y/o puede incluir una punta sustancialmente atraumática para facilitar el avance a través de un conducto tisular. La vaina 40 de suministro puede incluir un mango (no mostrado), y/o uno o más cierres, por ejemplo, cierre hemostático (también no mostrado), en el extremo proximal 42. La estructura 4 se puede colocar en la luz 46, por ejemplo, adyacente al extremo distal 44. La luz 42 se puede dimensionar de manera que la estructura 4 sea deslizable en ella, por ejemplo, capaz de atravesar distalmente desde la vaina 40 de suministro durante el suministro, como se describe posteriormente más abajo.
El elemento 50 de empuje puede ser un elemento alargado, por ejemplo, un émbolo, catéter, y similar, que incluye un extremo proximal 52 y un extremo distal 54 dimensionado para la inserción deslizable en la luz 42 de la vaina 40 de suministro. Opcionalmente, el extremo proximal 52 del elemento 50 de empuje puede incluir un conector (no mostrado) para acoplar la luz 54 del elemento 50 de empuje a una jeringuilla u otro dispositivo 70 de suministro (también no mostrado) para suministrar uno o más fluidos en o a través del aparato 30. En las solicitudes US 2004/0267308 A y US 2006/0099238, en trámite junto con la presente, se puede encontrar información adicional sobre otros componentes, aparato alternativo, y métodos para usarlos.
Refiriéndonos todavía a la FIG. 5, el extremo distal 54 del elemento 50 de empuje puede estar sustancialmente romo para facilitar la puesta en contacto, el apisonado, el empuje, y/o “el encinchado” de la estructura 4 dentro de la vaina 40 de suministro y/o un conducto, como se describe adicionalmente más abajo. El elemento 50 de empuje puede ser sustancialmente rígido, semi-rígido, y/o sustancialmente flexible, que tiene suficiente resistencia de columna para permitir el movimiento de la vaina 40 de suministro con respecto a la estructura 4 sin doblar el elemento 50 de empuje. En una realización, el elemento 50 de empuje tiene suficiente resistencia de columna para apisonar la estructura 4, pero retiene un extremo distal 52 flexible o “blando” para evitar el avance accidental de la estructura 4 en un vaso u otra luz corporal 94. El elemento 50 de empuje también puede incluir una luz 56 que se extiende entre el extremo proximal 52 y el extremo distal 54, por ejemplo, para alojar el elemento 60 de posicionamiento y/o un alambre guía (no mostrado).
Opcionalmente, al igual que en la realización mostrada en la FIG. 5, el elemento 60 de posicionamiento es un cuerpo alargado sólido o hueco, que incluye un extremo proximal 62, un extremo distal 64, y un elemento 66 de posicionamiento en el extremo distal 64. El elemento 66 de posicionamiento puede ser un elemento expandible, tal como un balón, una estructura de malla de alambre, un armazón expandible, y similar, tales como los descritos en la solicitud US 2006/0099238. El elemento 66 de posicionamiento se puede expandir selectivamente o se puede accionar de otro modo desde el extremo proximal 62 desde el elemento 60 de posicionamiento, por ejemplo, usando un medio para inflar, un alambre de tracción, y/u otro accionador (no mostrado). Por ejemplo, se puede acoplar una jeringuilla u otra fuente de medio para inflar a una luz (no mostrada) que se extiende a través del elemento 60 de posicionamiento a un elemento de posicionamiento inflable. La información adicional sobre estructuras expandibles que se pueden incorporar el elemento 60 de posicionamiento se puede encontrar en las patentes U.S. nos 6.238.412 y 6.635.068, en las solicitudes en trámite junto con la presente Serie n° 10/143.514, publicadas como Publicación n° US 2003/0078616 A1, y US 7.331.979, US 7.316.704, US 8.348.971 y US 7.806.856.
Aunque la invención es susceptible de diversas modificaciones, y formas alternativas, se han mostrado en los dibujos ejemplos específicos de la misma, y se describen aquí con detalle. Sin embargo, se debería entender que la invención no está limitada a las formas particulares o métodos descritos, sino al contrario, la invención cubre todas las modificaciones y alternativas que caen dentro del alcance de las reivindicaciones anejas.
Ċ

Claims (14)

REIVINDICACIONES
1. Un método para obtener hidrogel superabsorbente, que comprende:
formar una mezcla combinando componentes precursores para iniciar la reticulación covalente de los componentes precursores, que son un primer precursor electrófilo y un segundo precursor nucleófilo; congelar la mezcla después de que ha comenzado la reticulación covalente de los componentes precursores y antes de que la reticulación covalente de los componentes precursores esté completada, en el que entre 15% y 90% de la reticulación está completada antes de congelar la mezcla; y
liofilizar la mezcla congelada para formar el hidrogel;
opcionalmente acondicionar el hidrogel tras la liofilización.
