ES2427689A1 - Materiales para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaria (alternariol y alternariol monometil éter) - Google Patents

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Abstract

Materiales para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaria (alternariol y alternariol monometil éter). El alternariol y el aternariol monometil éter son dos de las toxinas producidas en mayor grado por hongos de la familia Alternaria. Se encuentran con frecuencia en alimentos y su consumo continuado puede tener efectos negativos en la salud humana por lo que es importante el desarrollo de métodos de detección eficaz que evite su introducción en la cadena alimentaria. En esta invención se describe un método para la preparación de materiales poliméricos orgánicos que actúan como adsorbentes selectivos de alternariol y alternariol monometil éter. Los polímeros emplean como plantillas moléculas de estructura análoga a las micotoxinas, sencillas de preparar, robustas y baratas. Se pueden utilizar en la determinación de micotoxinas de Alternariol presentes en aguas, alimentos, hortalizas, frutos y derivados (zumos, mostos, vinos...) y otras matrices donde se puedan encontrar presentes.

Description

Materiales para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaría (alternariol y alternariol monometil éter)
Resumen
Materiales para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaría (aiternariol y alternariol monometil éter)
El alternariol y el aternariol monometil éter son dos de las toxinas producidas en mayor grado por hongos de la familia Alternaría. Se encuentran con frecuencia en alimentos y su consumo continuado puede tener efectos negativos en la salud humana por lo que es importante el desarrollo de métodos de detección eficaz que evite su introducción en la cadena alimentaria. En esta invención se describe un método para la preparación de materiales poliméricos orgánicos que actúan como adsorbentes selectivos de alternariol y alternariol monometil éter. Los polímeros emplean como plantillas moléculas de estructura análoga a las micotoxinas, sencillas de preparar, robustas y baratas. Se pueden utilizar en la determinación de micotoxinas de Alternariol presentes en aguas, alimentos, hortalizas, frutos y derivados (zumos, mostos, vinos ... ) y otras matrices donde se puedan encontrar presentes.
Objeto y campo de la invención
La invención se refiere a materiales capaces de reconocer y unir selectivamente micotoxinas y su método de preparación. De manera más concreta, la invención se refiere a polímeros de impronta molecular para reconocer de forma selectiva las toxinas alternariol y alternariol monometil éter así como su método de preparación empleando moléculas análogas como plantillas.
Los polímeros objeto de la presente invención son útiles para la determinación de alternariol y alternariol monometil éter en aguas, hortalizas, frutas, alimentos, derivados y otras matrices donde se puedan encontrar presentes dichas toxinas.
Estado de la técnica
La existencia de hongos en alimentos mal almacenados (frutas, cereales, etc.) puede dar lugar a la presencia de toxinas que pasan inadvertidas en muchos alimentos. El consumo continuado de estos alimentos implica un riesgo para la salud humana, por lo que es importante el desarrollo de métodos de detección y cuantificación de las mismas.
Las especies de hongos de la familia Alternaría producen un elevado número de metabolitos secundarios. Siete toxinas principales, que pertenecen a tres clases estructurales diferentes, son conocidas como posibles contaminantes de alimentos con un riesgo toxicológico potencial. Éstas son: alternariol, alternariol monometil éter, altenueno, alterotoxinas 1, 11 y 111 y ácido tenuazónico. El alternariol (AOH) y el alternariol monometil éter (AME) son las micotoxinas más relevantes producidas por hongos Alternaría. Los hongos Alternaría a su vez, son los que más comúnmente se pueden encontrar en alimentos como granos de cereales, frutas y vegetales. Los tomates, por ejemplo, son uno de los productos más afectados por la contaminación con AOH y AME, pudiéndose encontrar niveles de AOH de 25 J.tg/kg y de AME de 5 J.!glkg en pastas de tomate concentradas (S. Asam, K. Konitzer, M. Rychlik, Mycotox. Res. 2011, 27, 23-28).
Los procedimientos de extracción de AOH y AME en métodos analíticos incluyen, por ejemplo, la extracción en fase sólida (SPE). Los métodos de determinación de dichas especies más empleados son la cromatografía en capa fina (TLC}, cromatografía de gases (GC) y, sobre todo, la cromatografía líquida (LC) con detección UV, fluorescente o electroquímica (V. Fernández Pinto, en Mycotoxins in Fruits and Vegetables, R. Barkai-Golan, N. Paster, Academic Press, 2008, capítulo 13, p. 271-278)
Actualmente, en la mayoría de casos, la determinación de AOH y AME se realiza mediante métodos cromatográficos que requieren de instrumentación compleja y cara y personal especializado para su manejo.
