ES2228807T3 - Nuevo peptidos antiarritmicos. - Google Patents
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Abstract
Un compuesto que tiene la fórmula I: X-(Y¿)b-(Px)2- G¿-A-(G¿)a-R7 en la que todos los residuos aminoácidos son, de manera independiente, formas D y en la que X representa H o Ac; G¿ representa un residuo de glicina o Sar; A representa alanina; Px representa un residuo aminoácido de la fórmula II (II) en la que n es un número entero que tiene el valor de 3, 4 ó 5, y R representa un sustituyente opcional, Y¿ representa tirosina o fenilalanina opcionalmente sustituida en el anillo fenilo con halógeno o hidroxi; a y b son, independientemente, 0 ó 1; R7 representa OH, NH2, NHNH2-Asn-NH2 o Gln-NH2; y sus sales farmacéuticamente aceptables.
Description
Nuevos péptidos antiarrítmicos.
La presente invención se refiere a nuevos
péptidos, incluidos nuevos péptidos antiarrítmicos de estructura
lineal o cíclica, que exhiben una estabilidad mejorada in
vitro y/o in vivo, a composiciones que comprenden dichos
péptidos, y al uso de dichos péptidos para la preparación de
medicamentos.
La muerte súbita debida a arritmias cardiacas es
una de las principales causas de muerte en el mundo occidental. La
enfermedad más frecuente, responsable de la muerte súbita, es la
cardiopatía isquémica, pero en pacientes más jóvenes son también
importantes enfermedades hereditarias tales como cardiomiopatía
hipertrófica y el síndrome de QT largo.
Las arritmias cardiacas pueden surgir de
anomalías en la formación del impulso, en la conducción del
impulso, o una combinación de ambas. La regulación de la formación
y conducción del impulso implica una compleja interacción entre el
sistema nervioso autónomo, los canales de iones cardiacos y las
uniones por hendidura cardiacas.
Los resultados de la prevención farmacológica, en
especial de las arritmias inducidas por isquemia, han sido
desalentadores. De este modo, ensayos clínicos han puesto de
manifiesto que diversos fármacos antiarrítmicos de clase I y clase
III incrementan la mortalidad en pacientes con cardiopatías
isquémicas (1). Una característica común de todos los
antiarrítmicos actualmente utilizados es que interfieren con los
canales de iones cardiacos (canales de sodio, potasio y calcio), o
con el sistema nervioso autónomo, interfiriendo, de esta forma, con
la generación del potencial de acción. Este es, probablemente, el
motivo por el que no sólo producen una acción antiarrítmica, sino
también un efecto pro-arrítmico, con el potencial de
inducir arritmias letales en especial en pacientes con una función
reducida del ventrículo izquierdo, insuficiencia cardiaca
congestiva o antecedentes de taqui-arritmia
ventricular sostenida. Ejemplos de fármacos antiarrítmicos son
flecainida, encainida, moricizina y quinidina. Los fármacos
antiarrítmicos que prolongan la repolarización cardiaca, tales como
amiodarona y sotalol, se asocian con el desarrollo potencial de una
arritmia específica y llamativa, torsades de pointes. Torsades, una
arritmia ventricular muy rápida, se produce probablemente cuando un
conjunto de características asociadas: hipopotasemia, bradicardia y,
posiblemente, conducción retrasada, altera la estabilidad de
membrana, provocando oscilaciones. Amiodarona, al igual que
sotalol, está indicada solamente en arritmias amenazantes para la
vida. El fármaco bloquea los canales de sodio y, en cierto grado,
los canales de calcio, y tiene también efecto
beta-bloqueadores. En ensayos precoces, los efectos
secundarios (que están relacionados con la dosis), dieron lugar a la
interrupción del medicamento hasta en 20% de los pacientes en un
año. Las toxicidades cardiacas incluyen bradicardia sinusal,
bloqueo aurículo-ventricular, insuficiencia
cardiaca congestiva y arritmias ventriculares.
En resumen, los fármacos antiarrítmicos
actualmente disponibles no han sido capaces de prevenir la muerte
súbita causada por arritmias cardiacas. Por lo tanto, existe una
gran necesidad, insatisfecha, de nuevos fármacos antiarrítmicos
seguros y eficaces para el tratamiento de arritmias amenazantes
para la vida. Debido a los graves efectos secundarios que limitan el
uso de los actuales antiarrítmicos, resulta deseable una nueva
clase de fármacos antiarrítmicos, con un mecanismo de acción
completamente diferente. Como se ha mencionado anteriormente, la
regulación de la formación y conducción del impulso es una compleja
interacción entre el sistema nervioso autónomo, los canales de
iones cardiacos y las uniones por hendiduras cardiacas. Hasta la
fecha, el desarrollo de antiarrítmicos se ha centrado en el sistema
nervioso autónomo y en los canales de iones cardiacos y ningún
fármaco, actualmente disponible, actúa abriendo las uniones por
hendidura cardiaca. Sin embargo, recientemente, diversas líneas de
investigación han puesto de manifiesto el importante papel de las
uniones por hendidura en el desarrollo de arritmias, por lo que la
modulación de las uniones por hendidura representa una nueva diana
muy interesante en el tratamiento de las arritmias.
Las uniones por hendidura son regiones
especializadas de la membrana celular con racimos de centenares a
millares de canales de unión por hendidura, densamente reunidos,
que conectan directamente el compartimiento citoplasmático de dos
células adyacentes. Los canales de uniones por hendidura están
compuestos por dos hemicanales (conexones) proporcionados por cada
una de las dos células adyacentes. Cada conexón consiste en seis
proteínas llamadas conexinas. Las conexinas son una amplia familia
de proteínas, todas las cuales comparten la estructura básica de
cuatro dominios trans- membranosos, dos asas extracelulares y un asa
citoplasmática. Existe un elevado grado de conservación de las asas
extracelulares y dominios trans-membranosos entre
las especies e isoformas de conexinas. No obstante, la longitud del
extremo C varía considerablemente, dando lugar a la clasificación
de las conexinas sobre la base del peso molecular. La distribución
de los diferentes tipos de conexinas (Cx) varía a todo lo largo del
corazón. La isoforma Cx43 es el tipo predominante en los
ventrículos, en tanto que Cx40 es la isoforma más abundante en las
aurículas y en el sistema de conducción. El canal de unión por
hendidura puede variar entre un estado abierto y uno cerrado por un
movimiento de torsión. En el estado abierto, iones y moléculas
pequeñas, menores de aproximadamente 1000 D pueden pasar a través
del poro. La conducción del impulso eléctrico tiene lugar a través
de las uniones por hendidura y, por consiguiente, las uniones por
hendidura de funcionamiento normal son un prerrequisito para una
conducción normal y, por lo tanto, un ritmo cardiaco normal.
El desarrollo de ratones "knockout", exentos
de diferentes tipos de conexinas, ha proporcionado una creciente
comprensión del importante papel de las uniones por hendidura en la
conducción anormal. A partir de estos estudios, se ha demostrado
que los ratones homocigóticos para una deleción dirigida del gen
Cx43 mueren poco después de nacer por malformaciones cardiacas y
pulmonares, en tanto que los ratones heterocigóticos sobreviven.
Sin embargo, el genotipo heterocigótico presenta una conducción
significativamente ralentizada en comparación con los ratones de
tipo salvaje (2). En ratones adultos (6-9 meses de
edad), la conducción epicárdica ventricular de latidos mercados se
ralentiza en 44% y los complejos QRS de los registros de ECG se
prolongan de manera significativa, en comparación con los ratones de
tipo salvaje. La expresión reducida de Cx43 está directamente
relacionada con un aumento de la incidencia de arritmias
ventriculares durante la isquemia en ratones heterocigóticos para
la deleción del gen Cx43 (3). De esta forma, la incidencia de
taquicardia ventricular espontánea tras la inducción de una
isquemia regional en corazón aislados prefundidos de ratones
heterocigóticos es el doble con respecto a la incidencia de
corazones de tipo salvaje. Adicionalmente, los ratones con una
pérdida cardioespecífica de Cx43 desarrollan arritmias
ventriculares espontáneas y muerte súbita cardiaca, con 100% de
mortalidad hacia los dos meses de edad. La eliminación del gen Cx43
no es mortal, si bien la conducción auricular,
aurículo-ventricular y de
His-Purkinje es significativamente más lenta en
ratones Cx40 -/- con respecto a ratones Cx40 +/+, exhibiendo los
ratones Cx40 -/- un mayor riesgo de arritmias y de bloqueo de la
rama del haz (4-6).
También se ha establecido la relación entre
anomalías en las conexinas y la cardiopatía en humanos. Un ejemplo
es la enfermedad de Chagas, causada por el parásito protozoario
Tripanosoma cruzi. Esta enfermedad es una causa importante
de disfunciones cardiacas en América Latina. Se ha observado una
distribución alterada de Cx43 en células infectadas con
Tripanosoma cruzi y dicha alteración puede intervenir en la
génesis de los trastornos de conducción por los que se caracteriza
la enfermedad (7). Varios estudios sobre la expresión y
distribución de Cx43 en corazones crónicamente isquémicos, en
hibernación o hipertróficos describen también en grado reducido de
expresión de Cx43 y un patrón modificado de distribución
(8-10). De hecho, la expresión y/o distribución de
las conexinas han estado alteradas en todos los estados patológicos
de los corazones investigados hasta la fecha.
En resumen existen múltiples pruebas que
relacionan el malfuncionamiento o la ausencia de uniones por
hendidura con un riesgo incrementado de arritmias, y múltiples
evidencias que ponen de manifiesto una expresión/distribución
alterada de conexinas en la cardiopatía crónica. Como se ha
mencionado anteriormente, ningún fármaco antiarrítmico actualmente
disponible actúa aumentando la función de la unión por hendidura.
Sin embargo, se ha descrito en el pasado un grupo de péptidos
(péptidos antiarrítmicos) capaces de incrementar la conductancia de
la unión por hendidura.
En 1980, Aonuma et al. (11) aislaron un
hexapéptido con un peso molecular de 470 D de la aurícula bovina.
En cardiomiocitos de rata recién nacida se demostró que 0,1
\mug/ml de este péptido podía convertir la fibrilación inducida
por uabaína, niveles elevados de calcio (3 mM) o bajos de potasio
(0,7 mM) en ritmo normal. Además, 2,5-5,0 \mug/ml
de este péptido podían convertir el movimiento arrítmico de
aurículas aisladas de ratas, inducido por la combinación de bajos
niveles de potasio (0,3 mM) y acetilcolina en ritmo normal. De este
modo, este péptido se denominó péptido antiarrítmico (AAP) (Ejemplo
Comparativo 1 más adelante (CE1)). AL agregarlo a un medio de
cultivo celular, AAP aumentó el número de centros de latido, el
contenido relativo de células en diseminación y la síntesis de
proteínas (12). En 1982, se determinó la secuencia de aminoácidos
de AAP como
H-Gly-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH
(13). En estudios in vivo posteriores, se confirmó el efecto
antiarrítmico de AAP observado in vitro. Se demostró que
AAP, 10 mg/kg, era eficaz contra la arritmia inducida por
CaCl_{2}-, uabaína y acotinina en el ratón (14). Se han analizado
varios derivados sintéticos de AAP, que han demostrado ser más
potentes que el AAP endógeno contra las arritmias inducidas
experimentalmente en ratones y ratas (15-17). El
derivado sintético más extensamente investigado es AAP10
(H-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-NH_{2})
(Ejemplo Comparativo 2, más adelante (CE2)). En el corazón aislado
y prefundido de conejo, 0,1 nmol/l a 10 nmol/l de este péptido
redujeron la dispersión de los intervalos de
activación-recuperación medidos en 256 electrodos
epicárdicos ventriculares bajo condiciones normales (18). AAP10
carece de efecto sobre la duración media del potencial de acción, la
presión diastólica final del ventrículo izquierdo, el flujo
coronario, la duración de QRS o sobre la intervalo PQ. Si se
sometían los corazones a isquemia regional por oclusión de la rama
descendente de la arteria coronaria izquierda durante 30 min, el
pretratamiento con 10 nmol/l de AAP10 condujo a una reducción
significativa de las alteraciones inducidas por la isquemia de los
patrones de activación y redujo la dispersión de los intervalos de
activación-recuperación (18). Estudios adicionales
demostraron que AAP10 no afectó al potencial de acción de músculos
papilares aislados de corazones de cobaya en concentraciones de
hasta 1 \mumol/l (18). Estos hallazgos concuerdan con los de
Argentieri et al. (19), quienes investigaron el mecanismo de
las propiedades antiarrítmicos de AAP por medio del examen del
efecto sobre el potencial de acción en fibras de Purkinje caninas
aisladas. En este modelo, AAP no afectó a la inotropia ni a ninguno
de los parámetros electro-fisiológicos medidos
(potencial diastólico máximo, amplitud del potencial de acción,
velocidad máxima de despolarización, y duración del potencial de
acción con repolarización de 50% y 95%). Se concluyó, por lo tanto,
que AAP no afecta a las corrientes de iones transmembranosas. En
músculos papilares de cobaya, se examinó el efecto sobre el tiempo
de acoplamiento, es decir, el intervalo de tiempo entre la
electroestimulación y el inicio del potencial de acción (20). Se
encontró que concentraciones altas de AAP10 (1 \muM) podían
disminuir el intervalo de estímulo-respuesta en
aproximadamente 10% bajo condiciones normóxicas. Adicionalmente,
durante la hipoxia y la perfusión sin glucosa, se impidió el
incremento del intervalo de estímulo-respuesta, lo
que indica desacoplamiento, por medio de 10 nmol/l de AAP10. Dado
que el efecto de AAP10 sobre el tiempo de acoplamiento fue muy
pronunciado en células de escaso acoplamiento, los autores
sugirieron que AAP10 actúa, de forma preferente, sobre células de
escaso acoplamiento. El efecto sobre el tiempo de acoplamiento
indicó que AAP ejerce sus acciones a través de la conductancia en
uniones de hendidura. Para comprobar esta teoría, los autores
examinaron el efecto de AAP10 sobre la conductancia en uniones por
hendidura en cardiomiocitos ventriculares de cobayas maduras,
empleando la técnica de grapas de voltaje de doble célula. Estos
estudios demostraron que 10 nmol/l de AAP10 produjeron un incremento
rápido y reversible de la conductancia en uniones por hendidura. De
esta forma, las propiedades antiarrítmicas de AAP10 se explicaron
por una mejoría del acoplamiento de las uniones por hendidura,
reduciendo de este modo la dispersión del potencial de acción y
previniendo la ralentización de la conducción.
En resumen, los péptidos antiarrítmicos son un
grupo de péptidos que ejercen su efecto de manera selectiva sobre
las uniones por hendidura y reducen, de esta forma, el
desacoplamiento celular y reducen la dispersión de la duración o la
forma del potencial de acción. Por lo tanto, cabe esperar que los
péptidos antiarrítmicos carezcan de los efectos proarrítmicos que
limitan el uso de muchos antiarrítmicos actualmente disponibles.
Esto hace que los péptidos antiarrítmicos sean extremadamente
interesantes como clase potencialmente nueva y más segura de
compuestos antiarrítmicos. Sin embargo, tanto el AAP nativo como el
AAP10 sintético poseen varias características indeseables tales
como baja estabilidad, alta concentración efectiva, etc., que, hasta
ahora, han impedido su uso como fármacos. Grover y Dhein (21) han
caracterizado dos conformaciones semi-cíclicas de
AAP10, empleando espectroscopia de resonancia magnética nuclear. Por
consiguiente, un método para obtener un péptido antiarrítmico
estable podría ser la provisión de derivados cíclicos de péptidos
antiarrítmicos. El documento DE19707854 describe
CF_{3}C(OH)-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH
aparentemente cíclico y
CO-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH
cíclico que poseen las mismas propiedades antiarrítmicas que AAP y
AAP10, pero de los que se afirma que tienen una estabilidad
mejorada en solución acuosa y después de ciclos repetidos de
congelación y descongelación. No obstante, las condiciones
experimentales descritas en el documento DE19707854 son
insuficientes para la preparación de dichos compuestos cíclicos, y
los datos de identificación química indicados en el citado
documento, usando HPLC, no son suficientes para identificar los
mencionados compuestos cíclicos. El documento US 4.775.743 describe
HP5, un derivado peptídico que posee la secuencia
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH
y que es activo contra la aglutinación plaquetaria. Dhein y Tudyka
(22) han revisado la bibliografía relativa a actividad y
concentración de péptidos, incluidos los derivados peptídicos
pertenecientes al grupo de péptidos antiarrítmicos, véase la Tabla
1, encontrando solamente 7 compuestos activos y otros 4, que fueron
débilmente activos. No obstante, ninguno de estos péptidos o
derivados peptídicos ha demostrado ser suficientemente estable para
ser eficaz en un régimen terapéutico.
Adicionalmente, en la solicitud de patente
japonesa nº 08281636 y en la solicitud de patente japonesa nº
09308589 se describen depsipéptidos cíclicos con acción
antiarrítmica, pero que poseen un enlace éster que exhibe labilidad
frente a las esterasas endógenas. Además, el documento WO96/21674
describe derivados de AAP10 en los que se ha sustituido un
hidrógeno en el anillo fenilo del residuo tirosina con halógeno.
Dichos derivados de AAP10 poseen propiedades antiarrítmicas y un
riesgo proarrítmico reducido en comparación con lidocaína y
flecainida.
En la bibliografía se describen los siguientes
péptidos AAP y compuestos similares a AAP:
(AAP)
H-Gly-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Pro-4Hyp-OH,
H-Gly-Pro-OH,
H-Gly-Pro-Leu-OH,
H-Gly-Pro-4Hyp-Gly-OH,
H-Gly-Pro-Leu-Gly-Pro-OH,
H-4Hyp-Gly-OH,
H-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Gly-Gly-OH,
H-Pro-Pro-Gly-OH,
H-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Pro-4Hyp-OH,
H-Pro-4Hyp-Gly-OH,
H-Pro-4Hyp-Gly-Ala-OH,
(HP5)
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
N-3-fenilpropionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
N-3-fenilpropil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-OH,
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-OH,
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-OH,
N-3-(3-hidroxifenil)-propionil-Pro-Pro-Gly-Ala-Gly-OH,
(AAP10)
H-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-OH,
H-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-NH_{2},
H-Gly-Sar-Pro-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Pro-Sar-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Sar-Sar-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr(3-I)-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr(3-F)-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr(3-Cl)-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr(3-Br)-NH_{2},
H-Arg-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr-NH_{2},
H-Val-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr-NH_{2},
H-Ala-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-His-Tyr-NH_{2},
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Phe-NH_{2},
Ciclo-(CF_{3}C(OH)-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH),
y
Ciclo-(CO-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH).
Los siguientes compuestos:
H-Gly-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH
(AAP),
H-Gly-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
H-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-NH_{2}
(AAP10),
H-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-OH,
H-Gly-Ala-Gly-Hyp-Pro-Tyr(3-I)-NH_{2},
H-Gly-Pro-Sar-Gly-Ala-Gly-OH,
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH
(HP5),
N-3-fenilpropionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH,
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-Pro-Gly-Ala-Gly-OH,
Ciclo-(CF_{3}C(OH)-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH),
y
Ciclo-(CO-Gly-Ala-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-CONH)
han demostrado actividad o
actividad débil en modelos de ensayo, véase, por ejemplo, Dhein y
Tyduka
(1995).
Aunque se han proporcionado péptidos
antiarrítmicos activos, ninguno de ellos ha conducido al desarrollo
de un muy buscado fármaco antiarrítmico. El propósito de la
presente invención es proporcionar péptidos antiarrítmicos
adicionales y análogos funcionales de los mismos, útiles en el
tratamiento de diversas cardiopatías coronarias y de utilidad para
preparar medicamentos. Adicionalmente, los nuevos péptidos
descritos en este documento incrementan la comunicación intercelular
en las uniones por hendidura (GJIC) en el tejido de vertebrados y,
de forma específica, en el tejido de mamífero, y son útiles en el
tratamiento de un amplio espectro de enfermedades y trastornos en
vertebrados tales como mamíferos, relacionados con o causados por
un descenso de la función de comunicación de la unión por hendidura
intercelular, como se describe más adelante.
