ES2345260T3 - Anticuerpos modificadores de enfermedades cancerosas. - Google Patents

Anticuerpos modificadores de enfermedades cancerosas. Download PDF

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ES2345260T3 ES05714544T ES05714544T ES2345260T3 ES 2345260 T3 ES2345260 T3 ES 2345260T3 ES 05714544 T ES05714544 T ES 05714544T ES 05714544 T ES05714544 T ES 05714544T ES 2345260 T3 ES2345260 T3 ES 2345260T3
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Susan E. Hahn
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Abstract

Anticuerpo monoclonal aislado codificado por el clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-0

Description

Anticuerpos modificadores de enfermedades cancerosas.
Campo de la invención
La presente invención se refiere al aislamiento y producción de anticuerpos modificadores de enfermedades cancerosas (CDMAB) y a la utilización de estas CDMAB en procedimientos terapéuticos y diagnósticos, opcionalmente en combinación con uno o más agentes quimioterapéuticos. Asimismo, la invención se refiere a ensayos de unión, que utilizan los CDMAB de la presente invención.
Antecedentes de la invención
Cada individuo que se presenta con cáncer es único y presenta un cáncer que es tan diferente de otros cánceres como lo es la identidad de la persona. A pesar de ello, la terapia actual trata a todos los pacientes con el mismo tipo de cáncer, en el mismo estado, de la misma manera. Por lo menos en 30 por ciento de estos pacientes fracasará la terapia de primera línea, conduciendo de esta manera a rondas adicionales de tratamiento y a una probabilidad incrementada de fracaso del tratamiento, metástasis y, finalmente, la muerte. Un enfoque superior al tratamiento sería adaptar la terapia al individuo particular. La única terapia actual que se presta la adaptación es la cirugía. El tratamiento de quimioterapia y de radiación no puede adaptarse al paciente, y la cirugía por sí misma, en la mayoría de casos, resulta inadecuada para producir la curación.
Con la llegada de los anticuerpos monoclonales, la posibilidad de desarrollar métodos para adaptar la terapia se hicieron más reales, debido a que cada anticuerpo puede ser dirigido a un único epítopo. Además, resulta posible producir una combinación de anticuerpo que son dirigidos a la constelación de epítopos que definen de manera única un tumor de un individuo particular.
Tras el reconocimiento de que una diferencia significativa entre las células cancerosas y las normales es que las células cancerosas contienen antígenos que son específicos de las células transformadas, la comunidad científica ha mantenido desde hace mucho tiempo que los anticuerpos monoclonales pueden diseñarse para dirigirse específicamente a las células transformadas mediante la unión específica a estos antígenos del cáncer; dando lugar de esta manera a la creencia de que los anticuerpos monoclonales pueden servir de "balas mágicas" para eliminar las células de cáncer.
Los anticuerpos monoclonales aislados según las enseñanzas de la presente invención dada a conocer se ha demostrado que modifican el proceso de la enfermedad cancerosa de una manera que resulta beneficiosa para el paciente, por ejemplo mediante la reducción de la carga tumoral, y se denominarán diversamente en la presente memoria como anticuerpos modificadores de enfermedades cancerosas (CDMAB), o anticuerpos "anticáncer".
En la actualidad, el paciente de cáncer habitualmente presenta pocas opciones de tratamiento. El enfoque regimentado a la terapia del cáncer ha mejorado las tasas globales de supervivencia y de morbilidad. Sin embargo, para el individuo particular, estas estadísticas mejoradas no se correlacionan necesariamente con una mejora de su situación personal.
De esta manera, en el caso de que se proporcionase una metodología que permitiese al médico tratar cada tumor independientemente de otros pacientes de la misma cohorte, ello permitiría el enfoque único de adaptar la terapia a únicamente esa persona. Este curso de terapia idealmente incrementaría la tasa de curación y produciría mejores resultados clínicos, satisfaciendo de esta manera una necesidad sentida desde hace mucho tiempo.
Históricamente la utilización de anticuerpos policlonales ha presentado un éxito limitado en el tratamiento de los cánceres humanos. Se han tratado linfomas y leucemias con plasma humano, pero se produjeron pocas remisiones o respuestas prolongadas. Además, existía una falta de reproducibilidad y ningún beneficio adicional en comparación con la quimioterapia. Los tumores sólidos, tales como los cánceres de mama, los melanomas y los carcinomas de células renales, también han sido tratados con sangre humana, suero de chimpancé, plasma humano y suero de caballo, con resultados correspondientemente impredecibles e ineficaces.
Se han realizado muchos ensayos clínicos de anticuerpos monoclonales para tumores sólidos. En los años ochenta se realizaron por lo menos 4 ensayos clínicos para el cáncer de mama humano que produjeron únicamente 1 respondedor de entre por lo menos 47 pacientes utilizando anticuerpos contra antígenos específicos o basándose en la selectividad de tejidos. No fue hasta 1998 que se realizó un ensayo clínico exitoso utilizando un anticuerpo anti-Her2 humanizado en combinación con cisplatino. En este ensayo, se accedió a 37 pacientes para sus respuestas, de entre las que aproximadamente un cuarto presentó una tasa de respuesta parcial y la mitad presentó una progresión menor o estable de la enfermedad.
Los ensayos clínicos que han investigado el cáncer colorrectal implican anticuerpos contra dianas tanto glucoproteicas como glucolipídicas. Algunos anticuerpos, tales como 17-1A, que presenta cierta especificidad para los adenocarcinomas, ha sido sometido a ensayos clínicos de fase 2 en más de 60 pacientes, presentando únicamente 1 paciente una respuesta parcial. En otros ensayos, la utilización de 17-1A produjo únicamente 1 respuesta completa y 2 respuestas menores entre 52 pacientes en protocolos que utilizan ciclofosfamida adicional. Otros ensayos que implicaban 17-1A proporcionaron resultados similares. La utilización de un anticuerpo monoclonal murino humanizado aprobados inicialmente para la obtención de imágenes tampoco produjeron regresiones tumorales. Hasta hoy no se ha encontrado un anticuerpo que resulte eficaz para el cáncer colorrectal. De manera similar, se han obtenido resultados igualmente pobres para el cáncer de pulmón, los cánceres de cerebro, los cánceres ováricos, el cáncer pancreático, el cáncer de próstata y el cáncer de estómago. Se ha obtenido un éxito limitado en la utilización de anticuerpos monoclonales anti-GD3 para el melanoma. De esta manera, puede observarse que, a pesar de los estudios con éxito utilizando animales pequeños, que son un requisito previo para los ensayos clínicos humanos, los anticuerpos que se han sometido a ensayo hasta el momento han resultado, en su mayor parte, ineficaces.
