ES2349285T3 - Iniciación de fermentación. - Google Patents
Iniciación de fermentación. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2349285T3 ES2349285T3 ES04738952T ES04738952T ES2349285T3 ES 2349285 T3 ES2349285 T3 ES 2349285T3 ES 04738952 T ES04738952 T ES 04738952T ES 04738952 T ES04738952 T ES 04738952T ES 2349285 T3 ES2349285 T3 ES 2349285T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- microbial organism
- microbial
- acid
- organism
- range
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims description 76
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims description 76
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 title description 5
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 392
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 claims abstract description 204
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 172
- BJEPYKJPYRNKOW-REOHCLBHSA-N (S)-malic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](O)CC(O)=O BJEPYKJPYRNKOW-REOHCLBHSA-N 0.000 claims abstract description 102
- BJEPYKJPYRNKOW-UHFFFAOYSA-N alpha-hydroxysuccinic acid Natural products OC(=O)C(O)CC(O)=O BJEPYKJPYRNKOW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 100
- 235000011090 malic acid Nutrition 0.000 claims abstract description 100
- 239000001630 malic acid Substances 0.000 claims abstract description 98
- 235000015203 fruit juice Nutrition 0.000 claims abstract description 50
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 claims abstract description 47
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 46
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 claims abstract description 23
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 claims abstract description 23
- 230000000593 degrading effect Effects 0.000 claims abstract description 14
- 235000014101 wine Nutrition 0.000 claims description 143
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 108
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 73
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 67
- 241000192134 Oenococcus oeni Species 0.000 claims description 60
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 claims description 45
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 claims description 42
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 claims description 40
- 235000019674 grape juice Nutrition 0.000 claims description 39
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 claims description 33
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 claims description 32
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 23
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 23
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 23
- 229930091371 Fructose Natural products 0.000 claims description 21
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 claims description 21
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 claims description 21
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 claims description 19
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 18
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 16
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 12
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 claims description 11
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 claims description 8
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 claims description 8
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims description 7
- 230000001332 colony forming effect Effects 0.000 claims description 6
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 claims description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 6
- 235000020095 red wine Nutrition 0.000 claims description 6
- 235000020097 white wine Nutrition 0.000 claims description 6
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 claims description 5
- 230000006698 induction Effects 0.000 claims description 5
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 claims description 5
- 235000015040 sparkling wine Nutrition 0.000 claims description 5
- 241000207199 Citrus Species 0.000 claims description 4
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-N Sulfurous acid Chemical compound OS(O)=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 241000219095 Vitis Species 0.000 claims description 4
- 235000009754 Vitis X bourquina Nutrition 0.000 claims description 4
- 235000012333 Vitis X labruscana Nutrition 0.000 claims description 4
- 235000014787 Vitis vinifera Nutrition 0.000 claims description 4
- 235000020971 citrus fruits Nutrition 0.000 claims description 4
- 241001515965 unidentified phage Species 0.000 claims description 3
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 86
- 229940099690 malic acid Drugs 0.000 description 79
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 44
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 39
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 32
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 23
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 15
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 12
- 239000000047 product Substances 0.000 description 12
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 11
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 11
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 10
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 10
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 8
- 235000010419 agar Nutrition 0.000 description 7
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 7
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 7
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 6
- 239000002577 cryoprotective agent Substances 0.000 description 5
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 5
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 5
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 5
- QSJXEFYPDANLFS-UHFFFAOYSA-N Diacetyl Chemical group CC(=O)C(C)=O QSJXEFYPDANLFS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 4
- 241000202223 Oenococcus Species 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 4
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 4
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 4
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 4
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 4
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 4
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 4
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 4
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 4
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 4
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 4
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 4
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 4
- 229920000136 polysorbate Polymers 0.000 description 4
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 4
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 4
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 3
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 3
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 2
- 240000000560 Citrus x paradisi Species 0.000 description 2
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 2
- 241000206672 Gelidium Species 0.000 description 2
- 241001158692 Sonoma Species 0.000 description 2
- FEWJPZIEWOKRBE-UHFFFAOYSA-N Tartaric acid Natural products [H+].[H+].[O-]C(=O)C(O)C(O)C([O-])=O FEWJPZIEWOKRBE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000007605 air drying Methods 0.000 description 2
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 2
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 2
- 229940071162 caseinate Drugs 0.000 description 2
- 230000001925 catabolic effect Effects 0.000 description 2
- 239000013065 commercial product Substances 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 2
- 238000002036 drum drying Methods 0.000 description 2
- 150000002085 enols Chemical class 0.000 description 2
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 description 2
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 2
- 229940116298 l- malic acid Drugs 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 2
- 239000011975 tartaric acid Substances 0.000 description 2
- 235000002906 tartaric acid Nutrition 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- 238000011514 vinification Methods 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- IVEXWRHLJIZLHF-UHFFFAOYSA-N 1-(2-hydroxyethyl)-1-nitrosourea Chemical compound NC(=O)N(N=O)CCO IVEXWRHLJIZLHF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZGONASGBWOJHDD-UHFFFAOYSA-N 1-ethyl-2-nitro-1-nitrosoguanidine Chemical compound CCN(N=O)C(N)=N[N+]([O-])=O ZGONASGBWOJHDD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010023063 Bacto-peptone Proteins 0.000 description 1
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 description 1
- OFOBLEOULBTSOW-UHFFFAOYSA-N Malonic acid Chemical compound OC(=O)CC(O)=O OFOBLEOULBTSOW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 description 1
- 102000014171 Milk Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010011756 Milk Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000192001 Pediococcus Species 0.000 description 1
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 1
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 1
- 241000220317 Rosa Species 0.000 description 1
- 235000005073 Rosa x alba Nutrition 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 230000003466 anti-cipated effect Effects 0.000 description 1
- 238000003149 assay kit Methods 0.000 description 1
- 238000000889 atomisation Methods 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N beta-maltose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QUYVBRFLSA-N 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 230000003139 buffering effect Effects 0.000 description 1
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 230000002542 deteriorative effect Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000000796 flavoring agent Substances 0.000 description 1
- 235000019634 flavors Nutrition 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 125000002791 glucosyl group Chemical group C1([C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O1)CO)* 0.000 description 1
- 235000015201 grapefruit juice Nutrition 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 239000003999 initiator Substances 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 230000003340 mental effect Effects 0.000 description 1
- 235000021239 milk protein Nutrition 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- 150000002763 monocarboxylic acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 210000003254 palate Anatomy 0.000 description 1
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 230000001953 sensory effect Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L sulfite Chemical compound [O-]S([O-])=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 235000021122 unsaturated fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 150000004670 unsaturated fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000000052 vinegar Substances 0.000 description 1
- 235000021419 vinegar Nutrition 0.000 description 1
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
- 238000004149 wine analysis Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
- C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
- C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
- C12G1/0203—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12H—PASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
- C12H1/00—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
- C12H1/003—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process
- C12H1/006—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process using bacterial cultures
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
- C12P7/56—Lactic acid
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physiology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Organismo microbiano aislado y purificado, en donde dicho organismo microbiano es capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico, y en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio conteniendo una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico, y en donde el organismo microbiano tiene al menos una de las siguientes características, cuando dicho organismo microbiano en un estado congelado o liofilizado es añadido directamente en un zumo de frutas fermentado: i) un índice de supervivencia que es al menos 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 y comprendiendo al menos 12 vol% de etanol. ii) un índice de supervivencia que es al menos 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 comprendiendo al menos 13.9 vol% de etanol.
Description
Iniciación de fermentación.
La presente invención se refiere a métodos y
composiciones para la iniciación de, al igual que a métodos de
fermentación en una composición líquida comprendiendo un compuesto
fermentable. En particular la invención se refiere a métodos y
composiciones para la iniciación de la fermentación maloláctica
durante la producción de vino.
El vino contiene ácido L-málico
en la gama de 1 a 10 g/L. La cantidad de ácido málico depende en
gran medida de las condiciones climáticas. Por lo tanto, los vinos
producidos en zonas más frías tienden a tener una concentración
relativa mayor. De un punto de vista de gusto y sabor, el ácido
málico es considerado indeseable en la mayoría de los vinos tintos
y en varios tipos de vinos blancos y vinos espumantes y desde un
punto de vista práctico/económico el ácido málico es indeseable ya
que puede ayudar al crecimiento de bacterias en el vino después de
haber sido embotellado.
Durante la fermentación alcohólica sólo una
pequeña parte del presente ácido málico es degradado por la
levadura. No obstante, el contenido de ácido málico en un vino puede
ser eficazmente reducido por la denominada fermentación maloláctica
(FML) que ocurre normalmente después de la finalización de la
fermentación alcohólica. La FML resulta de la actividad catabólica
de varias bacterias del ácido láctico, incluyendo especies
pertenecientes a los géneros de Lactobacillus, Pediococcus y
Oenococcus.
Las bacterias pueden estar presentes en el vino
como parte de la flora microbiana endógena, o pueden haber sido
añadidas como un cultivo bacteriano iniciador. Las especies de
bacterias más preferibles por los vinicultores son Oenococcus
oeni, conocido anteriormente como Leuconostoc oenos. La
fase catabólica es adentrada usualmente, cuando las bacterias
malolácticamente activas durante la fase de crecimiento han
alcanzado una densidad de población de aproximadamente 10^{6}
unidades formadoras de colonias (UFC) por ml en el vino. Durante el
FML las bacterias degradan el ácido málico, un ácido dicarboxílico,
un ácido láctico, un ácido monocarboxílico. Como resultado de esto
la acidez del vino disminuye y el pH aumenta, dando como resultado
un vino con un paladar más suave. Dentro del campo, la fermentación
maloláctica se considera completada cuando la concentración de
ácido málico en el vino es inferior a 30 mg/l (Zoecklein et
al., en Wine Analysis and Production, Chapman and Hall, p
296).
No obstante, durante la fermentación maloláctica
la Oenococcus oeni también degrada el ácido cítrico, que
normalmente está presente en el vino en una concentración de
0.3-0.9 g/l. El catabolismo del ácido málico y
ácido cítrico en general no es concomitante, sino secuencial, es
decir la degradación de ácido cítrico es retrasada en comparación
con la fermentación de ácida málico (véase por ejemplo Nielsen et
Al., 1999, Appl. Environ. Microbiol.,
65:740-745 and Viljakainen and Laakso, 2000, Eur.
Food Res. Technol., 211:438-442). El grado de
retraso depende de las bacterias específicas y del vino. La
degradación de ácido cítrico a menudo es indeseada ya que el vino
pierde algo de la frutosidad que es apreciada en la mayoría de los
vinos. Otro efecto indeseado e inevitable de la degradación de
ácido cítrico por Oenococcus oeni durante la FML es la
producción de ácido acético, que es uno de los productos finales de
la degradación del ácido cítrico. La concentración de ácido acético
en el vino puede incrementarse con 0.1-0.3 g/l
durante la FML. El ácido acético es altamente indeseado ya que da
al vino un desagradable sabor a vinagre en concentración mayor y el
vinicultor pone mucha atención en mantener la concentración de
ácido acético en el vino lo más baja posible durante las diferentes
fases de la vinificación. Aparte de las bacterias del ácido láctico
las otras fuentes de ácido acético en la vinificación son levadura
y bacterias del ácido acético. Un importante compuesto intermediario
en el metabolismo del ácido cítrico por Oenococcus oeni es
diacetilo. Cuando está presente en concentración superior al umbral
sensorial, el diacetilo da al vino un aroma mantecoso que es
indeseado en la mayoría de los vinos tintos. No obstante, en
algunos vinos blancos, p. ej. el Chardonnay el aroma puede ser
apreciado.
Como el vinicultor a menudo prefiere ejercer un
grado mayor de control sobre el proceso de fermentación maloláctica
se ha vuelto una práctica común cada vez más en la industria de los
vinos el inducir la fermentación mediante el uso de cultivos
iniciadores concentrados congelados o liofilizados disponibles
comercialmente de Oenococcus oeni, que están inoculados
directamente en el vino sin rehidratación previa ni etapa de
activación alguna. La utilidad de un cultivo congelado concentrado o
liofilizado que es inoculado directamente en el vino depende mucho
del índice de supervivencia del cultivo de bacterias después de la
inoculación. La transición de las bacterias de un medio de
propagación fácil con pH alto y alto nivel de nutrición a la
condición hostil en vino con concentración de etanol alta, pH bajo,
bajo nivel de nutrición, y presencia de SO_{2} es muy estresante
para las bacterias y puede resultar en índices de supervivencia
inferiores al 1% en el vino inoculado.
Típicamente, el medio de propagación que se
describe para las bacterias del ácido láctico, incluyendo la
Oenococcus oeni, contienen varios nutrientes tales como
vitaminas, minerales, extracto de levadura y azúcares. La cantidad
de azúcares en los medios normalmente están dentro de los
20-50 g/l ya que las concentraciones superiores de
azúcares se considera que reducen o inhiben el crecimiento de las
bacterias del ácido láctico. En la técnica anterior las
concentraciones superiores de azúcares en el medio de propagación se
han considerado por lo tanto, no ser de uso práctico o de interés
económico.
Los cultivos liofilizados de una cepa de
Oenococcus oeni, que no fermentan el ácido cítrico en el vino
durante la fermentación maloláctica, están disponibles
comercialmente. Hay varias ventajas de usar esta cepa para la
fermentación maloláctica en vino. La frutosidad del vino es
conservada, no hay producción de ácido acético durante la
fermentación maloláctica y no hay producción del sabor mantecoso, el
diacetilo. No obstante, los cultivos comerciales de esta cepa en el
mercado no pueden ser usados para la inoculación directa en vino ya
que esto resulta en un índice de supervivencia que no es de uso
práctico. Según los manuales de aplicación comercial de los
productos, los cultivos liofilizados necesitan rehidratación y un
procedimiento de adaptación implicando varias etapas antes de que
las bacterias puedan ser inoculadas en el vino. La primera etapa
puede implicar la disolución del producto liofilizado en 5 L de
mitad agua, mitad zumo de uva o vino añadido a diferente nutrición.
