ES2316989T3 - Pruebas de coagulacion a temperatura ambiente. - Google Patents
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Abstract
Un procedimiento de determinación, en una prueba de coagulación, del tiempo de protrombina (TP) en una muestra de sangre completa, sangre anticoagulada, plasma sanguíneo o plasma sanguíneo anticoagulado que comprende las etapas de a) añadir un volumen definido de la muestra a un volumen definido de un reactivo líquido que comprende tromboplastina y fibrinógeno en una proporción entre los volúmenes definidos del reactivo y la muestra de al menos cuatro, aumentando esta cantidad de fibrinógeno la concentración de fibrinógeno en la mezcla en al menos 0,1 g/l, o viceversa, en un recipiente, b) determinar la temperatura de la mezcla de reacción de a) que tiene una temperatura ambiente en el intervalo de 18ºC a 35ºC. realizándose las etapas a) y b) en un orden opcional, seguido de c) determinar el tiempo de coagulación (TC) registrando el tiempo desde la adición en a) hasta que se detecta la formación de un coágulo en el recipiente, y d) calcular el tiempo de protrombrina (TP) en función de la temperatura de b) y del tiempo de coagulación (TC) de c) expresado como cociente normalizado internacional (INR), usando la ecuación en la que INR = (TC/(TCN(t)) ISI(t) TC = tiempo de coagulación de c) en la reivindicación 1, t = temperatura de b) en la reivindicación 1, TCN(t) = tiempo de coagulación normal (TCN) expresado en función de la temperatura t, e ISI(t) = índice de sensibilidad internacional (ISI), expresado en función de la temperatura t.
Description
Pruebas de coagulación a temperatura
ambiente.
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La presente invención se refiere a un
procedimiento de determinación del tiempo de protrombina (TP) en una
muestra de sangre completa, sangre anticoagulada, plasma sanguíneo
o plasma sanguíneo anticoagulado a temperatura ambiente.
El tiempo de protrombina (TP) es una prueba
analítica diagnóstica de coagulación por medio de la cual se valora
la funcionalidad de la vía extrínseca de coagulación. Las pruebas de
coagulación se definen como pruebas realizadas en fluidos
biológicos, como sangre, sangre anticoagulada, plasma sanguíneo o
plasma sanguíneo anticoagulado, en cuyas pruebas el punto final es
un fenómeno de coagulación, como por ejemplo, la formación de un gel
o un coágulo o la disolución del gel o el coágulo. En una
terminología más moderna, el punto final de una prueba de
coagulación implica la formación de fibrina a partir de fibrinógeno
o la disolución de la fibrina en sus productos de degradación.
Las pruebas de tiempo de protrombina (TP) se
usan para diagnosticar enfermedades hepáticas y anomalías de la
coagulación de la sangre. Las pruebas de TP también se utilizan para
controlar el tratamiento antitrombótico mediante antagonistas de la
vitamina K. Al realizar una prueba de TP, la muestra y los reactivos
líquidos de tromboplastina se mezclan a 37ºC y se determina el
tiempo necesario para que la mezcla coagule. Cuando se concibió la
prueba por primera vez hace más de cincuenta años, el tiempo de
coagulación era idéntico al TP, pero actualmente, para adecuar las
variaciones en las propiedades del procedimiento de la prueba, el TP
se expresa en INR (cociente internacional normalizado,
International Normalized Ratio); véase más adelante.
Las pruebas de TP miden el tiempo desde la
exposición al factor tisular unido a membrana (tromboplastina)
hasta la detección de un coágulo. Se aceptan dos tipos de pruebas de
TP, TP de Quick y TP de Owren, denominadas así por el primer autor
del artículo ya que fueron descritas por primera vez en la
bibliografía por Quick A. y col. The prothrombin time in
hemophilia and in obstructive jaundice. J Biol Chem 25 1935;
109: 73-4 y por Owren P y Aas K. The control
of dicumarol therapy and quantitative determination of prothrombin
and proconvertin. Scand J Clin Lab Invest 1951; 1951;
201-8. Tanto el TP de Owren como el TP de Quick
son pruebas de coagulación de química húmeda, es decir, la muestra
se mezcla con un reactivo líquido (no seco). La diferencia en los
procedimientos reside en el hecho de que el reactivo de TP de Quick
contiene sólo tromboplastina, mientras que el reactivo de TP de
Owren contiene además fibrinógeno y factor de coagulación V. El
contenido de fibrinógeno del reactivo puede verse como
discriminatorio. Si el reactivo de TP contiene suficiente cantidad
de fibrinógeno para aumentar el contenido de fibrinógeno de la
mezcla de muestra y reactivo en al menos 0,1 g/l, entonces se trata
de una prueba de TP de tipo Owren, no de una prueba de TP de
Quick. Esto es aún más cierto cuando el aumento es de al menos 0,5
g/l. Otra característica diferenciadora importante es que la
relación entre el reactivo y la muestra es mayor de cuatro,
normalmente mayor de diez en un procedimiento de TP de tipo Owren,
mientras que difícilmente es mayor de dos en el tipo Quick. La
publicación Lindahl y col. Plasma-based
calibration of Owren-type prothrombin time with
results expressed in INR. Thromb Haemost 2004; 91:
1223-31, enviada para su publicación a varias
revistas durante los últimos seis años, se publicó 8 meses después
de presentar
la solicitud de prioridad de la presente invención, pero se puede considerar que contiene los datos generales relevantes.
la solicitud de prioridad de la presente invención, pero se puede considerar que contiene los datos generales relevantes.