Un método alternativo para su determinación es el empleo de inmunoensayos, recientemente descrito en la literatura (A A Burkin y G. P. Kononenko, Appl. Biochem. Micro+, 2011, 47, 72-76; Y. Ackermann, V. Curtui, R. Dietrich, M. Gross,
H. Latif, E. Martlbauer, E. Usleber, J. Agríe. Food Chem. 2011, 59, 6360-6368), si bien requiere el empleo de sistemas biológicos de reconocimiento que son más difíciles y más caros de producir, menos estables y menos robustos que los polímeros sintéticos.
En la presente invención se describen soportes sólidos y materiales poliméricos en distintos formatos para la coordinación selectiva de AOH y AME como moléculas diana empleando polímeros de impronta molecular (también denominados MIPs, del término en inglés molecular/y imprinted polymers) como elementos de
1 O reconocimiento sintéticos.
En el documento WO 2011/031562 se describe la preparación de polímeros de impronta molecular para secuestrar o adsorber micotoxinas como compuestos diana. De forma más concreta, se describe la síntesis de moléculas plantilla análogas a
15 ocratoxina A y esporidesmina.
Descripción de la invención
20 Los polímeros de impronta molecular son materiales que mimetizan en un cierto grado las propiedades de moléculas biológicas como los anticuerpos o las enzimas en cuanto a que poseen cavidades que son capaces de reconocer y enlazar selectivamente un cierto compuesto o familia de compuestos de estructura similar. Por esta razón se les conoce también como "plasticuerpos", con la ventaja de que
25 estos materiales se pueden obtener de forma más sencilla y, además, son más económicos y robustos, ya que poseen mucha mayor estabilidad físico-química que los receptores biológicos.
Los MIPs se preparan en presencia de la molécula que se quiere reconocer, en este
30 caso, AOH o AME, de manera que durante la etapa de polimerización, los monómeros de partida se organizan alrededor de dicha molécula mediante interacciones reversibles. Una vez ha transcurrido la polimerización, el material se lava minuciosamente con el disolvente apropiado para la extracción de la molécula plantilla, quedando cavidades en el material que son complementarias en tamaño,
35 forma y propiedades químicas al analito. Este material con cavidades selectivas se puede utilizar entonces para la extracción (o preconcentración) de la molécula de interés presente en una muestra compleja. Desarrollando el procedimiento adecuado, el soporte polimérico puede utilizarse también para su aplicación en sensores.
Hay ocasiones en las que no es conveniente utilizar el propio analito a determinar como molécula plantilla en la síntesis de MIPs, ya que puede tratarse de una sustancia tóxica, peligrosa o muy cara (normalmente se requieren cantidades del orden de 1 O mg a 1 g para preparar una serie completa de polímeros de ensayo y muchísimo más si se trata de una producción industrial). En estos casos, se recurre al empleo de moléculas análogas o sucedáneas, que imitan en el mayor grado posible las propiedades estructurales y químicas de la molécula diana, pero que son menos peligrosas o más sencillas de preparar.
En este caso, tanto el AOH como AME son compuestos tóxicos y de un elevado precio. Por otro lado, la síntesis completa del AOH no es un procedimiento conveniente, ya que se trata de una compleja síntesis en 7 pasos (K. Koch, J. Podlech, E. Pfeiffer, M. Metzler, J. Org. Chem. 2005, 70, 3275-3276).
El empleo de moléculas sucedáneas tiene una ventaja adicional. En ocasiones la plantilla utilizada durante la síntesis de los MIPs no puede ser extraída o lavada del material completamente, y el residuo que permanece unido al polímero puede ir liberándose gradualmente durante su uso o aplicación analítica posterior. Esto supone una grave interferencia en las medidas analíticas. Al utilizar moléculas distintas a AME ó AOH, se puede evitar el problema, ya que presentarán distintos tiempos de retención en cromatografía, o propiedades ópticas diferenciadas. Por ejemplo, en esta invención se preparan y utilizan moléculas plantilla análogas a AOH y AME que no tienen una estructura rígida (52-AME y 52-AOH en la Figura 2 o sus sales resultantes del tratamiento de la molécula plantilla con uno o más equivalentes de base capaz de reaccionar con grupos hidroxilo fenólicos como, por ejemplo, una sal de amonio cuaternario) y, por tanto, no son fluorescentes, con lo que se elimina la fluorescencia residual en el caso de un polímero en el que no se hubiese extraído cuantitativamente la micotoxina tras la preparación del mismo.