El propósito de la presente invención se consigue
con los presentes péptidos, incluidos los compuestos peptídicos
antiarrítmicos, que se distinguen por tener la siguiente fórmula
general I, como se establece en la reivindicación 1, y a
composiciones farmacéuticas que comprenden estos compuestos, y a su
uso médico, en especial para el tratamiento de arritmias.
La Figura 1 es una ilustración de los diferentes
principios útiles en la ciclación de las secuencias peptídicas.
La Figura 2 muestra los cambios relativos de las
GJ de conductancia intercelular en función del tiempo, antes y
durante la estimulación con el Compuesto 2 (10^{-8} M), o
vehículo, sobre miocitos aislados de cobaya. El cambio de
conductancia se expresa como variación porcentual en relación con la
conductancia inmediatamente anterior a la perfusión con Compuesto
2.
La Figura 3 muestra el ciclo metabólico de
fosfoinositol (PI) como función de la concentración de noradrenalina
en cultivos de cardiomiocitos aislados de ratas Wistar recién
nacidas, después de 10 minutos de privación de glucosa y
oxígeno.
La Figura 4 muestra el efecto del Compuesto 2
sobre el incremento atenuado, inducido por noradrenalina, del ciclo
metabólico de fosfoinositol durante la tensión metabólica inducida
por isquemia y carencia de glucosa cuando se agrega al cultivo de
cardiomiocitos.
La Figura 5 muestra mediciones de la desviación
estándar de APD_{90} como medida de dispersión eléctrica
(dispersión de APD_{90}) durante cuatro protocolos de perfusión
conservadora. * indica p<0,05 frente al grupo tratado con
vehículo.
La Figura 6 es un mapa de activación de un
corazón canino, en el que la capa de Purkinje se estimula
aproximadamente dos horas después de una oclusión de una arteria
coronaria con un plano de activación epicárdica (EPI) en los planos
superior izquierdo y sub-epicárdico
(S-EPI), de pared media,
sub-endocárdico (S-ENDO),
endocárdico (ENDO) y de Purkinje (PURK) representados hacia abajo a
la derecha del último estímulo prematuro.
La Figura 7 ilustra electrogramas epicárdicos
(E-) en el mismo perro cuyos ejemplos se presentan en las Figuras
6, 7 8 y 9, registrado con una derivación de superficie de ECG II y
V5R durante el segundo hasta el quinto estímulo extra prematuro (se
ve mejor en E-L), con complejos aseguradores 4 de
VT. Los electrogramas de registran de las zonas lateral, límite (L)
de marcado, y este (E), norte (N), central (C),
sub-epicárdico (SE), debajo de E-C,
así como sur (S) y noroeste (NW) y suroeste (SW) de
E-C.
La Figura 8 ilustra la activación epicárdica del
primer complejo de la taquicardia ventricular, que se inicia a -44
mseg antes del inicio del QRS de superficie, y que se corresponde
con el electrograma registrado en E-C en la Figura
7. La activación tiene lugar en una reentrada de doble asa que se
activa, primero, a -17 mseg y, a continuación, prosigue hasta 57
mseg en el asa noroeste. El asa sureste se activa, en primer lugar,
a 2 mseg, 31 mseg y, entonces, a 57 mseg.
La Figura 9 muestra las mismas derivaciones del o
de los mismos perros (?) que se presentan en la Figura 7. Esta
figura ilustra los electrogramas epicárdicos (E-) registrados
durante la estimulación del mismo sitio utilizado en la Figura 7,
pero tras la administración i.v. de Compuesto 2. Después de 30
minutos, se administró una segunda dosis de Compuesto 2 y, después
de 30 minutos adicionales, se administró una tercera dosis. Tras la
administración de cualquiera de estas dosis, no se indujo VT hasta
una hora y media después de la administración del péptido
antiarrítmico.
La Figura 10 muestra el efecto a corto plazo de 1
x 10^{-8}M de Compuesto 2 sobre la propagación de la onda de
calcio intercelular en osteoblastos humanos. Se traza el número de
células en la onda antes (1) y 10 minutos después de agregar el
Compuesto 2 (2) a la solución de baño.
La Figura 11 muestra el número de células en la
onda de calcio trazada antes (1) y 10 minutos después de la adición
de 1 x 10^{-8} M de Compuesto 2 (2) a células ROS 17/2,8,
cultivadas bajo condiciones de hipoxia (CO_{2} al 5%).
La Figura 12 ilustra la transferencia de tinción
de células ROS 17/2,8, cultivadas bajo condiciones de hipoxia
(O_{2} al 3-6%). Se traza el número de células
acopladas antes (1) y 10 minutos después de agregar 1 x 10^{-8} M
de Compuesto 2 (2) a la solución del baño.
La Figura 13 ilustra el efecto a corto plazo de 1
x 10^{-8} M de Compuesto 2 sobre la propagación de la onda de
calcio intercelular en osteoblastos humanos bajo condiciones de
hipoxia. La Figura muestra el número de células en la onda durante
la hipoglucemia (1) y 10 minutos después de agregar Compuesto 2 a la
solución de baño hipoglucémica (2).
La Figura 14 muestra la actividad de fosfatasa
alcalina (ALP) en cultivos de células osteoblásticas humanas. La
actividad de ALP es una medición de actividad osteoblástica. La
actividad de ALP se midió durante una estimulación de 4 días con
10^{-13}-10^{-6} M de Compuesto 2 en cada
cultivo, y se comparó con controles no tratados. La relación entre
la actividad de ALP en los cultivos tratados y no tratados se
trazan para cada concentración del compuesto. El Compuesto 2
estimuló la actividad de ALP y, por consiguiente, la actividad
osteoblástica a todas las concentraciones, en un intervalo de
concentraciones de 10^{-13} a 10^{-7} M.
La Figura 15 muestra el efecto del Compuesto 2
sobre la transferencia de tinción Amarillo Lucifer (LY) en células
osteoblásticas humanas tratadas con DDT 13 \muM, el compuesto
1,1-bis-(p-clorofenil)-2,2,2-tricloroetano.
La incubación durante 10 minutos con Compuesto 2 10^{-8}M produjo
un incremento el número de células acopladas a la tinción en todos
los experimentos (1 indica antes y 2, después de la adición de
Compuesto 2 al baño).
En la descripción detallada y Ejemplos, se hace
referencia a compuestos no incluidos en el alcance de la
reivindicación 1 a modo de comparación.
En realizaciones preferidas de la invención, los
enlaces covalentes se seleccionan de enlaces peptídicos, enlaces
disulfuro, enlaces éster, enlaces de amida reducida, enlaces
alcoxi, enlaces oxicarbonilo y enlaces
aciloxi-alcoxi.
Ejemplos de Px son aminoácidos representados por
la fórmula II
en la que n es un número entero con
un valor de 3, 4 ó 5, y R representa un sustituyente opcional,
seleccionado preferentemente del grupo consistente en halógeno,
fenilo, hidroxi, NH_{2} y
alquilo-C(1-6).
Preferentemente, la secuencia
(Px)_{2}A-B representa un dipéptido
seleccionado del grupo consistente en Sar-Sar,
Sar-Hyp, Hyp-Sar,
Pro-Sar, Sar-Pro,
Pro-Hyp, Pro-Pro,
Hyp-Pro, e Hyp-Hyp, en donde Pro e
Hyp, en donde la estructura de anillo de Pro e Hyp está
opcionalmente sustituida con halógeno, nitro, metilo, amino, o
fenilo, e Hyp representa 3-hidroxiprolina o
4-hidroxiprolina, o uno de los dos residuos de
aminoácidos de Px es un residuo Sar o
N-ciclohexil-glicina,
Ac-D-Tyr-D-Pro-D-4Hyp-Gly-D-Ala-Gly-OH,
Ac-D-Tyr-D-Pro-D-4Hyp-Gly-D-Ala-Gly-NH_{2}
(Compuesto 2), y sus sales farmacéuticamente aceptables.
La presente invención proporciona compuestos de
la fórmula general (I)
X
-(Y^{1})_{b}-(Px)_{2}-G'-A-(G')_{a}-R_{7}
que especifica una secuencia
peptídica en la que los residuos aminoácidos son, de forma
independiente, formas D
y
en la cual
X representa H o Ac;
G' representa un residuo de glicina o Sar, G' es,
preferentemente, glicina;
A representa alanina;
Px representa un residuo aminoácido de la fórmula
II tal como Hyp o Pro, preferentemente, prolina;
Y' representa tirosina o fenilalanina,
opcionalmente sustituida en el anillo fenilo con halógeno o
hidroxi; Y' es, preferentemente, tirosina;
a y b son, independientemente, 0 ó 1,
R_{7} representa OH,
NH_{2}-NHNH_{2}-Asn-NH_{2},
o Gln-NH_{2};
y sus
sales.
La marca por afinidad es una técnica
frecuentemente utilizada para estudiar las interacciones de
moléculas biológicamente activas. Para la investigación se usa un
análogo foto- o termolábil del compuesto.
Un análogo fotolábil del compuesto analizado, que
es estable en la oscuridad, se convierte por iluminación en un
intermedio reactivo que puede participar en reacciones de
inserción. Éste, al formar un enlace covalente, estabiliza la
interacción basada en la afinidad biológica. Como
foto-muestras, las azidas aromáticas y los
diazocompuestos estabilizados producen, con la fotólisis,
intermedios muy reactivos e inespecíficos, nitrenos y carbenos,
respectivamente capaces de participar en reacciones de inserción.
De esta forma, la marca de fotoafinidad que utiliza azidas arílicas
y diazo-compuestos estabilizados como
foto-muestras se puede llevar a cabo en cualquier
punto de unión que contiene enlaces
carbono-hidrógeno y no requiere la presencia de un
grupo funcional reactivo particular en el punto de unión. La
especificidad de la marca depende, por consiguiente, de la unión
específica del ligando al receptor que, entonces, va seguida por
una reacción que forma un enlace covalente inespecífico que
garantiza la marca del punto de unión. Las muestras de fotoafinidad
son particularmente útiles para marcar sitios receptores de
hormonas en los que puede no haber presentes grupos funcionales
reactivos, pero que, con toda seguridad, contienen enlaces de
carbono-hidrógeno. Como funcionalidad
foto-activa , los azidos, diazirino,
\alpha-diazido-cetonas,
tia-y selenodiazoles, benzofenonas y nitrofenilo
son especialmente útiles. El proceso de marcado empleando azidas
arílicas incluye la fotólisis a \lambda_{ex} = 300 -
320 nm durante aproximadamente 0,5 - 2 h a temperatura ambiente de una solución acuosa que contiene el análogo peptídico fotolábil y el receptor.
320 nm durante aproximadamente 0,5 - 2 h a temperatura ambiente de una solución acuosa que contiene el análogo peptídico fotolábil y el receptor.
Un compuesto termolábil contiene un grupo
reactivo que puede formar un enlace covalente en una reacción
térmicamente controlada, con especificidad hacia los grupos amino o
mercapto. Como muestras térmicas se pueden usar haluros alifáticos,
en especial, yodo y bromo, ésteres activos tales como
N-hidroxi-succinimida, cloruros
ácidos, disulfuros de piridilo, isocianatos, isotiocianatos,
carbodiimidas y maleimido.
Las marcas para aplicaciones in vitro se
seleccionan, muy a menudo, como isótopos radiactivos tales como
Yodo-125 y 131, C-14 y tritio, o
muestras de fluorescencia, o biotina o haptenos. Es necesario
investigar la influencia de la marca sobre la actividad de fijación
del ligando con el fin de asegurar que se conserva la afinidad del
receptor. Como marca radiactiva, se utiliza a menudo
Yodo-125 para aplicaciones in vitro, debido
a su semivida de 60 días y emisiones de fotones de baja energía. La
prolongada semivida permite la preparación y almacenamiento de
análogos fotoactivos marcados y los productos de proteínas
marcadas resultantes durante períodos prolongados antes de su uso o
análisis. La incorporación de yodo (I-125) a
ligandos peptídicos se puede realizar fácilmente si en la secuencia
peptídica se encuentran presentes, por ejemplo, tirosina o
histidina. Es necesario investigar la influencia de la marca del
péptido sobre la actividad biológica del ligando para garantizar el
mantenimiento de la actividad biológica. Dhein et al.
(documento WO96/21674) han demostrado que un derivado de AAP10, en
el que el anillo fenilo de los residuos Tyr porta un sustituyente
Yodo-125 tiene actividad biológica. Sin embargo, el
uso de dicha variante de AAP10 como muestra de afinidad no es
posible debido a la unión reversible a un posible ligando o
receptor. La marca de fotoafinidad usando azidas arílicas da como
resultado, por lo general, 50-60% del ligando
peptídico unido de forma no reversible a la proteína diana
(receptor). Por lo tanto, un propósito de la presente invención es
proporcionar, adicionalmente, un péptido antiarrítmico adecuadamente
modificado con una foto- o termo-muestra y,
opcionalmente, una marca radiactiva, para utilizarlo en ensayos
para la identificación de posibles ligandos o receptores para el
péptido antiarrítmico. Dicho propósito se consigue con un
compuesto de las fórmulas I, XII, XII o 9 del presente documento,
derivatizado con una de las foto-muestras
anteriormente mencionadas, preferentemente,
4-azido-saliciloílo (ASAL) y
AB-(4-azido-benzoílo).
Preferentemente, dicho compuesto derivatizado está adicionalmente
sustituido con una marca radiactiva tal como
Yodo-125.
Se prefiere que los compuestos de la invención se
utilicen en forma de una sal farmacéuticamente aceptable, un éster
alquílico, una amida, una alquilamida, una dialquilamida o una
hidrazida formada con la función ácido carboxílico
C-terminal de un compuesto lineal, o una función
ácido carboxílico libre, si está presente, de un compuesto cíclico.
Amidas y amidas de alquilo inferior de compuestos lineales se
encuentran entre los compuestos de la invención preferidos. Las
sales incluyen sales farmacéuticamente aceptables tales como sales
de adición de ácidos y sales básicas. Ejemplos de sales de adición
de ácidos son sales hidrocloruro, sales sódicas, sales de calcio,
sales de potasio, etc. Ejemplos de sales básicas son sales en las
que el catión se selecciona de metales alcalinos tales como sodio y
potasio, metales alcalino-térreos tales como calcio,
y iones de amonio ^{+}N-(R^{3})_{3}(R^{4}),
en donde R^{3} y R^{4} designan, independientemente,
alquilo-C_{1-6} opcionalmente
sustituido, alquenilo-C_{2-6}
opcionalmente sustituido, arilo opcionalmente sustituido o
heteroarilo opcionalmente sustituido. Otros ejemplos de sales
farmacéuticamente aceptables son, por ejemplo, las que se describen
en "Remington's Pharmaceutical Sciences", 17ª edición, Alfonso
R. Genaro (comp..), Mark Publishing Company, Easton, PA, EE.UU.,
1985 y ediciones más recientes, y en la Encyclopedia of
Pharmaceutical Technology.
A lo largo de la descripción y reivindicaciones
se utiliza el código de tres letras para los aminoácidos naturales,
así como los códigos de tres letras generalmente aceptado para
otros \alpha-aminoácidos tales como sarcosina
(Sar), ácido
\alpha-amino-iso-butanoico
(Aib), naftil-alanina (Nal), incluida
1-naftil-alanina (1Nal) y
2-naftil-alanina (2Nal),
fenilglicina (Phg), ácido
2,4-diamino-butanoico (Dab), ácido
2,3-diamino-propanoico (Dapa) e
hidroxiprolina (Hyp). Si no se especifica lo contrario, Hyp
representa 4-hidroxiprolina. Los aminoácidos
naturales o esenciales son los constituyentes aminoácidos de las
proteínas. Los aminoácidos aromáticos son Phe, Tyr, Trp, 1Nal, 2Nal
e His. Cuando no se especifica la forma L o D, se debe entender que
el aminoácido en cuestión tiene la forma L natural, véase Pure
& Appl. Chem. Vol. 56(5), págs.
595-624 (1984).
Si no se especifica lo contrario, se debe
entender que el aminoácido C-terminal de un
compuesto de la invención existe en forma de ácido carboxílico
libre, que también se puede especificar como "-OH". Se puede
demostrar que el aminoácido C-terminal de un
compuesto de la invención tiene la función terminal
"-OH/NH_{2}", que significa que existen dos formas preferidas
del compuesto: el ácido carboxílico libre y el derivado amidado.
Los compuestos hexapeptídicos de la invención, que comprenden la
secuencia Ala-Gly-Hyp y que poseen
un grupo -NH_{2} en el extremo C, no contienen un Phe o Tyr
C-terminal, ni derivados de los mismos que tienen
una sustitución de halógeno en el anillo fenilo.
Por "análogos funcionales" de péptidos
antiarrítmicos se entiende cualquier entidad o compuesto químico
que tiene una conformación estructural y/o propiedades de unión
suficientemente similar a la del AAP endógeno para proporcionar una
o más de las propiedades antiarrítmicas o antitrombóticas
beneficiosas del AAP endógeno.
El término "heteroarilo" incluye grupos
heterocíclicos monocíclicos aromáticos de 5 ó 6 miembros, que
contienen1-4 heteroátomos seleccionados de
nitrógeno, oxígeno y azufre tales como pirrolilo, furilo,
pirazolilo, imidazolilo, oxazolilo, isoxazolilo, tiazolilo,
isotiazolilo, oxadiazolilo, tiadiazolilo, triazolilo, piridilo, y
grupos heterocíclicos bicíclicos aromáticos que contienen
1-6 heteroátomos seleccionados de nitrógeno, oxígeno
y azufre tales como quinolinilo.
La expresión "retro-análogo"
quiere dar a entender un péptido cuya secuencia es el inverso del
péptido mencionado.
El término "halógeno" se refiere a F, Cl, Br
e I, siendo preferidos F e I.
El término "alquilo" se refiere a grupos
univalentes derivados de alcanos por la eliminación de un átomo de
hidrógeno de cualquier átomo de carbono: C_{n}H_{2n+1}-. Los
grupos derivados por la eliminación de un átomo de hidrógeno desde
un átomo de carbono terminal de alcanos no ramificados forman una
subclase de grupos alquilo (n-alquilo):
H[CH_{2}]_{n}-. Los grupos RCH_{2}-, R_{2}CH-
(R es diferente de H) y R_{3}C- (R diferente de H) son,
respectivamente, grupos alquilo primarios, secundarios y terciarios.
Alquilo-C(1-22) se refiere a
cualquier grupo alquilo que tiene 1 a 22 átomos de carbono e
incluye alquilo-C(1-6) tales
como metilo, etilo, propilo, isopropilo, butilo, pentilo y hexilo y
todos sus posibles isómeros. Por "alquilo inferior" se da a
entender alquilo-C(1-6),
preferentemente,
alquilo-C(1-4) y, más
preferentemente, metilo y etilo.
El término "alquenilo" se refiere a un grupo
hidrocarburo lineal, ramificado o cíclico que contiene uno o
múltiples dobles enlaces carbono-carbono.
Alquenilo-C(1-22) se refiere
a cualquier grupo alquenilo que tiene 1 a 22 átomos de carbono, e
incluye alquenilo-C(2-6),
vinilo, alilo, 1-butenilo, etc.
El término "aralquilo" se refiere a
aril-alquilo-C(1-22),
y el término "arilo" significa, en toda esta especificación,
fenilo o naftilo.