Actualmente, el resultado de una prueba de TP no
se expresa como tiempo de coagulación (TC), sino como cociente
normalizado internacional (INR). El INR se obtiene comparando el TC
de la muestra con una muestra con un tiempo de coagulación normal
(TCN) individual promedio normal. El INR es el cociente entre el TC
y el TCN obtenido a la potencia del ISI, el índice de sensibilidad
internacional. Véanse las referencias proporcionadas anteriormente
de van den Besselaar y col. y Pollar y col. El TCN y el ISI son
propiedades del procedimiento de la prueba de TP en concreto y se
obtienen calibrando la prueba. En la calibración de un determinado
procedimiento de la prueba de TP los resultados se alinean directa
o indirectamente con los del procedimiento de la prueba de TP de
referencia.
Según la técnica anterior, las pruebas
analíticas diagnósticas de coagulación, como el TP, se realizan a
37ºC para reproducir la situación fisiológica. Las dificultades
para estandarizar una prueba de TP a esta temperatura, o a
cualquier temperatura, son considerables como es evidente por el
trabajo internacional en curso en este área; van den Besselaar AM.
International normalized ratio: towards improved accuracy. Thromb
Haemost 1999; 82: 1562-3, y Pollar L y col
Concerted Action on Anticoagulation (ECAA) - the multicentre
calibration of rabbit and human ECAA reference thromboplastins.
Steering Committee. Thromb Haemost 1996; 76:
977-82. Sin embargo, el enclavamiento del TP a
37ºC presenta un impedimento en el diseño de los procedimientos de
ensayo, especialmente para los destinados a ser usados cerca del
paciente, es decir, el análisis de diagnóstico inmediato de TP.
Para poder mantener una temperatura de 37ºC durante la realización
de la prueba, es necesario un termostato ajustado a 37ºC y debe
dejarse un tiempo para que se equilibre la temperatura. La necesidad
de un termostato añade más hardware y costes a los dispositivos
disponibles en la actualidad y obstaculiza el desarrollo hacia el
aumento en la prueba de diagnóstico analítico inmediato. La idea de
realizar una prueba de TP a temperatura ambiente, especialmente a
la temperatura de una habitación, es muy atractiva.
Muchas pruebas de TP se realizan en plasma
sanguíneo en laboratorios centralizados altamente automatizados.
Aunque esto puede resultar económico respecto de la generación de
los resultados de la prueba, puede que no sea económico a nivel
global desde un punto de vista de atención al paciente. La razón es
el tiempo necesario para transportar las muestras al laboratorio u
obtener los resultados de vuelta. Este tiempo puede ser de horas a
días. Este es un tiempo largo en comparación con los 15 minutos o
menos que serían necesarios para una prueba de TP que se realizara
junto al paciente, es decir, un diagnóstico analítico inmediato. El
tiempo de transporte puede retrasar el inicio de un tratamiento
óptimo y puede forzar a que el paciente tenga que acudir a
consultas adicionales con el medico. Además, para el análisis
centralizado de la TP será necesario una punción venosa, un volumen
de muestra de sangre relativamente grande y un recipiente resistente
para la sangre. Un diagnóstico analítico inmediato del TP sólo
necesita una tira reactiva, un pequeño volumen de sangre y no es
necesario recipiente para el transporte de la muestra. Las
consideraciones de este tipo han impulsado el desarrollo de
procedimientos de pruebas de TP de diagnóstico analítico
inmediato
que se pretenden realizar en las consultas del médico, en laboratorios pequeños y en el domicilio de los pacientes.
que se pretenden realizar en las consultas del médico, en laboratorios pequeños y en el domicilio de los pacientes.
Como se sugiere anteriormente, la prueba de TP
representa un considerable desafío de normalización que requiere
precaución para que no se desvíe de las condiciones de la prueba
establecidas. Un movimiento tentativo en el diseño de
procedimientos de diagnóstico analítico inmediato para pruebas de TP
es el paso de la química húmeda establecida a la química seca ya
que esta última se adapta más fácilmente a las demandas de una
situación de prueba de diagnóstico analítico inmediato. Los
aspectos inventivos de la prueba de TP para el diagnóstico
analítico inmediato por química seca se encuentran en la patente de
EE.UU. Nº 6.402.704B1 de McMorrow, la patente de EE.UU. Nº
6.103.196 de Yassinzadeh y col., la patente de EE.UU. Nº 5.302.348
de Cusack y col., la patente de EE.UU. Nº 4.849.340 de Oberhardt,
la patente de EE.UU. Nº 3.951.606 de Moyer y col., la patente de
EE.UU. Nº 6.338.821 de Jina y la solicitud de patente internacional
WO 93/22453 de Zweing. La última de estas describe un artículo de
ensayo para determinar la capacidad de coagulación de una muestra de
sangre que comprende una membrana porosa con un iniciador de
coagulación y una sustancia impregnada en la misma. La prueba
no es una prueba de coagulación ya que el punto final
no es detectar la coagulación, lo que se detecta es la
escisión de un sustrato sintético mediante alguna enzima,
posiblemente trombina. En la descripción de la invención se propone
que la respuesta de la prueba puede hacerse, por medios matemáticos,
equivalente al TP de la muestra también cuando la prueba se realiza
a temperatura ambiente. No se presenta prueba cuantitativa de este
aspecto.
Hay aproximadamente 4 millones de pacientes en
Europa en tratamiento con antagonistas de la vitamina K que
necesitan la determinación del TP aproximadamente 20 veces al año.