Después de 5-7 días de incubación el precultivo es
diluido con 20-200 L de vino que es incubado
durante otros 2-12 días antes de la inoculación
final en el tanque de producción con vino. Las etapas de adaptación
conllevan mucho tiempo y trabajo para el vinicultor ya que tiene que
seguir las etapas de adaptación cuidadosamente, y hay un alto
riesgo de contaminación con las bacterias de deterioro y levadura
ya que las etapas de adaptación bajo las condiciones prácticas en
las vinificadoras no pueden ser llevadas a cabo bajo condiciones
estériles.
WO 9320180 divulga un método para inducir la
fermentación maloláctica en vino o zumo de frutas por la
inoculación directa de un concentrado de un cultivo iniciador que
contiene una cepa malolácticamente activa de bacterias
seleccionada, con un índice de supervivencia de al menos 80% cuando
es introducido en un vino con un pH de 3.2 o inferior y que
contiene al menos 25 mg de SO_{2} por cada L y al menos 12 vol% de
etanol, y es capaz de iniciar la fermentación maloláctica cuando es
añadida directamente al vino o zumo de frutas en una concentración
de menos de 10^{7} unidades formadoras de colonias por cada ml.
Dicha cepa de bacterias también es capaz de degradar ácido cítrico.
El documento indica claramente que la habilidad de las cepas de
bacterias de sobrevivir a la inoculación directa en vino está
vinculada a la genética de la cepa seleccionada. Según la
divulgación, las cepas seleccionadas de bacterias son propagadas
según procesos que son bien conocidos en la técnica.
US 6,284,518 B1 divulga un medio para la
propagación de diferentes especies de bacterias del ácido láctico,
incluyendo la Oenococcus oeni. Según la divulgación una
característica clave de la invención es el uso de una mezcla de
fructosa/glucosa donde la fructosa es la fuente primaria de
carbohidrato. Mezclas de fructosa/glucosa que contienen entre 3%
hasta aproximadamente un 45% de glucosa pueden ser empleadas,
preferiblemente la cantidad es de entre 5% y aproximadamente 40% de
glucosa. Lo más preferible, la cantidad es inferior al 20% de la
mezcla. En los medios divulgados, según ocurre el crecimiento de la
biomasa, el pH se deja descender. La cantidad de fuente de
carbohidrato en el medio divulgado es entre 30 g/l a 60 g/l. El
documento describe que 10^{6}-10^{7}
bacterias/ml son inoculadas en el medio y entonces las bacterias son
propagadas durante 6-8 días antes de que las
bacterias puedan ser inoculadas en el vino.
En US 4,562,077 es divulgado un método para la
reducción de ácido málico a ácido láctico en vino que comprende la
inoculación de un concentrado de cultivo en zumo de frutas no
estéril que contiene una fuente de nitrógeno para proporcionar
aproximadamente 10^{7} a 10^{10} bacterias por cada ml. Después
de esta etapa de activación, la mezcla de zumo de frutas y
bacterias es introducida en el vino o mosto de uva para producir
vino con un contenido reducido de ácido málico. Las condiciones de
activación divulgadas son un periodo de activación de 48 a 72 horas
a 18ºC a 25ºC.
Carrié et al., 2002, Revue des oenologues
103: 16-18 describe varias bacterias fermentadoras
de ácido málico, algunas de las cuales pueden ser inoculadas
directamente en el vino. El documento describe además la
concentración de ácido cítrico en vino después/durante la
fermentación maloláctica con estas bacterias. Se desprende de la
Fig. 1 del documento que la fermentación maloláctica es completada
para sólo una de las cepas investigadas (cepa F). Así, la
concentración de ácido cítrico es determinada antes de o a la
finalización de la fermentación maloláctica. Debido a que la
fermentación de ácido cítrico es retrasada en comparación con la
fermentación de ácido málico (véase aquí arriba), la concentración
de ácido cítrico es determinada antes de la finalización de la
degradación de ácido cítrico. El documento es silencioso en respecto
a si las bacterias divulgadas en este son capaces de degradar ácido
cítrico. Porque las bacterias del ácido láctico normalmente son
capaces de degradar ácido cítrico, debe ser anticipado que las
bacterias divulgadas en el documento son capaces de degradar ácido
cítrico.
Nielsen et al., 1996 Am. J. Enol. Vitic.
47:42-48 describe los cultivos bacterianos de
Leuconostoc oenos capaces de fermentar ácido málico a ácido
láctico. Las bacterias pueden ser inoculadas directamente en el
vino. Las bacterias son capaces de degradar el ácido cítrico.
Nielsen y Richelieu, 1999, Appl. Environ.
Microbiol. 65:740-745 describe la fermentación
maloláctica y describe que la degradación de ácido cítrico es
retrasada en comparación con la degradación del ácido málico.
US 5,460,837 describe un método de iniciar la
fermentación maloláctica cultivando bacterias malolácticamente
activas en un medio que comprende 0,05 a 0,5% de glucosa, la
separación de la biomasa y opcionalmente la liofilización. Los
cultivos liofilizados pueden ser inoculados directamente en el
vino.
Es por tanto un objeto de la presente invención
proporcionar métodos mejorados de inducir procesos de fermentación
específicos en una composición líquida.
Por lo tanto, en un aspecto, la presente
invención se refiere a la inducción de procesos de fermentación
específicos en una composición líquida que comprende al menos un
compuesto fermentable al igual que a organismos microbianos para el
uso en dichos métodos.
En particular la presente invención proporciona,
en comparación con los métodos conocidos, un método mejorado
significativo de inducir la fermentación maloláctica en vino o zumo
de frutas sin la concomitante degradación de ácido cítrico,
producción de ácido acético, y producción de diacetilo aquí dentro
de un periodo temporal corto por la inoculación de vino o un zumo
de frutas directamente con una composición de cultivo concentrada
de bacterias no fermentadoras del ácido cítrico y malolácticamente
activas en una concentración económicamente factible y por
consiguiente, evitar los procesos tediosos, arriesgados y costosos
de rehidratación, activación, y adaptación que son
requeridos
en la actualidad con los cultivos iniciadores no fermentadores del ácido cítrico malolácticamente comerciales.
en la actualidad con los cultivos iniciadores no fermentadores del ácido cítrico malolácticamente comerciales.
También, la presente invención proporciona, en
comparación con los métodos conocidos, un método mejorado
significativo de inducir la fermentación maloláctica en vino o zumo
de frutas dentro de un periodo temporal corto por la inoculación de
vino o un zumo de frutas con una solución de cultivo concentrada
especialmente activada de bacterias fermentadoras del ácido cítrico
o no fermentadoras del ácido cítrico malolácticamente activas a una
concentración económicamente factible y por consiguiente, para
evitar el lapso y fase muerta observada cuando los cultivos
iniciadores malolácticos secos comerciales son inoculados
directamente en vino y también para mejorar significativamente los
tediosos, arriesgados y costos procesos de rehidratación,
activación, y adaptación que son requeridos en la actualidad con
los cultivos malolácticos iniciadores comerciales no adecuados para
la inoculación directa en vino.
Es por tanto un primer objetivo de la presente
invención proporcionar organismos microbianos aislados y
purificados, en donde dichos organismos microbianos son capaces de
fermentar ácido málico a ácido láctico, y en donde dicho organismo
microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad
predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como
mucho un 80% de dicho ácido cítrico, y en donde el organismo
microbiano tiene al menos una de las siguientes características,
cuando dicho organismo microbiano en un estado congelado o
liofilizado es añadido directamente en un zumo de frutas
fermentado:
- i)
- un índice de supervivencia que es al menos de un 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 y que comprende al menos un 12 vol% de etanol
- ii)
- un índice de supervivencia que es al menos de un 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 que comprende al menos 13.9 vol% de etanol.
\vskip1.000000\baselineskip
Por lo tanto, dicho organismo microbiano puede
ser añadido directamente en por ejemplo un zumo de frutas durante
la producción de vino sin alguna adaptación precedente. Es en
general, laborioso adaptar las bacterias para el crecimiento en
zumo de frutas fermentado y hay un alto riesgo de contaminación
usando el procedimiento de adaptación convencional, en particular
en una vinificadora normal donde la adaptación a menudo no puede
ser hecha bajo condiciones estériles.
Es también un objetivo de la presente invención
proporcionar un concentrado que comprende o que consiste en dicho
organismo(s) microbiano, en donde dicho concentrado tiene un
contenido de unidades formadoras de colonias que está en la gama de
10^{9} a 10^{12} por cada g.
Es un segundo objetivo de la presente invención
proporcionar métodos para degradar preferentemente ácido málico
sobre ácido cítrico en una composición líquida que comprende ácido
málico y ácido cítrico, dichos métodos que comprenden las etapas
de
- i)
- proporcionar una composición líquida que comprende ácido málico y ácido cítrico;
- ii)
- proporcionar un organismo microbiano capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico, y en donde dicho organismo microbiano ha sido congelado o liofilizado,
- iii)
- añadir dicho organismo microbiano liofilizado o congelado directamente a dicha composición líquida
- iv)
- incubar dicha composición líquida y dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación de al menos un 70% del ácido málico,
- v)
- obteniendo así una composición final de líquido que comprende menos del 30% del ácido málico inicial y al menos un 20% del ácido cítrico inicial.
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente dicho organismo microbiano tiene
al menos una de las mencionadas características resumidas aquí.
Es un tercer objetivo de la presente invención
proporcionar métodos para inducir la fermentación maloláctica
durante la producción de vino, que comprende las etapas de
- i)
- proporcionar un zumo de uva o un zumo de uva fermentado
- ii)
- proporcionar un organismo microbiano capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico,
- iii)
- incubar dicho zumo de uva o zumo de uva fermentado con dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación del ácido málico,
- iv)
- inducir así la fermentación maloláctica
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente dicho organismo microbiano tiene
al menos una de las mencionadas características resumidas aquí.
Es otro objetivo de la presente invención
proporcionar métodos para producir el mencionado organismo
microbiano que se describe aquí, en donde dicho método comprende las
etapas de
- i)
- proporcionar un organismo microbiano resistente a un pH inferior a 5 y una concentración de etanol de al menos un 8%,
- ii)
- someter dicho organismo microbiano a mutagénesis, obteniendo así más de un organismo microbiano mutado diferente.
- iii)
- seleccionar organismos microbianos mutados capaces de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico, y en donde el organismo microbiano tiene al menos una de las siguientes características, cuando dicho organismo microbiano está en un estado congelado o liofilizado es añadido directamente a un zumo de frutas fermentado:
- a)
- un índice de supervivencia que es al menos un 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril que comprende al menos 12 vol% de etanol;
- b)
- un índice de supervivencia que es al menos un 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril que comprende al menos 13.9 vol% de etanol
\vskip1.000000\baselineskip
Es un objetivo más de la presente invención
proporcionar métodos de preparación de un organismo microbiano
liofilizado capaz de fermentar el ácido málico a ácido láctico, que
tengan actividad de degradación reducida del ácido cítrico y que
sea capaz de supervivencia después de la inoculación directa en zumo
de frutas fermentado, dicho método comprendiendo las etapas de
- i)
- proporcionar un organismo microbiano capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico,
- ii)
- proporcionar un medio de adaptación que comprende al menos un 6% de azúcar
- iii)
- Propagar dicho organismo microbiano en dicho medio de adaptación bajo condiciones que permiten el crecimiento de dicho organismo microbiano
- iv)
- Cosechar dicho organismo microbiano
- v)
- liofilizar dicho organismo microbiano
Figura 1. Vías principales para el metabolismo
de ácido cítrico por Oenococcus oeni
Figura 2. Concentración de azúcar y crecimiento
de la seleccionada cepa mutante no fermentadora del ácido cítrico
de Oenococcus oeni DSM 15571 en el medio de cultivo y
adaptación como función del tiempo. El cultivo fue llevado a cabo a
pH 4.5 constante y 30ºC.
\newpage
Figura 3. Número de bacterias viables en vino
experimental inoculado directamente con muestras liofilizadas de la
cepa no fermentadora de ácido cítrico seleccionadas de Oenococcus
oeni DSM 15571 y mantenidas a 23ºC. Las muestras A, B, C, y D
fueron cosechadas del medio de cultivo y adaptación después de 27,
35, 40, y 45 horas respectivamente (Fig. 2), seguido de la
concentración y liofilización antes de la inoculación en el vino
experi-
mental.
mental.
Figura 4. Degradación de ácido málico y cítrico,
producción de ácido acético, y UFC/ml de bacterias activas en vino
experimental después de la inoculación directa con la composición
liofilizada de la cepa mutante no fermentadora del ácido cítrico
Oenococcus oeni DSM 15571. El experimento fue llevado a cabo
a 23ºC.
Figura 5. Degradación de ácido málico y ácido
cítrico, producción de ácido acético, y UFC/ml de bacterias activas
en vino Pinot Noir (13.8 vol% de etanol, pH 3.54, 30 ppm de SO_{2}
añadido en el aplastado) de Russian River, California, después de
la inoculación directa con composiciones liofilizadas de la
seleccionada cepa no fermentadora de ácido cítrico Oenococcus
oeni DSM 15570, cepa DSM 15569, y cepa DSM 15571. Para la
comparación, el producto comercial Viniflora oenos de Chr. Hansen
A/S, Dinamarca, que contiene una cepa Oenococcus oeni (DSM
7008), fermentadora normal del ácido cítrico fue incluido en el
experimento. El experimento fue llevado a cabo en barriles de roble
de 250 L a 18ºC.