HPP se refiere a
hidroxifenil-propionilo,
4HPP se refiere a
3-(4-hidroxifenil)-propionilo,
2HPP se refiere a
3-(2-hidroxifenil)-propionilo,
4HPPA se refiere a ácido
4-hidroxi-fenoxiacético,
2HPPA se refiere a ácido
2-hidroxi-fenoxiacético,
4HMPA se refiere a ácido
4-(hidroximetil)-fenoxiacético,
4HPA se refiere a ácido
4-hidroxi-fenilacético,
3HPA se refiere a ácido
3-hidroxi-fenilacético,
2HPA se refiere a ácido
2-hidroxi-fenilacético,
4HBG se refiere a
N-(4-hidroxibenzoil)-glicina,
3HBG se refiere a
N-(3-hidroxibenzoil)-glicina,
2HBG se refiere a
N-(2-hidroxibenzoil)-glicina,
4HPG se refiere a
N-(4-hidroxifenil)-glicina,
Ac se refiere al radical acetilo,
Tfa se refiere al radical trifluoroacetilo,
ASAL se refiere al radical
4-azido-saliciloílo,
AB se refiere al radical
4-azido-benzoílo,
HOBt se refiere a
1-hidroxibenzotriazol,
HOAt se refiere a
1-hidroxi-7-aza-benzotriazol,
Acm se refiere al radical acetamidometilo,
Pd(PPh_{3})_{4} es
tetrakis-(trifenilfosfin)-paladio(0)
Adicionalmente, los compuestos de la presente
invención se distinguen por ser estables frente a la degradación
enzimática, y/o por ser estables frente a la degradación en plasma,
y/o por tener una semivida in vivo mejorada.
Se prefiere que los compuestos que incluyen los
compuestos antiarrítmicos de la presente invención sean estables
frente a la degradación enzimática, y/o estables en plasma. Los
diversos derivados y modificaciones químicas de la secuencia
peptídica nativa de AAP tal como los presenta la invención, por
ejemplo, la amidación o esterificación C-terminal,
el uso de D-aminoácidos y derivados de aminoácidos
naturales, las modificaciones N-terminales, y los
análogos cíclicos, representan, en su totalidad, modificaciones
diseñadas para potenciar la estabilidad, conservando a la vez las
propiedades antiarrítmicas y/o antitrombóticas esenciales del AAP
nativo.
La siguiente Tabla 1 muestra la semivida de
degradación (T_{1/2}) de diversos compuestos de la invención,
comparada con AAP10, AAP y HP5. De la tabla, parece deducirse que
los compuestos 2, 3, 27, 48 y 49 de la invención, con semividas de
3 horas o más, son considerablemente más estables en plasma y suero
que AAP10, que posee una semivida menor de 10 minutos, y HP5, que
tiene una semivida menor de 12 minutos.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
La estabilidad de los péptidos se analiza en
diferentes tipos de plasma y suero. Los péptidos se incuban a 37ºC
en plasma y se toman muestras a aproximadamente 9 intervalos
regulares entre t=0 y t=156. El análisis se efectúa por HPLC.
Se estima que las condiciones apropiadas
(columna, disolvente, gradiente y temp.) para los análisis de HPLC
garantizan que el pico de fármaco y los picos plasmáticos no tengan
el mismo tiempo de retención. Esto se lleva a cabo por medio de
inyecciones subsiguientes del fármaco, plasma y una
co-inyección con el fármaco y el plasma, seguida de
una optimización de los parámetros del método LC hasta obtener una
separación satisfactoria. Se efectúan tres experimentos paralelos
para cada tipo de plasma. Se mezclan 100 \mul de péptido con 900
\mul de plasma en t=0 y se incuban a 37ºC (concentración de la
mezcla de fármaco-plasma 0,1 mg/ml). Se retiran
muestras de 100 \mul de la mezcla de
fármaco-plasma a intervalos adecuados y la
degradación se detiene por precipitación de la muestra con 10
\mul de MeCN:TFA 50:50 en volumen. Asimismo, se toma una muestra
de plasma de control sin el fármaco, tratada de la misma forma. Las
muestras de plasma se centrifugan durante 15 min a 12.000 rpm
(centrifugadora de Eppendorf) a temperatura ambiente. La solución
sobrenadante resultante se transfiere a viales de 300 \mul de
auto-muestreador HP y se analizan por HPLC. Los
análisis de HPLC se llevan a cabo del modo siguiente:
Compuesto
CE1
Columna: Vydac 218MS52, 250 x 2,1 mm, caudal:
0,200 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 25 min.
Vol. de Iny.: 15 \mul. Detección: DAD1 A, 214,5
nm.
Compuesto
CE2
Columna: Kromasil KR100-10C8, 250
x 4,6 mm, caudal: 1 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 20 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A,
214,5 nm.
Excepto para suero de conejo: DAD1 A, 214,5
nm.
Excepto para plasma de rata: Disolvente:
MeOH/MQW/TFA (0,1%). Detección: VWD1 A, 210 nm.
Compuesto
CE3
Columna: Vydac 218MS52, 250 x 2,1 mm, caudal:
0,200 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 35 min.
Vol. de Iny.: 15 \mul. Detección: DAD1 A, 214,5
nm.
Compuesto
3
Columna: Kromasil KR100-10C8, 250
x 4,6 mm, caudal: 1 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 25 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A,
214,5 nm.
Compuesto
2
Columna: Luna 3u C18(2), 150 x 2 mm,
caudal: 0,250 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/HFBA (0,02%). Tiempo de
recorrido: 25 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A,
214,5 nm.
Excepto para plasma humano: Columna: Luna 5u C18,
150 x 2 mm, Temp.: 10ºC.
Excepto para suero humano: Columna: Kromasil
KR100-10C8, 250 x 4,6 mm,
caudal: 1 ml/min. Disolvente: MeCN/MQW/TFA
(0,1%).
Compuesto
27
Columna: Kromasil KR100-10C8, 250
x 4,6 mm, caudal: 1 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 20 y 25 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A, 214
nm.
Compuesto
49
Columna: Kromasil KR100-10C8, 250
x 4,6 mm, caudal: 1 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 25 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A,
214,5 nm.
Compuesto
48
Columna: Kromasil KR100-10C8, 250
x 4,6 mm, caudal: 1 ml/min. Temp.: 40ºC.
Disolvente: MeCN/MQW/TFA (0,1%). Tiempo de
recorrido: 25 min.
Vol. de Iny.: 25 \mul. Detección: VWD 1 A,
214,5 nm.
Las muestras se analizan en el orden siguiente:
blanco, el péptido a 0,1 mg/ml, el plasma sin el péptido, las tres
muestras paralelas para t=0, las tres muestras paralelas para t=5
min, las tres muestras paralelas para t=10 min, etc. Y, por último,
se repiten las tres muestras paralelas para t=0 para asegurar que
no ha habido degradación u otro error durante los análisis. Las
concentraciones de muestra (altura del pico en mAU) se trazan
frente a tiempo y se ajustan a una función que describe una
degradación mono-exponencial (Excel). Las semividas
de los péptidos en los diferentes tipos de plasma se presentan en
la Tabla 1 como media (n=3) \pm desviación estándar.
En un organismo multicelular, la coordinación
entre células es de enorme importancia. Entre los diversos medios de
interacción cruzada celular, las uniones por hendidura proporcionan
la vía más directa. Las uniones por hendidura son un tipo de
complejo de unión formado entre células adyacentes y consisten en
canales agregados que conectan directamente los interiores
(citoplasma) de las células adyacentes. En el mamífero adulto, las
uniones por hendidura se encuentran en la mayor parte de tipos de
células, con una excepción conocida, que son los elementos
circulantes de la sangre.
La unidad estructural del canal de unión por
hendidura es el conexón o hemi-canal. Cada conexón
está compuesto por seis polipéptidos conexina (Cx) que se
oligomerizan para formar un poro acuoso que se extiende en una única
membrana plasmática. Para formar un canal de unión por hendidura
completo, se alinean dos conexones de células adyacentes y se
enlazan entre sí para formar un canal continuo, que une los
citoplasmas de las dos células.
Las conexinas que forman el canal de unión por
hendidura comprenden una familia multi-génica,
habiéndose descubierto hasta la fecha catorce conexinas de
mamíferos. La expresión de las conexinas es específica para tejido y
célula, expresando algunas células múltiples isoformas de
conexinas. La evidencia experimental indica que son posibles dos
diferentes configuraciones híbridas: canales intercelulares
heterotípicos, en los que cada conexón o hemi-canal
consiste en una isoforma de conexina específica; o canales
heterómeros, en los que cada conexón es una mezcla de las diversas
isoformas de conexinas expresadas en un tipo de célula particular.
Las conexinas se expresan de manera específica para célula, tejido
y desarrollo.
Se conoce relativamente poco sobre la estructura
génica de las conexinas. Los resultados comunicados para Cx43 de
ratón han revelado que Cx43 contiene dos exones y un intrón
localizados en la región 5' no traducida. Análisis adicionales han
demostrado el punto de inicio de la trascripción de Cx43 tanto en
embriones como en tejidos adultos. Se han identificados varios
sitios de unión de factores de trascripción putativos en el
promotor 5' proximal. Estudios in vitro han demostrado que
se podrían producir canales permeables por
hemi-canales compuestos por diferentes pares de Cx.
Por ejemplo, Cx43 puede producir canales funcionales con Cx32, Cx37
y Cx endógeno de oocitos (Cx38), pero no con oocitos Cx26. Sin
embargo, es muy poco lo que se conoce sobre sus propiedades, así
como sobre la regulación de la permeabilidad de estos
heterocanales. Cx se expresan en la inmensa mayoría de tejidos y las
células únicas son capaces de expresar varias Cx diferentes. Se
pueden formar uniones por hendidura permeables entre células que
expresan diferentes tipos de Cx. De esta forma, la comunicación
intracelular de uniones por hendidura (GJIC) en los tejidos parece
ser muy importante para el mantenimiento de la integridad del
tejido. Parece ser que varios genes generan los productos
equivalentes para prevenir la pérdida de GJIC debida a la mutación
de uno de los genes.
El diámetro de poro del canal de unión por
hendidura formado se ha establecido en el intervalo de
0,8-1,4 nm. Las uniones por hendidura son
relativamente no selectivas y permiten el paso de moléculas de
hasta aproximadamente 1.000 daltons. Estas sustancias son, entre
otras, iones, agua, azúcares, nucleótidos, aminoácidos, ácidos
grasos, pequeños péptidos, fármacos y carcinógenos. El paso a través
del canal no requiere ATP y parece ser el resultado de difusión
pasiva. Este flujo de materiales entre las células, a través de los
canales de las uniones por hendidura, se conoce como comunicación
intercelular por uniones por hendidura (GJIC), que desempeña una
función importante en la regulación del metabolismo y
proliferación celulares, y en la señalización célula a célula. Una
de las implicaciones fisiológicas más importantes de GJIC es que
las células acopladas por uniones por hendidura en el interior de un
tejido no son entidades discretas individuales, sino que se
encuentran altamente integradas con sus vecinas. Esta propiedad
facilita la homeostasia y permite, igualmente, la transferencia
rápida y directa de segundos mensajeros entre las células para
coordinar las respuestas celulares en el interior del tejido.
El proceso de GJIC está regulado por una
diversidad de mecanismos que se pueden dividir en dos categorías
principales. El primer tipo de regulación controla la cantidad de
células de las uniones por hendidura, influyendo sobre la expresión,
degradación, tráfico celular de conexinas a la membrana plasmática,
o el ensamblaje de conexinas en uniones por hendidura funcionales.
La GJIC alterada, causada por la regulación negativa de la
expresión de conexinas en células tumorales es un ejemplo de este
modo de regulación. El segundo tipo de regulación no implica, por
lo general, ninguna alteración manifiesta de los niveles celulares
de uniones por hendidura o conexinas, sino que induce la apertura,
cierre o acción de barrera de las uniones por hendidura existentes.
Factores solubles extracelulares tales como mitógenos (por ejemplo,
DDT), hormonas (por ejemplo, catecolaminas), anestésicos (por
ejemplo, halotano), biomoléculas intracelulares (por ejemplo, AMPc)
y el estrés celular (por ejemplo, tensión mecánica o metabólica)
pueden tener como consecuencia este tipo de regulación.
Adicionalmente, GJIC se regula durante el ciclo celular y durante
la migración celular.
El modo de regulación de GJIC o barrera de unión
ha sido extensamente estudiado para las uniones por hendidura, en
especial, uniones por hendidura compuestas por conexina 43 (Cx43)
y, por lo tanto, se le ha utilizado como representativa de todas
las conexinas. Algunos factores ejercen sus efectos inhibitorios
sobre la GJIC de manera indirecta, alterando, por ejemplo, el
ambiente lipídico y la fluidez de las membranas celulares, en tanto
que otros inhibidores de la GJIC incluyen oncogenes, factores de
crecimiento y promotores tumorales, que inducen diversas
modificaciones sobre la Cx43. La disrupción de la permeabilidad de
unión puede ser necesaria para mediar las funciones biológicas
específicas de este último grupo. Estos agentes inician complejas
vías de señalización, consistentes en la activación de quinasas,
fosfatasas, y proteínas de interacción. La comprensión de los
mecanismos de acción de estos moduladores de la GJIC no sólo
definirá sus respectivas vías de señalización, responsables de la
regulación de las uniones, sino que proporcionará herramientas
experimentales para caracterizar las funciones biológicas de GJIC y
las conexinas.
Las variaciones de la fosforilación de sitios
específicos del dominio carboxi-terminal del
citoplasma de Cx43 parecen ser esenciales para la abertura y cierre
del canal de la unión por hendidura. La fosforilación del dominio
carboxi-terminal puede ser importante también para
el proceso de conducir el hemicomplejo de uniones por hendidura de
Cx43 a la membrana de superficie, su internalización y degradación.
Las conexinas tienen semividas (horas) mucho más breves que la
mayor parte de las proteínas de membrana plasmática (días); por
ejemplo, la semivida de Cx43 en el corazón de rata es menor que 1,5
horas. De este modo, la regulación de la velocidad metabólica sería
un factor importante en la regulación de la GJIC.
El dominio carboxi-terminal
contiene sitios de fosforilación putativos para múltiples
proteín-quinasas (PKA, PKC, PKG, MAPK, CaMkII y
tirosín-quinasa). La fosforilación de estos sitios
del dominio carboxi-terminal tiene como
consecuencia el cierre de los canales de las uniones por hendidura,
y diversos inhibidores de los canales de la unión por hendidura de
Cx43 utilizan diferentes vías de señalización para inducir la
fosforilación del dominio carboxi-terminal. El tipo
de célula y el inhibidor pparticular determinan qué vía de
señalización se deben utilizar, y el tipo de
proteín-quinasa implicada indica el sistema de
mensajero intracelular empleado. Por lo tanto, se ha comunicado que
la activación de PKA requiere la implicación del sistema de segundo
mensajero AMPc, en tanto que PKC requiere la participación del
sistema de señalización intracelular de fosfoinositol.
Otros mecanismos que regulan el sistema de
barrera de los canales incluyen los niveles intracelulares de iones
de hidrógeno y calcio, el voltaje entre uniones, y radicales
libres. Un pH o pCa disminuido induce el cierre del canal de manera
específica para la célula y la conexina.
Además del control del crecimiento, se han
propuesto muchas funciones fisiológicas para la GJIC:
Homeostasia. La GJIC permite el rápido
equilibrio de nutrientes, iones y fluidos entre células. Podría ser
la función más antigua, extendida e importante para estos
canales.
Acoplamiento eléctrico. Las uniones por
hendidura actúan como sinapsis eléctricas en células eléctricamente
excitables tales como miocitos cardiacos, células musculares lisas
y neuronas. En estos tejidos, el acoplamiento eléctrico permite una
transmisión célula a célula más rápida de los potenciales de acción
que las sinapsis químicas. En los cardiomiocitos y en las células
musculares lisas, esto permite su contracción sincrónica.
Respuesta tisular a las hormonas. La GJIC
puede potenciar la capacidad de respuesta de los tejidos a
estímulos externos. Mensajeros secundarios tales como nucleótidos
cíclicos, calcio y fosfatos de inositol son suficientemente pequeños
para pasar desde células hormonalmente activadas a células
quiescentes a través de canales de unión y activar a estas últimas.
Este efecto puede aumentar la respuesta de tejidos a un
agonista.
Regulación del desarrollo embrionario. Las
uniones por hendidura pueden actuar como vías intercelulares para
señales químicas y/o eléctricas de desarrollo en embriones, y para
definir los límites de los compartimientos de desarrollo. La GJIC se
produce en patrones específicos en las células embrionarias,
habiéndose relacionado al alteración de la GJIC con anomalías del
desarrollo y los efectos teratogénicos de muchos productos
químicos.
La comunicación intercelular garantiza que las
actividades de las células individuales tengan lugar de manera
coordinada y la integración de estas actividades en la dinámica de
un tejido funcional que sirve al organismo al que pertenece. Por lo
tanto, no es demasiado sorprendente que una amplia variedad de
trastornos patológicos hayan sido asociados con una GJIC
disminuida.
Como se ha señalado en la descripción de los
antecedentes de la invención, existe amplia evidencia que apoya un
papel importante de la GJIC en los cardiomiocitos bajo condiciones
normales y patológicas. Más adelante se discuten trastornos
cardiacos específicos asociados con una alteración de GJIC, y se
presentan pruebas in vitro e in vivo que demuestran
que los compuestos que incrementan la GJIC en el corazón son de
utilidad para la prevención y/o el tratamiento de una serie de
trastornos patológicos del corazón.
Las arritmias cardiacas están causadas por un
inicio anormal del impulso o una conducción anormal del impulso.
Entre las arritmias con una conducción anormal del impulso, las
causadas por un mecanismo de reentrada son las más graves.
La reentrada es la causa principal de la
fibrilación ventricular sostenida y de la muerte súbita cardiaca.
La reentrada se produce cuando el impulso de propagación no termina
tras la activación completa del corazón, sino que persiste para re-
excitar el corazón después de finalizar el período refractario. La
inducción de la reentrada se ve facilitada por una conducción
lenta, un aumento de dispersión de la repolarización, anisotropía
no uniforme y bloqueo unidireccional de la conducción. La enfermedad
subyacente responsable de la mayoría de los casos de reentrada
ventricular es la cardiopatía isquémica (por ejemplo, infarto agudo
de miocardio, infarto de miocardio crónico, angina de pecho
estable, y angina de pecho inestable). Durante la isquemia aguda,
los canales de la unión por hendidura se cierran, dando lugar al
desacoplamiento de las células vecinas. Cambios heterogéneos de la
función de los canales iónicos y de la unión por hendidura conducen
a un aumento de la dispersión de la duración del potencial de acción
y del período refractario efectivo, en especial en la zona límite
que separa la zona isquémica del miocardio normal. Desde hace
tiempo se sabe que la dispersión aumentada de la duración del
potencial de acción facilita la inducción de fibrilación ventricular
(23). Normalmente, en células bien acopladas, la diferencia de la
duración del potencial de acción se ve suavizada por el
acoplamiento eléctrico. Sin embargo, el desacoplamiento impedirá
dicho efecto de suavización y contribuye al desenmascaramiento de
la dispersión de la duración del potencial de acción y del período
refractario (24). SI la isquemia es prolongada, se puede observar
un grado reducido de expresión de Cx43 y un patrón alterado de la
distribución. El cierre de los canales de la unión por hendidura
durante la isquemia aguda, así como las variaciones del patrón de
expresión y distribución en la isquemia crónica, pueden dar lugar a
una conducción lenta, aumento de la dispersión, anisotropía no
uniforme y bloqueo unidireccional de la conducción, facilitando, de
esta forma, la inducción de arritmias de reentrada. De este modo,
estudios experimentales han puesto de manifiesto una correlación
entre el sitio de expresión y distribución anormales de conexinas y
la localización de los circuitos de taquicardia ventricular de
reentrada (25).
Las condiciones que favorecen el desarrollo de la
reentrada, es decir, conducción lenta, dispersión aumentada de la
repolarización, anisotropía no uniforme y bloqueo unidireccional de
la conducción, se encuentran presentes en diversas medidas en una
serie de cardiopatías adicionales. Por lo tanto, en cardiomiopatías
infecciosas o autónomas, la inflamación que se produce puede llevar
al depósito de tejido fibroso en el miocardio, creando, de este
modo, focos de conducción lenta-aumento de la
dispersión y, posiblemente, bloqueo unidireccional de la conducción.
