ES2362915B1

ES2362915B1 - Composiciones y métodos para modular la actividad de p300.

Info

Publication number: ES2362915B1
Application number: ES201030004A
Authority: ES
Inventors: Yolanda Revilla Novella; Aitor Gonzalez Granja
Original assignee: Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Current assignee: Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Priority date: 2010-01-05
Filing date: 2010-01-05
Publication date: 2012-04-23
Anticipated expiration: 2030-01-05
Also published as: ES2362915A1

Abstract

La invención se relaciona con variantes del dominio N-terminal de activación de transcripción de p300 que presentan mutaciones en los sitios de fosforilación dando lugar a mutantes no fosforilables y que carecen de actividad transcripcional o de mutantes que mimetizan restos residuos fosforilados dando lugar a variantes constitutivamente activas de p300. Las variantes de p300 se pueden utilizar para el tratamiento de enfermedades tales como cáncer, enfermedades autoinmunes, infecciones, etc.

Description

Composiciones y métodos para modular la actividad de p300.

Campo técnico de la invención

La invención se relaciona con composiciones útiles para el tratamiento de enfermedades asociadas con una activación o una inhibición indeseadas de factores de transcripción que requieren de p300 como co-activador. En particular, las composiciones de la invención son útiles para el tratamiento de enfermedades tales como cáncer, enfermedades autoinmunes, infecciones, etc.

Antecedentes de la invención

Las proteínas p300 y CBP son importantes reguladores de la transcripción inducible en células eucariotas. Estas proteínas fueron identiﬁcadas originalmente como proteínas que interaccionaban con el factor de transcripción CREM y con la proteína adenoviral E1A. Los co-activadores actúan de dos formas distintas. Por un lado, actúan como un puente molecular conectando los factores de transcripción con la maquinaria transcripcional, incluyendo TBP, TFIIIB, TFIID y la ARN polimerasa II. Por otro lado, CBP y p300 son capaces de acevilar histonas en la cromatina del promotor diana gracias a la actividad histona acetiltransferasa (HAT) presente en su región C-terminal, lo que provoca un cambio conformacional en la cromatina adquiriendo una estructura abiertas. CBP/p300 interaccionan con y aumentan la transactivación de una variedad de factores de transcripción, incluyendo p53, factores de la familia E2F, CREB, NF-AT, NF-κB y AP-1, coordinando la transcripción de los genes dianas. Por tanto, CBP y p300 están implicados en la regulación de múltiples procesos celulares, incluyendo proliferación, diferenciación, supresión tumoral, transformación maligna y varias alteraciones inmunológicas.

Por tanto, resulta de interés el disponer de agentes que permiten modular la actividad de p300, tanto mediante su estimulación como mediante su inhibición. Inhibidores de la actividad transcripcional de p300 basados en la inhibición de la actividad acetil transferasa han sido descritos en el estado de la técnica. Así, WO03027279 describe una proteína que se une a la región rica en cisteína/histidina de p300 inhibiendo su actividad histona acetiltransferasa, Zheng et al.

(J. Am. Chem. Soc. 2005 Dec 14; 127(49): 17182-3) han descrito un inhibidor de la actividad histona acetiltransferasa de p300 formado por un análogo de coenzima A acoplado mediante un puente disulfuro a un resto de oligoarginina que promueve el transporte a través de membranas; Balasubramanyam, K. et al (J. Biol. Chem. 279:51163-71) han descrito la capacidad de la curcumina de inhibir la actividad histona acetiltransferasa de p300; Stimson et al (Mol. Cancer Ther., 2005, 10:1521-32) han descrito compuestos isotiazolónicos que inhiben la actividad histona acetiltransferasa de p300 y la solicitud de patente japonesa JP2000139464 describe oligonucleótidos antisentido dirigidos contra p300 y CBP y su uso para el tratamiento de la leucemia.

CBP/p300 contienen dos dominios que presentan actividad transcripcional, uno de ellos localizado en el extremo N-terminal y el otro en el extremo C-terminal, que pueden actuar independientemente e interaccionar simultáneamente con la maquinaria transaccional y/o con diferentes factores de transcripción para generar la actividad transcripcional mediada por co-activadores. La transactivación mediante por CBP y p300 se regula a través de múltiples vías de señalización que resultan en distintos tipos de modiﬁcaciones post-traduccionales de los dominios de transactivación, incluyendo sumoilación, fosforilación, metilación y auto-acetilación. Entre ellas, la forsforilación parece ser una de las modiﬁcaciones de mayor importancia dado que la actividad HAT de CBP y p300 se ve aumentada por la quinasas MAP p42 y o44, CaMK IV, PKA, Akt y IKK-alpha. Por otro lado, la actividad transcripcional de CBP/p300 está controlada negativamente por el complejo ciclina e/cdk-2 o por la fosforilación por la proteína quinasa delta (PKC-δ).

Por tanto, es posible regular la actividad de p300 mediante la modiﬁcación del estado de fosforilación. Sin embargo, a pesar de que se conoce la relación entre fosforilación y actividad, los sitios exactos de fosforilación y las quinasas responsables son desconocidos. Yuan et al (Biochim Biophys Acta. 2002, 1592:205-11) han descrito la capacidad de la proteína quinasa delta de fosforilar la serina en posición 89 de p300 provocando la inhibición de la actividad histona acetiltransferasa.

Por tanto, existe una necesidad en la de técnica de agentes capaces de modiﬁcar los patrones ﬁsiológicos de fosforilación de la proteína p300/CBP y que permitan regular a voluntad la actividad de p300.

Compendio de la invención

En un primer aspecto, la invención se relaciona con un polipéptido que comprende la secuencia SEQ ID NO: 1 (amino ácidos 192 a 703 de la proteína p300 humana) o una variante de la misma que muestra al menos un 80% de identidad de secuencia y que carece de actividad trans-activadora de la transcripción.

En otro aspecto la invención se relaciona con un polipéptido que comprende una variante de la secuencia SEQ ID NO: 1 (amino ácidos 192 a 703 de la proteína p300 humana) cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada.

En aspectos adicionales, la invención se relaciona con construcciones génicas que comprenden los polinucleótidos de la invención, con vectores que comprenden los polinucleótido de la invención o las construcciones génicas de la invención, con células que comprende los polipéptidos de la invención, los polinucleótidos de la invención, los vectores de la invención o las construcciones génicas de la invención y con animales transgénicos no humano que comprende, integrado en su genoma, los polinucleótidos de la invención.

En otro aspecto, la invención se relaciona con un polipéptido de la invención, con un polinucleótido de la invención, con una construcción génica de la invención, con un vector de la invención para su uso en medicina.

En un primer aspecto, la invención se relaciona con un polipéptido que comprende la secuencia SEQ ID NO: 1 o una variante de la misma que muestra al menos un 80% de identidad de secuencia y que carece de actividad trans-activadora de la transcripción para el tratamiento de enfermedades causados por una activación indeseada de las proteínas p300, NF-κB, NFAT y/o c-jun.

En otro aspecto la invención se relaciona con un polipéptido que comprende una variante de la secuencia SEQ ID NO: 1 cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada para el tratamiento de enfermedades causados por una inhibición indeseada de las proteínas p300, NF-κB, NFAT y/o c-jun

Breve descripción de las ﬁguras

Figura 1. La proteína viral A238L inhibe la interacción entre el extremo N-terminal TAD de p300 y PKC. Células Jurkat-pcDNA y Jurkat-A238L se transfectaron con diferentes mutantes GAL4-p300. A, GAL4-p300 FL; B, GAL4p300 1-1301; C, GAL4-p300 192-703; y D, GAL4-p300 1239-2414, como se ha descrito en Materiales y Métodos. Veinticuatro horas después de la transfección, las células se incubaron en ausencia o presencia de PMA/Ion durante 4 h, y los extractos nucleares se inmunoprecipitaron con 4 μg de anticuerpo policlonal de conejo contra PKC, o con IgG como control negativo. Los inmunoprecipitados se analizaron por Western Blot con el mismo anticuerpo (αPKC) para determinar los niveles de proteínas en el precipitado, y con anti-GAL4 (αGAL4) para detectar los niveles de PKC asociada con la correspondiente forma mutante de p300. El análisis densitométrico muestra la relación entre PKC coinmunoprecipitada y p300 presente en el precipitado, de tres experimentos independientes (mean ± S.D). E, La inmunoprecipitación de PKC se analizó por Western blot con un anticuerpo anti-SV5 para detectar los niveles de A238L-SV5 asociada a PKC. El análisis densitométrico muestra la relación entre A238L coinmunoprecipitada y PKC presente en el precipitado, de tres experimentos independientes (mean ± S.D). F, En paralelo, la PKC inmunoprecipitada se usó en un ensayo kinasa in vitro, utilizando como sustrato MBP puriﬁcado. Las proteínas se separaron mediante un gel de poliacrilamida SDS-PAGE al 12% y se reveló mediante autoradiografía. El análisis densitométrico muestra la relación entre MBP [32P] fosforilado y PKC inmunoprecipitada, de tres experimentos independientes (mean ± S.D).

Figura 2. La fosforilación de la Serina 384 por PKC-θ, representa un paso esencial en la activación transcripcional de p300. A, Células Jurkat wild-type se cotransfectaron de forma transitoria con el plásmido reportero GAL4-luc, y con las siguientes construcciones de GAL4-p300: GAL4-p300 (FL) wild type (WT) y Serina 384 mutante Alanina (S384A), y GAL4-p300 (192-703) wild type (WT) y Serina 384 mutante Alanina (S384A), como se ha descrito en Materiales y Métodos. Veinticuatro horas después de la transfección las células se incubaron en ausencia (control)

o presencia de PMA/Ion, los extractos celulares se procesaron y se midió la actividad luciferasa. Los extractos se normalizaron a la actividad luciferasa Renilla. Se muestran los valores de RLU/μg de proteína de tres experimentos independientes (mean ± S.D.) B, Células Jurkat wild-type se transfectaron transitoriamente con los plásmidos de expresión GAL4-p300 (192-703) wild type (WT) y Serina 384 mutante Alanina (S384A), como se ha descrito en Materiales y Métodos. Las proteínas GAL4-p300 fueron inmunoprecipitadas con un anticuerpo especíﬁco para GAL4. C, PKC-θ se inmunoprecipitó a partir de extractos celulares de Jurkat wild-type. Los inmunoprecipitados GAL4p300 (192-703) wild type (WT) y Serina 384 mutante Alanina (S384A) se usaron como sustrato para PKC-θ en ensayos kinasa in vitro. Las proteínas se separaron en geles de poliacrilamida SDS-PAGE al 8% y se revelaron por autoradiografía. El análisis densitométrico muestra la relación entre p300-[32P] y PKC-θ inmunoprecipitada, de tres experimentos independientes (mean ± S.D). D, Efecto de la sobreexpresión de PKC-θ en la activación transcripcional de p300. Células Jurkat-pcDNA (barras blancas) o Jurkat-A238L (barras grises) se transfectaron transitoriamente con el plásmido vacío pEFneo y los plásmidos de expresión pEF-PKC-θ wild type (wt) o el mutante constitutivamente activo PKC-θ (pEF-PKC-θ A/E) (1 μg/106 cells), y con las construcciones GAL4-p300 full length (FL) o amino terminal (192-703), junio con el plásmido reportero GAL4-luc (250 ng/106 cells) como se describe en Materiales y Métodos. Después de la transfección las células se incubaron en ausencia (-) o presencia (+) de PMA/Ion, y se midió la actividad luciferasa. Los extractos se normalizaron a la actividad luciferasa Renilla. Se muestran los valores de RLU/μg de proteína de tres experimentos independientes (mean ± S.D.) E, Células Jurkat-pcDNA y Jurkat-A238L se transfectaron de forma transitoria con GAL4-p300 (192-703) wild type (WT), como se describe en Materiales y Métodos. Veinticuatro horas después de la transfección las células se incubaron en ausencia (-) o presencia (+) de PMA/Ion durante 2 h, los extractos celulares se inmunoprecipitaron con 4 μg de anticuerpo policlonal de conejo contra PKC-θ, o con IgG como control negativo. Los inmunoprecipitados se analizaron por Western blot con el mismo anticuerpo (αPKC-θ) para determinar los niveles de kinasa en el precipitado, y con anti GAL4 (αGAL4) para detectar los niveles de PKC asociada con GAL4-p300 (192-703). El análisis densitométrico muestra la relación entre PKC coinmunoprecipitada y p300 presente en el precipitado, de tres experimentos independientes (mean ± S.D).