Figura 6A. Degradación de ácido málico y ácido
cítrico, producción de ácido acético, y UFC/ml de bacterias activas
en el vino Pinot Noir (13.9 vol% de etanol, pH 3.57, nada de
SO_{2} añadido en el aplastado) de Sonoma, California, después de
la inoculación directa con composición liofilizada de la cepa no
fermentadora del ácido cítrico Oenococcus oeni DSM 15570,
cepa DSM 15569, y cepa DSM 15571. Para la comparación, el producto
liofilizado comercial Viniflora oenos de Chr. Hansen A/S, Dinamarca,
que contiene una cepa de Oenococcus oeni (DSM 7008)
fermentadora del ácido cítrico normal, fue incluida en el
experimento. El experimento fue llevado a cabo en barriles de roble
de 250 L a 17ºC.
Figura 6B. Degradación del ácido málico y
cítrico en vino experimental después de la inoculación directa con
la composición liofilizada de las cepas mutantes no fermentadoras
del ácido cítrico Oenococcus oeni DSM 15569 y DSM 15570.
Para la comparación, los productos liofilizados comerciales
Viniflora oenos y Viniflora CH35 de Chr. Hansen A/S, Dinamarca, que
contienen cepas fermentadoras del ácido cítrico Oenococcus
oeni normales fueron incluidos en el experimento. El
experimento fue llevado a cabo a 23ºC.
Figura 7. Glucosa Total + fructosa, pH, y número
de bacterias viables de la cepa de Oenococcus oeni DSM 15568
fermentadora de ácido cítrico normal como una función de tiempo en
la solución de la composición de activación incubada a 23ºC. La
solución de la composición de activación fue preparada por la
adición de agua a la composición de activación seca que se describe
en el texto.
Figura 8. Número de bacterias viables y
concentración de ácido málico en el vino experimental inoculado con
muestras activadas de la cepa Oenococcus oeni DSM 15568
fermentadora de ácido cítrico normal y mantenida a 23ºC. Las
muestras activadas, llamadas 1, 2, 3, y 4 fueron cosechadas de la
solución de composición de activación de bacterias después de
respectivamente 4, 8, 19 y 46 horas de activación (Fig. 7). También
se incluyó en el experimento la inoculación directa de
Oenococcus oeni DSM 15568 liofilizada.
Figura 9. Número de bacterias viables y
concentración de ácido málico en el vino experimental inoculado con
muestras activadas de la seleccionada cepa Oenococcus oeni
DSM 15569 no fermentadora de ácido cítrico, y mantenida a 20ºC. Las
muestras activadas, llamadas 1, 2, 3, y 4 fueron cosechadas de la
solución de la composición de activación de bacterias que se
describe en el texto después de respectivamente 8, 16, 24 y 38
horas de activación. También se incluyó en el experimento la
inoculación directa de Oenococcus oeni DSM 15569
liofilizada.
Figura 10. Número de bacterias viables y
concentración de ácido málico en vino Chardonnay de California
inoculado con el producto comercial Viniflora oenos de Chr. Hansen
A/S, Dinamarca, que contiene la cepa Oenococcus oeni DSM
7008. El producto liofilizado bien fue inoculado directamente en el
vino experimental como por recomendación del productor, o inoculado
después de 24 horas de activación en la solución de la composición
de activación que se describe en el texto. El vino fue mantenido a
24ºC.
- Tabla 1.
- Datos para la muestra A, B, C, y D tomada durante la propagación de la cepa mutante Oenococcus oeni DSM 15571 no fermentadora de ácido cítrico en el medio de cultivo y adaptación que se muestra en la Fig. 2.
- Tabla 2.
- Índices de supervivencia de la cepa mutante Oenococcus oeni DSM 15571 no fermentadora de ácido cítrico en el vino experimental medido 2 días después de la inoculación de las muestras liofilizadas A, B, C, y D (Fig. 3). El índice de supervivencia fue calculado como el % de las bacterias inoculadas que estaba viva en el vino el día 2.
- Tabla 3.
- Datos para la muestra 1, 2, 3, y 4 tomada durante la activación de la cepa Oenococcus oeni DSM 15568 fermentadora de ácido cítrico normal en la solución de la composición de activación (Fig. 7).
- Tabla 4.
- Índices de supervivencia de la cepa Oenococcus oeni DSM 15568 fermentadora del ácido cítrico normal en el vino experimental medidos 2 días después de la inoculación de las muestras de bacterias activadas 1, 2, 3, y 4 (figura 8). El índice de supervivencia fue calculado como el % de las bacterias inoculadas que estaban vivas en el vino el día 2.
Activación o adaptación de organismos
microbianos: ambos términos se refieren a métodos que implican
colocar un organismo microbiano bajo condiciones que permiten los
cambios fisiológicos necesarios a fin de que dicho organismo
microbiano sobreviva y crezca en una composición líquida nueva con
condiciones duras. En particular, la activación o adaptación cubren
la colocación de un organismo microbiano liofilizado, congelado o
conservado de otro modo en un medio para un período temporal
específico que permite dichos cambios fisiológicos, antes de que
dicho organismo microbiano sea colocado en una composición líquida
nueva con condiciones duras. Las condiciones duras pueden ser por
ejemplo el pH bajo, contenido de etanol alto o una mezcla de
ambos.
Directamente: el término "añadido
directamente a" está destinado a abarcar que el compuesto, es
decir el organismo microbiano congelado o liofilizado es añadido
directamente a la composición líquida en el estado congelado o
liofilizado sin ninguna precedente adaptación, activación y/o
expansión.
Contenido de etanol: el contenido de
etanol siempre se indica como porcentaje de volumen (vol%) a menos
que se indique específicamente de otro modo, por lo tanto un
contenido de etanol de x% se refiere a x vol% de etanol.
Congelado: el organismo microbiano es
congelado cuando es almacenado a una temperatura inferior a 0ºC. El
organismo microbiano puede ser congelado según cualquier protocolo
convencional. En general el organismo microbiano es congelado
mezclando dicho organismo microbiano con crioprotectores adecuados
tal como glicerol, gelatina o Na-caseinato e
incubando la mezcla a una temperatura inferior a 18ºC.
Liofilizado: la liofilización de un
organismo microbiano implica la congelación de dicho organismo
microbiano generalmente en presencia de un crioprotector adecuado, y
posteriormente retirar hielo retenido reduciendo la presión y
provocando que sublime. El organismo microbiano según la presente
invención puede ser liofilizado usando cualquier método
convencional conocido por el experto en la materia. Por ejemplo
cualquiera de los métodos que se describen en "Fundamentals of
Freeze Drying", J. D. Mellor. 1978, Academic press.
En un aspecto la presente invención se refiere a
organismos microbianos capaces de fermentar ácido málico a ácido
láctico. Preferiblemente, dicho organismo microbiano, cuando es
colocado en un medio conteniendo una cantidad predeterminada de
ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho 80% de dicho
ácido cítrico. Incluso más preferiblemente, el organismo microbiano
sólo es capaz de degradar como mucho 70%, tal como 60%, por ejemplo
50%, tal como 40%, por ejemplo 30%, tal como 25%, por ejemplo 20%,
tal como 15%, por ejemplo 12%, tal como 10% de dicho ácido cítrico.
Por lo tanto, se prefiere que el organismo microbiano sólo sea capaz
de degradar en la gama de 0 a 50%, más preferiblemente 0 a 40%,
incluso más preferiblemente 0 a 30%, aún más preferiblemente 0 a
20% de dicho ácido cítrico. Es preferible además que el organismo
microbiano sólo sea capaz de degradar como mucho 50%, más
preferiblemente como mucho 40%, incluso más preferiblemente como
mucho 30%, aún más preferiblemente como mucho 20%, incluso más
preferiblemente como mucho 10% de dicho ácido cítrico dentro de por
ejemplo las 3 semanas, más preferiblemente dentro de las 2 semanas,
tal como dentro de 13, por ejemplo 12, tal como 11, por ejemplo 10
días. En una forma de realización preferida de la invención el
organismo microbiano sólo es capaz de degradar como mucho 50%, más
preferiblemente como mucho 40%, incluso más preferiblemente como
mucho 30%, aún más preferiblemente como mucho 20%, incluso más
preferiblemente como mucho 15% del ácido cítrico inicial incluso
durante la incubación a largo plazo, tal como almacenamiento durante
30 días, por ejemplo durante 40 días, por ejemplo durante 50 días,
tal como durante 60 días, por ejemplo durante 80 días, tal como
durante 100 días, preferiblemente durante al menos 40 días, más
preferiblemente durante al menos 50 días.
Debido a que la degradación de ácido cítrico en
general es retrasada en comparación con la degradación de ácido
málico (véase por ejemplo la Fig. 6B al igual que la mencionada
sección de antecedentes) se prefiere que el organismo microbiano,
cuando es añadido a un medio comprendiendo ácido málico y ácido
cítrico (preferiblemente zumo de uva fermentado), dicho organismo
microbiano no ha degradado más del 50%, más preferiblemente no más
del 40%, incluso más preferiblemente no más del 30%, aún más
preferiblemente no más del 20%, incluso más preferiblemente no más
del 15% del ácido cítrico inicial incluso 1, tal como 2, por ejemplo
3, tal como 4, por ejemplo 5 días, tal como 10 días, por ejemplo 15
días, tal como 20 días, por ejemplo 30 días, tal como 40 días
después de la finalización de la fermentación maloláctica. Dentro
del significado de la presente invención, la fermentación del ácido
maloláctico se define como completada cuando el medio
(preferiblemente zumo de uva fermentado) comprende como mucho 30
mg/l, preferiblemente como mucho 15 mg/l de ácido málico.
\newpage
En una forma de realización muy preferida de la
invención, el organismo microbiano no es capaz de degradar más del
50%, preferiblemente no más del 40%, más preferiblemente no más del
30%, incluso más preferiblemente no más del 20% del ácido cítrico
inicial, durante el tiempo que dicho organismo microbiano esté
metabólicamente activo.
Preferiblemente, el organismo microbiano, cuando
es colocado en una composición líquida comprendiendo una cantidad
predeterminada de ácido málico es capaz de degradar al menos 30%,
tal como 50%, por ejemplo 70%, tal como 80%, al menos 90%, por
ejemplo al menos 95% de dicho ácido málico. Preferiblemente, el
organismo microbiano es capaz de degradar en la gama de 70 a 100%,
más preferiblemente en la gama de 80 a 100%, incluso más
preferiblemente en la gama de 90 a 100% de dicho ácido málico.
Más preferiblemente, el organismo microbiano
cuando es colocado en una composición líquida comprendiendo una
cantidad predeterminada de ácido málico es capaz de fermentar al
menos 30%, tal como 50%, por ejemplo 70%, tal como 80%, al menos
90%, por ejemplo al menos 95% de dicho ácido málico a ácido
láctico.
En una forma de realización muy preferida, el
organismo microbiano cuando es colocado en una composición líquida
comprendiendo una cantidad predeterminada de ácido málico es capaz
de completar la fermentación maloláctica, es decir es capaz de
fermentar ácido málico a una concentración final de ácido málico de
como mucho 30 mg/l, más preferiblemente como mucho 15 mg/l.
Dicha degradación de ácido málico es completada
preferiblemente dentro de como mucho 1 mes, preferiblemente dentro
de como mucho 3 semanas, más preferiblemente dentro de como mucho 2
semanas, tal como 13, por ejemplo 12, tal como 11, por ejemplo 10,
tal como 9 días.
La composición líquida comprendiendo dicha
cantidad predeterminada de ácido málico y/o ácido cítrico comprende
preferiblemente además uno o más de los siguientes parámetros
- \sqbullet
- preferiblemente un pH en la gama de 2 a 7, preferiblemente en la gama de 3 a 6, más preferiblemente en la gama de 3 a 5, incluso más preferiblemente en la gama de 3 a 4, por ejemplo en la gama de 3.1 a 3.8, tal como en la gama de 3.2 a 3.6, por ejemplo alrededor de 3.4; y/o
- \sqbullet
- preferiblemente un contenido de etanol de más de 10%, preferiblemente más del 11%, tal como más de 12%, preferiblemente un contenido de etanol en la gama de 10 a 14%, tal como en la gama de 10.5 a 13.5%, por ejemplo en la gama de 11 a 13%, tal como en la gama de 11.5 a 12.5%, por ejemplo alrededor de 10%, tal como alrededor de 10.5%, por ejemplo alrededor de 11%, tal como alrededor de 11.5%, por ejemplo alrededor de 12%, tal como alrededor de 12.5%, por ejemplo alrededor de 13%, tal como alrededor de 13.5%, por ejemplo alrededor de 13.9% y/o % preferiblemente en la gama de 0.1 a 30 g/l de azúcar, más preferiblemente en la gama de 0.5 a 25 g/l, incluso más preferiblemente en la gama de 1 a 20 g/l, tal como en la gama de 1 a 15 g/l, por ejemplo en la gama de 1 a 10, tal como en la gama de 2 a 9, tal como en la gama de 3 a 8, tal como en la gama de 4 a 6, por ejemplo alrededor de 5 g/l de azúcar y/o
- \sqbullet
- preferiblemente en la gama de 1 a 50 g/l, más preferiblemente en la gama de 1 a 25 g/l, incluso más preferiblemente en la gama de 1 a 10 g/l, por ejemplo en la gama de 2 a 8 g/l, tal como en la gama de 2 a 6 g/l, por ejemplo en la gama de 3 a 4 g/l, tal como alrededor de 3.3 g/l de ácido málico y/o
- \sqbullet
- preferiblemente en la gama de 1 a 5000 mg/l, más preferiblemente en la gama de 10 a 2500 mg/l, incluso más preferiblemente en la gama de 100 a 1000 mg/l, por ejemplo en la gama de 200 a 800 mg/l, tal como en la gama de 300 a 600 mg/l, por ejemplo en la gama de 400 a 500 mg/l, tal como alrededor de 450 mg/l de ácido cítrico.