En la presente invención se describe la preparación de polímeros de impronta molecular selectivos para el reconocimiento o extracción de AOH y AME empleando moléculas sucedáneas para la impronta de los polímeros en lugar de AOH o AME. Estas moléculas sucedáneas son muy sencillas de preparar a escala cuantitativa de gramos (Figura 2). Las plantillas se preparan siguiendo procedimientos similares a los descritos en la bibliografía (H. lto, A lguchi, T. Hatano, J. Agríe. Food Chem. 2008, 56, 393-400) con algún tipo de mejora. Por ejemplo, en la preparación de los compuestos S1-AOHa-d se procede a la desmetilación de los sustituyentes -OCH3 mediante el empleo de un tiol y AICI3. Se ha descrito en la bibliografía que la mezcla etanotioi-AICis es un agente desmetilante muy activo (M. Node, K. Nishide, K. Fuji, E. Fujita, J. Org. Chem. 1980, 45, 4275-4277). Sin embargo, en lugar de etanotiol (altamente volátil y de olor muy intenso y desagradable), en este caso se emplea dodecanotiol, de olor apenas perceptible y que sigue ofreciendo buenos rendimientos de desmetilación (M. Node, K. Kumar, K. Nishide, S. Ohsugi, T. Miyamoto, Tetrahedron Lett. 2001, 42, 9207-9210).
En esta invención, se describen y emplean también moléculas plantilla sucedáneas de AOH y AME no rígidas. Las estructuras 52-AME y S2-AOH mostradas en la Figura 3, se proponen como plantillas no fluorescentes para minimizar la fluorescencia residual de fondo que proporcionarían moléculas sucedáneas no lavadas del MIP en la etapa de remoción minuciosa de la plantilla utilizada para su preparación.
Estos receptores artificiales de AOH y AME se pueden usar en la determinación de dichos compuestos en aguas, hortalizas, frutas y derivados (zumos, mostos, vinos ... ) y otras matrices complejas donde se puedan encontrar presentes dichas toxinas.
Como monómeros funcionales de carácter ácido para el reconocimiento de grupos básicos (ver figura 4) se pueden emplear, por ejemplo, ácido metacrílico (MAA), ácido acrílico {AA), ácido trifluorometacrílico (TFM) o el ácido p-vinilbenzoico (PVB), entre otros, o monómeros funcionales de caracter básico para el reconocimiento de grupos ácidos como, por ejemplo, la 2-vinilpiridina (2-VP), 4-vinilpiridina (4-VPY), N,N-dietil-2-aminoetil metacrilato (DAEM), 2-aminoetil metacrilato (AEM), 2-aminoetil metacrilamida (EAMA), etc. También es posible utilizar monómeros de carácter neutro para el reconocimiento molecular tales como el 2-hidroxietilmetacrilato (HEMA), la acrilamida (AM), metacrilamida (MAM) y monómeros basados en ureas 1 ,3-disustituidas (ver figura 4), entre otros.
En la presente invención los monómeros entrecruzantes incluyen, preferentemente, 5
etilenglicol dimetacrilato (EDMA), divinilbenceno (DVB), diisopropenilbenceno (DIB), trimetilolpropanotrimetacrilato (TRIM), pentaeritritoltriacrilato (PETRA), etilenbisacrilamida (EBA), piperazinilbisacrilamida (PBA) y metilenbisacrilamida (MBA).
1O En la presente invención se utilizan preferentemente como iniciadores compuestos azo N,N'-disustituidos tales como azo-N,N'-bisisobutironitrilo (AIBN), azo-N,N'bisdimetilvaleronitrilo (ABDV), 2,2'-azobis-(2,4-dimetil-4-methoxivaleronitrilo) (V70) o cualquier otro azo iniciador cuya descomposición tenga lugar a la temperatura de polimerización deseada (comercializados, por ejemplo, por Wako Pure Chemicallnd.
15 Ud., Japón; o iniciadores redox como por ejemplo el persulfato amónico, con o sin aceleradores añadidos (como por ejemplo la tetrametiletilendiamina o TEMED).
Ejemplos de disolventes utilizados en la reacción de polimerización (también denominados porógenos frecuentemente en la bibliografía) son el agua, metano!,
20 etanol, tetrahidrofurano (THF) acetona, dimetilformamida (DMF), acetonitrilo (MeCN), 1,1,1-tricloroetano, cloroformo, diclorometano, tolueno, dimetilsulfóxido (DMSO), isopropanol y cualquier mezcla de estos u otros disolventes.