Figura 3. Células Jurkat wild-type se transfectaron de forma transitoria con los plásmidos de expresión GAL4p300 full length (FL) y amino terminal (192-703), wild type (WT) y Serina 384 mutante Alanina (S384A), como se describe en Materiales y Métodos. Los extractos nucleares de 107 células Jurkat transfectadas y tratadas (+) o no (-) con PMA/Ion durante 4 h fueron inmunoprecipitados con 4 μg de anticuerpo policlonal de conejo contra GAL4, o con IgG como control negativo. Los inmunoprecipitados se analizaron por Western blot con el mismo anticuerpo GAL4 para determinar los niveles de estas proteínas en el precipitado, y con un anticuerpo anti lisinas acetiladas (αAc.Lys) para detectar p300 acetiladas, como se describe en Materiales y Métodos. El análisis densitométrico muestra las veces de inducción de las proteínas GAL4-p300 estimuladas respecto las condiciones basales, de tres experimentos independientes (mean ± S.D).

Descripción detallada de la invención

Los autores de la presente invención han puesto de maniﬁesto que, sorprendentemente, la serina 384 del dominio CH1 de la proteína p300 es esencial para la actividad transcripcional de p300 y que dicha serina es objeto de fosforilación por la isoforma theta de PKC. Adicionalmente, los autores de la invención han demostrado que la región de p300 en la que se encuentra la serina 384 interacciona con la proteína A238L del virus de la peste porcina africana (VPPA) y que dicha interacción bloquea la capacidad de p300 de interaccionar con PKCθ, siendo este bloqueo el responsable de la capacidad de la proteína A238L de inhibir la actividad transcripcional de p300. Estos hallazgos abren la puerta al diseño de variantes de p300 que carecen de actividad activadora de la transcripción así como de variantes de p300 que se encuentran constitutivamente activadas.

Por “p300” se entiende, en el contexto de la presente invención, la proteína humana p300 cuyo número de acceso en UniProt viene dado por EP300 HUMAN o Q09472 cuya secuencia viene dada por la secuencia indicada en SEQ ID NO: 2.

Por “variante de p300” se entiende, en el contexto de la presente invención, una proteína que comprende la secuencia mínima de p300 capaz de promover la transcripción de un gen cuando se encuentra en la proximidad de su región promotora.

Variantes inactivas de p300 de la invención

Así, en un primer aspecto, la invención se relaciona con un polipéptido que comprende la secuencia SEQ ID NO: 1 (amino ácidos 192 a 703 de la proteína p300 humana) o una variante de la misma que muestra al menos un 80% de identidad de secuencia y que carece de actividad trans-activadora de la transcripción.

Sin querer estar vinculado a ninguna teoría, se piensa que la actividad bloqueadora de la activación transcripcional mediada por las variantes de la invención radica en la capacidad de estas variantes de secuestrar las dianas downstream de ésta proteína, es decir, la proteína quinasa theta impidiendo que ésta active moléculas de p300 endógenas o los factores de transcripción con los que habitualmente interacciona p300 (NF-κB, c-jun, NF-AT) impidiendo la unión de éstos a la proteína p300 endógena nativa.

Un ensayo adecuado para determinar la actividad trans-activador a de la transcripción de un polipéptido que comprende la secuencia SEQ ID NO: 1 se ha descrito en los ejemplos y consiste en poner en contacto una proteína de fusión formada por el dominio de unión a ADN de la proteína GAL4 y la variante cuya actividad activadora de la transcripción se desea ensayar con una célula que comprende un gen reporter bajo el control de un sitio de unión para el dominio de unión de ADN de la proteína GAL4. De esta forma, la proteína de fusión sólo provocará expresión del gen reportero si la variante que se encuentra unida al sitio de unión de ADN de GAL4 es capaz de activar la transcripción (véase ejemplo 2).

En una forma de realización, la inactivación de p300 puede llevarse a cabo mediante modiﬁcación del amino ácido en posición 193 en la proteína de SEQ ID NO: 1 (correspondiente al amino ácido en posición 384 en la proteína p300 de cadena completa) por un amino ácido que no es fosforilable ni un análogo estructural de fosfoamino ácido. Preferiblemente, el amino ácido en posición 193 en la secuencia de SEQ ID NO: 1 es Ala.

Variantes constitutivamente activadas de p300 de la invención

En otro aspecto, la invención se relaciona con un polipéptido que comprende la secuencia SEQ ID NO: 1 que se encuentran constitutivamente activadas. Por variantes “constitutivamente activadas” se entiende, en el contexto de la presente invención, todas aquellas variantes de p300 que son capaces de promover la transcripción de genes cuando la variante se localiza en proximidad en la región reguladora de la expresión de dicho gen sin requerir para ello la fosforilación de la serina en posición 384.

Sin querer estar vinculado a ninguna teoría, se piensa que la actividad activadora de la transcripcional mediada por las variantes de la invención radica en la capacidad de estas variantes de mimetizar p300 fosforilada en posición 384, eliminando por tanto la necesidad de fosforilar con PKCtheta y activando de forma directa y constitutiva la transcripción mediada por los factores de transcripción con los que habitualmente interacciona p300 (NF-κB, c-jun, NF-AT).

Un ensayo adecuado para determinar la actividad transcripcional de la variante de la invención se ha descrito anteriormente para las variantes inactivas y se basa en la capacidad de dicha variante de activar la transcripción de un gen reportero cuando dicha variante se encuentra asociada a la región reguladora de la expresión de dicho en mediante el uso del dominio de unión de ADN de un factor de transcripción cualquiera (por ejemplo GAL4) (véase ejemplo 2).

En una forma preferida de realización, la variante comprende la secuencia identiﬁcada en SEQ ID NO: 1 en la que la serina en posición 193 ha sido reemplazada por un amino ácido que es estructuralmente similar a fosfoserina. En otro aspecto, la variante constitutivamente activa de p300 contiene un resto de aspártico en posición 193.

Polinucleótidos, construcciones génicas, vectores y células de la invención

En otro aspecto, la invención se relaciona con un polinucleótido que codiﬁca un polipéptido inactivo de acuerdo a la invención o un polipéptido constitutivamente activo de acuerdo a la invención.

En otro aspecto, la invención se relaciona con una construcción génica que comprende el polinucleótido la invención. Preferiblemente, las construcciones génicas contienen el polinucleótido de la invención junto con regiones adecuadas para regular la expresión de dicho polinucleótido incluyendo promotores, terminadores de la transcripción, regiones no traducidas 5’ y 3’, señales de poliadenilación y similares.

En principio, cualquier promotor puede ser utilizado a los vectores de clonaje en el contexto de la presente invención siempre que dicho promotores sean compatibles con las células en las que se desea expresar el polinucleótido. Así, promotores adecuados para la realización de la presente invención incluyen, sin estar necesariamente limitados, promotores constitutivos tales como los derivados de los genomas de virus eucariotas tales como el virus del polioma, adenovirus, SV40, CMV, virus del sarcoma aviar, virus de la hepatitis B, el promotor del gen de la metalotioneina, el promotor del gen de la timidina kinasa del virus del herpes simplex, regiones LTR de los retrovirus, el promotor del gen de la inmunoglobuina, el promotor del gen de la actina, el promotor del gen EF-1alpha así como promotores inducibles en los que la expresión de la proteína depende de la adición de una molécula o de una señal exógena, tales como el sistema tetraciclina, el sistema NFκB/luz UV, el sistema Cre/Lox y el promotor de los genes de choque térmico, los promotores regulables de la ARN polimerasa II descritos en WO/2006/135436 así como promotores especíﬁcos de tejido tales como:

-: promotores especíﬁcos de tejido gástrico tales como el promotor de la subunidad beta de la ATPasa H/K, el promotor K19, el promotor de metalotioneina. el promotor TFF1, el promotor TFF2 y el promotor FOXa/HNF2 gamma,

-: promotores especíﬁcos de páncreas tales como el promotor de la elastasa, el promoter Pdx-1, el promotor de la insulina o el promotor de la fosfoglicerato quinasa,

-: promotores especíﬁcos de pulmón tales como el promotor de la proteína secretora de células Clara o el promotor del surfactante C,

-: promotores especíﬁcos de tejido mamario tal como el promotor del virus del tumor mamario de ratón o el promotor de la proteína acídica del suero,

-: promotores especíﬁcos de piel como el promotor de queratina o el promotor K14,

-: promotores especíﬁcos de esófago como el promotor de la proteína L2 de EBV,

-: promotores especíﬁcos de hígado como el promotor de la proteína urinaria mayoritaria o el promotor de albúmina,

-: promotores especíﬁcos de colon como el promotor de la villina o el promotor de FABP-TS4,

-: promotores especíﬁcos de próstata como el promotor de la criptidina 2, el promotor del antígeno especíﬁco de próstata (PSA), el promotor de C(3)1 de la proteína secretora de próstata de 94 amino ácidos (PSP94) o el promotor de la probasina,

-: promotores especíﬁcos de riñón tales como el promoter de la uromodulina, el promoter de la proteína Tamm-Horsfall o el promotor de la gamma-glutamil transpeptidasa de tipo 1,

-: promotores especíﬁcos de vejiga tales como el promoter de la uroplaquina o el promoter de la urohingina,

-: promotores especíﬁcos de útero como el promoter de la uteroglobina.

En otro aspecto, la invención se relaciona con vectores que comprenden el polinucleótido de la invención o las construcciones génicas de la invención. Así, es posible el uso de vectores derivados de vectores de expresión en procariotas tales como pUC18, pUC19, Bluescript y sus derivados, mp18, mp19, pBR322, pMB9, CoIEl, pCR1, RP4, fagos y vectores “shuttle” tales como pSA3 y pAT28, vectores de expresión en levaduras tales como vectores del tipo de plásmidos de 2 micras, plásmidos de integración, vectores YEP, plásmidos centroméricos y similares, vectores de expresión en células de insectos tales como los vectores de la serie pAC y de la serie pVL, vectores de expresión en plantas tales como vectores de la serie pIBI, pEarleyGate, pAVA, pCAMBIA, pGSA, pGWB, pMDC, pMY, pORE y similares y vectores de expresión en células eucariotas superiores bien basados en vectores virales (adenovirus, virus asociados a los adenovirus así como retrovirus y, en particular, lentivirus) así como vectores no virales tales como pcDNA3, pHCMV/Zeo, pCR3.1, pEF1/His, pIND/GS, pRc/HCMV2, pSV40/Zeo2, pTRACER-HCMV, pUB6/V5-His, pVAX1, pZeoSV2, pCI, pSVL y pKSV-10, pBPV-1, pML2d y pTDT1.

En otro aspecto, la invención se relaciona con células que comprenden en su interior al menos un polinucleótido de la invención, una construcción génica de la invención o un vector de acuerdo con la invención. Los huéspedes pueden contener una o más copias de los vectores mencionados anteriormente son un objeto adicional de la presente invención. Preferiblemente, los huéspedes son células huésped. Las células huésped incluyen, pero no están limitadas a, células procedentes de mamífero, planta, insecto, hongos o bacteria. Las células bacterianas incluyen, pero no están limitadas a, células de bacterias Gram positivas tal como varias especies de los géneros Bacillus, Steptomyces y Staphylococcus

o células de bacterias Gram negativas tal como varias especies de los géneros Escherichia y Pseudomonas. En el grupo de las células de hongos se utilizan preferiblemente células de levadura. Se puede alcanzar la expresión en levadura utilizando cepas de levadura tal como entre otras Pichia pastoris, Saccharomyces cerevisiae y Hansenula polymorpha. Además, se pueden utilizar células de insecto tal como células de Drosophila y Sf9 como células huésped. Además de eso, las células huésped pueden ser células vegetales tal como entre otras células de plantas de cultivo tal como plantas de silvicultura, o células de plantas que proporcionan alimento y materias primas tal como plantas de cereales, o plantas medicinales, o células de plantas ornamentales, o células de ﬂores de bulbos de cultivo. Las plantas o las células vegetales transformadas (transgénicas) se producen mediante métodos conocidos, por ejemplo, transferencia de genes mediada por Agrobacterium, transformación de discos de hojas, transformación de protoplastos mediante transferencia de ADN mediada por polietilenglicol, electroporación, sonicación, microinyección o transferencia de genes balística. Adicionalmente, un sistema de expresión adecuado puede ser un sistema de baculovirus. Los sistemas de expresión que utilizan células de mamífero tal como células de ovario de hámster chino (CHO), células COS, células BHK, células HeLa, células CHO, células Vero, células MDCK, células 293, células 3T3, células de melanoma de Bowes y similares son preferidas en la presente invención. Las células de mamífero proporcionan proteínas expresadas con las modiﬁcaciones postraduccionales que son más similares a las moléculas naturales procedentes de mamíferos. Puesto que la presente invención se ocupa de moléculas que puede que se tengan que administrar a seres humanos, un sistema de expresión completamente humano sería particularmente preferido. Por lo tanto, aún más preferiblemente, las células huésped son células humanas, tal como células HeLa, 911, AT1080, A549, 293 o PER.C6TM (PER.C6 es una marca registrada que pertenece a Crucell Holland B.V.) y células derivadas de las mismas mediante modiﬁcación genética.