2. El método de la reivindicación 1, que comprende además colocar los componentes precursores combinados sobre una bandeja o recipiente enfriado antes de congelar la mezcla, en particular en el que la mezcla se congela en la bandeja o recipiente.
3. El método de la reivindicación 1, en el que la reticulación de los componentes precursores se inicia en una fase acuosa.
4. El método de la reivindicación 1, en el que el hidrogel completa sustancialmente la reticulación cuando la mezcla se liofiliza.
5. El método de la reivindicación 1, en el que los componentes precursores comprenden un PEG activo muy ramificado.
6. El método de la reivindicación 5, en el que los componentes precursores comprenden además un oligopéptido con dos o más grupos de lisina.
7. El método de la reivindicación 1, en el que el hidrogel liofilizado se acondiciona para completar sustancialmente la reticulación de los componentes precursores.
8. El método de la reivindicación 7, en el que el hidrogel se coloca sobre una bandeja o recipiente enfriado por debajo del punto de congelación de los componentes precursores combinados antes de que la reticulación esté completada.
9. El método de la reivindicación 8, en el que el hidrogel se coloca en la bandeja o recipiente inmediatamente al combinar los componentes precursores, y en el que el hidrogel se mantiene en la bandeja o recipiente a una temperatura predeterminada hasta que se logra un porcentaje predeterminado de reticulación completa, con lo que después se liofiliza el hidrogel.
10. El método de la reivindicación 1, en el que el acondicionamiento del hidrogel comprende una o más etapas de acondicionamiento seleccionadas del grupo que comprende:
exponer el hidrogel a un entorno de humedad controlado;
secar adicionalmente el hidrogel usando calor;
exponer el hidrogel a un entorno gaseoso controlado;
exponer el hidrogel a una disolución amortiguadora aerosolizada; y
secar el hidrogel.
11. El método de la reivindicación 10, en el que el hidrogel se acondiciona usando múltiples etapas sucesivas, comprendiendo cada etapa una o más de las etapas de acondicionamiento.
12. El método de la reivindicación 1, en el que la etapa de liofilización del hidrogel comprende:
una primera etapa que comprende exponer el hidrogel a una temperatura de liofilización y un vacío; y una segunda etapa que comprende al menos incrementar la temperatura de liofilización, y reducir el vacío, en particular en el que la segunda etapa comprende reducir el vacío durante un tiempo de segunda etapa, y en el que la temperatura de liofilización se incrementa al menos intermitentemente durante el tiempo de la segunda etapa, en particular en el que la temperatura de liofilización se incrementa a una velocidad constante durante el tiempo de la segunda etapa.
13. El método de la reivindicación 1, en el que el hidrogel completa sustancialmente la reticulación cuando el hidrogel se acondiciona; en particular, el hidrogel no tiene sustancialmente grupos terminales ésteres no reactivos después de que el hidrogel se acondiciona.
14. El método de la reivindicación 1, que comprende además formar el hidrogel liofilizado en una o más estructuras, en particular formado mediante al menos uno de corte, maquinado, laminado, desnucleado, y compresión del hidrogel; que tiene una estructura que se dimensiona para la introducción en una luz corporal.