Los MIPs pueden prepararse en distintos formatos tales como partículas porosas,
25 nanofibras, nanotubos, monolitos, nanopartículas y sus derivados tales como nanopartículas núcleo-recubrimiento ("core-shelf') con posibles propiedades ópticas
o magnéticas, con núcleos luminiscentes o incorporando sobre ellas moléculas especializadas que permitan una fácil detección (e.g. sondas moleculares luminiscentes). Estos polímeros además pueden ser modulados para ofrecer 30 mejores propiedades físicas o químicas como pueden ser la adsorción o la porosidad. Además, los polímeros también pueden ser sintetizados en forma de partículas mediante técnicas que incluyan polimerizaciones líquido-líquido, o sistemas de dos fases como polimerización por suspensión, emulsión o variantes de estas (e.g. polimerización por miniemulsión), o de un solo líquido como
35 polimerización por dispersión o precipitación.
Otra forma de polimerización utilizada preferentemente es la polimerización radicálica controlada (CRP). Esta bien conocida técnica se distingue en sí misma de la polimerización convencional por el tiempo de vida de la propagación de los radicales. Según este método, la polimerización puede llevarse a cabo durante varias horas permitiendo la generación de polímeros de pesos moleculares bien definidos, con baja polidispersidad y composición y funcionalidad controladas. Esto permite a los MIPs poseer mayor afinidad, capacidad y mayor asociación/disociación con el AOH y AME.
Bajo otra consideración las partículas se pueden producir mediante la técnica de injerto obteniendo una película sobre un soporte. El injerto puede ser llevado a cabo bajo las técnicas de "anclado a" ("grafting to") o "crecido desde" ("grafting from") mejorando normalmente ésta última el reconocimiento molecular y las propiedades cinéticas de los materiales (US Patent No. 6,759,488).
Bajo otra consideración, la síntesis de nanopartículas puede llevarse a cabo en el intervalo normal de 1 O nm -500 nm. El proceso de obtención de éstas puede realizarse vía polimerización por precipitación o mini-emulsión (V. Mittal, Miniemulsion Po/ymerization Technology, Wiley, Hoboken, New Jersey, 201 O), donde se obtienen partículas uniformes por alta dilución con un disolvente en un solo paso. Sistemas acuosos o no acuosos pueden ser utilizados para ambos métodos. Además, pueden obtenerse partículas esféricas en el intervalo 500 nm-75 ¡.Jm por precipitación, emulsión o llevando a cabo la polimerización en el interior o exterior de partículas que sirvan como molde, e.g. uso de partículas esféricas de gel de sílice de tamaño definido que se rellenan de con el polímero MI P.
Finalmente las partículas de MIP también pueden ser post-funcionalizadas con el propósito de hacerlas más biocompatibles. De este modo pueden ser modificadas para proporcionar una máxima compatibilidad en sistemas biológicos acuosos, recubriendo la partícula con una membrana hidrofílica.
Alternativamente las partículas de MIPs pueden ser utilizadas en métodos similares a los ya bien establecidos como inmunoensayos, donde el anticuerpo puede ser sustituido por un MIP. Aparte de sobre partículas magnéticas, los MIPs pueden ser
sintetizados con "sondas" o "marcadores" que faciliten la detección. Estas sondas son como las que pueden utilizarse en inmunoensayos, por ejemplo enzimas,
isótopos radioactivos o complejos de rutenio luminiscentes u otras moléculas fluorescentes.
Descripción de las figuras
En la figura 1 se representan las estructuras químicas del alternariol (AOH) y alternariol monometil éter (AME).
La figura 2 muestra la síntesis de las moléculas análogas S1-AMEa-d y S1-AOHa-d.
La figura 3 muestra la síntesis de las moléculas análogas S2-AME y S2-AOH.
En la figura 4 se representan las estructuras de los monómeros funcionales y entrecruzantes.
La figura 5 muestra los cromatogramas de extractos de zumo de manzana a un nivel de concentración de 0,05 mg/mL antes (línea continua) y después (línea discontinua) del proceso de extracción en fase sólida utilizando un polímero de impronta molecular (MIP) para el reconocimiento de alternariol. El pico de alternariol (AOH) está indicado en la figura.
Modo de realización de la invención
La realización de la presente invención se ilustra mediante los siguientes ejemplos que no son limitativos de su alcance.
Ejemplo 1
Síntesis de 3-hidroxi-8,9-dimetoxi-SH-dibenzo[b,d]piran-6-ona (51-AMEa).

En un matraz de fondo redondo de dos bocas se disuelve ácido 2-bromo-4,5dimetoxibenzoico comercial (0,95 g, 3,6 mmol) y resorcinol comercial (0,93 g, 8,4 mmol) en 4,25 mL de hidróxido sódico acuoso (0,339 g, 8,4 mmol) y se calienta a 80
oc durante 30 m in. Se añade una disolución de CuS04 al 5% (mlv) (1 ,45 mL). Después de 1O min se forma un precipitado. La mezcla de reacción se neutraliza añadiendo 0,9 mL de ácido clorhídrico concentrado y el sólido formado se filtra a vacío. Después de lavar con 5 mL de agua y 3 mL de metano!, el sólido se suspende en 1O mL de metano! y se calienta a 50 oc durante 1 O m in. Se deja enfriar a temperatura ambiente y el sólido se recupera por filtración y lavado con éter dietílico. Rendimiento: 71%.