Patentes anteriores
La patente US nº 5.750.102 da a conocer un procedimiento en el que se transfectan células procedentes de un tumor de un paciente con genes MHC, que pueden clonarse a partir de células o tejido del paciente. A continuación, estas células se utilizan para vacunar al paciente.
La patente US nº 4.861.581 da a conocer un procedimiento que comprende las etapas de obtener anticuerpo monoclonales que son específicos de un componente celular interno de células neoplásicas y normales del mamífero, pero no de componentes externos, marcar el anticuerpo monoclonal, poner en contacto el anticuerpo marcado con tejido de un mamífero que ha recibido terapia para eliminar células neoplásicas, y determinar la eficacia de la terapia mediante la medición de la unión del anticuerpo marcado al componente celular interno de las células neoplásicas en degeneración. Durante la preparación de anticuerpos dirigidos contra antígenos intracelulares humanos, el cesionario reconoce que la células malignas representan una fuente conveniente de dichos antígenos.
La patente US nº 5.171.665 proporciona un nuevo anticuerpo y un método para su producción. Específicamente, la patente enseña la formación de un anticuerpo monoclonal que presenta la propiedad de unirse fuertemente a una proteína-antígeno asociada a tumores humanos, por ejemplo aquéllas del tumor de colon y del tumor de pulmón, uniéndose mucho menos a las células normales.
La patente US nº 5.484.596 proporciona un método de terapia del cáncer que comprende extirpar quirúrgicamente tejido tumoral de un paciente humano de cáncer, tratar el tejido tumoral para obtener células tumorales, irradiar las células tumorales para que sean viables aunque no tumorigénicas, y utilizar estas células para preparar una vacuna para el paciente capaz de inhibir la recurrencia del tumor primario, inhibiendo simultáneamente las metástasis. La patente enseña el desarrollo de anticuerpo monoclonales que son reactivos con los antígenos de superficie de las células tumorales. Tal como se indica en la columna 4, líneas 45 y posteriores, los cesionarios utilizan células tumorales autóctonas en el desarrollo de inmunoterapia específica de expresión de anticuerpos monoclonales activa en neoplasias humanas.
La patente US nº 5.693.763 enseña una gluproteína-antígeno característica de los carcinomas humanos que no es dependiente del tejido epitelial de origen.
La patente US nº 5.783.186 se refiere a anticuerpos anti-Her2 que inducen la apoptosis en células que expresan Her2, a líneas celulares de hibridoma que producen los anticuerpos, a un método de tratamiento de cáncer que utiliza los anticuerpos, y a composiciones farmacéuticas que incluyen dichos anticuerpos.
La patente US nº 5.849.876 describe nuevas líneas celulares de hibridoma para la producción de anticuerpos monoclonales contra antígenos de mucina purificados a partir de fuentes de tejido tumoral y no tumoral.
La patente US nº 5.869.268 se refiere a un método para generar un linfocito humano productor de un anticuerpo específico de un antígeno deseado, un método para producir un anticuerpo monoclonal, así como a anticuerpos monoclonales producidos mediante el método. La patente se refiere particularmente a la producción de un anticuerpo monoclonal humano anti-HD que resulta útil para el diagnóstico y tratamiento de cánceres.
La patente US nº 5.869.045 se refiere a anticuerpos, a fragmentos de anticuerpo, a conjugados de anticuerpos y a inmunotoxinas de una sola cadena reactivas con células de carcinoma humano. El mecanismo por el que funcionan estos anticuerpos es doble: las moléculas son reactivas con antígenos de membrana celular presentes sobre la superficie de los carcinomas humanos, y además los anticuerpos presentan la capacidad de internalizarse en las células de carcinoma, tras la unión, haciendo que resulten especialmente útiles para formar conjugados de anticuerpo-fármaco y de anticuerpo-toxina. En su forma no modificada, los anticuerpos también muestran propiedades citotóxicas a concentraciones específicas.
La patente US nº 5.780.033 da a conocer la utilización de autoanticuerpos para la terapia y profilaxis tumorales. Sin embargo, este anticuerpo es un autoanticuerpo antinuclear procedente de un mamífero de edad avanzada. En este caso, se dice que el autoanticuerpo es un tipo de anticuerpo natural presente en el sistema inmunológico. Debido a que el autoanticuerpo procede de un "mamífero de edad avanzada", no existe ningún requisito de que el autoanticuerpo realmente proceda del paciente bajo tratamiento. Además, la patente dada conocer un autoanticuerpo antinuclear monoclonal y natural procedente de un mamífero de edad avanzada, y una línea celular de hibridoma productora de un autoanticuerpo antinuclear monoclonal.
Descripción resumida de la invención
Los anticuerpos monoclonales modificadores de enfermedades cancerosas pueden prepararse específicamente para un tumor y de esta manera permiten la adaptación individual de la terapia del cáncer. Dentro del contexto de la presente solicitud, los anticuerpos anticáncer que presentan propiedades de eliminación celular (citotóxicas) o de inhibición del crecimiento celular (citostáticas) en lo sucesivo en la presente memoria se denominan citotóxicos. Estos anticuerpos pueden utilizarse como ayuda en la estadificación y diagnóstico de un cáncer, y pueden utilizarse para tratar metástasis tumorales.
La perspectiva de un tratamiento anticáncer individual producirá un cambio en el modo en que se controla el paciente. Un escenario clínico probable es que se obtenga una muestra tumoral en el momento de la presentación, y se almacene en un banco. A partir de esta muestra puede tiparse el tumor a partir de un panel de anticuerpos preexistentes modificadores de enfermedades cancerosas. El paciente se estadifica convencionalmente, aunque los anticuerpos disponibles pueden resultar de utilidad para la estadificación adicional del paciente. El paciente puede tratarse inmediatamente utilizando los anticuerpos existentes, y producir un panel de anticuerpos específicos del tumor utilizando los métodos descritos de manera general en la presente memoria, o mediante la utilización de bibliotecas de expresión fágica conjuntamente con los métodos de cribado dados a conocer en la presente memoria. Todos los anticuerpos generados se añaden a la biblioteca de anticuerpos anticáncer, debido a que existe una posibilidad de que otros tumores puedan portar algunos de los mismos epítopos que los que se están tratando. Los anticuerpos producidos según este método pueden resultar útiles para tratar enfermedades cancerosas en cualquier paciente que presente cáncer que se una a dichos anticuerpos.