ES07758643T 2006-03-29 2007-03-15 Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas Active ES2700161T3 (es)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US74394406P 2006-03-29 2006-03-29
US11/465,791 US8795709B2 (en) 2006-03-29 2006-08-18 Superabsorbent, freeze dried hydrogels for medical applications
PCT/US2007/064107 WO2007117855A1 (en) 2006-03-29 2007-03-15 Superabsorbent, freeze dried hydrogels for medical applications

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2700161T3 true ES2700161T3 (es) 2019-02-14

Family

ID=38477048

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES07758643T Active ES2700161T3 (es) 2006-03-29 2007-03-15 Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas

Country Status (7)

Country Link
US (3) US8795709B2 (es)
EP (1) EP2010236B1 (es)
JP (2) JP5689233B2 (es)
AU (1) AU2007235117B2 (es)
CA (1) CA2645164C (es)
ES (1) ES2700161T3 (es)
WO (1) WO2007117855A1 (es)

Families Citing this family (75)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6159232A (en) 1997-12-16 2000-12-12 Closys Corporation Clotting cascade initiating apparatus and methods of use and methods of closing wounds
US6478808B2 (en) 1997-12-17 2002-11-12 Closys Corporation Clotting cascade initiating apparatus and methods of use and methods of closing wounds
US6605294B2 (en) 1998-08-14 2003-08-12 Incept Llc Methods of using in situ hydration of hydrogel articles for sealing or augmentation of tissue or vessels
US7790192B2 (en) 1998-08-14 2010-09-07 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US8911472B2 (en) 2005-12-13 2014-12-16 Cardiva Medical, Inc. Apparatus and methods for delivering hemostatic materials for blood vessel closure
JP2010500917A (ja) 2006-06-15 2010-01-14 マイクロベンション, インコーポレイテッド 膨張性ポリマーで構成される塞栓形成デバイス
US8617204B2 (en) 2006-09-13 2013-12-31 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
WO2008097581A1 (en) * 2007-02-06 2008-08-14 Incept, Llc Polymerization with precipitation of proteins for elution in physiological solution
US9125807B2 (en) 2007-07-09 2015-09-08 Incept Llc Adhesive hydrogels for ophthalmic drug delivery
US9700584B2 (en) 2007-12-21 2017-07-11 Rti Surgical, Inc. Osteoinductive putties and methods of making and using such putties
CA2709379C (en) 2007-12-21 2016-08-16 Microvention, Inc. Hydrogel filaments for biomedical uses
US8029533B2 (en) 2008-04-04 2011-10-04 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US9364206B2 (en) 2008-04-04 2016-06-14 Access Closure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
JP2012508618A (ja) 2008-11-12 2012-04-12 アクセスクロージャー,インク. 脈管穿刺を閉鎖する装置及び方法
EP2396070A4 (en) 2009-02-12 2012-09-19 Incept Llc ACTIVE COMPOSITION WITH HYDROGEL PLUGS
AU2010246115A1 (en) 2009-05-04 2011-12-08 Incept. Llc Biomaterials for track and puncture closure
US8617206B2 (en) * 2009-10-08 2013-12-31 Covidien Lp Wound closure device
WO2011053555A1 (en) 2009-10-26 2011-05-05 Microvention, Inc. Embolization device constructed from expansile polymer
AU2010314992B2 (en) 2009-11-09 2016-09-15 Spotlight Technology Partners Llc Polysaccharide based hydrogels
CA2780274C (en) 2009-11-09 2018-06-26 Spotlight Technology Partners Llc Fragmented hydrogels
EP2512540B1 (en) 2009-12-15 2019-08-07 Incept, LLC Implants and biodegradable fiducial markers
US10231721B2 (en) 2010-06-24 2019-03-19 St. Croix Surgical Systems, Llc Failsafe percutaneous wound barrier
JPWO2012035598A1 (ja) * 2010-09-13 2014-01-20 株式会社グツドマン 医療用材料、乾燥体及びそれらの製造方法
US8961501B2 (en) 2010-09-17 2015-02-24 Incept, Llc Method for applying flowable hydrogels to a cornea
EP2665425B1 (en) 2011-01-19 2018-08-22 Access Closure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US9820728B2 (en) 2011-01-19 2017-11-21 Access Closure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US9456823B2 (en) 2011-04-18 2016-10-04 Terumo Corporation Embolic devices
US9386968B2 (en) 2011-05-11 2016-07-12 Access Closure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
MD4471C1 (ro) 2011-05-24 2017-10-31 Takeda As Purtător de colagen răsucit
BR112013031209B1 (pt) 2011-06-07 2020-11-24 Gelesis Llc Metodo para produzir hidrogeis
US10434292B2 (en) 2011-06-24 2019-10-08 Access Closure Method and devices for flow occlusion during device exchanges