1H NMR (300 MHz, DMSO-d6) ó: 3.92 (s, 3H, -OCH3), 4.05 (s, 3H, -OCH3), 6.77 (d, J =2.81 Hz, 1 H, Ar-H), 6.88 (dd, J1=8.69 Hz, J2=2.33 Hz, 1 H, Ar-H), 7.57 (s, 1 H, Ar-H), 7.72 (s, 1H, Ar-H), 8.24 (d, J =8.24Hz, 1H, Ar-H), 10.58 (s, 1H, -OH) ppm; FT-IR
)
(MeOH): 3265 (y OH), 2979, 2834, 1691, 1626, 1520, 1464, 1371, 1130, 1085, 811, 682 cm-1; MS-ESI (negativo), miz; calculado para C1sH110s, [M-Hr: 271.1; encontrado: 270.7.
Ejemplo 2
Síntesis de 3,8,9-trihdroxi-SH-dibenzo[b,d]piran-6-ona (S1-AOH-a).
Se pesa AICI3 comercial (0, 786 g, 5,8 m mol) en un matraz de fondo redondo de dos bocas y se suspende en una disolución de dodecanotiol (0,5 mL) y clorobenceno (8,5 mL) mantenidos en un baño de hielo bajo argón. La suspensión se agita y se añade el compuesto S1-AMEa (0,337 g, 1,2 mmol). Después de media hora se retira el baño de hielo y la mezcla se mantiene a temperatura ambiente durante otra media hora, tras lo que se calienta a 100 oc. La reacción se sigue por cromatografía en capa fina (sílica, CH2CI2-MeOH 20:1 vlv). Después de 5 h, la mezcla se vierte sobre 15 mL de ácido clorhídrico acuoso al 3% (plv) en un baño de hielo y el precipitado que se forma se filtra con un embudo Büchner y se lava con agua y unos pocos mL de metano!. Rendimiento: 72%.
1H NMR: (300 MHz, DMSO-d6) ó: 6.72 (d, J =2.34 Hz, 1 H, Ar-H), 6.82 (dd, J1 =8.64 Hz, J2 =2.37 Hz, 1 H, Ar-H), 7.47 (s, 1 H, Ar-H), 7.53 (s, 1 H, Ar-H), 7.88 (d, J =8.82 Hz, 1H, Ar-H), 10.13 (s, 3H, -OH) ppm; FT-IR (MeOH): 3363 (y OH), 2924, 1762, 1618, 1459, 1120, 1015, 811, 729 cm-\ MS-ESI (negativo), miz; calculado para C13H70s, [M-Hr: 243.0; encontrado: 242.7.
Ejemplo 3
Síntesis de 3-hidroxi-9-metoxi-6H-dibenzo[b,d]piran-6-ona (81-AME-b).
En un matraz de fondo redondo de dos bocas se disuelve ácido 2-bromo-4,5dimetoxibenzoico comercial (2,00 g, 8,6 mmol) y resorcinol comercial {2,00 g, 18 mmol) en 9,1 mL de una disolución acuosa de hidróxido sódico (0,727 g, 18,1 mmol) y la disolución se calienta a 80 oc durante 30 min, tras lo cuál se añade una disolución de CuS04 al 5% (m/v) (3.6 mL). Después de 10 min se forma un precipitado. La mezcla de reacción se neutraliza añadiendo 1.9 mL de ácido clorhídrico concentrado y el sólido formado se filtra a vacío. Después de lavar con 5 mL de agua y 3 mL de metano!, el sólido se suspende en 1 O mL de metanol y se calienta a 50 oc durante 1 O m in. Se deja enfriar a temperatura ambiente y el sólido se recupera por filtración y lavado con éter dietílico. Rendimiento: 59%.
1H NMR: (300 MHz, DMSO-d6) ó: 3.93 {s, 3H,-OCH3), 6.79 (d, J =2.25 Hz, 1 H, Ar-H),
6.87 (dd, J1 = 8.66 Hz, J2 = 2.33Hz,1H, Ar-H) ,7.54 (dd, J1 = 8.87 Hz, J2 = 2.78 Hz, 1 H, Ar-H), 7.64 {d, J = 2.73 Hz, 1 H, Ar-H), 8.14 (d, J = 8.73 Hz, 1 H, Ar-H), 8.26 {d, J =
8.91 Hz, 1H, Ar-H), 10.27 {s, 1H, -OH) ppm; FT-IR (MeOH): 3635 (y OH), 2839, 1
1767, 1625, 1246, 1126, 811, 729 cm·; M8-IE (negativo), m/z; calculado para C14Hs04, [M-Hr: 241.1; encontrado: 240.7.