Además de los anticuerpos anticáncer, el paciente puede elegir recibir las terapias recomendadas actualmente como parte de un régimen multimodal de tratamiento. El hecho de que los anticuerpos aislados mediante la presente metodología son relativamente no tóxicos para las células no cancerosas permite utilizar combinaciones de anticuerpos a dosis elevadas, solos o conjuntamente con terapia convencional. El elevado índice terapéutico también permite la repetición del tratamiento en una escala de tiempo corta, reduciendo la probabilidad de que surjan células resistentes al tratamiento.
Además, se encuentra comprendido dentro del alcance de la presente invención conjugar modalidades quimioterapéuticas estándares, por ejemplo radionucleidos, con los CDMAB de la presente invención, focalizando de esta manera la utilización de dicha quimioterapia.
En el caso de que el paciente sea refractario al curso inicial de la terapia o se desarrollen metástasis, puede repetirse el procedimiento de generar anticuerpos específicos para el tumor para la repetición del tratamiento. Además, los anticuerpos anticáncer pueden conjugarse con glóbulos rojos obtenidos del paciente y reinfusionarse para el tratamiento de las metástasis. Existen pocos tratamientos eficaces para el cáncer metastásico y las metástasis habitualmente presentan un mal pronóstico, resultando en la muerte. Sin embargo, los cánceres metastásicos habitualmente se encuentran bien vascularizados y la administración de anticuerpos anticáncer por parte de los glóbulos rojos puede presentar el efecto de concentrar los anticuerpos en el sitio del tumor. Incluso antes de las metástasis, la mayoría de células cancerosas dependen del suministro sanguíneo del huésped para su supervivencia y los anticuerpos anticáncer conjugados a glóbulos rojos también pueden resultar eficaces contra tumores in situ. Alternativamente, los anticuerpos pueden conjugarse con otras células hematógenas, por ejemplo linfocitos, macrófagos, monocitos, células asesinas naturales, etc.
Existen cinco clases de anticuerpos y cada una se asocia a una función proporcionada por su cadena pesada. Se cree generalmente que la eliminación de células cancerosas por anticuerpos desnudos se encuentra mediada por la citotoxicidad celular dependiente de anticuerpos (ADCC) o por la citotoxicidad dependiente del complemento (CDC). Por ejemplo, los anticuerpos IgM e IgG2a murinos pueden activar el complemento humano mediante la unión del componente C-1 del sistema de complemento, activando de esta manera la ruta clásica de activación del complemento, que puede conducir a la lisis tumoral. Para los anticuerpos humanos, los anticuerpos activadores del complemento más eficaces generalmente son IgM e IgG1. Los anticuerpos murinos de los isotipos IgG2a e IgG3 resultan eficaces en el reclutamiento de células citotóxicas que presentan receptores Fc que conducirán a la eliminación de células por parte de monocitos, macrófagos, granulocitos y determinados linfocitos. Los anticuerpos humanos de tanto el isotipo IgG1 como el IgG3 median en la ADCC.
Otro posible mecanismo de eliminación de cáncer mediada por anticuerpos podría ser mediante la utilización de anticuerpos que funcionan catalizando la hidrólisis de diversos enlaces químicos en la membrana celular y sus glucoproteínas o glucolípidos asociados, denominados anticuerpos catalíticos.
Existen dos mecanismos adicionales de eliminación de células cancerosas mediada por anticuerpos que se encuentran más ampliamente aceptadas. El primer es la utilización de anticuerpos como vacuna para inducir al cuerpo a producir una respuesta inmunológica contra el antígeno putativo del cáncer que reside sobre la célula tumoral. El segundo es la utilización de anticuerpos con diana en receptores de crecimiento, que interfieren en su función o que regulan negativamente el receptor de manera que se pierde efectivamente su función.
La utilidad clínica de un fármaco para el cáncer se basa en el beneficio del fármaco bajo un perfil de riesgo aceptable para el paciente. En la terapia del cáncer, la supervivencia ha sido generalmente el beneficio más buscado; sin embargo, existen otros beneficios bien reconocidos además de la prolongación de la vida. Entre estos otros beneficios, en los que el tratamiento no afecta adversamente a la supervivencia, se incluyen la paliación de síntomas, la protección frente a sucesos adversos, la prolongación del tiempo hasta la recurrencia, o supervivencia libre de enfermedad, y la prolongación del tiempo hasta la progresión. Estos criterios se encuentran generalmente aceptados y algunos cuerpos reguladores, tales como la U.S. Food and Drug Administration (F.D.A.), aprueban fármacos que producen estos beneficios (Hirschfeld et al., Critical Reviews in Oncology/Hematology 42:137-143, 2002). Además de estos criterios, está bien reconocido que existen otros criterios de valoración que podrían presagiar estos tipos de beneficios. En parte, el proceso acelerado de aprobación concedido por la F.D.A. estadounidense reconoce que existen variables sustitutivas que probablemente predicen beneficios para el paciente. Al final del año 2003, se habían aprobado dieciséis fármacos bajo este proceso, y de estos, cuatro han seguido hasta la aprobación total, es decir, los estudios de seguimiento han demostrado beneficios directos para el paciente, según la predicción de los criterios de valoración sustitutivos. Un criterio de valoración importante para determinar los efectos de un fármaco sobre tumores sólidos es la evaluación de la carga tumoral mediante la medición de la respuesta al tratamiento (Therasse et al., Journal of the National Cancer Institute 92(3):205-216, 2000). Los criterios clínicos (criterios RECIST) para dicha evaluación han sido promulgados por el grupo de trabajo de criterios de evaluación de la respuesta en tumores sólidos, un grupo de expertos internacionales del cáncer. Los fármacos con un efecto demostrado sobre la carga tumoral, tal como muestran las respuestas objetivas según los criterios RECIST, en comparación con el grupo de control apropiado tienden a producir finalmente un beneficio directo en el paciente. En el contexto preclínico, la carga tumoral generalmente resulta más sencilla de evaluar y documentar. En la medida en que los estudios preclínicos puedan traducirse al contexto clínico, los fármacos que produzcan una supervivencia prolongada en modelos preclínicos presentarán la mayor utilidad clínica anticipada. De manera análoga a la producción de respuestas positivas al tratamiento clínico, los fármacos que reducen la carga tumoral en el contexto preclínico también pueden presentar un impacto directo significativo sobre la enfermedad. Aunque la prolongación de la supervivencia es el resultado clínico más buscado en el tratamiento farmacológico del cáncer, existen otros beneficios que presentan utilidad clínica y resulta claro que la reducción de la carga tumoral también puede llevar a beneficios directos y presentar un impacto clínico (Eckhardt et al., Developmental Therapeutics: Successes and Failures of Clinical Trial Designs of Targeted Compounds; ASCO Educational Book, 39th Annual Meeting, 2003, páginas 209 a 219).
