ES2233340T3 - Metodo para la preparacion de un beta-aminoester quiral. - Google Patents
Metodo para la preparacion de un beta-aminoester quiral.Info
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Abstract
Un método para la preparación de un beta-aminoéster quiral de la fórmula **(Fórmula)** en la que R es alquilo de 1 a 10 átomos de carbono; X e Y son halógenos iguales o diferentes seleccionados del grupo que consiste en Cl, Br e I; que comprende proteger el grupo amino de un éster de aminoácido racémico de la fórmula **(Fórmula)** con un grupo protector CBZ para producir un compuesto de aminoácido protegido de la fórmula **(Fórmula)** someter el compuesto de aminoácido protegido así obtenido a cromatografía quiral para obtener un éster de aminoácido protegido quiral de la fórmula **(Fórmula)**.
Description
Método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral.
La presente solicitud reivindica la prioridad de
la Solicitud de Patente de Estados Unidos Nº de Serie 09/034.270,
presentada el 4 de Marzo de 1998.
La presente invención se refiere a un método de
separación quiral útil para preparar
\beta-aminoésteres quirales que son útiles para la
preparación de antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3}. Tales antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} son útiles en composiciones
farmacéuticas y en métodos para tratar estados mediados por
\alpha_{v}\beta_{3}, inhibiendo o antagonizando
integrinas.
Las integrinas son un grupo de glicoproteínas de
la superficie celular que median la adhesión celular y por lo tanto
son mediadores útiles de interacciones de adhesión celular que se
producen durante diversos procesos biológicos. Las integrinas son
heterodímeros compuestos por subunidades polipeptídicas \alpha y
\beta conectadas no covalentemente. Actualmente, se han
identificado once subunidades \alpha diferentes y se han
identificado seis subunidades \beta diferentes. Las diversas
subunidades \alpha pueden combinarse con las diversas subunidades
\beta para formar integrinas distintas.
La integrina identificada como
\alpha_{v}\beta_{3} (también conocida como el receptor de
vitronectina) se ha identificado como una integrina que representa
un papel en diversas condiciones o estados de enfermedad incluyendo
metástasis tumorales, crecimiento de tumores sólidos (neoplasia),
osteoporosis, enfermedad de Paget, hipercalcemia humoral maligna,
angiogénesis, incluyendo angiogénesis tumoral, retinopatía,
incluyendo degeneración macular, artritis, incluyendo artritis
reumatoide, enfermedad periodontal, psoriasis y migración de las
células de los músculos lisos (por ejemplo, restenosis).
Adicionalmente, se ha encontrado que tales agentes serían útiles
como antivirales, antifúngicos y antimicrobianos. Los compuestos que
inhiben o antagonizan selectivamente \alpha_{v}\beta_{3}
serían beneficiosos para tratar tales condiciones.
Se ha observado que la integrina
\alpha_{v}\beta_{3} y otras integrinas que contienen
\alpha_{v} se unen a un número de macromoléculas de matriz que
contienen Arg-Gly-Asp (RGD). Los
compuestos que contienen la secuencia RGD imitan ligandos de matriz
extracelulares a fin de unirse a receptores de la superficie
celular. Sin embargo, también se sabe que los péptidos RGD en
general son no selectivos para integrinas dependientes de RGD. Por
ejemplo, la mayoría de los péptidos RGD que se unen a
\alpha_{v}\beta_{3} también se unen a
\alpha_{v}\beta_{5}, \alpha_{v}\beta_{1} y
\alpha_{IIb}\beta_{3}. Se sabe que el antagonismo de
\alpha_{IIb}\beta_{3} plaquetaria (también conocida como el
receptor de fibrinógeno) bloquea la agregación de plaquetas en seres
humanos. Para evitar efectos secundarios hemorrágicos cuando se
tratan las condiciones o estados de enfermedad asociados con la
integrina \alpha_{v}\beta_{3}, sería beneficioso desarrollar
compuestos que fueran antagonistas selectivos de
\alpha_{v}\beta_{3} en oposición a
\alpha_{IIb}\beta_{3}.
La invasión de células tumorales se produce
mediante un proceso en tres etapas: 1) ligazón de las células
tumorales a la matriz extracelular; 2) disolución proteolítica de la
matriz; y 3) movimiento de las células a través de la barrera
disuelta. Este proceso puede producirse repetidamente y puede dar
como resultado metástasis en sitios distantes del tumor
original.
Seftor y otros (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol.
89 (1992) 1557-1561) han mostrado que la integrina
\alpha_{v}\beta_{3} tiene una función biológica en la
invasión de células de melanoma. Montgomery y otros, (Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, Vol. 91 (1994) 8856-60) han
demostrado que la integrina \alpha_{v}\beta_{3} expresada
sobre células de melanoma humanas promueve una señal de
supervivencia, protegiendo las células de la apoptosis. La mediación
de la ruta metastática de células tumorales mediante interferencia
con el receptor de la adhesión celular integrina
\alpha_{v}\beta_{3} para impedir la metástasis tumoral sería
beneficiosa.
Brooks y otros (Cell. Vol. 79 (1994)
1157-1164) han demostrado que los antagonistas de
\alpha_{v}\beta_{3} proporcionan un sistema terapéutico para
el tratamiento de la neoplasia (inhibición del crecimiento de
tumores sólidos) ya que la administración sistémica de antagonistas
de \alpha_{v}\beta_{3} provoca una regresión drástica de
diversos tumores humanos histológicamente diferentes.
El receptor de la adhesión integrina
\alpha_{v}\beta_{3} se identificó como un marcador de vasos
sanguíneos angiogénicos en el pollo y el hombre y por lo tanto tal
receptor representa un papel crítico en la angiogénesis o la
neovascularización. La angiogénesis se caracteriza por la invasión,
la migración y la proliferación de células del músculo liso y
endoteliales. Los antagonistas de \alpha_{v}\beta_{3}
inhiben este proceso promoviendo selectivamente la apoptosis de
células en la neovasculatura. El crecimiento de nuevos vasos
sanguíneos, o angiogénesis, también contribuye a condiciones
patológicas tales como la retinopatía diabética y la degeneración
macular (Adonis y otros, Amer. J. Ophthal., Vol. 118 (1994)
445-450) y la artritis reumatoide (Peacock y otros,
J. Exp. Med., Vol. 175, (1992), 1135-1138). Por lo
tanto, los antagonistas de \alpha_{v}\beta_{3} serían
agentes terapéuticos útiles para tratar tales condiciones asociadas
con la neovascularización (Brooks y otros, Science, Vol. 264,
(1994), 569-571).
Se ha presentado que el receptor de la superficie
celular \alpha_{v}\beta_{3} es la principal integrina en
osteoclastos responsables de la ligazón al hueso. Los osteoclastos
provocan la resorción ósea y, cuando tal actividad de resorción ósea
supera la actividad de formación ósea, da como resultado la
osteoporosis (una pérdida de hueso), que conduce a un número
incrementado de fracturas óseas, incapacitación y mortalidad
incrementada. Se ha observado que los antagonistas de
\alpha_{v}\beta_{3} son inhibidores potentes de la actividad
osteoclástica tanto in vitro [Sato y otros, J. Cell. Biol.,
Vol. 111 (1990) 1713-1723] como in vivo
[Fisher y otros, Endocrinology, Vol. 132 (1993)
1411-1413]. El antagonismo de
\alpha_{v}\beta_{3} conduce a una resorción ósea disminuida
y por lo tanto restaura un equilibrio normal de actividad de
formación y resorción ósea. Así, sería beneficioso proporcionar
antagonistas de \alpha_{v}\beta_{3} de osteoclastos que
fueran inhibidores eficaces de la resorción ósea y por lo tanto
fueran útiles en el tratamiento o la prevención de la
osteoporosis.
El papel de la integrina
\alpha_{v}\beta_{3} en la migración de células del músculo
liso también le convierte en un objetivo terapéutico para la
prevención o la inhibición de la hiperplasia neointimal que es una
causa principal de la restenosis después de procedimientos
vasculares (Choi y otros, J. Vasc. Surg. Vol. 19(1) (1994)
125-34). La prevención o la inhibición de la
hiperplasia neointimal mediante agentes farmacéuticos para prevenir
o inhibir la restenosis sería beneficiosa.
White (Current Biology, Vol. 3(9) (1993)
596-599) ha presentado que el adenovirus usa
\alpha_{v}\beta_{3} para entrar en las células huésped. La
integrina parece requerirse para la endocitosis de la partícula
vírica y puede requerirse para la penetración del genoma viral en el
citoplasma de la célula huésped. Así, los compuestos que inhiben
\alpha_{v}\beta_{3} encontrarían utilidad como agentes
antivirales.
El documento Número de Serie 09/034.270 de
Estados Unidos describe compuestos de la siguiente fórmula
general
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en la que X e Y son un grupo halo
igual o diferente; R es H o alquilo; y sales farmacéuticamente
aceptables de los mismos. Tales compuestos encuentran uso como
antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3}.
Más específicamente, el documento Número de Serie
09/034.270 de Estados Unidos describe los siguientes compuestos:
\vskip1.000000\baselineskip
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en los que R es H o alquilo; o
sales farmacéuticamente aceptables de los mismos. Cada uno de estos
compuestos contiene un resto de
\beta-aminoácido/éster quiral que está substituido
por halógenos. Para preparar tales antagonistas de
\alpha_{v}\beta_{3}, por lo tanto es útil tener una
metodología para preparar eficazmente un
\beta-aminoácido/éster
quiral.
Por otra parte, la solicitud de patente
internacional WO 97/08145 describe ciertos derivados de
meta-guanidina, urea, tiourea o ácido aminobenzoico
azacíclico como antagonistas de la integrina
\alpha_{v}\beta_{3} y productos intermedios usados en su
producción. Sin embargo, este documento no contiene una descripción
de métodos de resolución óptica para
\beta-aminoésteres.
Se conoce la cromatografía quiral para separar
enantiómeros [Péter y otros, Analytica Chimica Acta, 352 (1997)
335-356] y es un método posible para preparar tales
compuestos quirales. La presente invención proporciona un nuevo
método para la preparación de \beta-aminoésteres
quirales que son útiles en la preparación de los antagonistas de
\alpha_{v}\beta descritos previamente.
La presente invención se refiere a un método para
la preparación de \beta-aminoésteres quirales de
la fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
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que comprende proteger el grupo
amino de un éster de aminoácido racémico de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
con CBZ para formar un éster de
aminoácido protegido de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
someter el éster de aminoácido
protegido de la fórmula III a cromatografía quiral para obtener un
éster de aminoácido protegido de la
fórmula
desproteger el éster de aminoácido
de la fórmula IV haciendo reaccionar dicho éster de aminoácido con
yoduro de trimetilsililo en
diclorometano;
y aislar el éster de aminoácido de la fórmula
I.
La presente invención se refiere a un método para
la preparación de \beta-aminoésteres quirales de
la fórmula
La invención comprende un procedimiento que parte
del \beta-aminoéster racémico. La primera etapa
comprende la etapa de proteger el grupo amino del
\beta-aminoéster racémico de la fórmula
Preferiblemente, la presente invención
proporciona la protección del \beta-aminoéster con
CBZ. La etapa de protección da como resultado un
\beta-aminoéster racémico protegido de la
fórmula
y permite la separación quiral de
los \beta-aminoésteres (R) y (S) de la mezcla
racémica.
Se realiza una separación quiral del compuesto de
fórmula II, usando metodología conocida por los expertos en la
especialidad, para dar cada enantiómero como el
CBZ-\beta-aminoéster de la
fórmula
El grupo protector CBZ se retira a continuación
para dar un \beta-aminoéster como un solo isómero.
Aunque existen métodos establecidos estándar bien conocidos para
retirar grupos protectores, incluyendo el grupo CBZ, tales
metodologías de desprotección daban como resultado pérdida de los
halógenos aromáticos. Debido a la estructura única de los
\beta-aminoácidos necesaria para la preparación de
los antagonistas de integrina descritos previamente, la etapa de
desprotección empleando metodologías de desprotección estándar
estaba acompañada por pérdida de los halógenos aromáticos. La
pérdida de tales halógenos no daba como resultado los
\beta-aminoésteres quirales necesarios para la
preparación de los antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} peptidomiméticos descritos previamente.
Después de mucha investigación, se encontró que podía usarse el
tratamiento con yoduro de trimetilsililo en diclorometano de los
\beta-aminoésteres protegidos para desproteger las
aminas mientras que quedaban los halógenos aromáticos intactos.
Las condiciones preferidas se describen en el
Ejemplo K de esta solicitud y en el Ejemplo K del documento Número
de Serie 09/034.270 de Estados Unidos, y también en el Ejemplo Q,
Etapa I, el Ejemplo R y el Ejemplo S de la presente solicitud. Tal
desprotección da como resultado \beta-aminoésteres
de las siguientes fórmulas:
Lo siguiente es una lista de definiciones de
diversos términos usados aquí.
Según se usan aquí, los términos "alquilo" o
"alquilo inferior" se refieren a radicales hidrocarbúricos de
cadena lineal o cadena ramificada que tienen de aproximadamente 1 a
aproximadamente 10 átomos de carbono, y más preferiblemente de 1 a
aproximadamente 6 átomos de carbono. Ejemplos de tales radicales
alquilo son metilo, etilo, n-propilo, isopropilo,
n-butilo, isobutilo, sec-butilo,
t-butilo, pentilo, neopentilo, hexilo, isohexilo y
similares.
Según se usa aquí, el término "halo" o
"halógeno" se refieren a bromo, cloro o yodo.
El término "composición", según se usa aquí,
significa un producto que resulta de la mezcladura o la combinación
de más de un elemento o ingrediente.
El término "portador farmacéuticamente
aceptable", según se usa aquí, significa un material, una
composición o un vehículo farmacéuticamente aceptable, tal como una
carga, un diluyente, un excipiente, un disolvente o un material
encapsulante, líquido o sólido, implicado en soportar o transportar
un agente químico.
El término "cantidad terapéuticamente
eficaz" significará la cantidad de fármaco o agente farmacéutico
que provocará la respuesta biológica o médica de un tejido, un
sistema o un animal que está siendo buscada por un investigador o
médico.
