ES2310938T3 - Microcapsulas de activacion externa. - Google Patents
Microcapsulas de activacion externa. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2310938T3 ES2310938T3 ES99923048T ES99923048T ES2310938T3 ES 2310938 T3 ES2310938 T3 ES 2310938T3 ES 99923048 T ES99923048 T ES 99923048T ES 99923048 T ES99923048 T ES 99923048T ES 2310938 T3 ES2310938 T3 ES 2310938T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- microcapsules
- drug
- composition according
- oil
- microns
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
- A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
- A61K9/5089—Processes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K41/00—Medicinal preparations obtained by treating materials with wave energy or particle radiation ; Therapies using these preparations
- A61K41/0028—Disruption, e.g. by heat or ultrasounds, sonophysical or sonochemical activation, e.g. thermosensitive or heat-sensitive liposomes, disruption of calculi with a medicinal preparation and ultrasounds
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K41/00—Medicinal preparations obtained by treating materials with wave energy or particle radiation ; Therapies using these preparations
- A61K41/0052—Thermotherapy; Hyperthermia; Magnetic induction; Induction heating therapy
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
- A61K9/1277—Processes for preparing; Proliposomes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
- A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
- A61K9/5094—Microcapsules containing magnetic carrier material, e.g. ferrite for drug targeting
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
- Cosmetics (AREA)
Abstract
Composición que comprende microcápsulas, en la que dichas microcápsulas comprenden una o más fases líquidas internas contenidas dentro de una membrana exterior polimérica que presenta una temperatura de fusión, y que comprenden adicionalmente una o más partículas magnéticas en una fase líquida interna en contacto con la membrana exterior; y en la que además, una primera parte de dichas microcápsulas presenta una membrana exterior polimérica con un diferente punto de fusión al de la segunda parte de dichas microcápsulas, y en la que además el primer punto de fusión y el segundo punto de fusión son inferiores al punto de Curie de las partículas magnéticas, en la que dichas microcápsulas contienen un fármaco en por lo menos una de dichas fases líquidas internas.
Description
Microcápsulas de activación externa.
La invención se refiere a composiciones de
microcápsulas. Se describen en la presente memoria procedimientos
para la fabricación de microcápsulas, la encapsulación de compuestos
farmacéuticos en microcápsulas, productos y composiciones
farmacéuticas encapsuladas en microcápsulas, y procedimientos de
utilización de estas composiciones. La invención también se refiera
a la administración controlada de una sustancia contenida en una
microcápsula por medio del uso de partículas magnéticas que son
calentadas por la exposición a un campo electromagnético.
A pesar de que la encapsulación de un fármaco en
una microcápsula u otro portador afronta varios problemas de
administración de fármacos, un área de interés en la técnica de la
administración de fármacos es todavía la liberación específica,
controlada de un fármaco desde la microcápsula cuando alcanza el
sitio diana. Se han descrito varios procedimientos para resolver
este problema, incluyendo el calentamiento de liposomas hasta la
temperatura de fusión de la bicapa fosfolipídica induciendo una
hipertermia local o calentano polvos magnéticos incorporados en las
membranas, incluyendo también la agitación física de microcápsulas
por ultrasonido o mediante campos magnéticos oscilantes. Sin
embargo, los inventores desconocen procedimiento anterior alguno en
el que se realice por fusión un agujero permanente en una
microcápsula que comprenda un recubrimiento exterior polimérico, de
manera que el contenido sea liberado a través del poro.
En un sistema de administración controlada de
Supersaxo et al. en la patente estadounidense US nº 5.470582,
se realizan micropartículas a partir de polímeros como los
poliésteres, las poliamidas, los polianhídridos y los poliacrilatos
con poros preformados y se permite la migración de un agente activo
a las micropartículas a través de los poros. Tras la
administración, el agente activo se libera a través de los poros por
difusión. Puede producirse una liberación de golpe mediante la
aplicación de radiación ultrasónica. Otro sistema, descrito por
Mathiowitz et al. en la patente estadounidense US nº
4.898.734, también se basa en una difusión pasiva o facilitada de
un agente activo desde microesferas poliméricas que contienen poros.
Entre los procedimientos para facilitar la difusión se incluye la
exposición a altas temperaturas, luz, o ultrasonido. Esta patente
también describe microesferas degradables y microesferas
inmovilizadas en una matriz polimérica. Un sistema de
administración de liberación controlada de Modi en la patente
estadounidense US nº 5.417.982 hace referencia a microesferas
basadas en un copolímero biodegradable en las que la liberación
retardada de un agente activo se controla por el tiempo necesario
para la digestión enzimática de la matriz polimérica. Wheatley et
al., en la patente estadounidense US nº 4.933.185, describen
microcápsulas con un núcleo interior y una película iónica
exterior. Se encapsulan un agente activo y una enzima en el núcleo
interior, de manera que la enzima se degrada en al núcleo interior y
libera el agente activo.
La liberación controlada de fármacos a partir de
liposomas se ha conseguido utilizando polímeros sensibles a la
temperatura en la formación de liposomas (Magin et al. 1986).
Una vez que los liposomas son situados en el tejido (o tumor) diana
el fármaco puede ser rápidamente liberado si la temperatura del
tejido local puede elevarse por encima de la temperatura de
transición de la membrana liposomal. Esto necesita algún
procedimiento de calentamiento controlado de tejidos que sea
difícil de alcanzar sin procedimientos quirúrgicos complicados,
ultrasonidos o antenas intersticiales implantadas para producir una
hipertermia local efectiva (Had, 1991). Los liposomas
termosensibles se han preparado a partir de una diversidad de
lípidos naturales y sintéticos como por ejemplo la
fosfatidilcolina, distearoil fosfatidilcolina, y colesterol para
presentar unas temperaturas de transición de entre 41ºC y 43ºC de
manera que la membrana fosfolipídica exterior se funde y libera el
fármaco que contiene en respuesta a la hipertermia local. Se han
hecho intentos para utilizar estos liposomas y la hipertermia
tisular local para conseguir el direccionamiento de los fármacos a
los tumores.
Chelvi y Rathan (1995) prepararon liposomas
sensibles a la temperatura a partir de lípidos naturales,
fosfatidilcolina de huevo:colesterol (PC:Ch) en una relación molar
de 7:1 y etanol, 6% (v/v) con una temperatura de transición de
43ºC. Se encapsuló calceína fluorescente en los liposomas y fue
administrado a ratones, un grupo cuyas piernas portadoras de
tumores fueron sumergidas en un baño de agua para alcanzar una
temperatura en el tumor de 43ºC y se mantuvieron ahí durante una
hora. La microscopía de fluorescencia demostró la liberación de
calceína desde liposomas sensibles a la temperatura. La eficacia
in vivo de las vesículas unilamelares sensibles a la
temperatura que contienen dacarbazina en combinación con la
hipertermia se detectó en fibrosarcomas murino.
Kakinuma et al. (1995) también utilizaron
liposomas termosensibles que contenían
cis-diaminodicloroplatino (CDDP) para administrar
dosis citotóxicas a tumores cerebrales disolviendo los liposomas con
un calentamiento localizado del cerebro. Los investigadores
estudiaron el efecto antitumoral en glioma maligno de rata. Diez
días después de la inoculación del tumor, las ratas fueron asignadas
a uno de entre seis grupos de tratamiento; control, CDDP libre,
hipertermia, CDDP libre + hipertermia, liposomas con CDDP
(CDDP-liposomas), y CDDP-liposomas
+ hipertermia. Se inyectaron liposomas con CDDP o CDDP libre por vía
de la vena de la cola. Se administró el calentamiento de tumor
cerebral por medio de una antena de radiofrecuencia diseñada para el
cerebro de las ratas. Las ratas tratadas con
CDDP-liposoma + hipertermia presentaron el mayor
tiempo de supervivencia y el nivel de CDDP en el tumor de este
grupo resultó ser el más elevado al ser comparado con los otros
grupos. El examen histopatológico mostró que las células tumorales
resultaron necrotizadas pero el tejido cerebral normal circundante
permaneció intacto. Los mayores efectos antitumorales sugirieron que
la combinación del liposoma termosensible y la hipotermia
localizada enfocaban mejor los fármacos antitumorales contra el
tumor.
Los liposomas termosensibles diseñados para la
liberación de fármacos por hipertermia han sido sometidos a ensayo
a diferentes temperaturas de tejido local (Kalanuma et al.,
1996). Fueron sometidos a ensayo cuatro grupos: el primero recibió
cisplatino libre (cis-diaminodicloroplatino, CDDP);
el segundo recibió CDDP libre y un calentamiento del cerebro local
por encima de los 41ºC por 30 minutos; el tercer grupo recibió
liposomas con CDDP (CDDP-liposomas); y el cuarto
grupo recibió CDDP-liposoma y un calentamiento del
cerebro local por encima de los 41ºC por 30 minutos. Los niveles de
CDDP resultaron ser significativamente superiores en el grupo 4,
mientras los niveles de los otros grupos eran indetectables. Los
presentes inventores también han estudiado la distribución del
colorante azul de Evans (Eb) en la región artificialmente calentada
del cerebro de los perros. Un grupo recibió Eb libre y otro grupo
recibió liposomas con Eb (Eb-liposomas). Mientras
que la extravasación del Eb libre fue localizada en regiones
calentadas a más de 44ºC, la del Eb-liposoma se
extendió hasta las regiones calentadas a 41ºC. Parece que el uso de
liposomas termosensibles e hipertermia no solamente contribuye a la
eliminación del tumor cerebral, sino que también ayuda a aumentar la
concentración de fármacos quimioterápicos en las zonas invadidas por
el tumor como hipertermia local suave de únicamente 41ºC.
Un procedimiento para la localización de un
portador de fármacos que ha sido descrito consiste en la inclusión
de partículas magnéticas en el portador. La encapsulación de las
partículas magnéticas suspendidas en aceite en microcápsulas con
membranas orgánicas coloidales es descrita en la patente
estadounidense US nº 2.971.916. Las partículas magnéticas fueron
utilizadas para dirigir las microcápsulas a un sitio magnetizados
sobre un medio de papel, en el que las cápsulas fueron trituradas
dando lugar a una tinta o un tinte en el papel.
En las patentes estadounidenses US nº 4.247.406
y US nº 4.345.588 se describen unas microesferas para la
administración intravascular que comprenden partículas magnéticas
en un portador biodegradable. Las microcápsulas descritas en estas
patentes comprenden unas partículas magnéticas embebidas en una
matriz de ácido poliamino, como por ejemplo albúmina, que también
actúa como un portador para un fármaco terapéutico. Las
microcápsulas son infundidas a una arteria que alimenta un lecho
capilar particular y a continuación son inmovilizadas por la
aplicación de un campo magnético a través del lecho capilar. Las
microcápsulas son mantenidas en el lecho por el campo magnético
hasta que la matriz polimérica es disuelta por las enzimas
proteolíticas, o pueden ser llevadas a los tejidos circundantes
mediante la aplicación de un campo más fuerte. Tal y como se
describe en estas patentes, cuando estos portadores son llevados al
tejido para administrar los fármacos directamente, se vuelven
inmóviles en el tejido en el que permanecen hasta que se deja de
aplicar el campo.
En la patente estadounidense US nº 4.652.257 de
Chang se describen unas partículas magnéticas que encapsulan
liposomas. Estos liposomas también se utilizan para localizar un
fármaco quimioterápico en un lecho capilar mediante la aplicación
de un campo magnético. Tras la inmovilización de los liposomas en el
sitio diana, se hacen vibrar las partículas magnéticas mediante la
aplicación de un campo magnético oscilante. Las partículas se hacen
vibrar con el fin de desestabilizar, o de romper la membrana
lipídica, liberando de esta manera el fármaco. Los liposomas
descritos por Chang son pequeños (del orden de entre 1 micrómetro y
2 micrómetros con partículas ferromagnéticas aproximadamente de
entre 100 angstromsy 1000 angstroms), y además están limitados por
el hecho de que los liposomas solamente pueden administrar fármacos
hidrofílicos. El pequeño tamaño de los liposomas limita su utilidad
debido a que las dimensiones y la forma son un factor en la
distribución y administración de fármaco de los liposomas en los
tejidos. Además, en los liposomas descritos por Chang, es la fuerza
mecánica de las partículas ferromagnéticas vibrantes lo que
desestabiliza o rompe la membrana, en vez de algún efecto de
calentamiento local.
Sin embargo, es evidente, que todavía son
necesarias mejoras para abordar algunos inconvenientes de los
sistemas convencionales de administración mediante liposomas o
microcápsulas. La administración de una diversidad de fármacos
activos a un sitio específico en el cuerpo con una formulación de
liposomas presenta todavía dificultades, por ejemplo. Hay una
necesidad de un sistema que aborde determinadas desventajas de los
liposomas termosensibles para la administración de fármacos. Estos
sistemas de administración son principalmente útiles para fármacos
que se difunden fuera del portador a través de la membrana de bicapa
fosfolipídica, o en liposomas que son fagocitados por un tipo de
células particular. Los liposomas termosensibles pueden fundirse
mediante hipertermia local, pero desafortunadamente, los
procedimientos de creación de hipertermia en tejidos locales no son
precisos y son muy dependientes de la composición del tejido local.
El calentamiento también puede contrarrestarse mediante el enfriado
del flujo sanguíneo. Los liposomas (o las microcápsulas)
termosensibles están limitados a los que presentan unas membranas
exteriores que pueden fundirse a temperaturas inferiores a las que
puedan causar un daño permanente a los tejidos sanos, por lo
general un máximo de entre 41ºC y 44ºC. En aquellos procedimientos
en los que se utilizan el calentamiento o fuerzas mecánicas para
romper o fundir la membrana liposomal, o incluso para realizar por
fusión un agujero en la membrana, la bicapa fosfolipídica se
extenderá rápidamente para cerrar el agujero y de esa manera
reformar la bicapa lipídica. Por lo tanto, hay una necesidad de un
procedimiento de administración controlada de un fármaco en un sitio
tumoral que no dependa de la difusión pasiva, la hipertermia local
de tejidos, o cambios de fase temporales en la membrana
exterior.
La presente invención aborda estos y otros
inconvenientes de la técnica anterior proporcionando composiciones
como las reivindicadas en las reivindicaciones 1 y 2. Se reivindican
formas de realización preferentes en las reivindicaciones
dependientes. También se describen composiciones y procedimientos
que comprenden microcápsulas líquidas multicapa que están
compuestas por una película o membrana exterior polimérica que rodea
los compartimentos de fluido inmiscible que contienen los fármacos
bien sea en estado sólido, cristalino o disuelto. Las microcápsulas
también contienen partículas metálicas como por ejemplo partículas
ferromagnéticas que se calientan por inducción hasta una
temperatura controlable cuando son expuestas a un campo
electromagnético externo u otras formas de activación de energía.
Las microcápsulas está diseñadas de manera que las partículas
magnéticas puedan ser calentadas hasta su temperatura
característica de Curie (punto de Curie) mediante la exposición a un
campo electromagnético, y se realizarán agujeros por fusión en la
película exterior de las micropartículas, diseñadas para tener una
temperatura de fusión inferior a la temperatura de Curie, liberando
de esta manera el contenido (fármacos) sin causar extensos daños a
los tejidos circundantes. Estas partículas magnéticas generalmente
presentan unas dimensiones en un intervalo de entre 0,01 micrones y
0,05 micrones, y preferentemente no superiores a 1/10 del diámetro
de la microcápsula que contiene la partícula magnética.
Las partículas magnéticas que están contendidas
en las microcápsulas presentan una tasa de absorción específica
(SAR) cuando son expuestas a un campo magnético, que es diferente de
la de las células o tejidos normales, y las partículas pueden
diseñarse para presentar una temperatura característica máxima
(punto de Curie), a la cual el material magnético pierde su
conductividad térmica o permeabilidad magnética y no se calentará
más con la exposición continua al campo magnético. Las microcápsulas
también se diseñan de manera que la temperatura de fusión de la
película o membrana polimérica exterior de las microcápsulas sea
inferior al punto de Curie de las partículas magnéticas dentro de la
microcápsula.
Las partículas magnéticas pueden estar
compuestas por una diversidad de metales incluyendo partículas
ferromagnéticas, como por ejemplo Fe_{3}O_{4}, compuestos de
hierro carbonilo y combinaciones de diversos óxidos metálicos de
transición. Los inventores han demostrado la utilidad de las
partículas de recubrimiento cerámico que comprenden óxidos de
hierro, níquely zinc, como por ejemplo partículas que comprenden
aproximadamente un 66% en peso de Fe_{2}O_{3}, aproximadamente
un 9% en peso de NiO, y aproximadamente un 25% en peso de ZnO. Otros
metales que pueden utilizarse en las partículas descritas en la
presente memoria incluyen, aunque sin limitarse a ellos, cobalto,
cobre, oro, plata y combinaciones de los mismos, incluyendo cobre
que contiene aleaciones de oro y plata. El material magnético
utilizado en las microcápsulas tal y como se describe en la presente
memoria por le general también está cubierto por un material como
un material cerámico que sea compatible con los líquidos de las
microcápsulas y con el fármaco o agente activo. A pesar de que las
partículas descritas en la presente memoria están cubiertas con
materiales cerámicos, pueden utilizarse otros recubrimientos que
sean compatibles con las fases líquidas y los fármacos o solventes a
utilizar en las microcápsulas. Para las microcápsulas ejemplares
que se describen a continuación se escogieron materiales cerámicos
debido a su baja antigenicidad, no son químicamente reactivos con
los solventes o fármacos utilizados en las microcápsulas, y
previenen la oxidación del metal. Entre los recubrimientos
alternativos se incluirían, aunque sin limitarse a ellos,
metacrilatos, alginatos, dextrano, poliacrilatos, polivinil
pirrolidona (si el material ferroso se encuentra completamente
oxidado).
Para el uso en aplicaciones clínicas, las
partículas pueden presentar una temperatura de Curie desde un valor
aproximado de entre 41ºC y 44ºC o incluso hasta un valor aproximado
de entre 80ºC y 95ºC. Dichas altas temperaturas pueden utilizarse
en las microcápsulas debido a que las pequeñas partículas magnéticas
son una fuente de calor puntual y no una técnica de hipertermia de
tejidos, que nunca podría utilizarse a tan altas temperaturas sin
causar un daño extensivo en los tejidos. Con las microcápsulas de la
presente invención, los inventores contemplan que incluso un punto
de Curie de 95ºC causaría daños colaterales solamente en una pocas
células cercanas. En la práctica de la invención, se puede utilizar
un campo electromagnético con una frecuencia aproximada de entre 85
kHz y 95 kHz, o incluso de aproximadamente 100 kHz, una fuerza de
entre 1500 Amps/m y 2000 Amps/m, aunque también son aceptables
frecuencias inferiores a 500 kHz.
Las composiciones de la invención contienen
mezclas de microcápsulas en las que algunas cápsulas contienen
partículas con diferentes temperaturas de Curie a las otras, o
microcápsulas con membranas poliméricas que presentan diferentes
temperaturas de fusión de manera que pueden efectuarse múltiples
liberaciones de fármaco con una única infusión. Por supuesto,
pueden liberarse diferentes fármacos a diferentes temperaturas, o
pueden efectuarse múltiples liberaciones del mismo fármaco. Esto
permite que un médico pueda liberar parte del fármaco bajo el
control de un campo electromagnético, y más tarde liberar más
fármaco utilizando un tiempo o una potencia de campo diferente, o
liberar diferentes fármacos por separado, todavía a partir de una
única infusión o inyección. Por lo tanto, la invención, proporciona
una flexibilidad que es una ventaja distinta sobre procedimientos
anteriores de administración controlada.