WO2012178073A1 (en) 2011-06-24 2012-12-27 Accessclosure, Inc. Method and devices for flow occlusion during device exchanges
WO2012178133A1 (en) 2011-06-24 2012-12-27 Accessclosure, Inc. Transapical closure devices and methods for use
US10226417B2 (en) 2011-09-16 2019-03-12 Peter Jarrett Drug delivery systems and applications
CA2858161C (en) 2011-12-05 2020-03-10 Incept, Llc Medical organogel processes and compositions
US8721680B2 (en) 2012-03-23 2014-05-13 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
NZ737377A (en) 2012-03-23 2019-05-31 Accessclosure Inc Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US9757105B2 (en) 2012-03-23 2017-09-12 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
WO2013158781A1 (en) 2012-04-18 2013-10-24 Microvention, Inc. Embolic devices
US9532785B2 (en) 2012-05-09 2017-01-03 Access Closure, Inc. Method and devices for flow occlusion during device exchanges
EP2854735B1 (en) 2012-05-24 2019-02-13 Takeda AS Apparatus and process for providing a coiled collagen carrier
BR112014028836B1 (pt) 2012-05-24 2021-06-29 Takeda As Embalagem para armazenar um portador de colágeno em espiral com forma estável
CN104363922B (zh) 2012-06-14 2017-06-30 微仙美国有限公司 聚合物治疗组合物
WO2014031150A1 (en) * 2012-08-24 2014-02-27 St. Jude Medical Puerto Rico Llc Sealant storage, preparation, and delivery systems and related methods
AU2013331439B2 (en) 2012-10-15 2016-05-12 Microvention, Inc. Polymeric treatment compositions
US11883246B2 (en) * 2012-11-21 2024-01-30 Trustees Of Boston University Tissue markers and uses thereof
WO2014093206A1 (en) * 2012-12-13 2014-06-19 Merck Sharp & Dohme Corp. Lyophilized spherical pellets of anti-il-23 antibodies
US10842969B2 (en) 2013-10-25 2020-11-24 Mercator Medsystems, Inc. Systems and methods of treating malacia by local delivery of hydrogel to augment tissue
US10124090B2 (en) 2014-04-03 2018-11-13 Terumo Corporation Embolic devices
US10092663B2 (en) 2014-04-29 2018-10-09 Terumo Corporation Polymers
CN110433326A (zh) 2014-04-29 2019-11-12 微仙美国有限公司 包含活性剂的聚合物
RU2696139C2 (ru) 2014-05-29 2019-07-31 Эксесс Клоужер, Инк. Сополимеры хитозана и полиэтиленгликоля и использующие их способы и устройства для герметизации подвергнутых пункции кровеносных сосудов
US20160174986A1 (en) * 2014-07-02 2016-06-23 The Cleveland Clinic Foundation Anastomosis devices and methods of using same
MA40946A (fr) * 2014-11-14 2017-09-19 Access Closure Inc Appareil et procédés permettant de rendre étanche une ponction vasculaire
JP6577709B2 (ja) 2014-12-26 2019-09-18 三星電子株式会社Samsung Electronics Co.,Ltd. ゲルの製造方法、並びに音響カプラーゲル
US10179824B2 (en) 2015-01-29 2019-01-15 Gelesis Llc Method for producing hydrogels coupling high elastic modulus and absorbance
US9855317B2 (en) 2015-04-27 2018-01-02 Reflex Medical, Inc. Systems and methods for sympathetic cardiopulmonary neuromodulation
WO2016201250A1 (en) 2015-06-11 2016-12-15 Microvention, Inc. Expansile device for implantation
JP2018525078A (ja) 2015-07-22 2018-09-06 インセプト・リミテッド・ライアビリティ・カンパニーIncept,Llc 被覆された涙点プラグ
AU2016353345B2 (en) 2015-11-12 2021-12-23 University Of Virginia Patent Foundation Compositions and methods for vas-occlusive contraception and reversal thereof
USD865166S1 (en) 2015-11-13 2019-10-29 Access Closure, Inc. Sheath adapter
JP2018536484A (ja) 2015-11-25 2018-12-13 インセプト・リミテッド・ライアビリティ・カンパニーIncept,Llc 形状変化する薬物送達デバイス及び方法
US11246879B2 (en) 2016-02-09 2022-02-15 Tulai Therapeutics, Inc. Methods, agents, and devices for local neuromodulation of autonomic nerves
US11154547B2 (en) 2016-06-29 2021-10-26 Tulavi Therapeutics, Inc. Treatment of sepsis and related inflammatory conditions by local neuromodulation of the autonomic nervous system
US10368874B2 (en) 2016-08-26 2019-08-06 Microvention, Inc. Embolic compositions
KR102686652B1 (ko) * 2016-11-28 2024-07-19 롯데정밀화학 주식회사 다공성 하이드로겔 시트의 제조방법 및 그 제조방법에 의해 제조된 다공성 하이드로겔 시트
AU2018205258B2 (en) 2017-01-05 2023-08-24 Contraline, Inc. Methods for implanting and reversing stimuli-responsive implants
US10576182B2 (en) 2017-10-09 2020-03-03 Microvention, Inc. Radioactive liquid embolic
WO2019152183A1 (en) * 2018-01-30 2019-08-08 Massachusetts Institute Of Technology Fast-swelling, highly-swellable, robust hydrogel balloons
WO2020010164A1 (en) 2018-07-02 2020-01-09 Corinne Bright Methods and devices for in situ formed nerve cap