Lo siguiente es una lista de abreviaturas y los
significados correspondientes que se usan intercambiablemente
aquí:
^{1}H-NMR = resonancia
magnética nuclear de protón
AcOH = ácido acético
Ar = argón
BOC = t-Butoxicarbonilo
CBZ = 20
CH_{3}CN = acetonitrilo
Análisis de CHN = análisis elemental de
carbono/hidrógeno/nitrógeno
Análisis de CHNCl = análisis elemental de
carbono/hidrógeno/nitrógeno/cloro
Análisis de CHNS = análisis elemental de
carbono/hidrógeno/nitrógeno/azufre
Agua DI = agua desionizada
DMA = N,N-dimetilacetamida
DMAP =
4-(N,N-dimetilamino)piridina
DMF = N,N-dimetilformamida
EDCl = hidrocloruro de
1-(3-dimetilaminopropil)-3-etilcarbodiimida
EtOAc = acetato de etilo
EtOH = etanol
FAB MS = espectroscopía de masas con bombardeo
atómico rápido
g = gramo(s)
HOBT = hidrato de
1-hidroxibenzotriazol
HPLC = cromatografía líquida de alta
resolución
IBCF = cloroformiato de isobutilo
KSCN = tiocianato potásico
l = litro
LiOH = hidróxido de litio
MEM = metoxietoximetilo
MEMCl = cloruro de metoxietoximetilo
MeOH = metanol
mg = miligramos
MgSO_{4} = sulfato magnésico
ml = mililitros
MS = espectroscopía de masas
MTBE =
metil-terc-butil-éter
N_{2} = nitrógeno
NaHCO_{3} = bicarbonato sódico
NaOH = hidróxido sódico
Na_{2}SO_{4} = sulfato sódico
NMM = N-metilmorfolina
NMP = N-metilpirrolidinona
NMR = resonancia magnética nuclear
P_{2}O_{5} = pentóxido de fósforo
PTSA = ácido
para-toluenosulfónico
RPHPLC = cromatografía líquida de alta resolución
en fase inversa
RT = temperatura ambiente
TFA = ácido trifluoroacético
THF = tetrahidrofurano
TMS = trimetilsililo
\Delta = calentamiento de la mezcla de
reacción
Los compuestos descritos aquí pueden existir en
diversas formas isómeras y se entiende que han de incluirse todas
estas formas isómeras. También se incluyen las formas tautómeras así
como las sales farmacéuticamente aceptables de tales isómeros y
tautómeros.
En las estructuras y fórmulas presentes, un
enlace trazado a través de un enlace de un anillo puede ser con
cualquier átomo disponible del anillo.
El término "sal farmacéuticamente aceptable"
se refiere a una sal preparada poniendo en contacto un compuesto
descrito previamente con un ácido cuyo anión se considera
generalmente adecuado para el consumo humano. Ejemplos de sales
farmacológicamente aceptables incluyen las sales de hidrocloruro,
hidrobromuro, hidroyoduro, sulfato, fosfato, acetato, propionato,
lactato, maleato, malato, succinato, tartrato y similares. Todas las
sales farmacológicamente aceptables pueden prepararse por medios
convencionales. (Véase Berge y otros, J. Pharm. Sci.,
66(1), 1-19 (1977) para ejemplos adicionales
de sales farmacéuticamente aceptables).
Para la inhibición o el antagonismo selectivo de
integrinas \alpha_{v}\beta_{3}, los compuestos antagonistas
de integrina \alpha_{v}\beta_{3} descritos aquí pueden
administrarse oralmente, parenteralmente o mediante un aerosol de
inhalación, o tópicamente en formulaciones de dosificación unitaria
que contienen portadores, adyuvantes y vehículos farmacéuticamente
aceptables. El término parenteral, según se usa aquí, incluye, por
ejemplo, subcutáneo, intravenoso, intramuscular, intraesternal,
técnicas de infusión o intraperitonealmente.
Los compuestos antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} descritos aquí se administran mediante
cualquier ruta adecuada en la forma de una composición farmacéutica
adaptada a tal ruta, y en una dosis eficaz para el tratamiento
pretendido. Dosis terapéuticamente eficaces de los compuestos
requeridas para prevenir o detener el avance de o para tratar la
condición médica son determinadas fácilmente por un experto normal
en la especialidad usando sistemas preclínicos y clínicos familiares
para los técnicos médicos.
El antagonista de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} descrito aquí proporciona un método para
tratar condiciones mediadas inhibiendo o antagonizando
selectivamente el receptor de la superficie celular
\alpha_{V}\beta_{3}, método que comprende administrar una
cantidad terapéuticamente eficaz de un compuesto descrito
seleccionado de la clase de compuestos descritos previamente, en
donde uno o más compuestos se administran en asociación con uno o
más portadores y/o diluyentes y/o adyuvantes (denominados aquí
colectivamente materiales "portadores") farmacéuticamente
aceptables atóxicos y, si se desea, otros ingredientes activos. La
administración de un antagonista de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} proporciona un método para la inhibición
del receptor de la superficie celular \alpha_{v}\beta_{3}.
Lo más preferiblemente, la administración del antagonista de
\alpha_{v}\beta_{3} proporciona un método para inhibir la
resorción ósea, tratar la osteoporosis, inhibir la hipercalcemia
humoral maligna, tratar la enfermedad de Paget, inhibir metástasis
tumorales, inhibir la neoplasia (crecimiento de tumores sólidos),
inhibir la angiogénesis, incluyendo angiogénesis tumoral, tratar la
retinopatía diabética y la degeneración macular, inhibir la
artritis, la psoriasis y la enfermedad periodontal e inhibir la
migración de células del músculo liso, incluyendo restenosis.
La presente invención proporciona un método para
preparar los \beta-aminoésteres quirales útiles
para la preparación de los antagonistas de integrina
\alpha_{v}\beta_{3} descritos aquí. El método proporciona la
preparación de los \beta-aminoésteres quirales a
partir de la materia prima racémica. Los métodos ofrecen ventajas
sobre una síntesis quiral en la que ambos isómeros del
\beta-aminoéster pueden prepararse en una sola
secuencia y el método comienza con el material racémico en oposición
a necesitar una sola materia prima enantiómera.
Basándose en técnicas experimentales de
laboratorio estándar y en procedimientos bien conocidos y apreciados
por los expertos en la especialidad, así como en comparaciones con
compuestos de utilidad conocida, los compuestos antagonistas de
\alpha_{v}\beta_{3} descritos previamente pueden usarse en
el tratamiento de pacientes que sufren las condiciones patológicas
previas. Un experto en la especialidad reconocerá que la selección
del compuesto antagonista de \alpha_{v}\beta_{3} de la
invención más apropiado está dentro de la capacidad de un experto
normal en la especialidad y dependerá de una variedad de factores,
incluyendo la determinación de los resultados obtenidos en un ensayo
estándar y modelos animales.
El tratamiento de un paciente que sufre una de
las condiciones patológicas comprende administrar a tal paciente una
cantidad de compuesto descrito previamente que es terapéuticamente
eficaz para controlar la condición o para prolongar la supervivencia
del paciente más allá de la esperada en ausencia de tal tratamiento.
Según se usa aquí, el término "inhibición" de la condición se
refiere a frenada, interrupción, obstaculización o detención de la
condición y no indica necesariamente una eliminación total de la
condición. Se cree que prolongar la supervivencia de un paciente,
además de ser un efecto ventajoso significativo por sí mismo,
también indica que la condición es controlada beneficiosamente en
alguna extensión.
Las secuencias sintéticas generales para preparar
los antagonistas de integrina \alpha_{v}\beta_{3} descritos
previamente y las materias primas útiles para preparar los ésteres
de \beta-aminoácido se esbozan en los Esquemas
I-III. Los Esquemas y los Ejemplos descritos más
adelante aquí describen 1) la preparación de las materias primas
racémicas usadas en la presente invención; 2) los detalles de la
metodología de separación quiral de la presente invención; 3) la
metodología sintética quiral alternativa usada para preparar un solo
enantiómero de los \beta-aminoésteres; y 4) el uso
de los \beta-aminoésteres preparados mediante la
metodología de separación quiral para preparar antagonistas de
integrina \alpha_{v}\beta_{3}. Se describen cuando es
apropiado tanto una explicación de como los procedimientos reales
para los diversos aspectos de la presente invención. Los siguientes
Esquemas y Ejemplos pretenden ser meramente ilustrativos de la
presente invención y no limitativos de la misma en su alcance y
espíritu. Los expertos en la especialidad entenderán fácilmente que
pueden usarse en la presente invención variaciones de las
condiciones y los procedimientos descritos en los Esquemas y
Ejemplos.
A no ser que se indique otra cosa, todos los
materiales de partida y el equipo empleado estaban disponibles
comercialmente.
Esquema
I
El Esquema I ilustra una metodología útil para
preparar la porción de ácido tetrahidropirimidinobenzoico de los
antagonistas de integrina \alpha_{v}\beta_{3} descritos
aquí, que puede acoplarse a un éster de
gly-\beta-aminoácido. Brevemente,
en el Esquema I, se convierte ácido
3,5-dihidroxibenzoico en ácido
3-amino-5-hidroxibenzoico
usando el procedimiento descrito en Austr. J. Chem., 34 (6),
1319-24 (1981). El producto se hace reaccionar con
tiocianato amónico en ácido clorhídrico diluido caliente para dar
ácido
3-tiourea-5-hidroxibenzoico
después del tratamiento normal. Este producto intermedio de tiourea
se convierte en el derivado S-metílico mediante la
reacción con yoduro de metilo en etanol a reflujo. Se hace
reaccionar
1,3-diamino-2-hidroxipropano
con este producto intermedio resultante en DMA caliente. Al enfriar
se forma un precipitado y el producto zwitteriónico se aísla
mediante filtración. La sal de HCl puede obtenerse mediante
liofilización en ácido clorhídrico diluido. Alternativamente, el
producto puede aislarse de la mezcla de reacción original retirando
materias volátiles y concentrando. El producto resultante se recoge
en agua y el pH se ajusta hasta aproximadamente 5-7
donde el producto zwitteriónico precipita y se aísla mediante
filtración. La sal de HCl puede obtenerse según se indica
previamente o simplemente disolviendo en ácido clorhídrico diluido
y concentrando hasta un sólido y secando.
Esquema
IA
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El Esquema IA ilustra una metodología útil para
preparar la porción de ácido tetrahidropirimidinobenzoico de los
antagonistas de integrina \alpha_{v}\beta_{3} descritos
aquí, que puede acoplarse a un éster de
gly-\beta-aminoácido. Brevemente,
en el Esquema IA, se hace reaccionar
1,3-diamino-2-hidroxipropano
con disulfuro de carbono en un disolvente apropiado tal como
etanol-agua, se somete a reflujo, se enfría, se
añade ácido clorhídrico, se somete a reflujo de nuevo, se enfría y
el producto,
5-hidroxitetrahidropirimidin-2-tiona,
se recoge mediante filtración y se seca. Este producto intermedio de
tiourea cíclica se convierte en el derivado
S-metílico mediante la reacción de la tiona y yoduro
de metilo en etanol a reflujo. El hidroyoduro de
2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
deseado se aísla fácilmente retirando materias volátiles a presión
reducida. Así, hidroyoduro de
2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
en cloruro de metileno:DMA (aproximadamente 10:1) y un equivalente
de trietilamina se enfrían hasta aproximadamente la temperatura del
baño de hielo y se añade un equivalente de bicarbonato de
di-terc-butilo (anhídrido de BOC).
El tratamiento convencional da la
BOC-2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
como un aceite.
Se convierte ácido
3,5-dihidroxibenzoico en ácido
3-amino-5-hidroxibenzoico
usando el procedimiento de Aust. J. Chem., 34 (6),
1319-24 (1981).
El producto final deseado, sal de hidrocloruro de
ácido
3-hidroxi-5-[(5-hidroxi-1,4,5,6-tetrahidro-2-pirimidinil)amino]benzoico,
se prepara haciendo reaccionar
BOC-2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
y ácido
3-amino-5-hidroxibenzoico
en DMA caliente. Al enfriar, se forma un precipitado y el producto
zwitteriónico se aísla mediante filtración. La sal de HCl puede
obtenerse liofilizando en ácido clorhídrico diluido, por
ejemplo.
\newpage
Esquema
II
Y y X son grupos halo.
El Esquema II ilustra una metodología útil para
preparar el
N-gly-amino-3-(3,5-dihalo-2-hidroxi)fenilpropionato
de etilo que puede acoplarse al resto de ácido
tetrahidropirimidinobenzoico. Brevemente, pueden prepararse
salicilaldehídos substituidos con halo en 3,5 mediante halogenación
directa como, por ejemplo, sería el caso cuando se suspende
5-bromosalicilaldehído en ácido acético y se añade
un equivalente o más de cloro para dar
3-cloro-5-bromo-2-hidroxibenzaldehído.
Algo de producto precipita y puede recuperarse mediante filtración.
El resto puede recuperarse diluyendo el filtrado con agua y aislando
el precipitado. Combinar los sólidos y secar da
3-cloro-5-bromo-2-hidroxibenzaldehído.
Puede prepararse
3-yodo-5-clorosalicilaldehído
haciendo reaccionar 5-clorosalicilaldehído con
N-yodosuccinimida en DMF y sometiendo la mezcla de
reacción a condiciones de tratamiento habituales. Puede prepararse
3-yodo-5-bromosalicilaldehído
haciendo reaccionar 5-bromosalicilaldehído en
acetonitrilo con yoduro potásico y cloramina T. El tratamiento da un
material que cuando se trata con hexanos da el
3-yodo-5-clorosalicilaldehído
deseado.
Las cumarinas se preparan fácilmente a partir de
salicilaldehídos usando una reacción de Perkin modificada (por
ejemplo, Vogel's Textbook of Practical Organic Chemistry, 5ª
Ed., 1989, p. 1040). Las cumarinas substituidas con halo se
convierten en 3-aminohidrocumarinas (véase J.G.
Rico, Tett. Let., 1994, 35, 6599-6602)
que se abren fácilmente en alcohol ácido para dar ésteres de ácido
3-amino-3-(3,5-halo-2-hidroxi)fenilpropanoico.
Los ésteres de ácido
3-amino-3-(3,5-halo-2-hidroxi)fenilpropanoico
se convierten en ésteres de ácido
N-gly-3-amino-3-(3,5-halo-2-hidroxi)fenilpropanoico
mediante reacción de
Boc-N-gly-N-hidroxisuccinimida
para dar ésteres de ácido
Boc-N-gly-3-amino-3-(3,5-halo-2-hidroxi)fenilpropanoico
que se convierten en sales de HX de ésteres de ácido
N-gly-3-amino-3-(3,5-halo-2-hidroxi)fenilpropanoico
(en los que X es un grupo halo), por ejemplo, mediante la retirada
del grupo protector BOC usando HCl en etanol.
Los compuestos de aminoácido usados al preparar
los compuestos antagonistas de \alpha_{v}\beta_{3} pueden
prepararse alternativamente de acuerdo con los procedimientos
sintéticos quirales indicados aquí y más adelante y de acuerdo con
la metodología descrita y reivindicada en USSN 60/076.710 en
tramitación conjunta, presentada el 4 de Marzo de 1998.
Esquema
III
Y y X son grupos halo.
El Esquema III es ilustrativo de una metodología
útil para preparar diversos compuestos antagonistas de
\alpha_{v}\beta_{3}. El ácido
3-hidroxi-5-[(1,4,5,6-tetrahidro-5-hidroxi-2-pirimidinil)amino]benzoico
se activa para el acoplamiento usando métodos conocidos. Así,
después de disolverse en un disolvente adecuado tal como DMA, se
añade un equivalente de NMM. La mezcla de reacción se enfría hasta
temperaturas del baño de hielo y se añade IBCF. Se añaden al
producto intermedio de anhídrido mixto el éster de
gly-\beta-aminoácido y NMM. Al
terminar la reacción, el producto se purifica mediante HPLC
preparativa y el éster se hidroliza hasta el ácido tratando con una
base, tal como LiOH, en un disolvente adecuado (dioxano/agua o
acetonitrilo/agua). Alternativamente, puede usarse un ácido
adecuado, tal como TFA. El producto se aísla mediante HPLC
preparativa o aislando el zwitterión a pH 5-7 y
convirtiendo la sal deseada mediante procedimientos estándar.