Usos médicos de las formas inactivas de p300

Las variantes inactivas de p300 de acuerdo a la invención pueden ser utilizadas para el tratamiento de todos aquellos trastornos causados por una activación indeseada de p300 o de todos aquellos factores de transcripción que actúan aguas debajo de p300, tales como NF-κB, NF-AT y c-jun.

Así, en otro aspecto, la invención se relaciona con una variante inactiva de p300, un polinucleótido que codiﬁca dicha variante, una construcción génica que comprende dicho polinucléotido o un vector que comprende dicho polinucleótido o dicha construcción para uso en medicina.

En una forma preferida de realización, el polipéptido, polinucleótido, construcción génica o vector se utilizan en el tratamiento de trastornos causados por una activación indeseada de las proteínas p300, NF-κB, NFAT y/o cjun. Preferiblemente, los polipéptidos se usan para el tratamiento de trastornos en los que se produce una activación indeseada de NF-κB. Preferiblemente, dicha enfermedad asociada a una activación indeseada de NF-κB se selecciona del grupo de una enfermedad inﬂamatoria y una enfermedad autoinmune.

Trastornos causados por una activación indeseada de p300, NF-κB, NF-AT y/o c-jun

Puesto que p300 actúa como mediador de la actividad pro-tumorigénica de distintos factores de transcripción y de algunas oncoproteínas virales, la activación indeseada de p300 puede resultar en el desarrollo de trastornos neoplásicos. Por tanto, las variantes inactivas de p300 de acuerdo a la invención pueden ser usadas para el tratamiento de trastornos neoplásicos debidos a una hiperactividad de ciertos oncogenes o asociados a infecciones por virus que expresan oncoproteínas.

En otro aspecto, los compuestos de la invención permiten el tratamiento de trastornos causados por una activación indeseada de NF-κB. Estos trastornos incluyen, entre otros, enfermedades causadas por la producción excesiva de mediadores inﬂamatorios y por la propagación viral, en particular, enfermedades causadas por la hiperproliferación de queratinocitos y/o de células T, en particular enfermedades inﬂamatorias y enfermedades autoinmunes tales como enfermedad de Addison, alopecia areata, espondilitis anquilosante, anemia hemolítica, anemia perniciosa, aftas, estomatitis aftosa, artritis, arterioesclerosis, osteoartritis, artritis reumatoide, aspermiogénesis, asma bronquial, asma autoinmune, hemolisis autoinmune, enfermedad de Bechet, enfermedad de Boeck, enfermedad inﬂamatoria intestinal, linfoma de Burkitt, enfermedad de Crohn, corioiditis, colitis ulcerosa, enfermedad celiaca, crioglobulinemia, dermatitis herpetiformis, dermatomiositis, diabetes dependiente de insulina, diabetes juvenil, enfermedades demielinantes autoinmunes, contractura de Dupuytren, encefalomielitis, encefalkomieltis alérgica, endoftalmia, enteiritis alérgica, síndrome enteropatía autoimnue, eritema nodoso leproso, parálisis facial idiomática, síndrome de fatiga crónica, ﬁebre reumática, glomerulonefritos, síndrome de Goodpasture, síndrome de Graves, enfermedad de Harnman-Rich, enfermedad de Hashimoto, pérdida repentina de audición, hepatitis crónica, enfermedad de Hodgkin, hemoglobinuria paroximástica, hipogonadismo, ileitis regionales, iritis, leucopenia, lupus eritematoso diseminado, lupus eritematoso sistémico, lupus eritematoso cutáneo, linfogranuloma, mononucleosis infecciosa, miastenia gravis, mielitis traversa, mixedema idiomático primario, nefrosis, oftalmia simpática, orquitis granulomatosa, pancretitis, pénﬁgo vulgar, poliarteritis nodosa, poliartritis crónica, polimiositis, poliradicultis aguda, psoriasis, purpura, pioderma gangrenoso, síndrome de Reiter, sarcoidosis, esclerosis atáxica, esclerosis sistémica progresiva, escleritis, esclerodermia, esclerosis múltiple, esclerosis diseminada, infertilidad debida a anticuerpos anti-espertazoides, trombocitopenia, timoma, uveitis anterior aguda, vitíligo, enfermedades asociadas al SIDA, SCID y virus de Epstein Barr tales como el síndrome de Sjorgren, el linfoma de células B asociado a SIDA o a virus de Epstein-Barr, enfermedades parasitarias tales como leishmaniosis y estados inmuno suprimidos tales como infecciones virales tras transplantes, SIDA, cáncer, hepatitis activa crónica, el rechazo de transplante a consecuencia del transplante de un tejido u órgano y la enfermedad de injerto contra huésped que puede resultar del transplante de médula ósea o de células troncales.

En otro aspecto, los compuestos de la invención permiten el tratamiento de trastornos causados por una activación indeseada de NF-AT. NF-AT es un factor de transcripción que aparece en distintas células del sistema inmune (células T, células B, células linfocítica natural o células NK y monocitos), por lo que los trastornos incluyen, aquellos en los que se produce una hiperactivación indeseada o actividad inapropiada del sistema inmune e incluyen, sin limitación, enfermedades tales como enfermedades inmunes agudas y crónicas y enfermedades autoinmunes. Ejemplos de este tipo de enfermedades han sido citados anteriormente con respecto a la activación indeseada de NF-κB.

En otro aspecto, los compuestos de la invención permiten el tratamiento de trastornos causados por una activación indeseada de c-jun. El oncogén celular c-jun es una fosfoproteína nuclear de 39 kDa que forma parte del factor de transcripción heterodimérico AP-1 junto con la proto-oncoproteína c-fos. El complejo AP-1 es capaz de activar la transcripción de múltiples genes que se encuentran bajo el control de sitios de unión de AP-1 que conduce en muchos casos a la transformación celularyala carcinogénesis. Por tanto, los compuestos de la invención son útiles para el tratamiento de trastornos o enfermedades neoplásica se selecciona del grupo que consiste en leucemias (por ejemplo, leucemia mieloide aguda, leucemia mieloide crónica, leucemia mielomonocítica crónica, leucemia promielocítica aguda, síndrome mielodisplásico, leucemia mielomonocítica juvenil, etc.), metástasis, neoplasias, tumores (por ejemplo, neuroma acústico, adenocarcinoma, cáncer adrenocortical, carcinoma anal, angiosarcoma, astrocitoma, carcinoma de células basales, carcinoma de conductos biliares, carcinoma de vesícula, cáncer de cerebro, cáncer de mama, carcinoma broncogénico, cáncer del peritoneo, cáncer cervical, condrosarcoma, cordoma, coriocarcinoma, carcinoma de colon, cáncer colorrectal, craniofaringioma, cistadenocarcinoma, carcinoma embrionario, carcinoma endometrial, endoteliosarcoma, epindimoma, carcinoma epitelial, cáncer de esófago, tumor de Ewing, ﬁbrosarcoma, cáncer gastrointestinal, cáncer del aparato genitourinario, glioblastomas, glioma, cáncer de cabeza, hemangioblastoma, hepatoma, enfermedad de Hodgkin, cáncer de riñón, liomiosarcoma, liposarcoma, cáncer de hígado, carcinoma de pulmón, linfangioendoteliosarcoma, linfangio sarcoma, linfomas, hipercalcemia maligna, insulanoma pancreático maligno, carcinoma medular, meduloblastoma, melanoma, meningioma, mesotelioma, cáncer de cuello, neuroblastoma, linfoma no de Hodgkin, carcinoma de no células pequeñas de pulmón, oligodendroglioma, sarcoma osteogénico, cáncer de ovario, cáncer de páncreas, adenocarcinomas papilares, carcinoma papilar, carcinoma de pene, pinealoma, lesiones de la piel premalignas, tumores primarios del cerebro, macroglobulinemia primaria, trombocitosis primaria, cáncer de próstata, cáncer de recto, carcinoma de células renales, retinoblastoma, rabdomiosarcoma, carcinoma de las glándulas salivares, sarcoma, carcinoma de las glándulas sebáceas, seminoma, carcinoma de células pequeñas de pulmón, carcinoma de células escamosas, cáncer de estómago, sinovioma, carcinoma de glándula sudorípara, tumor testicular, cáncer de tiroides, carcinoma de útero, cáncer de vulva, y tumor de Wilms), o cualquier enfermedad o trastorno caracterizado por un crecimiento celular incontrolado.

Usos médicos de las formas constitutivamente activas de p300

Las variantes constitutivamente activas de p300 de acuerdo a la invención pueden ser utilizadas para el tratamiento de todos aquellos trastornos causados por una activación indeseada de p300 o de todos aquellos factores de transcripción que actúan aguas debajo de p300, tales como NF-κB, NF-AT y c-jun.

Así, en otro aspecto, la invención se relaciona con una variante constitutivamente activa de p300, un polinucleótido que codiﬁca dicha variante, una construcción génica que comprende dicho polinucleótido o un vector que comprende dicho polinucleótido o dicha construcción para uso en medicina.

En una forma preferida de realización, el polipéptido, polinucleótido, construcción génica o vector se utilizan en el tratamiento de trastornos causados por una inhibición indeseada de las proteínas p300, NF-κB, NF-AT y/o cjun. Preferiblemente, los polipéptidos se usan para el tratamiento de trastornos en los que se produce una inhibición indeseada de NF-κB, NF-AT o c-jun. Preferiblemente, los compuestos de la invención son útiles para el tratamiento de condiciones de inmunodeﬁciencia innatas o adquiridas, enfermedades causadas por una apoptosis prematura durante el desarrollo, para potenciar la respuesta inmune del organismo frente a tumores y metástasis y frente a agentes infecciosos.

Trastornos causados por una inhibición indeseada de NF-κB

En otro aspecto, los compuestos de la invención permiten el tratamiento de trastornos causados por una inhibición indeseada de NF-κB, por ejemplo, en los casos en los que existe un defecto en la ruta de señalización de NF-κB tales como:

-: Enfermedades en las que se produce apoptosis de forma prematura durante el desarrollo embrionario o cuando se produce apoptosis ectópica (por ejemplo, durante el desarrollo embrionario del ojo o del cerebro), como ocurre en pacientes con Incontinentia Pigmento.

-: Defectos neurológicos tales como microcefalia, o a condiciones epilépticas producidas a consecuencia de malformaciones del cerebro.

-: Enfermedades oftalmológicas tales como la retinopatía del prematuro o las vasculopatías proliferativas (cataratas, ojo pequeño o desprendimiento de retina).

-: Enfermedades en las que el organismo tienen una capacidad parcial o totalmente alterada de responder a infecciones de distinto tipo, tales como la Incontinentia Pigmenti, en donde existe una proliferación extrema de eosinoﬁlos que se inﬁltran en la piel y que aumentan su concentración en sangre.

-: Enfermedades de los vasos sanguíneos en la retina, el cerebro o en la piel.

-: Enfermedades dentales.

-: Osteopetrosis ocasionada por una resorción defectuosa del hueso inmaduro.

-: Enfermedades cutáneas tales como hipomelanosis.

En otro aspecto, los compuestos de la invención permiten el tratamiento de trastornos causados por una inhibición indeseada de NF-AT. Dichos trastornos se maniﬁestan por una hipoactividad del sistema inmune tales como las que aparecen en condiciones de inmunodeﬁciencia innatas o adquiridas, por lo que las variantes constitutivamente activadas de p300 tienen utilidad en métodos para estimular el sistema inmune en condiciones tales como cirugía, heridas, infecciones u otro tipo de traumas. Los compuestos de la invención son útiles para su administración en infecciones bacterianas, virales, parasitarias del tipo de Así, la invención contempla el uso de los polipéptidos y polinucleótidos para el tratamiento de enfermedades causadas por bacterias tales como menigitus, carbunco, apenditis, disenteria, bacteremia, peste, lepra, borreliosis, botulismo, bronqutis, brucelosis, peste bubónica, cerebritos, cervicitis, cólera, conjuntivitis, cistitis, dermatitis, diarrea, encefalitis, endocarditis, ﬁebre entérica, enteritis, enterocolitis, epididimitos, erisipela, tuberculosis, forúnculos, gangrena, gastritis, gastroenteritis, otitis, glomerulonefritis, impetigo, laringitis, tétano, mastitis, meningitis, meningoencefalitis, listeriosis, nocardiosis, oftalmitis, osteomielitis, otitis media, pancreatitis, parotiditis, neumonía, listeremia, prostatis, sepsis puerperal, abscesos cutáneos, pielonefritis, ﬁebre reumática, rinitis, romboencefalitis, salmonelosis, escarlatina, sepsis, shigelosis, síﬁlis, peritonitis, sinusitis, traqueobronquitis, ﬁebres de Malta, tifus, ﬁebres tifoideas, úlcera y uretritis.