En un procedimiento de utilización de
microcápsulas, una vez que las microcápsulas alcanzan un sitio diana
como un tumor, bien sea por infusión o inyección directa, las
microcápsulas son expuestas a un campo electromagnético externo que
se ajusta a la SAR máxima de la partículas magnéticas contenidas en
las microcápsulas. Este procedimiento puede incluir la exposición
de microcápsulas retenidas en tejidos de un sujeto en el que la
exposición es por administración externa del campo electromagnético
a través de la piel y los tejidos externos del sujeto. Esta energía
es absorbida por las partículas magnéticas que son calentadas a su
temperatura de Curie sin calentar el tejido circundante. Las
partículas magnéticas calentadas realizan por fusión un agujero o
perforación en la película exterior de las microcápsulas,
sometiendo de esa manera las microcápsulas a lisis y proporcionando
un conducto para una liberación rápida del fármaco mediante el flujo
de fluido libre desde de las microcápsulas y/o difusión del fármaco
desde el agujero creado en la membrana. El fármaco liberado se
encuentra entonces en contacto con las células en el sitio local.
Se entiende que, a pesar de que el calentamiento de las partículas
dentro de las microcápsulas no necesita un calentamiento del tejido
local, las composiciones y los procedimientos descritos en la
presente memoria pueden utilizarse conjuntamente con terapias de
hipertermia local donde se desee. En algunas formas de realización,
las microcápsulas pueden ser expuestas a un campo electromagnético
de hasta 500 kHz, y en algunas formas de realización, de
aproximadamente 100 kHz.
En la práctica de la invención, virtualmente
puede encapsularse cualquier fármaco, incluyendo tanto los fármacos
hidrofílicos como los lipofílicos. Algunas formas de realización
incluyen la encapsulación de un fármaco anticáncer, como
cis-platino, doxorubicina, daunorubicina,
paclitaxel, aziridinilo benzoquinona, muramiltripeptido,
5-fluoruracilo, y otros tipos de fármacos que
incluirían, pero sin limitarse a ellos, anestésicos, antibióticos
sistémicos, antiparasíticos, quinolonas sistémicas, antiinfectivos,
antiinflamatorios, aminoglicósidos, cefalosporinas, penicilinas,
antídotos, anticolinesterasas, antídotos para intoxicación por
metal, antineoplásticos, agentes citotóxicos, hormonas, esteroides,
inmunomoduladores, citocinas, interleucinas, antivirales sistémicos,
antifúngicos sistémicos, agentes biológicos,
alfa-antitripsina, reguladores del metabolismo óseo,
agentes hipercalcémicos, agentes cardiovasculares,
betabloqueadores, vasodilatadores cerebrales, mejoradores del
metabolismo cerebral, inhibidores de la colinesterasa, factores
estimuladores de colonias, factores estimuladores de colonias de
granulocitos, factores estimuladores de colonias de
macrófago-granulocitos, vasopresores, agentes
diabéticos locales, mejoradores de diagnósticos como el "CT
Scan" y agentes angiocardiográficos, agentes de deficiencia de
la adenosina deaminasa, inhibidores de gonadotropinas, inhibidores
de esteroides corticoadrenales, estimulantes de la hormona
liberadora de gonadotropina, vasopresinas, urofolitropinas,
relajantes musculares como por ejemplo agentes bloqueadores
neuromusculares, análogos de prostaglandina, prostaglandinas,
inhibidores de la prostaglandina, agentes de terapia respiratoria,
anticolinérgicos, estimuladores beta andrenérgicos, agentes
simpatomiméticos, y agentes trombolíticos. En algunas formas de
realización, los fármacos pueden ser enzimas, o proenzimas que
pueden encapsularse y activarse mediante mezclado, tal y como se
describe en una solicitud relacionada de los mismos inventores, con
título "In Situ Activation of Microcapsules"
("Activación In Situ de Microcápsulas") incorporada en
la presente memoria por referencia. Además de estos procedimientos
de mezclado de capas inmiscibles descritos en otros sitios, en las
microcápsulas que contienen partículas magnéticas, se puede
facilitar el mezclado interno exponiendo las microcápsulas a un
campo magnético oscilante.
En algunas formas de realización de la
invención, las microcápsulas también pueden contener unos medios de
radiocontraste, o un medio que se vuelve radiopaco a través de un
cambio de estado de oxidación al ser expuesto a energía. Los medios
de radiocontraste a utilizar pueden incluir, pero sin limitarse a
ellos, un aceite halogenado, como por ejemplo aceite de semillas de
amapola, aceite de semillas de algodón, aceite de semillas de soja,
aceite de cártamo, aceite de maíz, aceite de oliva, aceite de
semillas de girasol, aceite de semillas de sésamo, o aceite de
canola (colza).
Las microcápsulas de la invención pueden
separarse por filtración u otros medios conocidos en la técnica para
obtener una población de microcápsulas de un intervalo de tamaños
particulares que sea preferente para uno uso particular. Por lo
general, las microcápsulas de entre 1 micrón y 20 micrones de
diámetro son óptimas para la administración intravenosa, mientras
que las microcápsulas de entre 50 micrones y 300 micrones de
diámetro se utilizan para la administración intraarterial, y las 300
micrones de diámetro o superior para la administración
intraperitoneal. En cada intervalo de tamaños, se necesitan
microesferas altamente uniformes para unas densidades máximas de
compactado y para una administración máxima de carga útil de
fármacos a los órganos o tumores diana. Por lo tanto, pueden
obtenerse microcápsulas de entre aproximadamente 1 micrón y
aproximadamente 500 micrones de diámetro, o de entre aproximadamente
300 micrones y aproximadamente 500 micrones de diámetro, de entre
aproximadamente 30 micrones y aproximadamente 50 micrones de
diámetro, o incluso de entre aproximadamente 1 micrón y
aproximadamente 20 micrones de diámetro. Como es conocido en la
técnica de la quimioembolización, las partículas de un determinado
tamaño formarán un parte de un embolización en diferentes zonas
como por ejemplo los sistemas arteriales, capilares pulmonares,
venosos, o incluso peritoneales de un cuerpo. Las microcápsulas
puedes diseñarse, para a continuación ser utilizadas en una
aplicación de quimioembolización, o pueden diseñarse para pasar
libremente a través de los capilares o la circulación de un sujeto
con el fin de alcanzar un sitio diana. En la práctica de la
invención, pueden escogerse microcápsulas de un tamaño concreto de
manera que las microcápsulas ocluyan un vaso venoso o un vaso
arterial, por ejemplo en el sitio de la enfermedad. Dicho sitio de
la enfermedad puede ser una trombosis, una herida, un sitio de
infección, un depósito lipídico o incluso la vasculatura de un
tumor. Debido a que las microcápsulas contienen partículas
magnéticas, también pueden localizarse mediante la aplicación de un
campo magnético como es conocido en la técnica, excepto en que debe
tenerse cuidado en no calentar las partículas prematuramente.
Los precursores de fármacos de la presente
invención son en algunos casos una proenzima o un zimógeno. Una
proenzima es un precursor inactivo de enzima que puede activarse
mediante clivaje de uno o varios enlaces peptídicos específicos. En
algunas formas de realización, la proenzima puede ser una enzima
protrombolítica, o una prouroquinasa, o un activador tisular del
plasminógeno.
Algunas formas de realización de la invención
incluirán el uso de pirimidina fluorinada o análogos de purina como
por ejemplo el profármaco Floxuridina (Fluorodesoxiuridina) que se
convierte en el inhibidor
nucleótido-5'-monofosfato
(F-UMP) mediante la timidina quinasa. Otras formas
de utilización pueden utilizar la oxidación, reducción o hidrólisis
de un profármaco que resulte en la activación, cambio de actividad o
conformación. Otro ejemplo puede ser el uso del profármaco
6-mercaptopurina, que se activa a ribonucleótido
6-mercaptopurina, la oxidación de trimetadona al
agente activo, dimetadona, la oxidación de fenacetina a
metemoglobina, o la reducción de hidrato de cloral a
tricloroetanol. Además, en las microcápsulas pueden producirse
agentes activos por contacto con enzimas solubles en lípidos como
por ejemplo las que se aíslan a partir de los microsomas hepáticos,
o pueden utilizar derivados de la doxorrubicina activados por
lisozima.
Se describen en la presente memoria
composiciones que comprenden una microcápsula que comprende dos o
más fases líquidas inmiscibles contenidas en un recubrimiento
polimérico, un precursor de fármaco y posiblemente un activador de
fármaco, en el que el precursor de fármaco y el activador de
fármaco, cuando se encuentran presentes, están contenidos en fases
líquidas inmiscibles separadas, una partícula magnética con un punto
de de Curie superior a la temperatura de fusión del recubrimiento
polimérico y además en el que la microcápsula es realizada mediante
el procedimiento que comprende: la formulación de una primera fase
que comprende un primer solvente, un primer polímero soluble en la
primera fase e insoluble en una segunda fase, un cosolvente,
aceite, y agua, la formulación de la segunda fase inmiscible con la
primera fase, comprendiendo la segunda fase un segundo solvente, un
segundo polímero soluble en la segunda fase e insoluble en la
primera fase, un agente tensioactivo, y una sal; presentando el
agente tensioactivo un valor de equilibrio hidrofílico/lipofílico
superior al del primer polímero; presentando el segundo polímero un
valor de equilibrio hidrofílico/lipofílico inferior al del agente
tensioactivo; creando una interfaz entre la primera fase y la
segunda fase de tal manera que limita la cizalladura de fluido a un
valor aproximado de entre 1 dina/cm^{2} y 100 dinas/cm^{2}, si
se lleva a cabo bajo unas condiciones superiores o iguales a
aproximadamente 1 gravedad, de entre aproximadamente 2
dinas/cm^{2} y 30 dinas/cm^{2}, si se lleva a cabo bajo unas
condiciones inferiores o iguales a aproximadamente 1 x 10^{-2}
gravedades, y se mantienen las características de superficie
adsorbente en la interfaz. Se entiende que las partículas
magnéticas se encuentran contenidas en la capa líquida que se
encuentra junto a la membrana, que puede ser una capa acuosa o de
hidrocarburo dependiendo de la aplicación particular.
Se proporcionan procesos y composiciones que
superan algunas de las limitaciones de la metodología anterior para
la formación de microcápsulas. En particular, se describen
procedimientos y composiciones que forman microcápsulas
multilamelares con unas capas líquidas hidrofílicas e hidrofóbicas
alternas, rodeadas de unas membranas exteriores hidrofóbicas
semipermeables y flexibles que pueden adaptarse específicamente para
controlar la tasa de difusión. En particular, los procedimientos de
realización de microcápsulas proporcionados por la presente
invención no se basan en procesos por lotes o discontinuos como por
ejemplo la separación de fase inducida por la densidad y la
estratificación en capas horizontales, el mezclado mecánico o la
evaporación del solvente. La encapsulación de fármacos citotóxicos
o lábiles en dichas microcápsulas permite la administración
dirigida y la cinética de liberación sostenida que en la actualidad
no se encuentran disponibles con la inyección intravenosa.
Se describen procedimientos de realización de
microcápsulas multicapa. El término microcápsula tal y como se
utiliza en la presente memoria es un término general que puede
incluir cualquier vesícula microscópica esférica que incluya
microesferas, micelas, micelas invertidas, vesículas bicapa y
liposomas. El término microcápsula tal y como se utiliza en la
presente memoria es también un término más específico que hace
referencia a una microcápsula que comprende por lo menos dos capas,
una de las cuales es la más interna y básicamente se encuentra
contenida completamente dentro de la otra. En clara ruptura respecto
a los procedimientos tradicionales de realización de microcápsulas,
los procedimientos de la invención se basan en una baja cizalladura
de fluido, coacervación interfacial y proceso de difusión
líquido-líquido, particularmente según un desarrollo
para formar microcápsulas que pueden contener tanto fármacos
solubles en agua como en hidrocarburos.
Los términos multicapa y multilamelar se
utilizan de manera intercambiable durante toda la especificación y
en las reivindicaciones y ambos hacer referencia al hecho de que las
microcápsulas comprenden por lo menos dos capas inmiscibles
anidadas entre sí. En algunos casos, la capa central será de
naturaleza hidrofóbica y estará completamente rodeada por, por lo
menos, una capa hidrofílica circundante. En otros casos, la capa
central será de naturaleza hidrofílica y estará completamente
rodeada por, por lo menos, una capa hidrofóbica circundante.
El procedimiento básico de preparación se basa
en interacciones líquido-líquido. En el
procedimiento básico, la primera etapa implica la formulación de
una primera fase o capa mientras que la segunda etapa implica la
formulación de una segunda fase o capa. Son formuladas dos fases o
capas que son inmiscibles entre sí. Para los fines de la invención,
el término "inmiscible" hace referencia a que debido a las
diferencias en densidad, viscosidad o tensión superficial, las dos
fases o capas contiguas forman una interfaz similar a un menisco, y
además que la solubilidad de cualquier componente en un fase no es
superior a 10 gm/100 ml en la segunda fase o capa contigua.
La formulación de la primera fase o capa
comprende la combinación de un primer solvente, un primer polímero
soluble en la primera fase, un cosolvente, un aceite y agua. El
primer cosolvente por lo general comprenderá aproximadamente de
entre un 75% y un 90% en volumen de la primera fase. Se selecciona
un primer polímero que sea soluble en la primera fase y por lo
general comprenderá aproximadamente de entre un 1% y un 5% en
volumen de la primera fase. También se añade una pequeña cantidad
de cosolvente a la primera fase, cuyo cosolvente puede también
funcionar como un cosurfactante. También se añade a la formulación
aceite en una cantidad aproximada de entre un 1% y un 10% en
volumen. La primera fase también contendrá aproximadamente de entre
un 1% y un 5% en volumen de agua.
A continuación el procedimiento sigue con la
formulación de una segunda fase inmiscible con la primera fase. La
segunda fase comprende un segundo solvente, un segundo polímero
soluble en la segunda fase, un agente tensioactivo, y una sal. Los
porcentajes de volumen relativo de estos componentes son
aproximadamente de entre el 70% y el 98% del segundo solvente, de
entre el 1% y el 10% del segundo polímero, de entre el 1% y el 4%
del agente tensioactivo, y de entre el 0% y el 3% de la sal.
Con el fin de asegurar que se producirán las
interacciones líquido-líquido necesarias para formar
la microcápsula, algunos de los componentes de cada fase se
seleccionan uno con respecto al otro. De esta manera, el agente
tensioactivo en la segunda fase se selecciona de tal manera que
presente un valor de equilibrio hidrofílico/liofílico superior al
del primer componente polimérico de la primera fase. Generalmente,
se ha comprobado que los agentes tensioactivos más útiles son
aquellos que son no iónicos y que presentan un valor de equilibrio
hidrofílico/lipofílico de 10,0 o superior. A continuación, se
selecciona un segundo componente polimérico con un valor de
equilibrio hidrofílico/lipofílico de 10,0 o superior. A
continuación, se selecciona un segundo componente polimérico de la
segunda fase con una valor de equilibrio hidrofílico/lipofílico
inferior al del agente tensioactivo de la misma fase. A pesar de no
tratarse de una lista exhaustiva, a continuación se proporcionan
algunos valores de equilibrio hidrofílico/lipofílico de materiales
que pueden utilizarse en las formulaciones de la invención.
- \underbar{Compuesto}
- \underbar{HLB}
- Glicerol trioleato
- 0,8
- Colesterol
- 1,0
- Triglicérido de aceite de coco
- 1,4
- Trioleato de sorbitán
- 1,8
- Triestearato de sorbitán
- 2,1
- Monooleato de glicerol
- 2,7
- Monoglicéridos y diglicéridos de ácidos grasos de eliminación de grasa
- 2,8
- Monoestearato de glicerol (gms)
- 2,8-5,0 (preferente 3,8)
- Etilendiamina propoxilada más óxido de etileno
- 3-28
- Mono/diglicérido
- 3,2
- Glicerol monococo
- 3,4
- Mono/diglicérido
- 3,5
- Propilenglicol monoéster de ácido graso
- 3,5
- Monoetoxil lauril éter
- 3,6
- Ácido estearil-lactil
- 3,8
- Aceite de semillas de algodón hidrogenado
- 3,8
- Lauril sulfato de sodio
- 4,0
- Monoglicéridos y diglicéridos con ácido cítrico o éster lactílico o ácido graso
- 4,2-4,6
- Amina grasa etoxilada (2 moles ETO)
- 4,5
- Monoestearato de dietilenglicol
- 4,7
- Monopalmitato de sorbitán
- 4,7
- Oleato y monoestearato de dietilenglicol
- 4,7
- Cetil éter etoxilado (2)
- 5,3
- Monoricinoleato de glicerol
- 6,4
- Monolaurato de glicerol
- 6,8
- Monoestearato de triglicerol
- 7,0
- Polietilenglicol (400 dioleato)
- 7,2
- Esterol de lanolina
- 8,0
- Nonilfenol etoxilado (CO-420 & CO 850)
- 8,0-16,0
- Diestearato de polietilenglicol (400)
- 8,2
- Monolaurato de sorbitán
- 8,6
- Sorbitán etoxilado estéres de ácido graso y alquil/aril alcohol
- 9,0
- Lanolina anhidra
- 10,0
- Monoestearato de polietilenglicol
- 11,0
- Polietilenglicol 400
- 11,2
- Cetil éter etoxilado (10)
- 12,9
- Monoestearato de glicerol etoxilado (gms)
- 13,1
- Monoestearato de sorbitán
- 14,9
- Monooleato de sorbitán con 20 moles de óxido de etileno
- 15,0
- Oleil éter etoxilado (20)
- 15,3
- Cetil estearil éter etoxilado (20)
- 15,8
- Aceite de castor etoxilado
- 18,0
- Éter de nonilfenol polietilenglicol
- 18,1
- Monolaurato de polietilenglicol 600
- 19,6
- Laurilsulfato de sodio
- 40
- Monoestearato de propilenglicol
- 40
- Lanolina hidroxilada oleil sulfato de sodio
- 42
- Mezclas de GMS y monooleato de sorbitán con 20 moles de óxido de etileno
- 52
\vskip1.000000\baselineskip
El procedimiento básico a continuación implica
la creación de una interfaz entre la primera fase y la segunda
fase. La creación de la interfaz se consigue de tal manera que la
cizalladura mínima y el mezclado se produce entre las fases. Las
dos fases inmiscibles se juntan en una forma mecánica tal que las
propiedades de la cizalladura de fluido son controladas hasta
niveles bajos, por lo general hasta valores por debajo de 12
dinas/cm^{2}, y de tal manera que las propiedades de superficie
adsorbente en las interfaces inmiscibles no se vean alteradas de
manera significativa. A pesar de que los mecanismos exactos no se
entienden del todo, los inventores creen que el mantenimiento de
algunas propiedades de superficie, como por ejemplo la tensión
superficial, la distribución de carga de Helmholtz (doble capa
eléctrica), y la partición de las moléculas surfactantes entre las
fases inmiscibles deben permanecer básicamente intactas de manera
que pueda producirse la separación lateral de fases de tal manera
que permita la formación simultánea de múltiples interfaces líquidas
(aceite/agua o agua/aceite) y que resulte en microcápsulas que
presenten recubrimientos esféricos alternos de capas líquidas
hidrofílicas e hidrofóbicas. Se cree que este es el mecanismo para
la formación de vesículas multilamelares que se forman en una única
etapa. A pesar de que la mejor manera de demostrar esto es bajo
condiciones de microgravedad, en las que la convección flotante se
encuentra ausente y predominan la convección inducida por difusión y
las diferencias de tensión superficial, esto también puede
completarse en condiciones de gravedad unitaria equilibrando las
diferencias de densidad entre las dos fases líquidas o mediante
cualquier otro medio mecánico que evite que un exceso de
cizalladura de fluido altere de manera significativa las propiedades
normales de superficie adsorbente que se determinan por la
composición química de las formulas y los fenómenos interfaciales
entre los solventes, polímeros y surfactantes. En una forma de
realización preferente, la creación de la interfaz se producirá
deslizando individualmente compartimentos separados que contienen
las dos fases en registro la una con la otra de tal manera que
limita la cizalladura de forma significativa y proporciona un
mezclado suave.