De acuerdo con lo anteriormente expuesto, es un objetivo de la invención utilizar un método para producir CDMAB a partir de células derivadas de un individuo particular que son citotóxicas con respecto a las células cancerosas, siendo simultáneamente relativamente no tóxicas para las células no cancerosas, con el fin de aislar líneas celulares de hibridoma y los anticuerpos monoclonales aislados correspondientes y los fragmentos de unión a antígeno de los mismos para los que dichas líneas celulares de hibridoma se encuentran codificadas.
Es un objetivo adicional de la invención enseñar CDMAB y fragmentos de unión a antígeno de los mismos.
Es un objetivo adicional de la presente invención producir CDMAB cuya citotoxicidad se encuentra mediada por toxicidad celular dependiente de anticuerpos.
Es todavía un objetivo adicional de la presente invención producir CDMAB cuya citotoxicidad se encuentre mediada por la toxicidad celular dependiente del complemento.
Es todavía un objetivo adicional de la presente invención producir CDMAB cuya citotoxicidad sea una función de su capacidad para catalizar la hidrólisis de enlaces químicos celulares.
Un objetivo todavía adicional de la presente invención es producir CDMAB, que resultan útiles en un ensayo de unión para el diagnóstico, pronóstico y seguimiento del cáncer.
Otros objetivos y ventajas de la presente invención resultarán evidentes a partir de la descripción siguiente, en la que, a título ilustrativo y de ejemplo, se proporcionan determinadas realizaciones de la presente invención.
En un primer aspecto, la invención proporciona un anticuerpo monoclonal aislado codificado por el clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02. En un aspecto adicional, la invención proporciona un método in vitro para iniciar la citotoxicidad celular inducida por anticuerpos de células cancerosas en una muestra de tejido procedente de un tumor humano, que comprende: proporcionar un anticuerpo monoclonal aislado o un fragmento de unión a antígeno inductor de citotoxicidad celular según la reivindicación 1, y
poner en contacto dicho anticuerpo monoclonal aislado o fragmento del mismo de unión a antígeno inductor de citotoxicidad celular, con dicha muestra de tejido. En un aspecto todavía adicional, la invención proporciona un anticuerpo monoclonal codificado por un clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02, o un fragmento de unión a antígeno del mismo, para la utilización en el tratamiento de un tumor humano.
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Breve descripción de las figuras
La figura 1 incluye histogramas FACS representativos de AR36A36.11.1 y anticuerpo anti-EGFR dirigidos contra varias líneas celulares de cáncer y normales.
La figura 2 compara el porcentaje de citotoxicidad de los sobrenadantes de hibridoma contra las líneas celulares PC-3, LnCap y CCD-27sk frente a los niveles de unión.
La figura 3 es una comparación entre la citotoxicidad de AR36A36.11.1 frente a controles positivos y negativos.
La figura 4 representa la unión de AR36A36.11.1 frente a un control anti-EGFR y factor de incremento de la intensidad de fluorescencia media tabulada por encima de un isotipo de control. Los resultados se representan cualitativamente como: entre 1,5 y 5 (+), entre 5 y 25 (++), entre 25 y 50 (+++), y más de 50 (++++).
La figura 5 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el crecimiento tumoral en un modelo de cáncer de mama MB-231. Las líneas verticales indican el periodo durante el que se administró el anticuerpo. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 6 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el peso corporal en un modelo de cáncer de mama MB-231. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 7 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el crecimiento tumoral en un modelo establecido de cáncer de mama MB-231. Las líneas verticales indican el periodo durante el que se administró el anticuerpo. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 8 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el peso corporal en un modelo de cáncer de mama MB-231 establecido. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 9 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el crecimiento tumoral en un modelo de cáncer de colon SW1116. Las líneas verticales indican el periodo durante el que se administró el anticuerpo. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 10 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el peso corporal en un modelo de cáncer de colon SW1116. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 11 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el crecimiento tumoral en un modelo de cáncer de próstata PC-3. Las líneas verticales indican el periodo durante el que se administró el anticuerpo. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
La figura 12 demuestra el efecto de AR36A36.11.1 sobre el peso corporal en un modelo de cáncer de próstata PC-3. Los puntos de datos representan medias +/- SEM.
Descripción detallada de la invención Ejemplo 1 Producción de hibridoma + Línea celular de hibridoma AR36A36.11.1
La línea celular de hibridoma AR36A36.11.1 se depositó, de acuerdo con el Tratado de Budapest, en el International Depository Authority of Canada (IDAC), Bureau of Microbiology, Health Canada, 1015 Arlington Street, Winnipeg, Manitoba, Canadá, R3E 3R2, el 28 de enero de 2004, bajo el número de acceso 280104-02. Según 37 CFR 1.808, los depositantes garantizan que la totalidad de las restricciones impuestas sobre la disponibilidad para el público de los materiales depositados serán irrevocablemente retiradas tras la concesión de una patente.
Para producir el hibridoma que produce el anticuerpo anticáncer AR36A36.11.1, se preparó en PBS una suspensión fresca de células individuales de la línea celular de cáncer de próstata PC-3 que había sido cultivada como tumor sólido en ratones SCID. Se preparó adyuvante IMMUNEASY^{TM} (Qiagen, Venlo, Países Bajos) para la utilización mediante mezcla suave. Se inmunizaron ratones BALB/c de cinco a siete semanas de edad mediante inyección subcutánea de 2 millones de células en 50 microlitros del antígeno-adyuvante. Se utilizó antígeno-adyuvante preparado recientemente para reforzar intraperitonealmente los ratones inmunizados 2 y 5 semanas después de la inmunización inicial, con 2 millones de células en 50 microlitros. Se utilizó un bazo para la fusión tres días de la última inmunización. Se prepararon los hibridomas mediante la fusión de esplenocitos aislados con parejas del mieloma NSO-1. Se sometieron a ensayo los sobrenadantes de las fusiones para la subclonación de los hibridomas.