La cardiomiopatía hipertrófica (por ejemplo, debida a hipertensión,
estenosis aórtica, congénita) puede tener como consecuencia
arritmias de reentrada debidas a un emparejamiento inadecuado de la
gran cantidad de tejido miocárdico y la cantidad, relativamente
reducida, de tejido conductor, que puede dar lugar a conducción
lenta, dispersión aumentada y bloqueo unidireccional de la
conducción. Enfermedades congénitas (por ejemplo, síndrome de QT
prolongado) y fármacos que prolongan el intervalo QT (por ejemplo,
fármacos antiarrítmicos, antipsicóticos, antihistamínicos,
antibacterianos, etc.) también aumentan la dispersión de la
duración del potencial de acción debido, posiblemente, a la
heterogeneidad de la distribución de los canales iónicos a lo largo
de las diferentes capas del miocardio, y constituyen una causa
importante de muerte súbita inducida por reentrada en sujetos más
jóvenes (26).
La fibrilación auricular -la arritmia cardiaca
más frecuente- también está causada por un mecanismo de reentrada.
En este caso, múltiples ondas viajan a través de la aurícula y
re-excitan el tejido que ya no es refractario. La
fibrilación auricular puede persistir durante años y conducirá,
finalmente, a un remodelamiento de las aurículas. Una parte
importante del proceso de remodelamiento está constituida por los
cambios de distribución de las uniones por hendidura. De esta
forma, el patrón de distribución de Cx40 se torna crecientemente
heterogéneo. La evolución en el tiempo de los cambios en la
distribución y contenido de las uniones por hendidura Cx40 se
correlaciona con un incremento de la estabilidad y complejidad de
la FA, e indica que el remodelamiento de las uniones por hendidura
Cx40 podría intervenir en la patogenia de la fibrilación auricular
sostenida (27). Adicionalmente, diversas líneas de investigación
confirman la opinión de que durante las condiciones de
enlentecimiento de la conducción auricular, se eleva la
susceptibilidad a la fibrilación auricular.
La aparición de ondas T electrocardiográficas
alternantes con una frecuencia cardiaca elevada o un insulto
metabólico se ha observado durante cerca de un siglo. Las ondas T
alternantes macroscópicas se registran con frecuencia como presagio
de la muerte súbita por arritmia. Investigaciones recientes
sugieren un mecanismo común que puede relacionar la presencia de
una repolarización alternante discordante con el inicio de diversas
arritmias de reentrada, dependiendo de la naturaleza anatómica del
sustrato (28). Bajo estrés cronotrópico o metabólico, la fase de
repolarización del potencial de acción del miocardio desarrolla una
alternancia en morfología y duración. Con estrés adicional, o en
presencia de barreras estructurales, la repolarización alternante se
hace discordante en el espacio. La alternancia discordante da
lugar a gradientes de repolarización suficientemente amplios,
capaces de producir bloqueo unidireccional y reentrada. Sin una
barrera estructural, la reentrada es funcional y se manifiesta como
fibrilación ventricular o taquicardia ventricular polimórfica. En
presencia de una barrera estructural, la reentrada se puede fijar
de manera anatómica, dando como resultado taquicardia ventricular
monomórfica (29).
En resumen, parece ser que una sustancia tal como
los compuestos de la presente invención, que aumenta la
conductancia de la unión por hendidura y torna la anisotropía más
uniforme, impedirá el bloqueo unidireccional y las arritmias de
reentrada. Esta sustancia será útil en pacientes con circuitos de
reentrada de origen tanto ventricular como auricular. Los pacientes
con onda T alternante son propensos a las arritmias de reentrada, y
una sustancia capaz de aumentar el acoplamiento de las uniones por
hendidura y reducir la anisotropía, puede ser útil en la prevención
de arritmias ventriculares letales en estos pacientes.
Las bradiarritmias pueden estar causadas por una
conducción lenta o un bloqueo de conducción en el nódulo
seno-auricular, nódulo
aurículo-ventricular, haz de His y rama derecha o
izquierda. La principal conexina responsable de la conductancia a
lo largo del sistema de conducción es Cx40. Ratones homocigóticos
para una eliminación del gen de Cx40 muestran una conducción
auricular, aurículo-ventricular y de
His-Purkinje significativamente más lenta y
presentan un riesgo aumentado de arritmias y bloqueo de rama.
(4-6). Por consiguiente, las uniones por hendidura
Cx40 de funcionamiento normal son esenciales para el mantenimiento
del ritmo normal.
Una sustancia tal como los compuestos de la
presente invención, que aumenta la conductancia de las uniones por
hendidura, resulta útil en la prevención y/o el tratamiento de la
conducción lenta en el corazón.
La contractilidad reducida es una característica
común de muchas cardiopatías crónicas. En el peor de los casos (es
decir, insuficiencia cardiaca terminal), la contractilidad está
reducida hasta un punto en que la fracción de eyección es tan baja
que no se pueden mantener ya las necesidades basales de la
perfusión del órgano. Evidencias tanto experimentales como clínicas
han demostrado que la expresión y distribución de conexinas en el
corazón de pacientes con insuficiencia cardiaca final están
modificadas. De este modo, Cx43 sufre una significativa regulación
negativa con una distribución altamente irregular en el tejido
anormal. La expresión de Cx45 que, bajo condiciones normales, es
muy limitada, se encuentra significativamente aumentada en la
insuficiencia cardiaca; sin embargo, las propiedades de conducción
de Cx45 son inferiores a las de Cx43 y son incapaces de compensar,
por consiguiente, la reducción de Cx43. Pruebas recientes indican
que algunos canales iónicos de regulación y receptores se
encuentran concentrados en sitios de unión intercelular, por lo que
es muy probable que los cambios de expresión y distribución de Cx43
puedan afectar al acoplamiento
excitación-contracción y, por lo tanto, a la
contractilidad (30). Una fuerte evidencia de relación entre la
función de las uniones por hendidura y la contractilidad es el
hecho de que ratones quiméricos, formados a partir de células madre
embrionarias exentas de Cx43 y blastocitos de tipo salvaje, y que
expresan, por lo tanto, una pérdida heterogénea de Cx43,
desarrollan graves defectos de contracción (31).
Los presentes inventores sugieren que una
sustancia capaz de aumentar la conductancia de las uniones por
hendidura mejorará la comunicación intercelular de los mediadores
que intervienen en el acoplamiento
excitación-contracción, mejorando, de esta forma,
la contractilidad.
Ejemplo experimental
1
Preparación de células: Se aislaron
células de corazones de cobayas por perfusión con colagenasa, de
acuerdo con el método de Langendorf. En pocas palabras, se
heparinizaron cobayas con una inyección intraperitoneal de heparina
(1000 UI/kg). Después de 30 minutos, el animal se sacrificó por un
golpe en el cuello, seguido de la sección de la columna dorsal a la
altura del cuello. Se abrió el tórax y se canuló la aorta.
Seguidamente, la cánula se fijó a la aorta por medio de una
ligadura, se escindió y se prefundió con solución de Tyrodes
durante un par de minutos. La solución de Tyrodes tuvo la siguiente
composición en mM: Na^{+} 135,33, K^{+} 4, Cl^{-} 145,
PO_{4}^{-} 0,33, Mg^{2+} 1, Ca^{2+} 2, Hepes 10, glucosa
10, pH 7,4. Todos los medios de perfusión se burbujearon con
oxígeno al 100%. A continuación, se prefundió el corazón durante
dos minutos con solución de Tyrodes exenta de Ca^{2+}, seguida de
perfusión durante dos minutos con una solución con un elevado
contenido en K^{+}, que contuvo en mM: Na^{+} 20, K^{+}120,
Cl^{-} 22, glutamato 120, Mg^{2+} 1, Ca^{2+} 25 \muM, Hepes
10, glucosa 10, pH 7,4.
A continuación, el corazón se prefundió con una
solución con un elevado contenido en K^{+} con 0,6 mg/ml de
colagenasa, lo cual se realizó durante 10- 15 minutos en función del
aspecto del corazón. Se seccionaron las aurículas, los ventrículos
se trituraron, tras lo cual los trozos se agitaron en la solución de
colagenasa, burbujeando suavemente con oxígeno al 100%.
Seguidamente, las células se hicieron pasar por un tamiz para
aislar las células liberadas y se separó la colagenasa por
centrifugación. Las células se resuspendieron en solución de
Tyrodes exenta de Ca^{2+} y se aumentó lentamente el contenido en
Ca^{2+} hasta 0,65 mM. Las células se mantuvieron en esta
solución a temperatura ambiente hasta su transferencia a la cámara
experimental.
Electrofisiología: Se montan placas de
cubreobjetos en una cámara abierta en un microscopio invertido, en
donde las células se perfunden con solución salina de Dulbecco
tamponada con fosfato (PBS) a 1 ml/min, 37ºC. La solución contiene
(en mM): Na^{+} 152, K^{+} 4,2, Cl^{-} 141,5, PO_{4}^{3-}
9,5, Ca^{2+} 0,9, Mg^{2+} 0,5, pH 7,2. A partir de capilares de
vidrio de 1,5 mm se cortan pipetas de pinza
(GCF150F-15, Harvard Apparatus) en un dispositivo
de microelectrodo Sutter Flaming-Brown
P-87 y se pulen al fuego hasta una resistencia de
4-6 M\Omega. Las pipetas se llenan con una
solución similar a la intracelular que contiene, en mM: K^{+}
145, Na^{+} 15, Cl^{-}5, gluconato^{-} 153, piruvato 5, EGTA
1. HEPES 5, Ca^{2+} 0,42 mM, Mg^{2+} 1,6, pH 7,2. A esta
solución se agrega anfotericina B (240 \mug/ml) a partir de una
solución madre de 60 mg/ml (disolvente: DMSO).
El ensamblaje de pinzas de parche consiste en dos
amplificadores discontinuos sincronizados (SEC-05LX,
NPI Electronics) y los datos se digitalizan usando una interface
INT-10 (NPI Electronics) y una tabla de adquisición
de datos PC1200 (National Instruments). Se filtran las señales
tanto de corriente como de voltaje por paso bajo a 1 kHz, usando
los filtros internos de los amplificadores y se digitalizan a 10
kHz.
Una célula de un par se aproxima con un
electrodo, usando un micro-manipulador PatchMan
5173 (Eppendorf). Cuando se obtiene el contacto con la célula (se
observa como un incremento súbito de la resistencia de entrada), se
aplica succión hasta el establecimiento de la configuración de sello
Giga. Se repite, entonces, este procedimiento sobre la otra célula.
A continuación, la membrana bajo las pipetas se rompe por una breve
aplicación de succión y se fija el interior celular a -70 mV, que es
un valor próximo al potencial de membrana espontáneo de las
células. Durante 10 segundos, cada una de las células se
hiperpolariza de forma consecutiva con 10 mV durante 1 segundo y,
entonces, el cambio de corriente resultante en la otra célula se
puede utilizar para calcular la conductancia intercelular (G_{j})
usando la fórmula:
Ecuación
1G_{j} = \frac{\Delta I_{p}}{\Delta U_{j}} =
\frac{I_{p.pulse} - I_{p.rest}}{U_{p} -
U_{a}}
en la que I_{p.pulse} e
I_{p.rest} representan la corriente en la célula pasiva durante
el pulso y antes del pulso, respectivamente, y U_{p} y U_{a}
representan el voltaje de la célula pasiva y activa. Este tipo de
experimentos no permite la comparación de valores absolutos de
G_{j} debido a las diferencias en el contacto entre las células
y, por consiguiente, la cantidad de canales funcionales de uniones
por hendidura. Sin embargo, la variación del valor de G_{j}
frente a una intervención estandarizada, como un fármaco, se puede
analizar comparando los cambios relativos de
G_{j}.
Resultados: En la Figura 2 se resumen los
resultados de 9 experimentos que tuvieron éxito. Esta figura
muestra la G_{j} relativa como función del tiempo antes y durante
la estimulación con el Compuesto 2 (10^{-8}M). En los cinco
experimentos en los que las células se trataron con Compuesto 2,
éste produjo un incremento significativo de G_{j}, que alcanzó un
nivel de estado constante después de aproximadamente 400 segundos de
estimulación (\DeltaG_{j} = +120 \pm 46%). La conductancia se
mantuvo inalterada en las cuatro preparaciones tratadas con
vehículo (\DeltaG_{j} = -3 \pm 5%).
Estos hallazgos concuerdan con los experimentos
sobre los que se informa en la bibliografía, que usaron el análogo
sintético de AAP, AAP10, y que mostraron un incremento del
acoplamiento eléctrico entre los cardiomiocitos tras la
estimulación (32). No obstante, en el estudio de Müller et
al. (32), la conductancia de las uniones por hendidura no fue
estable durante las condiciones de control. De esta forma, en tres
de seis experimentos, la aplicación de AAP10 no aumentó la
conductancia, pero evitó la disminución de la conductancia de las
uniones por hendidura y, en dos de seis experimentos, la
conductancia de las uniones por hendidura aumentó de hecho durante
el período de control. En los experimentos que se presentan en este
documento, el Compuesto 2 aumentó la conductancia de las uniones por
hendidura en preparaciones con condiciones de control estables.
Ejemplo experimental
2
Se separan corazones de ratón (Balb/cJ, 20 g), se
enjuagan dos veces en sacarosa helada (0ºC) 0,32 M y se
homogeneizan sobre hielo en 10 volúmenes de sacarosa con un
homogeneizador Ultra Turrax (1000 rpm) durante 2 minutos. el
homogeneizado se centrífuga a 1000 g_{media} durante 10 minutos a
4ºC y el sobrenadante se recoge y filtra a través de 4 capas de
gasa. A continuación, el filtrado se centrífuga a 50.000
g_{media} durante 45 min a 4ºC y el granulado se resuspende en 10
vol_{\text{org. peso húmedo}} de agua destilada helada, y se
incuba durante 60 min a 0ºC, y se vuelve a centrifugar a 50.000
g_{media} durante 45 min a 4ºC. El granulado resultante se
resuspende en 2 vol_{\text{org. peso húmedo}} de PBS (solución
Salina Tamponada con Fosfato) y se almacena a -80ºC hasta su
uso.
El día del análisis, las células se retiran del
incubador y cada pocillo se lava dos veces con, dependiendo del
experimento, 2 ml de D-PBS precalentado (37ºC) o
helado (0ºC) para separar el suero. Es importante mantener al mínimo
el período durante el cual las células permanecen sin soluciones
fisiológicas, para evitar que se sequen durante los procedimientos
de lavado. Las células lavadas en frío se utilizan directamente
para los ensayos de fijación, en tanto que las células lavadas en
caliente se usan para experimentos con privación de glucosa y
oxígeno.
Las células se incuban durante 10 min en una
atmósfera de N_{2} en D-PBS exento de glucosa (pH
7,2), pre-equilibrado con N_{2} durante al menos
10 min a 37ºC. Las células de control se incuban de manera similar
durante 10 min a 37ºC sólo, bajo condiciones atmosféricas normales
y en D-PBS que contiene glucosa (6 mM).
La fijación in situ se lleva a cabo de
acuerdo con un protocolo modificado, basado en la descripción de
Koenig (34). Se separa el D-PBS del cultivo celular
y se agregan 0,50 ml de solución de [^{125}I]AAP10 con o
sin ligando no marcado o compuesto de ensayo. Las células se
incuban durante la noche a 4ºC hasta alcanzar el equilibrio. A
continuación, cada pocillo, y uno en cada ocasión, se enjuaga
rápidamente con 2 x 1ml de D-PBS y se dejan
secar.
Se agregan 0,25 ml de
Triton-X-100 al 0,5% (en volumen) a
cada pocillo y se dejan solubilizar las células durante por lo
menos 1 h. El extracto se trasfiere a viales de conteo, los
pocillos se lavan con 0,25 ml de agua y el extracto de enjuague se
agrega a los correspondientes viales. Los viales se someten a
recuento en un contador gamma.
Compuestos de ensayo | CI_{50} (nM) |
AAP (CE1) | 0,8 |
AAP10 (CE2) | 130 |
Compuesto 2 | 0,5 |
Compuesto 32 | 0,5 |
Compuesto 24 | 65 |
Estos resultados ponen de manifiesto una fijación
de alta afinidad a las células CHO de diferentes sustancias de la
presente invención, comparable a la de los péptidos de la técnica
anterior.
Se incuban 40-250 \mug de
filtrado o material de membrana en un volumen total de 100 \mul
de D-PBS (Solución Salina Tamponada con Fosfato de
Dulbecco que contiene 1 g/l de MgCl_{2}\cdot6H_{2}O y
CaCl_{2}) que contiene [^{125}I]AAP10 0,8 nM y una
concentración creciente de los compuestos de ensayo AAP y Compuesto
2. La fijación inespecífica se determina con AAP10 10 \muM
(CE2).
Los datos de los experimentos de desplazamiento
se ajustan a la ecuación:
f = (Total -
ns)/(1+s/CI_{50}) +
ns
en la que Total es la
radiactividad fijada total a la concentración s del ligando
marcado, ns es fijación inespecífica y CI_{50} es la
concentración de compuesto de ensayo que reduce la fijación
específica (Total - ns) a 50% de la fijación específica
máxima.
Compuestos de ensayo | Filtrado CI_{50} (nM) | Membranas CI_{50} (nM) |
AAP | 1,2 | n.e. |
AAP10 (CE2) | 1,2 | n.e. |
Compuesto 2 | 3,6 | 1,2 |
Los valores indicados en la anterior Tabla 2 son
del mismo orden de magnitud (0,2 nM) que el indicado para AAP10 por
Dhein et al. (33), utilizando membranas de corazón de
conejo.
Se siembran células CHO en placas
multi-pocillos de 24 unidades en una densidad de
7.900 células /cm^{2} (\sim 15.000 células/pocillo) y se
cultivan durante 3 días in vitro (DIV) sobre 1 ml/pocillo de
Mezcla Nutriente F-12K suplementada con Suero de
Ternero Fetal al 10% (FCS) y 1000 unidades de penicilina/1000
\mug de estreptomicina (pen./estrep) en una atmósfera de CO_{2}
al 5% y humedad de 100% a 37ºC. La densidad celular había
aumentado hasta ese momento a 295.000 células/cm^{2} (152
pg_{prot}/célula \sim 85 \mug_{prot}/pocillo).
Ejemplo experimental
3
Se siembran células CHO en placas de
microtitulación de 96 pocillos en una densidad de 6.000
células/cm^{2} (\sim 2.000 células/pocillo) y se cultivan
durante 4 días in vitro en 200 \mul/pocillo de medio de
crecimiento, según se ha descrito en la sección anterior.
El día del análisis, se retiran las células del
incubador y se lavan dos veces con 200 \mul de
D-PBS (pH 7,2) precalentado (37ºC) para separar el
suero. Las células se incuban durante 10 min en
D-PBS exento de glucosa y bajo atmósfera de
N_{2}, según se ha descrito en la sección anterior.
Se incuban células CHO a 37ºC en
D-PBS (pH 7,2) que contiene glucosa 6 mM, IBMX
(bloqueador de fosfodiesterasa) 2,0 mM, forskoline (estimula la
formación de AMPc) 10 \muM y concentraciones crecientes del
péptido de ensayo. La reacción se detiene después de 20 min por
medio de la adición de 20 \mul de HCl 0,5 M y se deja durante al
menos 20 min a temperatura ambiente.
El contenido en AMPc se analiza mezclando 20
\mul del extracto celular ácido en pocillos FlashPlate® (kit de
ensayo NEN SMP001) que contiene 180 \mul de solución trazadora de
[^{125}I]AMPc. FlashPlates® se incuban durante la noche a
4ºC y la radiactividad fijada a la placa se cuenta en TopCount®
(Packard Instruments). Los datos se calculan de la forma descrita
en la sección anterior.