Etapa
1
Se añadieron a un matraz de fondo redondo de 2 l
equipado con un agitador mecánico y un condensador
3,5-diclorosalicilaldehído (200 g, 1,05 moles, 1
equivalente), anhídrido acético (356 g, 3,49 moles) y trietilamina
(95,0 g, 0,94 moles, 0,90 equivalentes). La solución de reacción se
calentó a reflujo durante la noche. La mezcla de reacción de color
marrón oscuro se enfrió hasta 50ºC y se añadió agua (1 l) con
agitación. Después de una hora, la mezcla se filtró y el filtrado se
combinó con EtOH (1 l). Esta mezcla se calentó hasta 45ºC durante 1
hora, se enfrió hasta temperatura ambiente, se filtró y el sólido
(fracción A) se lavó con EtOH (0,5 l). Las soluciones de EtOH
combinadas se concentraron mediante evaporación giratoria hasta un
aceite (fracción B). El sólido de la fracción A se disolvió en
cloruro de metileno (1,5 l) y la solución resultante se hizo pasar a
través de un bloque de gel de sílice (1300 ml de volumen). La
solución de color marrón oscuro resultante se concentró hasta un
aceite que se trituró con hexanos (1,3 l) para dar un sólido que se
aisló mediante filtración y se lavó (hexanos) para dar
6,8-diclorocumarina substancialmente pura (163 g).
Se obtuvieron 31 g adicionales de producto tratando el aceite,
fracción B, de un modo similar; el aceite se disolvió en cloruro de
metileno (0,5 l), se hizo pasar a través de un bloque de sílice (0,5
l de volumen) y se trituró con hexanos. El rendimiento aislado total
era 194 g u 86% de rendimiento del sólido marrón.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
Se añadieron a un matraz de fondo redondo de 2 l
de 3 bocas equipado con un agitador mecánico
6,8-diclorocumarina (160 g, 0,74 moles) (preparada
en la Etapa 1) y THF seco (375 ml, Aldrich Sure Seal). La mezcla
resultante se enfrió hasta -40ºC (baño de hielo seco/acetona) y se
añadió bis(trimetilsilil)amida de litio (0,80 moles,
800 ml de 1M en THF) mientras se mantenía la temperatura por debajo
de -40ºC. Después de la terminación de la adición, el baño de
enfriamiento se retiró. Después de 0,5 horas, la mezcla se había
calentado hasta -5ºC. La reacción se extinguió mediante la adición
de una solución de HCl (0,5 l de 4M en dioxano) en EtOH (1,25 l). La
temperatura se mantuvo por debajo de 0ºC durante la noche. La mezcla
de reacción se concentró hasta aproximadamente la mitad de su
volumen original y se sometió a reparto entre EtOAc (3 l) y agua (2
l). La capa orgánica se lavó con HCl acuoso (3 x 1 l de HCl 0,5 N).
El pH de las capas acuosas combinadas se ajustó hasta
aproximadamente 7 mediante la adición de NaOH acuoso al 10% y se
extrajo con cloruro de metileno (3 x 2 l). Las capas orgánicas
combinadas se secaron (MgSO_{4}), se filtraron y se añadió HCl 4M
en dioxano (210 ml) con agitación. Al terminar la precipitación el
sólido se retiró mediante filtración. El filtrado se concentró hasta
un volumen pequeño y se añadió
metil-t-butil-éter. El sólido
obtenido se combinó con el sólido inicialmente formado y el producto
combinado se lavó con
metil-t-butil-éter, se aisló
mediante filtración y se secó (horno de vacío durante un fin de
semana) para obtener el producto deseado (172 g, 74% de
rendimiento).
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
Se añadieron éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(Sigma, 15,0 g, 0,055 moles), DMF seca (Aldrich Sure Seal, 200 ml) y
el producto de la Etapa 2 (21,67 g, 0,055 moles) bajo una atmósfera
inerte (Ar) a un matraz de fondo redondo (0,5 l) secado a la llama
equipado con barra de agitación magnética. La mezcla de reacción se
enfrió hasta aproximadamente 0ºC (baño de sal-hielo)
y se añadieron N-metilmorfolina (5,58 g, 0,056
moles) y una cantidad catalítica de MAP y la reacción se dejó
avanzar durante la noche. La mezcla de reacción se concentró hasta
un fango y se sometió a reparto entre EtOAc (0,4 l) y base acuosa (2
x 0,2 l, NaHCO_{3} acuoso saturado). La capa orgánica se lavó
consecutivamente con ácido cítrico acuoso (2 x 0,2 l, 10% p/v), de
nuevo con bicarbonato sódico acuoso (2 x 0,2 l), salmuera y se secó
(Na_{2}SO_{4}).Las materias volátiles se retiraron bajo vacío a
55ºC para dar un aceite (22,5 g, 92% de rendimiento) que se
solidificaba al reposar.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
El producto obtenido en la Etapa 3 se desprotegió
para dar la sal de hidrocloruro de amina usando el siguiente
procedimiento. Se añadió dioxano seco (40 ml) al producto de la
Etapa 3 (14,0 g, 0,032 moles) en un matraz de fondo redondo (0,1 l)
secado a la llama, con barra de agitación. Se añadió a esto HCl 4,0
N en dioxano (2 equivalentes, 6,32 ml) a 0ºC y la reacción se dejó
avanzar hasta que el desprendimiento de gas cesaba y la reacción era
completa. Las materias volátiles se retiraron bajo vacío y el
residuo se trituró con éter etílico (50 ml). Los sólidos se
recogieron mediante filtración y se lavaron con éter y se secaron
para dar el producto deseado (12,5 g).
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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Etapa
1
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Se añadió trietilamina (103,6 ml, 743,2
milimoles) a una suspensión de
3-bromo-5-clorosalicilaldehído
(175,0 g, 743,2 milimoles) en anhídrido acético (280,5 ml, 3,0
moles). La solución de reacción se calentó a reflujo durante 4,5
horas. La solución se enfrió y se concentró a vacío. Se añadió
etanol absoluto (730 ml) al residuo marrón. La mezcla se almacenó a
0ºC durante 14 horas. El sólido marrón se recogió mediante
filtración y se lavó con etanol frío. El sólido se secó a vacío para
dar el producto deseado (123,0 g, 64% de rendimiento). La ^{1}H
NMR estaba de acuerdo con la estructura propuesta.
Etapa
2
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Se añadió, gota a gota con agitación,
bis(trimetilsilil)amida de litio (154,1 ml de una
solución 1M en THF) a una solución de la cumarina (40,0 g, 154,1
milimoles) en THF (40 ml) a -76ºC. La adición se completó en 10
minutos. La mezcla de reacción se agitó a continuación durante 5
minutos, se calentó hasta -20ºC y se agitó durante 15 minutos. Se
añadió a esta solución ácido acético (9,25 g, 154,1 milimoles) en
THF (28 ml) durante 5 minutos. La mezcla se calentó hasta
temperatura ambiente y las materias volátiles se retiraron a vacío.
El residuo se disolvió en éter (850 ml), se lavó con NaHCO_{3}
acuoso saturado (2 x 100 ml), salmuera (2 x 40 ml) y se secó
(MgSO_{4}). La solución de éter se concentró hasta aproximadamente
160 ml y se enfrió hasta 0ºC. Se añadió a esta suspensión HCl 4M en
dioxano (56,3 ml, 225 milimoles) y la mezcla se agitó a 0ºC durante
30 minutos. La suspensión se filtró y la torta filtrante se lavó con
éter. El sólido se secó a vacío para dar el producto deseado como el
solvato de dioxano de la sal de HCl (45,0 g). La ^{1}H NMR estaba
de acuerdo con la estructura propuesta.
Etapa
3
Se añadió HCl 4M en dioxano (157,8 ml, 631,1
milimoles) durante 10 minutos a una suspensión de la lactona (142,2
g, 354,5 milimoles) en etanol absoluto (533 ml). La mezcla de
reacción se agitó a temperatura ambiente durante 2,5 horas. Las
materias volátiles se retiraron a vacío. El residuo se disolvió en
acetato de etilo (450 ml) y la solución se mantuvo a 0ºC durante 15
horas. El precipitado de color canela se recogió mediante filtración
y se lavó con acetato de etilo frío. El sólido se secó a vacío para
dar el producto deseado como la sal de hidrocloruro (100,4 g, 79% de
rendimiento). La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la estructura
propuesta.
Etapa
4
Se añadieron éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(Sigma, 2,72 g, 0,010 moles), THF seco (Aldrich Sure Seal, 50 ml) y
el producto de la Etapa 3 (3,10 g, 0,01 moles de secado a vacío
durante la noche sobre P_{2}O_{5}) bajo una atmósfera inerte
(Ar) a un matraz de fondo redondo (0,1 l) secado a la llama equipado
con una barra de agitación magnética. La mezcla de reacción se
enfrió hasta aproximadamente 0ºC (baño de sal-hielo)
y se añadió trietilamina (1,01 g, 0,010 moles). La reacción se dejó
avanzar durante la noche. La mezcla de reacción se concentró hasta
un semisólido y se trató de un modo similar al Ejemplo A, Etapa 3.
Las materias volátiles se retiraron de la capa orgánica bajo vacío a
55ºC para dar un aceite (4 g, 83% de rendimiento) que se
solidificaba al reposar.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
El producto obtenido en la Etapa 4 se desprotegió
para dar la sal de hidrocloruro de amina usando el siguiente
procedimiento. Se añadió dioxano seco (20 ml) al producto de la
Etapa 4 (4,0 g, 0,0084 moles) en un matraz de fondo redondo (0,1 l)
secado a la llama, con barra de agitación. Se añadió a esto HCl 4,0
N en dioxano (20 ml) y la reacción se dejó avanzar hasta que cesaba
el desprendimiento de gas y la reacción era completa
(aproximadamente una hora). Las materias volátiles se retiraron bajo
vacío y el residuo se trituró con éter etílico (50 ml). Los sólidos
se recogieron mediante filtración y se lavaron con éter y se secaron
para dar un sólido marrón claro (2,7 g, 78% de rendimiento).
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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Etapa
1
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Se añadió trietilamina (45 ml, 375 milimoles) a
una suspensión de 3,5-dibromosalicilaldehído (100 g,
357 milimoles) en anhídrido acético (164,8 ml, 1,8 moles). La
solución de reacción se calentó durante la noche a reflujo bajo
argón. La solución se enfrió hasta temperatura ambiente y se formó
una masa sólida. La mezcla de reacción de color marrón oscuro se
lavó con hexanos calientes (3 x 300 ml) y bicarbonato sódico
saturado acuoso. El sólido resultante se disolvió en EtOAc (2 l) y
se lavó con agua. La capa orgánica se secó (sulfato sódico) y se
concentró para dar un sólido marrón que se recogió mediante
filtración. El sólido se secó a vacío para dar
6,8-dibromocumarina substancialmente pura (94,2 g,
87% de rendimiento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
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Se añadió gota a gota con agitación
bis(trimetilsilil)amida de litio (66 ml de una
solución 1M en THF) a 6,8-dibromocumarina (20,0 g,
0,066 moles) (preparada en la Etapa 1) en THF (100 ml) a -78ºC.
La adición se completó en 10 minutos. La mezcla de reacción se agitó
a continuación durante 5 minutos, se calentó hasta 0ºC y se agitó
durante 15 minutos. Se añadió a esta solución ácido acético (3,95 g)
durante 1 minuto. La mezcla se calentó hasta temperatura ambiente y
las materias volátiles se retiraron a vacío. El residuo se disolvió
en hexanos (500 ml), se lavó con NaHCO_{3} acuoso saturado (2 x
100 ml) y se secó (Na_{2}SO_{4}). La solución orgánica se
concentró para dar un aceite que se recogió inmediatamente en éter
dietílico (400 ml) y se añadió con agitación a 0ºC durante 30
minutos HCl 4M en dioxano (30 ml). El HCl en exceso se retiró a
vacío, la suspensión se filtró y la torta filtrante se lavó con
éter. El sólido se secó a vacío para dar el producto deseado como el
solvato de dioxano de la sal de HCl (19,9 g).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
La lactona preparada en la Etapa 2 previa (15 g)
se disolvió en etanol absoluto (400 ml) y se hizo pasar HCl gaseoso
anhidro a su través durante 1 minuto. La mezcla de reacción se agitó
a temperatura ambiente durante 2,5 horas. La RPHPLC mostraba la
reacción completa. Las materias volátiles se retiraron a vacío para
dar un residuo obscuro. El residuo se trituró con éter dietílico
(500 ml) y la mezcla se agitó durante la noche. El precipitado de
color canela se recogió mediante filtración y se lavó con éter
dietílico. El sólido se secó a vacío para dar el producto deseado
como la sal de hidrocloruro (15,2 g).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
Se añadieron éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(Sigma, 8,1 g, 0,030 moles), DMF seca (Aldrich Sure Seal, 50 ml) y
el producto de la Etapa 3 (12 g, 0,03 moles de secado a vacío
durante la noche sobre P_{2}O_{5}) bajo una atmósfera inerte
(Ar) a un matraz de fondo redondo (0,2 l) secado a la llama equipado
con una barra de agitación magnética. La mezcla de reacción se
enfrió hasta aproximadamente 0ºC (baño de sal-hielo)
y se añadieron N-metilmorfolina (3,03 g, 0,030
moles) y DMPA catalítica. La reacción se dejó avanzar durante la
noche calentando hasta temperatura ambiente. La mezcla de reacción
se concentró hasta un semisólido y se trató de un modo similar al
Ejemplo A, Etapa 3. Las materias volátiles se retiraron de la capa
orgánica bajo vacío a 55ºC para dar un aceite (15,7 g, 93% de
rendimiento) que solidificaba al reposar.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
El producto obtenido en la Etapa 4 se desprotegió
para dar la sal de hidrocloruro de amina usando el siguiente
procedimiento. Se añadió dioxano seco (40 ml) al producto de la
Etapa 4 (13,0 g, 0,0084 moles) en un matraz de fondo redondo (0,1 l)
secado a la llama, con barra de agitación. Se añadió a esto HCl 4,0
N en dioxano (23 ml) y la reacción se dejó avanzar hasta que cesaba
el desprendimiento de gas y la reacción era completa
(aproximadamente una hora). Las materias volátiles se retiraron bajo
vacío y el residuo se trituró con éter dietílico (50 ml). Los
sólidos se recogieron mediante filtración y se lavaron con éter y se
secaron para dar un sólido (10,6 g, 93% de rendimiento).
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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Etapa
1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se añadieron
5-bromosalicilaldehído (495 g, 2,46 moles) y ácido
acético a un matraz de fondo redondo de 5 l equipado con un agitador
mecánico y un tubo de adición de gas, a temperatura ambiente, para
formar una suspensión. Se añadió a esta mezcla cloro gaseoso a una
velocidad moderada hasta que se había disuelto un ligero exceso
molar de cloro (183 g, 1,05 moles). Después de que la adición se
detuviera, la reacción se dejó avanzar durante la noche. El sólido
formado se recuperó mediante filtración y el filtrado se diluyó en
agua (2,5 l). La mezcla se agitó vigorosamente durante 10 minutos,
el producto se recogió mediante filtración y se lavó con agua. Los
sólidos combinados se secaron a vacío para dar el
3-cloro-5-bromosalicilaldehído
deseado (475 g, 82% de rendimiento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
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Se pusieron
3-cloro-5-bromosalicilaldehído
(554,1 g, 2,35 moles, 1 equivalente), anhídrido acético (1203 g,
11,8 moles, 5 equivalentes) y trietilamina (237,4 g, 2,35 moles, 1
equivalente) en un matraz de fondo redondo de 5 l equipado con un
agitador mecánico y un condensador. La solución de reacción se
calentó a reflujo (131-141ºC) durante la noche. La
mezcla de reacción de color marrón oscuro se enfrió hasta 50ºC y se
añadió hielo (2 l) (enfriamiento con baño de hielo) con agitación.