Ejemplo 4
Síntesis de 3,9-dihdroxi-6H-dibenzo[b,d]piran-6-ona (81-AOH-b).
Se pesa AICI3 (0, 700 g, 5,2 m mol) en un matraz de fondo redondo de dos bocas y se suspende en una disolución de dodecanotiol (0,5 mL) en clorobenceno (8,5 mL) en un baño de hielo bajo argón. La suspensión se agita y se añade el compuesto 81AMEb (0,300 g, 1 ,2 m mol). Después de media hora se retira el baño de hielo, se mantiene a temperatura ambiente durante otra media hora y después se calienta a 100 °C. La reacción se sigue por cromatografía en capa fina (sílica, CH2Cb-MeOH

20:1 vlv). Después de 5 h, la mezcla se vierte sobre 15 mL de ácido clorhídrico acuoso al 3% (plv) en un baño de hielo y el precipitado que se forma se filtra con un embudo Büchner y se lava con agua y unos pocos mL de metano!. Rendimiento: 70%.
1H NMR: (300 MHz, DMSO-d6) ó: 6.75 {d, J =2.37 Hz, 1 H, Ar-H), 6.83 (dd, J1 =8.67 Hz, J2= 2.37 Hz, 1H, Ar-H), 7.34 (dd, J1= 8.7 Hz, J2= 2.69 Hz, 1H, Ar-H), 7.53 {d, J =2.64, 1 H, Ar-H), 8.05 (d, J =8.76 Hz, 1 H, Ar-H), 8.14 {d, J =8.85 Hz, 1 H, Ar-H),
10.21 (s, 2H, -OH) ppm; FT-IR (MeOH): 3743 (y OH), 3320, 3292, 2854, 1773, 1272, 1126, 1080, 729 cm-1; MS-ESI (negativo), miz; calculado para C13H704, [M-Hr: 227.0; encontrado: 226.7.
Los sucedáneos no fluorescentes de la Serie 2 se preparan siguiendo un procedimiento similar al descrito en la bibliografía mediante condensación del correspondiente fenol y ácido benzoico en presencia de anhídrido trifluroacético (S. Kumar, K. Muller, Eur. J. Med. Chem. 2000, 35, 405-411; b) S. Kumar, K. Muller, Eur.
J. Med. Chem. 1999, 34, 1035-1042)
Ejemplo 5
Síntesis de un polímero de impronta molecular usando 81-AOH-a como molécula plantilla.

La síntesis del polímero, se lleva a cabo tal y como se describe a continuación: la molécula plantilla 81-AOH-a (28 mg, O, 125 mmmol), el clorhidrato de 2-aminoetil metacrilamida comercial (EAMA) (670 mg, 4 mmol/mg), hidróxido de tetrabutilamonio comercial (1 038 mg, 4 m mol), EDMA comercial (3,8 mL, 20 m mol) y el iniciador radicálico ABDV comercial (44 mg) se disuelven en dimetilsulfóxido (DMSO) (5,6 mL). Después de la disolución, la mezcla se traspasa a un tubo de vidrio sellado, se disminuye la temperatura a 0°C y se purga bajo una corriente de nitrógeno durante 1O m in. Después del proceso de purga, se sella el tubo de vidrio y se inicia la polimerización térmicamente en un una estufa a 60°C. El procedimiento de polimerización dura 48 h. Tras este proceso, el tubo se rompe y el polímero obtenido en forma de monolito se lava secuencialmente para eliminar minuciosamente la molécula molde según los siguientes pasos: metano! (1 00 mL), metanoI/ácido trifluoroacético (99: 1 v/v) y finalmente metano! (1 00 mL). El polímero se tritura y tamiza hasta conseguir unas partículas de tamaño comprendido entre 25 y 50 IJm,
libres de partículas finas, y éstas son utilizadas en el procedimiento de extracción en fase sólida. Un polímero control (denominado frecuentemente "NIP", del término inglés "non-imprinted polymer") se prepara siguiendo el mismo procedimiento, pero en ausencia de la molécula molde.
Ejemplo 6
Síntesis de un polímero de impronta molecular usando S1-AME-a como molécula plantilla.