Asimismo, los compuestos de la invención pueden usarse como agentes adyuvantes de vacunas inyectables cuando se utilizan conjuntamente con vacunas para alguna de las enfermedades citadas anteriormente.

Adicionalmente, los compuestos de la invención que tienen utilidad para el tratamiento de tumores de mama, corazón, pulmón, intestino delgado, colon, bazo, riñón, vejiga, cabeza, cuello, ovario, próstata, cerebro, páncreas, piel, hueso, médula ósea, sangre, timo, útero, testículos e hígado. En particular, tumores que pueden ser tratados con los compuestos de la invención incluyen adenoma, angiosarcoma, astrocitoma, carcinoma epitelial, germinoma, glioblastoma, glioma, hemangioendotelioma, hemangiosarcoma, hematoma, hepatoblastoma, leucemia, linfoma, meduloblastoma, melanoma, neuroblastoma, osteosarcoma, retinoblastoma, rabdomiosarcoma, sarcoma y teratoma. En particular, el tumor/cáncer se selecciona del grupo de melanoma acral lentiginoso, queratosis actínica adenocarcinoma, carcinoma adenoidal cística, adenomas, adenosarcoma, carcinoma adenoescamoso, tumores astrocíticos, carcinoma de la glándula de Bartolino, carcinoma de células basales, carcinoma de glándulas branquiales, carcinoide capilar, carcinoma, carcinosarcoma, colangiocarcinoma, cistadenoma, tumor del seno endodermal, hiperplasia endometrial, sarcoma del estroma endometrial, adenocarcinoma endometroide, sarcoma ependial, sarcoma de Swing, hiperplasia nodular focal, gastrónoma, tumores de la línea germinal, glioblastoma, glucagonoma, hemagioblastoma, hemagioendotelioma, hemagioma, adenoma hepático, adenomastosis hepática, carcinoma hepatocelular, insulinita, neoplasia intraepitelial, neoplasia de células escamosas interepiteliales, carcinma de células escamosas invasivas, carcinoma de células grandes, leiomiosarcoma, melanoma, melonoma maligno, tumor mesotelial maligno, medulobastoma, meduloepitelioma, carcinoma mucoepidermoide, neuroblastoma, adenocarcinoma neuroepitelial, melanoma nodular, osteosacrcoma, adenocarcinoma seroso papilar, tumores pituitarios, plasmacitoma, pseudosarcoma, blastoma pulmonar, carcinoma de células renales, retinoblastoma, rabdomiosarcoma, sarcoma, carcinoma seroso, carcinoma de células pequeñas, carcinoma de tejidos blandos, tumor secretor de somatostatina, carcinoa escamoso, carcinoma de células escamosas, carcinoma no diferenciado, melanoma uveal, carcinoa verrugoso, vipoma, tumor de Wilm. Aún más preferiblemente, el tumor/cáncer a ser tratado con los compuestos de la invención incluye cáncer intracerebral, cáncer de cabeza y cuello, cáncer rectal, astrocitoma, preferiblemente astrocitoma de grado II, III o IV, glioblastoma, preferiblemente glioblastoma multiforme, cáncer de células pequeñas, y cáncer de células no pequeñas, preferiblemente cáncer de pulmón de células no pequeñas, melanoma metastático, cáncer de próstata metastático independiente de andrógenos, cáncer de próstata metastático dependiente de andrógenos y cáncer de mama.

Para uso en medicina, los compuestos de la invención pueden ser formulados conjuntamente con un excipiente que es aceptable desde el punto de vista farmacéutico. Excipientes preferidos para su uso en la presente invención incluyen azúcares, almidones, celulosas, gomas y proteínas. En una realización particular, la composición farmacéutica de la invención se formulará en una forma farmacéutica de administración sólida (p.ej., comprimidos, cápsulas, grageas, gránulos, supositorios, etc.) o líquida (p.ej., soluciones, suspensiones, emulsiones, etc.). En otra realización particular, las composiciones farmacéuticas de la invención pueden ser administradas por cualquier ruta, incluyendo, sin ser limitante, oral, intravenosa, intramuscular, intrarterial, intramedular, intratecal, intraventricular, transdérmica, subcutánea, intraperitoneal, intranasal, entérica, tópica, sublingual o rectal. Una revisión de las distintas formas de administración de principios activos, de los excipientes a utilizar y de sus procedimientos de fabricación puede encontrarse en el Tratado de Farmacia Galénica, C. Faulí i Trillo, Luzán 5, S.A. de Ediciones, 1993.

Alternativamente, cuando el compuesto de la invención comprende un polinucleótido, la composición farmacéutica de la invención puede formularse en forma de una composición destinada para su empleo en terapia génica; a modo ilustrativo, no limitativo, en este caso, la composición farmacéutica de la invención puede contener un vector, viral o no viral, que comprende un polinucleótido de la invención o una construcción génica de la invención. A modo ilustrativo, no limitativo, dichos vectores pueden ser vectores virales, por ejemplo, basados en retrovirus, adenovirus, etc., o no virales tales como los complejos ADN-liposoma, ADN-polímero, ADN-polímero-liposoma, etc. [véase “Nonviral Vectors for Gene Therapy”, editado por Huang, Hung y Wagner, Academic Press (1999)]. Dichos vectores, que contienen un polinucleótido o una construcción génica de la invención pueden ser administrados directamente al cuerpo humano o animal por métodos convencionales. Alternativamente, dichos vectores pueden ser utilizados para transformar, transfectar o infectar células, por ejemplo, células de mamíferos, incluido el hombre, ex vivo, y, posteriormente implantarlas en el cuerpo humano o animal para obtener el efecto terapéutico deseado. Para su administración al cuerpo humano o animal dichas células se formularán en un medio adecuado que no afecte adversamente a la viabilidad de dichas células.

Las composiciones de la invención pueden administrarse formando parte de liposomas, conjugadas a colesterol o conjugados a compuestos capaces de promover la translocación a través de membranas celulares tales como el péptido Tat derivado de la proteína TAT de HIV-1, la tercera hélice del homeodominio de la proteína Antennapedia de D. melanogaster, la proteína VP22 del virus del herpes simplex, oligómeros de arginina y péptidos tales como los descritos en WO07069090 (Lindgren, A. et al., 2000, Trends Pharmacol. Sci, 21:99-103, Schwarze, S.R. et al., 2000, Trends Pharmacol. Sci., 21:45-48, Lundberg, M et al., 2003, Mol. Therapy 8:143-150 y Snyder, E.L. y Dowdy, S.F., 2004, Pharm. Res. 21:389-393). Alternativamente, en el caso que el compuesto terapéutico sea ADN, éste puede administrarse formando parte de un vector plasmídico o de un vector viral, preferiblemente vectores basados en adenovirus, en virus adeno aso ciados o en retrovirus, particularmente virus basados en el virus de la leucemia murina (MLV) o en lentivirus (HIV, FIV, EIAV).

En otro aspecto, las composiciones farmacéuticas de la invención comprende instrucciones para su uso. El experto en la materia apreciará que el régimen de dosis y los pacientes correspondientes a ser tratados se pueden determinar de acuerdo con la presente invención. Las dosis recomendadas se indicarán en la etiqueta del producto permitiendo al prescriptor anticipar los ajustes de dosis dependiendo del grupo de pacientes considerado, con información que evita prescribir la droga incorrecta a los pacientes incorrectos a la dosis incorrecta.

El régimen de dosis se determinará por el médico y otros factores clínicos; preferiblemente de acuerdo con cualquiera de los métodos descritos anteriormente. Como es bien sabido en la ciencia médica, las dosis para cualquier paciente dependen de muchos factores, incluyendo el tamaño del paciente, el área de la superﬁcie del cuerpo, edad, el compuesto particular que se le va a administrar, sexo, tiempo y vía de administración, salud general, y si se están administrando otras drogas al mismo tiempo. El progreso se puede observar mediante valoración periódica.

Las composiciones de la invención pueden ser administradas en dosis de menos de 10 mg por kilogramo de peso corporal, preferiblemente menos de 5, 2, 1, 0.5, 0.1, 0,05, 0,01, 0,005, 0,001, 0,0005, 0,0001, 0,00005 ó 0,00001 mg por cada kg de peso corporal y menos de 200 nmol de agente ARN, es decir, en torno a 4.4 x 1016 copias por kg de peso corporal o menos de 1500, 750, 300, 150, 75, 15, 7,5, 1,5, 0,75, 0,15 ó 0,075 nmol por Kg de peso corporal. La dosis unitaria se puede administrar por inyección, por inhalación o por administración tópica. Las composiciones de la invención pueden ser administradas directamente en el órgano en el que se observe el defecto que se desea tratar en cuyo caso se administran dosis de entre 0.00001 mga3mgpor órgano, o preferiblemente entre 0.0001 y 0.001 mg por órgano, en torno a 0,03 y 3.0 mg por órgano, en torno a 0,1 y 3,0 mg por órgano o entre 0,3 y 3,0 mg por órgano.

La dosis depende de la severidad y respuesta de la condición a tratar y puede variar entre varios días y varios meses

o hasta que se observe que la condición remite. La dosiﬁcación óptima se puede determinar realizando mediciones periódicas de las concentraciones de agente en el organismo del paciente. La dosis óptima se puede determinar a partir de los valores de EC50 obtenidos mediante ensayos previos in vitro o in vivo en modelos animales. La dosis unitaria se puede administrar una vez al día o menos de una vez al día, preferiblemente, menos de una vez cada 2, 4, 8 o 30 días. Alternativamente, es posible administrar una dosis inicial seguida de una o varias dosis de mantenimiento, generalmente de menos cantidad que la dosis inicial. El régimen de mantenimiento puede implicar tratar al paciente con dosis que oscilan entre 0,01 μg y 1,4 mg/kg de peso corporal por día, por ejemplo 10, 1, 0,1, 0,01, 0,001, o 0,00001 mg por kg de peso corporal por día. Las dosis de mantenimiento se administran, preferiblemente, como mucho una vez cada 5, 10 ó 30 días. El tratamiento se debe continuar durante un tiempo que variará según el tipo de alteración que sufra el paciente, su severidad y el estado del paciente. Tras el tratamiento, se debe monitorizar la evolución del paciente para determinar si se debe incrementar la dosis en caso de que la enfermedad no responda al tratamiento o se disminuye la dosis si se observa una mejora de la enfermedad o si se observan efectos secundarios indeseados.

La dosis diaria se puede administrar en una única dosis o en dos o más dosis según las circunstancias particulares. Si se desea una administración repetida o administraciones frecuentes, es aconsejable la implantación de un dispositivo de administración tal como una bomba, un catéter semipermanente (intravenoso, intraperitoneal, intracisternal o intracapsular) o un reservorio.

Los autores de la presente invención han puesto de maniﬁesto que la capacidad de la proteína A238L de bloquear la activación de NF-kappaB y NF-AT radica en la capacidad de esta proteína de impedir la actividad activadora de la transcripción de p300 al impedir la fosforilación de p300 por la PKC-theta. Estos resultados permiten el desarrollo de métodos para la identiﬁcación de compuestos capaces de inhibir la actividad de p300 de forma similar a A238L. Así, en otro aspecto, la invención se relaciona con un método para la identiﬁcación de compuestos antitumorales que comprende las etapas de:

(i) poner en contacto una célula que comprende

(a): un polipéptido de fusión que comprende un primer componte formado por la secuencia SEQ ID NO: 1 o una variante de la misma cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada y un segundo componente formado por un dominio de unión a ADN y

(b): un gen reportero acoplado operativamente a un promotor que comprende al menos una copia del sitio al que se une el dominio de unión de ADN presente en el polipéptido (i)

con un compuesto cuya actividad antitumoral se desea ensayar y

(ii) identiﬁcar aquellas células en las que se produzca una disminución de la expresión del gen reportero

en donde el compuesto es antitumoral si provoca una disminución de la expresión del gen reportero.