Después de una hora, la mezcla se filtró y el filtrado se combinó
con EtOH (1 l). Se añadió a esta mezcla EtOH (300 ml) y la mezcla de
reacción se agitó durante 1 hora. El precipitado que se formaba se
recogió mediante filtración y se lavó con agua:EtOH (3 x 1,3 l), se
secó a vacío y a continuación se secó sobre un secador de lecho
fluido. El rendimiento aislado total es 563 g o 92%.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
\vskip1.000000\baselineskip
Se añadieron
6-bromo-8-clorocumarina
(300 g, 1,16 moles) (preparada en la Etapa 2) y THF seco (900 ml,
Aldrich Sure Seal) a un matraz de fondo redondo de 5 l de 3 bocas
equipado con un agitador mecánico. La mezcla resultante se enfrió
hasta menos de -45ºC (baño de hielo seco/acetona) y se añadió
bis(trimetilsilil)amida de litio (0,80 moles, 800 ml
de 1M en THF y 0,6 l en hexanos, 1,2 equivalentes) mientras se
mantenía la temperatura por debajo de -45ºC durante 0,5 horas. En un
matraz de 5 l separado, se combinaron a -15ºC EtOH (2,5 l) y HCl
(HCl 4N en dioxano, 1l). La reacción de la cumarina se extinguió
mediante la adición de la solución de HCl/EtOH enfriada. Después de
0,5 horas, la temperatura de la mezcla de reacción resultante era
-8,3ºC. La mezcla de reacción se mantuvo a 0ºC durante la noche, se
concentró hasta aproximadamente 2,5 l y se sometió a reparto entre
EtOAc (3 l) y agua (4 l). La capa orgánica se lavó con HCl acuoso (4
x 1,2 l, HCl 0,5 N). El pH de las capas acuosas combinadas se ajustó
hasta aproximadamente 8 mediante la adición de NaOH acuoso al 10% y
se extrajo con cloruro de metileno (1 x 7 l y 3 x 2 l). Las capas
orgánicas combinadas se secaron (MgSO_{4}, 900 g), se filtraron y
se añadió con agitación HCl 4M en dioxano (400 ml). Al terminar la
precipitación, el sólido se retiró mediante filtración. La mezcla se
concentró hasta 2,5 l, se añadieron hexanos (2,5 l) y el precipitado
se aisló mediante filtración. La torta filtrante se lavó con cloruro
de metileno/hexanos (1:2), se secó por succión y se secó en horno de
vacío a 40ºC para obtener el producto deseado (251 g, 60% de
rendimiento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
\vskip1.000000\baselineskip
El compuesto previo se preparó usando
esencialmente los mismos procedimiento y cantidades relativas que se
especifican para su isómero en el Ejemplo B, Etapa 4.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
\vskip1.000000\baselineskip
El compuesto previo se preparó usando
esencialmente los mismos procedimiento y cantidades relativas que se
especifican para su isómero en el Ejemplo B, Etapa 5.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Etapa
1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se añadió N-yodosuccinimida
(144,0 g, 0,641 moles) a una solución de
5-clorosalicilaldehído (100 g, 0,638 moles) en
dimetilformamida (400 ml). La mezcla de reacción se agitó durante 2
días a temperatura ambiente. Se añadió
N-yodosuccinimida adicional (20,0 g) y la agitación
se continuó durante 2 días adicionales. La mezcla de reacción se
diluyó con acetato de etilo (1 l), se lavó con ácido clorhídrico
(300 ml, 0,1N), agua (300 ml), tiosulfato sódico (5%, 300 ml),
salmuera (300 ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró hasta
sequedad para proporcionar el aldehído deseado (162 g, 92% de
rendimiento) como un sólido amarillo claro.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
\vskip1.000000\baselineskip
Una mezcla de
3-yodo-5-clorosalicilaldehído
(100 g, 0,354 moles), anhídrido acético (300 ml) y trietilamina (54
ml) se calentó a reflujo durante 18 horas. Al enfriar, la cumarina
deseada precipitaba como un material cristalino de color marrón
claro. Este se filtró, se lavó con hexano/acetato de etilo (4:1, 200
ml) y se secó al aire. Rendimiento: 60 g (55%).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
Se añadió hexametildisilazano de litio (21,62 ml,
1M, 21,62 milimoles) a una solución de
6-cloro-8-yodocumarina
(6,63 g, 21,62 milimoles) en tetrahidrofurano (100 ml) a -78ºC. La
mezcla de reacción se agitó a esta temperatura durante 30 minutos y
a continuación a 0ºC durante 1 hora. Se añadió ácido acético (1,3 g,
21,62 milimoles) a la mezcla de reacción. La mezcla de reacción se
vertió en acetato de etilo (300 ml) y solución saturada de carbonato
sódico (200 ml). La capa orgánica se separó, se lavó con salmuera
(200 ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró para proporcionar un
residuo. El residuo se añadió a éter anhidro (200 ml) seguido por
dioxano/HCl (4N, 30 ml) a 0ºC. La mezcla de reacción se agitó
durante 1 hora a temperatura ambiente, se filtró y se secó a vacío
para proporcionar el producto deseado (4,6 g, 59% de rendimiento)
como un polvo. (RPHPLC: Rf 6,8 minutos; Gradiente acetonitrilo al
10%-acetonitrilo al 90% durante 15 minutos y a continuación hasta
acetonitrilo al 100% durante los siguientes 6 minutos. Tanto el agua
como el acetonitrilo contienen 0,1% de TFA. Columna para
proteínas-péptidos Vydac C18, 2 ml/minuto de caudal,
controlada a 254 nm).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
Se burbujeó cloruro de hidrógeno gaseoso en una
solución de hidrocloruro de
4-amino-3,4-dihidro-6-cloro-8-yodocumarina
(22,0 g, 61,09 milimoles) en etanol (250 ml) manteniendo la mezcla
de reacción a 0-10ºC hasta la saturación. Después de
6 horas a reflujo, la mayoría del disolvente se retiraba por
destilación. El residuo enfriado se añadió a éter anhidro y se agitó
durante 2 horas. La goma inicial se convertía en un material
cristalino. El producto cristalino se filtró y se secó para
proporcionar el producto deseado (20 g, 81% de rendimiento) como un
polvo cristalino blanquecino. (Rf 7,52 minutos, condiciones como la
Etapa 3).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
Una mezcla de BOC-gly (2,16 g,
12,31 milimoles), HOBT (1,67 g, 12,31 de rendimiento), EDCl (2,36 g,
12,31 milimoles) y DMF (50 ml) se agitó a 0ºC durante 1 hora. Se
añadió a la mezcla de reacción hidrocloruro de
3-amino-3-(5-cloro-2-hidroxi-3-yodo)propionato
de etilo (5,0 g, 12,31 milimoles) seguido por trietilamina (3,5 ml).
La mezcla de reacción se agitó durante 18 horas a temperatura
ambiente. La DMF se retiró a vacío y el residuo se sometió a reparto
entre acetato de etilo (300 ml) y bicarbonato sódico (200 ml). La
capa orgánica se lavó con ácido clorhídrico (1N, 100 ml), salmuera
(200 ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró para proporcionar el
producto deseado como un sólido (6 g, 93% de rendimiento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
6
Se añadió dioxano/HCl (4N, 20 ml) a
3-(N-BOC-gly)-amino-3-(5-cloro-2-hidroxi-3-yodo)fenilpropionato
de etilo (6,0 g, 11,39 milimoles) a 0ºC y se agitó a temperatura
ambiente durante 3 horas. La mezcla de reacción se concentró y se
concentró una vez más después de la adición de tolueno (100 ml). El
residuo obtenido se suspendió en éter y se filtró y se secó para
proporcionar el producto deseado como un polvo cristalino (5,0 g,
95% de rendimiento). (RPHPLC: Rf 8,3 minutos, condiciones como en la
Etapa 3).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
Se añadió cloramina T (23 g, 0,1 mol) a una
solución de 5-bromosalicilaldehído (2,0 g, 0,1
moles) y yoduro potásico (17 g, 0,1 moles) en acetonitrilo (150 ml)
y agua (50 ml) en un matraz de fondo redondo de 500 ml con agitador
magnético. La mezcla se dejó reaccionar durante 1 hora. La mezcla de
reacción se sometió a reparto entre ácido clorhídrico (10%, 200 ml)
y acetato de etilo. La capa orgánica se secó (Na_{2}SO_{4}), se
filtró y se concentró a vacío. Se añadieron hexanos al residuo y la
mezcla de reacción se calentó hasta 50ºC durante 15 minutos. El
material no disuelto se retiró mediante filtración. El filtrado se
concentró a vacío para dejar
3-yodo-5-bromosalicilaldehído
de color amarillo canario (26 g).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
El compuesto previo se preparó usando
esencialmente el mismo procedimiento del Ejemplo E, Etapas
2-6, donde en la Etapa 2, el
3-yodo-5-clorosalicilaldehído
se substituía por una cantidad equivalente de producto de la Etapa
1,
3-yodo-5-bromosalicilaldehído.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
Se añadieron etanol (375 ml) y agua desionizada
(375 ml) a un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 2 l equipado con
un agitador mecánico, un adaptador de Claisen, un embudo de adición,
un condensador de reflujo y un termopar. Se añadió al matraz de
reacción
1,3-diamino-2-hidroxipropano
(125,4 g, 1,39 moles) (Aldrich) y se agitó para disolver. Se añadió
disulfuro de carbono (84 ml, 1,39 moles) gota a gota a través del
embudo de adición a 25-33ºC durante un período de 35
minutos para proporcionar una mezcla blanca como la leche. La
temperatura se mantuvo con un baño de hielo. La mezcla de reacción
se sometió a reflujo a 73,4ºC durante 2 horas para proporcionar una
solución amarilla. La mezcla de reacción se enfrió con un baño de
hielo hasta 25ºC y se añadió HCl concentrado (84 ml) gota a gota
mientras se mantenía la temperatura a 25-26ºC. La
mezcla de reacción se sometió a reflujo durante 21 horas a 78,4ºC.
La solución de reacción se enfrió hasta 2ºC y el producto se recogió
a través de filtración a vacío. El sólido blanco se lavó tres veces
con etanol:agua (1:1) (50 ml) refrigerados con baño de hielo y se
secó a vacío a 40ºC para proporcionar
5-hidroxitetrahidropirimidin-2-tiona
(63,75 g, 34,7% de rendimiento) como un sólido blanco.
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
Se añadieron
5-hidroxitetrahidropirimidin-2-tiona
(95 g, 0,72 moles) preparada en la Etapa 1, etanol absoluto (570 ml)
y yoduro de metilo (45 ml, 0,72 moles) a un matraz de fondo redondo
de 2 l equipado con un agitador mecánico y un termopar. La mezcla de
reacción se sometió a reflujo a 78ºC durante 5 horas y a
continuación se enfrió hasta temperatura ambiente. La mezcla de
reacción se concentró a vacío para proporcionar un sólido blanco
(194,72 g). El sólido blanco se trituró tres veces con éter etílico
(500 ml) y se secó a vacío para proporcionar hidroyoduro de
2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
(188,22 g, 95,4% de rendimiento) como un sólido blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
Se añadieron hidroyoduro de
2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
(150,81 g, 0,55 moles), cloruro de metileno (530 ml),
dimetilacetamida (53 ml) y trietilamina (76,7 ml, 0,55 moles) a un
matraz de fondo redondo de 3 bocas de 2 l equipado con condensador
de reflujo, un agitador mecánico y una atmósfera estática de
nitrógeno. La mezcla se enfrió con un baño de hielo y se añadió
bicarbonato de di-terc-butilo
(120,12 g, 0,55 moles) a 4ºC. La mezcla de reacción se calentó a
42,5ºC durante 18 horas para proporcionar una solución de color
amarillo claro. La solución de reacción se transfirió a un embudo
separador de 2 l y se lavó 3 veces con agua DI (200 ml), se secó con
MgSO_{4}, se filtró y se concentró a vacío para proporcionar
Boc-2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
(134,6 g, 99,35% de rendimiento) como un aceite viscoso de color
amarillo claro.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
Se calentaron a 100ºC con agitación durante 2
días
Boc-2-metiltioéter-5-hidroxipirimidina
(50,3 g, 0,204 moles), ácido
3-amino-5-hidroxibenzoico
(Aust. J. Chem. (1981) 34(6), 1319-24) (25,0
g, 0,1625 moles) y 50 ml de DMA anhidra. Resultaba un precipitado en
forma de suspensión. La reacción se enfrió hasta temperatura
ambiente y el precipitado se filtró, se lavó con CH_{3}CN, a
continuación éter etílico y se secó. Este sólido se suspendió en
H_{2}O y se acidificó con HCl concentrado dando como resultado una
solución. Esta se congeló y se liofilizó para dar el producto
deseado como un sólido blanco (14,4 g).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
Un matraz de 4 l equipado con un condensador, una
sonda de temperatura y un agitador mecánico se cargó con Zn metálico
(180,0 g, 2,76 moles, malla -30-100) y THF (1,25 l).
Mientras se agitaba, se añadió 1,2-dibromoetano
(4,74 ml, 0,05 moles) a través de una jeringa [alternativamente,
puede substituirse por TMS Cl (0,1 equivalentes) a temperatura
ambiente durante 1 hora]. Después de la purga del gas inerte (3
ciclos de N_{2}/vacío) la suspensión de zinc en THF se calentó
hasta reflujo (65ºC) y se mantuvo a esta temperatura durante 1 hora.
La mezcla se enfrió hasta 50ºC antes de cargar bromoacetato de
terc-butilo (488 g, 369 ml, 2,5 moles) a través de
una jeringa de 50 ml y una bomba de jeringa (dispositivo fijado a
4,1 ml/minuto) durante 1,5 horas. Una temperatura de reacción de
50ºC +/-5ºC se mantuvo a lo largo de la adición. La mezcla de
reacción se dejó agitar a 50ºC durante 1 hora después de que la
adición fuera completa. Subsiguientemente, la mezcla se dejó enfriar
hasta 25ºC y el producto precipitado se dejó sedimentar. Las aguas
madres de THF se decantaron en un matraz de fondo redondo de 2 l
usando una varilla filtrante fritada gruesa y transferencia con
vacío parcial (20 mm de Hg). Esto retiraba aproximadamente 65% del
THF de la mezcla. Se añadió
1-metil-2-pirrolidinona
(NMP, 800 ml) y la agitación se reanudó durante 5 minutos. La mezcla
de reacción puede filtrarse para retirar cualquier zinc restante. El
análisis indicaba una concentración de reactivo de Reformatsky
deseado de 1,57 M con un rendimiento molar de 94%. Alternativamente,
el reactivo sólido puede aislarse mediante filtración de la mezcla
de reacción original. La torta puede lavarse con THF hasta que se
obtiene un sólido blanco y se seca bajo N_{2} para obtener el
producto deseado como un monosolvato de THF que puede almacenarse a
-20ºC (desecado) durante períodos prolongados. Las recuperaciones
típicas son 85-90%.