La síntesis del polímero, se lleva a cabo tal y como se describe a continuación: la molécula plantilla S1-AME-a (33 mg, O, 125 mmol), el clorhidrato de 2-aminoetil metacrilamida (EAMA) comercial (670 mg, 4 mmol), hidróxido de tetrabutilamonio comercial (1 038 mg, 4 m mol), EDMA comercial (3,8 ml, 20 m mol) y el iniciador radicálico ABDV comercial (44 mg) se disuelven en dimetilsulfóxido (DMSO) (5,6 ml). Después de la disolución, la mezcla se traspasa a un tubo de vidrio sellado a 0°C y se purga bajo una corriente de nitrógeno durante 1 Omin. Después del proceso de purga, se sella el tubo de vidrio y la se inicia la polimerización térmicamente en un una estufa a 60°C. El procedimiento de polimerización dura 48 h. Tras este proceso el tubo se rompe y el polímero obtenido en forma de monolito se lava secuencialmente para eliminar la molécula molde según los siguientes pasos: metano! (1 00 ml), metanollácido trifluoroacético (99: 1 v/v) y finalmente metano! (1 00 ml). El polímero se tritura y tamiza hasta conseguir unas partículas de tamaño comprendido entre 25-50 ¡Jm, libres de partículas finas, y éstas son utilizadas en procedimiento de extracción en fase sólida. Un polímero control (NIP) se prepara siguiendo el mismo procedimiento pero en ausencia de la molécula molde.
Ejemplo 7
Uso de polímeros de impronta molecular para la determinación de alternariol en zumos.
Uno de los usos de la presente invención se ilustra mediante este ejemplo siendo no limitativo su alcance. Su uso como sorbentes o fases estacionarias en la extracción en fase sólida de los analitos diana es una de las aplicaciones más características de los polímeros de impronta molecular. En el presente ejemplo se utiliza el polímero descrito en el ejemplo 5 y se empaquetan 25 mg de polímero de impronta molecular (partículas de 25-50 ¡.¡m) en cartuchos de extracción en fase sólida de 1 ml. Tras un acondicionamiento con metano! (1 O mL), y utilizando 1 O mL de una disolución acuosa tamponada de ácido (4-(2-hidroxietil)-1-piperazinetanosulfónico comercial de concentración O, 1 M y pH 7.5), se cargan los cartuchos con 1 O mL de la muestra objeto de análisis previamente preparada de la siguiente manera:
Se toman 80 mL de zumo de manzana previamente contaminados con un nivel de concentración de 0,05 mg L"\ se mezclan con 20 mL de acetonitrilo y se filtran a través de un filtro de nylon de 0,45 ¡.tm de diámetro de poro (el cual se ha comprobado previamente que es inerte a la retención de alternariol). A continuación, se disuelven en ellos 2,5 g de ácido (4-(2-hidroxietil)-1-piperazinetanosulfónico y se ajusta el pH hasta obtener un valor de 7,5.
Una vez percolada la muestra sobre los cartuchos, se procede al lavado de los mismos pasando a través de ellos 1 mL de una mezcla acetonitrilo/agua 30:70 vlv, para eluir todos aquellos compuestos que se hayan quedado retenidos en el polímero de una forma no selectiva. Finalmente se realiza la elución selectiva del alternariol percolando 1 mL de una mezcla de metanol/ácido trifluoroacético 95:5 (v/v).
Este extracto se analiza utilizando un cromatógrafo de líquidos (HPLC) HP-1100 de Agilent Technologies (Palo Alto, CA, USA) equipado con una bomba cuaternaria, un desgasificador en flujo, automuestreador, inyector automático y un termostatizador para columna. La detección se realiza con un detector de fluorescencia. La separación del alternariol se lleva a cabo mediante una columna de HPLC AQUA™ C18 (recubrimiento polar) (250 x 4.6 mm, 5 ¡.¡m) protegida con una precolumna RP18
(4.0 x 3.0 mm, 5 ¡.¡m), ambos de Phenomenex (Torrance, CA). Las condiciones cromatográficas son las siguientes: volumen de inyección 8 ¡.¡L, caudal 1 mL min-1, fase móvil 65:35 (v/v) metanol/agua y se usaron las longitudes de onda "Aexc =258 nm y Aem =440 nm para llevar a cabo la detección.
Como puede apreciarse en la figura 5, la funcionalidad y la aplicabilidad del MIP es excelente, tanto para la preconcentración de alternariol, como para el proceso de limpieza de la muestra de zumo de manzana.

Claims (13)

  1. Reivindicaciones
    1. Polímeros de impronta molecular para el reconocimiento selectivo de micotoxinas 5
    de Alternaría preparados en presencia de una plantilla molecular donde dicha plantilla es una molécula de estructura análoga a la micotoxina de Alternaría.
  2. 2. Polímeros de impronta molecular para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Atlernaria preparados en presencia de una plantilla molecular, según la
    1O reivindicación 1, donde la micotoxina de Alternaría es alternariol (AOH) y/o alternariol monometil éter (AME).