EP3880273A4 (en) 2018-11-13 2022-08-24 Contraline, Inc. BIOMATERIALS DELIVERY SYSTEMS AND METHODS
WO2021025923A2 (en) * 2019-07-29 2021-02-11 The Penn State Research Foundation Insoluble polysaccharide foams
JP7550390B2 (ja) * 2020-05-08 2024-09-13 国立大学法人 東京大学 止血用ポリマー材料キット
US20220062497A1 (en) * 2020-08-27 2022-03-03 Ethicon, Inc. Lyophilized Cured Polymeric Foam Plug
CN115804870B (zh) * 2022-12-02 2023-12-19 浙江大学 一种微创注射生物支架及其制造方法与应用

Family Cites Families (108)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4002173A (en) 1974-07-23 1977-01-11 International Paper Company Diester crosslinked polyglucan hydrogels and reticulated sponges thereof
DE3265697D1 (en) 1981-02-05 1985-10-03 Nippon Oil Co Ltd Process for preparing a hydrogel
US4734097A (en) 1981-09-25 1988-03-29 Nippon Oil Company, Ltd. Medical material of polyvinyl alcohol and process of making
JPS5930881A (ja) 1982-08-13 1984-02-18 Nippon Oil Co Ltd 保冷用ゲルの製造法
US4863456A (en) * 1986-04-30 1989-09-05 Alza Corporation Dosage form with improved delivery capability
IL82834A (en) 1987-06-09 1990-11-05 Yissum Res Dev Co Biodegradable polymeric materials based on polyether glycols,processes for the preparation thereof and surgical artiicles made therefrom
US4938763B1 (en) 1988-10-03 1995-07-04 Atrix Lab Inc Biodegradable in-situ forming implants and method of producing the same
US5550187A (en) 1988-11-21 1996-08-27 Collagen Corporation Method of preparing crosslinked biomaterial compositions for use in tissue augmentation
US5306500A (en) 1988-11-21 1994-04-26 Collagen Corporation Method of augmenting tissue with collagen-polymer conjugates
US5510418A (en) 1988-11-21 1996-04-23 Collagen Corporation Glycosaminoglycan-synthetic polymer conjugates
US5936035A (en) 1988-11-21 1999-08-10 Cohesion Technologies, Inc. Biocompatible adhesive compositions
US5643464A (en) 1988-11-21 1997-07-01 Collagen Corporation Process for preparing a sterile, dry crosslinking agent
US6517824B1 (en) 1990-05-14 2003-02-11 University Of Medicine & Denistry Of New Jersey Polymer compositions comprising antifibrotic agents, and methods of treatment, pharmaceutical compositions, and methods of preparation therefor
US5108421A (en) 1990-10-01 1992-04-28 Quinton Instrument Company Insertion assembly and method of inserting a vessel plug into the body of a patient
US5410016A (en) 1990-10-15 1995-04-25 Board Of Regents, The University Of Texas System Photopolymerizable biodegradable hydrogels as tissue contacting materials and controlled-release carriers
US5462990A (en) 1990-10-15 1995-10-31 Board Of Regents, The University Of Texas System Multifunctional organic polymers
EP0625070B1 (en) * 1991-12-20 1998-07-08 AlliedSignal Inc. Low density materials having high surface areas and articles formed therefrom for use in the recovery of metals
US6056768A (en) 1992-01-07 2000-05-02 Cates; Christopher U. Blood vessel sealing system
US6699261B1 (en) 1992-01-07 2004-03-02 Cch Associates, Inc. Blood vessel sealing system
US5573934A (en) 1992-04-20 1996-11-12 Board Of Regents, The University Of Texas System Gels for encapsulation of biological materials
GB9206504D0 (en) 1992-03-25 1992-05-06 Jevco Ltd Heteromorphic sponges as wound implants
WO1994001483A1 (en) 1992-07-02 1994-01-20 Collagen Corporation Biocompatible polymer conjugates
US5514379A (en) 1992-08-07 1996-05-07 The General Hospital Corporation Hydrogel compositions and methods of use
CA2103846A1 (en) 1992-08-13 1994-02-14 Patricia-Ann Truter Hydrogel composition and methods of making it
US5469867A (en) 1992-09-02 1995-11-28 Landec Corporation Cast-in place thermoplastic channel occluder
WO1994006460A1 (en) 1992-09-21 1994-03-31 Vitaphore Corporation Embolization plugs for blood vessels
US5409703A (en) 1993-06-24 1995-04-25 Carrington Laboratories, Inc. Dried hydrogel from hydrophilic-hygroscopic polymer
US5583114A (en) 1994-07-27 1996-12-10 Minnesota Mining And Manufacturing Company Adhesive sealant composition
US5709934A (en) 1994-11-22 1998-01-20 Tissue Engineering, Inc. Bipolymer foams having extracellular matrix particulates
US5932462A (en) 1995-01-10 1999-08-03 Shearwater Polymers, Inc. Multiarmed, monofunctional, polymer for coupling to molecules and surfaces
US6599515B1 (en) * 1995-01-16 2003-07-29 Baxter International Inc. Fibrin porous structure