Esto supone un total de 80 millones de pruebas de TP al año, cada
una de las cuales requiere aproximadamente 15 minutos de tiempo de
asistencia sanitaria y contribuye con aproximadamente 10 euros por
prueba a los costes de asistencia sanitaria, sin contar los
materiales del ensayo que añaden aproximadamente 0,5 euros por
prueba. El coste de la asistencia sanitaria de las pruebas de TP
para el control del tratamiento antitrombótico, sin contar los
materiales de la prueba es, por tanto, de aproximadamente 800
millones de euros. Si estos costes de atención sanitaria pudieran
reducirse un 20% aumentando la frecuencia de diagnósticos
analíticos inmediatos del TP a domicilio, a la vez que se potencia
la calidad de vida del paciente, se podría obtener un ahorro en
atención sanitaria de 160 millones de euros. Incluso después de un
desbalance de aproximadamente 2 euros por prueba en el aumento de
los costes del material, el ahorro en el sector de la atención
sanitaria podría ser de aproximadamente 130 millones de euros.
La presente invención está dirigida a un
procedimiento de determinación, en una prueba de coagulación, del
tiempo de protrombina (TP) en una muestra de sangre completa, sangre
anticoagulada, plasma sanguíneo o plasma sanguíneo anticoagulado.
El procedimiento comprende las etapas de:
a) añadir un volumen definido de la muestra a un
volumen definido de un reactivo líquido que comprende tromboplastina
y fibrinógeno en una proporción entre los volúmenes definidos del
reactivo y la muestra de al menos cuatro, aumentado esta cantidad
de fibrinógeno la concentración de fibrinógeno en la mezcla en al
menos 0,1 g/l, o viceversa, en un recipiente,
b) determinar la temperatura de la mezcla de
reacción de a) que tiene una temperatura ambiente dentro del
intervalo de 18ºC a 35ºC.
realizándose las etapas a) y b) en un orden
opcional, seguido de
c) determinar el tiempo de coagulación (TC)
registrando el tiempo desde la adición en a) hasta que se detecta la
formación de un coágulo en el recipiente, y
d) calcular el tiempo de protrombrina (TP) en
función de la temperatura de b) y del tiempo de coagulación (TC) de
c) expresado como cociente normalizado internacional (INR), usando
la ecuación
INR =
(TC/(TCN(t))^{ISI(t)}
en la
que
TC = tiempo de coagulación de c) en la
reivindicación 1,
t = temperatura de b) en la reivindicación
1,
TCN(t) = tiempo de coagulación normal
(TCN) expresado en función de la temperatura t, e
ISI(t) = índice de sensibilidad
internacional (ISI), expresado en función de la temperatura t.
Debe entenderse que el uso del término
"recipiente" comprende todo tipo de recipientes para líquidos,
como tubos de ensayo, cubetas, viales, etc.
En una realización de la invención, el reactivo
líquido comprende dos o tres reactivos diferentes.
En otra realización, el reactivo líquido
contiene una cantidad de fibrinógeno que aumenta la concentración
de fibrinógeno en la mezcla de a) en al menos 0,5 g/l y la
proporción entre el volumen definido del reactivo y la muestra en a)
es de al menos 10.
En una variante del procedimiento de la
invención, la determinación de la temperatura en la etapa b) se
realiza determinando la temperatura ambiente de la habitación,
siempre que el reactivo líquido esté a la misma temperatura.
Como se ha mencionado, el procedimiento de la
invención puede realizarse a una temperatura ambiente de entre 18ºC
y 35ºC. El intervalo de temperatura más preferido en las condiciones
utilizadas en los ejemplos es de 30ºC a 35ºC.
En otra realización adicional de la invención el
tiempo de protrombina (TP) se obtiene a partir de una tabla con
filas y columnas en la que las unas son tiempos de coagulación
diversos y las otras temperaturas diversas, y el TP se encuentra en
la intersección entre el tiempo de coagulación y la temperatura.
Un kit de la prueba para realizar un análisis
según el aspecto del procedimiento de la invención comprende
sistemas de registro de temperatura y uno o varios recipientes
independientes sellados, como tubos de ensayo, cubetas, viales,
etc., que contienen los reactivos para la coagulación de uno o más
volúmenes definidos de una muestra de sangre completa, sangre
anticoagulada, plasma sanguíneo o plasma sanguíneo
anticoagulado.
Los sistemas de registro de temperatura pueden
ser cualquier sistema con el que pueda registrarse la temperatura
ambiente en el intervalo de registro de 15ºC a 45ºC, como un
termómetro de vidrio normal, un termopar sensible al calor, etc.
También el termómetro puede ser un termómetro diseñado especialmente
para que tenga un gancho en un extremo, de modo que permita la
detección visual de la formación del coágulo en el recipiente
mientras que el termómetro se mueve hacia adelante y hacia
atrás.
Un reactivo del recipiente contiene fibrinógeno
en cantidad tal que se obtenga una concentración final de
fibrinógeno de al menos 0,1 g/l en el recipiente cuando se mezcla
con la muestra que se va a ensayar.
Los reactivos de los recipientes pueden estar en
forma liofilizada para su reconstitución con uno o más volúmenes de
líquido definidos antes de su uso.
Incluso si no es necesario proporcionar sistemas
de registro de tiempo, como un cronómetro manual o electrónico con
el kit de la prueba, será conveniente que el usuario final disponga
de todo el equipo necesario en un único kit de la prueba. Por
tanto, también será adecuado incluir dentro del kit de ensayo un
sistema para determinar el volumen, como pipetas o similares.