La inhibición de la formación de AMPc estimulada
por forskoline causada por los compuestos semejantes a AAP en
células CHO indica que los receptores de AAP se acoplan de forma
negativa al sistema de segundo mensajero de AMPc. Adicionalmente,
demuestra la presencia de receptores funcionales de AAP en células
CHO.
Compuestos de ensayo | CE_{50} (nM) |
AAP | 53 |
AAP10 (CE2) | 11 |
Compuesto 2 | 6,2 |
Ejemplo experimental
4
Se utilizan ratas Wistar recién nacidas
(1-2 días de edad).Se emplea solución salina
equilibrada de Hank, exenta de calcio y magnesio, tamponada con
HEPES 10 mM para el lavado durante los procedimientos de separación
celular. Se extraen los corazones, se aíslan los ventrículos y el
tejido se secciona en trozos pequeños. Las células del miocardio se
aíslan por degradación enzimática gradual con colagenasa al 0,05%,
como se describe en (35). Después de ciclos repetidos de
centrifugación y lavado, las células precipitadas se resuspenden en
medio de cultivo M199 con sal de Earle, NCS al 10%, penicilina (75
U/ml) y estreptomicina (75 U/ml) y se pre-siembran
en una placa Petri durante 90 minutos. Las células no adherentes se
recogen en el medio de cultivo y se siembran en
multi-placas a 2,5\cdot10^{5} células/pocillo.
Los cultivos se mantienen en un incubador de CO_{2} saturado con
agua a 37ºC. Los cultivos de cardiomiocitos se utilizan para
análisis después de 6-7 días.
Los cultivos de cardiomiocitos se incuban durante
48 horas en un medio de cultivo que contiene 4 \muCi/ml de
mio-[2^{-3}H]-inositol para marcar los
fosfolípidos de inositol. El día del análisis, se sustituye el medio
por una solución tampón que contiene litio y se incuba a 37ºC, del
modo descrito por Meier et al. (36). Después de al menos
cinco minutos, este tampón se sustituye por el mismo volumen de
tampón que contiene el compuesto de ensayo, y se incuba durante
exactamente veinte minutos. La reacción se detiene por la rápida
sustitución del medio por ácido perclórico (PCA) helado al 4% en
volumen, e incubación durante al menos 20 minutos a 0ºC. El extracto
de PCA se neutraliza y los fosfatos de
[^{3}H]-inositol se separan los cromatografía de
intercambio de aniones, utilizando columnas Amprep® que contienen
100 mg de amina SAX Quaternary. Los monofosfatos de
[^{3}H]-inositol se eluyen y se mide la
radiactividad en la fracción por conteo de escintilación
líquida.
Antes de agregar las sustancias de ensayo a los
cultivos, las células se someten a depleción de glucosa y oxígeno
mediante su incubación en una atmósfera de N_{2} en tampón de
litio exento de glucosa durante 10 minutos a 37ºC. Las células de
control se incuban, asimismo, bajo condiciones atmosféricas normales
y en un tampón que contiene glucosa.
La noradrenalina (NA) estimula el ciclo
metabólico de fosfoinositol en los cultivos de cardiomiocitos de
forma dependiente de la concentración. Sin embargo, la capacidad de
la noradrenalina (NA 300 nM) para estimular el ciclo metabólico de
fosfoinositol resulta considerablemente reducido en los cultivos,
después de 10 minutos de privación de glucosa y oxígeno, como se
muestra en la Figura 3.
Bajo condiciones atmosféricas y nutricionales
normales, los presentes inventores obtuvieron un valor de E_{máx}
de 3852 \pm 266 cpm y un valor de CE_{50} de 203 nM (SD_{R} =
1,2), en tanto que en las células sometidas a una atmósfera de
N_{2} y con depleción de glucosa, se evidenciaron un valor de
E_{máx} de 2248 \pm 702 cpm y un valor de CE_{50} de 303 nM
(SD_{R} = 1,7).
Para examinar el efecto de sustancias de esta
invención sobre el incremento atenuado e inducido por noradrenalina
del ciclo metabólico de fosfoinositol durante la tensión celular
inducida por isquemia y privación de glucosa, se agregaron
Compuesto 2 o AAP10 (CE2) a los cultivos de cardiomiocitos. Ambas
sustancias potenciaron de manera muy fuerte el ciclo metabólico de
fosfoinositol, siendo el Compuesto 2 el más potente. Como se
muestra en la siguiente Tabla 5, el valor de CE_{50} para AAP10
(CE2) fue 200 veces superior durante la normoxia y 10 veces superior
durante la tensión metabólica inducida por la anoxia y la privación
de glucosa que el valor de CE_{50} para el Compuesto 2.
CE_{50} (nM) | CE_{50} (nM) | |
AAP10 (CE2) | Compuesto 2 | |
Condiciones normales | 2000 | 10 |
Privación de glucosa y oxígeno | 100 | 10 |
La adición de Compuesto 2 (100 nM) careció de
efecto adicional sobre el incremento, inducido por noradrenalina
(300 nM), del ciclo metabólico de fosfoinositol en los
cardiomiocitos de ratas neonatas durante las condiciones de
control, pero en células sometidas a anoxia y privación de glucosa
(tensión metabólica), la adición de Compuesto 2 (100 nM) +
noradrenalina (300 nM) normalizó el ciclo metabólico alterado de
fosfoinositol, como se muestra en la Figura 4, con un incremento
que fue mayor en aproximadamente 70% que el aumento efectuado por
noradrenalina sola.
Ejemplo experimental
5
Los efectos antiarrítmicos de los compuestos de
esta invención se ensayaron en un modelo in vivo de arritmias
inducidas por calcio, de acuerdo con el modelo de Lynch et
al (37). Se anestesiaron ratones (25-30 g) con
una combinación de neuroléptico-anestésico
(Hypnorm® (citrato de fentanilo 0,315 mg/ml y fluanisona 10 mg/ml)
+ midazolam (5 mg/ml)). Las soluciones comerciales de Hypnorm® y
midazolam se diluyeron 1:1 en agua destilada y se mezcla una parte
de Hypnorm® diluido con una parte de midazolam diluido.
La anestesia se indujo por administración s.c. en
una dosis de 0,05-0,075 \mul/10 gramos de ratón.
Se insertó una cánula i.v. en la vena caudal. Se registró de forma
continua la señal ECG de la derivación II situando un electrodo de
ECG de acero inoxidable en la pata anterior derecha y en la pata
trasera izquierda. El electrodo de tierra se colocó en la pata
posterior derecha. La señal se amplificó (x
5.000-10.000) y filtró (0,1-150 Hz)
a través de un módulo ECG de Hugo Sachs Electronic modelo 689. La
señal analógica se digitalizó a través de una placa de adquisición
de datos de 12 bits (Data Translation, modelo DT321) y se hizo un
muestreo a 1000 Hz empleando el software Notocord HEM 3.1 para
Windows NT. Después de un período de equilibrado de 10 min, la
muestra de ensayo de fármaco se inyectó en la vena caudal. Los
ratones pretratados con vehículo se ensayaron como medida del nivel
de control en animales no tratados. El volumen de inyección fue de
100 \mul en todos los experimentos. La infusión de CaCl_{2} (30
mg/ml, 0,1 ml/min \approx100 mg/kg/min (cloruro de
calcio-2 hidrato, Riedel-de Häen,
Alemania)) se inició 3 min después de la administración i.v. de
fármaco o vehículo. El espacio de tiempo hasta el 2º grado de
bloqueo AV se determinó como el tiempo transcurrido desde el inicio
de la infusión de CaCl_{2} hasta la aparición del primer
acontecimiento arrítmico. Un acontecimiento de bloqueo AV de 2º
grado se definió como el fracaso intermitente de la conducción AV,
caracterizado por una onda P sin el complejo QRS concomitante.
Las respuestas se expresaron en relación con el
tiempo hasta la aparición del bloqueo AV de 2º grado en ratones
tratados con vehículo. El efecto máximo de cada una de las
sustancias ensayadas se resume en la siguiente Tabla 6.
\text{+++} hace referencia a un incremento
>60% en el tiempo hasta la arritmia; ++ se refiere a un
incremento de 30-50% del tiempo hasta la arritmia; +
se refiere a un incremento de 15-29% del tiempo
hasta la arritmia; (+) se refiere a un incremento \leq 15% del
tiempo hasta la arritmia, y nd indica "no determinado".
Como se puede observar de los resultados que se
muestran en la Tabla 6, una amplia gama de nuevos compuestos de la
presente invención muestra actividad antiarrítmica comparable con
la de los compuestos AAP, AAP10 y HP5 de la técnica anterior.
Ejemplo experimental
6
La técnica de Langendorff proporciona un método
para mantener los requisitos metabólicos adecuados de un corazón
aislado, permitiendo, de esta forma, la realización de experimentos
in vitro sobre la totalidad del corazón durante varias
horas. En el método de Langendorff, el corazón se perfunde de forma
retrógrada a través de una cánula insertada en la aorta. Cuando la
solución de perfusión penetra en la aorta, la presión resultante en
la aorta cierra las válvulas aórticas, evitando de este modo que
entre líquido en las cámaras cardiacas. En su lugar, la solución de
perfusión entra en la circulación coronaria que suple al corazón.
Por consiguiente, en la técnica de Langendorff, el flujo total en la
aorta es igual al flujo coronario. Los experimentos de Langendorff
se llevan a cabo utilizando el aparato
Tipo 833 para el TAMAÑO 5 DE CORAZÓN AISLADO, fabricado por Hugo Sachs Elektronik, Alemania. El componente central de este aparato es el bloque aórtico al que está unido el corazón por medio de una cánula. El bloque aórtico está directamente conectado a un resistor de flujo artificial, operado por un botón rotatorio que permite, por lo tanto, ajustes de la carga posterior y, por consiguiente, de la presión de perfusión. El líquido de perfusión se suministra desde un depósito provisto de termostato al bloque aórtico a través de tubos conectados a una bomba de rodillos. EL volumen suministrado por la bomba se puede ajustar para adaptarse a diferentes necesidades. El exceso de líquido fluye de vuelta desde el bloque aórtico al depósito. Debajo del bloque aórtico existe una cámara cardiaca dotada de termostato que se puede elevar para cubrir el corazón. Esta disposición permite efectuar registros continuos de flujo coronario, presión del ventrículo izquierdo (LVP), presión de perfusión, un ECG de 12 derivaciones y 8 potenciales de acción monofásicos (MAP's). El resultado de estos múltiples registros se analiza usando el software NOTOCORD HEM 3.3. Este software permite el cálculo de una amplia gama de parámetros electro-fisiológicos y hemodinámicos del corazón.
Tipo 833 para el TAMAÑO 5 DE CORAZÓN AISLADO, fabricado por Hugo Sachs Elektronik, Alemania. El componente central de este aparato es el bloque aórtico al que está unido el corazón por medio de una cánula. El bloque aórtico está directamente conectado a un resistor de flujo artificial, operado por un botón rotatorio que permite, por lo tanto, ajustes de la carga posterior y, por consiguiente, de la presión de perfusión. El líquido de perfusión se suministra desde un depósito provisto de termostato al bloque aórtico a través de tubos conectados a una bomba de rodillos. EL volumen suministrado por la bomba se puede ajustar para adaptarse a diferentes necesidades. El exceso de líquido fluye de vuelta desde el bloque aórtico al depósito. Debajo del bloque aórtico existe una cámara cardiaca dotada de termostato que se puede elevar para cubrir el corazón. Esta disposición permite efectuar registros continuos de flujo coronario, presión del ventrículo izquierdo (LVP), presión de perfusión, un ECG de 12 derivaciones y 8 potenciales de acción monofásicos (MAP's). El resultado de estos múltiples registros se analiza usando el software NOTOCORD HEM 3.3. Este software permite el cálculo de una amplia gama de parámetros electro-fisiológicos y hemodinámicos del corazón.
Los experimentos se llevan a cabo en el modo de
perfusión de presión constante. El caudal de la bomba se fija para
proporcionar 70 ml/min y la carga posterior se establece en 50 mm
Hg, garantizando una presión de perfusión de aproximadamente 60 mm
Hg. A menos que se especifique lo contrario, los corazones se
perfunden con una solución de Krebs-Henseleit
modificada y precalentada (38ºC) con la siguiente composición
(mmol/l): NaCl: 118, KCl: 4,7, CaCl_{2},2H_{2}O: 2,52,
KH_{2}PO_{4}: 1,18, Mg_{2}SO_{4},7H_{2}O: 1,64, piruvato
sódico: 2,0, NaHCO_{3}: 24,88, glucosa: 5,55. La solución se
filtra a través de un filtro de cuello de botella de 45 \mum
antes de su uso.
Se obtiene un pH de aproximadamente 7,4 y un
contenido adecuado en oxígeno de la solución por medio de burbujeo
continuo con carbógeno (O_{2} al 95%/CO_{2} al 5%). Se permite
que volúmenes de 2 o más litros se equilibren con carbógeno durante
al menos 20 min, en tanto que volúmenes menores de 1 litro se dejan
equilibrar durante 10 min.
Se utilizan conejos Ssc:CPH machos
(2,5-4,0 kg), adquiridos de Hvidesten,
Aller\phid, Dinamarca. Se les seda con 1,2 ml de Hypnorm® (citrato
de fentanilo 0,315 mg/ml y fluanisona 10 mg/ml), i.m. Diez min más
tarde, se induce la anestesia por administración i.v. lenta de 0,55
ml de Dormicum® (midazolam 5 mg/ml). Adicionalmente, reciben 500 UI
de heparina por vía i.v. para prevenir la coagulación.
Los conejos se fijan sobre el lomo, con las patas
delanteras fijadas a los lados y se realiza una incisión para
exponer la tráquea. Se efectúa la traqueotomía y se ventila a los
conejos con oxígeno usando un ventilador para roedores de Ugo Basile
(volumen de ventilación pulmonar: 18 ml, frecuencia: 60 pr. min). Se
abre la cavidad abdominal desde el extremo caudal hasta el apéndice
xifoides y se seccionan lateralmente los músculos abdominales en
ambos lados. Para lograr el acceso a la cavidad torácica, se abre
el diafragma por debajo del esternón y el corte se extiende
bilateralmente a lo largo de la curvatura costal. El mediastino se
secciona lo más próximo al esternón y se cortan las costillas en
ambos lados, paralelamente al esternón, para permitir levantar la
pared torácica en dirección del cráneo. La pared torácica levantada
se fija sobre la cabeza del conejo para ofrecer una visión completa
de la cavidad torácica. Se abre el saco pericárdico y se expone la
aorta. Se sitúa una ligadura suelta alrededor de la aorta. Se pinza
la vena cava caudal en dirección craneal hasta el hígado para
reducir el flujo de retorno al corazón, y se abren la vena cava
craneal y la arteria pulmonar para reducir la sobrecarga de volumen
al corazón. Se abre la aorta y se inserta de inmediato la cánula,
conectada al bloque aórtico por medio de un tubo de extensión
relleno con líquido de perfusión, para permitir la perfusión
artificial. La ligadura se aprieta y se extrae el corazón, que se
transfiere al aparato de perfusión. El tiempo transcurrido desde el
pinzamiento de la vena cava caudal hasta la inserción de la cánula
es de aproximadamente 30 seg.
Se hace un muestreo de las MAP's a 2000 Hz y los
parámetros de presión y caudal a 500 Hz. Se calcula la duración
media del potencial de acción a partir de los 8 registros de MAP
como la duración media desde el momento de máxima despolarización
(tiempo de dV/dt Max) hasta el momento de 90% de repolarización.
Esta duración se designa como APD_{90} y la dispersión de
APD_{90} se mide como la desviación estándar de las 8 mediciones
de APD_{90}.
Como se ilustra en la Figura 5, se estudiaron
tres grupos. Los corazones de conejo se perfundieron con tampón de
Krebs-Henseleit solo (vehículo; n = 11
experimentos), 10^{-10} mol/l de Compuesto 2 (n = 10
experimentos), o 10^{-10} mol/l de AAP10 (CE2; n = 3
experimentos). El incremento de la dispersión de APD_{90}
observada durante la iisquemi aguda del miocardio por hipopotasemia
en los corazones de conejo tratados con vehículo se previno con
10^{-10} mol/l de Compuesto 2, pero no con 10^{-10} mol/l de
AAP10 (CE2). Estos hallazgos demuestran que el Compuesto 2 previene
el incremento de la dispersión eléctrica durante la isquemia, y
sugieren que las propiedades antiarrítmicas del Compuesto 2 están
relacionadas con este mecanismo. Se ha informado anteriormente de
que AAP10 (CE2) es capaz de reducir la dispersión del intervalo de
activación-recuperación epicárdica y disminuir las
alteraciones de los patrones de activación epicárdica inducidas por
la isquemia regional en el conejo, con un efecto máximo a una
concentración de 10^{-8} mol/l (39). En los experimentos de los
presentes inventores, el Compuesto 2 previno eficazmente el
incremento de dispersión eléctrica inducida durante la isquemia a
una concentración de 10^{-10} mol/l, en tanto que AAP10 (CE2) fue
ineficaz a esta concentración. Estas diferencias no se debieron a
diferencias en el tamaño del infarto de miocardio, porque la
reducción del caudal coronario durante la isquemia y la zona de
riesgo fueron similares en todos los grupos. Estos resultados
indican que el Compuesto 2 es más potente que AAP10 (CE2).
Ejemplo experimental
7
La influencia de las uniones por hendidura en las
arritmias se ha clarificado en estudios realizados sobre la
influencia de la conexina 43 (Cx43) sobre las propiedades de
conducción del ventrículo (33). En un ratón heterocigótico
suprimido, deficiente en Cx43 hay dos veces la frecuencia de VT
espontánea con oclusión de la arteria coronaria (CAO) (3). La
isquemia regula negativamente el efecto de Cx43 después de 6 horas
en el perro, mostrando una reducción de 60% de la Cx43 de extremo a
extremo y una reducción de 49% de la Cx43 de lado a lado (40),
probablemente secundario a la desfosforilación. En la isquemia
subaguda en el perro, la reentrada epicárdica se ve facilitada en
las zonas donde Cx43 está reducida (25). De este modo, los
mecanismos de reentrada pueden ser críticamente dependientes de la
regulación negativa, mediada por la isquemia, de Cx43 y,
supuestamente, la resistencia de las uniones por hendidura que
hacen que la heterogeneidad de la recuperación y las propiedades de
conducción que predispongan a VT y VF.
Cuando el corazón ha sido transferido al aparato,
se realiza una incisión en la aurícula izquierda para permitir la
inserción de un globo lleno de líquido (tamaño 12) en el ventrículo
izquierdo, para medir la presión del ventrículo izquierdo. El
volumen del globo se ajusta para dar una presión diastólica final
de aproximadamente 10 mm Hg. Se coloca alrededor del corazón, a la
altura del surco coronario, el anillo de electrodos para las
mediciones de un ECG de 12 derivaciones, quedando la punta de la
aurícula izquierda entre la 5ª y 6ª derivación precordial. Los 8
electrodos de MAP se sitúan sobre el corazón, en contacto directo
con el epicardio. MAP5 y MAP6 se sitúan sobre el ventrículo
derecho, en tanto que los otros electrodos de MAP se distribuyen
uniformemente sobre el ventrículo izquierdo. Este método es similar
al utilizado por Zabel et al. (38). Cuando todos los
electrodos están en su sitio, se eleva la cámara cardiaca para
asegurar que el corazón esté sumergido en solución de
Krebs-Henseleit a 38ºC en todo momento.
Antes de iniciar el experimento, se coloca una
ligadura alrededor de la rama mayor de la arteria circunfleja, que
suple a una gran parte del ventrículo izquierdo. Se hacen pasar los
dos extremos de la ligadura a través de un pequeño tubo de plástico
que permite la inducción de una isquemia presionando el tubo de
plástico contra el corazón, y pinzar los extremos de la ligadura.
Todos los corazones se dejan equilibrar durante 15 min antes de
iniciar el experimento.