En la etapa final del procedimiento básico, se
establecen unas condiciones para limitar de forma significativa
todos los mezclados entre las fases líquidas conectadas. En el medio
más preferente, se permitirá la interacción de las dos fases en su
interfaz sin agitación, cizalladura o fuerza similar. Resulta
preferente también limitar incluso aquellas fuerzas quiescentes
como la sedimentación controlada por gravedad, la separación de
fases en capas estratificadas, el deslizamiento, la deriva y
similares. De esta manera, en algunas formas de realización
preferentes, únicamente se utilizan principalmente la convección
inducida por difusión y la coacervación interfacial para formar
microcápsulas espontáneamente, dado que las formulaciones químicas
de las diferentes fases ayudan a reducir la energía libre
superficial a través de la interfaz. Es también en este momento
cuando se inicia la formación del recubrimiento exterior
polimérico.
En una forma de realización, los dos líquidos
formulados de esta manera son separados en distintos compartimentos
o espacios, cuyos espacios están conectados cada uno a una cámara
central de difusión en la que cada compartimento puede suministrar
su carga líquida residente. Inicialmente los compartimentos tienen
cerrado el acceso a la cámara central de difusión de manera que el
primer líquido y el segundo líquido se mantienen separados entre sí
y no se permite la interacción entre los mismos. Mientras que es
posible utilizar un número cualquiera de dispositivos para alcanzar
esta separación, un dispositivo preferente es un dispositivo como el
aparato "Materials Dispersion Apparatus" (Aparato de
Dispersión de Materiales) (MEPS) descrito con mayor detalle en otro
sitio. También se describen dispositivos preferentes en una
solicitud de patente estadounidense relacionada de los mismos
inventores y John M. Cassanto presentada concurrentemente con la
presente solicitud y con título "Microencapsulation and
Electrostatic Processing Device" (Dispositivo de Procesamiento
Electrostático y Microencapsulación''). La separación de los dos
líquidos se mantiene hasta que ambos líquidos y el dispositivo que
las contiene puedan colocarse en un medio en el que pueda
minimizarse el mezclado por convección, como por ejemplo en un medio
microgravitatorio.
Los procedimientos de la invención son
ligeramente diferentes dependiendo de si se selecciona un primer
solvente orgánico o acuoso. Cuando se utiliza un solvente orgánico
para formular la primera fase, el solvente orgánico se selecciona
de entre un grupo que consiste en etil alcohol, metil alcohol o
isopropil alcohol. Cuando se utiliza un primer solvente orgánico
para formular la primera fase, se selecciona un primer polímero que
sea soluble en el solvente orgánico seleccionado. Dicho primer
polímero puede seleccionarse de entre el grupo que consiste en
monoestearato de glicerol, monooleato de glicerol, monolaurato de
glicerol, dioleato de glicerol, diestearato de glicerol,
colesterol, estigmasterol, fitoesterol, campesterol, y lecitinas
como por ejemplo fosfatidilcolina (por ejemplo,
Centrolex-F®).
Centrolex-F®).
Cuando el primer solvente es acuoso, se utiliza
un procedimiento ligeramente diferente. En esos casos, el primer
polímero es indispensablemente soluble en la primera fase acuosa y
puede seleccionarse de entre el grupo de polímeros que consiste en
polivinil pirrolidona, alcoholesde polivinilo, gelatina, goma
adragante, carragenano, goma de Karaya, goma de Guar, goma arábiga,
alginatos, carboximetilcelulosa, hidroxipropilcelulosa,
carboxipropil celulosa, y lecitinas.
Independientemente de la formulación con un
primer polímero y solvente acuoso u orgánico, los procedimientos de
la invención utilizan ambos un cosolvente que puede seleccionarse de
entre el grupo que consiste en alcoholes
C_{3}-C_{8}, tetrahidrofurano, dioxano,
acetonitrilo, dimetilformamida, dimetilacetamida, y
dimetilsulfóxido. De manera similar, independientemente de la
naturaleza orgánica/acuosa del primer solvente y polímero utilizado,
los procedimientos de la invención añaden a la formulación de la
primera fase un aceite. Estos aceites pueden seleccionarse de entre
el grupo que consiste en aceites no saturados como aceite de
semillas de amapola, aceite de oliva, aceite de cacahuete, aceite
de sésamo, aceite de semillas de algodón, aceite de semillas de
soja, aceite de cártamo, aceite de maíz, aceite de semillas de
girasol y aceite de canola (colza) o aceites saturados como por
ejemplo aceite mineral, aceite parafínico de cadena larga, y
petrolatum líquido. En una forma de realización preferente, el
aceite de semillas de amapola será halogenado, o en algunas formas
de realización, yodado para formar aceite de semillas de amapola
yodado (IPO) e incorporado en una microcápsula como un marcador o
rastreador para rastrear la presencia de la microcápsula una vez que
ha sido inyectada por medio de procedimientos de radiocontraste
bien conocidos por los expertos en la materia de la radiografía.
Tanto si el procedimiento implica un primer
solvente orgánico como acuoso, el segundo polímero, el agente
tensioactivo y la sal pueden cada uno seleccionarse de entre un
grupo particular de tales componentes. El segundo polímero puede
seleccionarse de entre el grupo que consiste en polietilenglicol de
entre 400 daltones y 20000 daltones, dextrano de entre 1000
daltones y 100.000 daltones, polivinil pirrolidona, alcoholesde
polivinilo, gelatina, goma adragante, carragenano, goma de Karaya,
goma de Guar, goma arábiga, alginatos, carboximetilcelulosa,
hidroxipropilcelulosa, carboxipropil celulosa, y lecitinas. El
agente tensioactivo se selecciona de entre el grupo de agentes
tensioactivos compuesto por monooleato de sorbitán tratado con óxido
de etileno, dextrano, polietilenglicol, ácidos grasos
C_{12}-C_{20}, sales anfóteras de
2-amino-2-metil-1-propil
aminometil propanol, sales cuaternarias de amonio. La sal se
selecciona de entre el grupo que consiste en NaCl, KCl, CaCl_{2},
MgCl_{2}, sales cuaternarias de amonio como por ejemplo bromuro de
cetiltrimetilamonio y sal disódica de
4-metoxi-4(3-fosfatidilcolina)espiro(1,2-dioxetano-3-g,1-
adamantano).
adamantano).
Las microcápsulas multicapa, tanto con
compartimentos para fármacos hidrofóbicos como para fármacos
hidrofílicos, según son producidos por los procedimientos de la
invención, permiten la difusión de fármacos complementarios a
partir de la misma microcápsula, por ejemplo, antibióticos e
inmunoestimulantes para tratar infecciones resistentes o múltiples
fármacos fibrinolíticos para disolver embolias. La coencapsulación
de medio de radiocontraste tal y como se dispone en la presente
memoria permite a los oncólogos monitorizar la administración de
microcápsulas antitumorales a tumores diana utilizando la
tomografía computerizada y la radiografía que rastrean la
distribución de las microcápsulas tras la liberación desde el
catéter intraarterial. Dichas microcápsulas presentarán importantes
aplicaciones en quimioterapia de determinados tumores de hígado,
riñón, cerebro y otros.
Los diámetros de microcápsulas posibles de
obtener utilizando los procedimientos de la invención son también
de particular utilidad en las aplicaciones médicas. De esta manera,
mientras que los procedimientos de la técnica anterior han sido
capaces de producir de forma rutinaria microcápsulas de unos tamaños
medios superiores a tamaños de entre 1 micrón y 10 micrones, los
procedimientos de la presente invención proporcionan microcápsulas
de tamaños similares de diámetros de entre 1 micrón y 20 micrones
para administración intravenosa. También se proporcionan
microcápsulas de tamaños de entre 25 micrones y 300 micrones
particularmente útiles en la quimioembolización interarterial de
tumores, y microcápsulas en el intervalo de entre 300 micrones y
diámetros mayores útiles en fármacos de administración
interperitoneal o intramuscular.
La composición farmacéutica encapsulada en la
microcápsula puede ser una soluble en soluciones acuosas o puede
ser una soluble en soluciones orgánicas. Esto, por supuesto,
gobierna la selección de la fase o capa en la que se formula la
composición farmacéutica. Las microcápsulas de la invención y los
procedimientos para la producción de las mismas son de particular
utilidad al formular fármacos solubles en soluciones orgánicas dado
que de otra manera estos tipos de fármacos son muy difíciles de
administrar. Las composiciones farmacéuticas pueden ser las
seleccionadas de entre las composiciones farmacéuticas ampliamente
diversificadas como las que consisten en citotoxinas, proteasas,
citocinas, antinauseantes, esteroides, agentes antifúngicos, enzimas
fibrinolíticas, y antibióticos. Los inventores han encapsulado con
éxito representantes de estas clases de compuestos farmacéuticos
utilizando los procedimientos de la invención. Es también posible
incorporar una composición farmacéutica que inicialmente no se
disuelve ni en una u otra fase o capa, sino que dicho fármaco se
encuentra en suspensión. Tal y como de ha indicado anteriormente,
dependiendo de su solubilidad y del hecho de si el químico
farmacéutico desea localizar el fármaco, es posible formular un
fármaco en cualquiera de las fases o capas, disolviendo o
suspendiendo el fármaco conforme haya necesidad. Tras la fusión del
recubrimiento polimérico por calentamiento de las partículas
magnéticas, emanará de la microcápsula cualquiera de dichas capas y
su contenido.
Los procedimientos de preparación descritos en
la presente memoria demostraron de manera sorprendente la capacidad
de compactar concentraciones muy elevadas de fármacos en las capas
formadas. Es posible, utilizando los procedimientos de la
invención, formular un compuesto farmacéutico a una concentración
suficiente para permitir una formación de cristal naciente en el
interior de la microcápsula una vez que se ha formado. Estas
microcápsulas, debido por un lado a que son construidas con
recubrimientos poliméricos exteriores, son también particularmente
flexibles aunque resistentes (capaces de resistir fuerzas de
cizalladura superiores a 10 dinas/cm^{2}). Tal y como se hará
referencia específicamente a continuación, los experimentos de
microgravedad, realizados por los cohetes sonda
(1989-92) y por las misiones del Transbordador
Espacial STS-52 (1992) y STS-56
(1993) utilizando un aparato "Materials Dispersion Apparatus"
(Aparato de Dispersión de Materiales) automatizado, produjeron
microcápsulas multilamelares que contenían
cis-platino (fármaco antitumoral) y aceite de
semillas de amapola yodado (un medio de contraste no radioactivo),
rodeadas de una película polimérica. Las microcápsulas formadas con
amoxicilina (antibiótico) o uroquinasa (una enzima de disolución de
coágulos), coencapsuladas con IPO, se encontraban todavía intactas
dos años después de la vuelta a medios de gravedad de 1 x g. En
muchos casos, las microcápsulas fueron formadas con
cis-platino o amoxicilina tan concentrada que se
formaron en el interior cristales de los
fármacos.
fármacos.
En algunas formas de realización de los
procedimientos de la invención, las composiciones farmacéuticas
serán incorporadas en la microcápsula. En los casos en los que
dichas composiciones farmacéuticas son incorporadas de la forma
indicada, inicialmente pueden introducirse como un soluto o como
partículas suspendidas en uno u otro de los líquidos utilizados
para formular las capas de las microcápsulas. En algunas formas de
realización, la composición farmacéutica es introducida en una de
las fases o capas utilizadas para producir la microcápsula a una
concentración suficiente para permitir la formación de cristal
naciente en el interior de dicha microcápsula. La formación de
cristal puede producirse en el instante o próximo al instante de la
formación de la microcápsula que contiene el material farmacéutico
disuelto. Se selecciona un sistema de solvente acuoso utilizado para
disolver una composición farmacéutica soluble en agua que permita
la migración de las moléculas de agua fuera de la capa que contiene
el fármaco a la mezcla alcohólica. Es probable que el proceso de
formación de cristal se estimule de esta manera tras la formación
de la microcápsula. De hecho, es posible mejorar el proceso de
cristalización tras la formación de la microcápsula mediante
transporte controlado de la fase o capa solvente en el que la
composición farmacéutica a cristalizar es un soluto. En algunas
formas de realización, el cristal formado de esta manera puede
hacerse con la mayor parte de la capacidad interna de la
microcápsula.
Sorprendentemente, los presentes procedimientos
de preparación han demostrado una capacidad única para encapsular
dichas soluciones de fármacos saturadas, y dado que las
características globales de partición entre las capas inmiscibles
facilita el transporte del solvente fuera de la capa acuosa, es
posible concentrar el fármaco en el punto en el que se produce la
formación de los cristales del fármaco en el interior de las
microcápsulas. Esta capacidad de las microcápsulas y los
procedimientos proporciona la máxima carga útil de fármaco por
microcápsula y la mejor cinética de liberación de fármacos para un
tratamiento prolongado a unas tasas máximas de difusión de
fármaco.
\newpage
Las microcápsulas que contienen un componente de
gran volumen del fármaco cristalino proporcionan el fármaco más
concentrado posible cuando es liberado en el sitio diana. Hasta que
los cristales se hayan disuelto completamente, la tasa de
liberación del fármaco es independiente del tiempo (cinética de
liberación de orden cero). Una vez que los cristales se han
disuelto, las tasas de liberación del fármaco vuelven a una cinética
de primer orden (exponencial con el tiempo). Los cristales
encapsulados de la invención se encuentran en el intervalo de entre
1 micrón y 100 micrones a lo largo de una cara. Dado que estos
cristales son precipitados in situ, son bastante diferentes
de los sistemas de liberación de fármaco cristalino comercialmente
disponibles (por ejemplo, Microcrystal®) los cuales utilizan
fosfolípidos para encapsular partículas muy pequeñas o cristales
muy pequeños de los fármacos con un diámetro medio de solamente un
valor de entre 0,3 micrones y 1 micrón [Parikl and Stem 1994].
Es posible tratar adicionalmente las
microcápsulas formadas de esta manera con etapas adicionales. En
algunos casos, los presentes procedimientos de preparación,
independientemente de si utilizan o no inicialmente un primer
solvente orgánico o acuoso, formulan una tercera fase que comprende
un aceite o parafina C_{20}-C_{38} y, hacen
contactar a la microcápsula formada con la tercera fase. En otros
casos, los procedimientos de la invención forman una microcápsula
de dos capas, a continuación formulan una tercera fase que comprende
una solución acuosa y, hacen contactar a la microcápsula formada
con la tercera fase. A continuación se resumen el procedimiento
básico y alternativas.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
Los procedimientos tradicionales de emulsión
forman un sistema de líquidos O/W/O (aceite/agua/aceite) o W/O/W
(agua/aceite/agua) que se diseña para retener la fase o las fases
internas en el interior del solvente externo a menos que re rompa
la emulsión, con lo cual se separan las fases líquidas. En los
procedimientos de la invención, el uso de surfactantes o
cosurfactantes permite la formación de una emulsión de grandes
esferoides (no pequeños microesferoides) de una fase dispersada en
la otra fase configurada en una esfera. La esfera está también
rodeada por otra capa líquida inmiscible (fase opuesta a la de la
esfera líquida más interna) y a continuación (frecuentemente) esta
esfera multicapa es contenida en otra capa líquida de fase opuesta y
finalmente toda la esfera multicapa completa es contenida es una
película exterior. Los resultados del presente proceso de
preparación no son para formar una emulsión tradicional de O/W/O o
de W/O/W (que es una fina dispersión de una fase en otra), sino
para formar unas microcápsulas de capas inmiscibles alternas
multilamelares contenidas en el interior de una fina película
exterior semipermeable. En las microcápsulas de la invención, las
fases inmiscibles son distintas y se encuentran separadas según las
características de tensión superficial de los líquidos de cada
interfaz, por lo que hay una verdadera emulsión mantenida por el
surfactante que podría romperse.
De esta manera, en algunas formas de realización
de las composiciones de la invención, se producirá la microcápsula
multicapa que comprende por lo menos tres capas o fases alternas. De
esta manera, si la primera capa es una capa acuosa o un núcleo
acuoso, la siguiente capa puede ser una capa orgánica. Esta capa
orgánica puede a continuación cubrirse mediante una segunda capa
acuosa que forma en su superficie exterior una película polimérica.
A la inversa, el líquido en el núcleo de la microcápsula puede ser
un líquido orgánico recubierto por una capa acuosa seguido de otra
capa orgánica que forma una película polimérica sobre la superficie
de la microcápsula. Indudablemente, puede preverse una extensión de
las formulaciones básicas en los casos en los que son posibles
cuatro o más capas o en los que se utilizan múltiples películas o
recubrimientos.
Utilizados conjuntamente con una microcápsula de
dos capas o con microcápsulas con más de dos capas, los
recubrimientos de la presente invención son de gran utilidad,
particularmente cuando los procedimientos son llevados a cabo en
condiciones de una gravedad normal de la Tierra. Los recubrimientos
pueden se de una naturaleza básicamente hidrofóbica o de una
naturaleza básicamente hidrofílica tal y como se describe a
continuación y son derivados a partir de la adición de determinados
polímeros en las formulaciones iniciales de los líquidos utilizados
para realizar las microcápsulas. En los casos en los que se utilicen
recubrimientos hidrofóbicos conjuntamente con los sistemas de
administración de fármacos, los recubrimientos se seleccionan para
su permeabilidad complementaria con el fármaco a administrar. Los
polímeros también se seleccionan por sus características de
flexibilidad tras la formación y el curado que es de particular
utilidad durante el transporte intravascular y permite mayores
densidades de compactado para formar embolias como por ejemplo en la
terapia de quimioembolización. De esta manera, por ejemplo, en los
casos en los que debe administrarse un fármaco soluble en agua, el
fármaco está contenido en una capa acuosa interior sobre la que se
coloca un recubrimiento permeable al fármaco disuelto. En formas de
realización alternativas, el fármaco puede ser más hidrofóbico y
estará contenido en una capa de hidrocarburo en el interior de la
microcápsula. En cualquiera de las formas de realización el fármaco
puede ser un profármaco, y puede haber un activador contenido en
una capa inmiscible con la capa que contiene el profármaco.
Preferentemente, el material de recubrimiento debería ser
impermeable a los solventes o los aceites. Los recubrimientos que
se ha observado que han sido depositados en las superficies de las
microcápsulas de la invención son de un grosor de aproximadamente
de entre 0,01 micrones y 2,0 micrones en el que el recubrimiento es
un recubrimiento hidrofóbico, y de un grosor de aproximadamente de
entre 0,1 micrones y 5,0 micrones en los casos en los que son
depositados recubrimientos hidrofílicos.