El calibrado de una prueba de TP abarca el
procedimiento o método completo. Esto supone los reactivos, el
aparato, el equipo volumétrico y las instrucciones de uso. Puesto
que muchos usuarios, especialmente los usuarios de pruebas de TP
para diagnóstico analítico inmediato, dependen del calibrado del
fabricante tiene sentido que el calibrado de un fabricante sea
fiable si el producto administrado, el kit del equipo, contiene todo
lo necesario para realizar la prueba de TP. Sin embargo, según la
técnica anterior, este no es el caso. Debido a los elevados costes
del aparato, éste se suministrará por separado y se usará durante un
amplio periodo de tiempo, por ejemplo, de tres a cinco años. El
aparato no se sustituirá cada vez que se utilice un nuevo lote de
reactivos, lo que puede ser aproximadamente cada 6 a 12 meses. Sin
embargo, la presente invención será útil para el desarrollo de un
aparato barato que pueda desecharse después del uso del lote de
reactivos que compone el kit de la prueba.
La razón principal para realizar pruebas de
coagulación a temperatura ambiente es eliminar la necesidad de un
equipo de control de temperatura caro y que consume energía. Según
la presente invención, es posible realizar pruebas de coagulación a
las temperaturas ambiente típicas de las viviendas humanas. Según la
presente invención, es posible realizar una prueba de coagulación a
temperatura ambiente en la que se determinen el tiempo de
coagulación y la temperatura, y se usen para obtener los resultados
de la prueba. Durante la realización de una prueba de coagulación
según la invención, existe también una segunda razón para medir la
temperatura. Esta es optimizar las condiciones de temperatura de la
prueba.
Los resultados de la prueba para una prueba de
TP se expresan como INR. Según la técnica anterior, la prueba de TP
se realiza a una temperatura fija de 37ºC y el INR es función del
tiempo de coagulación, INR(TC). A diferencia de esto, la
prueba de TP se realiza según la invención a cualquier temperatura
dentro de los límites especificados. Se determina tanto el tiempo
de coagulación como la temperatura (t) y el INR está en función de
ambos, INR(TC,t). La temperatura también se determina para
establecer que ésta está dentro del intervalo en el que puede
realizarse la prueba de TP.
Se pretende que la prueba de coagulación se
realice a temperaturas típicas de las viviendas humanas. Por tanto,
se asume que el intervalo de temperatura ambiente es el intervalo de
temperatura en el interior de dichas viviendas, es decir, entre
15ºC y 45ºC. Dentro del alcance de la presente invención se asume
que la temperatura ambiente se limite al intervalo de 18ºC a
35ºC.
Es probable que una marcada dependencia del
tiempo de coagulación con respecto a la temperatura reduzca la
precisión del ensayo. Como se muestra en el Ejemplo 1, la velocidad
de formación del coágulo se reduce a temperaturas inferiores a
18ºC, lo que hace que la coagulación sea menos obvia y más difícil
de detectar. También a temperaturas superiores a 35ºC, los
resultados del TP dependían de la temperatura. Por tanto, en la
presente invención se prefiere que la prueba de TP se realice
mediante un procedimiento a temperatura ambiente en el intervalo de
18ºC a 35ºC.
En el tratamiento antitrombótico con
antagonistas de la vitamina K, el nivel óptimo de TP en sangre está
en el intervalo de INR 2 a INR 3. Los resultados del trabajo
experimental descrito en el Ejemplo 1 indican que existe un
intervalo óptimo de temperatura para la determinación del TP en
muestras con INR de aproximadamente 2; véase la Figura 3. Este
intervalo óptimo de temperatura es de aproximadamente 30ºC a 35ºC.
En la realización de la prueba de coagulación según la invención,
puede que sea favorable que se haga dentro del intervalo de
temperatura ambiente de 30ºC a 35ºC.
Son posibles otros límites de temperatura
distintos a los mencionados anteriormente. Como se ha indicado,
parece que el límite inferior del intervalo de temperaturas
permitidas es el más crítico y puede que sea necesario ajustarlo
con precisión, por ejemplo, especificado a 22ºC. Aunque, no existen
razones por las que el límite superior de temperaturas permitidas
deba ser inferior a 35ºC, dicha razón podría aparecer. Dentro del
alcance de la presente invención es posible la reducción del límite
superior, por ejemplo, hasta 30ºC.
Como se menciona anteriormente, parece que es un
intervalo óptimo de temperatura para la determinación del TP en
muestras con un INR en el intervalo de 2 a 3 o, incluso de 2 a 7. En
este intervalo óptimo de temperatura, la dependencia de la
temperatura del resultado de la prueba es pequeña lo que minimizará
el impacto de un mal equilibrado y/o determinación de la
temperatura. En los ejemplos recogidos a continuación, este
intervalo optimo de temperatura era de aproximadamente 30ºC a 35ºC.
La observación importante es que existe un intervalo óptimo de
temperatura y puede considerarse que las alteraciones en la
composición del reactivo y/o en los detalles del procedimiento
puedan desplazar este intervalo óptimo de temperatura hasta
temperaturas más bajas, donde se incluyan aquellas temperaturas que
normalmente se encuentran en las viviendas humanas, es decir, de
20ºC a 30ºC. Si puede lograrse este desplazamiento de la temperatura
optima, entonces existen razones para ajustar en consecuencia los
límites de temperatura permitidos.
La invención también se refiere a cómo obtener
los resultados de las pruebas de TP realizadas según la invención.