Etapa
2
Se añadió carbonato potásico (polvo, secado en el
horno a 100ºC bajo vacío, 8,82 g, 60 milimoles) a una solución de
3,5-diclorosalicilaldehído (11,46 g, 60 moles) en
DMF (40 ml) a temperatura ambiente para dar una suspensión de color
amarillo brillante. Se añade a continuación MEMCl (puro, 7,64 g, 61
moles) mientras se mantiene la temperatura del baño a 20ºC. La
mezcla se agitó a continuación a 22ºC durante 6 horas y se añadió
MEMCl (0,3 g, 2,4 milimoles). La mezcla se agitó durante otras 0,5
horas y la mezcla de reacción se vertió en agua fría (200 ml) para
precipitar el producto. La suspensión se filtró sobre un filtro de
presión y la torta se lavó con agua (2 x 50 ml) y se secó bajo
N_{2}/vacío para proporcionar el producto (14,94 g, 89%) como un
sólido blanquecino. ^{1}H NMR (CDCl_{3}, TMS) 3,37 (s, 3H), 3,54
a 3,56 (m, 2H), 3,91 a 3,93 (m, 2H), 5,30 (s, 2H), 7,63 (d, 1H),
7,73 (d, 1H), 10,30 (s, 1H); ^{13}C NMR (CDCl_{3}, TMS) d (ppm):
59,03, 70,11, 99,57, 126,60, 129,57, 130,81, 132,07, 135,36, 154,66,
188,30. DSC: 48,24ºC (endo 90,51 J/g);
Microanalítica: calculado para C_{11}H_{12}Cl_{2}O_{4}: | C: 47,33%; H: 4,33%; Cl: 25,40%; |
encontrado: | C: 47,15%; H: 4,26%; Cl: 25,16%. |
El producto de la Etapa 2A (35,0 g, 0,125 moles)
se cargó a un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 1 l equipado con
un agitador mecánico y un embudo de adición, seguido por la adición
de THF (200 ml). La solución se agitó a 22ºC y a continuación se
añadió de una vez (S)-fenilglicinol (17,20 g, 0,125
moles). Después de 30 minutos a 22ºC, se añadió MgSO_{4} (20 g).
La mezcla se agitó durante 1 hora a 22ºC y se filtró sobre un filtro
fritado grueso. El filtrado se concentró bajo presión reducida. No
se realizó purificación adicional y la imina en bruto se usó
directamente en la reacción de acoplamiento, Etapa 2, C.
Un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 1 l
equipado con un agitador mecánico y un embudo de adición se cargó
con el reactivo sólido producido en la Etapa 1 (91,3 g, 0,275 moles)
y NMP (200 ml) bajo nitrógeno. La solución se enfrió a continuación
hasta -10ºC y se agitó a 350 rpm. Se preparó una solución de imina
(preparada en la Etapa 2B) en NMP bajo nitrógeno y a continuación se
añadió durante 20 minutos a la mezcla de reacción previa mientras la
temperatura se mantenía a -5ºC (temperatura de la camisa -10ºC). La
mezcla se agitó durante 1,5 horas adicionales a -8ºC y 1 hora a
-5ºC después de que la adición fuera completa. Después del
enfriamiento hasta -10ºC, una mezcla de HCl concentrado/solución
saturada de NH_{4}Cl (8,1 ml/200 ml) se añadió en 10 minutos. Se
añadió MTBE (200 ml) y la mezcla se agitó 15 minutos a 23ºC a 200
rpm. La agitación se detuvo y las capas se separaron. La capa acuosa
se extrajo con MTBE (100 ml). Las dos capas orgánicas se combinaron,
se lavaron sucesivamente con una solución saturada de NH_{4}Cl
(100 ml), agua (100 ml) y salmuera (100 ml). La solución se secó con
MgSO_{4} (30 g), se filtró y se concentró para proporcionar un
aceite naranja (66,3 g) (solidifica al reposar) que contiene el
producto deseado como un solo diastereoisómero (confirmado mediante
nmr de protón y carbono). Una muestra se purificó para el análisis
mediante recristalización en heptano para proporcionar el producto
como un sólido blanquecino.
Los espectros de NMR de protón y carbono e IR
estaban de acuerdo con la estructura deseada.
[\alpha]^{D}_{25} = +8,7º (c = 1,057, MeOH).
Microanalítica: calculado para C_{25}H_{33}Cl_{2}NO_{6}: | |
C: 58,77%; H: 6,47%; N: 2,72%; Cl: 13,78% | |
encontrado: | C: 58,22%; H: 6,54%; N: 2,70%; Cl: 13,66%. |
Etapa
3
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3A. Una solución del éster en bruto preparado en
la Etapa 2 [17,40 g, 0,033 moles (teoría)] y EtOH (250 ml) se cargó
a un reactor de 3 bocas de 1 l con camisa. La solución se enfrió
hasta 0ºC y se añadió de una vez Pb(OAc)_{4} (14,63
g, 0,033 moles). Después de 2 horas se añadió una solución al 15% de
NaOH (30 ml) y el etanol se retiró bajo presión reducida. Se añadió
otra porción de NaOH al 15% (100 ml) y la mezcla se extrajo con MTBE
(2 x 100 ml), se lavó con H_{2}O (2 x 100 ml) y salmuera (50 ml),
se secó con Na_{2}SO_{4}, se filtró sobre celita y se concentró
bajo presión reducida para proporcionar un aceite naranja (12,46 g).
El aceite era homogéneo mediante cromatografía en capa fina (tlc) y
se usó sin purificación adicional.
3B. El aceite de 3A se diluyó con EtOH (30 ml) y
se añadió ácido paratoluenosulfónico (1,3 equivalentes, 0,043 moles,
8,18 g). La solución se calentó hasta reflujo durante 8 horas, se
enfrió hasta temperatura ambiente y se concentró bajo presión
reducida. El residuo se trató con THF (20 ml) y se calentó hasta
reflujo para formar una solución. La solución se enfrió hasta
temperatura ambiente y el compuesto se cristalizó. Se añadieron
heptano (30 ml) y THF (10 ml) para formar una suspensión fluida que
se filtró. La torta se lavó con THF/heptano (40 ml, 1/1) y se secó a
vacío durante 2 horas en un filtro de presión bajo nitrógeno para
proporcionar un sólido blanco (7,40 g).
Los espectros de NMR de protón y carbono e IR
estaban de acuerdo con el producto deseado como substancialmente un
solo enantiómero.
Microanalítica: calculado para C_{18}H_{21}Cl_{2}NO_{6}S, 0,25 C_{4}H_{8}O: | |
C: 48,73%; H: 4,95%; N: 2,99%; Cl: 15,14%. | |
encontrado: | C: 48,91%; H: 4,95%; N: 2,90%; Cl: 14,95%. |
Etapa
4
Se cargaron la base libre del producto producido
en la Etapa 3 (21,7 g, 0,065 moles), éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(17,7 g, 0,065 moles) y DMF (200 ml) a un matraz de fondo redondo de
500 ml equipado con una barra de agitación magnética y un
burbujeador de nitrógeno. La mezcla de reacción se agitó bajo
nitrógeno a temperatura ambiente durante 3,25 horas y se formaba una
solución de color naranja claro. La mezcla de reacción se vertió en
acetato de etilo (1,2 l) enfriado con hielo. La solución orgánica se
lavó con HCl 1M (250 ml) y a continuación con salmuera (500 ml), se
secó (MgSO_{4}) y se concentró bajo vacío casi hasta sequedad para
obtener un aceite que subsiguientemente se secó a 50ºC para obtener
el producto como un aceite incoloro (28,12 g, 99%). Se prepararon
cristales seminales en acetato de etilo/hexanos. El producto
(aproximadamente 28 g) se disolvió en acetato de etilo (35 ml) y
hexanos (125 ml). La solución se sembró con los cristales seminales
y se formó un precipitado. Los sólidos se filtraron y se secaron
durante la noche bajo vacío a 55ºC para dar un sólido incoloro (27,0
g, 95%).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
La glicinamida protegida con Boc preparada en la
Etapa 4 (27,0 g, 0,062 moles) se secó durante la noche sobre
P_{2}O_{5} y nódulos de NaOH. El sólido se disolvió en dioxano
(40 ml) y la solución se enfrió hasta 0ºC. Se añadió un volumen
equivalente de HCl 4N/dioxano (0,062 moles) y la reacción se llevó a
cabo durante 2 horas. En este punto la conversión era 80% mediante
RPHLC. La mezcla de reacción se concentró a 40ºC hasta una espuma
que se trituró con éter (200 ml). El sólido blanco que se formaba se
filtró y se secó sobre P_{2}O_{5} para dar el compuesto de éster
etílico de
glicino-\beta-aminoácido deseado,
como una sal de HCl (20,4 g, 88,5% de rendimiento aislado).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
3-Bromo-5-clorosalicilaldehído
protegido con MEM (129,42 g, 0,4 moles) preparado de acuerdo con el
procedimiento del Ejemplo I, Etapa 2A. Se substituyó el
3,5-diclorosalicilaldehído por una cantidad
equivalente de
3-bromo-5-clorosalicilaldehído,
que se cargó a un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 2 l equipado
con un agitador mecánico, seguido por la adición de THF (640 ml) y
(S)-fenilglicinol (54,86 g, 0,4 moles). Después de
30 minutos a 22ºC, se añadió MgSO_{4} (80 g). La mezcla se agitó
durante 2 horas a 22ºC y se filtró sobre un filtro fritado grueso.
El filtrado se concentró bajo presión reducida para producir un
aceite amarillo claro (180,0 g) que contenía la imina deseada. No se
realizó purificación adicional y el producto en bruto se usó
directamente en la reacción de acoplamiento, Etapa 2.
Microanalítica: calculado para C_{19}H_{21}BrClNO_{4}: | |
C: 51,54%; H: 4,78%; N: 3,16%; Br: 18,04%; Cl: 8,00% | |
encontrado: | C: 50,22%; H: 4,94%; N: 2,93%; Br: 17,15%; Cl: 7,56% |
Etapa
2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
En un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 5 l
equipado con un agitador mecánico, el reactivo del Ejemplo I, Etapa
1 (332,0 g, 0,8 moles) se recogió en NMP (660 ml) bajo nitrógeno. La
solución se enfrió a continuación hasta -10ºC. Se preparó una
solución de la imina de la Etapa 1 en NMP (320 ml) bajo nitrógeno y
a continuación se añadió durante 30 minutos a la mezcla de reacción
previa mientras la temperatura se mantenía a -5ºC. La mezcla se
agitó durante una hora adicional a -8ºC y a -5ºC durante 2 horas
después de que la adición fuera completa y a continuación se enfrió
hasta -10ºC. Una mezcla de HCl concentrado/solución saturada de
NH_{4}Cl (300 ml/720 ml) se añadió durante 10 minutos. Se añadió
MTBE (760 ml) y la mezcla se agitó durante 30 minutos a 23ºC. La
agitación se detuvo y las capas se separaron. La capa acuosa se
extrajo con MTBE (320 ml). Las capas orgánicas se combinaron, se
lavaron sucesivamente con NH_{4}Cl acuoso saturado (320 ml), agua
DI (320 ml) y salmuera (320 ml). La solución se secó con MgSO_{4}
(60 g), se filtró y se concentró para proporcionar un aceite
amarillo (221,0 g) que contenía el producto deseado como un solo
diastereoisómero según se determinaba mediante NMR de protón.
Microanalítica: calculado para C_{25}H_{33}BrClNO_{6}: | |
C: 53,72%; H: 5,95%; N: 2,50%; Br: 14,29%; Cl: 6,33% | |
encontrado: | C: 52,11%; H: 6,09%; N: 2,34%; Br: 12,84%; Cl: 6,33%. |
Etapa
3
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\vskip1.000000\baselineskip
Una solución de éster en bruto, preparado en la
Etapa 2 (\sim111 g) en etanol (1500 ml) se cargó bajo una
atmósfera de argón a un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 3 l
equipado con un agitador mecánico. La mezcla de reacción se enfrió
hasta 0ºC y se añadió tetraacetato de plomo (88,67 g, 0,2 moles) en
una porción. La mezcla de reacción se agitó durante 3 horas a 0ºC y
a continuación se añadió a la mezcla de reacción NaOH acuoso al 15%
(150 ml) por debajo de 5ºC. El metanol se retiró bajo presión
reducida en un rotavapor. Se añadieron otros 150 ml de NaOH acuoso
al 15% y la mezcla de reacción se extrajo con acetato de etilo (3 x
300 ml) y se lavó con agua DI (2 x 100 ml) y salmuera (2 x 100 ml) y
se secó sobre MgSO_{4} anhidro (30 g). Se filtró a continuación
sobre celite y se concentró bajo presión reducida para dar el
producto deseado (103 g) como un aceite rojo.
\newpage
Etapa
4
El compuesto previo se preparó de acuerdo con el
procedimiento empleado para el Ejemplo I, Etapa 4 y Etapa 5,
substituyendo una cantidad equivalente del producto de la Etapa 3 en
el Ejemplo I, Etapa 4. La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con
la estructura deseada.
Etapa
1
Se añadieron CH_{2}Cl_{2} (500 ml) y agua
(335 ml) al producto del Ejemplo B, Etapa 3 (50,0 g, 139,2
milimoles) y NaHCO_{3} (33,5 g, 398,3 milimoles). La mezcla se
agitó a temperatura ambiente durante 10 minutos. Una solución de
cloroformiato de bencilo (38,0 g, 222,8 milimoles) en
CH_{2}Cl_{2} (380 ml) se añadió durante 20 minutos con agitación
rápida. Después de 50 minutos, la mezcla de reacción se vertió en un
embudo separador y la capa orgánica se recogió. La fase acuosa se
lavó con CH_{2}Cl_{2} (170 ml). Las capas orgánicas combinadas
se secaron (MgSO_{4}) y se concentraron a vacío. El sólido gomoso
resultante se trituró con hexano y se recogió mediante filtración.
El sólido de color canela se secó a vacío para dar el producto
racémico deseado (61,2 g, 96% de rendimiento). Este material se
sometió a HPLC usando una columna quiral para dar cada enantiómero
puro. La columna empleada era una Whelk-O (R,R),
tamaño de partícula 10 micras, usando una fase móvil de
heptano:etanol 90:10. Se determinó que la pureza óptica era >98%
usando HPLC analítica usando condiciones de columna y disolvente
similares. La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la estructura
deseada.