Las etapas adicionales y las terceras fases
formuladas también pueden utilizarse ventajosamente para
proporcionar a la microcápsula unas características específicas. De
esta manera, la tercera fase puede comprender adicionalmente una
composición farmacéutica que se añade a la superficie formada de la
microcápsula. La tercera fase también puede utilizarse para añadir
una composición farmacéutica como por ejemplo un adyuvante. El
adyuvante puede comprender adicionalmente una inmunoglobulina, otra
proteína, un hidrocoloide o un polisacárido. Esto es de particular
utilidad en el diseño de microcápsulas con unas características
superficiales inmunológicas, proteináceas, de carga superficial u
otras, únicas, que hace que las mismas se adhieran de manera
selectiva a determinados tejidos diana (células) o hace que las
microcápsulas resulten atractivas a determinadas células fagocíticas
(cuando las células son la diana para el fármaco terapéutico). En
los casos en los que el adyuvante es un hidrocoloide, puede
seleccionarse a partir de un grupo de dichos hidrocoloides que
consiste en colágeno, gelatina isoeléctrica, agar, goma arábiga,
goma adragante, alginatos, derivados de celulosa, goma de Guar,
ciclodextrinas, y carragenanos. La tercera fase puede también
comprender adicionalmente un agente tensioactivo.
La tercera fase acuosa puede también contener un
activador químico que actúa sobre la forma inactiva del agente
farmacéutico (fármaco) a medida que se sale de las capas interiores
de la microcápsula. La función del activador es la de convertir
químicamente el fármaco inactivo a su forma activa justo antes de
ser liberado desde la microcápsula. Esto se ilustra cuando la
composición farmacéutica es una proenzima y en los casos en los que
el activador es otra enzima proteolítica que cliva la proenzima en
el sitio activo para hacer que la molécula se vuelva biológicamente
activa. Esta forma de realización puede utilizarse para administrar
fármacos muy lábiles que presentan unas vidas útiles muy limitadas
o unas medias vidas biológicas cortas con lo cual el activador
(tercera fase) puede añadirse justo antes de la administración
intravascular de tal manera que el fármaco inactivo se vuelve
activo una vez que la microcápsula ha alcanzado el sitio diana. Tras
la activación, las microcápsulas son expuestas a un campo
electromagnético efectivo para calentar las partículas magnéticas,
fundiendo así el recubrimiento polimérico y liberando el fármaco
activado. Esto puede maximizar la efectividad terapéutica de los
fármacos de vida útil corta en el sitio diana de la
acción.
acción.
Una o más de las fases de la microcápsula de la
invención puede comprender adicionalmente moléculas fluorescentes
seleccionadas de entre el grupo de moléculas fluorescentes que
consiste en fluoresceinas, cianinas, moléculas naturalmente
fluorescentes, y rodaminas, y otras excitadas entre 260 nanómetros y
700 nanómetros. Esto es particularmente útil en los casos en los
que no son deseables medios de radiocontraste o en los casos en los
que es útil un procedimiento adicional de rastreo o en los casos en
los que tiene valor monitorizar la presencia o la ausencia de una
capa en la microcápsula, pueden incorporarse moléculas fluorescentes
en le microcápsula de la invención. De esta manera, por ejemplo,
tal y como se describe con mayor detalle a continuación, puede ser
útil incorporar un molécula hidrofílica fluorescente en el líquido
acuoso para determinar la posición relativa y el número de capas
acuosas en un determinado lote de producción de microcápsulas.
Es crítico para el éxito de los presentes
procedimientos de preparación la limitación considerable de mezclado
entre dichas fases con respecto a la convección inducida por
difusión y la baja cizalladura de fluido (preferentemente inferior
a 50 dinas/cm^{2}). Una manera de limitar tanto otros tipos de
mezclado es llevar cabo los procedimientos bajo condiciones de
microgravedad. La microgravedad se define como una fuerza de
gravedad inferior a 1 x 10^{-3} x g. Dichos medios
gravitacionales pueden alcanzarse de diversas maneras, de las cuales
por lo menos algunas son detalladas en la presente memoria. Por
ejemplo, puede alcanzarse la microgravedad en determinadas
trayectoria de los cohetes sonda. Pueden obtenerse periodos incluso
más largos de microgravedad con orbitadores temporales como por
ejemplo el Transbordador Espacial. Pueden obtenerse periodos de
microgravedad relativamente indefinidos en vehículos espaciales
orbitales permanentes o semipermanentes como por ejemplo la estación
espacial orbital y otros satélites orbitales geosíncronos. Se ha
descubierto que la exposición del primer líquido y del segundo
líquido a la microgravedad es efectiva en la formación de
microcápsulas de la invención, en el que la exposición es de por lo
menos 6,5 minutos de duración, y estudios posteriores han mostrado
que son suficientes unos pocos segundos. Con toda certeza, tal y
como se describe con mayor detalle a continuación, se ha probado que
los periodos de exposición más largos también tienen éxito. Los
inventores han mostrado que los periodos de exposición de unos
pocos segundos también producirán un número adecuado de
microcápsulas.
Sin embargo, en la formación de microcápsulas,
los procedimientos de preparación no necesariamente utilizarán la
microgravedad para limitar el mezclado entre las fases. Por
supuesto, dichas limitaciones de mezclado pueden ser estimuladas
llevando a cabo los procedimientos por debajo de la temperatura
ambiente. La mejor manera de estimular la limitación de las
interacciones entre las fases es equilibrando de manera considerable
la gravedad específica entre dichas fases tal y como se describe a
continuación. Las formulaciones y los procedimientos necesarios
para conseguir la formación de microcápsulas en condiciones de
gravedad normal de la Tierra son descritos con mayor detalle en la
presente memoria. En cualquiera de los casos, o en combinaciones de
estas técnicas, el mezclado entre las dos fases principalmente
puede ser el resultado de la convección inducida por difusión.
Los inventores han descubierto que existe una
mayor distribución dimensional que resulta de la microencapsulación
en condiciones de gravedad normal de la Tierra. Por lo menos una
razón parcial para esta distribución dimensional más amplia
aparentemente es la incapacidad bajo condiciones de gravedad normal
de la Tierra para evitar determinados fenómenos de sedimentación
solos y efectos de sedimentación combinados con el contacto
relacionado con el peso de microcápsulas sedimentadas. Estos hechos
necesitan una manipulación adicional bajo medios normales de la
Tierra que no son necesarios en los medios de gravedad cero, es
decir, el cribado de las microcápsulas resultantes con el fin de
generar fracciones más uniformes. Por lo tanto, en condiciones de
gravedad normal de la Tierra, la utilidad del recubrimiento
exterior de las microcápsulas de la presente invención se vuelve
incluso más importante. También pueden utilizarse la mejora de la
resistencia de las microcápsulas normales de la Tierra mediante
curado y otras etapas tal y comos se indica en la presente
memoria.
Un procedimiento preferente de realización de
microcápsulas multicapa comprende: la formulación de una primera
fase que comprende un solvente orgánico seleccionado de entre el
grupo de solventes orgánicos que consiste en etil alcohol, metil
alcohol e isopropil alcohol, un primer polímero soluble en la
primera fase seleccionado de entre el grupo de polímeros que
consiste en monoestearato de glicerol, monooleato de glicerol,
monolaurato de glicerol, dioleato de glicerol, diestearato de
glicerol, colesterol, estigmasterol, fitoesterol, campesterol,
lecitinas como por ejemplo fosfatidilcolina (por ejemplo,
Centrolex-F®), un cosolvente seleccionado de entre
el grupo de cosolventes que consiste en alcoholes
C_{3}-C_{8}, tetrahidrofurano, dioxano,
acetonitrilo, dimetilformamida, dimetilacetamida, y
dimetilsulfóxido, un aceite seleccionado de entre el grupo de
aceites que consiste en aceite de semillas de amapola, aceite de
oliva, aceite de cacahuete, aceite de sésamo, aceite de semillas de
algodón, aceite de semillas de soja, aceite de cártamo, aceite de
maíz, aceite de semillas de girasol y aceite de canola (aceites no
saturados), o aceite mineral, aceite parafínico de cadena larga, y
petrolatum líquido (aceites saturados), y agua, la formulación de
una segunda fase inmiscible con la primera fase, comprendiendo la
segunda fase agua, un segundo polímero soluble en la segunda fase
seleccionada de entre el grupo de polímeros que consiste en
polietilenglicol de entre 1000 daltones y 8000 daltones, dextrano de
entre 1000 daltones y 10000 daltones, polivinil pirrolidona,
alcoholesde polivinilo, gelatina, goma adragante, carragenano, goma
de Karaya, goma de Guar, goma arábiga, alginatos,
carboximetilcelulosa, hidroxipropilcelulosa, hidroxietilcelulosa,
carboxipropil celulosa, lecitinas, un agente tensioactivo
seleccionado de entre el grupo compuesto por monooleato de sorbitán
tratado con óxido de etileno, dextrano, polietilenglicol, ácidos
grasos C_{12}-C_{20}, ciclodextrinas, PEG
copolímero dextrano, acrilatos de PEG, lactidas, galactidas,
quitosano, Zein®, carbapol, polixameros, sales cuaternarias de
amonio y una sal seleccionada de entre el grupo que consiste en
NaCl, KCl, CaCl_{2}, MgCl_{2}, sales cuaternarias de amonio
como, por ejemplo bromuro de cetiltrimetilamonio,
2-amino-2-metil-1-propil
aminometil propanol, y sal disódica de
4-metoxi-4(3-fosfatidilcolina)espiro(1,2-dioxetano-3-g,1-adamantano);
comprendiendo el agente tensioactivo un valor de equilibrio
hidrofílico/hidrofóbico superior al del primer polímero,
presentando el segundo polímero un valor de equilibrio
hidrofílico/hidrofóbico inferior al del agente tensioactivo;
creando una interfaz entre la primera fase y la segunda fase de tal
manera que limita de manera considerable la cizalladura de fluido;
y manteniendo de manera considerable las características de
superficie adsorbente de dicha interfaz.
Los presentes procedimientos de preparación se
utilizan para formar microcápsulas multilamelares únicas, que
presentan unas capas líquidas hidrofílicas e hidrofóbicas alternas
rodeadas por una "película" exterior polimérica semipermeable
flexible. La película exterior puede ser hidrofílica o hidrofóbica,
está diseñada para permitir una difusión controlada de fármacos
desde la microcápsula. La película exterior también está diseñada
para tener una temperatura de fusión inferior al punto de Curie de
las partículas magnéticas encapsuladas, de manera que la exposición
a un campo electromagnético causará la realización por fusión de un
agujero o poro en la película, ayudando de esta manera en la
liberación o difusión de los químicos disueltos fuera de la
microcápsula.
Al contrario de cualquier fosfolípido natural u
otro componente de membranas celulares, la película exterior de las
microcápsulas de la invención no reformará una membrana intacta, y
está diseñada para evitar el reconocimiento y la fagocitosis por
células inmunes, aumentando de esa manera la cantidad de fármaco
administrada a los tejidos. Las microcápsulas multicapa de la
invención pueden retener múltiples fármacos en diferentes
compartimentos de solventes y soluciones saturadas de fármacos que
pueden a continuación formar cristales en el interior de la
microcápsula. El medio de radiocontraste puede coencapsularse con
los fármacos en la misma microcápsula. También puede encapsularse
un agente de contraste de resonancia magnética como por ejemplo
diversos compuestos metaloorgánicos incluyendo gluconato ferroso
soluble en agua, Gadolinio ácido dietilentriamina pentaacético y
pentacarbonilo de hierro, soluble en hidrocarburos.
Se ha descubierto que las microcápsulas de la
invención proporcionan una distribución de diámetros
sorprendentemente uniforme. Esta uniformidad es particularmente
importante en sus aplicaciones médicas. Las microcápsulas producidas
de esta manera pueden utilizarse para administrar varios fármacos
que pueden liberarse secuencialmente a los tejidos diana mediante
la elección de partículas magnéticas con diversos puntos de Curie,
por ejemplo. Las microcápsulas deformablesy llenas de líquido
también tienen ventajas sobre las microcápsulas sólidas matriciales
en la consecución de la máxima densidad de compactado en vasos
sanguíneos, reduciendo de esa manera el flujo sanguíneo a los
tejidos diana. Esto mejora el efecto terapéutico de la
administración combinada de fármacos y reducción del suministro
sanguíneo a los tumores vasculares (quimioembolización).
Lo presentes procedimientos de preparación
resultan en distribuciones de dimensiones uniformes y más esféricas
de microcápsulas. Al comparar algunos equipos y procedimientos para
la formación de microcápsulas de la técnica anterior
(Microfluidics, Inc.), los inventores han descubierto que incluso
las formas de realización preferentes descritas en la presente
memoria fueron incapaces de proporcionar dicha uniformidad con los
equipos de la técnica anterior. En algunos casos, a penas se formó
alguna microcápsula en los casos en los que se utilizaron el
mezclado y la rotación espiral para distribuir una fase en la otra.
En otros casos, resultaron microcápsulas no esféricas de pobre
formación. Al contrario que los fallos o fracasos de los
procedimientos de la técnica anterior, los presentes procedimientos
se utilizaron con éxito para generar microcápsulas esféricas y
uniformes tanto bajo condiciones de gravedad unitaria como bajo
condiciones de microgravedad. Dicha uniformidad permite la
administración de fármacos. La uniformidad mejorada también permite
un mejor cálculo de la distribución de dosis para establecer las
dosis terapéuticas en el tratamiento de enfermedades específicas,
especialmente en el tratamiento de determinados tipos de tumores.
Aún más importante, los presentes procedimientos permiten la
formación de microcápsulas multilamelares de dimensiones superiores
(de entre 1 micrón y 350 micrones) a las que era posible obtener
hasta la fecha. Dicha capacidad permite que las microcápsulas
multilamelares puedan realizarse específicamente para la inhalación
y deposición en los pulmones. Esta uniformidad permite un fácil
cribado o filtrado de los productos de microcápsulas con el fin de
obtener fracciones de diámetro altamente uniformes.
La mayoría de los liposomas presentan un
compartimento hidrofóbico muy pequeño y por tanto pueden portar
únicamente pequeñas cantidades de fármacos hidrofóbicos. Por el
contrario, las microcápsulas de la invención presentan un
compartimento para líquidos hidrofóbicos relativamente grande, lo
que permite la administración de más fármacos hidrofóbicos por
microcápsula. Además, las microcápsulas de la invención presentan
unos compartimentos hidrofílicos e hidrofóbicos relativamente
grandes lo que permite una administración conjunta de los fármacos
solubles en agua y de los fármacos no solubles en agua en la misma
microcápsula.
Tal y como se ha indicado anteriormente, las
microcápsulas de la invención pueden contener polisacáridos. La
inclusión de dichos polisacáridos es uno de los varios aspectos de
los procedimientos de la invención que mejoran la formación de las
microcápsulas. La inclusión de polisacáridos inyectables en las
formulaciones de la invención contribuye a las fuerzas inductoras
que controlan la separación de fases y la partición de fases de los
fármacos retenidos. Los polisacáridos también proporcionan un
aumento de la vida útil y una mayor estabilidad de las suspensiones
parenterales. El uso de soluciones salinas neutras en la fase acuosa
mejora la formación de micelas, la separación lateral de fases, y
aumenta la dispersión de las microcápsulas y su estabilidad
conforme se forman. En algunas formas de realización, puede
utilizarse una solución salina tamponada con fosfato que
contenga
dextrano.
dextrano.
Los presentes procedimientos de preparación, en
algunas formas de realización, utilizan un recubrimiento exterior
no fosfolipídico. Las microcápsulas formadas mediante este
procedimiento se encuentran contenidas en una membrana exterior
fina y semipermeable compuesta por polímeros hidrofóbicos (por
ejemplo, monoglicéridos o poliglicéridos o polímeros de cera) o
hidrofílicos (por ejemplo, PVA o PVP), dependiendo de la tasa de
liberación de la difusión deseada del fármaco encapsulado. De esta
manera, el recubrimiento presenta la ventaja de permitir el diseño
de las apropiadas características de liberación y difusión del
fármaco al tiempo que se evitan algunas de las desventajas de los
liposomas convencionales (y bicapas lipídicas). En particular, el
recubrimiento producido por los procedimientos de la invención
alrededor de la superficie exterior de la microcápsula evita que
pueda detectarse fácilmente y eliminarse de manera importante
mediante el sistema reticuloendotelial (RES). La película exterior
protege las microcápsulas contra las fuerzas de cizalladura
encontradas durante los procesos de fabricación y durante el
transporte en el interior del sistema vascular de camino a los
tejidos diana. La membrana exterior hidrofóbica también puede
diseñarse para retardar el transporte de oxígeno, reduciendo de esa
manera la degradación oxidante del fármaco retenido y mejorando la
vida útil de las suspensiones parenterales. La película exterior
flexible/deformable de las microcápsulas de la invención resulta en
una mejora de las densidades de compactado en el interior de los
lechos vasculares. Esto resulta en microcápsulas superiores a las
microesferas sólidas (por ejemplo, gelatina, albúmina o almidón)
habitualmente utilizadas para la terapia de quimioembolización
contra los tumores. A continuación se resumen las formulaciones
utilizadas para producir las microcápsulas de la invención.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\vskip1.000000\baselineskip
En los casos en los que las microcápsulas de la
invención comprenden una composición farmacéutica, pueden obtenerse
algunas ventajas relacionadas con aspectos médicos. De esta manera,
debido a la uniformidad y facilidad con los que los presentes
procedimientos de preparación permiten la formación demicrocápsulas
multilamelares, se hace posible la coencapsulación de múltiples
fármacos. De esta manera, por ejemplo, tal y como se describirá con
mayor detalle a continuación, se hace posible la coencapsulación de
fármacos y medio de radiocontraste en las mismas microcápsulas.
Dicha coencapsulación permite la monitorización radiológica de la
distribución tisular durante la administración intravascular.
Además, la incorporación de marcadores-fluorescentes
para los fármacos retenidos permite una medición precisa de los
volúmenes de los compartimentos de fármaco (utilizando técnicas de
obtención de imágenes fluorescentes) y las determinaciones adecuadas
de las eficiencias de carga de fármacos, distribuciones de las
dimensiones de partículas y la medición de la estabilidad de la vida
útil de las suspensiones parenterales finales. En algunas
aplicaciones la fase orgánica puede incluir un compuesto rastreador
o medio de radiocontraste para proporcionar la ventaja adicional de
la obtención de imágenes en tiempo real de las microcápsulas con el
escaneado mediante tomografía computerizada (CT) conforme son
liberadas desde el catéter de camino al tejido diana. Otros
ejemplos incluyen unos compuestos metaloorgánicos solubles en agua
utilizados para la obtención de imágenes de diagnóstico como por
ejemplo gluconato ferroso o Gadolinio ácido dietilentriamina
pentaacético (Gd-DPTA) utilizados para la obtención
de imágenes mediante resonancia magnética nuclear y agentes
solubles en hidrocarburos como por ejemplo pentacarbonilo de hierro
que también puede utilizarse para la obtención de imágenes mediante
resonancia magnética nuclear (NMR).
La producción de microcápsulas multicapa que
poseen compartimentos de fármacos hidrofóbicos e hidrofílicos
alternos permite el diseño de microcápsulas multiterapia. La
formación espontánea de microcápsulas con uno o más compartimentos
de solvente hidrofóbico grandes aumenta la potencial aplicación para
la administración de más fármacos insoluble en agua en los sitios
diana con adecuadas redes vasculares. Utilizando las microcápsulas
de la invención, puede conseguirse la difusión secuencial de dos o
más fármacos desde la misma microcápsula en los tejidos diana. La
incorporación de ciclodextrina soluble en agua que pueda actuar como
un portador de fármacos hidrofóbicos interno también se lleva a la
práctica utilizando las formulaciones y los procedimientos de una
única etapa descritos en esta descripción. Esto extiende la
capacidad de la invención en la administración por lo demás de
fármacos insolubles en agua.
Por ejemplo, el uso de múltiples fármacos en el
interior de las mismas microcápsulas proporciona microcápsulas
específicamente diseñadas para tratamientos de quimioembolización.