Para determinar si los anticuerpos secretados por las células de hibridoma eran del isotipo IgG o IgM, se utilizó un ensayo ELISA. Se añadieron 100 microlitros/pocillo de IgG + IgM (H+L) antiratón de cabra a una concentración de 2,4 microgramos/ml en tampón de recubrimiento (tampón carbonato/bicarbonato 0,1 M, pH 9,2 a 9,6) a 4ºC, a las placas de ELISA durante la noche. Las placas se lavaron tres veces en tampón de lavado (PBS + Tween al 0,05%). Se añadieron 100 microlitros/pocillo de tampón de bloqueo (leche al 5% en tampón de lavado) a la placa durante 1 hora a temperatura ambiente y después se lavó tres veces en tampón de lavado. Se añadieron 100 microlitros/pocillo de sobrenadante de hibridoma y la placa se incubó durante 1 hora a temperatura ambiente. Las placas se lavaron tres veces con tampón de lavado y se añadió una dilución 1/100.000 de conjugado de IgG o IgM antiratón de cabra con peroxidasa de rábano picante (diluido en PBS que contenía leche al 5%), 100 microlitos/pocillo. Tras incubar la placa durante 1 hora a temperatura ambiente, la placa se lavó tres veces con tampón de lavado. Se incubaron 100 microlitros/pocillo de solución TMB durante 1 a 3 minutos a temperatura ambiente. Se terminó la reacción de color mediante la adición de 100 microlitros/pocillo de H_{2}SO_{4} 2 M y la placa se leyó a 450 nm con un lector de placas Perkin-Elmer HTS7000. Tal como se indica en la figura 2, el hibridoma AR36A36.11.1 secretaba principalmente anticuerpos del isotipo IgG.
Tras una ronda de dilución limitante, se sometieron a ensayo los sobrenadante de hibridoma para anticuerpos que se unían a células diana en un ensayo celular ELISA. Se sometieron a ensayo dos líneas celulares de cáncer de próstata humano y 1 línea celular de piel humana normal: PC-3, LnCap y CCD-27sk, respectivamente. Las células sembradas en placas se fijaron previamente a su utilización. Las placas se lavaron tres veces con PBS que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} a temperatura ambiente, se añadieron 100 microlitros de paraformaldehído al 2% diluido en PBS a cada pocillo durante 10 minutos a temperatura ambiente y después se descartaron. Las placas se lavaron nuevamente con PBS que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} tres veces a temperatura ambiente. El bloqueo se realizó con 100 microlitros/pocillo de leche al 5% en tampón de lavado (PBS + Tween al 0,05%) durante 1 hora a temperatura ambiente. Las placas se lavaron tres veces con tampón de lavado y el sobrenadante de hibridoma se añadió a 100 microlitros/pocillo durante 1 hora a temperatura ambiente. Las placas se lavaron 3 veces con tampón de lavado y se añadieron 100 microlitros/pocillo de dilución 1/25.000 de anticuerpo IgG o IgM antiratón de cabra conjugado con peroxidasa de rábano picante (diluido en PBS que contenía leche al 5%). Tras incubar durante 1 hora a temperatura ambiente, las placas se lavaron 3 veces con tampón de lavado y se incubaron 100 microlitros/pocillo de sustrato TMB durante 1 a 3 minutos a temperatura ambiente. La reacción se terminó con 100 microlitros/pocillo de H_{2}SO_{4} 2 M y la placa se leyó a 450 nm con un lector de placas Perkin-Elmer HTS7000. Los resultados, tal como se tabulan en la figura 2, se expresaron como factor sobre el fondo en comparación con un control de isotipo IgG del propio laboratorio que había demostrado previamente que no se unía a las líneas celulares sometidas a ensayo. Los anticuerpos procedentes del hibridoma AR36A36.11.1 mostraron unión a la línea celular de cáncer de próstata PC-3 y un nivel de unión más débil a otra línea celular de cáncer de próstata, LnCap. AR36A36.11.1 también demostró unión detectable a la línea celular de piel normal.
Conjuntamente con los ensayos para la unión de anticuerpos, se sometieron a ensayo los efectos citotóxicos de los sobrenadantes de hibridoma en las mismas líneas celulares: PC-3, LnCap y CCD-27sk. El ensayo de citotoxicidad Live/Dead se obtuvo de Molecular Probes (Eu, OR). Los ensayos se llevaron a cabo siguiendo las instrucciones del fabricante, con las modificaciones indicadas de manera general posteriormente. Las células se sembraron en placa antes del ensayo a una densidad apropiada predeterminada. Tras 2 días, se transfirieron 100 \mul del sobrenadante procedente de las placas de microtitulación de hibridoma a las placas celulares y se incubaron en un incubador de 5 por ciento de CO_{2} durante 5 días. Los pocillos que servían como controles positivos se aspiraron hasta vaciarlos y se añadieron 100 \mul de azida sódica (NaN_{3}) o cicloheximida. Tras 5 días de tratamiento, las placas seguidamente se vaciaron mediante inversión y secado con un filtro. Se dispensó en cada pocillo DPBS (solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco) a temperatura ambiente que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} de una botella dosificadora multicanal, golpeada 3 veces, vaciada mediante inversión y después secada con un filtro. Se añadieron 50 \mul del pigmento fluorescente calceína diluido en DPBS que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} a cada pocillo y se incubaron a 37ºC en un incubador de 5% de CO_{2} durante 30 minutos. Las placas se leyeron en un lector de fluorescencia de placas Perkin-Elmer HTS7000 y los datos se analizaron en Microsoft Excel. Los resultados e tabulan en la figura 2. El hibridoma AR36A36.11.1 produjo citotoxicidad específica de 17 por ciento en células PC-3, que era 46 y 25 por ciento de la citotoxicidad obtenida con los controles positivos azida sódica y cicloheximida, respectivamente. El hibridoma AR36A36.11.1 también produjo citotoxicidad específica de 25 por ciento en células LnCap, que era 36 y 69 por ciento de la citotoxicidad obtenida con los controles positivos azida sódica y cicloheximida, respectivamente. Tal como se tabula en la figura 2, a pesar de la unión a CCD-27sk, AR36A36.11.1 no produjo citotoxicidad significativa en esta línea celular normal. Los agentes citotóxicos no específicos conocidos cicloheximida y NaN_{3} generalmente produjeron citotoxicidad, tal como se esperaba.
Ejemplo 2 Producción de anticuerpos
Se produjo anticuerpo monoclonal AR36A36.11.1 mediante le cultivo del hibridoma en matraces CL-1000 (BD Biosciences, Oakville, ON) realizando recolección y nuevas siembras dos veces a la semana. Se siguieron procedimientos estándares de purificación de anticuerpos con proteína G-sefarosa 4 Fast Flow (Amersham Biosciences, Baie d'Urfé, QC). Se encuentra comprendida dentro del alcance de la presente invención la utilización de anticuerpos monoclonales que se encuentran humanizados, quimerizados o que son murinos.