En un procedimiento de TP según la invención, se determinan el
tiempo de coagulación y la temperatura. Como se muestra en la
Figura 1 y en la Figura 2, el TCN y el ISI para un procedimiento de
TP determinado pueden considerarse como funciones de la temperatura
y la naturaleza de estas funciones puede determinarse mediante
calibrado. El procedimiento de TP según la invención puede
calibrarse determinando el tiempo de coagulación a diversas
temperaturas dentro del intervalo permitido para muestras con un INR
conocido. A estas temperaturas, se determinan el TCN y el ISI del
procedimiento de TP y se establece una relación funcional entre el
TCN normal y la temperatura y el ISI y la temperatura. Estos
últimos se indican como TCN(t) e ISI(t),
respectivamente. Una vez que se han determinado TCN(t) e
ISI(t), puede determinarse el INR como función del tiempo de
coagulación (TC) y de la temperatura,
INR(CT,t) como sigue:
INR(CT,t) como sigue:
INR(TC,t) =
(TC/TCN(t))^{ISI(t)}
En los ejemplos, TCN(t) e ISI(t)
eran polinomios de segundo grado. Por supuesto, pueden utilizarse en
este contexto muchos otros tipos de funciones. Puede usarse
cualquier función que se adapte bien a los datos de calibrado.
Puede construirse una tabla como alternativa
para deducir la relación funcional entre INR, t y TC, es decir,
deducir una expresión con dos variables TCN(t,TC) y calcular
los resultados del ensayo usando esta expresión. Esta tabla será
una matriz donde cada fila es un tiempo de coagulación (TC) y cada
columna una temperatura. Cada par de valores de temperatura y TC
dado se corresponderá con un INR. Por tanto, no supone apartarse de
la invención si los resultados del procedimiento de TP se presentan
en una tabla en la que los resultados del ensayo están en una
posición definida por una temperatura y un tiempo de
coagulación.
Puede emplearse cualquier procedimiento según la
reivindicación 1 que permita deducir un valor de INR a partir de un
TC y una temperatura. Se cumple lo mismo para las condiciones del
ensayo. Estas pueden incluir cualquier intervalo de temperatura
permitido limitado según la reivindicación 1 y cualquier intervalo
de tiempo de coagulación permitido limitado. En el trabajo
experimental existen intervalos de temperatura identificados en los
cuales la dependencia de la temperatura es despreciable lo cual
hace que el valor de INR esté en función sólo del tiempo de
coagulación. También en este caso es posible realizar la prueba de
TP según la invención. Se determina tanto el tiempo de coagulación
como la temperatura y ambos se usan para obtener los resultados del
ensayo. La temperatura se determina para confirmar que está dentro
del intervalo permitido.
La invención permite proporcionar a los usuarios
el equipo necesario para realizar el procedimiento de TP según la
invención. El kit de la prueba puede, además de los componentes ya
mencionados, contener un aparato e instrucciones para su uso. Por
ejemplo, el kit de la prueba puede contener reactivos para de 10 a
100 análisis del TP.
\global\parskip1.000000\baselineskip
La Fig. 1 es un diagrama en el que los círculos
rellenos muestran los TCN de la Tabla 1. La línea continua es un
polinomio de segundo grado ajustado a los puntos de datos
experimentales obtenidos por el procedimiento de mínimos cuadrados.
Los círculos vacíos muestran los valores de TCN para el
procedimiento de TP estimados con las muestras de plasma de
pacientes y los valores de INR para estos suministrados por el
departamento. La función ajustada fue TCN(t) = 136,4 -
6,165t + 0,0837t^{2}.
La Fig. 2 es un diagrama en el que los círculos
rellenos muestran los datos de ISI determinados experimentalmente
de la Tabla 1. La línea continua es un polinomio de segundo grado
ajustado a los puntos de datos experimentales obtenidos por el
procedimiento de mínimos cuadrados. Los círculos vacíos muestran los
valores de TCN para el procedimiento de TP estimados con las
muestras de plasma de pacientes y los valores de INR para estos
suministrados por el departamento. La función ajustada fue
TCN(t) = 1,0584 + 0,04201t - 0,0011t^{2}.
La Fig. 3 es un diagrama en el que las líneas
continuas muestran el tiempo de coagulación esperado con el
procedimiento de TP para muestras con valores de INR de 1, 2, 3, 4,
5 y 7 en el intervalo de temperatura de 18ºC a 40ºC. Los cálculos
se hicieron con la relación INR = (TC/TCN)^{ISI},
reordenada como INR = (TC/TCN(t))^{ISI(t)}, con las
inserciones de los TCN(t) e ISI(t) proporcionados en
las leyendas de las Figuras 1 y 2.
La Fig. 4 es un diagrama en el que los valores
de INR de 23 muestras de plasma de pacientes tratados con citrato
determinados según la invención a 22,7ºC se comparan con los valores
de INR de las mismas muestras determinadas según la técnica
anterior en el Departamento de Química Clínica del Hospital
Universitario de Linköping, Suecia.
La Fig. 5 es un diagrama en el que el valor
medio de INR de tres determinaciones según la invención para
muestras de plasma de 12 pacientes, a 18,5ºC, 22,7ºC y 28,4ºC, se
compara con los valores de INR de las mismas muestras determinados
según la técnica anterior. Las determinaciones según la invención y
según la técnica anterior se indican como INR de la invención e INR
del Dept. Quim. Clin., respectivamente.
Los ejemplos siguientes se proporcionan para un
mejor entendimiento de la invención y para mostrar que ésta tiene
importancia práctica y económica. Los ejemplos son sólo una pequeña
muestra de todas las posibles realizaciones de la invención. Por
tanto, los ejemplos no limitan en modo alguno la presente
invención.