Las cápsulas de múltiples fármacos también pueden utilizarse para
administrar primero un fármaco quimioterápico que mata células
tumorales, y a continuación un inmunoadyuvante (factor de necrosis
tumoral) o estimulante inmunológico (por ejemplo
interferón-g) que mejoraría la respuesta inmune del
paciente al tumor. Las microcápsulas de múltiples fármacos también
pueden utilizarse para administrar combinaciones de fármacos
quimioterápicos a tumores que se encuentran situados en sitios
privilegiados, como por ejemplo los tumores cerebrales. Por ejemplo,
y tal y como se describe con mayor detalle en los ejemplos que
siguen a continuación, se hace posible la administración simultánea
de diferentes tipos de fármacos en la misma microcápsula, por
ejemplo, diaziquona y cis-platino a tumores
cerebrales a través de la arteria carótida [Kimier et al.
1993]. Las microcápsulas multicapa también pueden utilizarse para
tratar infecciones profundas que son resistentes a los antibióticos
sistémicos. En estas aplicaciones, pueden administrarse
secuencialmente uno o más antibióticos al sitio de la infección. Las
microcápsulas multicapa pueden diseñarse para proteger formas
activas de la uroquinasa y otras enzimas trombolíticas hasta que son
administradas y retenidas en el sitio local de un coágulo de
sangre, en el que a continuación pueden liberarse dosis
terapéuticas de la enzima sometiendo a lisis la membrana exterior
para disolver la embolia no deseada. Las microcápsulas
multilamelares también pueden utilizarse para administrar
inmunoestimulantes; citocinas como por ejemplo interferones,
interleucinas, y factores de crecimiento; antinauseantes como por
ejemplo metoclopramida y tetrahidrocannabinol; múltiples enzimas
fibrinolíticas como por ejemplo la uroquinasa (uPA), activador
tisular de plasminógeno (tPA) y estreptoquinasa; esteroides como
por ejemplo hidrocortisona, dexametasona, etc.; antifúngicos como
por ejemplo nistatina y griseofulvina, antivirales como por ejemplo
amantidina, yododesoxiuridina, riboviran; y múltiples antibióticos
como por ejemplo amoxicilina, ampicilina, etc.
En una forma de realización, en referencia a la
investigación en base al espacio que condujo a las formas de
realización en condiciones normales de la Tierra de la invención, la
exposición a la microgravedad por un tiempo de por lo menos 20
segundos de duración produjo microcápsulas. En caso de que las
microcápsulas de la invención vayan a ser utilizadas en medios de
gravedad 1-g, tal y como generalmente se prevé, será
necesaria una etapa adicional que comprenda la recuperación de las
microcápsulas multicapa completada en condiciones de gravedad
normal de la Tierra. Generalmente, esta etapa será completada por
reentrada y recuperación del dispositivo orbital mediante el que
cual se completó la exposición a gravedad 0-g.
Mientras que resulta preferente completar la recuperación sin la
exposición de las microcápsulas formadas a extremos físicos
(presión, temperatura, cizalladura, mezclado, etc.), la
recuperación de las microcápsulas de la invención ha sido completada
a través de una transición de microgravedad a gravedad normal de la
Tierra a aceleraciones de por lo menos 15-g sin una
pérdida considerable de integridad.
Tal y como se utiliza en la presente memoria el
término contener o contenido en una microcápsula o en una fase o
capa líquida debe interpretarse como que tiene su significado
normal, y puede incluir suspendido o disuelto como en una capa
líquida, o interfaz, y también incluye el significado asociado con
un recubrimiento polimérico que incluye en sus superficies
interiores o exteriores. Tal y como se utiliza en la presente
memoria, el término "profármaco" o "proenzima" incluye el
significado de un precursor, como por ejemplo prohormonas
intraglandulares, o el significado de un agente cuya actividad
farmacológica o actividad enzimática, o acción farmacológica,
resulta de una conversión o transformación en una forma activa o más
activa. Dicha conversión puede ser el resultado de un proceso
metabólico o biotransformación, o puede ser el resultado de una
reacción artificial.
Para una descripción detallada de una forma de
realización preferente de la invención, a continuación se hará
referencia a los dibujos adjuntos, en el que:
La figura 1A es una figura esquemática de
microcápsulas que contienen una partícula magnética que se calienta
por la exposición a un campo electromagnético.
La figura 1B es una figura esquemática de las
microcápsulas una vez que la partícula magnética ha realizado por
fusión un poro en la membrana exterior y se difunde el contenido
interior de la microcápsula.
La figura 2 es un gráfico que muestra la
permeabilidad vs. La temperatura de las partículas
ferromagnéticas cerámicas encapsuladas en las microcápsulas que
demuestran una temperatura de Curie de aproximadamente 48ºC.
La presente descripción describe microcápsulas
multicapa y procedimientos de realización de microcápsulas que
presentan una membrana exterior polimérica que puede contener fases
líquidas que contienen fármacos o químicos bioactivos y partículas
sólidas magnéticas que pueden absorber energía electromagnética y de
esa manera calentarse hasta una temperatura predeterminada (punto
de Curie o temperatura de Curie), que es suficiente para realizar
por fusión un agujero en el recubrimiento polimérico, o para fundir
por lo menos una parte del mismo, o de otra manera someter el mismo
a lisis y liberar el contenido líquido de las microcápsulas que
incluye el fármaco o el químico bioactivo. Las microcápsulas
descritas en la presente memoria pueden, en algunas formas de
realización, ser inyectadas en arterias que conducen a
trombos,tumores vascularizados, u otros lechos capilares, o pueden
ser inyectadas directamente en los tumores u otros tejidos con el
fin de alcanzar un sitio diana. Cuando las microcápsulas se
encuentran en el sitio diana, el paciente o sujeto puede ser
expuesto a un campo electromagnético externo o interno, por lo
general por un periodo de unos pocos minutos, causando de esa manera
que las partículas magnéticas alcancen la temperatura de Curie y
fundan el recubrimiento polimérico y liberen el fármaco en el sitio
diana. En algunas formas de realización, pueden conseguirse
múltiples liberaciones de fármacos incluyendo microcápsulas que
contengan partículas magnéticas con diferentes puntos de Curie.
Además, estas microcápsulas también pueden contener diferentes
fármacos de manera que puedan conseguirse administraciones
secuenciales de de una combinación de fármacos manipulando la
frecuencia del campo externo y el tiempo de exposición. El uso de
partículas magnéticas para una administración de fármacos controlada
puede utilizarse con cualquiera de las microcápsulas y
procedimientos que se describen en la presente memoria y en
solicitudes relacionadas.
Las microcápsulas descritas en la presente
memoria proporcionan ventajas sobre composiciones y procedimientos
anteriores en que las microcápsulas pueden diseñarse de manera que
la temperatura de Curie sea de entre aproximadamente 41ºC y
cualquier temperatura, incluso de hasta 95ºC sin causar extensos
daños térmicos a los tejidos locales. En base el tamaño pequeño
respecto a una célula y el número pequeño de partículas, los daños
colaterales serán mínimos. Además, las microcápsulas pueden
utilizarse para administrar múltiples fármacos a partir de una única
administración, o para liberar varios pulsos de fármacos como
podría ser el caso. Otra ventaja es que las liberaciones de los
fármacos son activadas por campos electromagnéticos externos que son
no invasivos, pueden aplicarse por un tiempo más corto que el
necesario para la hipertermia tisular, y no se basan en la
hipertermia local, que es difícil de controlar y puede causar daños
colaterales. Además, el calentamiento por inducción de las
partículas magnéticas no está limitado a frecuencias y densidades de
potencia normalmente necesarias para inducir la hipertermia. Las
microcápsulas también son útiles para el almacenamiento de fármacos
inestables por periodos extendidos, posiblemente en una forma
inactiva, y para transportar fármacos o agentes bioactivos al sitio
diana en un medio protegido hasta que son liberados, evitando de
esta manera una actividad no deseada del fármaco en sitios no
específicos, así como evitando potenciales problemas con una
respuesta inmune al agente. Por último, las microcápsulas que
contienen partículas magnéticas pueden separarse y purificarse
utilizando campos magnéticos de CC y técnicas rutinarias de
separación, y pueden concentrarse en una localización de tejido
elegida mediante la aplicación de un campo magnético externo.
Para aquellas formas de realización descritas en
la presente memoria en las que se utiliza un campo electromagnético
para calentar micropartículas, la fuerza del campo puede describirse
alternativamente como por lo general del orden de entre 85 KHz y 95
KHz o de entre 1500 A/m y 2400 A/m, o como de aproximadamente de
entre 3 KW y 5 KW. El diseño de dichas microcápsulas se describe
con mayor detalle en los ejemplos que se describen a
conti-
nuación.
nuación.
La presente descripción proporciona
procedimientos de encapsulación de múltiples fármacos o agentes
terapéuticos biológicos en microcápsulas líquidas o liposomas que
están diseñados para la administración a tejidos u órganos
seleccionados en los que, tras la activación, puede liberarse un
fármaco efímero directamente al sitio diana por difusión de las
microcápsulas. Puede utilizarse un procedimiento de la presente
descripción para formar microcápsulas multilamelares que presenten
capas líquidas hidrofílicas e hidrofóbicas alternas rodeadas por
una "película" exterior polimérica, semipermeable y flexible.
En esta forma de realización, la película exterior se diseña para
permitir una difusión sostenida del fármaco bioactivo desde la
microcápsula.
Las composiciones de la presente invención
pueden utilizar formulaciones especiales de fármacos solubilizados,
surfactantes, cosurfactantes poliméricos, y componentes de absorción
de energía en una fase líquida inmiscible específica. El medio de
absorción de energía (por ejemplo, fotoactivador, medio
termoabsorbente, etc.) absorbe la radiación electromagnética,
ultravioleta (UV), infrarroja (IR), ultrasónica, de radiofrecuencia
(RF), o de microondas y por tanto causa la activación química de un
sustrato químico o precursor de fármaco en una molécula de fármaco
bioactivo que puede difundirse con facilidad fuera de la
microcápsula. La energía absorbida también puede utilizarse para
crear la convección térmica, flujos de Marangoni u otros flujos de
alta velocidad que pueden causar el mezclado interfacial, la
redistribución o partición de compartimentos en las fases
inmiscibles, y un radiocontraste incrementado de componentes
seleccionados dentro de determinados compartimentos líquidos. Esto
lo ejemplariza la activación UV (220-390 nanómetros)
de microcápsulas que contienen fármacos, compuestos fluorescentes y
medios de radiocontraste en la misma microcápsula. Las microcápsulas
activadas in situ se caracterizan por: membranas exteriores
poliméricas que son tanto transparentes a las radiaciones de
activación como permeables al fármaco bioactivo permitiendo de esa
manera una liberación sostenida en el tiempo del fármaco activo;
compartimentos de fluidos inmiscibles en el interior de las
microcápsulas o esferoides internos rodeados por una membrana o un
separador interfacial sensible a la cizalladura o termosensible, que
contiene componentes químicos que absorben la energía de
activación; reacciones químicas o mezclado por convección que
convierten el profármaco o la proenzima a la forma bioactiva o
cambian la forma molecular de un fármaco (que ya es bioactivo) para
incrementar su tasa de difusión fuera de la microcápsula o su
biodisponibilidad una vez que ha sido liberado; y una vida útil más
larga que la del fármaco biaoctivo disuelto o suspendido en la
solución portadora. En la práctica de la invención, pueden
exponerse las microcápsulas a una primera forma de energía con el
fin de causar el mezclado de las capas inmiscibles o de otra manera
activar un profármaco o agente químico, y posteriormente exponer
las microcápsulas a un campo electromagnético diseñado para calentar
las micropartículas y liberar el contenido de las microcápsulas.
Incluidos en la presente descripción se
encuentran las microcápsulas multicapa y los procedimientos de
formación de las microcápsulas líquidas multicapaque comprenden una
membrana o película exterior permeable al fármaco que rodea una
esfera de compartimentos de fluidos inmiscibles. Los compartimentos
inmiscibles pueden contener un precursor de fármaco en una fase y
un agente de activación en otra fase. El agente de activación puede
activarse por la exposición a una radiación electromagnética o por
otras formas de activación de energía que hagan que reaccione con
el precursor de fármaco para producir un agente o fármaco
activo.
Las presentes composiciones se utilizan en
procedimientos de exposición de microcápsulas a una radiación de
activación u otras formas de activación de energía. Estos
procedimientos incluyen, pero sin limitarse a ellos, los
siguientes:
- a)
- Exposición directa de las microcápsulas en dispersión líquida o seca justo antes de la administración. Este procedimiento puede completarse, por ejemplo, mediante exposición a la radiación de un sistema de filtro pasa banda, luz láser, luz infrarroja, ondas radio o microondas, o una combinación de los mismos, todos los cuales son transmitidos a través de la membrana exterior de las microcápsulas para ser absorbidos por el agente de activación que ha sido coencapsulado con el fármaco precursor.
- b)
- Retención de las microcápsulas en el tejido seguido de la administración externa de la energía de activación a través de la película y tejidos exteriores de un sujeto sin daños fisiológicos y la absorción de la energía por el agente de activación del interior de las microcápsulas, o por partículas magnéticas que dan lugar a un calentamiento y a una fusión de la membrana exterior polimérica.
\newpage
- c)
- Retención de las microcápsulas en las arteriolas, vénulas, o tejidos mediante la exposición de las microcápsulas a través de catéteres intravasculares, u otros dispositivos internos que contienen una sonda de fibra óptica, un transductor electromagnético, u otro transductor de energía en miniatura que pueda transmitir la energía de activación localmente a las microcápsulas retenidas, seguido nuevamente de un calentamiento de las partículas magnéticas para liberar el contenido activado.
En la práctica de algunas formas de realización
de la invención, la absorción de la energía de activación puede
resultar en una reacción química entre un activador y un precursor
de enzima o profármaco que produce un grupo molecular bioactivo, o
dicha absorción puede inducir el mezclado de fluidos y unos flujos
de fluido turbulentos en los que el mezclado interno de la fase
interna inmiscible que contiene el profármaco y la fase interna que
contiene el activador resulta en la producción de la forma bioactiva
del fármaco. Alternativamente, la absorción de la energía de
activación puede producirse en el interior de los esferoides
interiores rodeados por una membrana termosensible que contiene una
solución del agente de activación en el que la deposición de
energía aumenta la temperatura en el esferoide provocando la rotura
o la disolución de la membrana termosensible, permitiendo la mezcla
de la solución de activación con la siguiente solución exterior que
contiene el profármaco o sustrato para producir al agente activo.
Dicho mezclado también puede ser causado por radiación ultrasónica,
lo que sería efectivo para someter a lisis los esferoides
interiores. La energía de activación también puede absorberse por
la membrana exterior de las microcápsulas, para producir un agente
como por ejemplo, radicales libres, superóxidos, agentes oxidantes o
reductores para activar un profármaco.
Una forma de realización de la presente
invención hace referencia también a microcápsulas en las que la
energía de activación es absorbida por los medios de radiocontraste
contenidos en las microcápsulas, creando así la radiopacidad de los
medios mientras las microcápsulas se encuentran retenidas en el
tejido. Entre los ejemplos de medios de radiocontraste se incluyen,
aunque sin limitarse a ellos, aceites halogenados, como por ejemplo,
aceite de semillas de amapola, aceite de semillas de algodón,
aceite de cártamo, aceite de maíz, aceite de semillas de sésamo,
aceite de canola (colza), y otros que pueden yodarse con facilidad
para producir un medio de contraste radiopaco para la obtención de
imágenes radiográficas.
Para los fines de esta descripción, los términos
"un", "uno", "una" abarcan el significado
convencional, e incluyen el significado "uno o más". Por
tanto, una descripción de una microcápsula, o un profármaco, por
ejemplo, incluiríael significado de uno/una o uno/una o más, según
lo requiera un contexto particular.
A altas frecuencias, el calentamiento de
partículas o varillas de metal ferromagnético por inducción
electromagnética principalmente se debe a corrientes de Foucault
que es conocido que circulan prácticamente exclusivamente en una
capa superficial fina. Bajo tales condiciones, la potencia en las
termopartículas por unidad de longitud en un campo magnético
alterno, que se aplica en paralelo al eje largo, es:
P_{e} =
\pi(\mu_{o}\mu\rhof)^{1/2}
aH^{2}
En el que P_{e} es la entrada de potencia
debido a las corrientes de Foucault, W/m; \mu_{o} es la
permeabilidad del espacio libre, 4\pi x 10^{-7} Wb/A . m; \mu
es la permeabilidad relativa de la termopartícula, sin dimensión;
\rho es la resistividad eléctrica, ohm . m; a es el radio
de la termopartícula, m; H es la amplitud del campo
magnético que varía de forma sinusoidal, A . m; y f es la
frecuencia, s^{-1} (Chen et al., 1988). A partir de esta
cuestión, las únicas propiedades de material que afectan a la
entrada de potencia a una termopartícula en calentamiento son \mu
y \rho; H y f son características del equipo de
calentamiento por inducción y sus condiciones operativas. La
resistividad no cambia de manera perceptible a la temperatura de
Curie, y la variación de la resistividad en el intervalo de
temperatura justo por debajo de la temperatura de Curie es pequeña
comparado con el correspondiente cambio en permeabilidad. Aún más
importante, se produce una reducción drástica en la permeabilidad
relativa a medida que la temperatura se acerca a la temperatura de
Curie y esto resulta en una correspondiente reducción en la
absorción de potencia, el flujo de corriente, y posterior
calentamiento.
La figura 1A es un dibujo esquemático de un
fármaco o enzima contenido en una microcápsula que también contiene
una esfera o partícula metálica, como por ejemplo una partícula
cerámica ferromagnética. La microcápsula (120) presenta una
membrana polimérica exterior (122) que contiene una o más fases
líquidas internas (124), (128). En la forma de realización mostrada
en la figura, se muestran dos fases líquidas internas. En la forma
de realización mostrada, una primera fase interna (128) contiene un
fármaco o una enzima (130) para la que la membrana (122) es
permeable. Una segunda fase interna (124) puede, en algunas formas
de realización, contener un agente de activación. Una partícula
metálica (136) contenida en la microcápsula (120), presenta una
temperatura de Curie superior al punto de guión de la membrana
exterior (122). Un campo electromagnético de activación (132) se
muestra pasando a través de la membrana exterior (122) y haciendo
que la partícula metálica (136) caliente y realice por fusión un
agujero o poro en la membrana exterior (122). En diversas formas de
realización de la invención, la capa líquida interna adyacente a la
membrana exterior (122) y que contiene la partícula magnética (136)
puede ser una capa acuosa o una capa de hidrocarburo dependiendo de
la solubilidad del fármaco activo.
\newpage
La figura 1B es un dibujo esquemático de una
parte de una microcápsula mostrada en la figura 1A una vez que la
partícula metálica (136) ha realizado por fusión un agujero o poro
permanente (138) en la membrana exterior (122). El poro (138)
permite la salida del contenido de la microcápsula (120), incluyendo
cualquier fármaco (130) que esté contenido en una fase líquida
interna (128) próxima a la membrana exterior (122).
La figura 2 es un gráfico que muestra la
permeabilidad vs. la temperatura de las partículas cerámicas
ferromagnéticas encapsuladas en las microcápsulas descritas en el
Ejemplo X. Se muestra una temperatura de Curie de aproximadamente
48ºC.
Una serie de más 38 experimentos separados en
cuatro vuelos espaciales ha conducido al desarrollo de aspectos de
esta invención. Estos experimentos junto con sus homólogos basados
en la tierra son descritos a continuación con objeto de explicar la
invención de forma específica y proporcionar detalles que son útiles
en la realización de la invención. Sin embargo, los ejemplos
específicos no limitan el alcance de la invención reivindicada.