  3. 3. Polímeros de impronta molecular para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Atlernaria preparados en presencia de una plantilla molecular, según
    15 reivindicaciones 1 y 2, donde la molécula plantilla se selecciona del grupo: 3-hidroxi-8,9-dimetoxi-6H-benzo[c]cromen-6-ona (S1-AMEa) 3-hidroxi-8-metoxi-6H-benzo[c]cromen-6-ona (S 1-AMEb) 3-hidroxi-8,9-dimetoxi-1-metii-6H-benzo[c]cromen-6-ona (S1-AMEc) 3-hidroxi-8-metoxi-1-metii-6H-benzo[c]cromen-6-ona (S1-AMEd)
    20 3,8,9-trihdroxi-6H-dibenzo[b,d]piran-6-ona (S1-AOHa) 3,9-dihdroxi-6H-dibenzo[b,d]piran-6-ona (S1-AOHb) 3, 8, 9-trihidroxi-1-metii-6H-benzo[ c]cromen-6-ona (S1-AOHc) 3,8-dihidroxi-1-metii-6H-benzo[c]cromen-6-ona (S 1-AOHd) 2,3,4-trimetoxibenzoato de 3-metoxifenilo (S2-AMEa)
    25 2,3,4-trimetoxibenzoato de 3-metoxi-5-metilfenilo (S2-AMEb) benzoato de 3-metoxifenilo (S2-AMEc) benzoato de 3-metoxi-5-metilfenilo (S2-AMEd) 2,3,4-trihidroxibenzoato de 3-hidroxifenilo (S2-A0Ha) 2,3,4-trihidroxibenzoato de 3-hidroxi-5-metilfenilo (S2-AOHb)
    30 benzoato de 3-hidroxifenilo (S2-AOHc) benzoato de 3-hidroxi-5-metilfenilo (S2-AOHd)
    o cualquiera de sus sales resultantes del tratamiento de la molécula plantilla con uno o más equivalentes de base capaz de reaccionar con grupos hidroxilo fenólicos.
  4. 4.
    Polímeros de impronta molecular para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaría preparados en presencia de una plantilla molecular, según reivindicación 3, donde la sal es una sal de amonio cuaternario.
  5. 5.
    Polímeros de impronta molecular para el reconocimiento selectivo de micotoxinas de Alternaría preparados en presencia de una plantilla molecular, según reivindicaciones anteriores, preparados con monómeros acrílicos sencillos, monómeros acrílicos di-o tri-funcionales entrecruzantes y/o monómeros acrílicos mono-o poli-funcionales portadores de grupos funcionales químicos que
    1 O muestren afinidad por las moléculas plantilla.
  6. 6. Polímeros de impronta molecular, según reivindicación 5, cuyo entrecruzante es etilenglicoldimetacrilato (EDMA).
    15 7. Polímeros de impronta molecular, según las reivindicación 5 y 6, cuyo(s) monómero(s) funcional( es) contiene(n) uno o más grupos amino.
  7. 8. Polímeros de impronta molecular, según las reivindicaciones 5 y 6, cuyo(s)
    monómero(s) funcional( es) contiene(n) uno o más grupos ácido carboxílico. 20
  8. 9. Polímeros de impronta molecular, según las reivindicaciones 5 y 6, cuyo(s) monómero(s) funcional( es) contiene(n) uno o más grupos derivados . 1 ,3disustituidos de la urea.
    25 1O. Polímeros de impronta molecular, según las reivindicaciones anteriores, preparados en forma de monolito o de bloque.
  9. 11. Polímeros de impronta molecular según las reivindicaciones 2-9 que se hayan
    obtenido a través de cualquier técnica de injerto, recubrimiento de partículas 30
    esféricas o nanopartículas.
  10. 12. Uso de los polímeros de impronta molecular reivindicados para la preconcentración de AOH, AME o cualquiera de sus derivados en cualquier matriz natural (e.g. carne, pescado, frutas, hortalizas, vegetales o aguas) o en
    cualquiera de sus derivados (e.g. zumos, vinos).
  11. 13. Uso de de los polímeros de impronta molecular reivindicados para la limpieza de una muestra de AOH, AME o cualquiera de sus derivados en cualquier matriz natural (e.g. carne, pescado, frutas, hortalizas, vegetales o aguas) o en
    5 cualquiera de sus derivados (e.g. zumos, vinos).
  12. 14. Uso de de los polímeros de impronta molecular reivindicados como sensor.
  13. 15. Uso de de los polímeros de impronta molecular reivindicados como elemento de 10 captura o material de detección en cualquier tipo de ensayo.
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