Se comparó AR36A36.11.1 con varios controles tanto positivos (anti-ECGFR (C225, IgG1, kappa, 5 \mug/ml, Cedarlane, Hornby, ON), cicloheximida (CHX, 0,5 \muM, Sigma, Oakville, ON) y NaN_{3} (al 0,1%, Sigma, Oakville, ON)) y negativos (G155-178 (anti-TNP, IgG2a, kapppa, 20 \mug/ml, BD Biosciences, Oakville, ON) y tampón de IgG (al 3%)) en un ensayo de citotoxicidad (figura 3). Se sometieron a ensayo líneas celulares de cáncer de mama (MDA-MB-231 (MB-231), NCI-MCF-7 (MCF-7), de colón (DLD-1, Lovo, SW1116), ovárico (OVCAR-3), pancreático (BxPC-3) y de próstata (PC-3, LnCap, DU-145) y piel no cancerosa (CCD-27sk) y de pulmón (Hs888.Lu) (todos de ATCC, Manassas, VA). Se obtuvo el ensayo de citotoxicidad Live/Dead de Molecular Probes (Eugene, OR). Los ensayos se llevaron a cabo siguiendo las instrucciones del fabricante, con las modificaciones indicadas de manera general posteriormente. Se sembraron células en placas antes del ensayo a la densidad apropiada predeterminada. Tras 2 días, se diluyeron en medio 100 \mul de anticuerpo purificado o de los controles, y después se transfirieron a las placas celulares y se incubaron en un incubador de 5 por ciento de CO_{2} durante 5 días. A continuación, se vaciaron las placas mediante inversión y se secaron con un filtro. Se dispensó en cada pocillo DPBS que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} a temperatura ambiente desde una botella dosificadora multicanal, se golpeó 3 veces, se vació mediante inversión y después se secó con un filtro. Se añadieron 50 \mul del pigmento fluorescente calceína diluido en DPBS que contenía MgCl_{2} y CaCl_{2} a cada pocillo y se incubaron a 37ºC en un incubador de 5 por ciento de CO_{2} durante 30 minutos. Las placas se leyeron en un lector de placas fluorescentes Perkin-Elmer HTS7000 y los datos se analizaron en Microsoft Excel y los resultados se tabulan en la figura 3. Los datos se representaron como medias de cuatro experimentos sometidos a ensayo por triplicado y se presentan cualitativamente de la manera siguiente: experimentos 3/4 a 4/4 con >15% de citotoxicidad por encima del fondo (++++), 2/4 experimentos con >15% de citotoxicidad por encima del fondo (+++), por lo menos 2/4 experimentos con 10% a 15% de citotoxicidad por encima del fondo (++), por lo menos 2/4 experimentos con citotoxicidad de 8% a 10% por encima del fondo (+), 7% de citotoxicidad por encima del fondo (+/-). Las células no marcadas en la figura 3 representan inconsistencias o efectos inferiores al umbral de citotoxicidad. El anticuerpo AR36A36.11.1 produjo citotoxicidad en la línea celular de cáncer de próstata LnCap respecto a controles negativos tanto de isotipo como de tampón; la citotoxicidad sobre las células LnCap era superior a la observada con el bien caracterizado anticuerpo anti-EGFR. Resulta importante que AR36A36.11.1 no produjo citotoxicidad contra líneas celulares no cancerosas, tales como CCD-27sk o HS8888.Lu, indicando que el anticuerpo era específico de células cancerosas. Debe indicarse que el anticuerpo anti-EGFR produjo citotoxicidad en células CCD-27sk debido a que esta línea celular epidérmica se espera que exprese receptores de factor de crecimiento epidérmico. Los agentes citotóxicos químicos indujeron la citotoxicidad no específica esperada.
La unión de AR36A36.11.1 al panel anteriormente mencionado de líneas celulares cancerosas y normales se evaluó mediante citometría de flujo (FACS). Las células se prepararon para FACS mediante lavado inicial de la monocapa celular con DPBS (sin Ca^{++} ni Mg^{++}). A continuación, se utilizó tampón de disociación celular (INVITROGEN, Burlington, ON) para desprender las células de sus placas de cultivo celular a 37ºC. Tras la centrifugación y la recolección, las células se resuspendieron en DPBS que contenía MgCl_{2}, CaCl_{2} y suero fetal bovino al 2% a 4ºC (medio de tinción) y se contaron, se prepararon alícuotas a la densidad celular apropiada, se peletizaron las células y se resuspendieron en medio de tinción a 4ºC en presencia de anticuerpos de ensayo (AR36A36.11.1) o de anticuerpos de control (control de isotipo, anti-EGFR) a 20 \mug/ml sobre hielo durante 30 minutos. Antes de añadir anticuerpo secundario conjugado con Alexa Fluor 488, las células se lavaron una vez con medio de tinción. A continuación, se añadió el anticuerpo conjugado con Alexa Fluor 488 en medio de tinción durante 30 minutos. Seguidamente se levaron las células la última vez y se resuspendieron en medio de fijación (medio de tinción que contenía paraformaldehído al 1,5%). Se evaluó la captación de las células mediante citometría de flujo, corriendo las muestras en un FACScan utilizando el programa CellQuest (BD Biosciences, Oakville, ON). Se fijó la dispersión directa (FSC) y lateral (SSC) de las células mediante el ajuste de las ganancias de voltaje y de amplitud en los detectores de FSC y de SSC. Los detectores del canal de fluorescencia (FITC) se ajustaron mediante el corrido de células teñidas únicamente con anticuerpo secundario conjugado con Alexa Fluor 488, de manera que las células presentaban un pico uniforme con una mediana de intensidad de fluorescencia de aproximadamente 1 a 5 unidades. Para cada muestra, se captaron aproximadamente 10.000 células fijadas teñidas para el análisis y los resultados se presentan en la figura 4.
La figura 4 tabula el factor de incremento de la intensidad de fluorescencia media por encima del control de isotipo, y se presenta cualitativamente como: entre 1,5 y 5 (+), entre 5 y 25 (++), entre 25 y 50 (+++) y más de 50 (++++). Se compilaron histogramas representativos de AR36A36.11.1 para la figura 1. AR36A36.11.1 mostró unión a todas las líneas celulares sometidas a ensayo. Estos datos han demostrado que AR36A36.11.1 mostraba especificidad funcional en el aspecto de que, aunque se producía unión clara a varios tipos de cáncer, únicamente se presentaba citotoxicidad asociada con células de cáncer de próstata LnCap. Por el contrario, el anticuerpo anti-EGFR mostró una correlación más alta entre unión y citotoxicidad, siendo un ejemplo la línea celular no de cáncer derivada de epidermis CCD-27sk.