El reactivo para determinar el TP fue GHI 131,
lote C225F, que es del tipo Owren ya que contiene tromboplastina de
cerebro de conejo, factor V bovino y fibrinógeno bovino. El reactivo
se suministraba como polvo liofilizado. Cada vial de reactivo se
reconstituyó primero con 5 ml de agua y, a continuación, con 5 ml de
CaCl_{2} 25 mM. El reactivo se usó entre 4 y 10 horas después de
la reconstitución. En el procedimiento de ensayo del TP, se
colocaron 300 \mul del reactivo en el recipiente de reacción a los
que se añadieron 25 \mul de muestra, en una proporción 1:12. La
cantidad de fibrinógeno en el reactivo era suficiente para aumentar
la concentración de fibrinógeno en la mezcla de la muestra y el
reactivo en aproximadamente 0,8 g/l.
Las muestras de plasma control con INR conocido
eran muestra de plasma liofilizadas con un INR conocido. Un plasma
control, con número de producto GHI 162, tenía un INR de 1,11 y el
otro, con número de producto GHI 167, tenía un INR de 2,82. Las
muestras de plasma control liofilizadas se reconstituyeron primero
con 1 ml de agua según la recomendación del fabricante y, a
continuación, para llevar el plasma control reconstituido a
aproximadamente la misma potencia de TP que la sangre con un volumen
de fracción de eritrocitos (VFE) de 0,45, el plasma control se
diluyó añadiendo 0,82 ml de NaCl 150 mM. El reactivo de TP y las
muestras de plasma control fueron fabricados por Global Hemostasis
Institutet MGR AB, Linköping, Suecia.
Las muestras de plasma tratado con citrato
procedían del Departamento de Química Clínica del Hospital
Universitario de Linköping, Suecia. Las 23 muestras procedían de
las muestras que llegaron al departamento para el análisis del TP
durante aproximadamente 3 horas en la tarde del 12 de junio de 2003.
Las muestras se analizaron según la invención antes de 4 horas
después de haber sido analizadas por el procedimiento rutinario del
departamento. Las muestras se convirtieron en no trazables para
mantener el anonimato de los pacientes y se proporcionaron con los
valores de TP obtenidos por el departamento. Antes del ensayo según
la invención, se diluyó una porción de 200 \mul de cada plasma
1:1,82 con la adición de 164 \mul de NaCl 150 mM. Esto las hizo
equipotentes a las muestras de sangre con un VFE de 0,45. Los
experimentos clínicos se realizaron en colaboración con el Profesor
Tomas L. Lindahl del Departamento de Química Clínica, Universidad de
Linköping y fueron aprobados por el comité de ética local de la
Facultad de Medicina de la Universidad de Linköping.
Los capilares de vidrio con un volumen de 25
\mul (50 mm de longitud), con número de producto
111.395-25, eran de KEBO-lab,
Estocolmo, Suecia.
El reactivo de TP se añadió a tubos de
poliestireno de 8 mm de diámetro interno a razón de 300 \mul de
reactivo por tubo. Los tubos se taparon y su temperatura se
equilibró en un baño. A tiempo cero, se añadieron 25 \mul de
muestra al tubo del reactivo y se volvió a tapar. El tubo se
inclinaba cada varios segundos de modo que el fondo del mismo
estuviera fuera del baño cuando se inclinaba y se devolvía al baño
colocándolo de nuevo derecho. El contenido del tubo se
inspeccionaba cada vez que éste se inclinaba. Cuando se detectaban
los primeros signos de coagulación, se registraba el tiempo. La
temperatura del baño se variaba entre 14ºC y 40ºC. Los 25 \mul de
muestra se añadieron tanto mediante capilares de vidrio como con una
pipeta de punta de plástico desechable.
El tiempo de coagulación (TC) se determinó con
un procedimiento de TP en dos muestras de plasma control cada dos
grados centígrados en el intervalo de temperatura de 18ºC a 38ºC.
Las muestras de plasma control tenían valores de INR de 1,14 a
2,82. A partir de estos valores se calcularon el tiempo de
coagulación normal (TCN) y el índice de sensibilidad internacional
(ISI) del procedimiento de TP para cada una de las once
temperaturas. El TCN estaba en el intervalo de 55 s a 22 s, y el
ISI en el intervalo de 1,0 a 1,5; véanse las figuras 1 y 2. Los
polinomios de segundo grado se ajustaron por el procedimiento de
mínimos cuadrado para proporcionar el TCN y el ISI como funciones
de la temperatura. Los polinomios de segundo grado que
proporcionaban el mejor ajuste de los datos fueron:
- TCN(t)
- = 136,4 - 6,165t + 0,0837t^{2}
- ISI(t)
- = 1,0584 + 0,0420t - 0,0011t^{2}
También se determinaron los TCN y los ISI para
el mismo procedimiento de TP a tres temperaturas, 18,5ºC, 22,7ºC y
28,4ºC con muestras de plasma de pacientes del Departamento de
Química Clínica. Las Figuras 1 y 2 también muestran que las
estimaciones de TCN e ISI hechas con las muestras de plasma de los
pacientes y los valores de INR suministrados por el departamento
estaban en concordancia.
La relación funcional entre la temperatura y los
valores de TCN e ISI permitieron construir grupos de curvas, una
por cada valor específico de INR, que mostraban el tiempo esperado
de coagulación en función de la temperatura. La curva para un valor
de INR de 1 era plana en el intervalo de temperatura de 35ºC a 40ºC.
Las curvas de valores superiores de INR mostraban un mínimo cada
vez más pronunciado en el intervalo de 30ºC a 35ºC.