Etapa
2
Se añadió yoduro de trimetilsililo (25,5 g, 127,4
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (100 ml) a través de una cánula a una
solución del compuesto obtenido en la Etapa 1 (48,5 g, 106,2
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (450 ml). La solución naranja se
agitó a temperatura ambiente durante 1 hora. Se añadió gota a gota
metanol (20,6 ml, 509,7 milimoles) y la solución se agitó durante 15
minutos. La solución de reacción se concentró a vacío para dar un
aceite naranja. El residuo se disolvió en
metil-t-butil-éter (500 ml) y se
extrajo con HCl 1N (318 ml) y agua (1 x 200 ml, 1 x 100 ml). Los
extractos acuosos se lavaron de nuevo con MTBE (100 ml). Se añadió a
la solución acuosa NaHCO_{3} sólido (40,1 g, 478 milimoles) en
pequeñas porciones. La mezcla acuosa basificada se extrajo con MTBE
(1 x 1 l, 2 x 200 ml). La solución orgánica combinada se lavó con
salmuera y se concentró a vacío para dar el producto deseado (23,3
g, 68% de rendimiento). La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
Se añadió éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(17,9 g, 65,9 milimoles) a una solución del producto de la Etapa 2
(23,3 g, 72,1 milimoles) en DMF (200 ml). La mezcla de reacción se
agitó a temperatura ambiente durante 20 horas. La mezcla se vertió
en acetato de etilo (1,2 l) y se lavó con HCl 1M (2 x 250 ml),
solución acuosa saturada de NaHCO_{3} (2 x 250ml) y salmuera (2 x
250 ml). La solución se secó (MgSO_{4}) y se concentró para dar el
producto deseado (32,0 g, 100% de rendimiento).
Análisis calculado para C_{18}H_{24}BrClN_{2}O: | C, 45,06; H, 5,04; N, 5,84 | |
Encontrado: | C, 45,17; H, 5,14; N, 6,12. |
La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
Se añadió una solución etanólica de HCl (111 ml
de una solución 3M, 332,4 milimoles) a una solución del producto de
la Etapa 3 (31,9 g, 66,5 milimoles) en etanol absoluto (205 ml). La
solución de reacción se calentó a 58ºC durante 30 minutos. La
solución se enfrió y se concentró a vacío. El residuo se disolvió en
acetato de etilo (250 ml) y se agitó a 0ºC durante 2 horas. Un
precipitado blanco se recogió mediante filtración y se lavó con
acetato de etilo frío. El sólido se secó a vacío para dar el
producto deseado (23,5 g, 85% de rendimiento).
Análisis calculado para C_{13}H_{16}BrClN_{2}O + 1,0 HCl: | C, 37,53; H, 4,12; N, 6,73 | |
Encontrado: | C, 37,29; H, 4,06; N, 6,68. |
La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura deseada.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Etapa
1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se añadió carbonato potásico (polvo, secado en
horno a 100ºC bajo vacío, 22,1 g, 0,16 moles) a una solución de
3-cloro-5-bromosalicilaldehído
(35,0 g, 0,15 moles) en DMF (175 ml) a temperatura ambiente para dar
una suspensión de color amarillo brillante. Se añadió a continuación
MEMCl (puro, 25,0 g, 0,2 moles) mientras se mantenía la temperatura
del baño a 20ºC. La mezcla se agitó a continuación a 22ºC durante 6
horas y se vertió en agua DI (1200 ml) para precipitar el producto.
La suspensión se filtró sobre un filtro de presión y la torta se
lavó con agua DI (2 x 400 ml) y se seco bajo N_{2}/vacío para
proporcionar el producto (46,0 g, 95% de rendimiento) como un sólido
blanquecino. ^{1}H NMR (CDCl_{3}, TMS) 3,35 (s, 3H), 3,54 a 3,56
(m, 2H), 3,91 a 3,93 (m, 2H), 5,30 (s, 2H), 7,77 (d, 1H), 7,85 (d,
1H), 10,30 (s, 1H); ^{13}C NMR (CDCl_{3}, TMS) (ppm): 59,05,
70,11, 71,49, 99,50, 117,93, 126,69, 129,78, 132,37, 138,14, 155,12,
188,22. DSC: 48,24ºC (endo 90,51 J/g);
Microanalítica: calculado para C_{11}H_{12}BrClO_{4}: | |
C: 40,82%; H: 3,74%; Cl: 10,95%; Br: 24,69%; | |
encontrado: | C: 40,64%; H: 3,48%; Cl: 10,99%; Br: 24,67%. |
Etapa
2
\vskip1.000000\baselineskip
El producto de la Etapa 1 (32,35 g, 0,1 moles) se
cargó a un matraz de fondo redondo 3N de 500 ml equipado con un
agitador mecánico, seguido por la adición de THF (160 ml) y
(S)-fenilglicinol (13,71 g, 0,1 moles). Después de
30 minutos a 22ºC, se añadió MgSO_{4} (20 g). La mezcla se agitó
durante 1 hora a 22ºC y se filtró sobre un filtro fritado grueso. El
filtrado se concentró bajo presión reducida para dar un aceite
amarillo claro (48,0 g) que contenía la imina deseada. No se realizó
purificación adicional y el producto en bruto se usó directamente en
la siguiente etapa de reacción.
Microanalítica: calculado para C_{19}H_{12}BrClNO_{4}: | |
C: 51,54%; H: 4,78%; N: 3,16%; Br: 18,04%; Cl: 8,00% | |
encontrado: | C: 51,52%; H: 5,02%; N: 2,82%; Br: 16,31%; Cl: 7,61%. |
Etapa
3
En un matraz de fondo redondo 3N de 5 l equipado
con un agitador mecánico, el reactivo del Ejemplo I, Etapa 1 (332,0
g, 0,8 moles) se recogió en NMP (660 ml) bajo nitrógeno. La solución
se enfrió a continuación hasta -10ºC. Una solución de la imina
producida de la Etapa 2 en NMP (320 ml) se preparó bajo nitrógeno y
a continuación se añadió durante 30 minutos a la mezcla de reacción
previa mientras la temperatura se mantenía a -5ºC. La mezcla se
agitó durante una hora adicional después de que la adición fuera
completa y se enfrió hasta -10ºC. Una mezcla de HCl
concentrado/solución saturada de NH_{4}Cl (30 ml/720 ml) se añadió
durante 10 minutos. Se añadió MTBE (760 ml) y la mezcla se agitó
durante 1 hora a 23ºC. La agitación se detuvo y las capas se
separaron. La capa acuosa se extrajo con MTBE (320 ml). Las dos
capas orgánicas se combinaron, se lavaron sucesivamente con una
solución saturada de NH_{4}Cl (320 ml), agua DI (320 ml) y
salmuera (320 ml). La solución se secó con MgSO_{4} (60 g), se
filtró y se concentró para proporcionar un aceite amarillo (228 g)
que contenía el producto deseado como un solo diastereoisómero. DSC:
227,54ºC (endo. 61,63 J/g);
Microanalítica: calculado para C_{25}H_{33}BrClNO_{6}: | |
C: 53,72%; H: 5,95%; N: 2,50%; Br: 14,29%; Cl: 6,33% | |
encontrado: | C: 53,80%; H: 6,45%; N: 2,23%; Br: 12,85%; Cl: 6,12%. |
Etapa
4
Una solución de éster en bruto producido en la
Etapa 3 (\sim111 g) en etanol (1500 ml) se cargó bajo una
atmósfera de nitrógeno a un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 3
l equipado con un agitador mecánico. La mezcla de reacción se enfrió
hasta 0ºC y se añadió en una porción tetraacetato de plomo (88,67 g,
0,2 moles). La mezcla de reacción se agitó durante 3 horas a 0ºC y a
continuación se añadió a la mezcla de reacción por debajo de 5ºC
NaOH acuoso al 15% (150 ml). El etanol se retiró bajo presión
reducida sobre un rotavapor. Se añadieron otros 600 ml de NaOH
acuoso al 15% y la mezcla de reacción se extrajo con acetato de
etilo (2 x 300 ml), MTBE (2 x 200 ml) y acetato de etilo (2 x 200
ml). Las capas orgánicas se combinaron y se lavaron con agua DI (2 x
100 ml) y salmuera (2 x 100 ml) y se secaron sobre MgSO_{4}
anhidro (30 g). La solución se filtró a continuación sobre celita y
se concentró bajo presión reducida para dar el producto como un
aceite naranja (96 g) que se usó en la siguiente etapa sin
purificación adicional.
Microanalítica: calculado para C_{24}H_{29}BrClNO_{5}: | |
C: 54,71%; H: 5,54%; N: 2,65%; Br: 15,16%; Cl: 6,72% | |
encontrado: | C: 52,12%; H: 5,40%; N: 2,47%; Br: 14,77%; Cl: 6,48%. |
Etapa
5
El producto en bruto de la Etapa 4 (\sim94 g)
se recogió en etanol absoluto (180 ml) y se añadió monohidrato de
ácido para-toluenosulfónico (50,0 g, 0,26 moles). La
mezcla de reacción se calentó a continuación hasta reflujo durante 8
horas, después de lo cual el disolvente se retiró bajo presión
reducida. El sólido residual se recogió en THF (100 ml) y el THF se
separó a continuación por arrastre bajo presión reducida. El residuo
se disolvió en acetato de etilo (500 ml) y se enfrió hasta
\sim5ºC. El sólido se filtró y se lavó con heptano (2 x 50 ml)
para dar un sólido blanco. El sólido se secó a continuación al aire
para dar el producto deseado como un sólido blanco (38 g) como un
isómero simple. ^{1}H NMR (DMSO, TMS) (ppm) 1,12 (t, 3H), 2,29 (s,
3H), 3,0 (m, 2H), 4,05 (q, 2H), 4,88 (t, 1H), 7,11 (d, 2H), 7,48 (d,
2H), 7,55 (d, 1H), 7,68 (1H, d), 8,35 (s ancho, 3H); ^{13}C NMR
(DMSO, TMS) (ppm): 13,82, 20,75, 37,13, 45,59, 60,59, 110,63,
122,47, 125,44, 127,87, 128,06, 129,51, 131,59, 137,77, 145,33,
150,14, 168,98; DSC: 69,86ºC (end., 406,5 J/g), 165,72ºC (end. 62,27
J/g), 211,24ºC (exo. 20,56 J/g) [\alpha]^{D}_{25} =
+4,2º (c=0,960, MeOH); IR (MIR) (cm-1) 2922, 1726,
1621, 1494, 1471, 1413, 1376, 1324, 1286, 1237, 1207;
Microanalítica: calculado para C_{18}H_{21}BrClNO_{6}S: | |
C: 43,69%; H: 4,27%; N: 2,83%; Br: 16,15%; Cl: 7,16%; S: 6,48% | |
encontrado: | C: 43,40%; H: 4,24%; N: 2,73%; B3: 16,40%; Cl: 7,20%; S: 6,54%. |
Etapa
6
El compuesto previo se preparó de acuerdo con los
procedimientos esbozados en el Ejemplo I, Etapa 4 y Etapa 5, donde
una cantidad equivalente del producto intermedio preparado en la
Etapa 5 como la base libre se substituye en el Ejemplo I, Etapa
4.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
Se añadió N-yodosuccinimida
(144,0 g, 0,641 moles) a una solución de
5-clorosalicilaldehído (100 g, 0,638 moles) en
dimetilformamida (400 ml). La mezcla de reacción se agitó durante 2
días a temperatura ambiente. Se añadió
N-yodosuccinimida adicional (20,0 g) y la agitación
se continuó durante 2 días adicionales. La mezcla de reacción se
diluyó con acetato de etilo (1 l), se lavó con ácido clorhídrico
(300 ml, 0,1N), agua (300 ml), tiosulfato sódico (5%, 300 ml),
salmuera (300 ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró hasta
sequedad para proporcionar el aldehído deseado como un sólido
amarillo claro (162 g, 905 de rendimiento).
La MS y la NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
Se añadió carbonato potásico (41,4 g, 0,30 moles)
a una solución de
3-yodo-5-clorosalicilaldehído
(8,74 g, 0,30 moles) en DMF (200 ml) a 20ºC. Esto daba como
resultado una suspensión amarilla y se añadió MEM-Cl
(38,2 g, 0,305 moles) manteniendo la temperatura de reacción.
Después de 2 horas, se añadió MEM-Cl adicional (1,5
g). Después de agitar durante 1 hora, la mezcla de reacción se
vertió en una mezcla de hielo-agua y se agitó. El
precipitado formado se filtró y se secó a vacío para proporcionar el
aldehído protegido deseado. Rendimiento: 95 g (85%).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
Se añadió (S)-fenilglicinol
(15,37 g, 0,112 moles) a una solución de
2-O-(MEM)-3-yodo-5-clorosalicilaldehído
(41,5 g, 0,112 moles) en THF (200 ml) a temperatura ambiente.
Después de 1 hora de agitación, se añadió MgSO_{4} (16 g) y la
agitación se continuó durante 2 horas. La mezcla de reacción se
filtró y el filtrado se concentró y se secó a vacío durante 2 horas
para obtener la imina intermedia deseada. Un matraz de fondo redondo
de 2 bocas se cargó con el reactivo de Reformatsky del Ejemplo I,
Etapa 1 (81,8 g, 0,2464 moles) y N-metilpirrolidona
(300 ml) y se agitó a -10ºC. Una solución de la imina en
N-metilpirrolidona (100 ml) se añadió lentamente
manteniendo la temperatura a -10ºC. La mezcla se mantuvo a esta
temperatura durante 2 horas y durante 1 hora a -5ºC. Después de
enfriar la mezcla de reacción hasta -10ºC, se añadió una solución de
HCl concentrado en cloruro amónico saturado (16 ml/200 ml). Se
añadió éter etílico (500 ml) y se agitó durante 2 horas a
temperatura ambiente. La capa de éter se separó y la capa acuosa se
extrajo adicionalmente con éter (300 ml). Las capas de éter
combinadas se lavaron con cloruro amónico saturado (200 ml), agua
(200 ml), salmuera (200 ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró
para proporcionar un aceite (61,0 g, 90% de rendimiento). La ^{1}H
NMR indicaba que la estructura deseada era substancialmente un
diastereoisómero y la MS estaba de acuerdo con la estructura
deseada.
Etapa
4
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Una solución del éster en bruto producido en la
Etapa 3 (48,85 g, 80,61 milimoles) se disolvió en etanol (500 ml) y
se enfrió hasta 0ºc. Se añadió tetraacetato de plomo (35,71 g, 80,61
milimoles). Después de 3 horas, se añadió a la mezcla de reacción
solución al 15% de NaOH (73 ml). La mayoría del etanol se retiró
bajo presión reducida. Se añadió al residuo una solución al 15% de
NaOH (200 ml) y que se extrajo a continuación con éter (400 ml). La
capa de éter se lavó con agua (100 ml), salmuera (100 ml), se secó y
se concentró para proporcionar un aceite naranja. El aceite se
disolvió en etanol (100 ml) y se añadió ácido
para-toluenosulfónico (19,9 g). La solución se
calentó a reflujo durante 8 horas y se concentró bajo presión
reducida. El residuo se diluyó con THF (60 ml) y se calentó a
reflujo y se enfrió. El precipitado se filtró, se lavó con
hexano/THF (300 ml, 1:1) y se secó para proporcionar el
producto
deseado.
deseado.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
5
Se añadió trietilamina (4,8 ml) a una mezcla de
BOC-gly-OSu (9,4 g, 34,51 milimoles)
y sal de PTSA de
3-(S)-amino-3-(5-cloro-2-hidroxi-3-yodo)propionato
de etilo (17,0 g, 31,38 milimoles) en DMF (200 ml). La mezcla de
reacción se agitó durante 18 horas a temperatura ambiente. La DMF se
retiró a vacío y el residuo se sometió a reparto entre acetato de
etilo (600 ml) y ácido clorhídrico diluido (100 ml). La capa
orgánica se lavó con bicarbonato sódico (200 ml) y salmuera (200
ml), se secó (MgSO_{4}) y se concentró para proporcionar el
producto deseado como un sólido (14,2 g, 86% de rendimiento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
6
Se añadió dioxano/HCl (4N, 70 ml) a
3-(S)-(N-BOC-gly)-amino-3-(5-cloro-2-hidroxi-3-yodo)fenilpropionato
de etilo (37,20 g, 70,62 milimoles) a 0ºC y se agitó a temperatura
ambiente durante 3 horas. La mezcla de reacción se concentró y se
concentró una vez más después de la adición de tolueno (100 ml). El
residuo obtenido se suspendió en éter, se filtró y se secó para
proporcionar el producto deseado como un polvo cristalino (32,0 g,
98% de rendi-
miento).
miento).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
\vskip1.000000\baselineskip
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Etapa
1
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El compuesto previo se preparó de acuerdo con el
Ejemplo I, Etapa 2A, substituyendo el
3,5-diclorosalicilaldehído por una cantidad
equivalente de
2-hidroxi-3,5-dibromobenzaldehído.