El programa en el tiempo de los experimentos es
el siguiente:
1. 15 min de perfusión con tampón de
Krebs-Henseleit normal (período de
equilibrado).
2. 15 min de perfusión con compuesto agregado al
tampón de Krebs-Henseleit normal (período de
control normo-potasémico; y = 0-15
min).
3. 15 min de perfusión con compuesto agregado a
solución de Krebs-Henseleit que contiene una
concentración reducida de K^{+} (2,5 mM) (período de control
hipopotasémico: t = 15-30 min).
4. Inducción de isquemia regional, seguida de 30
min de perfusión con el compuesto agregado a solución de
Krebs-Henseleit que contiene una concentración
reducida de K^{+} (2,5 mM) (período de isquemia hipopotasémica; t
= 30-60 min).
Al final del experimento, los corazones se
perfunden con tinción azul de Evans para evaluar el área de riesgo
de infarto. Se seccionan las aurículas y el ventrículo derecho y el
ventrículo izquierdo remanente se separa en el área teñida con azul
de Evans y la zona que no se tiñe, es decir, la zona de riesgo. Las
dos áreas se secan con toallas de papel y se pesan, para determinar
la zona porcentual de riesgo de infarto.
Se registran de manera continua los siguientes
parámetros: flujo coronario, presión del ventrículo izquierdo,
presión de perfusión, ECG de 12 derivaciones y 8 registros de MAP.
El ECG y los...
En los estudios descritos más adelante, los
presentes inventores examinaron el efecto del Compuesto 2 sobre las
arritmias de reentrada durante la isquemia del miocardio inducida
por CAO de la arteria descendente anterior.
Se estudiaron tres perros anestesiados, con la
cavidad torácica abierta para facilitar la colocación de electrodos
para el mapeo. Se administró \alpha-cloralosa en
forma de bolo (200 mg/kg) y, seguidamente, como infusión constante
de 8 mg/kg/h (disuelta en polietilenglicol, PM = 200). Se canularon
la vena y arteria femorales para la administración de líquido y
fármacos, y para la medición de la presión aórtica ascendente,
respectivamente.
El nódulo sinusal se pinzó y se activó la
orejuela auricular con un estimulador programable con salidas de
corriente constante a dos veces el umbral diastólico. La frecuencia
de activación fue \geq 200 latidos/min para controlar las
frecuencias cardiacas. La colocación ventricular de un polo de una
aguja multipolar en la zona normal empleó un ánodo (7 cm^{2} de
acero inoxidable) en el músculo abdominal. Se midió el Período
Refractario Efectivo Endocárdico (ERP) por la técnica convencional
de estímulos extra. El umbral diastólico ventricular tardío se
midió durante cada intervención; la corriente de activación fue
cuatro veces el umbral.
Se seleccionaron sitios de ensayo a lo largo del
cuerpo de 16 agujas polares (J. Kassell, Fayetteville, NC); cada
polo rodea por completo el cuerpo de la aguja para prevenir que la
direccionalidad de la orientación de la aguja registrase las fibras
de Purkinje adyacentes. Se registraron seis electrogramas bipolares
(espaciados a 1 mm) de manera secuencial a lo largo del cuerpo de la
aguja, amplificando hasta 1000 veces, filtrando de
3-1300 Hz y registrando a través del osciloscopio
durante la activación auricular. Se registran cuatro electrogramas
intramurales en cada aguja multipolar. Los electrogramas
epicárdicos se activan en último lugar en cada aguja. Se utilizó una
disposición de 23 electrodos multipolares, con 17 de ellos situados
en la zona de riesgo de infarto en la arteria coronaria descendente
anterior, y 6 en la zona normal circundante, como lo describen
detalladamente Xing y Martins (41). La distancia entre agujas
medida en el epicardio varía en 6-10 mm en perros de
12-16 kg de peso.
El endocardio se activó en la base, tabique
apical y en la pared lateral libre, inmediatamente fuera de la zona
de riesgo. Después de determinar el ERP, se prolongó el intervalo
S1-S2 en 4 mseg > ERP y se agregó un S3 al
protocolo inicialmente, con un intervalo S2-S34
igual a 50 mseg > S1-S2. Los intervalos se
redujeron hasta que fue imposible detectarlos. Si no se indujo
taquicardia ventricular en ningún sitio de activación, se agregaron
un tercer (S4) y cuarto (S5) estímulo extra. Los presentes
inventores llevaron a cabo un protocolo completo de inducción de
taquicardias ventriculares antes de la CAO para excluir
taquicardias ventriculares artificiales debidas a la masa de la
aguja o a isquemia debida a que las agujas comprometieran el flujo
de sangre. Después de confirmar los gases en sangre fisiológicos y
una anestesia adecuada, se ligó la CAO descendente anterior.
Después de 60 minutos, el tamaño del infarto es de aproximadamente
75% de la zona de riesgo y resulta despreciable un aumento adicional
de la zona de infarto. Se indujo, entonces, taquicardia ventricular
al menos dos veces antes de las intervenciones. Se repitieron los
ensayos cada 20 minutos y continuaron hasta 3 horas después de la
CAO. Con cada intervención se registró el ERP del músculo cardiaco
normal.
Se llevó a efecto un mapeo epicárdico usando un
sistema informatizado de BARD Electrophysiology Inc. El software
abarca 64 canales de datos con una resolución de 12 bits, con una
frecuencia de muestreo de 1 kHz/canal. El filtrado fue de
30-300 Hz. Se desencadenan externamente ventanas de
ocho segundos, incluyendo hasta 8 seg de datos antes de la señal de
desencadenamiento. Este sistema se utiliza para realizar registros
desde los 2-3 bipolos epicárdicos exteriores en cada
electrodo de registro.
Se utilizó un sistema de software informático
adaptado al cliente para resolver las señales de Purkinje desde los
3 bipolos internos en cada electrodo multipolar endocárdico
mediante muestreo a 3 kHz por canal. Los filtros incorporan la
frecuencia de Purkinje (3-1300 Hz). La frecuencia
de muestreo fue de 235 kHz. El PC estuvo conectado en interface con
un amplificador consistente en un multiplexor analógico de señales y
64 circuitos amplificadores de instrumentos. Cada uno de ellos tuvo
una ganancia seleccionable (hasta 1000) y cortes de ancho de
banda. La adquisición, procesamiento y visualización de los datos
electro-fisiológicos se realizaron por medio del
software. La adquisición de alta velocidad permitió a los presentes
inventores 14 seg de datos, incluidos hasta 8 seg antes de la señal
de desencadenamiento.
El análisis de mapeo se llevó a cabo fuera de
línea. El ordenador selecciona tiempos de activación usando el
primer dv/dt máximo. Los electrogramas se consideraron imposibles
de interpretar sólo si no fueron reproducibles con estímulos; no
hubo ninguna exclusión basada en el voltaje de los electrogramas.
Se considera que están presentes los potenciales electrotónicos o de
campos lejanos cuando se produce una pérdida sustancial de voltaje
y dv/dt en un complejo, con intervalos de acoplamiento menores de la
capacidad refractaria. Los isocronos se trazan manualmente. Los
mecanismos de taquicardia ventricular se definen del modo
siguiente: se produce taquicardia ventricular de reentrada cuando
el electrodo que registra la actividad más temprana, que se produce
tras el bloqueo unidireccional, está localizado inmediatamente
adyacente al sitio de la última activación del complejo anterior y
se registra actividad diastólica entre complejos. Casi siempre se
registra la reentrada epicárdica en la isquemia aguda, de forma que
se observa activación retrógrada (epicárdica a endocárdica) de la
pared.
Tras la instrumentación del corazón y después de
una hora de CAO, se llevaron a cabo los protocolos de activación
para inducir taquicardia ventricular para confirmar la capacidad de
inducción reproducible (doble inducción de taquicardias
ventriculares con morfologías de superficie similares), o el
fracaso de inducción (activando dos veces los tres sitios sin
taquicardia ventricular durante una hora). En tres perro con
taquicardia ventricular re-inducible se identificó
un mecanismo de reentrada. En estos tres perros, el Compuesto 2 se
administró en forma de inyección i.v. de bolo, seguida de la
infusión constante durante 30 min a tres niveles de dosis en dos
perros, en tanto que el tercero de ellos se trató con solución
salina. Se repitió, entonces, el ensayo de estímulos extra a través
de la totalidad del protocolo en todos los sitios, para determinar
si existía o no taquicardia ventricular. El Compuesto 2 se
administró por vía i.v. a tres niveles de dosis para producir
concentraciones en plasma de 10^{-10} M (bolo: 0,1 \mug/kg;
infusión: 2 ng/kg/min), 10^{-9} M (bolo: 1,1 \mug/kg; infusión:
21 ng/kg/min), y 10^{-8} M (bolo: 11 \mug/kg; infusión: 210
ng/kg/min), respectivamente.
El primer animal, del cual se adjuntan las
Figuras 6-9, se estudió tras la inducción de VT
monomórfica sostenida. La inducción se efectuó solamente desde el
sitio de activación ventricular lateral, dos veces sucesivas que
tuvieron lugar a las 2 horas y 10 minutos y que se repitieron a las
2 horas y 20 minutos después de la CAO. En la Figura 6 se presenta
un mapa de activación tras la activación septal, que no provocó VT.
Ésta muestra el patrón de activación ortogrado normal, con
activación precoz del sitio de activación de PURK, activado a los 6
mseg tras el estímulo, y la activación tardía del sitio epicárdico
activado, a más tardar, a 107 mseg. Obsérvese que el tiempo de
activación adyacente a los 86 mseg, inmediatamente al este y sur de
la última activación en el epicardio es E-S en la
Figura 7. La activación epicárdica del primer complejo de la VT,
que se inicia a -44 mseg antes del inicio del QRS superficial, y que
corresponde al electrograma registrado en E-C en la
Figura 7.
En la Figura 7, se muestra la taquicardia
ventricular (VT) monomórfica sostenida, inducida por la
estimulación en el sitio de activación ventricular epicárdica
lateral que causa un circuito de reentrada. La activación tiene
lugar en una reentrada de doble asa, que activa, en primer lugar, a
-17 mseg y, a continuación, tiene lugar a 57 mseg en el asa
noroccidental. El asa suroriental se activa, en primer lugar, a 2
mseg, 31 mseg y, entonces, a 57 mseg. El protocolo que indujo VT
fue S1-S2 = 150, S1-S3 = 280,
S1-S4 = 390, S1-S5 = 490 mseg. La
figura ilustra electrogramas epicárdicos (E-) registrados con la
derivación de superficie ECG II y VSR durante el segundo a quinto
estímulo extra prematuro (se ve mejor en E-L), que
asegura 4 complejos de VT. Los electrogramas se registran desde el
sitio de activación de la zona límite (L), lateral, y este (E),
norte (N), central (C), subepicárdica (SE), bajo
E-C, así como sur (S) y noroccidental (NW) y
suroccidental (SW) de E-C. E-C
muestran electrogramas gradualmente disociados, mostrando el último
prematuro un bloqueo del segundo componente (líneas
perpendiculares). El retraso de conducción adyacente en ES permitió
que la conducción prosiguiera alrededor y de vuelta al sitio
central (EC), continuando la excitación de reentrada entre EC y ES
(línea recta y línea con flecha).
La Figura 8 ilustra el mapa de activación durante
la activación epicárdica del primer complejo de la taquicardia
ventricular, que se inicia a -44 msec antes del inicio de QRS de
superficie y que corresponde al electrograma registrado en
E-C en la Figura 7. La activación tiene lugar en una
reentrada de doble asa que activa, en primer lugar, a -17 mseg y
que, a continuación sigue hasta 57 mseg en el asa noroccidental.
Este mapa de activación ilustra, asimismo, la activación retrógrada
de la pared ventricular durante la arritmia de reentrada.
El Compuesto 2 se administró en tres dosis i.v.
crecientes, que no alteraron la tensión arterial media (MAP = 80 mm
Hg). El período refractario efectivo en control fue de 150 mseg,
154 mseg después de la dosis más baja y fue de 148 mseg con la
dosis última y más elevada. La VT que se pudo inducir fue la típica
taquicardia de reentrada epicárdica que se muestra en las Figura 7 y
8. Después de la primera dosis de Compuesto 2 (bolo: 0,1 \mug/kg;
infusión: 2 ng/kg/min), ya no fue posible inducir una VT, a pesar
del hecho de que se reprodujeron los protocolos de inducción que
indujeron VT antes de la administración del Compuesto 2; el
protocolo que indujo VT antes de la administración del fármaco fue
S1-S2 = 150, S1-S3 = 280,
S1-S4 = 390; S1-S5 = 490 mseg, y
durante la infusión del Compuesto 2 los intervalos fueron 150, 270,
370 y 470 mseg, respectivamente. No se indujo VT hasta una hora y
media después de haber iniciado la infusión de la dosis mínima de
Compuesto 2. En la Fig. 9 se muestran los registros
electrocardiográficos tras la administración i.v. de la dosis más
baja de Compuesto 2. Estos resultados demuestran que el Compuesto 2
bloqueó eficazmente la VT de reentrada en este perro.
Se estudió un segundo perro con VT inducible,
esta vez desde dos sitios de activación de las zonas límites,
localizados lateralmente y en el tabique. Tampoco en esta ocasión
produjo el Compuesto 2 alteración alguna de la MAP, que se inició
en 90 mm Hg y finalizó en 90 mm Hg. El período refractario efectivo
en los dos sitios de inducción se mantuvo en 163 y 144 mseg,
respectivamente, a lo largo de todo el período de ensayo del
Compuesto 2, que se inició 85 minutos después de la CAO y continuó
durante 2 horas adicionales. Después de la dosis mínima de Compuesto
2, la VT inducida desde la pared lateral ya no fue inducible; el
mecanismo de esta VT fue la reentrada epicárdica, muy similar a la
que se muestra en las Figuras 7-9. La VT inducida
desde el sitio septal también fue de reentrada epicárdica antes de
la administración del Compuesto 2, pero, tras la administración del
Compuesto 2, se bloqueó por completo la reentrada epicárdica. De
esta forma, en estos dos experimentos, fue posible inducir VT de
reentrada epicárdica antes de la administración de la dosis más
baja de Compuesto 2 y, tras la administración de la sustancia, no
fue posible re-inducir ninguna reentrada con
ninguna dosis.
Por último, un animal adicional se sometió a
ensayos electro-fisiológicos durante el período de
tiempo usado en los dos experimentos anteriormente descritos, sin
introducción de Compuesto 2, sino usando solución salina. Se indujo
reentrada epicárdica una hora después de la CAO y se indujo la misma
morfología de VT y mecanismo de reentrada 1,5-2,5
horas de la CAO. De esta forma, la reproducibilidad de la VT de
reentrada en este experimento controlado con el tiempo es
consistente con la noción de que el Compuesto 2 es un eficaz
compuesto antiarrítmico bajo las condiciones de arritmias de
reentrada.
Estos experimentos demuestran que el Compuesto 2
es eficaz en la prevención y/o el tratamiento de las arritmias de
reentrada mortales. Por consiguiente, es propósito de la presente
invención ofrecer compuestos para la preparación de medicamentos
útiles en la prevención y/o el tratamiento de arritmias de
reentrada cardiacas de origen supraventricular o ventricular. Este
objetivo de cumple con los presentes compuestos peptídicos tales
como los compuestos de las fórmulas I, XII, XIII, XIIIa, XIV, XV y
XVI y de las fórmulas 2-12 de la presente
invención, más específicamente los compuestos de los Ejemplos de
Síntesis 1-47 de este documento.
Ejemplo experimental
8
Los osteoblastos, que son células formadoras de
tejido óseo, y los osteocitos están bien conectados. Se han
encontrado conexiones osteoblasto-osteoblasto,
osteoblasto-osteocito y
osteocito-osteocito en preparaciones óseas
examinadas a microscopia electrónica (42). La conexina más
interesante en relación con el tejido óseo es Cx43, como sucede en
el corazón. En las células óseas, la expresión de estas proteínas
está asociada a la expresión de algunas proteínas específicas de
los osteoblastos. Las hormonas calciotrópicas pueden regular
también la expresión de las proteínas de las uniones por
hendidura.
Se ha demostrado que los osteoblastos humanos
(HOB) y las células estromáticas derivadas de la médula ósea (BMSC)
expresan Cx43 y Cx45. Como se demuestra con la técnica de
transferencia de tinción de Amarillo Lucifer (LY), se encuentran
funcionalmente acopladas (43). Las líneas celulares de osteoblastos
de rata difieren de los cultivos primarios humanos; las células ROS
17/2,8 expresan sólo Cx43 y están bien acopladas, en tanto que UMR
106-01 expresan, de forma predominante, Cx45 y están
escasamente acopladas a la tinción (44). Las dos líneas celulares
osteoblásticas de rata están eléctricamente acopladas. La
transfección de Cx43 en las células UMR da como consecuencia
células altamente acopladas a la tinción. De este modo, Cx43
permite la transferencia de LY y otras moléculas mayores, mientras
que Cx45 no permite este paso. Por el contrario, la introducción de
Cx45 q células que expresan Cx43 reduce el acoplamiento a la
tinción. En la diferenciación de osteoblastos, se modifica la
expresión de Cx43; de esta manera, cuanto más maduros son los
osteoblastos, mayor es la expresión de Cx43 (45).
Se ha investigado el efecto de diferentes
estímulos sobre las células óseas y la relación con variaciones de
la comunicación de las uniones por hendidura. Es bien sabido que
una moderada tensión mecánica sobre el hueso aumenta la densidad
ósea. Para limitar esta situación, se expusieron células ROS 17/2,8
a tensión cíclica, que dio como resultado un incremento del
acoplamiento a la tinción de las células. La tensión cíclica
aplicada a las células UMR 106-01 escasamente
acopladas tuvo como consecuencia también un incremento del
acoplamiento a la tinción, pero menos intenso en comparación con
las células ROS. No se encontró un aumento de ARNm para Cx43, sino
que se observaron más formas fosforiladas de Cx43, lo cual indica
que la tensión cíclica sobre los osteoblastos aumenta la
comunicación mediante las uniones por hendidura entre las células
al modular la localización intracelular de la proteína de la unión
por hendidura Cx43. El mismo grupo ha demostrado que la
transfección de Cx43 a las células UMR 106-01
escasamente acopladas no sólo incrementa el acoplamiento a la
tinción (46), sino que aumenta también la expresión de los
productos de los osteoblastos maduros, osteocalcina y sialoproteína
ósea (BSP). La disminución del acoplamiento entre células
osteoblásticas (ROS) por medio de la transfección de Cx45 en las
células reduce la expresión de osteocalcina y BSP, genes que son
fundamentales para la formación y calcificación de la matriz ósea.
Un estudio reciente ha puesto de manifiesto que ratones exentos de
Cx43 exhiben una formación de tejido óseo y un desarrollo
deficientes en comparación con ratones de tipo salvaje (47). De
este modo, se requiere una red de comunicación intercelular para la
completa elaboración de un fenotipo osteoblástico diferenciado, así
como para la formación y el ciclo metabólico del tejido óseo. Por
lo tanto, una comunicación de uniones por hendidura deficiente
puede tener como consecuencia un aumento de la pérdida de hueso.
Igualmente, se ha demostrado que las uniones por
hendidura son parcialmente responsables de la propagación de señales
de calcio intercelular en las células óseas. La estimulación
mecánica de un osteoblasto humano es una monocapa celular, in
vitro, induce un pulso de calcio que se propaga hacia una serie
de células adyacentes. La propagación de esta señal implica el paso
de una molécula mensajera a través de las uniones por hendidura,
con la activación subsiguiente de las células adyacentes (48,49).
Probablemente, estas señales se propagan a través de la red celular
del tejido óseo in vivo, en respuesta a estímulos mecánicos,
y podrían ser responsables del incremento de formación de tejido
óseo en respuesta a la carga mecánica sobre el hueso.