En una primera etapa, el método de identiﬁcación de compuestos antitumorales o antiinﬂamatorios de la invención implica poner en contacto una célula con un compuesto candidato en cualquier grado de pureza. Por “célula” se entiende, en el contexto de la presente invención, cualquier célula que comprende

(b): un gen reportero acoplado operativamente a un promotor que comprende al menos una copia del sitio al que se une el dominio de unión de ADN presente en el polipéptido (i).

En una forma preferida de realización, el polipéptido (i) comprende una variante de la secuencia SEQ ID NO: 1 cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada. Preferiblemente, la variante de la SEQ ID NO: 1 se encuentra constitutivamente actividad mediante la sustitución del amino ácido en posición 193 de SEQ ID NO: 1 por un análogo estructural de un fosfoamino ácido. En una forma aún más preferida de realización, el análogo estructural de un fosfoamino ácido es Asp.

En otra forma preferida de realización, el polipéptido (i) comprende la secuencia SEQ ID NO: 1. En este caso, sólo es posible identiﬁcar compuestos que interﬁeran con la activación de p300 si el polipéptido de SEQ ID NO: 1 se activa previamente por medio de la fosforilación en la posición 193 (correspondiente a la posición 384 en la proteína p300 completa). Dicha activación puede ser llevada a cabo por medio de la proteína PKC-theta que aparece de forma endógena en la célula en la que se lleva a cabo el ensayo. Sin embargo, en caso de que la células no disponga de actividad PKC-theta suﬁciente para la activación del polipéptido de SEQ ID NO:1, la invención contempla, en una forma preferida de realización, el uso de una célula en la etapa (i) que comprende, adicionalmente, un gen que codiﬁca PKC-theta. En una forma preferida de realización, el gen que codiﬁca PKC-theta se encuentra operativamente controlado por un promotor inducible. Promotores adecuados para la regular la expresión de PKC-theta incluyen los promotores anteriormente mencionados. Preferiblemente, el promotor es un promotor inducible que permite activar la expresión de PKC-theta a voluntad mediante la puesta en contacto de la célula con un determinado compuesto o en determinadas condiciones.

Genes reporteros que se pueden usar formando parte del componente (ii) invención incluyen luciferasa, proteína verde ﬂuorescente y variantes de la misma que emiten ﬂuorescencia a distintas longitudes de onda (por ejemplo, DSRed o proteína ﬂuorescente roja), cloranfenicol acetiltransferasa, β-galactosidasa, fosfatasa alcalina y peroxidasa de rábano.

Células adecuadas para la realización del método de la invención incluyen células de las líneas CHO, VERO, BHK, HeLa, COS, MDCK 293, 3T3, WI38 y similares. En una forma preferida de realización, la célula que se usa en el método de la invención es una célula Jurkatt, correspondiente una línea de células T de origen humano.

Una vez que se ha seleccionado la célula en la que se va a expresar las proteínas de fusión y el gen reportero bajo el control de un promotor, es necesario incorporar en dicha célula las construcciones de ADN que codiﬁcan para el componente (i) y que comprenden la construcción (ii). Las construcciones de ADN se introducen en las células objeto de estudio usando cualquiera de los métodos de transfección conocidos para el experto en la materia (véase secciones 9.1 a 9.5 en Ausubel, F.M. et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons Inc; ringbou edition, 2003). En particular, las células se pueden transfectar mediante co-precipitación de ADN con fosfato cálcico, DEAE-dextrano, polibreon, electroporación, microinyección, fusión mediada por liposomas, lipofección, infección por retrovirus y transfección biolística.

Las construcciones necesarias para la expresión de ambas componente pueden incorporarse de forma transitoria o de forma estable. Preferiblemente, las construcciones se incorporan de forma estable. Para ello, es necesario incluir en la transfección un gen que codiﬁque para resistencia a un determinado antibiótico, de forma que se puedan seleccionar aquellas líneas celulares que han incorporado el ADN en el genoma de aquellas líneas celulares en las que el ADN se encuentra en posición extracromosómica. El gen que permite seleccionar las células se puede aportar formando parte del mismo vector que contiene la construcción objeto de la invención o, alternativamente, se puede aportar separadamente mediante co-transfección con un segundo plásmido que contiene dicho gen de resistencia. En este último caso, el plásmido que contiene la construcción de ADN se aporta a la mezcla de transfección en un exceso molar con respecto al gen de resistencia de forma que por cada evento de integración del gen de resistencia exista una alta probabilidad de integración del gen que contiene el promotor objeto de estudio. Preferiblemente, el plásmido que contiene la construcción de ADN se aporta en un exceso de al menos 5 veces con respecto al vector que contiene el reportero de resistencia.

Marcadores de resistencia adecuados para seleccionar líneas celulares que han integrado la construcción en el genoma incluyen marcadores de selección positiva como por ejemplo el gen de resistencia a la neomicina, que conﬁere resistencia al aminoglucósido G418, el gen de la higromicina fosfotransferasa que conﬁere resistencia a higromicina, el gen ODC, que conﬁere resistencia al inhibidor de la ornitina descarboxilasa (2-(diﬂuorometil)-DL-ornitina (DFMO), el gen de la dihidrofolato reductase que conﬁere resistencia a metrotexato, el gen de la puromicina-N-acetil transferasa, que conﬁere resistencia a puromicina, el gen ble que conﬁere resistencia a zeocina, el gen de la adenosina deaminasa que conﬁere resistencia a 9-beta-D-xilofuranosil adenina, el gen de la citosina deaminasa, que permite a las células crecer en presencia de N-(fosfonacetil)-L-aspartato, timidina kinasa, que permite a las células crecer en presencia de aminopterina, el gen de Xantina-guanina fosforibosiltransferasa, que permite a las células crecer en presencia de xantina y ausencia de guanina, el gen trpB de E. coli que permite a las células crecer en presencia de indol en lugar de triptófano, el gen hisD de E. coli, que permite a las células el usar histidinol en lugar de histidina. El gen de selección se incorpora en un plásmido que puede incluir, adicionalmente, un promotor adecuado para la expresión de dicho gen en células eucariotas (por ejemplo, los promotores CMV o SV40), un sitio optimizado de iniciación de la traducción (por ejemplo un sitio que sigue las denominadas reglas de Kozak o un IRES), un sitio de poliadenilación como, por ejemplo, el sitio de poliadenilación del SV40 o de la fosfoglicerato quinasa, intrones como, por ejemplo, el intrón del gen de la beta-globulina.

El proceso de selección de células que contienen la construcción de ADN de interés integrada de forma estable en el genoma se lleva a cabo mediante un proceso de selección convencional (véase por ejemplo Ausubel, F.M. et al., Current Protocols in Molecular Biology (1997) 9.5.1-9.5.19). Para ello, se transfectan las células con el vector

o mezclas de vectores y, tras un periodo de recuperación, se dejan crecer en un medio selectivo (bien un medio que contiene al antibiótico frente al que el reportero conﬁere resistencia o bien un medio mínimo que contiene el antimetabolito frente al cual el reportero conﬁere resistencia). Las colonias celulares que crecen en medio selectivo se aíslan y se vuelven a dejar crecer en medio selectivo. Una vez que se han obtenido células que son capaces de crecer durante repetidos ciclos de proliferación en presencia del marcador de selección, puede ser conveniente el eliminar dicho marcador de las células, particularmente si las células van a ser transfectadas con otro marcador de selección. Para ello, se pueden usar recombinasas, en particular el sistema Cre/Lox. Alternativamente, es posible ampliﬁcar el número de copias del marcador de selección, lo que resulta en una ampliﬁcación simultánea del número de copias del gen de interés con el consiguiente aumento de su expresión. Para ello, las células se hacen crecer en presencia de concentraciones progresivamente superiores de agente de selección, lo que resulta en una selección de las células que han sufrido una ampliﬁcación de los genes que conﬁeren resistencia a tal agente y, normalmente, de las regiones adyacentes o intermedias. Preferiblemente se usa DHFR como marcador de selección y la selección de líneas celulares en las que existe una ampliﬁcación de dicho gen se lleva a cabo en presencia de metotrexato.

En el caso de que las células utilizadas en el método de la invención, es necesaria la incorporación sucesiva de dos construcciones. En este caso, es posible incorporar la construcción que codiﬁca la proteína de fusión de forma estable usando los métodos ya descritos y la construcción que contiene el gen reportero de forma transtitoria. Alternativamente, es posible incorporar ambas construcciones de forma estable, en cuyo caso será necesario usar un marcador de selección distinto con cada construcción y efectuar el proceso de transfección/selección ya descrito dos veces. Normalmente, se considera que una célula expresa un marcador de forma estable cuando la expresión de dicho marcador no disminuye con sucesivos ciclos de proliferación, independientemente de la presencia en el medio de cultivo de un agente de selección.

Una vez que se dispone de una línea celular que ha integrado en su genoma de forma estable las construcciones de ADN de acuerdo a la invención, la célula se pone en contacto con un compuesto o preparación cuyo efecto sobre la transcripción del gen reportero se desee estudiar. Por “poner en contacto” una célula con el compuesto candidato se incluye, según la presente invención, cualquier posible forma de llevar el compuesto candidato hasta el interior de la célula que expresa la construcción de ADN.

Así, en caso de que el compuesto candidato sea una molécula de bajo peso molecular, es suﬁciente con añadir dicha molécula al medio de cultivo. En caso de que el compuesto candidato sea una molécula de alto peso molecular (por ejemplo, polímeros biológicos tales como un ácido nucleico o una proteína), es necesario aportar los medios para que esa molécula pueda acceder al interior celular. En caso de que la molécula candidata sea un ácido nucleico, pueden usarse métodos convencionales para transfección, según se ha descrito anteriormente para la introducción de la construcción de ADN. En caso de que el compuesto candidato sea una proteína, la célula puede ponerse en contacto tanto con la proteína directamente como con el ácido nucleico que la codiﬁca acoplado a elementos que permitan su transcripción/traducción una vez que se encuentren en el interior celular. Para ello, se pueden usar cualquiera de los métodos mencionados anteriormente para permitir su entrada al interior celular. Alternativamente, es posible poner en contacto la célula con una variante de la proteína que se desea estudiar que ha sido modiﬁcada con un péptido que sea capaz de promover la translocación de la proteína al interior celular, tales como el péptido Tat derivado de la proteína TAT de HIV-1, la tercera hélice del homeodominio de la proteína Antennapedia de D. melanogaster, la proteína VP22 del virus del herpes simplex y oligómeros de arginina (Lindgren, A. et al., 2000, Trends Pharmacol. Sci, 21:99-103, Schwarze, S.R. et al., 2000, Trends Pharmacol. Sci., 21:45-48, Lundberg, M et al., 2003, Mol. Therapy 8:143-150 y Snyder, E.L. y Dowdy, S.F., 2004, Pharm. Res. 21:389-393).

Preferiblemente, el compuesto a ensayar no se encuentra aislado sino que se encuentra formando parte de una mezcla más o menos compleja bien derivada de una fuente natural o bien formando parte de una biblioteca de compuestos. Ejemplos de bibliotecas de compuestos que pueden ser ensayadas según el método de la presente invención incluyen, sin limitación, bibliotecas de péptidos incluyendo tanto péptidos como análogos peptídicos que comprenden D-amino ácidos o péptidos que comprenden enlaces no peptídicos, bibliotecas de ácidos nucleicos incluyendo ácidos nucleicos con enlaces no fosfodiester del tipo de fosforotioato o ácidos nucleicos peptídicos, bibliotecas de anticuerpos, de carbohidratos, de compuestos de bajo peso molecular, preferiblemente moléculas orgánicas, de peptidomiméticos, y similares. En el caso de que se use una biblioteca de compuestos orgánicos de bajo peso molecular, la biblioteca puede haber sido preseleccionada para que contengan compuestos que puedan acceder al interior celular con mayor facilidad. Así, los compuestos de pueden seleccionar en base a determinados parámetros tales como tamaño, lipoﬁlicidad, hidroﬁlicidad, capacidad de formar puentes de hidrógeno.

Alternativamente, los compuestos a ensayar pueden estar formando parte de un extracto obtenido de una fuente natural. La fuente natural puede ser animal, vegetal obtenido de cualquier entorno, incluyendo, sin limitación, extractos de organismos terrestres, aéreos, marinos y similares.