Rendimiento 88%; Sólido amarillo claro; p.f.
46-47ºC; R_{f} = 0,6 (EtOAc/Hexano 1:1 v/v);
^{1}H-NMR (CDCl_{3}) d 3,37 (s, 3H), 3,56 (m,
2H), 3,92 (m, 2H), 5,29 (s, 2H), 7,91 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 7,94 (d,
1H, J = 2,4 Hz), 10,27 (s, 1H); FAB-MS m/z
367 (M^{+})
HR-MS calculado para C_{11}H_{12}Br_{2}O | 367,9083 | |
encontrado | 367,9077 |
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
2
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El compuesto previo se preparó usando el
procedimiento del Ejemplo I, Etapa 2B y Etapa 2C, substituyendo una
cantidad equivalente del compuesto de la Etapa 1 en el Ejemplo I,
Etapa 2B.
Rendimiento 90%; Sólido amarillo; p.f.
57-59ºC; R_{f} = 0,46 (EtOAc/Hexano 1:1 v/v);
^{1}H-NMR (CDCl_{3}) d 1,45 (s, 9H); 2,1 (ancho,
1H, intercambiable), 2,51 (d, 1H, J_{1} = 9,9 Hz, J_{2} = 15,3
Hz), 2,66 (d, 1H, J_{1} = 4,2 Hz, J_{2} = 15,3 Hz), 3,02 (ancho,
1H, intercambiable), 3,39 (s, 3H), 3,58-3,62 (m,
4H), 3,81 (m, 1H), 3,93 (m, 2H), 4,63 (dd, 1H, J = 4,2 Hz), 5,15 (s,
2H), 7,17-7,25 (m, 6H), 7,49 (d, 1H);
FAB-MS m/z 602 (M+H)
HR-MS calculado para C_{25}H_{34}NBr_{2}O_{6} | 602,0753 | |
encontrado | 602,0749. |
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
El compuesto previo (sal de
p-toluenosulfonato) se preparó de acuerdo con el
Ejemplo I, Etapa 3, substituyendo una cantidad equivalente del
producto preparado en la Etapa 2 en el Ejemplo I, Etapa 3A.
Rendimiento 62%; sólido blanco; ^{1}H-NMR
(DMSO-d_{6}) d 1,09 (t, 3H, J = 7,2 Hz), 2,27 (s,
3H), 2,97 (dd, 2H, J_{1} = 3,0 Hz, J_{2} = 7,2 Hz), 4,02 (q, 2H,
J = 7,2 Hz), 4,87 (t, 1H, J = 7,2 Hz), 7,08 (d, 2H, J = 4,8 Hz),
7,45 (m, 3H), 7,57 (d, 1H, J = 2,4 Hz), 8,2 (ancho, 3H);
FAB-MS m/z 365 (M+H)
HR-MS calculado para C_{11}H_{14}NBr_{2}O_{3} | 365,9340 | |
encontrado | 365,9311 |
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
4
El compuesto previo se preparó usando el
procedimiento del Ejemplo I, Etapa 4, substituyendo el compuesto
preparado en la Etapa 3. El producto intermedio protegido con BOC
resultante se convirtió en el compuesto deseado usando el
procedimiento del Ejemplo I, Etapa 5.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se prepara de acuerdo con el
procedimiento del Ejemplo I, substituyendo el
3,5-diclorosalicilaldehído en el Ejemplo I, Etapa 2A
por una cantidad equivalente de
3-yodo-5-bromosalicilaldehído
preparado en el Ejemplo F, Etapa 1.
Etapa
1
Se añadió yoduro de trimetilsililo (30,5 g, 152,0
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (100 ml) a través de una cánula a una
solución del
(R)-(CBZ)-\beta-aminoéster del
Ejemplo K, Etapa 1 (55,3 g, 121,0 milimoles) en CH_{2}Cl_{2}
(500 ml). La solución de reacción se agitó a temperatura ambiente
durante 1,5 horas. Se añadió metanol (25,0 ml, 609,2 milimoles) gota
a gota y la solución se agitó durante 15 minutos. La solución de
reacción se concentró a vacío. El residuo se disolvió en MTBE (550
ml) y se extrajo con HCl 1N (340 ml) y agua (1 x 200 ml, 1 x 150
ml). Los extractos acuosos se lavaron de nuevo con MTBE (150 ml). Se
añadió a la solución acuosa NaHCO_{3} sólido (43,0 g, 512
milimoles) en pequeñas porciones. La mezcla acuosa basificada se
extrajo con MTBE (1 x 1 l, 2 x 250 ml). La solución orgánica
combinada se lavó con salmuera y se concentró a vacío para dar el
producto deseado (30,3 g, 76% de rendimiento). La ^{1}H NMR estaba
de acuerdo con la estructura propuesta. Análisis Calculado para
C_{11}H_{13}BrClNO_{3} + 0,5H_{2}O:
C, 39,84; H, 4,26; N, 4,22 | |
Encontrado: | C, 39,49; H, 3,89; N, 4,13 |
\newpage
Etapa
2
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Se añadió éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-t-Boc-glicina
(24,7 g, 90,7 milimoles) a una solución de la amina obtenida en la
Etapa 1 (29,3 g, 90,7 milimoles) en DMF (250 ml). La mezcla de
reacción se agitó a temperatura ambiente durante 20 horas. La mezcla
se vertió en acetato de etilo (1,2 l) y se lavó con HCl 1M (2 x 250
ml), solución acuosa saturada de NaHCO_{3} (2 x 250 ml) y salmuera
(2 x 250 ml). La solución se secó (MgSO_{4}) y se concentró a
vacío para dar el producto deseado (43,8 g, 100% de rendimiento). La
^{1}H NMR estaba de acuerdo con la estructura propuesta.
Etapa
3
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Se añadió una solución etanólica de HCl (105 ml
de una solución 4,3 M, 453,5 milimoles) a una solución del producto
de la Etapa 2 (43,5 g, 90,7 milimoles) en etanol absoluto (600 ml).
La solución de reacción se mantuvo a temperatura ambiente durante 1
hora. La solución se enfrió y se concentró a vacío. El residuo se
disolvió en acetato de etilo (300 ml) y se agitó a 0ºC durante 2
horas. Un precipitado blanco se recogió mediante filtración y se
lavó con acetato de etilo frío. El sólido se secó a vacío para dar
el producto deseado (30,4 g, 81% de rendimiento). La ^{1}H NMR
estaba de acuerdo con la estructura propuesta.
Etapa
4
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Se añadieron IBCF (1,5 ml, 11,4 milimoles) y NMM
(1,3 ml, 11,4 milimoles) a una solución del producto del Ejemplo H
(3,0 g, 10,3 milimoles) en DMA (10 ml) a -8ºC. La solución de
reacción se calentó hasta 8ºC durante 30 minutos. La solución se
enfrió hasta -5ºC y se añadió una solución del producto de la Etapa
3 (4,3 g, 10,3 milimoles) en DMA (18 ml) seguido por NMM (1,3 ml,
11,4 milimoles). La mezcla de reacción se calentó hasta temperatura
ambiente y se agitó durante la noche. La mezcla se filtró y el
filtrado se concentró a vacío. El residuo se disolvió en NaOH 2,5N
(30 ml) y agua (30 ml). La solución de reacción se mantuvo a
temperatura ambiente durante 1,5 horas. El pH se ajustó hasta
aproximadamente 5 y el producto se purificó mediante HPLC en fase
inversa (H_{2}O/TFA:MeCN 95:5 hasta H_{2}O/TFA:MeCN 80:20) para
dar el producto deseado (1,8 g, 22%). Análisis Calculado para
C_{22}H_{23}BrClN_{5}O_{7} + 1,6 TFA:
C, 39,45; H, 3,23; N, 9,13 | |
encontrado: | C, 39,36; H; 3,32; N, 9,52 |
La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura propuesta.
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Etapa
1
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Se añadieron CH_{2}Cl_{2} (500 ml) y agua
(380 ml) al producto del Ejemplo A, Etapa 2 (50,0 g, 158,9
milimoles) y NaHCO_{3} (38,2 g, 454,5 milimoles). La mezcla se
agitó a temperatura ambiente durante 10 minutos con desprendimiento
vigoroso de gas. Una solución de cloroformiato de bencilo (43,4 g,
222,8 milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (435 ml) se añadió durante 20
minutos con agitación rápida. Después de 40 minutos, la mezcla de
reacción se vertió en un embudo separador y la solución orgánica se
recogió. La fase acuosa se lavó con CH_{2}Cl_{2} (170 ml). La
solución orgánica combinada se secó (MgSO_{4}) y se concentró a
vacío. El sólido gomoso resultante se trituró con hexano y se
recogió mediante filtración. El sólido de color canela se secó a
vacío para dar el producto racémico deseado (62,9 g, 96%). Este
material se sometió a HPLC en fase inversa usando una columna quiral
para dar cada enantiómero puro, A y B. La columna empleada era una
Whelk-O (R,R), tamaño de partícula 10 micras, usando
una fase móvil de heptano:etanol 90:10. Se determinó que la pureza
óptica era >98% usando hplc analítica con un disolvente y unas
condiciones similares. El espectro de ^{1}H NMR estaba de acuerdo
con la estructura propuesta.
Etapa
2
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Se añadió yoduro de trimetilsililo (33,7 g, 168,5
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (125 ml) a través de una cánula a una
solución del Enantiómero A, Etapa 1 (57,9 g, 140,4 milimoles) en
CH_{2}Cl_{2} (600 ml). La solución naranja se agitó a
temperatura ambiente durante 1 hora. Se añadió gota a gota metanol
(27,3 ml, 674,1 milimoles) y la solución se agitó durante 15
minutos. La solución de reacción se concentró a vacío para dar un
aceite naranja. El residuo se disolvió en
metil-t-butil-éter (670 ml) y se
extrajo con HCl 1M (420 ml) y agua (1 x 230 ml, 1 x 130 ml). Los
extractos acuosos se lavaron de nuevo con MTBE (130 ml). Se añadió a
la solución acuosa NaHCO_{3} sólido (52,9 g, 630 milimoles) en
pequeñas porciones. La mezcla acuosa basificada se extrajo con MTBE
(1 x 1,2 l, 2 x 265 ml). La solución orgánica combinada se lavó con
salmuera y se concentró a vacío para dar el producto deseado (28,6
g, 73%). El espectro de ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura propuesta.
Se añadió yoduro de trimetilsililo (25,0 g, 123,0
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (80 ml) a través de una cánula a una
solución del Enantiómero B, Etapa 1, Ejemplo R (38,5 g, 93,4
milimoles) en CH_{2}Cl_{2} (80 ml). La solución naranja se agitó
a temperatura ambiente durante 1,5 horas. Se añadió gota a gota
metanol (20,0 ml, 500,0 milimoles) y la solución se agitó durante 20
minutos. La solución de reacción se concentró a vacío para dar un
aceite naranja. El residuo se disolvió en éter dietílico (450 ml) y
se extrajo con HCl 1M (320 ml) y agua (1 x 200 ml, 1 x 100 ml). Los
extractos acuosos se lavaron de nuevo con éter dietílico (100 ml).
Se añadió a la solución acuosa NaHCO_{3} sólido (40,1 g, 478
milimoles) en pequeñas porciones. La mezcla acuosa basificada se
extrajo con éter dietílico (1 x 1,0 l, 2 x 200 ml). La solución
orgánica combinada se lavó con salmuera y se concentró a vacío para
dar el producto deseado (20,8 g, 80%). Análisis calculado para
C_{11}H_{13}Cl_{2}NO_{3}:
C, 47,50; H, 4,71; N, 5,04 | |
encontrado: | C, 47,11; H, 4,66; N, 4,93 |
Se añadió EDCl (0,268 g, 0,0014 moles) a la
temperatura del baño de hielo a un producto del Ejemplo H (0,4 g,
0,0014 moles), el producto del Ejemplo B (0,58 g, 0,0014 moles),
trietilamina (0,142 g, 0,0014 moles), DMAP (17 mg) y DMA anhidra (4
ml). La reacción se agitó durante la noche a temperatura ambiente.
El producto intermedio de éster resultante se aisló mediante HPLC
preparativa en fase inversa. Se añadió LiOH (580 mg, 0,0138 moles) a
este éster en H_{2}O (10 ml) y CH_{3}CN (5 ml). Después de
agitar a temperatura ambiente durante 1 hora, el pH se disminuyó
hasta 2 con TFA y el producto se purificó mediante HPLC preparativa
en fase inversa para dar (después de la liofilización) el producto
deseado como un sólido blanco (230 mg).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se preparó de acuerdo con la
metodología del Ejemplo 1, substituyendo el producto del Ejemplo B
por una cantidad equivalente del producto del Ejemplo A.