La comunicación de las uniones por hendidura y el
efecto de las hormonas calciotrópicas están unidos. Se ha demostrado
que la estimulación con
1,25-(OH)_{2}-vit-D_{3}
de los fibroblastos de la piel humana potencia la comunicación a
través de las uniones por hendidura, así como que aumentan los
niveles de proteína Cx43 y ARNm (50), pero sólo en presencia de
receptores funcionales de la vitamina D (VDR). Se ha demostrado que
la pérdida de expresión de Cx43 disminuye la capacidad de respuesta
de las células a la PTH, sin que se produzcan variaciones del
número de receptores de PTH ni de la respuesta de AMPc (51). Por el
contrario, PTH y PGE2 potencian la comunicación entre uniones por
hendidura en cultivos de células osteoblásticas a través de dos
mecanismos: una rápida redistribución inicial de Cx43 a la membrana
celular, y una estimulación posterior de la expresión del gen Cx43
(52). De esta manera, la modulación de la comunicación intercelular
representa un mecanismo por el cual los factores osteotrópicos
regulan la actividad de las células formadoras de tejido óseo.
Es muy posible que la comunicación intercelular
de uniones por hendidura demuestre ser uno de los mecanismos más
importantes mediante el que las células óseas coordinan sus
actividades y respuestas a estímulos mecánicos y hormonales. De
esta forma, si fuera posible aumentar por medios farmacológicos la
comunicación por uniones por hendidura entre las células óseas, se
podría aumentar la actividad de los osteoblastos, potenciando la
formación de tejido óseo in vivo.
Los miocitos cardiacos también están conectados
por uniones por hendidura y, al igual que en los osteoblastos, la
conexina predominante es Cx43. Se ha observado que determinados
compuestos aumentan la comunicación entre uniones por hendidura
entre los miocitos cardiacos, de los cuales el AAP10 (CE2), de
síntesis artificial, es el mejor investigado. Los miocitos cardiacos
responden a la isquemia con un descenso del acoplamiento celular.
En experimentos in vitro, la adición de AAP10 (CE2) a
miocitos cardiacos expuestos a isquemia restableció parte del
acoplamiento celular perdido. Si los miocitos cardiacos son capaces
de responder a este grupo de compuestos con un aumento de
acoplamiento de uniones por hendidura, los osteoblastos podrían
hacer lo mismo. En este caso, resulta evidente que el aumento de
acoplamiento celular podría acompañarse perfectamente de un
incremento de la maduración y actividad de los osteoblastos, y del
subsiguiente aumento de la formación de tejido óseo. Para
investigar esta hipótesis, los presentes inventores han examinado el
efecto del Compuesto 2 sobre la GJIC en osteoblastos humanos y
células de osteosarcoma de rata. Adicionalmente, los inventores han
estudiado el efecto del Compuesto 2 sobre una marca (es decir,
fosfatasa alcalina) para la actividad de los osteoblastos humanos y
la formación de tejido óseo.
Osteoblastos humanos (hOB): se aislaron
células de la médula ósea humana obtenida por punción de la cresta
iliaca posterior de voluntarios sanos (edades 20-36
años: se recogieron 10-15 ml de material medular en
15 ml de PBS+Ca,Mg (Life Technologies, nº de Cat. 14040) con 100
U/ml de heparina (Sigma, nº de Cat. H-3149). La
fracción mononuclear de la médula se aisló en un graddiente de
Lymphoprep (Nycomed Pharma, nº de Cat. 1001967), por centrifugación
a 2200 rpm durante 30 min. Después de la cosecha, la fracción
mononuclear se lavó una vez con medio de cultivo y se centrifugó a
1800 rpm durante 10 min. A continuación, las células se contaron y
sembraron en placa con medio de cultivo a 8 x 10^{6} células/placa
de 100 mm. Medio hOB (todos los reactivos proceden de Life
Technologies): MEM son Rojo Fenol con Glutamax (nº de Cat.
041-93013), suplementado con suero de ternero fetal,
inactivado por calor, al 10% (nº de Cat. 10106) y
Penicilina/Estreptomicina al 0,1% (nº de Cat. 15140). El medio se
cambió al día siguiente y las células se cultivaron a 37ºC en
CO_{2} al 5%, con cambio de medio cada 7 días. Después de
3-4 semanas de cultivo, las células habían
alcanzado una confluencia de 70%. El medio se suplementó, entonces,
con dexametasona 100 nM (Sigma, nº de Cat. D-4902)
durante 7 días. A continuación, las células se sembraron en placas
para experimentos con imágenes de vídeo: se colocó un cubreobjetos
de vidrio de 25 mm nº 1 en una placa de 35 mm (o cada pocillo de
una placa múltiple de 6 pocillos), las células se sembraron en
placas a 2,5 x 10^{5} células/cubreobjetos y se cultivaron
durante 2-3 días antes de su uso.
Células ROS 17/2,8: las células se
cultivaron en placas de 100 mm a 37ºC con CO_{2} al 5% y cambio
de medio cada 2-3 días. Medio ROS (todos los
reactivos proceden de Life Technologies): MEM (nº de Cat. 31095)
suplementado con suero de ternero fetal, inactivado por calor, al
10% (nº de Cat. 16170), NEAA al 1% (nº de Cat. 11140), Piruvato
Sódico al 1% (nº de Cat. 11360), L-Glutamina al 1%
(nº de Cat. 25030) y Penicilina/Estreptomicina al 0,1% (nº de Cat.
15140). Para los experimentos de imágenes de vídeo, las células se
sembraron en cubreobjetos a 2-3 x 10^{5}
células/cubreobjetos y se cultivaron durante 2-3
días antes de su uso.
Las células cultivadas sobre cubreobjetos se
cargaron con fura-2-AM 5 \muM
(Molecular Probes, nº de Cat. F-1221), durante 30
minutos a 37ºC, y se incubaron en medio fresco durante 20 minutos.
Seguidamente, los cubreobjetos se fijaron a una cámara de cultivo
PDMI-2 (Medical Systems Corp.), se mantuvieron a
37ºC con perfusión de CO_{2}, sobre un microscopio Zeiss Axiovert.
Se indujeron ondas de calcio intercelular por estimulación mecánica
de una sola célula, utilizando una micro-pipeta de
vidrio de borosilicato unida a un micro-manipulador
Eppendorf 5171. Las imágenes se obtuvieron usando un sistema de
obtención de imágenes MetaMorph (Universal Imaging). La luz de
excitación (340 y 380 nm) se proporcionó por medio de un
Monochromator (T.I.L.L. Photonics GmbH). Las imágenes se adquirieron
con una cámara CCD intensificada (Dage MTI) y se digitalizaron con
una placa de procesamiento de imágenes Matrox MVP.
Las células cultivadas en cubreobjetos se
colocaron en el microscopio de la forma anteriormente descrita. Se
efectuaron microinyecciones usando el
micro-manipulador Eppendorf 5171 y el sistema
Eppendorf Transjector 5346. Se cargó una
micro-pipeta con solución de Amarillo Lucifer (LY)
10 mM (Sigma, nº de Cat. L-0259). Se inyectó
cuidadosamente una célula de la monocapa con LY durante 30
segundos, se extrajo la micro-pipeta de la célula y,
después de 30 segundos, se contó el número de células que mostraban
transferencia de tinción. La luz de excitación para LY fue 430 nm y
las imágenes se adquirieron de la forma anteriormente descrita.
Día 1: las células se sembraron en placas de 96
pocillos en una concentración de 8000 células/pocillo (hOB) o 3000
células/pocillo (ROS) en 200 \mul de medio de cultivo normal.
Día 2: se cambió el medio en las células.
Día 4: (Día 3 para ROS): las células se lavaron
con 200 \mul de MEM, BSA al 0,1% (Sigma, nº de Cat.
A-9418), Se agregaron a las células 200 \mul de
MEM, BSA al 0,1% que contuvo diversas concentraciones de Compuesto
2, y el cultivo se continuó durante 4 días (2 días para las células
ROS).
Día 8: (Día 5 para ROS): el ensayo de fosfatasa
alcalina (ALP) es un método colorimétrico para medir la actividad
enzimática, y se llevó a cabo usando el kit de Fosfatasa Alcalina
(Sigma, nº de Cat. 104-LL): las células se lavaron
una vez con 200 \mul de PBS+Ca,Mg. Se agregaron 100 \mul de
Solución Tampón Alcalina a cada pocillo y la placa se colocó a 37ºC
durante 10 min. Se agregaron 100 \mul de Solución de Sustrato a
cada pocillo y la placa se incubó a 37ºC durante 30 min. Se
agregaron 100 \mul de NaOH 2,0 N a cada pocillo para detener la
reacción. Se midió la absorbancia usando un lector de placa a 405
nm.
Para evaluar la capacidad de los modificadores de
las uniones por hendidura para aumentar la comunicación a través de
señales de calcio intercelulares, mediadas por las uniones por
hendidura, se cargaron monocapas de osteoblastos humanos sobre
cubreobjetos de vidrio con fura-2. Durante la
obtención de imágenes en tiempo real, se llevó a efecto una
estimulación mecánica con una micro-pipeta de
vidrio. Se produjo un incremento del calcio intracelular, con la
subsiguiente difusión de la señal a las células circundantes. El
número medio de células en la onda fue de 6,5 células. A
continuación, se agregó
Adenosín-tri-fosfato (ATP) 100
\muM para desensibilizar los receptores purinérgicos. Tras la
desensibilización, la propagación de la onda de calcio depende
exclusivamente de la GJIC. Con la estimulación de ATP, se observó un
incremento de calcio intracelular en la mayoría de las células en
el campo de visión. Una vez más, se estimuló mecánicamente una
única célula. Ahora, la propagación de la onda se limitó a una
media de 4,5 células en la onda. Se agregó Compuesto 2 en una
concentración de 10^{-8} mol/l a la solución del baño. Se observó
un incremento de las concentraciones de calcio intracelular en la
mayoría de las células en el campo de visión. Después de 10 minutos
de incubación con el Compuesto 2, se volvió a estimular
mecánicamente una sola célula. Nuevamente, la concentración
intracelular de calcio aumentó en la célula estimulada, con una
subsiguiente propagación de la onda. En este caso, la onda se
extendió a una media de 6,2 células (Figura 10), con un aumento
significativo en comparación con la alcanzada antes de la adición
de Compuesto 2.
Con el fin de ensayar la capacidad del compuesto
para restaurar el acoplamiento suprimido de uniones por hendidura,
se realizaron experimentos similares con la línea celular de
osteoblastos ROS 17/2,8 (ROS), pero tras la incubación de las
células durante 48 horas bajo condiciones de hipoxia, con sólo
3-6% de O_{2}, es decir, condiciones conocidas
por reducir el acoplamiento celular. Células ROS en monocapas se
cargaron con fura-2 y, bajo las mismas condiciones
anteriores, se practicó una estimulación mecánica. Dado que las
células ROS no expresan receptores purinérgicos, no se realizó el
tratamiento previo con ATP. Tras la estimulación, la concentración
intracelular de calcio aumentó en la célula estimulada y se inició
una onda, que difundió a un promedio total de 2,2 células (n = 18).
A continuación, se agregó Compuesto 2 a la solución de baño, en una
concentración final de 10^{-8}M. Después de 10 minutos, se repitió
la estimulación mecánica. Ahora, la onda se propagó a una media de
5,4 células (n = 18) (Figura 11), lo que representa un incremento
significativo en comparación con el obtenido antes de agregar el
compuesto. Por consiguiente, el Compuesto 2 aumenta de manera
eficaz las ondas de calcio intercelular mediadas por las uniones
por hendidura.
Para evaluar el efecto del compuesto sobre el
acoplamiento celular directo, se llevaron a cabo experimentos de
microinyección de acuerdo con el método anteriormente descrito. Se
inyectó la tinción Amarillo Lucifer (LY) en un único osteoblasto
humano en una monocapa. Después de 30 segundos, se evaluó el número
de células que contienen la tinción. Bajo condiciones fisiológicas,
la tinción difundió a una media de 14 células (n = 19). Para
suprimir el acoplamiento celular, se incubaron las células ahora
bajo condiciones de hipoxia (3-6% de O_{2})
durante 48 horas. A continuación, se reevaluó el acoplamiento
celular por microinyecciones de LY y, en este caso, la tinción pasó
únicamente a una media de 7 células (n = 10). Se agregó Compuesto 2
al medio y, después de 10 minutos, se volvió a evaluar el
acoplamiento de tinción. Ya después de 10 minutos de incubación con
Compuesto 2, el acoplamiento celular aumentó, con transferencia de
tinción a 9 células (n = 11).
Se llevaron a cabo experimentos similares con
células ROS. El acoplamiento básico bajo condiciones fisiológicas en
células ROS fue de 12 células (n = 19). Después de 48 horas de
incubación en 3-6% de O_{2}, se observó una
reducción de la transferencia de tinción a 9 células (n = 27). Una
vez más, se agregó Compuesto 2 a la solución de baño, y el
acoplamiento celular se restauró a los niveles previos a la
hipoxia, con una transferencia media de tinción a 12 células (n =
27) (Figura 12). Por lo tanto, el Compuesto 2 es capaz de aumentar
la comunicación entre las uniones por hendidura y restaurar las
reducciones inducidas por hipoxia del acoplamiento celular.
Se sabe también que la tensión metabólica
inducida por la hipoglucemia disminuye la comunicación entre uniones
por hendidura. Por consiguiente, los presentes inventores
decidieron evaluar si el Compuesto 2 podía invertir la reducción
del acoplamiento celular inducido por la hipoglucemia. Se cultivaron
osteoblastos humanos en monocapas sobre cubreobjetos de vidrio y se
cargaron con fura-2. Después de la
desensibilización como la anteriormente descrita, se estimuló
mecánicamente una sola célula, y se registró el número de células
en la onda. En este grupo de experimentos, la onda se extendió a
una media de 3,2 células (n = 19). Se cambió el medio a medio sin
glucosa y, después de 8 minutos, se realizó otra estimulación
mecánica. Ahora, la onda estuvo prácticamente bloqueada, con una
propagación de onda de sólo 1,4 células (n = 20). Se agregó
Compuesto 2 al medio en una concentración final de 10^{-8} M. Se
efectuó una estimulación final y se restauró casi por completo la
onda, con una extensión media de 2,9 células (n = 18) (Figura 13).
Por lo tanto, el Compuesto 2 es capaz de restaurar el
desacoplamiento celular inducido por hipoglucemia.
Por último, para evaluar el efecto del Compuesto
2 sobre la formación de tejido óseo y la actividad de los
osteoblastos, los presentes inventores midieron el efecto del
compuesto sobre la actividad de la fosfatasa alcalina (ALP) de las
células. Se estimularon osteoblastos humanos con diferentes
concentraciones de Compuesto 2, desde 1 x 10^{-13} hasta 1 x
10^{-6}, y se compararon con controles no tratados. Bajo
condiciones normales de cultivo, el Compuesto 2 aumentó la actividad
de ALP con la mayoría de las concentraciones ensayadas, excepto con
la máxima (10^{-6} mol/l), que puede ser tóxica (Figura 14).
Adicionalmente, se ensayó también el efecto del
compuesto sobre la actividad de ALP bajo condiciones de hipoxia. Se
cultivaron osteoblastos humanos durante cuatro días en 5% de
O_{2}. El medio se enriqueció con diferentes concentraciones de
Compuesto 2, y se compararon con las respuestas durante las
condiciones normales. Durante la hipoxia, la estimulación de la
actividad de ALP inducida por el Compuesto 2 fue alrededor de 15%
mayor que durante la normoxia en todas las concentraciones
comprendidas en el intervalo de 10^{-11} a 10^{-8} mol/l (Figura
15).
En resumen, estos resultados demuestran que el
Compuesto 2 es capaz de normalizar la GJIC atenuada entre
osteoblastos humanos durante la hipoxia. Adicionalmente, el
Compuesto 2 estimula la producción de fosfatasa alcalina, lo que
sugiere que el Compuesto 2 es capaz de estimular la actividad de los
osteoblastos y, por lo tanto, la formación de tejido óseo. De esta
forma, el Compuesto 2 puede ser útil en el tratamiento de
enfermedades óseas con formación alterada de hueso con respecto a
la resorción ósea. El efecto del Compuesto 2 sobre el acoplamiento
entre células durante la hipoxia indica que las sustancias de la
presente invención pueden ser de utilidad en el tratamiento y/o la
prevención de enfermedades óseas asociadas con mala vascularización,
hipoxia e isquemia del tejido óseo.
A partir de estos experimentos, se puede concluir
que las sustancias de la presente invención, que aumentan la GJIC,
pueden ser útiles para la preparación de medicamentos para la
prevención y/o el tratamiento de la osteoporosis. En algunos casos,
la osteoporosis es una manifestación de otras enfermedades tales
como el síndrome de Cushing o la osteogénesis imperfecta. En la
mayoría de los casos de osteoporosis, sin embargo, no resulta
evidente otra enfermedad. Una forma se manifiesta en niños o
adultos jóvenes de ambos sexos y con función gonadal normal, que a
menudo se designa como osteoporosis idiopática, aun cuando la mayor
parte de las formas restantes también son de patogenia desconocida.
La osteoporosis de tipo I se produce en un subconjunto de mujeres
postmenopáusicas con edades comprendidas entre 51 y 75 años, y se
caracteriza por una pérdida acelerada y desproporcionada de hueso
trabecular. Complicaciones frecuentes son las fracturas de cuerpos
vertebrales y del antebrazo distal. Un descenso de la función del
paratiroides puede compensar el aumento de resorción ósea. La
osteoporosis de tipo II se manifiesta en mujeres y hombres mayores
de 70 años de edad y se asocia con fracturas del cuello femoral,
del húmero proximal, la tibia proximal y la pelvis, es decir, sitios
que contienen tejido óseo tanto cortical como trabecular. Además
de la osteoporosis, las sustancias que aumentan la GJIC pueden
incrementar también la formación de tejido óseo en enfermedades
metabólicas óseas tales como raquitismo y osteomalacia, y en la
osteoporosis debida a la administración crónica de glucocorticoides
o insuficiencia renal crónica. Por lo tanto, un propósito de la
presente invención es ofrecer compuestos para la preparación de
medicamentos útiles en la prevención y/o el tratamiento de la
osteoporosis. Este objetivo se alcanza con los presentes
compuestos peptídicos.
El cartílago articular es un tejido diseñado para
resistir la compresión durante el movimiento de las articulaciones
e, in vivo, está sometido a una amplia gama de fuerzas de
carga mecánicas. Se ha demostrado que la sensibilidad mecánica
influye sobre el metabolismo condrocitario y la homeostasia del
cartílago. En muchos tipos de células, la estimulación mecánica
induce incrementos de la concentración citosólica de Ca^{2+}, que
se propaga de una célula a otra en forma de onda intercelular de
Ca^{2+}. La comunicación entre células a través de uniones por
hendidura subyace en la coordinación tisular del metabolismo y
sensibilidad a estímulos extracelulares. La permeabilidad de las
uniones por hendidura a segundos mensajeros intracelulares permite
que las vías de transducción sean compartidas entre varias células,
dando como resultado último respuestas tisulares coordinadas. Se ha
investigado la señalización de Ca^{2+} inducida mecánicamente en
los condorcitos, y se ha demostrado que la comunicación entre
uniones por hendidura resulta esencial para la señalización de
Ca^{2+} inducida mecánicamente en los condorcitos (53).
Adicionalmente, la estimulación mecánica activa la fosfolipasa C,
conduciendo, de esta forma, a un incremento de
1,4,5-trifosfato de inositol intracelular. El
segundo mensajero, a través de las uniones por hendidura, estimula
la liberación de Ca^{2+} intracelular en células vecinas y se
considera que este sistema es muy importante para la señalización
coordinada en condorcitos durante la tensión mecánica, pudiendo
proporcionar un mecanismo para la actividad metabólica coordinada
durante la tensión metabólica en los condorcitos (53,54). La
conexina predominante en el cartílago es Cx43 que, además de su
función en la regulación entre células del metabolismo y la
señalización, resulta esencial para la condrogénesis normal
(47,55).