En una segunda etapa, el método de la invención incluye la determinación de la actividad de la proteína codiﬁcada por el gen reportero. Preferiblemente, a la vez que se lleva a cabo la determinación de la actividad del gen reportero en presencia de los compuestos a ensayar, es necesario efectuar determinaciones en paralelo de la actividad transcripcional basal en presencia de únicamente el medio de cultivo y/o del vehículo en el que se encuentra disuelto el compuesto a ensayar o en el que se han preparado los extractos a ensayar. Generalmente, aquellos compuestos o extractos con actividad promotora de la transcripción se manifestarán porque darán valores superioresa1dela relación entre actividad transcripcional en presencia del compuesto o del extracto candidato y en presencia de vehículo. Preferiblemente, se considerarán compuestos o extractos positivos aquellos en los que la relación de actividad del gen reportero sea de al menos 1.1, 1.2, 1.3, 1.4, 1.5, 1.6, 1.7, 1.8, 1.9 y 2.

En una forma de realización preferida, el método de la invención se utiliza para identiﬁcar compuestos adecuados para el tratamiento o la prevención de un proceso tumoral en donde dicho proceso se caracteriza por una activación indesada de la activada de los factores de transcripción NF-κB, NF-AT y/o AP-1.

El método de detección de la expresión del gen reportero implica la puesta en contacto de las células con un compuesto que puede generar un producto coloreado o ﬂuorescente en presencia del producto codiﬁcado por el gen reportero. Así, si la enzima es la fosfatasa alcalina, se pueden usar substratos cromogénicos del tipo del p-nitrofenil fosfato (p-NPP), 5-bromo-4cloro 3-indolil fosfato/tetrazolio nitroblue (BCIP/NPT), Fast-Red/naftol-AS-TS fosfato

o substratos ﬂuorogénicos del tipo de 4-metilumbeliferil fosfato (4-MUP), 2-(5’-cloro-2’-fosforiloxifenil)-6-cloro-4(3H)-quinazolinona (CPPCQ), 3,6-ﬂuoresceína difosfato (3,6-FDP), Fast Blue BB, Fast Red TR o sales de diazonio de Fast Red Violet LB.

Si el gen reportero codiﬁca una peroxidasa, se pueden usar substratos cromogénicos del tipo de 2,2-azinobis (ácido 3-etilbenzotiazolin-6-sulfónico) (ABTS), o-fenilenediamina (OPT), 3,3’,5,5’-tetrametilbenzidina (TMB), o-dianisidina, ácido 5-amino salicílico, ácido 3-dimetilamino benzoico (DMAB) y 3-metil-2-benzotiazolinhidrazona (MBTH), 3-amino-9-etilcarbazol (AEC) y 3,3’-diaminobenzidina tetrahidrocloruro (DAB) o substratos ﬂuorogénicos del tipo del ácido 4-hidroxi-3-metoxifenilacetico, fenoxazines reducidas y benzotiazines reducidas, incluyendo los reactivos Amplex® Red y Amplex UltraRed y los dihidroxantenos reducidos.

Si el gen reportero codiﬁca una glucosidasa, se pueden usar substratos cromogénicos del tipo de o-nitrofenil-βD-galactosido (o-NPG), p-nitrofenil-β-D-galactosido y 4-metilumbeliferil-β-D-galactosido (MUG) para la β-D-galactosidasa y substratos ﬂuorogénicos del tipo de la resoruﬁna beta-D-galactopiranosido, digalactosido de ﬂuoresceína (FDG), diglucurónido de ﬂuoresceína, 4-metilumbeliferil beta-D-galactopiranosido, carboxiumbeliferil beta-D-galactopiranosido y beta-D-galactopiranosido de cumarina.

En una forma preferida de realización, el gen reportero codiﬁca para la luciferasa y la detección se efectúa midiendo la luminiscencia emitida por dicha enzima en presencia de ATP. La luminiscencia se determina usando kits comerciales, como por ejemplo, el kit de enhanced luciferase assay (Analytical Luminescence Laboratory, MI). Preferiblemente, el método de identiﬁcación de compuestos de la invención se lleva a cabo usando métodos de alta capacidad de procesamiento (high-throughput screening o HTS), de forma que se puedan ensayar un alto número de muestras simultáneamente. Los ensayos HTS se llevan a cabo preferiblemente en placas mutipocillo, preferiblemente, en placas de 96 pocillos, lo que facilita la detección de la actividad luciferasa en cada muestra puesto que existen luminómetros que pueden aceptar directamente placas de cultivo de 96 pocillos.

En caso de que el compuesto candidato se encuentre formando parte de una mezcla de mayor o menor complejidad, la invención comprende adicionalmente una o varias etapas (iii) de fraccionamiento de dicha mezcla y la repetición de las etapas (i), (ii) y (iii) del método de la invención un número variable de veces hasta que el compuesto de la mezcla responsable de la actividad promotora de la transcripción se encuentre aislado. Métodos para el fraccionamiento de compuestos presentes en una mezcla incluyen cromatografía (en capa ﬁna, de gases o de exclusión molecular en gel, de aﬁnidad), cristalización, destilación, ﬁltración, precipitación, sublimación, extracción, evaporación, centrifugación, espectrometría de masas, adsorpción y similares.

La invención se describe a continuación mediante los siguientes ejemplos que son meramente ilustrativos y en ningún caso limitativos de la invención.

Ejemplos

Ejemplo 1

Western blot

Extractos nucleares y citosólicos de células Jurkat wild-type (wt), Jurkat-pcDNA y Jurkat-A238L estimuladas o no estimuladas con PMA/Ion, se procesaron para el ensayo. Las células se centrifugaron, se lavaron con PBS y se resuspendieron en 500 μl de Buffer A (10 mM HEPES pH: 7.6; 10 mM KCl; 0.1 mM EDTA; 0.1 mM EGTA, 0.75 mM espermidina, 0.15 mM espermina, 1 mM DTT, 0.5 mM PMSF, 10 mM Na2MoO4 y2 μg/ml de cada uno de los inhibidores leupeptina, aprotinina y pepstatina A). Después de 15 min a 4ºC, se añadió 5 μl de solución NP-40 al 10%. Las muestras se agitaron mediante vortex durante 10 sec y se centrifugaron 20 min a 3000 rpm y 4ºC. Los sobrenadantes se usaron como extractos citosólicos. Los núcleos se lavaron dos veces con 200 μl de buffer A para evitar la contaminación citosólica. Para la extracción de proteínas nucleares, se añadió 50 μl de Buffer C (20 mM HEPES pH: 7.6; 0.4 M NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1 mM DTT, 0.5 mM PMSF, 10 mM Na2MoO4 y2 μg/ml de cada uno de los inhibidores leupeptin, aprotinin y pepstatin A) y los pellet de núcleos se incubaron durante 30 min a 4ºC en agitación. Las muestras se centrifugaron durante 10 min a 14000 rpm y 4ºC, y los sobrenadantes se usaron como extractos nucleares. Los extractos proteicos de células Jurkat wt se prepararon con buffer RIPA (radio immunoprecipitation assay), formado por 50 mM Tris-HCl pH 7.4, 150 mM NaCl, 1% NP-40 y 0.25% Na-deoxycholate, y suplementado con inhibidores de proteasas (Roche). En cada caso, la concentración de proteínas se determinó mediante el método espectofotométrico del ácido bicincóninico (BCA) (Pierce). Los lisados celulares se separaron mediante electroforesis en geles de poliacrilamida-SDS (SDS-PAGE), se transﬁrieron a membranas de Inmobilon (Amersham) y las proteínas separadas reaccionaron con el anticuerpo primario especíﬁco. Los anticuerpos usados fueron: NFATc2 (sc-7296, Santa Cruz Biotechnology), NFκB-p65 (se-109, Santa Cruz Biotechnology), c-Jun (sc-45, Santa Cruz Biotechnology), c-Fos (sc-52, Santa Cruz Biotechnology), p300 (sc-584, Santa Cruz Biotechnology), Acetylated Lysine (Ac-K-103, Cell Signaling), GAL4 (sc-577, Santa Cruz Biotechnology), PKC (sc-10800, Santa Cruz Biotechnology), PKC-θ (sc212, Santa Cruz Biotechnology), V5-TAG (MCA1360, Serotec), β-actin (AC-15, Sigma) y un antisuero policlonal frente A238L. Las membranas fueron incubadas con el correspondiente anticuerpo secundario acoplado a peroxidasa (Amersham Biosciences). Para la detección de las proteínas especíﬁcas se utilizó el método de quimioluminiscencia ECL (Amersham Biosciences). El análisis densitométrico se llevó a cabo utilizando el software TINA 2.0.

Immunoprecipitación

Extractos celulares y nucleares de células Jurkat, al 80-90%) de conﬂuencia, tratadas o no con PMA/Ion durante 4 h, se procesaron, y se determinó la concentración proteica. Los extractos se incubaron con los siguientes anticuerpos especíﬁcos: NFATc2 (sc-7296, Santa Cruz Biotechnology), NFκB-p65 (se-109, Santa Cruz Biotechnology), c-Jun (sc45, Santa Cruz Biotechnology), c-Fos (sc-52, Santa Cruz Biotechnology), p300 (sc-584, Santa Cruz Biotechnology), PKC (sc-10800, Santa Cruz Biotechnology), PKC-θ (sc-212, Santa Cruz Biotechnology), V5-TAG (MCA1360, Serotec) y una IgG de conejo o ratón como control negativo, a una concentración ﬁnal de 4 μg/ml. Las muestras se incubaron toda la noche a 4ºC. Al día siguiente las muestras se incubaron durante 3 horas a 4ºC con bolas de proteína A/G-sefarosa (Sigma). Las muestras se centrifugaron y las bolas se lavaron tres veces con el buffer de lavado correspondiente (50 mM Tris-HCl pH 8, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, y 0.5% Nonidet P-40). Los inmunoprecipitados se mezclaron con buffer de carga SDS y se separaron mediante un gel de poliacrilamida (SDS-PAGE) en gradiente de 415%, y se analizaron mediante Western blot.

Construcción de plásmidos

El plásmido de expresión pcDNA-A238L expression plasmid se generó clonando el marco de lectura abierta del gen A238L procedente del aislado viral Ba71V de VPPA (African swine fever virus), en el vector pcDNA3.1 (Invitrogen). El NFAT-luc, que contiene tres copias en tándem del sitio de unión distal NFATc2/AP-1 (posición -286 a -257) del promotor de IL-2, fue cedido por el Dr. Gerald Crabtree (Departamento de Patología y Biología del Desarrollo, Howard Hughes Medical Institute, Stanford University Medical School, Stanford, CA). El plásmido reportero NFκB-p65 (pNF3TKLuc) contiene un trímero del motivo de unión de NFκB-p65 del gen upstream H-2K del promotor de la timidita kinasa y del gen reportero de la luciferasa. El plásmido AP-1-Luc presenta el elemento de respuesta a AP-1 (-73 a +63 pb) del promotor humano de la colagenasa fusionado al gen de la luciferasa. La construcción pGAL4-hNFATc2 contiene los primeros 451 aminoácidos del NFATc2 humano fusionado al dominio de unión a DNA (DBD) del factor de transcripción de levaduras GAL4. La construcción GAL4-p65 tiene el dominio de unión a DNA de GAL4 unido al dominio de transactivación carboxi terminal de p65. El plásmido GAL4-c-Jun expresa los primeros 166 aminoácidos de c-Jun humano fusionado al DBD del factor de transcripción de levaduras GAL4. GAL4-cFos y GAL4-Sp1 fueron cedidos por el Dr. Manuel Fresno (Centro de Biología Molecular Severo Ochoa, Madrid, Spain) y el Dr. Stefan Roberts (División of Gene Expression, Department of Biochemistry, University of Dundee, Dundee, Scotland, UK) respectivamente. La construcción GAL4-luciferasa (pGAL4-Luc) contiene cinco sitios de unión a GAL4 derivados de la fusión del gen GAL4 y el gen reportero luciferasa. La construcción GAL4p300 full-length (FL) y los mutantes (192-703), (1-1301) y (1239-2414) fueron cedidos por Dr. Perkins. La expresión del plásmido pCI-p300 wild-type y su mutante de delección histona acetil transferasa (HAT), pCI-p300ΔHAT, fue cedido por el Dr. Joan Boyes (Institute of Cancer Research, London, UK) y el plásmido pCDNA3-A238L-SV5 fue cedido por la Dr. Linda K. Dixon (Institute for Animal Health, Woking, Surrey, UK). Los plásmidos de expresión de PKC-θ wild-type y el mutante constitutivamente activo (pEF-PKC-θ wt y pEF-PKC-θ A/E, respectivamente) fueron cedidos por el Dr. Martín Villalba (Institut de Genetique Moleculaire de Montpellier, Centre National de la Recherche Scientiﬁque-Unite Mixte de Recherche, Montpellier, France). El plásmido vacío pEFneo fue cedido por el Dr. Manuel Fresno. GAL4-p300 (FL)Ser384Ala y GAL4-p300(192-703)Ser384Ala fueron generados utilizando el QuickChange Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene). Los oligonucleótidos utilizados para la mutagénesis fueron: p300S384A; forward (5’-CCACATGACACACTGCCAGGCAGGCAAGTCTGCCAAGTGGC-3’) (SEQ ID NO: 5) y reverse (5’-GCCACTTGGCAGACTTGCCTGCCTGGCAGTGTGTCATGAGG-3’) (SEQ ID NO: 6). Los nucleótidos subrayados indican la sustitución de la Serina por Alanina. El plásmido pRL-tk-luc (Promega) se utilizó en todos los casos para evaluar la eﬁciencia de transfección.