Los próximos ejemplos no describen composiciones
de la presente invención, sino que se ofrecen a modo ilustrativo y
no tienen por objeto limitar el alcance de la invención en modo
alguno. Todos los materiales utilizados en estos ejemplos fueron
obtenidos a partir de fuentes comerciales bien conocidas, o como se
indique específicamente en los ejemplos. Básicamente se utilizaron
procedimientos convencionales en cada caso en el que no se
especifica un procedimiento específico.
\vskip1.000000\baselineskip
Las formulaciones básicas y los procedimientos
de dispersión líquido-líquido simplificados fueron
desarrollados en 1988 y en 1989. El concepto básico es la formación
de una microcápsula multilamelar con una dispersión acuosa de
fármaco/aceite en su centro, un hidrocarburo/aceite fármaco#2 y/o un
medio de radiocontraste (por ejemplo, IPO) como siguiente capa, una
capa/fármaco acuosa (por ejemplo, cis-platino) como
siguiente capa y una película o un recubrimiento exterior
polimérico. Los experimentos relacionados con la microencapsulación
diseñados para superar las limitaciones de los primeros
procedimientos fueron llevados a cabo en seis misiones espaciales
comenzando en abril de 1989 con el cohete sonda
Consort-I utilizando el mini laboratorio
"Materials Dispersion Apparatus" (Aparato de Dispersión de
Materiales) (MDA) desarrollado por Instrumentation Technology
Associates, Inc. Los vuelos del cohete sonda produjeron únicamente
6,5 minutos de condiciones de microgravedad, pero esto fue adecuado
para formar microcápsulas en una única etapa. Los experimentos en el
Transbordador Espacial permitieron un tiempo de dispersión de 10
minutos seguido del curado de la película de poliglicérido exterior
durante ocho días bajo condiciones de microgravedad. Se muestra un
resumen de estos experimentos en la tabla 2. Se sometieron a ensayo
nuevas formulaciones en el Transbordador Espacial
STS-52, utilizando únicamente fármacos, polímeros y
surfactantes solubles en agua, y en el STS-56
utilizando alcoholes como surfactantes. Los experimentos específicos
y los resultados se describen en detalle en los ejemplos que siguen
a continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\newpage
Las restricciones dependientes de la gravedad en
el proceso de encapsulación básico espontáneo
líquido-líquido condujeron al diseño de varios
experimentos de microgravedad para explorar la utilidad de este
proceso cuando se eliminaban fenómenos inducidos por la densidad.
En particular, las restricciones dependientes de la gravedad,
inducidas por la densidad, del proceso de microencapsulación
líquido-líquido eran: separación de fases temprana,
produciendo microcápsulas frágiles; flujo dinámico interfacial,
causando la coalescencia de las microcápsulas. El fracaso de los
experimentos con base en la Tierra para derivar microcápsulas
uniformes condujo a un deseo de intentar la formación de
microcápsulas en el espacio.
Los experimentos espaciales de microgravedad
condujeron al desarrollo de un nuevo proceso de microencapsulación
líquido-líquido que implica el uso de surfactantes y
cosurfactantes en la fase acuosa y alcoholes cosurfactantes en la
fase orgánica, que también contenía, en una forma de realización,
polímeros de un alto peso molecular que formaban una
"película" exterior dura en las microcápsulas finales. En
condiciones de microgravedad, una dispersión de una única etapa
produjo microcápsulas multilamelares únicas que contenían diversos
fármacos acuosos coencapsulados con aceite de semillas de amapola
(un medio de radiocontraste con una gravedad esp. = 1,35).
Posteriores experimentos de control en tierra también produjeron
algunas de estas únicas microcápsulas e ilustraron que el proceso
de 1-g podría mejorarse para obtener microcápsulas
utilizables utilizando diferentes formulaciones. En particular, se
puso claramente de manifiesto que los recubrimientos exteriores
mejoraron de manera considerable la resistencia de las microcápsulas
formadas.
Los experimentos iniciales realizados en las
misiones Consort-1 y Consort-3
fueron utilizados para determinar la cinética de difusión y el
mezclado efectivo en los MDAs (ver a continuación la descripción del
aparato). Esto mostró que se había mezclado suficiente volumen en
la interfaz por medio de la difusión para permitir la formación de
microcápsulas. Estos experimentos también proporcionaron las
constantes de difusión para cada uno de los componentes de las fases
líquidas.
La primera microencapsulación de fármacos en
microgravedad de éxito fue llevada a cabo en la misión
Consort-4 en noviembre de 1991. Las microcápsulas
fueron recuperadas y analizadas mediante análisis de imágenes
microscópicas. Se incluyeron lechos fluorescentes monodispersados
como estándares de tamaño interno y se utilizaron marcadores
fluorescentes para determinar la distribución de fármacos en los
diversos compartimentos de fluidos. Experimentos adicionales,
llevados a cabo en septiembre de 1992 en la misión
Consort-5, confirmaron las capacidades del nuevo
procedimiento para formar microcápsulas multilamelares con capas
alternas de fármacos hidrofílicos e hidrofóbicos.
Las microcápsulas formadas en 38 mini
experimentos de microgravedad utilizaron una dispersión
líquido-líquido de soluciones de fármacos acuosas,
conteniendo el surfactante y el polietilenglicol dispersado en las
soluciones de cosurfactante alcohólico poliglicéridos solubles.
De las misiones Consort se recuperaron
microcápsulas tanto de aceite/agua como de polímero/agua/aceite.
Estos experimentos produjeron microcápsulas líquidas multilamelares
(esferas concéntricas dentro de esferas) compuestas por tres o más,
capas inmiscibles alternas. Se hizo posible el análisis de imágenes
de las microcápsulas mediante la coencapsulación de los lechos
fluorescentes de tamaño estándar. Las microcápsulas fueron formadas
en el intervalo de entre 1 micrón y 15 micrones, de entre 40
micrones y 50 micrones, de entre 110 micrones y 130 micrones y de
entre 160 micrones y 230 micrones de diámetro. Esto consistió en una
mejora sustancial sobre los procedimientos de la técnica anterior
que inicialmente fueron probados por los inventores para derivar
microcápsulas únicamente en el intervalo de 10 micrones y menos. La
distribución dimensional cubrió un intervalo de entre
aproximadamente 5 micrones de diámetro y aproximadamente 300
micrones de diámetro y superior. El tamaño medio de las
microcápsulas formadas en estos experimentos fue de aproximadamente
150 micrones, muy por encima de la media de 10 micrones o menos de
diámetro obtenida con los procedimientos de la técnica anterior.
La resistencia de las microcápsulas formadas
bajo estas condiciones permitió la segregación dimensional mediante
la filtración de otros procedimientos de separación. El análisis de
imágenes digitales (programa de análisis de imágenes de la National
Institutes of Health) del contraste de fases y las imágenes
fluorescentes tomadas con un microscopio fluorescente también
confirmaron que los fármacos solubles en agua fueron encapsulados de
forma rutinaria en el núcleo acuoso interior y en el recubrimiento
acuoso más exterior de las microcápsulas.
También fueron formadas microcápsulas
multilamelares, las cuales contenían cantidades relativamente
elevadas de IPO (Guerbet Laboratories - Francia, Savage
Laboratories - EEUU) en láminas discretas, incluyendo microcápsulas
con una carga elevada de IPO, que con frecuencia comprende hasta el
38% del volumen total. Con frecuencia también fueron encontrados
pequeños hemisferios de IPO aferrándose a la superficie exterior de
la grande esfera interior (acuosa) o adheridos a la película
polimérica exterior de la microcápsula.
Las microcápsulas formadas por prácticamente
todas las formulaciones sobrevivieron aceleraciones de
15-g, vibraciones severas y mezclados turbulentos,
durante la reentrada de la cápsula experimental, y han permanecido
intactas por dos años tras su recuperación desde el espacio. Estas
microcápsulas multicapa son similares a microglobos de película
fina y llenas de líquido que son lo suficientemente flexibles para
ser manipuladas en una placa de microscopio sin colapsar.
Las microcápsulas formadas en solo 6,5 minutos
de microgravedad retienen su forma esférica y parecen lo
suficientemente resistentes como para sobrevivir las extensas
manipulaciones físicas que son necesarias para la medición del
tamaño, la preparación final y el almacenamiento de las suspensiones
parenterales, y la cizalladura de fluido encontrados tras la
inyección intravascular. Los inventores también han descubierto que
dichas cápsulas pueden formarse en un periodo de unos pocos
segundos.
También se formaron estructuras muy inusuales
(múltiples esferas pequeñas de fármaco soluble en agua) distribuidas
en el interior de las microcápsulas multilamelares de o/w/o
(aceite/agua/aceite), en el que los esferoides acuosos están
dispuestos en un anillo anular que aparece fijado en un plano dentro
de la esfera más interior. Estas estructuras de anillo permanecen
intactas cuando las microcápsulas "ruedan de un lado para otro"
en la placa del microscopio sin romperse. Estas estructuras
demuestran la capacidad de los procedimientos de la invención para
formar pequeños esferoides que no se funden (unen) en el interior de
una microcápsula más grande. Dichas estructuras pueden utilizarse
ventajosamente para controlar la relación específica de volumen
respecto a área superficial con el fin de controlar la tasa de
difusión de un soluto en dichos esferoides. En particular, la
liberación sostenida de composiciones farmacéuticas contenidas en
dichos esferoides dentro de las microcápsulas puede encontrar
utilidad, como lo harán las aplicaciones en las que el contenido de
dichos esferoides pueda liberarse en la microcápsula por irradiación
ultrasónica.
\vskip1.000000\baselineskip
En los experimentos llevados a cabo en el
STS-52, los inventores coencapsularon
cis-platino
(diaminodicloro-cis-platino;
Bristol Laboratories) con IPO formando microcápsulas a partir de
polímeros solubles en agua utilizando formulaciones espaciales de
solventes acuosos no alcohólicos. Dichas formulaciones encontrarán
particular utilidad en las coencapsulaciones de compuestos
antitumorales junto con medio de radiocontraste para el rastreo de
fármacos en el cuerpo.
Se utilizaron polivinil pirrolidona (PVP),
alcoholde polivinilo, y una lecitina comercialmente disponible
(Centrolex-F®; un compuesto fosfolípido derivado de
la soja y producido por U.S. Soya, Inc.) para formar microcápsulas
multilamelares a 20ºC. Junto con los fármacos fueron coencapsulados
lechos fluorescentes y marcadores fluorescentes para permitir
mediciones de distribución de fármaco dentro de las diversas
láminas, utilizando la microscopía de fluorescencia y análisis de
imágenes digitales. Las microcápsulas finales fueron recuperadas y
resuspendidas en soluciones acuosas, IPO o aceite mineral. Las
microcápsulas formadas mediante estas formulaciones resultaron ser
similares a las realizadas utilizando poliglicéridos solubles en
alcohol. Sin embargo, sin la membrana polimérica soluble en
hidrocarburos estas microcápsulas resultaron ser más frágiles y
friables. Se formó otro tipo único de microcápsula durante estos
experimentos que se caracterizaba por cristales de fármaco formados
dentro del núcleo acuoso interior de las microcápsulas
multilamelares. Se formaron microcápsulas que estaban llenas
(aproximadamente el 65% del compartimento acuoso) de cristales de
cis-platino, y fármaco antitumoral. También se
formaron microcápsulas que contenían cristales de amoxicilina en los
experimentos del STS-52. Estas ilustran que los
fármacos solubles en agua pueden encapsularse a concentraciones muy
elevadas próximo al límite de solubilidad del fármaco. Una vez que
se han formado las microcápsulas el fármaco puede concentrarse aún
más (tal vez por medio del alcohol que absorbe el agua de la fase
acuosa en la que se disuelve el soluto farmacéutico) para formar
cristales grandes que son más estables que el fármaco disuelto
durante periodos de almacenamiento prolongados.
Las microcápsulas formadas a partir de los
procedimientos de primer solvente orgánico/polímero parecían ser
más resistentes (por comparación visual bajo el microscopio) que las
formadas en el STS-52 formadas a partir de los
procedimientos de primer solvente acuoso/polímero. Los experimentos
del STS-56 produjeron nuevamente microcápsulas
líquidas multilamelares (esferas concéntricas múltiples dentro de
esferas) compuestas por capas inmiscibles alternas. Utilizando
lechos fluorescentes de 6,4 micrones y análisis de imágenes, se
descubrió que las microcápsulas más interesantes se formaron en el
intervalo de entre 10 micrones y 15 micrones, de entre 40 micrones
y 50 micrones, de entre 50 micrones y 100 micrones, y de entre 160
micrones y 230 micrones de diámetro. Estas distribuciones de
diámetros resultaron ser de particular interés dado que es conocido
que los usos intraarteriales pueden alojar microcápsulas de entre
50 micrones y 300 micrones de diámetro mientras que las
aplicaciones intravenosas solamente pueden tolerar microcápsulas de
entre 1 micrón y 10 micrones de diámetro. De esta manera,
segregando las microcápsulas en fracciones dimensionadas (cribado),
es posible abordar limitaciones intravasculares particulares.
Tal y como se ha indicado anteriormente, se
formaron microcápsulas que contenían cristales de
cis-platino o amoxicilina.Los cristales
aparentemente se formaron tras la encapsulación. Se formaron varias
microcápsulas que contenían un único cristal, grande cúbico de
cis-platino por lo que llenaba completamente la
esfera interior de manera que solamente aproximadamente el 15% del
volumen interior permanecía como líquido. Se midió un cristal de
cis-platino cúbico, encapsulado, de 48 micrones en
transversal, dentro de una microcápsula de 57 micrones de diámetro.
Tras la formación, algunas de las microcápsulas se dispersaron en
una fase de aceite externa (IPO o aceite mineral) y se les permitió
un curado de ocho días antes del retorno a la Tierra.
Estos experimentos microgravitatorios han
mostrado que la formación de microcápsulas de fase alterna y
multilamelares puede controlarse mediante exposiciones secuenciadas
en el tiempo apropiadas de las fases inmiscibles utilizando
formulaciones de solventes especiales y surfactantes. Una vez
formadas, las microcápsulas permanecen esféricas debido a la
predominante tensión superficial de las fases internas y partición
de la fase polímero/solvente en las interfaces.
Estos experimentos demostraron claramente la
capacidad de utilizar el mezclado de difusión
líquido-líquido para formar microcápsulas únicas
que contienen fármacos hidrofílicos e hidrofóbicos bajo condiciones
de microgravedad. De esta manera, se llevaron a cabo experimentos
en base a la Tierra para complementar y reproducir los experimentos
espaciales. Estos experimentos en base a la Tierra fueron capaces de
reproducir el intervalo de tamaños (de entre 5 micrones y 250
micrones de diámetro) a un grado limitado, pero el tamaño medio de
las microcápsulas obtenidas resultó ser de entre 10 micrones y 40
micrones de diámetro. De todas formas, esto representaba una mejora
considerable sobre los procedimientos de la técnica anterior que
raramente formaban microcápsulas por encima de los 10 micrones de
diámetro. También se observó que los experimentos en base a la
Tierra resultaron en microcápsulas menos resistentes. Esto es muy
probablemente el resultado de las deformaciones dependientes de la
gravedad de las microcápsulas esféricas dado que se forman dando
lugar a zonas de una deposición polimérica más delgada. De esta
manera, las microcápsulas flexibles, formadas bajo condiciones de
microgravedad, resultaron ser de unas distribuciones dimensionales
más uniformes que las formadas en condiciones de
1-g, más resistentes, y presentaban un diámetro
medio superior que las microcápsulas hechas en la Tierra,
principalmente debido a la ausencia de la convección térmica, de
fuerzas de flotabilidad, y a inestabilidades que se producen en las
interfaces inmiscibles. Estos problemas han sido superados con
creces por el nuevo aparato de fabricación tal y como se describe
en una solicitud relacionada, "Microencapsulation and
Electrostatic Processing Device" (Dispositivo de Procesamiento
Electrostático y Microencapsulación''), inventado por Dennis R.
Morrison, Benjamin Mosier y John M. Cassanto, incorporada en la
presente memoria por referencia.
Los experimentos de microgravedad ilustraron la
viabilidad de coencapsular fármacos solubles en agua, fármacos
solubles en hidrocarburos y medio de contraste basado en aceite en
el interior de una película exterior de poliglicérido, soluble en
lípido, que se cura lo suficientemente rápido para ser impermeable
al aceite o a la resolubilización de hidrocarburos. También
permiten la formación y obtención de microcápsulas únicas que duran
lo suficientemente como para ser retirados del solvente externo sin
alteración o destrucción de las fases internas. Se prevé que estas
microcápsulas presentarán varias ventajas sobre los liposomas
convencionales que se diseñan para la inyección intravascular.
Los experimentos de microencapsulación descritos
en la presente memoria fueron llevados a cabo utilizando el aparato
"Materials Dispersion Apparatus" (Aparato de Dispersión de
Materiales) (MDA; ITA, Inc., Exton, PA). El MDA consiste en un
bloque superior y un bloque inferior que contienen cámaras para cada
fluido de muestra. Los bloques se encuentran desalineados en el
lanzamiento de manera que las cámaras no se encuentran en contacto
entre sí. Tras la activación en la microgravedad, los bloques se
mueven para alinear las cámaras de manera que los fluidos pueden
mezclarse mediante una difusión líquido-líquido.
Algunos de los experimentos fueron llevados a cabo con un mezclado
de fluidos de una única etapa, y algunos fueron realizados con una
técnica de mezclado de fluidos de dos etapas que permite la difusión
de un tercer fluido o muestra en la mezcla de los dos primeros
fluidos estando todavía en el medio de microgravedad. En estos
experimentos, las fuerzas de cizalladura son mínimas mientras los
fluidos se mueven para hacer contacto entre sí.
La formación espontánea de microcápsulas
multilamelares que contienen capas alternas de compartimentos de
solventes acuosos e hidrofóbicos depende enormemente de la tensión
interfacial y de la cantidad de mezclado entre las fases líquidas
inmiscibles. En la tierra, este proceso se ve limitado por la
separación dependiente de la gravedad e inducida por la densidad de
los líquidos inmiscibles en capas horizontales estratificadas. En
condiciones de microgravedad, este proceso depende enormemente de
las energías libres de superficie de los diferentes líquidos, pero
es independiente de la convección inducida por la densidad o de la
separación de fases flotantes. En las formulaciones se han incluido
polímeros de alto peso molecular, solubles en hidrocarburos, para
formar "películas" permeables y flexibles o recubrimientos
exteriores alrededor de las microcápsulas líquidas dado que son
creadas mediante mecanismos de partición de fases. También es
posible formar dichas barreras poliméricas entre capas internas.
Las microcápsulas pueden formarse y curarse sin deformaciones por
contacto con las paredes contenedoras.
Más concretamente, la coencapsulación de un
fármaco (cis-platino) antitumoral, soluble en agua,
y un medio de radiocontraste (IPO), en microgravedad, ha producido
un único sistema de administración de fármacos que puede
visualizarse mediante escaneado radiológico de tomografía
computerizada para asegurar que el fármaco citotóxico es
administrado directamente al tumor diana. Se han desarrollado
microcápsulas multicapa que pueden proporcionar un nuevo sistema de
administración intravascular para tejidos dirigidos y para la
liberación secuencial, sostenida y controlada de múltiples fármacos
antitumorales. Este procedimiento ha resultado en la formación de
microcápsulas esféricas flexibles de tamaños más uniformes que
pueden proporcionar unas densidades máximas de compactado y una
máxima administración de fármacos a los órganos o tumores diana.