US5849412A (en) 1995-02-17 1998-12-15 Medlogic Global Corporation Encapsulated materials
US6100346A (en) 1995-03-06 2000-08-08 Ethicon, Inc. Copolymers of polyoxaamides
US5618850A (en) 1995-03-09 1997-04-08 Focal, Inc. Hydroxy-acid cosmetics
US6962979B1 (en) 1995-03-14 2005-11-08 Cohesion Technologies, Inc. Crosslinkable biomaterial compositions containing hydrophobic and hydrophilic crosslinking agents
US5580923A (en) 1995-03-14 1996-12-03 Collagen Corporation Anti-adhesion films and compositions for medical use
CA2165728A1 (en) 1995-03-14 1996-09-15 Woonza M. Rhee Use of hydrophobic crosslinking agents to prepare crosslinked biomaterial compositions
US5900245A (en) 1996-03-22 1999-05-04 Focal, Inc. Compliant tissue sealants
US5612052A (en) 1995-04-13 1997-03-18 Poly-Med, Inc. Hydrogel-forming, self-solvating absorbable polyester copolymers, and methods for use thereof
US6129761A (en) 1995-06-07 2000-10-10 Reprogenesis, Inc. Injectable hydrogel compositions
DE19521951A1 (de) * 1995-06-08 1996-12-12 Lancaster Group Ag Mehrphasiges Lichtschutzmittel, Verfahren zur Herstellung und zum Auftragen auf die Haut
US5672662A (en) 1995-07-07 1997-09-30 Shearwater Polymers, Inc. Poly(ethylene glycol) and related polymers monosubstituted with propionic or butanoic acids and functional derivatives thereof for biotechnical applications
US5785679A (en) 1995-07-19 1998-07-28 Endotex Interventional Systems, Inc. Methods and apparatus for treating aneurysms and arterio-venous fistulas
JPH11510837A (ja) 1995-07-28 1999-09-21 フォーカル,インコーポレイテッド 薬物送達のための制御された放出薬剤および組織処置薬剤としての使用のためのマルチブロック生分解性ヒドロゲル
WO1997022371A1 (en) 1995-12-18 1997-06-26 Collagen Corporation Crosslinked polymer compositions and methods for their use
US6458889B1 (en) 1995-12-18 2002-10-01 Cohesion Technologies, Inc. Compositions and systems for forming crosslinked biomaterials and associated methods of preparation and use
US5752974A (en) 1995-12-18 1998-05-19 Collagen Corporation Injectable or implantable biomaterials for filling or blocking lumens and voids of the body
ATE290832T1 (de) 1996-01-05 2005-04-15 Medtronic Inc Expandierbare endoluminale prothesen
DE19612628A1 (de) 1996-03-29 1997-10-02 Hoechst Ag Verfahren zur Herstellung von porösen hydrophilen, hochquellfähigen Hydrogelen
GB9608222D0 (en) * 1996-04-20 1996-06-26 Innovative Tech Ltd Dehydrated hydrogels
US6544276B1 (en) 1996-05-20 2003-04-08 Medtronic Ave. Inc. Exchange method for emboli containment
EP0909148A1 (en) * 1996-05-31 1999-04-21 The University Of Western Ontario Expansible bioprosthetic valve stent
KR20000068252A (ko) * 1996-08-21 2000-11-25 고또오 슈운기찌 항균성 수지 조성물 및 이를 이용한 항균성 수지성형품
US6063061A (en) 1996-08-27 2000-05-16 Fusion Medical Technologies, Inc. Fragmented polymeric compositions and methods for their use
US7009034B2 (en) 1996-09-23 2006-03-07 Incept, Llc Biocompatible crosslinked polymers
WO1998012274A1 (en) 1996-09-23 1998-03-26 Chandrashekar Pathak Methods and devices for preparing protein concentrates
US6258351B1 (en) 1996-11-06 2001-07-10 Shearwater Corporation Delivery of poly(ethylene glycol)-modified molecules from degradable hydrogels
US6083522A (en) 1997-01-09 2000-07-04 Neucoll, Inc. Devices for tissue repair and methods for preparation and use thereof
US5718916A (en) 1997-02-03 1998-02-17 Scherr; George H. Alginate foam products
WO1998035631A1 (en) 1997-02-14 1998-08-20 Pathak Chandrashekar Biocompatible polymers and methods for their use
US6371975B2 (en) 1998-11-06 2002-04-16 Neomend, Inc. Compositions, systems, and methods for creating in situ, chemically cross-linked, mechanical barriers
US6271278B1 (en) 1997-05-13 2001-08-07 Purdue Research Foundation Hydrogel composites and superporous hydrogel composites having fast swelling, high mechanical strength, and superabsorbent properties
DE69821548T2 (de) * 1997-05-29 2004-12-30 Rohm And Haas Co. Vernetzte Polyaminsäure und deren Verfahren zur Herstellung
US5906997A (en) 1997-06-17 1999-05-25 Fzio Med, Inc. Bioresorbable compositions of carboxypolysaccharide polyether intermacromolecular complexes and methods for their use in reducing surgical adhesions
TR200001021T2 (tr) 1997-07-18 2000-09-21 Infimed Inc. Aktif maddelerin kontrollü salınması için biyo aşındırılabilir makromerler.