Es preferible que dicho microorganismo sea
incubado con dicho zumo de frutas fermentado a una temperatura de
en la gama de 15 a 30ºC, tal como en la gama de 20 a 25ºC, por
ejemplo alrededor de 23ºC.
Preferiblemente, el organismo microbiano es
capaz de degradar ácido málico y/o ácido cítrico como se indica
aquí arriba cuando dicho organismo está presente en una
concentración de UFCs (unidades formadoras de colonias) en la gama
de 1 x 10^{3} a 5 x 10^{12} por cada ml, preferiblemente en la
gama de 1 x 10^{4} a 5 x 10^{10} por cada ml, más
preferiblemente en la gama de 1 x 10^{5} a 5 x 10^{8} por cada
ml, por ejemplo en la gama de 1 x 10^{6} a 5 x 10^{7} por cada
ml.
En una forma de realización preferida de la
presente invención el organismo microbiano es capaz de reducir el
ácido málico dentro de 9 días a menos de 1 g/l, tal como menos de
0,5 g/l, por ejemplo menos de 0,1 g/l, tal como menos de 30 mg/l,
por ejemplo menos de 15 mg/l, cuando es incubado a una temperatura
de aproximadamente 23ºC, cuando dicho organismo microbiano es
añadido directamente en un estado congelado o liofilizado a un zumo
de frutas fermentado en una concentración de UFCs en la gama de 1 x
10^{6} a 5 x 10^{7}, en donde dicho zumo de frutas fermentado
se prepara por la fermentación de un zumo de frutas estéril sin la
adición de sulfito resultando en un zumo de frutas fermentado que
tiene un contenido de etanol de 12,0 vol%, pH 3,4, inferior a 5 g/l
de azúcar residual, 3,3 g/l de ácido málico, y 450 mg/l de ácido
cítrico.
Además, se prefiere que el organismo microbiano
reduzca el contenido de ácido cítrico por menos de 50%, tal como
menos de 20%, por ejemplo menos de 10% dentro de 10 días,
preferiblemente dentro de 20 días, más preferiblemente dentro de 40
días, por ejemplo dentro de 50 días, tal como dentro de 100 días,
cuando es incubado a una temperatura de aproximadamente 23ºC,
cuando dicho organismo microbiano es añadido directamente en un
estado congelado o liofilizado a un zumo de frutas fermentado en una
concentración de UFCs en la gama de 1 x 10^{6} a 5 x 10^{7} por
cada ml, en donde dicho zumo de frutas fermentado es preparado por
la fermentación de un zumo de frutas estéril sin sulfito añadido
dando como resultado un zumo de frutas fermentado con un contenido
de etanol de 12.0 vol%, pH 3.4, inferior a 5 g/l de azúcar residual,
3.3 g/l de ácido málico, y 450 mg/l de ácido cítrico.
El organismo microbiano según la presente
invención tiene preferiblemente al menos una de las siguientes
características, cuando dicho organismo microbiano en un estado
congelado o liofilizado es añadido directamente en un zumo de
frutas fermentado:
- i)
- un índice de supervivencia que es al menos 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas estéril fermentado con un pH de menos de 4 y comprendiendo al menos 12 vol% de etanol
- ii)
- un índice de supervivencia que es al menos 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 comprendiendo al menos 13.9 vol% de etanol
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente, el índice de supervivencia es
al menos 5%, tal como al menos 10%, por ejemplo al menos 15%, tal
como al menos 20%, por ejemplo al menos 25%, tal como al menos 30%,
por ejemplo al menos 35%, tal como al menos 40%, por ejemplo al
menos 45%, tal como al menos 50%, por ejemplo al menos 55%, tal como
al menos 60%, por ejemplo al menos 65%, tal como al menos 70%, por
ejemplo al menos 75%, tal como al menos 80% después de dos días a
23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de
4, preferiblemente en la gama de 3 a 4, por ejemplo en la gama de
3.1 a 3.8, tal como en la gama de 3.2 a 3.6, por ejemplo alrededor
de 3.4 y comprendiendo al menos 12 vol% de etanol, preferiblemente
alrededor de 12 vol% de etanol.
En una forma de realización de la invención el
organismo microbiano tiene un índice de supervivencia que es al
menos 1%, por ejemplo al menos 5%, tal como al menos 10%, por
ejemplo al menos 15%, tal como al menos 20%, por ejemplo al menos
25%, tal como al menos 30%, por ejemplo al menos 35%, tal como al
menos 40%, por ejemplo al menos 45%, tal como al menos 50%, por
ejemplo al menos 55%, tal como al menos 50%, por ejemplo al menos
65%, tal como al menos 70%, por ejemplo al menos 75%, tal como al
menos 80% después de dos días a 23ºC, cuando es añadido
directamente a un vino preparado por la fermentación de un zumo de
frutas de uva estéril sin sulfito añadido, dicho vino que tiene un
contenido de etanol de 12.0 vol%, pH 3.4, inferior a 5 g/l de
azúcar residual, 3.3 g/l de ácido málico, y 450 mg/l de ácido
cítrico.
En otra forma de realización de la presente
invención el índice de supervivencia es preferiblemente al menos
70%, más preferiblemente al menos 75%, por ejemplo al menos 80%, tal
como al menos 85%, por ejemplo al menos 90% después de dos días a
17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de
4, preferiblemente en la gama de 3 a 4, por ejemplo en la gama de
3.1 a 3.8, tal como en la gama de 3.2 a 3.6, por ejemplo alrededor
de 3.4, en donde el zumo de frutas fermentado estéril comprende al
menos 13.9 vol% de etanol, preferiblemente alrededor de 13.9 vol%
de etanol.
En otra forma de realización de la invención el
organismo microbiano tiene un índice de supervivencia que está en
la gama de 70% a 100%, más preferiblemente al menos 75%, por ejemplo
al menos 80%, tal como al menos 85%, por ejemplo al menos 90%
después de dos días a 18ºC, cuando es añadido directamente en un
vino preparado con 30 ppm de SO_{2} añadido antes de la
fermentación alcohólica, dicho vino que tiene un contenido de
etanol de 13.8 vol%, pH 3.5, 1.3 g/l de ácido málico, y 340 mg/l de
ácido cítrico.
En aún otra forma de realización de la presente
invención el organismo microbiano tiene un índice de supervivencia
que es al menos 80%, tal como al menos 85%, por ejemplo al menos 90%
después de dos días a 17ºC, cuando es añadido directamente a un
vino preparado sin SO_{2} añadido, dicho vino que tiene un
contenido de etanol de 13.9 vol%, pH 3.6, 1.7 g/l de ácido málico,
y 320 mg/l de ácido cítrico.
El organismo microbiano según la presente
invención es resistente preferiblemente a uno o más bacteriófagos
diferentes, más preferiblemente el organismo es resistente en
general a los bacteriófagos.
Además se prefiere que el organismo microbiano
retenga sus características durante la propagación y concentración,
es decir se prefiere que el organismo microbiano retenga su
capacidad de supervivencia, de degradar ácido málico y/o ácido
cítrico como se describe aquí durante la propagación y
concentración. Preferiblemente, el organismo microbiano retiene sus
características después de 10, tal como después de 20, por ejemplo
después de 30, tal como después de 40, tal como después de 50, por
ejemplo después de 60, tal como después de 70, por ejemplo después
de 80, tal como después de 90, por ejemplo después de 100
duplicaciones de población. Se prefiere que el organismo microbiano
retenga sus características después de la concentración como se
describe aquí a continuación.
En una forma de realización preferida de la
presente invención el organismo microbiano es una cepa bacteriana,
más preferiblemente el organismo microbiano es una cepa bacteriana
perteneciente a la familia Oenococcus, incluso más
preferiblemente, el organismo microbiano es una cepa de
Oenococcus oeni. Por ejemplo el organismo microbiano puede
ser seleccionado del grupo que consiste en cepas depositadas bajo
los números de registro DMS 15569, DMS 15570, y DSM 15571.
En un aspecto, la presente invención se refiere
a un concentrado de organismos microbianos que comprende o consiste
en cualquiera de los mencionados organismos microbianos, en donde
dicho concentrado tiene un contenido de unidades formadoras de
colonias estando en la gama de 10^{9} a 10^{12} por cada g.
El concentrado puede ser preparado por cualquier
método convencional, por ejemplo el concentrado puede ser preparado
por centrifugación, tal como por la centrifugación de una
composición líquida comprendiendo los organismos microbianos según
cualquier protocolo conocido por el experto en la materia. Por
ejemplo, la composición líquida puede ser centrifugada en la gama
de centrifugación 2000 a 10,000 g, tal como en la gama de 3000 a
9000m por ejemplo en la gama de 4000 a 8000, tal como en la gama de
5000 a 7000, por ejemplo alrededor de 6000 g durante en la gama de
1 a 120 minutos, por ejemplo durante en la gama de 5 a 60 minutos,
tal como durante alrededor de 20 minutos. También está comprendido
dentro de la presente invención que el concentrado puede ser
preparado usando métodos de centrifugación más avanzados, por
ejemplo métodos implicando el uso de diferentes fuerzas centrífugas
o por el uso de centrifugados que permiten añadir la composición
líquida continuamente y cosechar el eluato continuamente, dicha
composición líquida es en general, un medio de cultivo.
Antes de la preparación del concentrado, los
organismos microbianos pueden haber sido cultivados en cualquier
medio convencional conocido por el experto en la materia.
No obstante, en una forma de realización
preferida de la invención, el organismo microbiano se ha cultivado
en cualquiera de los medios de adaptación que se describen aquí a
continuación, dichos medios de adaptación comprendiendo al menos 6%
de azúcar. Preferiblemente, dichos medios de adaptación comprenden
al menos 5% de glucosa y/o 5% de fructosa o al menos 3% de glucosa
y al menos 3% de fructosa. Preferiblemente, el organismo microbiano
ha sido incubado en dicho medio de adaptación durante al menos 12
horas, tal como al menos 24 horas, por ejemplo alrededor de 48
horas antes de la cosecha por ejemplo por centrifugación.
Los organismos microbianos cosechados pueden, en
una forma de realización de la invención ser mezclados con
cualquier crioprotector adecuado, por ejemplo glicerol, gelatina,
Na-caseinato o sacarosa y almacenados congelados a
una temperatura en la gama de -90ºC a 0ºC, por ejemplo a alrededor
de -80ºC o alrededor de -20ºC. Por lo tanto, el concentrado puede,
en una forma de realización comprender organismos microbianos
congelados.
También está comprendido dentro de la presente
invención que los organismos microbianos cosechados pueden ser
secados mediante por ejemplo secado por aire, secado por
atomización, liofilización, secado en bidón o secado usando un
secador de bandeja, secador de anillo, secador de lecho fluidizado o
secador de banda al vacío. El secado puede realizarse usando
cualquier protocolo adecuado conocido por el experto en la técnica.
Por lo tanto, el concentrado puede, en una forma de realización
comprender organismos microbianos secados, tal como organismos
microbianos liofilizados.
En una forma de realización los organismos
microbianos cosechados son liofilizados. La liofilización puede
realizarse según cualquier protocolo adecuado conocido por el
experto en la técnica, por ejemplo según cualquiera de los
protocolos que se describen en "Fundamentals of Freeze Drying",
J.D. Mellor, 1978, Academic Press.
En un aspecto, la presente invención se refiere
a métodos para degradar preferencialmente ácido málico sobre ácido
cítrico en una composición líquida comprendiendo ácido málico y
ácido cítrico, dicho método comprendiendo las etapas de
- i)
- proporcionar una composición líquida comprendiendo ácido málico y ácido cítrico;
- ii)
- proporcionar cualquiera de los organismos microbianos que se describen aquí, en donde dicho organismo microbiano ha sido congelado o liofilizado según cualquier protocolo convencional,
- iii)
- añadir dicho organismo microbiano liofilizado o congelado directamente a dicha composición líquida
- iv)
- incubar dicha composición líquida y dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación de al menos 70% del ácido málico,
- v)
- obtener así una composición líquida final comprendiendo menos del 30% del ácido málico inicial y al menos 20% del ácido cítrico inicial.
La composición líquida puede en una forma de
realización preferida de la invención, ser zumo de frutas o zumo de
frutas fermentado, preferiblemente zumo de uva o zumo de uva
fermentado, tal como vino, por ejemplo vino tinto, vino blanco,
rosado o vino espumoso.
La composición líquida tiene preferiblemente un
pH en la gama de 2 a 5, tal como 3 a 4, por ejemplo alrededor de
3.4.
Además, la composición líquida comprende
preferiblemente en la gama de 5 a 15 vol% de etanol, tal como 10 a
14 vol% de etanol, por ejemplo 11 a 14 vol%, tal como 12 a 14 vol%,
por ejemplo al menos 12 vol% de etanol.
También es preferido que la composición líquida
comprenda en la gama de 0.1 a 30 g/l de azúcar, más preferiblemente
en la gama de 0.5 a 25 g/l, incluso más preferiblemente en la gama
de 1 a 20 g/l, tal como en la gama de 1 a 15 g/l, por ejemplo en la
gama de 1 a 10, tal como en la gama de 2 a 9, tal como en la gama
de 3 a 8, tal como en la gama de 4 a 6, por ejemplo alrededor de 5
g/l de azúcar. Más preferiblemente, la composición líquida
comprende menos de 10 g/l, tal como menos de 7 g/l, por ejemplo
menos de 5 g/l de azúcar.