Ensayos de transfección y ensayos luciferasa

Se generaron células Jurkat que expresan de manera estable la proteína A238L. Para la transfección transitoria, las células se transfectaron con 250 ng de plásmidos reporteros o con 1 μg de plásmidos de expresión por 106 células, utilizando el sistema LipofectAMINE Plus Reagent (Invitrogen), siguiendo las indicaciones del fabricante. En los ensayos de co-transfección se añadió la misma dosis de plásmido de expresión por 106 células. Las células se incubaron durante 4 horas a 37ºC, se lavaron e incubaron con medio con suero durante 24hyse estimularon o no con PMA/Ion. Como control de la transfección para el ensayo luciferasa, se co-transfectó en todos los casos el plásmido control Renilla luciferasa pRL-TK-luc (Promega). A los tiempos post-estimulación indicados, las células se lisaron con 200 μlde Cell Culture Lysis Reagent (Promega) y se centrifugaron a velocidad máxima durante 5 min a 4ºC, y 20 μl de cada sobrenadante se utilizó para determinar los valores de la actividad luciferasa de luciérnaga y Renilla en un luminómetro Monolight 2010 (Analytical Luminescence Laboratory) utilizando Dual Lucifer ase Assay System (Promega). Las transfecciones se normalizaron a los valores de luciferasa de Renilla, y los resultados se expresaron como unidades de luminiscencia relativas ajustados a la concentración de proteínas de cada muestra determinado por el método BCA. Los experimentos se realizaron por triplicado, y los datos se representan como unidades de luciferasa relativas (RLU) (mean ± S.D).

Ensayo de fosforilación in vitro en fase sólida

Utilizamos 2 μg de MBP (miosin binding protein) (sc-4113, Santa Cruz Biotechnology) o los inmunoprecipitados GAL4-p300(192-703)wt y GAL4-p300(192-703)S384A como sustrato de la fosforilación in vitro, en los cuales se inmunoprecipitó pan-PKC o PKC-θ de células Jurkat. Extractos celulares de 107 células Jurkat se cultivaron en ausencia

o presencia de PMA/Ion durante 30 minutes. Las células se Usaron en buffer RIPA formado por 50 mM Tris-HCl pH 7.4, 150 mM NaCl y 1% NP-40, suplementado con inhibidores de fosfatasas (1 mM NaVO3, 10 mM NaF, y 10 mM Na2MoO4) e inhibidores de proteasa (0.5 mM ﬂuoridro fenilmetilsulfonil) 1 μg de pepstatina, 2 μg de leupeptina, y 2 μg de aprotinina por ml).

Los extractos clariﬁcados se incubaron toda la noche con 4 μg de anticuerpo contra PKC (sc-10800, Santa Cruz Biotechnology) o contra PKC-θ (sc-212, Santa Cruz Biotechnology) para inmunoprecipitarlos. Los precipitados fueron resuspendidos en buffer kinasa constituido por 20 mM HEPES (pH 7.6), 20 mM MgCl2,20mM β-glicerofosfato, 20 μM ATP, y 1 μCi de [γ32P]ATP (actividad especíﬁca, 3,000 Ci/mol) suplementado con inhibidores de fosfatasa y mezclado con el sustrato correspondiente. Después de 30 min a 30ºC, la reacción kinasa se determine lavando con buffer TNT que contiene 20 mM Trizma base (pH 7.5), 200 mM NaCl y 1% Tritón X-100, y está suplementado con inhibidores de proteasas (Roche). Las proteínas fosforiladas se separaron en un gel de poliacrilamida SDS-PAGE al 12%, y se revelaron por autoradiografía.

Ejemplo 2

La Ser384 es un nuevo residuo en el dominio CH1 de p300 potencialmente fosforilado por PKC y bloqueado por A238L

Puesto que la activación y represión transcripcional de p300 se regula por la actividad de diferentes quinasas, y para establecer el mecanismo funcional de A238L por el cual controla simultáneamente la actividad transcripcional de NFkB, NFAT y c-Jun, probablemente a través de la regulación del dominio CH1/KIX de p300, hemos analizado los residuos fosforilables presentes en dicho dominio usando el servidor NetPhosK, encontrando una nueva serina en la posición 384 dentro del dominio TAD potencialmente fosforilable por PKC. A partir de este momento, nos planteamos, por un lado, caracterizar el isotipo de 1 PKC involucrada, y por otro, si A238L realiza su función por desplazamiento de dicha PKC de dicho dominio de fosforilación. Para ello preparamos extractos nucleares de células estables Jurkat-PCDNA y Jurkat-A238L, transfectadas con diferentes construcciones de p300, GAL4-p300 (FL), GAL4-p300 (1-1301), GAL4-p300 (1239-2414), y GAL4-p300 (192-703), estimuladas o no con PMA/Ion que fueron inmunoprecipitados con un anticuerpo frente a distintos miembros de la familia de PKCs (panPKC). Nuestros resultados muestran que la p300 completa se asocia a PKC después de la estimulación con PMA/Ion, y que esta interacción es 1 desplazada por la proteína A238L. La proteína viral también desplazó PKC de las construcciones que contienen la región amino-terminal de p300, GAL4-p300(1-1301) (Fig. 1B), o los dominios CH1/KIX, GAL4-p300 (192-703) (Fig. 1C), soportando por tanto la hipótesis de que A238L especíﬁcamente inhibe la activación de la región aminoterminal TAD de p300 mediada por PKC. Cuando se ensayó la construcción GAL4-p300 (1239-2414), conteniendo el C-terminal TAD, A238L no alteró la interacción con PKC (Fig. 1D), indicando que la proteína viral no afecta la unión de PKC a esta región de p-300. Además, la Fig. 1E muestra que A238L no interacciona con PKCs, y por tanto no es esta la explicación de su interferencia con la unión. Por último, analizamos la actividad de la PKC en ensayos kinasa especíﬁcos, que demostraron que la actividad quinasa de PKC no está alterada (Fig. 1F, lo cual indica fuertemente que la inhibición de la trans activación de p-300 se lleva a cabo impidiendo la interacción de la quinasa con el aminoterminal TAD de p300, sin afectar a su actividad enzimática.

La sobre-expresión de PKC-θ revierte la inhibición de la actividad transcripcional de p300 mediada por A238L, a través de un mecanismo que involucra la señalización de la Ser 384 y la acetilación de p300

Para analizar la relevancia de la Ser 384 en la modulación de la actividad de p300, se generaron mutantes que sustituyen la Ser en posición 384 por Ala (S384A), sobre la proteína p300 completa, GAL4-p300 (FL) S384A, y sobre la construcción que contiene la región amino-terminal GAL4-p300 (192-703) S384A, las cuales fueron ensayadas para actividad Gal4-luc. Nuestros resultados mostraron que dicha mutación en la p300 completa es responsable de una importante reducción de la transactivación de p300 y que la sustitución de la Ser384 por alanina en GAL4-p300 (192-703) S384A eliminó completamente la actividad transcripcional mediada por esta región. (Fig. 2A). Estos datos claramente indican que la Ser384 es esencial en la trans-activación mediada por el dominio N-terminal de p300, y directamente señalan a este residuo como fundamental en la regulación global de este coactivador. Previamente ha sido demostrada la importancia de los miembros ζ, ε y θ de la familia PKC en la activación de NF-ATc2, NF-kB-p65, y c-Jun en células T. Teniendo en cuenta estos datos, la Ser384 parece ser un sustrato potencial de PKC. Por lo tanto, y para caracterizar el isotipo de PKC responsable de la fosforilación de la Ser384, se sobre-expresaron separadamente los mutantes GAL4-p300 (192-703), wt, y GAL4-p300 (192-703) S384A en células Jurkat. Después, se utilizaron extractos nucleares para inmunoprecipitarlos con un anticuerpo especíﬁco para GAL4, y posteriormente revelarlos con un anticuerpo frente a p300 para asesorarnos de la expresión de los transfectantes (Fig. 2B). Los extractos inmunoprecipitados fueron entonces utilizados como sustratos de sucesivos ensayos quinasa usando PKC-ζ, ε y θ, previamente obtenidos de células Jurkat y Jurka t estimuladas con PMA/Ion. Los resultados muestran que ni PKC-ζ,ni ε fueron capaces de fosforilar la construcción GAL4-p300 (192-703) que comprende el extremo N-terminal de p300, mientras que PKC-θ fosforiló esta proteína de fusión, revelando la importancia de PKC-θ en la fosforilación de este dominio regulador p300. Además, se observó un menor nivel de fosforilación cuando GAL4-p300 (192-703) se usó el mutante S384A como substrato (Fig. 2C), conﬁrmando la relevancia de la S384 como diana de la PKC-θ en células T. Para reconﬁrmar el papel de A238L y de PKC-θ en la inhibición de la activación de p300, células Jurkat-pcDNA o Jurkat-A238L fueron transfectadas con el vector vacío pEFneo, pEF-PKC-θ wt, o con un vector que expresa un mutante constitutivamente activo de PKC-θ (pEF-PKC-θ A/E) y además con GAL4-p300 de cadena completa (full-length o FL) o la construcción N-terminal (192-703), junio con el plásmido reportero GAL4-luc, como se describe en el ejemplo 1. La Fig. 2D muestra cómo la sobre-expresión del mutante constitutivamente activo PKC-θ (pEF-PKC-θA/E), revierte completamente la inhibición inducida por A238L, incrementando por tanto la relevancia de PKC-θ en el mecanismo de inhibición llevado a cabo por la proteína viral. Los resultados también indican que PKC-θ debe estar activada para ejercer su función, un punto que ya se había establecido previamente por otros laboratorios. Para demostrar la relación entre PKC-θ y la inhibición inducida por A238L, se inmunoprecipitó la quinasa de Jurkat-pcDNA y Jurkat-A238L, previamente transfectadas con GAL4-p300 (192-703) wt. La Fig. 2E muestra la presencia de GAL4-p300 (192-703) en los inmunoprecipitados de células Jurkat-pcDNA estimuladas, pero no en las Jurkat-A238L.

En su conjunto, estos datos demuestran que la expresión de la proteína viral interﬁere con la asociación de PKC-θ con la región N-terminal de p300, controlando simultáneamente la transactivación de NF-κB-p65, NF-ATc2, y c-Jun y representando un nuevo y soﬁsticado mecanismo viral de bloqueo de la respuesta inﬂamatoria. Finalmente y para corroborar aún mas la relevancia de la S384 en la actividad de p300, usamos células Jurkat transfectadas con GAL4p300 (FL) o con GAL4-p300 (192-703), para inmunoprecipitar las construcciones con un anti-Gal4 Ab o IgG control. Los immunoprecipitados fueron analizados en Western blot usando un anticuerpo especiﬁco frente a acetilisina, para investigar el nivel de acetilación de los mutantes S384A comparados con los wt. Los resultados mostraron (Fig. 3) que la mutación de Ser384 por alanina decrece fuertemente el nivel de acetilación, tanto de las construcciones que expresan la p300 completo, como las del dominio terminal TAD, indicando que este residuo mes probablemente responsable de la completa activación del co-activador p300.

Ejemplo 3

Se generan líneas celulares derivadas de células Jurkat que expresan p300 y que comprenden un plásmido que comprende el gen reportero luciferasa bajo el control transcripcional de varios motivos kB de unión de NF-κB(pκB-Luc), líneas celulares que expresan el mutante S384A de p300 y que contienen el plásmido pκB-Luc, células que expresan el fragmento formado por los amino ácidos 192-703 de p300 de origen humano y que contienen el plásmido pκB-Luc y líneas celulares que expresan el fragmento formado por los amino ácidos 192-703 de p300 de origen humano con la mutación S193A (correspondiente al amino ácido 384 en la secuencia completa de p300) y que contienen el plásmido pκB-Luc. Tras la selección de aquellas líneas celulares que contienen ambos plásmidos, se determina la actividad luciferasa en las distintas líneas celulares.