ZA987019B (en) 1997-08-06 1999-06-04 Focal Inc Hemostatic tissue sealants
US5854382A (en) 1997-08-18 1998-12-29 Meadox Medicals, Inc. Bioresorbable compositions for implantable prostheses
US5948829A (en) 1997-11-25 1999-09-07 Kimberly-Clark Worldwide, Inc. Process for preparing an absorbent foam
US6251382B1 (en) 1998-04-17 2001-06-26 Enzon, Inc. Biodegradable high molecular weight polymeric linkers and their conjugates
US6613070B2 (en) 1998-08-04 2003-09-02 Baxter International Inc. System and method for sealing vascular penetrations with hemostatic gels
US6514534B1 (en) 1998-08-14 2003-02-04 Incept Llc Methods for forming regional tissue adherent barriers and drug delivery systems
US6818018B1 (en) 1998-08-14 2004-11-16 Incept Llc In situ polymerizable hydrogels
US6179862B1 (en) 1998-08-14 2001-01-30 Incept Llc Methods and apparatus for in situ formation of hydrogels
US7790192B2 (en) 1998-08-14 2010-09-07 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US6152943A (en) 1998-08-14 2000-11-28 Incept Llc Methods and apparatus for intraluminal deposition of hydrogels
US6632457B1 (en) 1998-08-14 2003-10-14 Incept Llc Composite hydrogel drug delivery systems
US6605294B2 (en) 1998-08-14 2003-08-12 Incept Llc Methods of using in situ hydration of hydrogel articles for sealing or augmentation of tissue or vessels
US6703047B2 (en) 2001-02-02 2004-03-09 Incept Llc Dehydrated hydrogel precursor-based, tissue adherent compositions and methods of use
US6458147B1 (en) 1998-11-06 2002-10-01 Neomend, Inc. Compositions, systems, and methods for arresting or controlling bleeding or fluid leakage in body tissue
ATE324831T1 (de) 1998-08-26 2006-06-15 Neomend Inc Kit zur in-situ-erzeugung chemisch verbundener mechanischer barrieren oder abdeckstrukturen für eine punktionsstelle in einem blutgefäss
GB9819461D0 (en) 1998-09-08 1998-10-28 Univ Strathclyde Hydrogels
AUPP633798A0 (en) 1998-10-02 1998-10-29 White, Geoffrey H. Device for the occlusion of a puncture in a bodily duct
JP2002531217A (ja) * 1998-12-04 2002-09-24 チャンドラシェカー ピー. パサック, 生体適合性架橋ポリマー
JP4558213B2 (ja) 1999-04-12 2010-10-06 コーネル・リサーチ・ファンデーション・インコーポレイテッド 疎水性および親水性の成分を有する水性ゲル形成システム
US6312725B1 (en) 1999-04-16 2001-11-06 Cohesion Technologies, Inc. Rapid gelling biocompatible polymer composition
AU7084300A (en) 1999-08-27 2001-03-26 Cohesion Technologies, Inc. Compositions that form interpenetrating polymer networks for use as high strength medical sealants
SE518736C2 (sv) 1999-08-30 2002-11-12 Sca Hygiene Prod Ab Absorberande, öppencellingt skummaterial med god vätskelagringsförmåga samt absorberande struktur i ett absorberande alster
DE60101455T2 (de) 2000-03-03 2004-09-23 Cook Inc., Bloomington Endovaskuläre vorrichtung mit stent
US20020120228A1 (en) * 2000-06-08 2002-08-29 Yuh-Fun Maa Powder compositions
US6610033B1 (en) 2000-10-13 2003-08-26 Incept, Llc Dual component medicinal polymer delivery system and methods of use
US20020081565A1 (en) * 2000-10-30 2002-06-27 Sigma-Aldrich Co. Process for producing freeze dried competent cells and use thereof in cloning
ATE356870T1 (de) * 2000-12-21 2007-04-15 Merck Patent Gmbh Verfahren zur herstellung von kompetenten oder transformierten zellen
CA2438047A1 (en) 2001-02-14 2002-08-22 Hildegard M. Kramer Biocompatible fleece for hemostasis and tissue engineering
US6608117B1 (en) 2001-05-11 2003-08-19 Nanosystems Research Inc. Methods for the preparation of cellular hydrogels