El ejemplo 1 demuestra que puede determinarse la
relación funcional entre la temperatura y los valores de TCN e ISI,
TCN(t) e ISI(t). Además, el ejemplo 1 muestra que cada
par de valores (t,TC) se transforma en un valor de INR. La Figura 3
puede usarse para realizar esta transformación pero es necesaria la
interpolación entre las curvas. Parece que el sistema más directo
para transformar el par de valores (t,CT) en un valor INR es una
relación matemática con dos variables o una tabla. La Figura 3
muestra claramente que, en la práctica, puede realizarse una
transformación de este tipo.
Cuando se analiza una muestra según la
invención, se determinan el tiempo de coagulación y la temperatura
ambiente (t). Con estos valores y la relación funcional conocida
entre TCN(t) e ISI(t) puede calcularse un valor de
INR como INR = (TC/TCN(t))^{ISI(T)}. Por tanto,
según la invención, siempre que la temperatura este en un intervalo
permitido, cada par de valores (t,TC) generará un valor de INR. Por
supuesto, el valor de TC también debe estar dentro de cierto
intervalo permitido pero esto no representa nada nuevo en
comparación con los procedimientos de TP más actuales y, por tanto,
no se ha elaborado en este documento.
Se obtuvieron muestras de plasma de 23 pacientes
del Departamento de Química Clínica junto con los valores de INR
determinados según la técnica anterior. Las 23 muestras se
analizaron según la invención. Para cada muestra se determinaron la
temperatura ambiente y el tiempo de coagulación. La temperatura en
las series era estable a 22,7ºC. A esta temperatura se determinaron
los valores de TCN y de ISI del procedimiento de TP con respecto a
los valores de INR de la técnica anterior. A continuación, se
calcularon los valores de INR según la invención. Los valores de
INR obtenidos según la invención a 22,7ºC se compararon con los
valores de INR obtenidos según la técnica anterior a 37ºC; véase la
Figura 4. La comparación se realizó por regresión lineal. Se
obtuvieron una pendiente cercana a la unidad (1,008), una
intersección próxima a cero (0,007) y un coeficiente de correlación
de 0,982. No se observaron valores atípicos obvios. Las primeras 12
muestras de las 23 se analizaron de forma similar a 18,5ºC y a
28,4ºC. Para cada una de estas 12 muestra se determinó un valor
medio de INR como la media de tres determinaciones, una a cada una
de las tres temperaturas mencionadas. Este valor medio de INR
también se comparó mediante análisis de regresión lineal con los
valores de INR proporcionados por el departamento; Figura 5. De
modo interesante, los valores medios de INR se correlacionaban con
más fuerza con los valores de INR proporcionados por el
departamento que los valores de INR obtenidos sólo a una temperatura
(22,7ºC), el coeficiente de regresión por mínimos cuadrados era de
0,995 en comparación con 0,982. La inspección de los datos de la
Figura 5 muestra que no existe sesgo ni valores atípicos obvios.
Parece que el INR puede determinarse según la invención a cualquier
temperatura en el intervalo de 18ºC a 40ºC.
El ejemplo 2 demuestra que los valores de INR
pueden determinarse a temperaturas distintas a 37ºC. Según los
datos, puede realizarse una prueba de TP a temperatura ambiente
siempre que se determinen el tiempo de coagulación y la temperatura
y que se usen ambos valores para obtener el resultado de la prueba.
Para una demostración adicional del argumento, se determinaron los
valores medios de INR en las muestras de plasma de 12 pacientes.
Cada valor medio de INR era una media aritmética de tres
determinaciones de INR, una a 18,5ºC, la segunda a 22,7ºC y una
tercera a 28,4ºC. En la Figura 5 se compararon los valores medios de
INR con los valores de INR obtenidos previamente en la técnica. En
este caso, los datos se alineaban incluso mejor que en la Figura 4.
Los resultados se interpretan de la siguiente forma: cada valor
medio de INR es la media de tres determinaciones según la
invención. Cada una de estas tres estimaciones es igualmente buena,
independientemente de la temperatura. Los valores medios de INR
son, por tanto, mejores estimaciones del valor de INR real que la
estimación única a 22,7ºC. Se obtiene una desviación típica de las
determinaciones asumiendo que el valor del INR del departamento era
correcto. A continuación, puede determinarse que la desviación
típica de la media del INR y el INR a 22,7ºC es 0,029 y 0,043,
respectivamente. La proporción entre estas desviaciones típicas es
de 1,5, que está próxima a 1,73, la raíz cuadrada de tres, que es
lo esperado si todas las determinaciones, independientemente de la
temperatura, tienen la misma importancia.
Los datos mostrados en las Figuras 4 y 5
presentan el descubrimiento en el cual se basa la invención. El TP
puede determinarse a cualquier temperatura en el intervalo de
aproximadamente 15ºC a 45ºC. Sólo es necesario determinar la
temperatura y utilizarla junto con el tiempo de coagulación para
obtener el resultado del ensayo. El hecho de que el TP pueda
determinarse en un intervalo relativamente amplio de temperatura no
es algo insignificante. Es un hecho que ahora se ha verificado
experimentalmente. Ahora sabemos que se abren ante nosotros nuevas
posibilidades analíticas que ofrecen ventajas considerables. Puesto
que no existe necesidad de definir la temperatura, sólo es
necesario determinarla, puede retirarse del equipo el hardware más
caro usado para determinar el TP. Perfectamente puede ser que los
equipos quizás se fabriquen tan baratos que sea posible utilizar un
aparato desechable para las pruebas de TP. Ésto podría ser decisivo
para las pruebas de TP para diagnóstico analítico inmediato.