Ejemplo 4

Las líneas celulares generadas que expresan p300-S384D y que comprenden el gen pκB-Luc según el ejemplo 5 se hacen crecer sobre placas multipocillo. En cada uno de los pocillos de dichas placas se añade un compuesto seleccionado de una librería combinatoria de compuestos y se determina la variación en la actividad luciferasa usando métodos de alta capacidad de procesamiento. Se identiﬁcan aquellos compuestos que provoquen una disminución de la actividad del gen reportero en comparación con el control.

Ejemplo 5

Se transfectan de forma estable células Jurkat con un primer plásmido que codiﬁca p300 o el mutante S384D de p300 y con pκB-Luc. Una vez seleccionadas líneas celulares que contienen las dos combinaciones de plásmidos, se determina la actividad luciferasa en ambas líneas celulares y se comparan los valores obtenidos con las células que expresan la forma nativa de p300 con las células que expresan el mutante de p300.

Se transfectan de forma estable células Jurkat con un primer plásmido que codiﬁca la proteína GAL4-p300 (192703) o con un plásmido que codiﬁca la proteína GAL4-p300 (192-703) S384D y con un segundo plásmido que comprende el gen reportero luciferasa bajo el control transcripcional de varios sitios de unión GAL4. Tras la selección de aquellas líneas celulares que contienen ambos plásmidos, se determina la actividad luciferasa en las distintas líneas celulares.

Ejemplo 6

Se generan líneas celulares estables que comprenden un vector que permite la expresión de GAL4-p300 (192703) o GAL4-p300 (192-703) S384A, un segundo vector que permite la expresión de pEF-PKC-θ wt o de un mutante constitutivamente activo de PKC-θ (pEF-PKC-θ A/E) y un tercer vector que comprende un gen reportero bajo el control de varios elementos de unión de NF-κB. Se determinará la actividad del gen reportero en las distintas líneas celulares con el ﬁn de determinar si la fosforilación de S384 en p300 mediada por PKC-θ es capaz de estimular la activación transcripcional mediada por NF-κB.

Claims

REIVINDICACIONES

1.

Un polipéptido que comprende una variante de la secuencia SEQ ID NO: 1 cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada.
2.

Un polipéptido según la reivindicación 1 en donde dicha variante comprende en posición 193 de la secuencia SEQ ID NO: 1 un análogo estructural de un fosfoaminoácido.
3.

Un polipéptido según la reivindicación 2 en donde el amino ácido en posición 193 en la secuencia de SEQ ID NO: 1 es Asp.
4.

Un polinucleótido que codiﬁca un polipéptido tal que deﬁnido en las reivindicaciones 1 a 3.
5.

Una construcción génica que comprende un polinucleótido según la reivindicación 4.
6.

Un vector que comprende un polinucleótido según la reivindicación 4 o una construcción génica según la reivindicación 5.
7.

Una célula que comprende un polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, un polinucleótido según la reivindicación 4, una construcción génica según la reivindicación5ounvector según la reivindicación 6.
8.

Un animal transgénico no humano que comprende, integrado en su genoma, un polinucleótido según la reivindicación 4.
9.

Un polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, un polinucleótido según la reivindicación 4, una construcción génica según la reivindicación 15 o un vector según la reivindicación 6 para su uso en medicina.
10.

Una composición farmacéutica que comprende un polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones1a3, un polinucleótido según la reivindicación 4, una construcción génica según la reivindicación 5 o un vector según la reivindicación 6 junto con un excipiente farmacéuticamente aceptable.
11.

Uso de un polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, un polinucleótido según la reivindicación 4, una construcción génica según la reivindicación 5 o un vector según la reivindicación 6 para la preparación de un medicamento para el tratamiento de trastornos causados por una inhibición indeseada de la actividad de las proteínas p300, NF-κB, NF-AT y/o c-jun.
12.

Uso según la reivindicación 11 en done el trastorno está causado por una inhibición indeseada de la actividad la proteína NF-κB.
13.

Uso según la reivindicación 12 en donde el trastorno causado por una inhibición indeseada de la actividad la proteína NF-κB se selecciona del grupo de una enfermedad asociada a la apoptosis, una enfermedad asociada al sistema inmune, una enfermedad de los vasos sanguíneos, un defecto cutáneo, un defecto dental, osteopetrosis, un defecto oftalmológico, un defecto neurológico e incontinentia pigmenti.
14.

Uso según la reivindicación 13 en donde el trastorno causado por una inhibición indeseada de la actividad la proteína NF-AT se selecciona del grupo de una enfermedad hipoinmune, una enfermedad infecciosa y un trastorno debido a una inhibición del desarrollo en algún órgano durante el desarrollo.
15. Un método para la identiﬁcación de compuestos antitumorales que comprende las etapas de:

(i) poner en contacto una célula que comprende

(a)

un polipéptido de fusión que comprende un primer componte formado por la secuencia SEQ ID NO: 1 o una variante de la misma cuya actividad trans-activadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada y un segundo componente formado por un dominio de unión a ADN y

(b)

un gen reportero acoplado operativamente a un promotor que comprende al menos una copia del sitio al que se une el dominio de unión de ADN presente en el polipéptido (i)

con un compuesto cuya actividad antitumoral se desea ensayar y

(ii) identiﬁcar aquellas células en las que se produzca una disminución de la expresión del gen reportero

en donde el compuesto es antitumoral si provoca una disminución de la expresión del gen reportero.
16.

Un método según la reivindicación 15 en donde la variante de la secuencia SEQ ID NO: 1 cuya actividad transactivadora de la transcripción se encuentra constitutivamente activada comprende una sustitución del amino ácido en posición 193 en dicha secuencia por un análogo estructural de un fosfoamino ácido.
17.

Un método según la reivindicación 16 en donde el análogo estructural de un fosfoamino ácido es Asp.
18.

Un método según la reivindicación 15 en donde el polipéptido (i) comprende la secuencia SEQ ID NO: 1.
19.

Un método según la reivindicación 18 en donde la célula que se usa en la etapa (i) comprende, adicionalmente, un gen que codiﬁca PKC-θ.
20.

Un método según la reivindicación 19 en donde el gen que codiﬁca PKC-θ se encuentra operativamente controlado por un promotor inducible.
21.

Un método según cualquiera de las reivindicaciones 15 a 20 en donde el método se lleva a cabo mediante un ensayo de alta capacidad de procesamiento.

LISTA DE SECUENCIAS

<110> CSIC

<120> COMPOSICIONES Y MÉTODOS PARA MODULAR LA ACTIVIDAD DE p300

<130> P3657ES01

<150> P200800295

<151> 2008-02-04

<150> ES200800295

<151> 2008-02-04

<160> 4

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 512

<212> PRT

<213> Homo sapiens

<400> 1

<210> 2

<211> 2414

<212> PRT

<213> Homo sapiens

<400> 2

<210> 3

<211> 512

<212> PRT

<213> Homo sapiens

<400> 3

<210> 4

<211> 512

<212> PRT

<213> Homo sapiens

<400> 4

OFICINA ESPANOLA DE PATENTES Y MARCAS ESPANA

INFORME SOBRE EL ESTADO DE LA TECNICA

51 Int. Cl. Ver Hoja Adicional

21 N.o solicitud: 201030004 22 Fecha de presentaci6n de la solicitud: 05.01.2010 32 Fecha de prioridad:

DOCUMENTOS RELEVANTES

Categoria

Documentos citados Reivindicaciones afectadas

A

SNOWDEN, A.W. et al. "A novel transcriptional repression domain mediates p21WAF1/CIP1 1-21

induction of p300 transactivation". MOLECULAR AND CELLULAR BIOLOGY. 01.04.2000.

Vol. 20, No. 8, paginas 2676-2686; todo el documento, especialmente Fig. 3.

A

WO 9528499 A1 (DANA-FARBER CANCER INSTITUTE INC.) 26.10.1995, todo el documento. 1-21

Categoria de los documentos citados X: de particular relevancia Y: de particular relevancia combinado con otro/s de la misma categoria A: refleja el estado de la tecnica O: referido a divulgaci6n no escrita P: publicado entre la fecha de prioridad y la de presentaci6n de la solicitud E: documento anterior, pero publicado despues de la fecha de presentaci6n de la solicitud

El presente informe ha sido realizado � para todas las reivindicaciones � para las reivindicaciones no:

Fecha de realizaci6n del informe 28.02.2011

Examinador M. Novoa Sanjurjo Pagina 1/4

INFORME DEL ESTADO DE LA TECNICA

No de solicitud: 201030004

CLASIFICACION OBJETO DE LA SOLICITUD

C07K14147 (01.01.2006) A61K38117 (01.01.2006) A01K671027 (01.01.2006) A61P37100 (01.01.2006)

Documentaci6n minima buscada (sistema de clasificaci6n seguido de los simbolos de clasificaci6n)

C07K, A61K, A01K, A61P

Bases de datos electr6nicas consultadas durante la busqueda (nombre de la base de datos y, si es posible, terminos de busqueda utilizados)

INVENES, EPODOC, PAJ, REGISTRY, HCAPLUS, BIOSIS, EMBASE, MEDLINE

Informe del Estado de la Tecnica Pagina 2/4

OPINION ESCRITA

No de solicitud: 201030004

Fecha de Realizaci6n de la Opini6n Escrita: 28.02.2011

Declaraci6n

Novedad (Art. 6.1 LP 11/1986)

Reivindicaciones 1-21 SI

Reivindicaciones

NO

Actividad inventiva (Art. 8.1 LP11/1986)

Reivindicaciones 1-21 SI

Reivindicaciones

NO

Se considera que la solicitud cumple con el requisito de aplicaci6n industrial. Este requisito fue evaluado durante la fase de examen formal y tecnico de la solicitud (Articulo 31.2 Ley 11/1986).

Base de la Opini6n.-

La presente opini6n se ha realizado sobre la base de la solicitud de patente tal y como se publica.

Consideraciones

La invenci6n consiste en la variantes S193D de la SEQ ID no 1. La SEQ ID no 1 a su vez, es una proteina que corresponde a la secuencia 192-703 de la proteina p300. La variante S193D de la SEQ ID no1, tiene la actividad transactivadora de la transcripci6n constitutivamente activada, Esta variante se utiliza en la preparaci6n de composiciones farmaceuticas para tratar enfermedades causadas por una inhibici6n de la actividad de las proteinas p300, NF-kB, NF-AT y/o c-jun.

Informe del Estado de la Tecnica Pagina 3/4

OPINION ESCRITA

No de solicitud: 201030004

1. Documentos considerados.-

A continuaci6n se relacionanlos documentos pertenecientes al estado de la tecnica tomados en consideraci6n para la realizaci6n de esta opini6n.

Documento

Numero Publicaci6n o Identificaci6n Fecha Publicaci6n

D01

SNOWDEN, A. W. e t a l. " A n ovel t ranscriptional r epression domain m ediates p21WAF1/CIP1 i nduction of p30transactivation". MOLECULAR AND CELLULAR BIOLOGY. 01.04.2000. Vol. 20, No. 8, paginas 2676-2686; todo el documento, especialmente Fig. 3. 0

D02

WO 9528499 A1 (DANA-FARBER CANCER INSTITUTE INC.) 26.10.1995, todo el documento.

El documento D01, describe la obtenci6n del derivado 192-703 de la proteina p300. El documento D02, describe la secuencia de la proteina p300.
2. Declaraci6n motivada segun los articulos 29.6 y 29.7 del Reglamento de ejecuci6n de la Ley 11/1986, de 20 de marzo, de Patentes sobre la novedad y la actividad inventiva; citas y explicaciones en apoyo de esta declaraci6n

La variante de la SEQ ID no 1 en la que el aminoacido de la posici6n 193 es Asp, es nueva y tiene actividad inventiva Los documentos citados solo muestran el estado general de la tecnica y no se consideran de particular relevancia, ya que para una persona experta en la materia no seria obvio aplicar las caracteristicas de los documentos citados y llegar a la invenci6n tal como se contempla en las reivindicaciones. Por tanto, el objeto de la presente solicitud, cumple los requisitos de novedad, actividad inventiva de acuerdo a los Art. 6 y 8 de la LP.

Informe del Estado de la Tecnica Pagina 4/4