Es preferible además que la composición líquida
comprenda en la gama de 1 a 50 g/l, preferiblemente 1 a 25 g/l,
incluso más preferiblemente en la gama de 1 a 10 g/l, por ejemplo en
la gama de 2 a 8 g/l, tal como en la gama de 2 a 5 g/l, por ejemplo
en la gama de 3 a 4 g/l, tal como alrededor de 3.3 g/l de ácido
málico.
También es preferido que la composición líquida
comprenda en la gama de 1 a 5000 mg/l, más preferiblemente en la
gama de 10 a 2500 mg/l, incluso más preferiblemente en la gama de
100 a 1000 mg/l, por ejemplo en la gama de 200 a 800 mg/l, tal como
en la gama de 300 a 600 mg/l, por ejemplo en la gama de 400 a 500
mg/l, tal como alrededor de 450 mg/l de ácido cítrico.
Preferiblemente, la composición líquida comprende en la gama de 50
a 2000 mg/l, tal como 100 a 1000 mg/l, por ejemplo 200 a 800 mg/l,
tal como 400 a 500 mg/l de ácido cítrico.
Se prefiere que la composición líquida final
comprenda al menos 50%, preferiblemente al menos 60%, más
preferiblemente al menos 70%, por ejemplo al menos 75%, tal como al
menos 80% del ácido cítrico inicial.
Se prefiere además que la composición líquida
final comprenda menos del 20%, preferiblemente menos del 15%, tal
como menos del 10%, por ejemplo menos del 5% del ácido málico
inicial.
El organismo microbiano es añadido
preferiblemente en una concentración de UFCs en la gama de 1 x
10^{3} a 5 x 10^{12} por cada ml, preferiblemente en la gama de
1 x 10^{4} a 5 x 10^{10} por cada ml, más preferiblemente en la
gama de 1 x 10^{5} a 5 x 10^{8} por cada ml, por ejemplo en la
gama de 1 x 10^{6} a 5 x 10^{7} por cada ml. Más
preferiblemente, el organismo microbiano es añadido en una
concentración de menos de 5 x 10^{7} UFC por cada ml de la
composición líquida, tal como en una concentración en la gama de 1 x
10^{6} a 5 x 10^{7} UFCs por cada ml de la composición
líquida.
Las condiciones comprenden la incubación a una
temperatura en la gama de 5 a 40ºC, por ejemplo 15 a 30ºC, tal como
en la gama de 17 a 23ºC.
En una forma de realización preferida, el método
comprende la incubación de dicha composición líquida durante al
menos el tiempo requerido para obtener la deseada fermentación de
ácido málico, no obstante se prefiere que la incubación sea más
larga, por ejemplo al menos 5 días, tal como al menos 10 días, por
ejemplo al menos 15 días, tal como al menos 20 días, por ejemplo al
menos 30 días, tal como al menos 40 días más que el tiempo
requerido para obtener la deseada concentración de ácido málico.
En una forma de realización muy preferida, el
método comprende la incubación de dicha composición líquida durante
un periodo temporal más largo que el requerido para la finalización
de la fermentación maloláctica, por ejemplo durante al menos 5
días, tal como al menos 10 días, por ejemplo al menos 15 días, tal
como al menos 20 días, por ejemplo al menos 30 días, tal como al
menos 40 días más que los requeridos para la finalización de la
fermentación maloláctica.
La presente invención también se refiere a
métodos para inducir la fermentación maloláctica, comprendiendo las
etapas de
- i)
- proporcionar una composición líquida comprendiendo ácido málico
- ii)
- proporcionar un organismo microbiano, que puede ser cualquiera de los mencionados organismos microbianos que se describen aquí,
- iii)
- incubar dicha composición líquida con dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación de ácido málico,
- iv)
- inducir así la fermentación maloláctica
\vskip1.000000\baselineskip
La composición líquida es, en una forma de
realización preferida un zumo de frutas, tal como un zumo de frutas
fermentado. Por ejemplo, la composición líquida puede ser un zumo de
frutas de uva, un zumo de frutas de uva fermentada o un vino. El
vino puede, por ejemplo ser seleccionado del grupo que consiste en
vinos tintos, vinos blancos y vinos espumantes.
\newpage
Preferiblemente, el organismo microbiano está en
un estado congelado o liofilizado. Los métodos comprenden
preferiblemente por lo tanto, que el organismo microbiano en un
estado congelado o liofilizado sea añadido directamente a la
composición líquida, por ejemplo al zumo de uva o un zumo de uva
fermentado.
El organismo microbiano es añadido
preferiblemente a la composición líquida en una concentración de
UFCs en la gama de 1 x 10^{3} a 5 x 10^{12} por cada ml,
preferiblemente en la gama de 1 x 10^{4} a 5 x 10^{10} por cada
ml, más preferiblemente en la gama de 1 x 10^{5} a 5 x 10^{8}
por cada ml, por ejemplo en la gama de 1 x 10^{6} a 5 x 10^{7}
por cada ml. Más preferiblemente, el organismo microbiano es
añadido en una concentración de menos de 5 x 10^{7} UFC por cada
ml de la composición líquida, tal como en una concentración en la
gama de 1 x 10^{6} a 5 x 10^{7} UFCs por cada ml de la
composición líquida.
La composición líquida, por ejemplo el zumo de
uva o un zumo de uva fermentado tiene preferiblemente un pH en la
gama de 2 a 5, tal como 3 a 4, por ejemplo alrededor de 3.4.
Además, la composición líquida tal como el zumo
de uva o un zumo de uva fermentado comprende preferiblemente en la
gama de 5 a 15 vol% de etanol, tal como 10 a 14 vol% de etanol, por
ejemplo 11 a 14 vol%, tal como 12 a 14 vol%, por ejemplo al menos
12 vol% de etanol.
También se prefiere que la composición líquida,
tal como el zumo de uva o un zumo de uva fermentado comprenda en la
gama de 0.1 a 30 g/l de azúcar, más preferiblemente en la gama de
0.5 a 25 g/l, incluso más preferiblemente en la gama de 1 a 20 g/l,
tal como en la gama de 1 a 15 g/l, por ejemplo en la gama de 1 a
10, tal como en la gama de 2 a 9, tal como en la gama de 3 a 8, tal
como en la gama de 4 a 6, por ejemplo alrededor de 5 g/l de azúcar.
Más preferiblemente, la composición líquida comprende menos de 10
g/l, tal como menos de 7 g/l, por ejemplo menos de 5 g/l de
azúcar.
Se prefiere además que la composición líquida
tal como el zumo de uva o un zumo de uva fermentado comprenda en la
gama de 1 a 50 g/l, preferiblemente 1 a 25 g/l, incluso más
preferiblemente en la gama de 1 a 10 g/l, por ejemplo en la gama de
2 a 8 g/l, tal como en la gama de 2 a 5 g/l, por ejemplo en la gama
de 3 a 4 g/l, tal como alrededor de 3.3 g/l de ácido málico.
También se prefiere que la composición líquida
tal como el zumo de uva o zumo de uva fermentado comprenda en la
gama de 1 a 5000 mg/l, más preferiblemente en la gama de 10 a 2500
mg/l, incluso más preferiblemente en la gama de 100 a 1000 mg/l,
por ejemplo en la gama de 200 a 800 mg/l, tal como en la gama de 300
a 600 mg/l, por ejemplo en la gama de 400 a 500 mg/l, tal como
alrededor de 450 mg/l de ácido cítrico. Preferiblemente, la
composición líquida comprende en la gama de 50 a 2000 mg/l, tal como
100 a 1000 mg/l, por ejemplo 200 a 800 mg/l, tal como 400 a 500
mg/l de ácido cítrico.
En una forma de realización de la invención la
fermentación maloláctica puede por ejemplo ser inducida según los
protocolos que se describen en el ejemplo 3 o 4.
La presente invención también describe métodos
de producción del mencionado organismo microbiano que se describe
aquí. Los métodos comprenden las fases de
- i)
- proporcionar un organismo microbiano de inicio resistente a un pH inferior a 5 y una concentración de etanol de al menos 8%,
- ii)
- someter dicho organismo microbiano a mutagénesis, obteniendo así más de un organismo microbiano mutado diferente
- iii)
- seleccionar organismos microbianos mutados capaces de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano, cuando es colocado en un medio que contiene una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho ácido cítrico, y en donde el organismo microbiano tiene al menos una de las siguientes características, cuando dicho organismo microbiano en un estado congelado o liofilizado es añadido directamente en un zumo de frutas fermentado:
- a)
- un índice de supervivencia que es al menos 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril comprendiendo al menos 12 vol% de etanol;
- b)
- un índice de supervivencia que es al menos 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril comprendiendo al menos 13.9 vol% de etanol
\vskip1.000000\baselineskip
El organismo microbiano de inicio es capaz
preferiblemente de fermentar ácido málico, más preferiblemente, el
organismo microbiano de inicio es capaz de fermentar ácido málico a
ácido láctico.
\newpage
El organismo microbiano de inicio es resistente
preferiblemente a un pH bajo, es decir a un pH inferior a 5,
preferiblemente dicho organismo es resistente a un pH de alrededor
de 4.5 o más bajo, más preferiblemente de alrededor de 4.0 o más
bajo, por ejemplo de alrededor de 3.6 o más bajo, tal como de 3.4 o
más bajo, por ejemplo dicho organismo microbiano es resistente a pH
3.2.
El organismo microbiano de inicio es
preferiblemente resistente además a la alta concentración de etanol,
es decir a una concentración de etanol de al menos 8 vol%,
preferiblemente dicho organismo es resistente a una concentración
de etanol de alrededor de 9 vol% o más alto, más preferiblemente
alrededor de 10 vol% o más alto, por ejemplo alrededor de 11 vol% o
más alto, tal como 12.5 vol% o más alto, por ejemplo dicho organismo
microbiano es resistente a una concentración de etanol de alrededor
del 13%.
En una forma de realización preferida de la
presente invención el organismo microbiano de inicio es una cepa
bacteriana, más preferiblemente el organismo microbiano de inicio es
una cepa bacteriana de la familia Oenococcus, incluso más
preferiblemente, el organismo microbiano de inicio es una cepa de
Oenococcus oeni.
El organismo microbiano de inicio puede ser
obtenido de cualquier fuente adecuada, puede por ejemplo ser
comprado comercialmente o aislado de cualquier fuente adecuada
conocida por el experto en la materia. En una forma de realización,
el organismo microbiano de inicio es aislado de un zumo de frutas
fermentado, por ejemplo de un vino, preferiblemente de un vino con
fermentación maloláctica espontánea completada.
La mutagénesis puede ser realizada por cualquier
método convencional conocido por el experto en la materia. En una
forma de realización la mutagénesis comprende incubar el organismo
microbiano en presencia de un agente mutagenizante. Dicho agente
mutagenizante puede por ejemplo ser seleccionado del grupo que
consiste en etilmetanosulfanato,
N-etil-N'-nitro-N-nitrosoguanidina
y
1-(2-hidroxietil)-1-nitrosourea.
La incubación con el agente mutagenizante puede
realizarse durante cualquier tiempo adecuado, por ejemplo durante
en la gama de 5 min. a 24 horas, tal como en la gama de 10 minutos a
12 horas, por ejemplo en la gama de 15 minutos a 6 horas, tal como
en la gama de 30 minutos a 4 horas, por ejemplo en la gama de 1 hora
a 3 horas, tal como en la gama de 1.5 horas a 2.5 horas, por
ejemplo alrededor de 2 horas.
Después de la mutagénesis, organismos
microbianos mutados con la característica deseada pueden ser
seleccionados, por ejemplo organismos microbianos mutados con
cualquiera de las características mencionadas que se indican aquí
pueden ser seleccionados.
En una forma de realización de la invención, son
seleccionados organismos microbianos con actividad de degradación
del ácido cítrico reducida. La selección puede por ejemplo ser
realizada basándose en los métodos que se describen por G. M.
Kempler y L. L. McKay (Appl. Environ. Microbiol.; 1980, 39,
926-927) según se describe en el ejemplo 1 a
continuación.
Un ejemplo no limitativo de cómo preparar un
organismo microbiano según la presente invención se describe en el
ejemplo 1.
Sorprendentemente, la presente invención divulga
que los organismos microbianos liofilizados tienen un aumentado
índice de supervivencia después de la inoculación directa en vino,
si los organismos microbianos han sido cultivados en el medio de
adaptación que se describe aquí a continuación.
Por lo tanto, la presente invención también se
refiere a métodos de preparación de un organismo microbiano seco
capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico, que ha reducido la
actividad de degradación del ácido cítrico y que es capaz de
supervivencia después de la inoculación directa en zumo de frutas
fermentado, dicho método comprendiendo las etapas de
- i)
- proporcionar un organismo microbiano como el mencionado que se describe aquí
- ii)
- proporcionar un medio de adaptación como el mencionado que se describe a continuación comprendiendo al menos 6% azúcar
- iii)
- incubar dicho organismo microbiano en dicho medio de adaptación bajo condiciones que permiten el crecimiento de dicho organismo microbiano
- iv)
- cosechar dicho organismo microbiano
- v)
- secar dicho organismo microbiano
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente el organismo microbiano es
incubado en dicho medio de adaptación durante al menos 12 horas,
tal como al menos 24 horas, por ejemplo alrededor de 48 horas antes
de la cosecha. La incubación está preferiblemente a una temperatura
en la gama de 15 a 40ºC, tal como en la gama de 20ºC a 37ºC, por
ejemplo en la gama de 25ºC a 35ºC, preferiblemente alrededor de
30ºC. Además, durante la incubación el pH es mantenido
preferiblemente constante en la gama de pH 3.5 a 6.0, tal como en la
gama de pH 4 a 5, preferiblemente alrededor de pH 4.5.
El organismo microbiano puede ser cosechado por
cualquier técnica convencional conocida por el experto en la
materia. En general, la cosecha de dicho organismo microbiano
comprende la centrifugación.