Es probable que la invención pueda ponerse en
práctica en cualquier tipo de prueba de TP de química húmeda. En
particular, se demuestra con claridad que la invención puede ponerse
en práctica con una prueba de TP de química húmeda del tipo Owren,
es decir, con una prueba de TP en la que el reactivo contiene
cantidades suficientes de fibrinógeno como para aumentar la
concentración del fibrinógeno en la mezcla al menos en el intervalo
de 0,1 g/l a
0,5 g/l y en el que la proporción volumétrica entre el reactivo y la muestra está en el intervalo de cuatro a diez o superior. Sin embargo, la proporción volumétrica puede ser mucho mayor, por ejemplo, de 50 o incluso mayor.
0,5 g/l y en el que la proporción volumétrica entre el reactivo y la muestra está en el intervalo de cuatro a diez o superior. Sin embargo, la proporción volumétrica puede ser mucho mayor, por ejemplo, de 50 o incluso mayor.
La determinación del TP según la invención
podría dar lugar a una mejora en la calidad de la prueba. Una razón
para un mal resultado en el TP es un defecto en el control de la
temperatura. La temperatura de la mezcla de reacción no es la que
se supone que tiene que ser. Esto puede ser porque no se ha dado el
tiempo suficiente para que la temperatura se equilibre o debido a
algún error en el termostato. Es lógico pensar que es más fácil
medir la temperatura con buena precisión que mantenerla a un cierto
nivel predeterminado con la misma precisión.
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El tiempo de coagulación de TP para las dos
muestras de plasma control se determinó a diversas temperaturas en
el intervalo de 18ºC a 38ºC. Los tiempos de coagulación se designan
TC INR 1,14 y TC INR 2,82. Usando estos dos valores de TC, se
determinaros los TCN y los ISI del procedimiento de TP a cada
temperatura a partir de la relación INR = (TC/TCN)^{ISI}.
Todos los tiempos de coagulación se proporcionan en segundos.
A continuación se recoge un fragmento del
archivo de Excel que muestra que un tiempo de coagulación y una
temperatura, determinados durante la práctica de un procedimiento de
TP según la invención, pueden transformarse en un valor de INR. Se
proporciona una fila por cada TC en segundos y una columna para cada
temperatura en grados centígrados. Si, durante la práctica de un
procedimiento de TP según la invención, se determinan una
temperatura de 24ºC y un tiempo de coagulación de 45 segundos,
entonces el INR de la muestra es de 1,34. La sección de la matriz
mostrada cubre el intervalo de temperatura de 19ºC a 28ºC. Si, en
conexión con la realización de una prueba de TP según la invención,
se determina una temperatura inferior a 18ºC entonces, está fuera
de las condiciones propuestas para la prueba y no se obtiene valor
de INR. Por tanto, la temperatura medida se utiliza para el control
de las condiciones de la prueba. Si la temperatura medida está
fuera del intervalo permitido, entonces las condiciones de la
prueba no cumplen con los requisitos y no se generarán resultados
para la prueba.
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (6)
1. Un procedimiento de determinación, en una
prueba de coagulación, del tiempo de protrombina (TP) en una
muestra de sangre completa, sangre anticoagulada, plasma sanguíneo o
plasma sanguíneo anticoagulado que comprende las etapas de
a) añadir un volumen definido de la muestra a un
volumen definido de un reactivo líquido que comprende tromboplastina
y fibrinógeno en una proporción entre los volúmenes definidos del
reactivo y la muestra de al menos cuatro, aumentando esta cantidad
de fibrinógeno la concentración de fibrinógeno en la mezcla en al
menos 0,1 g/l, o viceversa, en un recipiente,
b) determinar la temperatura de la mezcla de
reacción de a) que tiene una temperatura ambiente en el intervalo de
18ºC a 35ºC.
realizándose las etapas a) y b) en un orden
opcional, seguido de
c) determinar el tiempo de coagulación (TC)
registrando el tiempo desde la adición en a) hasta que se detecta la
formación de un coágulo en el recipiente, y
d) calcular el tiempo de protrombrina (TP) en
función de la temperatura de b) y del tiempo de coagulación (TC) de
c) expresado como cociente normalizado internacional (INR), usando
la ecuación
INR =
(TC/(TCN(t))^{ISI(t)}
en la
que
TC = tiempo de coagulación de c) en la
reivindicación 1,
t = temperatura de b) en la reivindicación
1,
TCN(t) = tiempo de coagulación normal
(TCN) expresado en función de la temperatura t, e
ISI(t) = índice de sensibilidad
internacional (ISI), expresado en función de la temperatura t.
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2. El procedimiento según la reivindicación 1,
en el que el reactivo líquido comprende dos o tres reactivos
diferentes.
3. El procedimiento según la reivindicación 1 ó
2, en el que el reactivo líquido contiene una cantidad de
fibrinógeno que aumenta la concentración de fibrinógeno en la mezcla
de a) en al menos 0,5 g/l y la proporción entre el volumen definido
del reactivo y la muestra en a) es de al menos diez.
4. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que la determinación de la temperatura
en b) se consigue midiendo la temperatura ambiente de la
habitación, a condición de que el reactivo líquido esté a la misma
temperatura.
5. El procedimiento según la reivindicación 1,
en el que la temperatura ambiente está en el intervalo de 30ºC a
35ºC.
6. El procedimiento según una cualquiera de la
reivindicaciones 1 a 5, en el que el tiempo de protrombina (TP) se
obtiene a partir de una tabla con filas y columnas donde las
primeras son para diversos tiempos de coagulación y las segundas
para diversas temperaturas, y el TP se encuentra en la intersección
entre el tiempo de coagulación y la temperatura.
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