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Ejemplo 3 Experimentos in vivo con el tumor MDA-MB-231
Con referencia a las figuras 5 y 6, se implantaron mediante inyección subcutánea en la nuca 5 millones de células de cáncer de mama humano (MB-231) en 100 microlitros de solución salina en ratones SCID hembra de 4 a 8 semanas de edad. Se dividieron aleatoriamente los ratones en 2 grupos de tratamiento de 5 El día después de la implantación, se administraron 20 mg/kg de anticuerpo de ensayo AR36A36.11.1 o un anticuerpo de isotipo de control (que era conocido que se unía a células MB-231) por vía intraperitoneal a un volumen de 300 microlitros tras la dilución a partir de la concentración de solución madre con un diluyente que contenía KCl 2,7 mM, KH_{2}PO_{4} 1 mM, NaCl 137 mM y Na_{2}HPO_{4} 20 mM. A continuación, se administraron los anticuerpos una vez a la semana durante un periodo de 7 semanas del mismo modo. Se midió el crecimiento tumoral aproximadamente cada séptimo día con un calibrador durante hasta 8 semanas o hasta que los animales individuales alcanzaron los puntos finales según la Canadian Council for Animal Care (CCAC). Se registraron los pesos corporales de los animales durante todo el estudio. Al final del estudio, se eutanizaron todos los animales según las directrices de la CCAC.
AR36A36.11.1 evitó completamente el crecimiento tumoral y redujo la carga tumoral en un modelo in vivo preventivo de cáncer de mama humano. El día 56 tras la implantación, 6 días después de la última dosis de tratamiento, el volumen tumoral medio en el grupo tratado con AR36A36.11.1 era 0 por ciento del volumen tumoral en el grupo tratado con isotipo de control (p=0,0002, prueba t, figura 5).
No se observaron indicios clínicos de toxicidad durante la totalidad del estudio. El peso corporal medido a intervalos semanales era una variable sustitutiva del estado de bienestar y de un desarrollo deficiente. La figura 6 muestra que no existía ninguna diferencia significativa de peso corporal entre los grupos al final del periodo de tratamiento (p=0,0676, prueba t). Por lo tanto, AR36A36.11.1 resultó bien tolerado y redujo la carga tumoral en un modelo de xenoinjerto de cáncer de mama.
Ejemplo 4 Experimentos in vivo de tumor MB-231 establecido
Con referencia a las figuras 7 y 8, se implantaron mediante inyección subcutánea en la nuca 5 millones de células de cáncer de mama humano MB-231 en 100 microlitros de solución salina en ratones SCID hembra de 5 a 6 semanas de edad. Se midió el crecimiento tumoral con un calibrador cada semana. Al alcanzar la mayoría de la cohorte un volumen tumoral medio de aproximadamente 100 mm3 (intervalo de entre 60 y 140 mm3) 59 días después de la implantación, se asignaron aleatoriamente 10 ratones a 2 grupos de tratamiento. Se administraron 20 mg/kg por vía intraperitoneal de anticuerpo de control AR36A36.11.1 o tampón de control a una volumen de 300 microlitros tras la dilución a partir de la concentración de solución madre con n diluyente que contenía KCl 2,7 mM, KH_{2}PO_{4} 1 mM, NaCl 137 mM y NaH_{2}PO_{4} 20 mM. A continuación, se administraron los anticuerpos 3 veces a la semana durante 10 dosis en total de la misma manera hasta el día 81 tras la implantación. Se midió el crecimiento tumoral aproximadamente cada séptimo día con un calibrador hasta el día 90 tras la implantación o hasta que los animales individuales alcanzaron los puntos finales según la CCAC. Se registraron los pesos corporales de los animales durante todo el estudio. Al final del estudio se eutanizaron todos los animales según las directrices de la CCAC.
AR36A36.11.1 previno el crecimiento tumoral y redujo la carga tumoral en este modelo in vivo establecido de cáncer de mama humano. El día 83 tras la implantación, 2 días después de la última dosis de tratamiento, el volumen tumoral medio en el grupo tratado con AR36A36.11.1 era 46% del volumen tumoral en el grupo tratado con tampón de control (p=0,0038, prueba t, figura 7). Esto corresponde a un T/C medio de 32%.
No se observaron indicios clínicos de toxicidad durante la totalidad del estudio. El peso corporal medido a intervalos semanales era una variable sustitutiva del estado de bienestar y del desarrollo deficiente. La figura 8 muestra que no existía ninguna diferencia significativa de peso corporal entre los grupos al final del periodo de tratamiento (p=0,6493, prueba t).
En resumen, AR36A36.11.1 es bien tolerado y significativamente más eficaz que el tampón de control en la supresión del crecimiento tumoral en un modelo establecido de xenoinjerto tumoral de cáncer de mama en ratones SCID. Durante el periodo de tratamiento de 3 semanas, AR36A36.11.1 alcanzó un punto final de volúmenes tumorales T/C medios inferior a 50% respecto al control. Se observaron beneficios de tratamiento en un modelo bien reconocido de enfermedad cancerosa humana, sugiriendo beneficios farmacológicos y farmacéuticos de este anticuerpo para la terapia en toros mamíferos, incluyendo el ser humano.
Ejemplo 5 Experimentos in vivo con el tumor SW1116
Con referencia a las figuras 9 y 10, se implantaron mediante inyección subcutánea en la nuca en ratones SCID hembra de 4 a 8 semanas de edad 5 millones de células de cáncer de colon humano (SW1116) en 100 microlitros de solución salina. Los ratones fueron divididos aleatoriamente en 2 grupos de tratamiento de 5. El día después de la implantación, se administraron 20 mg/kg de anticuerpo de ensayo AR36A36.11.1 o tampón de control por vía intraperitoneal a un volumen de 300 microlitros tras la dilución a partir de la concentración de solución madre con un diluyente que contenía KCl 2,7 mM, KH_{2}PO_{4} 1 mM, NaCl 137 mM y Na_{2}HPO_{4} 20 mM. A continuación los anticuerpos se administraron una vez a la semana durante un periodo de 7 semanas del mismo modo. Se midió el crecimiento tumoral aproximadamente cada séptimo día con un calibrador durante hasta 8 semanas o hasta que los animales individuales alcanzasen los puntos finales según la Canadian Council for Animal Care (CCAC). Se registraron los pesos corporales de los animales durante la totalidad del estudio. Al final del estudio se eutanizaron todos los animales según las directrices de la CCAC.