US9861517B2 (en) 2001-07-26 2018-01-09 Cook Medical Technologies Llc Vessel closure member, delivery apparatus, and method of inserting the member
US6592608B2 (en) 2001-12-07 2003-07-15 Biopsy Sciences, Llc Bioabsorbable sealant
AU2003234159A1 (en) 2002-04-22 2003-11-03 Purdue Research Foundation Hydrogels having enhanced elasticity and mechanical strength properties
US7303575B2 (en) * 2002-08-01 2007-12-04 Lumen Biomedical, Inc. Embolism protection devices
US20040147016A1 (en) 2002-09-30 2004-07-29 Rowley Jonathan A. Programmable scaffold and methods for making and using the same
US20040063206A1 (en) 2002-09-30 2004-04-01 Rowley Jon A. Programmable scaffold and method for making and using the same
US6863924B2 (en) 2002-12-23 2005-03-08 Kimberly-Clark Worldwide, Inc. Method of making an absorbent composite
US8545830B2 (en) 2003-03-24 2013-10-01 University Of Tennessee Research Foundation Multi-functional polymeric materials and their uses
US6872516B2 (en) * 2003-04-16 2005-03-29 Advanced Breath Diagnostics, Llc Methods of producing carbon-13 labeled biomass
US9289195B2 (en) 2003-06-04 2016-03-22 Access Closure, Inc. Auto-retraction apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US7331979B2 (en) 2003-06-04 2008-02-19 Access Closure, Inc. Apparatus and methods for sealing a vascular puncture
US8348971B2 (en) 2004-08-27 2013-01-08 Accessclosure, Inc. Apparatus and methods for facilitating hemostasis within a vascular puncture
US8728493B2 (en) * 2005-06-17 2014-05-20 Nektar Therapeutics Polymer based compositions and conjugates of non-steroidal anti-inflammatory drugs
US20080220047A1 (en) 2007-03-05 2008-09-11 Sawhney Amarpreet S Low-swelling biocompatible hydrogels

Also Published As

Publication number Publication date
JP2015061606A (ja) 2015-04-02
CA2645164A1 (en) 2007-10-18
AU2007235117A1 (en) 2007-10-18
AU2007235117B2 (en) 2012-11-29
EP2010236A1 (en) 2009-01-07
EP2010236B1 (en) 2018-08-29
JP2009531152A (ja) 2009-09-03
US20070231366A1 (en) 2007-10-04
US10940231B2 (en) 2021-03-09
JP5918334B2 (ja) 2016-05-18
US20140341836A1 (en) 2014-11-20
WO2007117855A1 (en) 2007-10-18
CA2645164C (en) 2015-11-24
JP5689233B2 (ja) 2015-03-25
US8795709B2 (en) 2014-08-05
US20210268141A1 (en) 2021-09-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2700161T3 (es) Métodos para obtener hidrogeles liofilizados superabsorbentes para aplicaciones médicas
ES2662195T3 (es) Composiciones hemoactivas y procedimientos para su fabricación y uso
ES2900548T3 (es) Películas a base de plasma y procedimientos para hacer y usar las mismas
US9623143B2 (en) Foam-based medical treatments
ES2698410T3 (es) Aparatos y procedimientos para sellar una punción vascular
JP5864429B2 (ja) 架橋ヒドロゲル組成物、ヒドロゲル組成物の形成方法、及びキット
US6605294B2 (en) Methods of using in situ hydration of hydrogel articles for sealing or augmentation of tissue or vessels
US8357378B2 (en) Fragmented polymeric compositions and methods for their use
AU719534B2 (en) Fragmented polymeric hydrogels for adhesion prevention and their preparation
ES2236314T3 (es) Maatriz autoadhesiva hidratable para uso terapeutico topico.
US8603511B2 (en) Fragmented polymeric compositions and methods for their use
JP2013509963A (ja) 断片化ヒドロゲル
WO2017021575A1 (es) Uso de espumas poliméricas autoexpansibles para el relleno de cavidades pleurales persistentes