Las microcápsulas multicapa pueden diseñarse
para proteger formas activas de las uroquinasa y otras enzimas
trombolíticas hasta que son administradas y retenidas en el sitio
local de un coagulo de sangre, en el que pueden difundir dosis
terapéuticas de la enzima para disolver la embolia no deseada. Estos
procedimientos de difusión de líquidos inmiscibles podrían
utilizarse para la encapsulación de determinados fármacos lábiles
para realizar microcápsulas para sistemas de administración de
fármacos de propósito especial, especialmente los diseñados para
administrar fármacos a través de la mucosa nasal o bucal o por medio
de la inhalación directamente a los pulmones. Entre los ejemplos se
incluye la administración protegida del mucolítico DNAse para un
tratamiento de liberación sostenida de la fibrosis cística y de
1-antitripsina para pacientes con deficiencias en el
epitelio pulmonar.
\vskip1.000000\baselineskip
Una segunda etapa utilizada con frecuencia
incluye la dispersión de las microcápsulas (una vez que han sido
formadas) en diferentes solventes acuosos/poliméricos o en una fase
de aceite puro. Un atributo único de las microcápsulas formadas
mediante estos procedimientos es que no se vuelven a disolver en una
fase externa aceitosa, a pesar de que la película exterior
semipermeable sea hidrofóbica. Esto produce una suspensión en
portadores líquidos que habitualmente se utilizan para la
administración intravascular.
Entre los ejemplos de soluciones acuosas
adecuadas se incluirían, aunque sin limitarse a ellos, dextrano,
PEG, salina tamponada con fosfato (PBS), solución de Ringer, o
cualquier solución conocida en la técnica que se selecciona de
manera que la membrana presenta una solubilidad baja o nula en dicho
medio. Las soluciones son esterilizadas previamente a la
redispersión y se seleccionan para la aplicación particular, como
por ejemplo la inyección a un humano. Es una ventaja adicional, que
la redistribución en estas soluciones inhiba la coalescencia.
\vskip1.000000\baselineskip
Las siguientes formulaciones han sido utilizadas
con particular éxito por los inventores tanto en procedimientos de
gravedad normal de la Tierra como de microgravedad de realización de
microcápsulas.
- \quad
- Fluido 1 (hidrocarburo). El primer solvente es un fluido de hidrocarburo (etil alcohol, metil alcohol o isopropil alcohol) con un HLB bajo o medio. Se utilizan uno o más cosolventes (que también pueden actuar como cosurfactantes). Se añaden pequeñas concentraciones de aceite y agua. En esta mezcla, el monoglicérido o poliglicérido se disuelve hasta un 5% en p/v. El siguiente es un ejemplo:
- 88% IPA
- 2,5% m-Heacanol
- 2,5% n-Heptanol
- 5% IPO
- 2% H_{2}O
- 5% GMS
- \quad
- Fluido 2 (acuoso). El segundo solvente es agua más surfactantes (por ejemplo ésteres de sorbitán polietoxilado; polietilenglicol). Se añaden un polisacárido (Dextrano) y salina normal (0,9%) que ayuda a conseguir la concentración de micelas crítica deseada. Se añade una composición soluble en agua. El siguiente es un ejemplo:
- 1% PEG 4000
- 5% Dextrano-40 (MW=40.000)
- 0,9% Cloruro Sódico
- 2% Monooleato de Sorbitán/20 moles de óxido de etileno
- Agua (hasta un 100% de volumen)
- Fármaco disuelto a una concentración especificada (según dosis y tasa de liberación necesarias)
- \quad
- Fluido 3 (aceite). Un aceite, inmiscible con los dos primeros fluidos en los que la "película exterior" de la microcápsula es insoluble de manera que las microcápsulas suspendidas pueden administrarse cuando se necesita una administración no acuosa. La sumersión de las microcápsulas en el aceite también puede ayudar en el curado o en la polimerización de la "película exterior". Una forma de realización preferente del vehículo de aceite es el aceite de semillas de amapola halogenado que también sirve como medio de radiocontraste.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Solvente principal - etil alcohol
- \quad
- Cosolventes - (cosurfactantes) son alcoholes normales - C4 a C8
- Solventes de constante dieléctrica elevada -
- Tetrahidrofurano
- Dioxano
- Acetonitrilo
- Dimetilformamida
- Dimetilacetamida
- Dimetilsulfóxido
- \quad
- Aceite líquidos de radiocontraste densos s.a. aceites no saturados halogenados por ejemplo aceite de semillas de amapola halogenado, aceite de semillas de algodón, aceite de cártamo, aceite de oliva, aceite de canola (colza), aceite de cacahuete, aceite de sésamo, aceite de maíz.
- \quad
- También pueden utilizarse aceites saturados, s.a. aceite mineral pesado, petrolatum líquido
- \quad
- Polímeros - utilizados para formar la "película exterior" en las microcápsulas
- Monoglicéridos, poliglicéridos, - esp. ésteres de glicerol en el intervalo de C12 - C22, por ejemplo, monoestearato, diestearatos,
- Monooleatos,
- Monolauratos y aceite de oliva
- Poliglicéridos - colesterol, esteroles de plantas de cera (estigmaesterol, fitoesterol, campesterol)
- Fosfolípidos - lecitinas (fosfatidilcolina) y/o combinaciones con mono/poliglicéridos
- Polivinil pirrolidona
- Poliacrilatos
- PEG-hidroxipropil metacrilato
- PEG 4.000-12.000
- Polietilenglicol/copolímeros acrilato
- Polietilenglicol/copolímeros dextrano
\newpage
- Fluido 1: solvente principal
- 75-95%
- Cosolventes
- 1-10%
- Aceite
- 1-10%
- Polímero
- 1-5%
- Agua
- 1-20%
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- PEG 400-20000
- \quad
- Dextrano (MW = 40.000-100.000)
- \quad
- 0,9% Cloruro sódico
- \quad
- Monolaurato de sorbitán/20 moles de óxido de etileno
- \quad
- Equilibrio es agua
- \quad
- Fármaco disuelto a concentración saturada o especificada (según dosis y tasa de liberación necesarias)
\vskip1.000000\baselineskip
- PEG
- 1-5%
- Dextrano (MW=40.000-100.000)
- 5-10%
- Cloruro sódico
- 0,9%
- Monolaurato de sorbitán/20ETO
- 1-5%
Agua (equilibrio de volumen)
Concentración de fármaco saturada o
especificada
\vskip1.000000\baselineskip
Líquidos de radiocontraste densos s.a. aceites
no saturados yodados por ejemplo aceite de semillas de amapola,
aceite de semillas de algodón, aceite de cártamo, aceite de oliva,
aceite de canola (colza), aceite de sésamo, aceite de maíz.
También pueden utilizarse aceites saturados,
s.a. aceite mineral pesado y petrolatum.
Puede utilizarse aceite al cien por cien o
unamezcla como vehículo portador para las microcápsulas
suspendidas.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Fluido 1 (acuoso). El solvente principal es agua, uno o más cosolventes (que también pueden actuar como surfactantes), y se disuelve lecitina hasta un 5% p/v para formar la película exterior en las microcápsulas. El siguiente es un ejemplo: 3% de alcohol de polivinilo disuelto en una mezcla de
- 20% isopropil alcohol
- 80% agua
- \quad
- Fluido 2 (acuoso). El solvente principal es agua más surfactantes (por ejemplo ésteres de sorbitán polietoxilado; polietilenglicol) y más un polisacárido (Dextrano) y salina normal (0,9%) que ayuda a conseguir la concentración de micelas crítica deseada. El siguiente es un ejemplo: 1% PEG 4000
- 5% Dextrano-70 (MW=\sim70.000)
- 0,9% Cloruro Sódico
- 2% Monooleato de sorbitán/20 moles de óxido de etileno
- Agua (hasta un 100% de volumen)
- Fármaco disuelto a una concentración saturada o especificada (según dosis y tasa de liberación necesarias)
- \quad
- Fluido 3 (acuoso). Una solución de PEG y PVP que puede ayudar en el curado o la polimerización de la "película exterior".
- 1% Polivinil pirrolidona
- 4% PEG 4000
- 5% Dextrano-70 (MW=\sim70.000)
- Equilibrio es 0,9% cloruro sódico
\vskip1.000000\baselineskip
Se formaron microcápsulas multicapa en
condiciones de microgravedad, que contenían
cis-platino y partículas ferromagnéticas
suministradas por Ceramic Magnetics, Inc. (Fairfeld, NJ). Estas
partículas ferromagnéticas (< 1 \mu) están compuestas por 66%
peso Fe_{2}O_{3}, 9% peso NiO y 25% peso ZnO. Estas partículas
cerámicas/magnéticas) tienen una temperatura de Curie de
aproximadamente 48ºC (figura 2). Las microcápsulas tienen unos
diámetros de entre 10 \mu y 100 \mu. Las microcápsulas de este
tamaño son adecuadas para la quimioembolización de tumores
vasculares sólidos como por ejemplo los que se encuentran en el
bazo, hígado, riñón o páncreas, por lo que el fármaco antitumoral,
cis-platino en este caso, puede liberarse mediante
la exposición a un campo electromagnético externamente activado.
Para el uso en el cáncer de páncreas o en el
cáncer de hígado, por ejemplo, las microcápsulas descritas en este
ejemplo serían infundidas a una arteria designada o directamente
inyectadas al tumor durante un procedimiento quirúrgico. El
paciente es sometido a un campo electromagnético de entre 85 KHz y
100 KHz, o un campo magnético de aproximadamente 0,1 Tesla por un
periodo de aproximadamente 10 minutos con el fin de liberar el
fármaco. En formas de realización alternativas, podría usarse un
campo electromagnético de entre aproximadamente 20 KHz y
aproximadamente 500 KHz.
Para formas de realización que utilizan un campo
magnético como el que se describe en este ejemplo, las microcápsulas
se diseñan de tal manera que la SAR de la micropartícula es mucho
mayor que la de la membrana de la microcápsula y el tejido. Por lo
general la SAR de las microcápsula es de entre 2 y 4 veces mayor que
la SAR de la membrana exterior, que es de entre 4 y 10 veces mayor
que la SAR del tejido circundante.
También se entiende que los presentes
procedimientos pueden utilizarse con otras formas de terapia
incluyendo, pero sin limitarse a ello, la terapia por hipertermia.
El uso de la combinación de hipertermia y fármacos quimioterápicos
es descrito en los títulos Urano et al., Local Hyperthermia
in Combination with Chemotherapeutic Agents, en Interstitial
Hyperthermia, L. Handl-Zeller (ed.)
Springer-Verlag, New York, 1992, incorporados en la
parte pertinente en la presente memoria por referencia.
La presente invención ha sido descrita en
términos de formas de realización particulares consideradas o
propuestas para comprender modos preferentes para la práctica de la
invención. Los expertos en la materia entenderán que, en vista de
la presente descripción, pueden realizarse en las formas de
realización particulares ejemplificadas numerosas modificaciones y
numerosos cambios sin alejarse del alcance de la invención. Por
ejemplo, una forma de realización alternativa incluye el uso de
ciclodextrina soluble en agua (en la fase hidrofílica) que tiene un
centro hidrofóbico que puede por si mismo retener fármacos
hidrofóbicos, actuando por tanto como portador de fármacos
hidrofóbicos dentro de la fase acuosa. Otra forma de realización
alternativa permite, una vez que han sido formadas las
microcápsulas, la aplicación de recubrimientos exteriores
poliméricos auxiliares mediante procedimientos convencionales
(recubrimiento electrostático, aerosolización y secado, etc.). Esto
se hace posible diseñando el preciso maquillaje químico de la
película exterior polimérica inicial de tal manera que sea
compatible tanto con la difusión del fármaco como con el
recubrimiento auxiliar a aplicar. Cuando se utilizan surfactantes
para facilitar la adhesión de la tercera solución o recubrimiento
auxiliar debe seleccionarse un valor de HLB que sea compatible con
el valor de HLB del recubrimiento exterior existente que ya ha sido
formado, de manera que la solución que contiene el recubrimiento
auxiliar humedezca la superficie del recubrimiento exterior
existente, para permitir la deposición del recubrimiento auxiliar.
Esto contrasta con los liposomas convencionales cuya membrana
exterior presenta una composición variable, dependiendo de la
separación de fases de los fosfolípidos y aditivo colesterol cuando
se forma cada liposoma. Otra forma de realización alternativa
incorpora un medio de absorción de energía (por ejemplo, un
fotoactivador) que puede absorber radiación electromagnética,
ultravioleta, infrarroja, ultrasónica, de radiofrecuencia y de
microondas y por tanto causar la activación de un componente
farmacológico efímero justo antes de la administración o una vez
que las microcápsulas han alcanzado el sitio diana. Otra forma de
realización incorpora partículas magnéticas y campos magnéticos o
mecanismos electroforéticos de flujo libre, etc. para facilitar la
dispersión o el transporte de una fase a través de la interfaz
inmiscible en la otra fase. Esto ha sido demostrado como una forma
de mezclado unidireccional y de una única pasada, siendo la
microgravedad donde mejor es explotada o aprovechada.Otra forma de
realización incluye la adición de determinados anticuerpos
(hidrofóbicos) a la película polimérica que proporciona a las
microcápsulas especificidad de sitio siendo capaz de enlazar dos
células diana (por ejemplo, tumores) mientras que el fármaco
retenido se difunde para proporcionar las dosis máximas a dichas
células con dicho sitio antigénico. Otra forma de realización hace
uso de polietilenglicol (PEG) añadido a fármacos proteínicos o
peptídicos y una película exterior polimérica personalizada que
permite difundir el complejo fármaco-PEG fuera de
la microcápsula como una entidad intacta. Esto permite al fármaco
resistir la unión de anticuerpos y permanecer en el torrente
sanguíneo por más tiempo como se ha descubierto en el tipo
Pegnology 4 de complejos de fármacos desarrollado por Enzon, Inc.,
siendo la mejora la administración de este complejo en las
microcápsulas adaptadas y la liberación controlada del complejo a
través de la película exterior polimérica especialmente diseñada.
Otra forma de realización hace referencia a microcápsulas que
contienen partículas magnéticas que pueden ser calentadas mediante
la exposición a un campo electromagnético de manera que las
partículas pueden fundir el recubrimiento polimérico y liberar el
contenido sin causar extensos daños hipertérmicos a los tejidos
circundantes. Otras formas de realización incluyen el uso de las
microcápsulas de la invención para la producción de cristales
dentro de una fase acuosa. Todas estas modificaciones están
destinadas a estar incluidas dentro del alcance de las
reivindicaciones adjuntas.
Las formas de realización descritas en la
presente memoria únicamente son ejemplares, y nunca limitativas.
Son posibles muchas variaciones y modificaciones de la invención y
de los aparatos descritos en la presente memoria y las mismas se
encuentran dentro del alcance de la invención. Por consiguiente, el
alcance de protección no se ve limitado por la anterior
descripción, sino que está únicamente limitado por las
reivindicaciones que a continuación siguen, incluyendo dicho
alcance todos los equivalentes del objeto de las
reivindicaciones.
Todas las patentes y publicaciones mencionadas
en esta especificación son indicativas del nivel de conocimientos de
aquellos conocedores de la materia a quienes pertenece la
invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Son incorporadas específicamente en la presente
memoria, por referencia, las siguientes referencias, por el hecho de
que proporcionan detalles de los procedimientos que son
complementarios a los descritos en la presente memoria.
Allen, T. M.. Interactions of Drug
Carriers with the Mononuclear Phagocytic System, in G. Gregoriadis
(Ed.) Liposomes as Drug Carriers, John Wiley & Sons Ltd.,
New York, pp.37-50, 1988.
Allen, T. M., Mehra, T.,
Hansen, C. and Chin, Y.C., Stealth Liposomes: An
Improved Sustained Release System for
1-b-D-Arabinofuranosylcytosine,
Cancer Res. 52:2431-39, 1992.
Bhargava, H. N., Narurkar, A., and
Lieb, L. M., Using Microemulsions for Drug Delivery,
Pharmaceutical Technology, pp. 46-54, March
1987.
Chang, T.M.S., The in vivo effect
of semi-permeable microcapsules containing
L-asparaginase on 6C3HED
lymphosarcoma, Nature, 229:117-178, 1971.
lymphosarcoma, Nature, 229:117-178, 1971.
Chelvi, T.P. and Ralhan, R.,
Int. J. Hyperthermia, 11(5):685-695,
1995.
Chen, J.S. et al., Development of
Ni-4 wt % Si Thermoseeds for Hyperthermia Cancer
Treatment, J. Biomedical Materials Research
22:303-319, 1988.
Chou C.K. et al.,
Bioelectromagnetics 5:435-441, 1984.
Gabizon, A., et al.,
Liposome-Associated Doxorubicin: Preclinical
Pharmacology and Exploratory Clinical Phase, in G.
Lopez-Berestein and I.J. Fidler (Eds.) Therapy of
Infectious Diseases and Cancer, Alan R. Liss, Inc., New York,
pp. 189-203, 1992.
Gautherie M. (ed.) Methods of External
Hyperthermic Heating, Springer-Verlag, New
York, 1990.
Guy, A.W., IEEE Trans. Microwave
Theory and Tech. 32:1182-1200.
Halbert, G.W., Smart, J.B.,
Florence, A.T., The Incorporation of Lipid Soluble
Antineoplastic Agents into
Microemulsions-Protein-free
Analogues of Low Density Lipoprotein, Int. J. Pharm. 21:
219-232, 1984.
Hand, J.W., Biophysics and Technology of
Electromagnetic Hyperthermia, in Gauthereie, M., (Ed.) Methods of
External Hyperthermic Heating,
Springer-Verlag, New York, pp.
16-24, 1991.
Kakinuma, K. et al., Targeting
chemotherapy for malignant brain tumors using thermosensitive
liposomes and localized hyperthermia, J. Neurosurgery
84:180-184, 1996.
Kakinuma, K. et al., Drug delivery
to the brain using thermosensitive liposomes and local hyperthermia,
Int. J. Hyperthermia, 12:157-165,
1996.
Kimler, B. F, et al., Combination
of Aziridinylbenzoquinone and Cis-platinum with
Radiation Therapy in the 9L Rat Brain Tumor Model, Int. J.
Radiation Oncology Biol. Phys, 26: 445-450,
1993.
Lele P.P. et al., Brit. J. Cancer
45 (Suppl V) 108:121, 1982.
Magin, R.L., Hunter, J.M.,
Meisman, M.R., and Bark, G.A., Effect of vesicle size
on clearance, distribution and tumor uptake of temperature sensitive
liposomes, Cancer Drug Delivery 3:223-237,
1986.
Madsen E.L. et al., Ultrasound Med.
Biol. 8:277-287, 1982.
McCutcheon's Detergents and Emulsifiers,
1979, North American Edition, McCutcheon Division, MC
Publishing Co., 175 Rock Road, Glen Rock, NJ 07452.
Mitchell, J.B., Cook, J.A., and
Russo, A., Biological Basis for Phototherapy, in Morstyn, G,
and Kaye, A.H. (Eds.), Phototherapy of Cancer, Harwood Academic
Pub., New York, pp.1-22, 1990.
Morrison, D., Mosier, B., and
Cassanto, J.M., Immiscible phase microencapsulation of drugs
in microgravity, 6th International Symposium on Experimental Methods
for Microgravity Materials Sciences, published by Minerals,
Metals and Materials Society, Warrendale, PA, R.A. Schiffman
& J.B. Andrews, Eds., pp 199-207,
1994.
Parikl, 1. and Stem, W.
Microcrystal® Drug Delivery System, in Harvey S. Price (Ed) The
Biotechnology Report 1993/94, Bookbuilders, Ltd., Hong
Kong, pp. 219-220, 1994.