AR36A36.11.1 evitó el crecimiento tumoral y redujo la carga tumoral en un modelo in vivo preventivo de cáncer de colon humano. El día 55 tras la implantación, 56 días después de la última dosis de tratamiento, el volumen tumoral medio en el grupo tratado con AR36A36.11.1 era 51 por ciento del volumen tumoral en el grupo tratado con tampón de control (p=0,0055, prueba t, figura 9).
No se observaron indicios clínicos de toxicidad durante la totalidad del estudio. El peso corporal medido a intervalos semanales era una variable sustitutiva del estado de bienestar y del desarrollo deficiente. La figura 10 muestra que no se existía ninguna diferencia significativa de peso corporal entre los grupos al final de periodo de tratamiento (p=0,4409, prueba t). Por lo tanto, AR36A36.11.1 fue bien tolerado y redujo la carga tumoral en un modelo de xenoinjerto de cáncer de colon.
Ejemplo 6 Experimentos in vivo con el tumor PC-3
Con referencia a las figuras 11 y 12, se implantó mediante inyección subcutánea en la nuca de ratones SCID macho de 4 a 8 semanas de edad 1 millón de células de cáncer de próstata humano (PC-3) en 100 microlitros de solución salina. Los ratones se dividieron aleatoriamente en 2 grupos de tratamiento de 5. El día después del a implantación se administraron 20 mg/kg de anticuerpo de ensayo AR36A36.11.1 o tampón de control por vía intraperitoneal a un volumen de 300 microlitros tras la dilución a partir de la concentración de solución madre con un diluyente que contenía KCl 2,7 mM, XH_{2}PO_{4} 1 mM, NaCl 137 mM y Na_{2}HPO_{4} 20 mM. A continuación, se administraron los anticuerpos una vez a la semana durante la totalidad del estudio del mismo modo. Se midió el crecimiento tumoral aproximadamente cada séptimo día con un calibrador. El estudio se completó tras 6 inyecciones (41 días), al alcanzar los animales los puntos finales según la Canadian Council for Animal Care (CCAC) debido a lesiones ulcerosas grandes. Se registraron los pesos corporales durante la totalidad del estudio. Al final del estudio se eutanizaron todos los animales según las directrices de la CCAC.
AR36A36.11.1 evitó el crecimiento tumoral y redujo la carga tumoral en un modelo in vivo preventivo de cáncer de próstata humano. El día 41 tras la implantación, 5 días después de la última dosis de tratamiento, el volumen tumoral medio en el grupo tratado con AR36A36.11.1 era 14 por ciento del volumen tumoral en el grupo tratado con tampón de control (p=0,0009, prueba t, figura 11).
En un modelo de xenoinjerto de cáncer de próstata PC-3, el peso corporal puede utilizarse como indicador sustitutivo de la progresión de la enfermedad (Wang et al., Int. J. Cancer., 2003). Tal como se muestra en la figura 12, al final del estudio (día 41), los animales de control mostraban una reducción de 27% del peso corporal comparado con el inicio del estudio. Por el contrario, el grupo tratado con AR36A36.11.1 presentaba un peso corporal significativamente más alto que el grupo de control (p=0,017). Globalmente, el grupo tratado con AR36A36.11.1 perdió únicamente 6% de su peso corporal, mucho menos que el 27% perdido por el grupo de tampón de control.
Por lo tanto AR36A36.11.1 resultó bien tolerado y redujo la carga tumoral y la caquexia en un modelo de xenoinjerto de cáncer de próstata.
Referencia
Wang Z., Corey E., Hass G.M. et al. Expression of the human cachexia-associated protein (HCAP) en prostate cancer and in a prostate cancer animal model of cachexia. Int. J. Cancer 105(1):123-9, 2003.

Claims (15)

1. Anticuerpo monoclonal aislado codificado por el clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02.
2. Anticuerpo según la reivindicación 1, que se ha humanizado o que es quimérico.
3. Clon aislado depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02.
4. Fragmentos de unión a antígeno del anticuerpo monoclonal aislado según la reivindicación 1, o del anticuerpo humanizado o del anticuerpo quimérico según la reivindicación 2.
5. Anticuerpo aislado o fragmentos de unión a antígeno según cualquiera de las reivindicaciones 1, 2 ó 4 conjugado con un miembro seleccionado de entre el grupo que consiste de grupos citotóxicos, enzimas, compuestos radioactivos y células hematógenas.
6. Método in vitro para iniciar citotoxicidad celular inducida por anticuerpos de células cancerosas en una muestra de tejido procedente de un tumor humano, que comprende:
proporcionar un anticuerpo monoclonal aislado o un fragmento de unión a antígeno inductor de citotoxicidad celular según la reivindicación 1, y
poner en contacto dicho anticuerpo monoclonal aislado o fragmento de unión a antígeno inductor de citotoxicidad celular del mismo con dicha muestra de tejido.
7. Método según la reivindicación 6, en el que la muestra de tejido tumoral humano procede de un tumor originario de un tejido seleccionado de entre el grupo que consiste de tejido de colon, ovario, próstata, páncreas y mama.
8. Anticuerpo monoclonal codificado por un clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02 o un antígeno de unión a antígeno del mismo, para la utilización en el tratamiento de un tumor humano.
9. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 8, en el que dicho anticuerpo monoclonal se conjugad con un grupo citotóxico.
10. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 9, en el que dicho grupo citotóxico es un isótopo radioactivo.
11. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 8, en el que dicho anticuerpo monoclonal activa el complemento, o en el que dicho anticuerpo monoclonal media en la citotoxicidad celular dependiente de anticuerpos.
12. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 8, en el que dicho anticuerpo monoclonal se ha humanizado, o en el que dicho anticuerpo monoclonal es quimérico.
13. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 8, en el que dicho tumor es un tumor de mama, de colon o de próstata.
14. Anticuerpo monoclonal codificado por un clon depositado en la IDAC con el número de acceso 280104-02, o un fragmento de unión a antígeno del mismo, para la utilización como medicamento.
15. Anticuerpo monoclonal según la reivindicación 14, en el que dicho anticuerpo monoclonal se ha humanizado, o en el que dicho anticuerpo monoclonal es quimérico.
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