El secado de dicho organismo microbiano puede
ser realizado por un número de métodos diferentes incluyendo, pero
no limitado al secado por aire, secado por atomización,
liofilización, secado en bidón o secado usando un secador de
bandeja, secador de anillo, secador de lecho fluidizado o secador de
banda al vacío.
No obstante, preferiblemente el organismo
microbiano es liofilizado. La liofilización puede ser realizado
según cualquier protocolo conocido por el experto en la técnica como
por ejemplo se describe en Fundamentals of Freeze Drying, J.D.
Mellor, 1978, Academic Press. En general el organismo microbiano es
mezclado con un crioprotector adecuado, por ejemplo gelatina y/o
sacarosa y liofilizado usando cualquier liofilizador adecuado.
El medio de adaptación según la presente
invención comprende al menos 6%, preferiblemente al menos 7%, más
preferiblemente al menos 8%, tal como al menos 9%, por ejemplo al
menos 10%, tal como al menos 11% de azúcar en peso. El azúcar puede
ser cualquier azúcar adecuado, por ejemplo el azúcar puede ser
seleccionado del grupo que consiste en glucosa, fructosa, sacarosa
y maltosa. Preferiblemente el azúcar es glucosa y/o fructosa.
En una forma de realización preferida el medio
de adaptación comprende al menos 3%, preferiblemente al menos 4%,
más preferiblemente al menos 5%, tal como al menos 6%, por ejemplo
al menos 7%, tal como al menos 8%, por ejemplo al menos 9%, tal
como al menos 10%, por ejemplo en la gama de 3 a 10%, tal como en la
gama de 4 a 8%, por ejemplo en la gama de 5 a 6% glucosa.
También está comprendido dentro de la presente
invención que el medio de adaptación comprende al menos 3%,
preferiblemente al menos 4%, más preferiblemente al menos 5%, tal
como al menos 6%, por ejemplo al menos 7%, tal como al menos 8%,
por ejemplo al menos 9%, tal como al menos 10%, por ejemplo en la
gama de 3 a 10%, tal como en la gama de 4 a 8%, por ejemplo en la
gama de 5 a 6% de fructosa.
En una forma de realización preferida el medio
de adaptación comprende al menos 3%, preferiblemente al menos 4%,
más preferiblemente al menos 5%, tal como al menos 6%, por ejemplo
al menos 7% glucosa y al menos 3%, preferiblemente, al menos 4%,
más preferiblemente al menos 5%, tal como al menos 6%, por ejemplo
al menos 7% de fructosa.
El medio de adaptación comprende preferiblemente
además uno o más seleccionados del grupo que consiste en fuentes de
nitrógeno, sales, detergentes y tampones.
La fuente de nitrógeno puede ser cualquier
fuente de nitrógeno adecuada conocida por el experto en la técnica.
Preferiblemente la fuente de nitrógeno comprende aminoácidos, por
ejemplo aminoácidos libres o aminoácidos comprendidos dentro de un
polipéptido o un péptido. Se prefiere que la fuente de nitrógeno
comprenda aminoácidos libres y/o péptidos cortos. Los péptidos
cortos pueden ser preparados hidrolizando una fuente de proteína.
En una forma de realización de la invención la fuente de nitrógeno
es seleccionada del grupo que consiste en extractos de levadura,
hidrolizado de caseína (proteína de la leche hidrolizada) y
bacto-peptona (carne hidrolizada).
La sal puede por ejemplo ser MnSO_{4} o
MgSO_{4}, NaCl, MgCl_{2} o cualquier otra sal adecuada.
El pH del medio de adaptación está
preferiblemente en la gama de 2 a 8, más preferiblemente en la gama
de 3 a 7, incluso más preferiblemente en la gama de 3.5 a 6, incluso
más preferiblemente en la gama de 4 a 5, por ejemplo alrededor de
4.5. El tampón es por tanto preferiblemente un tampón capaz de
neutralizar el medio a dicho pH.
El detergente puede ser cualquier detergente
adecuado, preferiblemente, un detergente que contiene derivados de
ácidos grasos insaturados, por ejemplo, Tween 80.
En una forma de realización de la invención, el
medio de adaptación es el medio de adaptación que se describe en el
ejemplo 2 aquí a continuación.
La presente invención se refiere a organismos
microbianos depositados bajo los números de registro DSM 15568, DSM
15569, DSM 15570, y DSM 15571 a DSMZ- Deutsche Sammlung von
Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Mascheroder Weg 1b, 38124
Braunschweig, ALEMANIA. Los detalles con respecto a los organismos
microbianos depositados se dan en la tabla a continuación.
Los depósitos fueron hechos bajo las provisiones
del tratado de Budapest en el International recognition of the
Deposit of Microorganisms for the Purpose of Patent Procedure y
regulaciones en virtud del mismo.
\vskip1.000000\baselineskip
Cepas de Oenococcus oeni con resistencia
a un pH inferior a 3.2 y más de 13 vol% de etanol fueron aislados
de distintos vinos con fermentación maloláctica espontánea
completada usando técnicas conocidas en la técnica.
El objetivo de la mutagénesis de las cepas de
Oenococcus oeni fue obtener mutantes donde el metabolismo
ácido cítrico, representado en la Fig 1, fue eliminado. La
mutagénesis de las cepas de Oenococcus oeni se llevó a cabo
añadiendo 0.2 ml de etilmetanosulfanato a 10 ml de un cultivo de
fase estacionaria de Oenococcus oeni. Tras la incubación de
la mezcla durante dos horas a 30ºC, 0.1 ml fue transferido a 10 ml
de medio de cultivo fresco y se incubó durante 48 horas a 30ºC. La
composición del medio de cultivo fue en peso:
- 2% de glucosa
- 2% de fructosa
- 2% de extracto de levadura (Oxoid Ltd., Inglaterra)
- 0.02% de MnSO_{4}\cdot7H_{2} O
- 0.2% de Tween^{TM} 80
- pH ajustado a 5.0 con 20% de NaOH.
Del cultivo de fase estacionaria, fueron hechas
placas de extensión usando los métodos que se describen por G. M.
Kempler y L. L. McKay (Appl. Environ. Microbiol.; 1980, 39,
926-927) excepto que el agar usado tenía la
siguiente composición:
- 1% de glucosa
- 1% de fructosa
- 1% de extracto de levadura (oxoid Ltd., Inglaterra)
- 0.02% de MnSO_{4}\cdot7H_{2} O
- 0.2% de Tween^{TM} 80
- 2% de agar (agar-agar, Merck, Alemania)
- PH ajustado a 5.5 con 20% HCl
Las placas fueron incubadas durante 10 días a
30ºC. En las placas, colonias blancas conteniendo bacterias mutadas
no fermentadoras de ácido cítrico podían ser diferenciadas de las
colonias azules conteniendo bacterias fermentadoras de ácido
cítrico normal.
\vskip1.000000\baselineskip
Un recipiente de vidrio estéril de 5 litros fue
añadido 4 litros de zumo de uva estéril Biotta (Biotta AG, Suiza)
ajustada con sacarosa a una concentración de azúcar total de 212 g/l
y se inoculó con 1.5 g de levadura activa seca (Saccharomyces
cerevisiae, Saint George S101, Fould-Springer,
Francia). El zumo fue incubado a 23ºC. Después de 14 días la
fermentación alcohólica fue completada y el vino fue ajustado a pH
3.4 con 20% HCl. La concentración total de glucosa y fructosa en el
vino fue inferior a 5 g/litro, la concentración de etanol fue 12,0%
(v/v), y la concentración de ácido L-málico y ácido
cítrico fue de 3,3 g/litro y 0,45 g/litro respectivamente. Las
concentraciones de glucosa, fructosa, etanol, ácido málico, y ácido
cítrico fueron determinadas por los kits de prueba enzimática de
Boehringen Mannheim, Alemania.
Por razones desconocidas el crecimiento de los
mutantes seleccionados en medios de cultivo disponibles
comercialmente para las bacterias del ácido láctico (Caldo MRS de
Oxoid Ltd.) eran lentos en comparación con las cepas no mutadas.
Además, cuando se precultivaron en caldo MRS durante 48 horas a 30ºC
y se inocularon directamente del caldo de cultivación en el vino
experimental, el índice de supervivencia de los mutantes inoculados
en el vino medidos 2 días después de la inoculación fue
20-50 veces más bajo en comparación con las cepas
no mutadas. Claramente, la mutación en las cepas seleccionadas, de
alguna manera afecta el crecimiento y la capacidad de sobrevivir a
la inoculación directa en el vino.
Examen de nuevo medio cultivo y adaptación para
la producción de mutantes de Oenococcus oeni no
fermentadores del ácido cítrico.
La cepa seleccionada de Oenococcus oeni
DSM 15571 no fermentadora del ácido cítrico fue cultivada en el
medio de cultivo y adaptación de la siguiente composición en
peso:
- 5.5% de glucosa
- 5.5% de fructosa
- 3.9% de extracto de levadura (oxoid Ltd., Inglaterra)
- 0.02% de MnSO_{4}\cdot7H_{2} O
- 0.2% de Tween^{TM} 80
- pH ajustado a 4.5 con 20% de HCl.
El medio de cultivo y adaptación fue
esterilizado a 121ºC durante 10 minutos y enfriado a 30ºC.
El medio fue inoculado con la cepa de
Oenococcus oeni DSM 15571 no fermentadora del ácido cítrico
que había sido precultivada en un medio con la misma composición
durante 48 horas a 30ºC.
El medio inoculado fue mantenido a 30ºC y a pH
4.5 constante por la adición de 20% de NaOH. La Figura 2 muestra el
crecimiento de la cepa de Oenococcus oeni medida como la
densidad óptica a 600 nm (OD600), la concentración total de azúcar
(glucosa + fructosa), y la cantidad calculada de azúcar fermentada
en el medio.
En diferentes tiempos durante la fermentación,
fueron retiradas muestras de 200 ml. El nombre y tiempo del
muestreo, la OD600, la concentración total de azúcar, y la cantidad
calculada de azúcar fermentada en las muestras se muestran en la
tabla 1. Las bacterias fueron cosechadas de la muestra por
centrifugación. El concentrado de bacterias de la centrifugación
fue resuspendido en agua estéril conteniendo 4% de gelatina como
crioprotector y liofilizado usando técnicas conocidas en la
técnica.
La enumeración de bacterias viables en el
producto liofilizado y en vino inoculado fue realizada después de
su dilución apropiada en agua conteniendo 0.1% de peptona y 0.9% de
NaCl, seguido del sembrado por vertido en placa en agar. La
composición del agar usada fue en peso:
- 2% de glucosa
- 2% de fructosa
- 2% de extracto de levadura (Oxoid Ltd., Inglaterra)
- 0.02% de MnSO_{4}\cdot7H_{2} O
- 0.2% de Tween^{TM} 80
- 2% de Agar (Agar-agar, Merck, Alemania)
- pH ajustado a 5.0 con 20% de HCl.
- El agar fue esterilizado en autoclave a 125ºC durante 10 minutos y enfriado a 45ºC antes de su uso. Cuentas viables fueron obtenidas como el número de unidades formadoras de colonias (UFC) tras la incubación a 30ºC durante 7 días
Basándose en la determinación de UFC/g en las
muestras liofilizadas, 4 L de vino experimental fueron inoculados
directamente con las muestras liofilizadas de Oenococcus oeni
DSM 15571 en una concentración inicial de 5 x 10^{6} UFC/mL de
vino. El vino fue incubado a 23ºC. La figura 3 muestra las UFC/mL
medidas en los vinos inoculados con la muestra A, B, C, y D. La
tabla 2 muestra el índice de supervivencia de Oenococcus
oeni DSM 15571 en el vino el día 2 determinado como un % del
nivel de inoculación inicial.
Los resultados en la figura 3 muestran que había
un mínimo en las UFC/mL medidas en el vino 2 días después de la
inoculación después de lo cual las bacterias comenzaron a crecer. La
Figura 3 y tabla 2 también muestran que había una diferencia muy
grande en la supervivencia de las muestras de bacterias inoculadas
en el vino después de 2 días. La muestra A, que fue cosechada del
fermentador cuando 44.8 g/l del azúcar fue fermentada (tabla 1),
sobrevivió pobremente la inoculación en vino. Sólo 0.4% de las
bacterias inoculadas estaba viva en el vino después de 2 días
(tabla 2). No obstante, para la muestra B, C, y D, que fue cosechada
del fermentador cuando respectivamente 68, 84, y 100 g/l del azúcar
fue fermentado, el índice de supervivencia de las bacterias en el
día 2 en el vino se incrementó a 10.2%, 44%, y 98% respectivamente.
Los resultados muestran que hay un incremento claro en la
adaptación de la cepa Oenococcus oeni DSM 15571 no
fermentadora del ácido cítrico a sobrevivir a la inoculación
directa en vino cuando más de 44.8 g/l del azúcar es fermentado
durante la propagación del mutante de la bacteria.
\vskip1.000000\baselineskip
La fermentación maloláctica inducida por la
preparación liofilizada de la cepa Oenococcus oeni DSM 15571
no fermentadora del ácido cítrico, preparada como se describe para
la muestra D en el ejemplo 2, fue examinada en 4 L de vino
experimental inoculado directamente con la muestra liofilizada a una
concentración inicial de 2 x 10^{6} UFC/mL de vino.
Los resultados de este experimento se muestran
en la Fig. 4 de donde resulta que el índice de supervivencia de la
cepa fue del 90% medido 2 días después de la inoculación después de
lo cual las cepas comenzaron a multiplicarse en el vino y degradar
el ácido málico, que fue extraído después de 10 días. El mutante no
fermentador del ácido cítrico no degradó el ácido cítrico en el
vino y la concentración de ácido acético incrementó sólo de 390 a
450 mg/l durante el experimento.