Talsma, H. and Crommelin, D. J.
A., Liposomes as Drug Delivery Systems, Part 1: Preparation.
Pharmaceutical Technology, pp. 96-106,
October 1992.
Wright, K.C., Wallace, S.,
Mosier, B. and Mosier, D., Microcapsules for Arterial
Chemoembolization: Appearance and In Vitro Drug Release
Characteristics, J. Microencapsulation
5:13-20, 1988.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de referencias citadas por el
solicitante es solamente para conveniencia del lector. La misma no
forma parte del documento de patente europea. A pesar de que se ha
tenido mucho cuidado durante la recopilación de las referencias, no
deben excluirse errores u omisiones y a este respecto la OEP se
exime de toda responsabilidad.
- \bullet US 5470582 A
- \bullet US 2971916 A
- \bullet US 4898734 A
- \bullet US 4247406 A
- \bullet US 5417982 A
- \bullet US 4345588 A
- \bullet US 4933185 A
- \bullet US 4652257 A, Chang
\bullet Local Hyperthermia in Combination with
Chemotherapeutic Agents. URANO et al. Interstitial
Hyperthermia. Springer-Verlag,
1992
\bullet Interactions of Drug Carriers with the
Mononuclear Phagocytic System. ALLEN, T. M. Liposomes as Drug
Carriers. John Wiley & Sons Ltd, 1988,
37-50
\bulletALLEN, T. M.; MEHRA, T.;
HANSEN, C.; CHIN, Y.C. Stealth Liposomes: An Improved
Sustained Release System for
1-b-D-Arabinofuranosylcytosine.
Cancer Res., 1992, vol. 52,
2431-39
\bulletBHARGAVA, H. N.;
NARURKAR, A.; LIEB, L. M. Using Microemulsions for
Drug Delivery. Pharmaceutical Technology, March 1987,
46-54
\bulletCHANG, T.M.S. The in
vivo effect of semi-permeable microcapsules
containing L-asparaginase on 6C3HED lymphosarcoma.
Nature, 1971, vol. 229, 117-178
\bulletCHELVI, T.P.; RALHAN, R.
Int. J. Hyperthermia, vol. 11 (5),
685-6951995
\bulletCHEN, J.S. et al.
Development of Ni-4 wt % Si Thermoseeds for
Hyperthermia Cancer Treatment. J. Biomedical Materials
Research, 1988, vol. 22, 303-319
\bulletCHOU C.K. et al.
Bioelectromagnetics, 1984, vol. 5,
435-441
\bullet Liposome-Associated
Doxorubicin: Preclinical Pharmacology and Exploratory Clinical
Phase. GABIZON, A. et al. Therapy of Infectious
Diseases and Cancer. Alan R. Liss, Inc, 1992,
189-203
\bullet Methods of External Hyperthermic
Heating. Springer-Verlag, 1990
\bulletGUY, A.W. IEEE Trans.
Microwave Theory and Tech., vol. 32,
1182-1200
\bulletHALBERT, G.W.; SMART,
J.B.; FLORENCE, A.T. The Incorporation of Lipid Soluble
Antineoplastic Agents into
Microemulsions-Protein-free
Analogues of Low Density Lipoprotein. Int. J. Pharm.,
1984, vol. 21, 219-232
\bulletWRIGHT, K.C.; WALLACE,
S.; MOSIER, B.; MOSIER, D. Microcapsules for Arterial
Chemoembolization: Appearance and In Vitro Drug Release
Characteristics. J. Microencapsulation, 1988, vol. 5,
13-20
\bullet Biophysics and Technology of
Electromagnetic Hyperthermia. HAND, J.W. Methods of External
Hyperthermic Heating. Springer-Verlag,
1991, 16-24
\bulletKAKINUMA, K. et al.
Targeting chemotherapy for malignant brain tumors using
thermosensitive liposomes and localized hyperthermia. J.
Neurosurgery, 1996, vol. 84, 180-184
\bulletKAKINUMA, K. et al. Drug
delivery to the brain using thermosensitive liposomes and local
hyperthermia. Int. J. Hyperthermia, 1996, vol. 12,
157-165
\bulletKIMLER, B. F et al.
Combination of Aziridinylbenzoquinone and
Cis-platinum with Radiation Therapy in the 9L Rat
Brain Tumor Model. Int. J. Radiation Oncology Biol. Phys,
1993, vol. 26, 445-450
\bulletLELE P.P. et al. Brit. J.
Cancer, 1982, vol. 45 (V), 108-121
\bulletMAGIN, R.L.; HUNTER,
J.M.; MEISMAN, M.R.; BARK, G.A. Effect of vesicle size
on clearance, distribution and tumor uptake of temperature sensitive
liposomes. Cancer Drug Delivery, 1986, vol. 3,
223-237
\bulletMADSEN E.L. et al.
Ultrasound Med. Biol., 1982, vol. 8,
277-287
\bullet McCutcheon's Detergents and
Emulsifiers. MC Publishing Co, 1979
\bullet Biological Basis for Phototherapy.
MITCHELL, J.B.; COOK, J.A.; RUSSO, A.
Phototherapy of Cancer. Harwood Academic Pub, 1990,
1-22
\bullet Immiscible phase microencapsulation of
drugs in microgravity. MORRISON, D.; MOSIER, B.;
CASSANTO, J.M. 6th International Symposium on Experimental
Methods for Microgravity Materials Sciences. Minerals, Metals and
Materials Society, 1994, 199-207
\bullet Microcrystal® Drug Delivery System.
PARIKL, 1.; STEM, W. The Biotechnology Report
1993/94. Bookbuilders, Ltd, 1994,
219-220
\bulletTALSMA, H.; CROMMELIN,
D. J. A. Liposomes as Drug Delivery Systems. Preparation.
Pharmaceutical Technology, October 1992,
96-106.
Claims (34)
1. Composición que comprende microcápsulas, en
la que dichas microcápsulas comprenden una o más fases líquidas
internas contenidas dentro de una membrana exterior polimérica que
presenta una temperatura de fusión, y que comprenden adicionalmente
una o más partículas magnéticas en una fase líquida interna en
contacto con la membrana exterior; y en la que además, una primera
parte de dichas microcápsulas presenta una membrana exterior
polimérica con un diferente punto de fusión al de la segunda parte
de dichas microcápsulas, y en la que además el primer punto de
fusión y el segundo punto de fusión son inferiores al punto de Curie
de las partículas magnéticas, en la que dichas microcápsulas
contienen un fármaco en por lo menos una de dichas fases líquidas
internas.
2. Composición que comprende microcápsulas, y en
la que dichas microcápsulas comprenden dos o más fases líquidas
inmiscibles internas contenidas dentro de una membrana exterior
polimérica que presenta una temperatura de fusión, y que comprenden
adicionalmente una o más partículas magnéticas en una fase líquida
interna en contacto con la membrana exterior, en la que las
partículas magnéticas presentan un punto de Curie superior a la
temperatura de fusión de la membrana polimérica, y en la que además
una primera parte de dichas microcápsulas contienen partículas
magnéticas con un segundo punto de Curie, y en la que además el
primer punto de Curie es diferente al segundo punto de Curie, y en
la que las microcápsulas contienen un fármaco.
3. Composición según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, en la que dicha primera parte contiene un fármaco
diferente al de la segunda parte.
4. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un fármaco
anticancerígeno.
5. Composición según la reivindicación 4, en la
que dicho fármaco anticancerígeno es cis-platino,
doxorubicina, daunorubicina, diaziquona, paclitaxel, aziridinilo
benzoquinona, muramiltripeptido, 5-fluoruracilo.
6. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un
anestésico.
7. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que se definen adicionalmente porque contienen un
medio que se vuelve radiopaco por medio de un cambio de estado de
oxidación al ser expuesto a la energía.
8. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco s un antibiótico
sistémico.
9. Composición según la reivindicación 8, en la
que dicho antibiótico es penicilina, cefalosporina, ampicilina o
amoxicilina.
10. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un antifúngico
sistémico.
11. Composición según la reivindicación 10, en
la que dicho antifúngico es nistatina o griseofulvina.
12. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un antiviral
sistémico.
13. Composición según la reivindicación 12, en
la que dicho antiviral es yododesoxiuridina o riboviran.
14. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un
antiparasítico.
15. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un
antiinflamatorio.
16. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que el fármaco es una hormona, un
esteroide, hidrocortisona, dexametasona, una quinolona sistémica, un
aminoglicósido, un antídoto, una anticolinesterasa, un antídoto para
la intoxicación por metal, un agente citotóxico, un inmunomodulador,
una citocina, una interleucina, una
alfa-antitripsina, un regulador del metabolismo
óseo, un agente hipercalcémico, un agente cardiovascular, un
betabloqueador, un vasodilatador cerebral, un mejorador del
metabolismo cerebral, un factor estimulante de colonias, un factor
estimulante de colonias de granulocitos, un factor estimulante de
colonias de macrófago-granulocitos, un vasopresor,
un agente diabético local, un mejorador del "CT Scan", un
agente angiocardiográfico, un agente de deficiencia de la adenosina
deaminasa, un inhibidor de gonadotropinas, un inhibidor de
esteroides corticoadrenales, un estimulante de la hormona liberadora
de gonadotropina, una urofolitropina, un relajante muscular, un
agente bloqueador neuromuscular, un análogo de prostaglandina, una
prostaglandina, un inhibidor de la prostaglandina, un agente de
terapia respiratoria, un anticolinérgico, un estimulador beta
andrenérgico, metoclopramida, tetrahidrocannabinol o un agente
simpatomimético.
17. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicho fármaco es un agente
trombolítico.
\newpage
18. Composición según la reivindicación 17, en
la que dicho agente trombolítico es uroquinasa (uPA), activador
tisular de plasminógeno (tPA) o estreptoquinasa.
19. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que las partículas magnéticas
comprenden un recubrimiento cerámico.
20. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que las partículas magnéticas
comprenden un recubrimiento de metacrilato, alginato, dextrano,
poliacrilato o polivinil pirrolidona.
21. Composición según la reivindicación 19 o la
reivindicación 20, en la que las partículas magnéticas comprenden
óxidos de hierro, níquel y zinc.
22. Composición según la reivindicación 19 o la
reivindicación 20, en la que las partículas magnéticas comprenden
aproximadamente un 66% en peso de Fe_{2}O_{3}, aproximadamente
un 9% en peso de NiO, y aproximadamente un 25% en peso de ZnO.
23. Composición según la reivindicación 19 o la
reivindicación 20, en la que las partículas magnéticas comprenden
Fe_{3}O_{4}, óxidos de cobre, oro, plata o combinaciones de los
mismos.
24. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que las partículas magnéticas tienen
una temperatura de Curie de entre aproximadamente 41ºC y
aproximadamente 95ºC.
25. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 300
micrones y aproximadamente 500 micrones.
26. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 1
micrón y aproximadamente 500 micrones.
27. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 50
micrones y aproximadamente 300 micrones.
28. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 30
micrones y aproximadamente 50 micrones.
29. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 20
micrones y aproximadamente 30 micrones.
30. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que presentan un diámetro de entre aproximadamente 1
micrón y aproximadamente 20 micrones.
31. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que dicha composición comprende
microcápsulas que se definen adicionalmente porque contienen un
medio de radiocontraste.
32. Composición según la reivindicación 31, en
la que el medio de radiocontraste en un aceite halogenado.
33. Composición según la reivindicación 31, en
la que el medio de radiocontraste es aceite de semillas de amapola
halogenado, aceite de semillas de algodón, aceite de soja, aceite de
cártamo, aceite se semillas de girasol, aceite de semillas de
sésamo, o aceite de canola (colza).
34. Composición según la reivindicación 31, en
la que el medio de radiocontraste es aceite de semillas de amapola
halogenado.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US7975898A | 1998-05-15 | 1998-05-15 | |
US79758 | 1998-05-15 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2310938T3 true ES2310938T3 (es) | 2009-01-16 |
Family
ID=22152620
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES99923048T Expired - Lifetime ES2310938T3 (es) | 1998-05-15 | 1999-05-14 | Microcapsulas de activacion externa. |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP1077686B1 (es) |
AT (1) | ATE403419T1 (es) |
DE (1) | DE69939258D1 (es) |
ES (1) | ES2310938T3 (es) |
WO (1) | WO1999059556A1 (es) |
Families Citing this family (19)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10025803A1 (de) * | 2000-05-24 | 2001-12-20 | Jms Co Ltd | Polymeroberfläche mit biologisch aktiven Eigenschaften und Verfahren zu ihrer Herstellung |
DE10141674A1 (de) | 2000-09-01 | 2002-03-14 | Henkel Kgaa | Reaktionsklebstoff mit mindestens einer mikroverkapselten Komponente |
DE10115740A1 (de) | 2001-03-26 | 2002-10-02 | Ulrich Speck | Zubereitung für die Restenoseprophylaxe |
US7264629B2 (en) | 2001-11-09 | 2007-09-04 | Qlt, Inc. | Photodynamic therapy for the treatment of hair loss |
WO2003039596A1 (en) | 2001-11-09 | 2003-05-15 | Qlt Inc. | Photodynamic therapy for the treatment of hair loss |
DE10244847A1 (de) | 2002-09-20 | 2004-04-01 | Ulrich Prof. Dr. Speck | Medizinische Vorrichtung zur Arzneimittelabgabe |
EP1668424A4 (en) * | 2003-09-12 | 2009-11-25 | Onkor Pharmaceuticals Inc | MAGNETICALLY DETERMINABLE PARTICLES WITH MAGNETIC COMPONENTS AND BIOCOMPATIBLE POLYMERS FOR THE LOCAL DELIVERY OF BIOLOGICALLY ACTIVE ACTIVE SUBSTANCES |
DE102004028156A1 (de) * | 2004-06-09 | 2006-01-05 | Kalbe, Jochen, Dr. | Kombination von Radiowellen mit pharmakologisch aktiven Substanzen |
US10675298B2 (en) | 2006-07-27 | 2020-06-09 | Boston Scientific Scimed Inc. | Particles |
WO2008014060A2 (en) * | 2006-07-27 | 2008-01-31 | Boston Scientific Limited | Microparticle |
WO2008028264A1 (en) * | 2006-09-05 | 2008-03-13 | Centro Brasileiro De Pesquisas Fisicas-Cbpf | Process for the production of micro-capsules having magnetic properties, product obtained therefrom and method for the controlled release of active substances |
RU2373957C2 (ru) | 2006-10-13 | 2009-11-27 | Александр Метталинович Тишин | Носитель для лекарственных средств и биологически активных веществ для лечения и диагностики и применение его для создания лекарственных средств и способа регулируемой управляемой доставки лекарственного средства или биологически активного вещества с регулируемой десорбцией его |
GB0811856D0 (en) | 2008-06-27 | 2008-07-30 | Ucl Business Plc | Magnetic microbubbles, methods of preparing them and their uses |
WO2010077774A2 (en) | 2008-12-17 | 2010-07-08 | Dow Corning Corporation | Suspensions of silicate shell microcapsules for temperature controlled release |
AU2009346580B2 (en) * | 2009-05-21 | 2014-01-23 | Institute Of Life Sciences | Water dispersible glyceryl monooleate magnetic nanoparticle formulation |
DE102009038239A1 (de) * | 2009-08-20 | 2011-03-03 | Siemens Aktiengesellschaft | Verfahren und Vorrichtungen zur Untersuchung eines bestimmten Gewebevolumens in einem Körper sowie ein Verfahren und eine Vorrichtung zur Segmentierung des bestimmten Gewebevolumens |
EP2519230B1 (en) | 2009-12-31 | 2018-10-10 | Marius Pharmaceuticals LLC | Modulation of solubility, stability, absorption, metabolism, and pharmacokinetic profile of lipophilic drugs by sterols |
ES2907284T3 (es) | 2013-03-15 | 2022-04-22 | Marius Pharmaceuticals Llc | Formulaciones de emulsión |
CN110731949A (zh) * | 2018-07-19 | 2020-01-31 | 康码(上海)生物科技有限公司 | 一种胶囊及其使用方法 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4652257A (en) * | 1985-03-21 | 1987-03-24 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Magnetically-localizable, polymerized lipid vesicles and method of disrupting same |
FR2650572B1 (es) * | 1989-08-02 | 1991-10-18 | Clairefontaine Papeteries | |
US5542935A (en) * | 1989-12-22 | 1996-08-06 | Imarx Pharmaceutical Corp. | Therapeutic delivery systems related applications |
US5827531A (en) * | 1994-12-02 | 1998-10-27 | The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration | Microcapsules and methods for making |
-
1999
- 1999-05-14 AT AT99923048T patent/ATE403419T1/de not_active IP Right Cessation
- 1999-05-14 EP EP99923048A patent/EP1077686B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1999-05-14 ES ES99923048T patent/ES2310938T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1999-05-14 DE DE69939258T patent/DE69939258D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1999-05-14 WO PCT/US1999/010656 patent/WO1999059556A1/en active Application Filing
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO1999059556A1 (en) | 1999-11-25 |
ATE403419T1 (de) | 2008-08-15 |
EP1077686A1 (en) | 2001-02-28 |
DE69939258D1 (de) | 2008-09-18 |
EP1077686B1 (en) | 2008-08-06 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2310938T3 (es) | Microcapsulas de activacion externa. | |
US6099864A (en) | In situ activation of microcapsules | |
US7968117B1 (en) | Externally triggered microcapsules | |
Cao et al. | Drug release from phase-changeable nanodroplets triggered by low-intensity focused ultrasound | |
ES2366978T3 (es) | Nanocápsulas lipídicas furtivas, procedimientos para su preparación y utilización de las mismas como vehículo para principio(s) activo(s). | |
ES2346079T3 (es) | Composicion farmaceutica que comprende microcapsulas rellenas con un gas, para un suministro mediado por ultrasonidos. | |
ES2187524T5 (es) | Procedimientos de preparacion de liposomas llenos de gas. | |
ES2271947T3 (es) | Microcapsulas, procedimiento de preparacion y su uso. | |
ES2531732T3 (es) | Montaje de microvesícula rellena de gas para imagenología de contraste | |
KR100241300B1 (ko) | 활성물질의 조절된 방출성을 갖는 소포 | |
US4900556A (en) | System for delayed and pulsed release of biologically active substances | |
US6416740B1 (en) | Acoustically active drug delivery systems | |
ES2238838T3 (es) | Formulacion liposomal sensible a la temperatura. | |
US5776429A (en) | Method of preparing gas-filled microspheres using a lyophilized lipids | |
US5549915A (en) | Magnetically responsive composition for carrying biologically active substances and methods of production | |
US20010018072A1 (en) | Solid matrix therapeutic compositions | |
US4681582A (en) | Drug administering apparatus | |
JPH04506670A (ja) | 生体内に注入可能な安定な微小泡懸濁液 | |
NO333811B1 (no) | Stealth-nanokapsler, fremgangsmåter for fremstilling derav og anvendelse som en bærer for aktivt prinsipp/aktive prinsipper | |
Wang et al. | Microbubbles coupled to methotrexate-loaded liposomes for ultrasound-mediated delivery of methotrexate across the blood–brain barrier | |
JP2005505532A (ja) | 気体微粒子リポソーム複合体 | |
Li et al. | Functionalized magnetic nanoparticles for drug delivery in tumor therapy | |
Suzuki et al. | Co-administration of microbubbles and drugs in ultrasound-assisted drug delivery: comparison with drug-carrying particles | |
Sharma et al. | Pharmacosomes: A novel drug delivery system | |
Mahmoud et al. | An Overview on Niosomes: ADrug Nanocarrier. Drug Des Int Prop Int J 1 (5)-2018 |