El rendimiento, después de la liofilización, era
320 mg como un sólido blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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El compuesto previo se preparó de acuerdo con la
metodología del Ejemplo 1, substituyendo el producto del Ejemplo B
por una cantidad equivalente del producto del Ejemplo F. El
rendimiento (después de la liofilización) era 180 mg como un sólido
blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se preparó de acuerdo con la
metodología del Ejemplo 1, substituyendo el producto del Ejemplo B
por una cantidad equivalente del producto del Ejemplo D. El
rendimiento (después de la liofilización) era 180 mg como un sólido
blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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\vskip1.000000\baselineskip
El compuesto previo se preparó de acuerdo con la
metodología del Ejemplo 1, substituyendo el producto del Ejemplo B
por una cantidad equivalente del producto del Ejemplo E. El
rendimiento (después de la liofilización) era 250 mg como un sólido
blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se preparó de acuerdo con la
metodología del Ejemplo 1, substituyendo el producto del Ejemplo B
por una cantidad equivalente del producto del Ejemplo C. El
rendimiento (después de la liofilización) era 220 mg como un sólido
blanco.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
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Se añadió lentamente cloroformiato de isobutilo
(3,7 g, 0,027 moles) seguido por N-metilmorfolina
(2,73 g, 0,027 moles) al producto del Ejemplo H (7,8 g, 0,017 moles)
disuelto en DMA anhidra (50 ml) en un matraz secado a la llama bajo
N_{2} y a una temperatura del baño de hielo. La solución se agitó
a una temperatura del baño de hielo durante 15 minutos. Se añadió a
continuación a la mezcla de reacción el producto del Ejemplo L (10,0
g, 0,024 moles) a la temperatura del baño de hielo seguido por
N-metilmorfolina (2,43 g, 0,024 moles). La reacción
se agitó a continuación a temperatura ambiente durante la noche. El
producto intermedio de éster resultante se aisló mediante HPLC
preparativa en fase inversa. Se añadió LiOH (10 g, 0,238 moles) al
éster en H_{2}O (60 ml) y CH_{3}CN (30 ml). La mezcla de
reacción se agitó a temperatura ambiente durante 1 hora. El pH se
disminuyó a continuación hasta 2 con TFA. El producto se purificó
mediante HPLC preparativa en fase inversa para dar (después de la
liofilización) el producto deseado como un sólido blanco (9,7
g).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
A
Se añade N-metilmorfolina (4,0
ml, 0,0362 moles) al producto del Ejemplo H (9,92 g, 0,345 moles)
disuelto en DME anhidro (200 ml). La mezcla de reacción se enfrió
hasta -5ºC (baño de sal-hielo). Se añadió durante 1
minuto cloroformiato de isobutilo, IBCF (4,48 ml, 4,713 g, 0,0345
moles) y la mezcla de reacción se agitó a la temperatura del baño de
hielo durante 12 minutos. Se añadió a continuación a la mezcla de
reacción el producto del Ejemplo I (11,15 g, 0,030 moles) a la
temperatura del baño de hielo, seguido por
N-metilmorfolina (4,0 ml, 0,0362 moles). La mezcla
de reacción se dejó calentar hasta temperatura ambiente y se llevó a
la terminación y a continuación se concentró bajo vacío a 50ºC para
dar un residuo oscuro. El residuo se disolvió en
acetonitrilo:H_{2}O (aproximadamente 50 ml). El pH se hizo ácido
mediante la adición de una pequeña cantidad de TFA. El residuo se
puso en una columna C-18 (50 \mu de tamaño de
partícula) de 10 x 500 cm y el éster del producto deseado se aisló.
(Programa de disolventes: H_{2}O al 100% + TFA al 0,05% hasta
H_{2}O + TFA al 0,05%:acetonitrilo + TFA al 0,05% 30:70 durante 1
hora a 100 ml/minuto: el programa de disolventes se inició después
de que el frente de disolvente se eluyera. La purificación por
RPHPLC preparativa daba como resultado un sólido blanco (10,5 g)
después de la liofilización (50%).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
B
El producto producido en la Etapa A
(aproximadamente 11 g) se disolvió en dioxano:agua y el pH de la
solución se ajustó hasta aproximadamente 11,5
(pH-metro) mediante la adición de NaOH 2,5N. La
mezcla de reacción se agitó a temperatura ambiente. Periódicamente,
el pH se reajustó hasta >11 mediante la adición suplementaria de
base. Después de 2-3 horas, la conversión de éster
en ácido se consideraba completa mediante RPHPLC. El pH de la mezcla
de reacción se ajustó hasta aproximadamente 6 y un aceite viscoso
precipitó en solución. El aceite se aisló mediante decantación y se
lavó con agua caliente (200 ml). La mezcla acuosa resultante se dejó
enfriar y el sólido se recogió mediante filtración para dar el
compuesto previo (2,6 g después de la liofilización en solución de
HCl). El residuo, que era un aceite viscoso oscuro, se trató con
agua caliente para dar durante el enfriamiento un polvo de color
canela (4,12 g después de la liofilización en solución de HCl).
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
1
Se añadió trietilamina (0,24 g, 2,4 milimoles) a
una suspensión del producto del Ejemplo J (1,0 g, 2,4 milimoles), el
producto del Ejemplo H (0,75 g, 2,6 milimoles) y
4-dimetilaminopiridina (40 mg) en
N,N-dimetilacetamida (10 ml). La mezcla se agitó a
temperatura ambiente durante 15 minutos y se añadió hidrocloruro de
1-(3-dimetilaminopropil)-3-etilcarbodiimida
(0,60 g, 3,1 milimoles). La mezcla de reacción se agitó a
temperatura ambiente durante la noche. La mezcla se concentró a
vacío y se purificó mediante HPLC en fase inversa (gradiente de
partida H_{2}O/TFA:MeCN 90:10, tiempo de retención 22 minutos)
para dar el producto deseado (1,6 g, 52% de rendimiento).
La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con la
estructura propuesta.
Se añadió hidróxido de litio (148 mg, 6,2
milimoles) a una solución del éster producido en la Etapa 1 (800 mg,
1,2 milimoles) en una solución de MeCN:H_{2}O 1:4 (7 ml). La
mezcla de reacción se agitó a temperatura ambiente durante 2 horas.
Se añadió TFA (0,71 ml, 9,2 milimoles) y la mezcla se purificó
mediante HPLC en fase inversa (gradiente de partida
H_{2}O/TFA:MeCN 95:5, tiempo de retención 24 minutos) para dar el
producto deseado (860 mg, 83% de rendimiento).
Análisis calculado para C_{22}H_{23}BrClN_{5}O_{7} + 1,7 TFA: | |
C, 39,18; H, 3,20; N, 8,99. | |
Encontrado: | C, 39,11; H, 3,17; N, 9,07. |
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
Etapa
3
El producto de la Etapa 2 se disolvió en un
disolvente adecuado (acetonitrilo:agua) y la solución se hizo pasar
lentamente a través de una columna de intercambio iónico
Bio-Rad AG2-8X (forma de cloruro,
malla 200-400, > 5 equivalentes). La
liofilización da el producto deseado como una sal de HCl.
El compuesto previo se preparó usando el
procedimiento del Ejemplo 8 substituyendo el producto del Ejemplo I
en el Ejemplo 8, Etapa A, por el producto del Ejemplo N. El producto
se aisló mediante RPHPLC preparativa y se liofilizó para dar el
producto deseado como una sal de TFA.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se preparó usando
esencialmente los procedimientos del Ejemplo 8 y substituyendo el
producto del Ejemplo I en el Ejemplo 8, Etapa A, por el producto del
Ejemplo M. El producto se aisló mediante RPHPLC preparativa y se
liofilizó para dar el producto deseado como una sal de TFA.
La MS y la ^{1}H NMR estaban de acuerdo con la
estructura deseada.
El compuesto previo se preparó usando los
procedimientos del Ejemplo 8 y substituyendo el producto del Ejemplo
I en el Ejemplo 8, Etapa A, por el producto del Ejemplo P. El
producto se aisla mediante RPHPLC preparativa y se liofiliza para
dar el producto deseado como una sal de TFA.
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Etapa
1
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Se añadió carbonato potásico (18,5 g, 0,134
moles) a una solución de 3,5-diyodosalicilaldehído
(50,0 g, 0,134 moles) en DMF (150 ml) a 20ºC. Esto daba como
resultado una suspensión amarilla y se añadió MEM-Cl
(15,8 ml, 0,134 moles) manteniendo la temperatura de reacción.
Después de 2 horas, se añadió MEM-Cl adicional (1,5
g). Después de agitar durante 1 hora más, la mezcla de reacción se
vertió en agua de hielo y se agitó. El precipitado formado se filtró
y se secó a vacío para proporcionar el aldehído protegido deseado
(61 g, 99% de rendimiento). La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con el
producto deseado.
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Etapa
2
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Se añadió (S)-fenilglicinol (17,9
g, 0,13 moles) a una solución de
2-O-(MEM)-3,5-diyodosalicilaldehído
(41,5 g, 0,112 moles) en THF (150 ml) a temperatura ambiente.
Después de 1 hora de agitación, se añadió MgSO_{4} (20,7 g) y la
agitación se continuó durante 2 horas. La mezcla de reacción se
filtró y el filtrado se concentró y se secó a vacío durante 2 horas.
Un matraz de fondo redondo de 2 bocas se cargó con el reactivo de
Reformatsky (96 g, 0,289 moles) y N-metilpirrolidona
(250 ml) y se agitó a -10ºC. Una solución de la imina en
N-metilpirrolidona (100 ml) se añadió lentamente
manteniendo la temperatura a -10ºC. La mezcla se mantuvo a esta
temperatura durante 2 horas y durante 1 hora a -5ºC. Después de
enfriar la mezcla de reacción hasta -10ºC, se añadió una solución de
HCl concentrado en cloruro amónico saturado (16 ml/200 ml). Se
añadió éter etílico (500 ml) y la mezcla se agitó durante 2 horas a
temperatura ambiente. La capa de éter se separó y la capa acuosa se
extrajo adicionalmente con éter (300 ml). Las capas de éter
combinadas se lavaron con cloruro amónico saturado (200 ml), agua
(200 ml), salmuera (200 ml), se secaron (MgSO_{4}) y se
concentraron para proporcionar un aceite (90,0 g, 99% de
rendimiento). La NMR indicaba el producto deseado y un
diastereoisómero.
Etapa
3
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Una solución del éster en bruto de la Etapa 2
(14,0 g, 20,1 milimoles) se disolvió en etanol (100 ml) y se enfrió
hasta 0ºC. Se añadió en una porción tetraacetato de plomo (9,20 g,
20,75 milimoles). Después de 3 horas, se añadió a la mezcla de
reacción solución al 15% de NaOH (73 ml). La mayoría del etanol se
retiró bajo presión reducida. El residuo se añadió a una solución al
15% de NaOH (200 ml) que se extrajo con éter (400 ml). La capa de
éter se lavó con agua (100 ml), salmuera (100 ml), se secó y se
concentró para proporcionar un aceite naranja. Este se disolvió en
etanol (100 ml) y se añadió ácido
para-toluenosulfónico (6,08 g). La solución se
calentó a reflujo durante 8 horas y se concentró bajo presión
reducida. El residuo se diluyó con THF (60 ml), se calentó a reflujo
y se enfrió. Durante el almacenamiento no se formaba precipitado. La
mezcla de reacción se concentró y se purificó mediante hplc
preparativa para proporcionar el aminoácido como su sal de PTSA. El
sólido obtenido se disolvió en etanol y se saturó con HCl gaseoso.
La mezcla de reacción se calentó a reflujo durante 6 horas. La
mezcla de reacción se concentró para proporcionar la sal de PTSA del
aminoácido deseado (12,47 g).
\newpage
Etapa
4
Se añadió trietilamina (3,8 ml) a una mezcla de
BOC-gly-OSu (7,48 g, 27,04
milimoles) y sal de PTSA de
3-(S)-amino-3-(3,5-diyodo-2-hidroxifenil)propionato
de etilo (12,47 g, 27,04 milimoles) en DMF (100 ml). La mezcla de
reacción se agitó durante 18 horas a temperatura ambiente. La DMF se
retiró a vacío y el residuo se sometió a reparto entre acetato de
etilo (600 ml) y ácido clorhídrico diluido (100 ml). La capa
orgánica se lavó con bicarbonato sódico (200 ml), salmuera (200 ml),
se secó (MgSO_{4}) y se concentró para proporcionar el producto
deseado como un sólido (17,0 g, 96% de rendimiento). La ^{1}H NMR
estaba de acuerdo con el producto deseado.
Etapa
5
Se añadió
3-(N-BOC-gly)-amino-3-(S)-(3,5-diyodo-2-hidroxifenil)propionato
de etilo (17,0 g, 25,97 milimoles) a 0ºC a dioxano/HCl (4N, 40 ml) y
la mezcla de reacción se agitó a temperatura ambiente durante 3
horas. La mezcla de reacción se concentró y se concentró una vez más
después de la adición de tolueno (100 ml). El residuo obtenido se
secó para proporcionar el producto deseado como un polvo cristalino
(8,0 g, 56% de rendimiento). La ^{1}H NMR está de acuerdo con el
producto deseado.
Etapa
6
Una solución de ácido
m-(5-hidroxipirimidino)hipúrico (3,74 g,
12,98 milimoles) en dimetilacetamida (25 ml) se calentó hasta que
todo el material se había disuelto. Este se enfrió a continuación
hasta 0ºC y se añadió cloroformiato de isobutilo (1,68 ml) en una
porción seguido por N-metilmorfolina (1,45 ml).
Después de 10 minutos, se añadió en una porción hidrocloruro de
3-(N-gly)-amino-3-(3,5-diyodo-2-hidroxifenil)propionato
de etilo (6,0 g, 10,82 milimoles) seguido por
N-metilmorfolina (1,45 ml). La mezcla de reacción se
agitó durante 18 horas a temperatura ambiente. La mezcla de reacción
se concentró, el residuo se disolvió en tetrahidrofurano/agua (1:1,
20 ml) y se cromatografió (fase inversa, agua:acetonitrilo 95:5
durante 60 minutos hasta agua:acetonitrilo 30:70 que contiene 0,1%
de TFA). Las fracciones combinadas se concentraron. El residuo se
disolvió en acetonitrilo-agua y se añadió hidróxido
de litio hasta basicidad. La solución se agitó durante 2 horas. La
mezcla de reacción se concentró y se purificó como previamente
mediante hplc para proporcionar el ácido deseado como la sal de TFA.
La sal de TFA se convirtió en la sal de hidrocloruro correspondiente
haciendo pasar a través de una columna de intercambio iónico seguido
por liofilización. La ^{1}H NMR estaba de acuerdo con el producto
deseado
Claims (6)
1. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de la fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
en la que R es alquilo de 1 a 10
átomos de carbono; X e Y son halógenos iguales o diferentes
seleccionados del grupo que consiste en Cl, Br e
I;
que comprende proteger el grupo
amino de un éster de aminoácido racémico de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
con un grupo protector CBZ para
producir un compuesto de aminoácido protegido de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
someter el compuesto de aminoácido
protegido así obtenido a cromatografía quiral para obtener un éster
de aminoácido protegido quiral de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
desproteger el éster de aminoácido
protegido quiral así obtenido haciendo reaccionar con yoduro de
trimetilsililo en diclorometano;
y
aislar el
\beta-aminoéster quiral de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
2. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de la fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
en la que R es alquilo de 1 a 10
átomos de carbono; X e Y son halógenos iguales o diferentes
seleccionados del grupo que consiste en Cl, Br e
I;
que comprende proteger el grupo
amino de un éster de aminoácido racémico de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
con un grupo protector CBZ para
producir un compuesto de aminoácido protegido de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
someter el compuesto de aminoácido
protegido así obtenido a cromatografía quiral para obtener un éster
de aminoácido protegido quiral de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
desproteger el éster de aminoácido
protegido quiral así obtenido haciendo reaccionar con yoduro de
trimetilsililo en diclorometano;
y
aislar el
\beta-aminoéster quiral de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
3. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que X representa un átomo de cloro e Y
representa un átomo de bromo.
4. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de acuerdo con la
reivindicación 2, en el que X representa un átomo de cloro e Y
representa un átomo de bromo.
5. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que X e Y representan un átomo de cloro.
6. Un método para la preparación de un
\beta-aminoéster quiral de acuerdo con la
reivindicación 2, en el que X e Y representan un átomo de cloro.
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