\vskip1.000000\baselineskip
La preparación liofilizada de los tres mutantes
no fermentadores del ácido cítrico de Oenococcus oeni, DSM
15570, DSM 15569, y DSM 15571 fueron evaluados por inoculación
directa en barriles de roble de 250 L conteniendo diferentes vinos
de Russian River y Sonoma, California (véase descripción de las
figuras para más detalles) o por inoculación directa en el vino
experimental que se describe en el ejemplo 2. Todas las
preparaciones liofilizadas fueron preparadas como se describe
anteriormente para la muestra D en el ejemplo 2. Para la
comparación, un cultivo liofilizado comercial (Viniflora oenos de
Chr. Hansen A/S, Dinamarca) de Oenococcus oeni (cepa DSM
7008) con un metabolismo de ácido cítrico normal fue incluido.
Los resultados de los experimentos se muestran
en la Fig. 5 y Fig. 6A. En todos los barriles inoculados el índice
de supervivencia de los mutantes medido dos días después de la
inoculación fue del 65 al 100%. Todos los barriles completaron la
degradación del ácido málico dentro de los 19 a 24 días. Los
resultados muestran que las cepas mutantes no fermentadoras del
ácido cítrico no degradaron el ácido cítrico en el vino y la
concentración de ácido acético sólo incrementó de 35 a 70 mg/l
durante los ensayos que fue significativamente inferior que el
incremento de 221 a 247 mg/l medido para la cepa fermentadora de
ácido cítrico normal.
La Figura 6B muestra la degradación de ácido
málico y cítrico en vino experimental después de la inoculación
directa de bacterias liofilizadas de las cepas DSM; 15569 y 15570.
Todas las preparaciones liofilizadas fueron preparadas como se
describe anteriormente para la muestra D en el ejemplo 2. El vino
experimental fue preparado como se describe en el ejemplo 2 excepto
que contenía 3.4 g/litro de ácido málico y 0.49 g/litro de ácido
cítrico. Para la comparación, Viniflora oenos y Viniflora CH35
(ambos disponibles de Chr. Hansen A/S) fueron incluidas. El
experimento fue llevado a cabo a 23ºC. Como es aparente la
fermentación de ácido málico es completada después de 8 a 13 días.
En las cepas de prueba, esencialmente nada de ácido cítrico es
degradado, mientras que en los experimentos de control, la
degradación de ácido cítrico es completada después de 13 y 20 días
respectivamente. Después de 50 días de incubación el vino incubado
con DSM 15569 comprendió 470 mg/l de ácido cítrico y el vino
incubado con DSM 15570 comprendió 440 mg/l de ácido cítrico. La
concentración de inicio de ácido cítrico en el vino fue de 490
mg/l.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ejemplos 5-7 no forman parte
de la invención.
Una composición de activación seca fue producida
combinando los siguientes componentes: 50 g de glucosa
- 50 g de fructosa
- 10 g de extracto de levadura (Oxoid Ltd., Inglaterra)
- 0.45 g de ácido tartárico
- 01 g de MnSO_{4}.7H_{2} O
- 20 g de la cepa Oenococcus oeni DSM 15568 (cepa fermentadora de ácido cítrico normal) liofilizada
El ácido tartárico es un ácido orgánico con
capacidad tamponadora. La cantidad de ácido tartárico en la
mencionada composición fue elegida de modo que la composición seca,
cuando se le añadió agua hasta un total de 1 L, resultó en un pH de
4.9 en la solución. La cepa liofilizada de Oenococcus oeni
DSM 15568 en la composición contenía 4 x 10^{11} UFC/g y fue
preparada como se describe para la muestra A en el ejemplo 2.
La composición de activación seca combinada fue
rehidratada por la adición de agua a un total de 1 L seguida de la
incubación de la solución de la composición de activación a 23ºC. La
solución de la composición de activación, que desde el inicio
contenía un total de 100 g de azúcar/L y 8 x 10^{9} UFC/mL de la
cepa Oenococcus oeni DSM 15568 fue seguida por la
determinación de azúcar total/L, pH y UFC/mL. Los resultados se
muestran en la Fig. 7 de donde aparece que durante las 46 horas de
activación el número de bacterias viables medidas como UFC/mL fue
casi constante en la solución de activación. La concentración de
azúcar total disminuyó dentro de las 4 horas a menos de 55 g/L y
finalizó a 15 g/l después de 46 horas de activación, mientras el pH
disminuyó rápido desde el pH inicial de 4.9 a pH 4.0 después de 4
horas y finalizó en pH 3.43 después de 46 horas.
En diferentes tiempos durante la activación,
cuatro muestras llamadas 1, 2, 3, y 4 fueron retiradas de la
solución. El nombre y tiempo del muestreo, el pH, la cantidad de
azúcar total, y la cantidad calculada de azúcar fermentada en las
muestras se muestran en la tabla 3.
1 ml de las muestras 1, 2, 3, y 4 fue inoculado
directamente en 2.5 de vino experimental en un recipiente de 5 L
que resultó en un número inicial de bacterias de 3.2 x 10^{6}
UFC/mL. El número de bacterias viables y la concentración de ácido
málico en el vino fue seguido y los resultados se muestran en la
Fig. 8. La tabla 4 muestra el % de supervivencia de las bacterias
inoculadas medidas el día 2 en el vino. También fue incluida en el
experimento la inoculación directa en el vino experimental de la
cepa liofilizada de Oenococcus oeni DSM 15568 preparada como
se describe para la muestra A en el ejemplo 2. La preparación
liofilizada fue inoculada en una concentración de 3.2 x 10^{6}
UFC/mL.
La Fig. 8 muestra que había un mínimo en las
UFC/mL medidas en el vino 2 días después de la inoculación después
de lo cual las bacterias comenzaron a crecer. Los resultados en la
Fig. 8 y tabla 4 muestran claramente que las bacterias inoculadas
de la solución de activación sobrevivieron mejor en el vino y
llevaron a cabo una fermentación maloláctica más rápida que las
bacterias liofilizadas inoculadas directamente en el vino. Los
resultados muestran además que el índice de supervivencia y el
rendimiento de la degradación de ácido málico de las bacterias en
el vino incrementó con el tiempo de incubación de las bacterias en
la solución de activación. El índice de supervivencia el día 2 en
el vino de las bacterias de las muestras tomadas de la solución de
activación después de 4, 8, 19, y 46 horas de incubación fue de 3%,
33%, 94%, y 100% respectivamente y el incremento en los índices de
supervivencia resultaron en una velocidad significativamente
incrementada de la fermentación maloláctica.
\vskip1.000000\baselineskip
Una composición de activación seca fue producida
como se describe en el ejemplo 5 excepto la cepa de bacterias donde
15 g del producto liofilizado de la seleccionada cepa mutante
Oenococcus oeni DSM 15569 no fermentadora del ácido cítrico
fue usada y que la cantidad de azúcar fue cambiada a 55 g de glucosa
y 55 g de fructosa. La cepa liofilizada fue preparada como se
describe para la muestra A en el ejemplo 2 y el producto contenía
3.5 x 10^{11} UFC/g.
La composición de activación seca fue
rehidratada por adición de agua en un total de 1 L que resultó en
una concentración de bacterias de 5.3 x 10^{9} UFC/mL. La solución
de activación fue incubada a 23ºC. Después de 8, 16, 24 y 38 horas
de incubación respectivamente, una muestra de 1 ml de la solución de
bacterias activadas fue inoculada directamente en 2.5 L de vino
experimental en un recipiente de 5L resultando en un número de
bacterias inicial de 2.1 x 10^{6} UFC/mL. Las muestras fueron
llamadas 1, 2, 3, y 4 respectivamente. También incluido en el
examen fue la inoculación directa del vino con la cepa liofilizada
de Oenococcus oeni DSM 15569 en una concentración de 2.1 x
10^{6} UFC/mL. La cepa liofilizada fue preparada como se describe
para la muestra A en el ejemplo 2. El vino fue mantenido a 20ºC y
seguido por la determinación de UFC/mL y concentración de ácido
málico.
La Figura 9 muestra los resultados de los 5
vinos. Los índices de supervivencia medidos el día 2 en los vinos
inoculados directamente con bacterias liofilizadas y las muestras 1,
2, 3, y 4 de la solución de bacterias activadas fueron 4%, 10%,
52%, 90% y 100% respectivamente. Claramente, las bacterias activadas
sobrevivieron mucho mejor en el vino que las bacterias liofilizadas
directamente inoculadas y el índice de supervivencia en el vino
para las bacterias activadas incrementó con el tiempo de incubación
en la solución de activación. La actividad maloláctica en los vinos
reflejó claramente los diferentes índices de supervivencia. Los
vinos con los índices de supervivencia más altos también tenían las
degradaciones de ácido málico más rápidas.
\vskip1.000000\baselineskip
Una composición de activación seca fue producida
como se describe en el ejemplo 5 excepto la cepa de bacterias donde
15 g de producto liofilizado del cultivo comercial de Viniflora
oenos de Chr. Hansen A/S, Dinamarca, fue usado. El producto
contiene Oenococcus oeni, cepa DSM 7008 y es recomendado por
el productor para la inoculación directa en vino en una
concentración de 15 g por cada 2500 L de vino.
La composición de activación seca fue
rehidratada por adición de agua a un total de 1 L que resultó en
una concentración de bacterias de 1.2 x 10^{10} UFC/mL. La
solución de activación fue incubada a 23ºC y después de 24 horas el
número de bacterias en la solución de activación fue determinada en
1.1 x 10^{10} UFC/mL indicando que ningún crecimiento de las
bacterias había ocurrido. Después de las 24 horas una muestra de la
solución de las bacterias activadas fue inoculada en 2.5 L de vino
Chardonnay de California con 12.5 vol% de etanol, pH 3.3 y con 20
ppm de SO_{2} añadidos en el aplastado. La inoculación resultó en
una concentración de bacterias inicial de 5 x 10^{6} UFC/mL en el
vino. 2.5 L del vino también fueron inoculados directamente con el
producto liofilizado según la instrucción del fabricante que también
resultó en una concentración de bacterias inicial de 5 x 10^{6}
UFC/mL. El vino fue mantenido a 24ºC y seguido de la determinación
de UFC/mL y concentración de ácido málico. La figura 10 muestra los
resultados del examen de donde puede ser calculado, que el índice
de supervivencia medido el día dos fue del 40% en el vino inoculado
directamente con bacterias liofilizadas mientras que fue del 100%
en el vino inoculado con bacterias de la solución de activación. En
lo último las bacterias también comenzaron a crecer sin una fase de
latencia y la fermentación maloláctica fue
completada dentro de 16 días mientras que le llevó 20 días en el vino inoculado directamente con bacterias liofilizadas.
completada dentro de 16 días mientras que le llevó 20 días en el vino inoculado directamente con bacterias liofilizadas.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de referencias citada por el
solicitante ha sido recopilada exclusivamente para la información
del lector. No forma parte del documento de patente europea. La
misma ha sido confeccionada con la mayor diligencia; la OEP sin
embargo no asume responsabilidad alguna por eventuales errores u
omisiones.
\sqbullet WO 9320180 A [0009]
\sqbullet US 6284518 B1 [0010]
\sqbullet US 4562077 A [0011]
\sqbullet US 5460837 A [0015]
\sqbulletNielsen et al.
Appl. Environ. Microbiol., 1999, vol. 65,
740-745 [0005]
\sqbulletViljakainen Laakso Eur.
Food Res. Technol., 2000, vol. 211,
438-442 [0005]
\sqbulletCarrié et al. Revue
des oenologues, 2002, vol. 103, 16-18
[0012]
\sqbulletNielsen et al. Am.
J. Enol. Vitic., 1996, vol. 47, 42-48
[0013]
\sqbulletNielsen Richelieu Appl.
Environ. Microbiol., 1999, vol. 65,
740-745 [0014]
\sqbullet J. D. Mellor Fundamentals of
Freeze Drying Academic Press 1978. [0038] [0066]
[0106]
\sqbullet G. M. Kempler L. L.
McKay Appl. Environ. Microbiol., 1980, vol. 39,
926-927 [0099] [0121]
Claims (40)
1. Organismo microbiano aislado y purificado, en
donde dicho organismo microbiano es capaz de fermentar ácido málico
a ácido láctico,
y en donde dicho organismo microbiano, cuando es
colocado en un medio conteniendo una cantidad predeterminada de
ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho un 80% de dicho
ácido cítrico,
y en donde el organismo microbiano tiene al
menos una de las siguientes características, cuando dicho organismo
microbiano en un estado congelado o liofilizado es añadido
directamente en un zumo de frutas fermentado:
- i)
- un índice de supervivencia que es al menos 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 y comprendiendo al menos 12 vol% de etanol.
- ii)
- un índice de supervivencia que es al menos 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril con un pH de menos de 4 comprendiendo al menos 13.9 vol% de etanol.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo microbiano es una cepa de Oenococcus
oeni.
3. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde la característica es un índice de supervivencia que es
al menos 10% después de dos días a 23ºC en un vino preparado por la
fermentación de un zumo de frutas de uva estéril sin sulfito
añadido, dicho vino que tiene un contenido de etanol de 12.0 vol%,
pH 3.4, inferior a 5 g/l de azúcar residual, 3.3 g/l de ácido
málico, y 450 mg/l de ácido cítrico.
4. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde la característica es un índice de supervivencia que
está en la gama del 70% al 100% después de dos días a 18ºC en un
vino preparado con 30 ppm de SO_{2} añadido antes de la
fermentación alcohólica, dicho vino que tiene un contenido de etanol
de 13.8 vol%, pH 3.5, 1.3 g/l de ácido málico, y 340 mg/l de ácido
cítrico.
5. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde la característica es un índice de supervivencia que es
al menos 80% después de dos días a 17ºC en un vino preparado sin
SO_{2} añadido, dicho vino que tiene un contenido de etanol de
13.9 vol%, pH 3.6, 1.7 g/l de ácido málico, y 320 mg/l de ácido
cítrico.
6. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo microbiano cuando es colocado en una
composición líquida comprendiendo una cantidad predeterminada de
ácido málico es capaz de degradar al menos 90% de dicho ácido
málico.
7. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo microbiano sólo es capaz de degradar
como mucho el 50% de dicho ácido cítrico.
8. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo microbiano reduce el contenido de ácido
cítrico en menos del 50% dentro de 50 días, cuando es añadido
directamente en un estado congelado o liofilizado a un zumo de
frutas fermentado en una concentración de UFCs en la gama de 1 x
10^{6} a 5 x 10^{7} por cada ml, en donde dicho zumo de frutas
fermentado es preparado por la fermentación de un zumo de frutas
estéril sin sulfito añadido resultando en un zumo de frutas
fermentado que tiene un contenido de etanol de 12.0 vol%, pH 3.4,
inferior a 5 g/l de azúcar residual, 3.3 g/l de ácido málico, y 450
mg/l de ácido cítrico.
9. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo es resistente a los bacteriófagos.
10. Organismo microbiano según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en donde dicho organismo retiene sus
características durante la propagación y concentración.
11. Organismo microbiano según la reivindicación
1, en donde dicho organismo es seleccionado del grupo que consiste
en cepas depositadas bajo los números de registro DSM 15569, DSM
15570, y DSM 15571.
12. Método de degradación preferentemente del
ácido málico sobre el ácido cítrico en una composición líquida
comprendiendo ácido málico y ácido cítrico, dicho método
comprendiendo las etapas de
- i)
- proporcionar una composición líquida comprendiendo ácido málico y ácido cítrico;
- ii)
- proporcionar un organismo microbiano según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, en donde dicho organismo microbiano ha sido congelado o liofilizado,
- iii)
- añadir dicho organismo microbiano liofilizado o congelado directamente a dicha composición líquida
- iv)
- incubar dicha composición líquida y dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación de al menos 70% del ácido málico,
- v)
- obtener así una composición líquida final comprendiendo menos del 30% del ácido málico inicial y al menos 20% del ácido cítrico inicial.
\vskip1.000000\baselineskip
13. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida es zumo de uva o zumo de uva fermentado.
14. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida tiene un pH en la gama de 2 a 5.
15. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida comprende etanol en la gama de 5 a 15
vol%.
16. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida comprende ácido málico en la gama de 1 a 10
g/l.
17. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida comprende ácido cítrico en la gama de 50 a
2000 mg/l.
18. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida final comprende al menos 50% del ácido
cítrico inicial.
19. Método según la reivindicación 12, en donde
la composición líquida final comprende menos 20% del ácido málico
inicial.
20. Método según la reivindicación 12, en donde
el organismo microbiano es añadido en una concentración de menos de
5 x 10^{7} UFC por cada ml de la composición líquida.
21. Método según la reivindicación 13, en donde
el zumo de uva fermentado es seleccionado del grupo que consiste en
vinos tintos, vinos blancos y vinos espumantes.
22. Método según la reivindicación 12, en donde
la fase iv) comprende la incubación durante un periodo temporal más
largo que el requerido para completar la fermentación
maloláctica.
23. Método de inducción de la fermentación
maloláctica durante la producción de vino, comprendiendo las etapas
de
- i)
- proporcionar un zumo de uva o un zumo de uva fermentado
- ii)
- proporcionar un organismo microbiano según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11,
- iii)
- incubar dicho zumo de uva o zumo de uva fermentado con dicho organismo microbiano bajo condiciones que permiten la degradación de ácido málico,
- iv)
- inducir así la fermentación maloláctica
\vskip1.000000\baselineskip
24. Método según la reivindicación 23, en donde
dicho organismo microbiano en un estado congelado o liofilizado es
añadido directamente a dicho zumo de uva o un zumo de uva
fermentado.
25. Método según la reivindicación 23, en donde
el organismo microbiano es añadido en una concentración de menos de
5 x 10^{7} UFC por cada ml del zumo de uva o un zumo de uva
fermentado.
26. Método según la reivindicación 23, en donde
el zumo de uva o un zumo de uva fermentado tiene un pH en la gama
de 2 a 5, tal como 3 a 4.
27. Método según la reivindicación 23, en donde
el zumo de uva o un zumo de uva fermentado comprende etanol en la
gama de 5 a 15 vol%.
28. Método según la reivindicación 23, en donde
el zumo de uva o un zumo de uva fermentado comprende en la gama de
1 a 10 g/l.
29. Método según la reivindicación 23, en donde
el zumo de uva o un zumo de uva fermentado comprende ácido cítrico
en la gama de 50 a 2000 mg/l.
30. Método según la reivindicación 23, en donde
el vino es seleccionado del grupo que consiste en vinos tintos,
vinos blancos y vinos espumantes.
31. Concentrado de organismos microbianos
comprendiendo o consistiendo en el organismo microbiano según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, en donde dicho
concentrado tiene un contenido de unidades formadoras de colonias
estando en la gama de 10^{9} a 10^{12} por cada g.
32. Concentrado según la reivindicación 31, en
donde dicho organismo microbiano ha sido propagado en un medio de
adaptación comprendiendo al menos 6% de azúcar
33. Concentrado según la reivindicación 32, en
donde dicho medio de adaptación comprende al menos 3% de glucosa y
al menos 3% de fructosa
34. Concentrado según la reivindicación 32, en
donde dicho organismo microbiano ha sido propagado en dicho medio
de adaptación durante al menos 12 horas.
35. Método para producir un organismo microbiano
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, en donde dicho
método comprende las fases de
- i)
- proporcionar un microbiano resistente al organismo a un pH inferior a 5 y una concentración de etanol de al menos 8%,
- ii)
- someter dicho organismo microbiano a mutagénesis, obteniendo así más de un organismo microbiano mutado diferente
- iii)
- seleccionar organismos microbianos mutados capaces de fermentar ácido málico a ácido láctico, en donde dicho organismo microbiano cuando es colocado en un medio conteniendo una cantidad predeterminada de ácido cítrico sólo es capaz de degradar como mucho el 80% de dicho ácido cítrico, y en donde el organismo microbiano tiene al menos una de las siguientes características, cuando dicho organismo microbiano en un estado congelado o liofilizado es añadido directamente a un zumo de frutas fermentado:
- a)
- un índice de supervivencia que es al menos 1% después de dos días a 23ºC en un zumo de frutas fermentado estéril comprendiendo al menos 12 vol% de etanol;
- b)
- un índice de supervivencia que es al menos 70% después de dos días a 17ºC en un zumo de frutas fermentado estéril comprendiendo al menos 13.9 vol% de etanol
\vskip1.000000\baselineskip
36. Método según la reivindicación 35, en donde
dicho organismo microbiano es resistente a pH 3.2.
37. Método según la reivindicación 35, en donde
dicho organismo microbiano es resistente a una concentración de
etanol de 13 vol%.
38. Método de preparación de un organismo
microbiano seco capaz de fermentar ácido málico a ácido láctico,
que tiene una actividad de degradación reducida del ácido cítrico y
que es capaz de sobrevivir después de la inoculación directa en
zumo de frutas fermentado, dicho método comprendiendo las etapas
de
- i)
- proporcionar un organismo microbiano según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11,
- ii)
- proporcionar un medio de adaptación comprendiendo al menos 6% de azúcar
- iii)
- propagar dicho organismo microbiano en dicho medio de adaptación bajo condiciones permitiendo el crecimiento de dicho organismo microbiano
- iv)
- cosechar dicho organismo microbiano
- v)
- secar dicho organismo microbiano
\vskip1.000000\baselineskip
39. Método según la reivindicación 38, en donde
dicho medio de adaptación comprende al menos 3% de glucosa y al
menos 3% de fructosa.
40. Método según la reivindicación 38, en donde
dicho organismo microbiano es propagado en dicho medio de
adaptación durante al menos 12 horas.
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DK200300977 | 2003-06-26 | ||
DKPA200300977 | 2003-06-26 | ||
US48313903P | 2003-06-30 | 2003-06-30 | |
US483139P | 2003-06-30 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2349285T3 true ES2349285T3 (es) | 2010-12-29 |
Family
ID=34973321
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES04738952T Expired - Lifetime ES2349285T3 (es) | 2003-06-26 | 2004-06-25 | Iniciación de fermentación. |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US7892583B2 (es) |
ES (1) | ES2349285T3 (es) |
PT (1) | PT1664261E (es) |
SI (1) | SI1664261T1 (es) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES2386713A1 (es) * | 2011-01-31 | 2012-08-28 | Universidad Castilla-La Mancha | Cepa de bacteria láctica oenococcus oeni. |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2016069654A1 (en) * | 2014-10-27 | 2016-05-06 | Ysdr, Llc | Method and composition of preserving wine |
US9382507B2 (en) * | 2008-07-16 | 2016-07-05 | Sandt Associates | Malolactic fermentation of wine |
CN107828668B (zh) * | 2017-12-12 | 2020-12-29 | 福建农林大学 | 一种亚肉座菌发酵生产葡甘聚糖酶的培养基及方法 |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4562077A (en) | 1983-10-19 | 1985-12-31 | Microlife Technics, Inc. | Method for converting malic acid to lactic acid in wine |
DK32788D0 (da) | 1988-01-25 | 1988-01-25 | Hansens Lab A S Chr | Fremgangsmaade til fremstilling af en drik |
ATE109823T1 (de) | 1988-02-05 | 1994-08-15 | Unisearch Ltd | Malolaktische fermentation von wein. |
US6284518B1 (en) | 1990-10-09 | 2001-09-04 | Cornell Research Foundation, Inc. | Synthetic media for the production of malolactic starter cultures |
CH682155A5 (es) | 1991-04-16 | 1993-07-30 | Nestle Sa | |
DE635050T1 (de) | 1992-04-01 | 1995-07-13 | Hansens Lab | Eine methode zur induktion der malolaktischen gärung von wein oder fruchtsaft durch direktes animpfen mit einer nicht-aktivierten starterkultur. |
-
2004
- 2004-06-25 PT PT04738952T patent/PT1664261E/pt unknown
- 2004-06-25 SI SI200431533T patent/SI1664261T1/sl unknown
- 2004-06-25 US US10/562,421 patent/US7892583B2/en active Active
- 2004-06-25 ES ES04738952T patent/ES2349285T3/es not_active Expired - Lifetime
-
2011
- 2011-01-31 US US13/017,332 patent/US20110123673A1/en not_active Abandoned
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES2386713A1 (es) * | 2011-01-31 | 2012-08-28 | Universidad Castilla-La Mancha | Cepa de bacteria láctica oenococcus oeni. |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SI1664261T1 (sl) | 2010-12-31 |
US20070009631A1 (en) | 2007-01-11 |
US7892583B2 (en) | 2011-02-22 |
US20110123673A1 (en) | 2011-05-26 |
PT1664261E (pt) | 2010-11-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lonvaud-Funel | Lactic acid bacteria in the quality improvement and depreciation of wine | |
Davis et al. | Practical implications of malolactic fermentation: a review | |
Daeschel et al. | Controlling wine malolactic fermentation with nisin and nisin-resistant strains of Leuconostoc oenos | |
AU2011247632B2 (en) | Method for inoculating yeast into fruit juice | |
CN111793590B (zh) | 一种酸化啤酒的酿造菌剂及其应用 | |
ES2334753B1 (es) | Cepa de saccharomyces cerevisiae cect 13030 y su uso para la elaboracion de bebidas alcoholicas. | |
ES2433921T3 (es) | Cepas malolácticas tolerantes al alcohol para la maduración de los vinos de pH medio o elevado | |
EP0398957B2 (en) | A method of inducing the decarboxylation of malic acid in must or fruit juice | |
ES2349285T3 (es) | Iniciación de fermentación. | |
US5607854A (en) | Composition for inducing malolactic fermentation using Leuconostoc oenos strains accession numbers DSM 7008-DSM 7015 | |
US6316034B1 (en) | Methods for reducing spoilage in brewery products | |
EP1664261B1 (en) | Initiation of fermentation | |
US7112346B2 (en) | Method of inducing malolactic fermentation in wine or fruit juice by direct inoculation with a non-activated started culture | |
Cruess | The role of microorganisms and enzymes in wine making | |
Raines-Casselman | Yeast Propagation and Maintenance: Principles and Practices | |
WO2000060948A1 (es) | Procedimiento de fermentacion de productos vegetales | |
AU676472C (en) | A method of inducing malolactic fermentation in wine or fruit juice by direct inoculation with a non-activated starter culture | |
Bartowsky¹ et al. | Lactiplantibacillus plantarum, a versatile tool to drive malolactic fermentation | |
Mojsov et al. | The effect of pectolytic enzyme treatments on white grape mashes of Smederevka on the microbiological quality of wines | |
Ryan | Maloethanolic deacidification of high acid juices during wine yeast alcoholic fermentation: a thesis presented in partial fulfilment of the requirements for the degree of Master of Science in Microbiology at Massey University | |
WINE | Lactic Acid Bacteria Development in Wine | |
WO1995020644A1 (en) | Use in the oenological field of lysozyme and its salts in association with synergistic materials | |
CZ304725B6 (cs) | Kmen bakterií Lactobacillus paracasei RIBM 2-107 a jeho použití při výrobě nealkoholických a nízkoalkoholických nápojů z ovocných a/nebo obilných substrátů | |
CZ201328A3 (cs) | Kmen bakterií Lactobacillus sp. RIBM 2-108 a jeho použití při výrobě nealkoholických a nízkoalkoholických nápojů z ovocných a/nebo obilných substrátů |