De este modo, parece ser que las sustancias de
esta invención, que incrementan la CJIC, se pueden utilizar para la
prevención y/o el tratamiento de artropatías que implican un
acoplamiento alterado entre células.
Como han demostrado los presentes inventores en
osteoblastos humanos, estos inventores sugieren también que las
sustancias que aumentan la GJIC se pueden utilizar para la
prevención y/o el tratamiento de enfermedades articulares que
implican tensión metabólica. Éstas incluirían cualquier forma de
artritis asociada con una vascularización o cicatrización reducida
del tejido condral fracturado. Por consiguiente, es un propósito de
la presente invención proporcionar compuestos para la preparación
de medicamentos útiles en la prevención y/o el tratamiento de
enfermedades articulares, incluida la artritis. Este objetivo se
alcanza con los presentes compuestos peptídicos.
La permeabilidad de las uniones por hendidura y
la regulación de la GJIC ocurren a distintos niveles en la célula.
La reducción o ausencia de GJIC puede ser consecuencia de
variaciones en la expresión de Cx durante la trascripción y
traducción, alteración del procesamiento
post-traducción y alteración del ensamblaje e
inserción de conexones en la membrana plasmática. Una característica
inusual de Cx es su breve semivida en comparación con otras
proteínas de membrana. El rápido ciclo metabólico de las conexinas
ha demostrado encontrarse entre 1,5 y 2 h. Se ha demostrado que la
degradación de Cx depende de la fosforilación, que conduce a la
desestabilización de algunos subtipos de conexinas. La rápida
velocidad del ciclo metabólico proporciona un mecanismo adicional
mediante el cual se puede regular la GJIC mediante sustancias que
afectan a la semivida del ARNm de Cx, traducción, transporte
intracelular y ensamblaje de Cx en las uniones por hendidura.
Otra forma adicional de regular la permeabilidad
de las uniones por hendidura es el cierre completo o parcial de los
canales de las uniones por hendidura bajo determinadas
circunstancias, mediante la torsión mecánica de las seis
subunidades o conexón. Se sabe que los promotores tumorales, que
reducen la GJIC, provocan la formación de barreras en las uniones
por hendidura. Los promotores tumorales son agentes que potencian o
aceleran la carcinogénesis cuando se administran de manera repetida
tras el inicio del tumor. Los mecanismos por los que los promotores
tumorales modulan la GJIC no están totalmente comprendidos, pero
existen pruebas que confirman que los promotores tumorales pueden
afectar a la GJIC alterando la fosforilación de Cx y/o inhibiendo
la expresión y ensamblaje de Cx. Resultados recientes han
demostrado que la transferencia de genes in vivo, mediada por
retrovirus, de conexina 43 en procesos malignos con baja capacidad
de GJIC reducen significativamente la capacidad de formación de
tumores (56). Como confirmación adicional de un papel esencial de
la GJIC normal en la prevención del cáncer, se ha demostrado que
ratones deficitarios en Cx32 exhiben una incidencia muy elevada de
tumores hepáticos espontáneos, así como una susceptibilidad
aumentada a desarrollar tumores hepáticos inducidos químicamente
(57). Adicionalmente, la acción promotora de tumores de
fenobarbital requiere Cx32 funcional para la progresión tumoral
(58). Esto indica que el desacoplamiento de la GJIC es importante
para las acciones oncogénicas de fenobarbital (58).
La carcinogénesis se caracteriza por la
progresiva alteración de los mecanismos de control del crecimiento
en los que intervienen factores de crecimiento, oncogenes y genes
supresores de tumores. Puesto que la alteración de la GJIC podría
dar como resultado la alteración del control de crecimiento, el
efecto de los factores de crecimiento y los oncogenes sobre la GJIC
podría ser crucial para la génesis de tumores. Se ha demostrado de
varios oncogenes median en la regulación negativa de la GJIC (59).
Se demuestra que pp60^{v-ser} media el cierre de
la unión por hendidura Cx43 por medio de un mecanismo de bola y
cadena, que implica la fosforilación del residuo serina
C-terminal por medio de la
MAP-quinasa (59). Es interesante destacar que, en
algunos casos, las células transfectadas con oncogenes podrían
comunicarse entre sí, pero que carecen de la comunicación
heteróloga con las células normales adyacentes.
La permeabilidad de las uniones por hendidura en
células tumorales, empleando el ensayo de transferencia de tinción,
fue menor que la GJIC en el tejido hepático circundante. De manera
interesante, muchos tumores están encapsulados en una estructura
semejante a una matriz extracelular, y se encuentran físicamente
separados del tejido normal.
La transformación neoplásica en los tejidos
humanos normales se produce como consecuencia de una acumulación de
alteraciones genéticas. Sin embargo, un tema general en la
carcinogénesis y en la génesis de tumores es la regulación negativa
de la GJIC. Las diversas conexinas se expresan de manera específica
para los tejidos. Se han detectado Cx43, Cx26, Cx32 en el tejido
mamario normal. Se analizó en un conjunto de cánceres mamarios
humanos el nivel de expresión de Cx43. No se observaron uniones por
hendidura Cx43 en carcinomas ductales in situ, carcinomas
ductales infiltrantes y carcinomas lobulares infiltrantes, y parecen
ser independientes del estado de los receptores de estrógeno,
progesterona y erbB2. Por el contrario, las líneas celulares de
cáncer mamario humano y los tejidos de carcinoma mamario de
roedores han mostrado una regulación negativa de Cx43, que demostró
encontrarse a nivel del ARNm, lo que sugiere la existencia de un
mecanismo transcripcional para el descenso de la proteína Cx43 en
el cáncer de mama (60). Otro ejemplo de la conexión entre cáncer y
GJIC es el carcinoma hepatocelular, en el que la eliminación de la
conexina 32 ha demostrado ser propensa para este tipo específico de
cáncer (57). Estudios con células ovales han indicado que éstas
pueden diferenciarse en hepatocitos y que los derivados neoplásicos
de células ovales pueden producir neoplasias tanto hepatocelulares
como biliares. La conexina específica expresada por las células
ovales en diferenciación determina si se comunica con hepatocitos o
células epiteliales biliares. Esta comunicación puede ser necesaria
para la diferenciación adicional y el crecimiento regulado de las
células ovales en diferenciación, y la alteración de GJIC puede
contribuir a la formación de neoplasias hepatocelulares y
colangio-celulares. De esta forma, la GJIC puede ser
el factor clave en la diferenciación de células ovales, y un
bloqueo de la GJIC puede promover su transformación neoplásica.
Adicionalmente, análisis in vitro de la invasión tumoral en
células endoteliales del pulmón de rata tratadas con malotilato han
demostrado que el malotilato estimuló el desarrollo de adhesión
entre células mediante uniones por hendidura, que dio como
resultado la inhibición de las células tumorales (61). Tomados
conjuntamente, estos hallazgos confirman en gran medida la
hipótesis de que la alteración de la GJIC es un acontecimiento
crítico en la carcinogénesis y que las sustancias de la presente
invención, que aumentan la GJIC, podrían resultar beneficiosas en
la terapia del cáncer. Por consiguiente, un propósito adicional de
la invención es ofrecer nuevos compuestos que aumentan la GJIC. Los
presentes inventores sugieren que los compuestos peptídicos de la
invención pueden resultar especialmente ventajosos como
medicamentos para el tratamiento del cáncer debido a su baja
concentración eficaz y, en consecuencia, baja toxicidad.
Ejemplo experimental
9
El compuesto
1,1-bis-(p-clorofenil)-2,2,2-tricloroetano,
también conocido como el insecticida DDT, es un inhibidor de la
comunicación entre uniones por hendidura y exhibe una capacidad
promotora de tumores. Inhibe la comunicación entre células por la
reducción del número y tamaño de las uniones por hendidura, así
como por niveles celulares reducidos de formas fosforiladas
(activas) de la proteína Cx43 de las uniones por hendidura. Se
considera que estas acciones son fundamentales para las propiedades
oncogénicas del compuesto (62-64). Por lo tanto,
compuestos con la capacidad de prevenir la disminución de GJIC
inducida por promotores tumorales pueden ser candidatos potenciales
para ser utilizados en la protección contra la promoción de tumores
y en el tratamiento del cáncer (65). Para examinar si las sustancias
de esta invención previenen la reducción de GKIC inducida por
promotores tumorales, los presentes inventores han estudiado los
efectos del Compuesto 2 sobre el desacoplamiento, inducido por DDT,
en osteoblastos humanos.
Osteoblastos humanos: se aislaron las células de
médula ósea humana, obtenida por punción de la cresta iliaca
posterior de voluntarios sanos (20-36 años de
edad): se recogieron 10-15 ml de material medular en
15 ml de PBS + Ca, Mg (Life Technologies, nº de Cat. 14040), con
100 U/ml de heparina (Sigma, nº de Cat. H-3149). Se
aisló la fracción mononuclear de la médula en un gradiente de
Lymphoprep (Nycomed Pharma, nº de Cat. 1001967), por centrifugación
a 2200 rpm durante 30 min. Después de la cosecha, se lavó la
fracción mononuclear con medio de cultivo y se centrifugó a 1800
rpm durante 10 min. Seguidamente, se contaron las células y se
sembraron en placas en medio de cultivo, a 8 x 10^{6}
células/placa de 100 mm. Medio hOB (todos los reactivos se
adquirieron en Life Technologies): MEM sin Rojo Fenol con Glutamax
(nº de Cat. 041-93013), suplementado con suero de
ternero fetal, inactivado por calor, al 10% (nº de Cat. 10106) y
0,1% de Penicilina/Estreptomicina (nº de Cat. 15140). El medio se
cambió al día siguiente y las células se cultivaron a 37ºC en
CO_{2} al 5%, con cambio de medio cada 7 días. Después de
3-4 semanas de cultivo, las células alcanzaron una
confluencia de 70%. Se suplementó entonces el medio con Dexametasona
100 nM (Sigma, nº de Cat. D-4902) durante 7 días. A
continuación, las células se sembraron en placa para experimentos
con obtención de imágenes de vídeo: se colocó un cubreobjetos de
vidrio de 25 mm nº 1 en una placa de 35 mm (o en cada pocillo de una
placa de 6 pocillos), las células se sembraron a 2,5 x 10^{5}
células/cubreobjetos y se cultivaron durante 2-3
días antes de su uso.
Las células se cultivaron sobre cubreobjetos y se
fijaron a una cámara de cultivo PDMI-2 (Medical
Systems Corp.), se mantuvieron a 37ºC con perfusión de CO_{2}, en
un microscopio Zeiss Axiovert. Las microinyecciones se llevaron a
cabo usando un micro-manipulador Eppendorf 5171 y
el sistema Eppendorf Transjector 5346. Se cargó una
micro-pipeta con solución de Amarillo Lucifer (LY)
10 mM (Sigma, nº de Cat. L-0259). Se inyectó
cuidadosamente una célula de la monocapa con LY durante 30
segundos, se extrajo la micro-pipeta de la célula y,
después de 30 segundos, se contó el número de células que mostraban
transferencia de tinción. La luz de excitación (430 nm) la
proporcionó un monochromator (T.I.L.L. Photonics GmbH). Las imágenes
se adquirieron con una cámara CCD intensificada (Dage MTI) y se
digitalizaron con una placa de procesamiento de imágenes Matrox MVP,
empleando el software para obtención de imágenes MetaMorph
(Universal Imaging).
Para evaluar la capacidad de los modificadores de
uniones por hendidura para evitar la promoción tumoral, los
presentes inventores quisieron analizar si los modificadores de
uniones por hendidura podían invertir la disminución de la
comunicación entre uniones por hendidura inducida por un agente
promotor de tumores bien conocido, el DDT. Por lo tanto, se
incubaron monocapas de osteoblastos humanos sobre cubreobjetos de
vidrio a 37ºC en una atmósfera húmeda que contuvo CO_{2} al 5%.
Se agregó DDT al medio en una concentración final de 13 \muM y se
dejó durante 60 minutos.
Para evaluar el efecto del Compuesto 2 sobre el
acoplamiento celular directo después del tratamiento con DDT, se
llevaron a cabo experimentos con microinyecciones según el método
anteriormente descrito. Se inyectó la tinción Amarillo Lucifer (LY)
en un único osteoblasto humano en una monocapa. Después de 30
segundos, se evaluó el número de células que contenía la tinción.
Bajo condiciones de control (sin tratamiento con DDT), la tinción
difundió a una mediana de 14,5 células (n = 12). Se realizó el
mismo experimento con células expuestas a DDT. Estas células
mostraron un acoplamiento celular reducido, con una mediana de 7 (n
= 13). Se agregó Compuesto 2 a la solución del baño en una
concentración final de 10^{-8} mol/l y, después de 10 minutos, se
efectuó otra microinyección. El Compuesto 2 produjo un incremento de
la transferencia intercelular en todas las preparaciones, con una
mediana de 8,3 células (Figura 15). Este incremento es altamente
significativo, con p < 0,01, usando el ensayo estadístico no
paramétrico de Wilcoxon. Por consiguiente, los abridores de las
uniones por hendidura son capaces de invertir el acoplamiento
intercelular disminuido, relacionado con la promoción tumoral, lo
que sugiere que las sustancias de esta invención pueden ser de
utilidad en la quimio-prevención y/o el tratamiento
del cáncer. Los compuestos de la presente invención son útiles para
la preparación de medicamentos para la
quimio-prevención y/o el tratamiento del cáncer. Los
compuestos de esta invención se pueden utilizar también en una
terapia de combinación con otros agentes anticancerosos. Por lo
tanto, es propósito de la presente invención ofrecer compuestos para
la preparación de medicamentos útiles en la prevención y/o el
tratamiento del cáncer. Este objetivo se alcanza con los presentes
compuestos
peptídicos.
peptídicos.
Una herida es una discontinuación de la anatomía
normal que afecta a la piel, y puede ser una herida quirúrgica o
traumática, o puede ser secundaria a diversas enfermedades tales
como diabetes, arteriosclerosis, malnutrición, etc. La
cicatrización normal de las heridas es un proceso sistémico que se
produce de forma gradual, y que incluye hemostasia e inflamación.
El remodelamiento sigue a estos procesos, que pueden durar años, y
es responsable de la formación de tejido cicatricial. La hemostasia
con fibrina proporciona una superficie bajo la cual tienen lugar
migraciones y movimientos de los bordes de la herida. La
epitelización, fibroplasia y la proliferación capilar en la herida
en proceso de cicatrización se inician de inmediato. Los brotes
capilares angiogénicos invaden el coágulo de fibrina de la herida y,
al cabo de pocos días, se organizan en una red microvascular a lo
largo del tejido de granulación, también formado por leucocitos y
células mononucleares fagocíticas. Se produce una interacción muy
dinámica entre los diversos componentes tisulares que intervienen
en el proceso de cicatrización de la herida. El proceso angiogénico
resulta esencial para una cicatrización eficaz. La comunicación
intercelular y las uniones por hendidura son esenciales para la
creación de un sincitio de fibroblastos y la proliferación de la
red capilar. La distribución normal de conexina 43 es necesaria
para este crecimiento de los diferentes componentes tisulares.
Diversos factores locales observados a menudo
durante condiciones patológicas, tales como edema, isquemia, bajo
tensión de oxígeno e infecciones, pueden retrasar el proceso de
cicatrización de las heridas. La cicatrización implica las
interacciones de muchos tipos de células y se considera que la
comunicación intercelular, mediada por las uniones por hendidura,
juega un papel importante en la coordinación del metabolismo
celular durante el crecimiento y desarrollo de tejidos y órganos
(66-68).
Los presentes inventores señalan que las
sustancias de esta invención, que aumentan la GJIC, se pueden
utilizar para el tratamiento de heridas y, en particular, para
acelerar la cicatrización de las mismas. Teniendo en consideración
que los experimentos con tejidos cardiaco y óseo sugieren que estas
sustancias exhiben una eficacia potenciada durante la tensión
metabólica (por ejemplo, hipoglucemia, hipoxia, isquemia), se puede
deducir que estas sustancias pueden ser especialmente útiles en el
tratamiento de úlceras por isquemia. Por lo tanto, es un propósito
de la presente invención ofrecer compuestos para la preparación de
medicamentos útiles en el tratamiento de heridas y, en particular,
de úlceras isquémicas. Este objetivo se alcanza con los presentes
compuestos peptídicos.
Mine et al. han demostrado que la mucosa
gástrica humana normal contiene conexina 32 y conexina 43 (69,70).
Por el contrario, la mucosa gástrica que rodea una lesión de úlcera
gástrica crónica contiene una cantidad menor de conexina 32 y
conexina 43. En los estudios de Mine et al. se investigó la
relación entre la aparición de conexinas y la cicatrización de
úlceras. Cuando se observó cicatrización de úlceras, las conexinas
32 y 43, que estaban disminuidas en la fase de úlcera activa,
retornaron prácticamente a los niveles observados en la mucosa
gástrica normal. Estos datos indican que la desaparición de ambas
conexinas, 32 y 43, se encuentra estrechamente relacionada con la
fase de las lesiones crónicas de úlceras gástricas. Adicionalmente,
empleando un modelo de rata de úlcera gástrica crónica inducida por
ácido acético, el mismo grupo de investigadores demostró que el
efecto clínico del fármaco anti-ulceroso cimetidina
estuvo estrechamente relacionado con la reaparición de conexina 32
(69).
Por lo tanto, las sustancias de esta invención,
que aumentan la GJIC, pueden estimular la cicatrización de úlceras
gástricas y duodenales. En consecuencia, es un propósito de la
presente invención ofrecer compuestos para la preparación de
medicamentos útiles en el tratamiento de úlceras gástricas y
duodenales. Este objetivo se alcanza con los presentes compuestos
peptídicos.
La coordinación de respuestas celulares en la
interface endotelial entre la sangre y los tejidos subyacentes está
mediada por múltiples mecanismos de señalización, incluida la
comunicación intercelular directa a través de uniones por
hendidura. Entre las funciones en las que se ha implicado la
comunicación intercelular por uniones por hendidura se encuentra el
comportamiento migratorio de las células endoteliales tras
lesiones, en la angiogénesis, crecimiento endotelial y senescencia,
y la coordinación de las respuestas vasomotoras (71).
La regulación del flujo de sangre requiere, en un
intervalo altamente dinámico, respuestas coordinadas de resistencia
y arterias de alimentación. Esta coordinación entre vasos se puede
lograr por los efectos vasculares de la tensión de cizallamiento
ejercida por el torrente circulatorio o por la conducción de
señales vasomotoras a lo largo de células de la pared vascular. De
hecho, la aplicación local de ciertos compuestos vasoactivos tales
como acetilcolina (ACh) o norepinefrina (NE) induce no sólo una
dilatación o constricción local, sino también respuestas vasomotoras
varios milímetros corriente arriba o corriente abajo (71). También
se pueden conducir respuestas vasomotoras desde los capilares a las
arteriolas, y pueden contribuir al emparejamiento de demandas de
tejido y aporte de sangre. Esto se ha demostrado de la manera
siguiente: al estimular la contracción de fibras musculares
aisladas, se observó la dilatación de arteriolas corriente arriba
de los capilares que alimentan estas fibras (72).
La elevada velocidad de conducción es consistente
con la transmisión electrotónica de una señal a lo largo de la pared
vascular. De hecho, se ha demostrado que hiperpolarizaciones y
despolarizaciones inducidas localmente se conducen varios
milímetros corriente arriba en las células endoteliales y
musculares lisas vasculares. La conducción de la señal eléctrica
exige el acoplamiento de células vasculares por medio de uniones
por hendidura que proporcionan conductos de baja resistencia
eléctrica entre las células. En el tejido vascular se expresan al
menos tres proteínas conexina (Cx) diferentes (Cx37, Cx40 y Cx43)
que forman uniones por hendidura. Cx40 parece ser la isoforma de
conexina predominante en las células endoteliales de la aorta, en
tanto que en el músculo liso, la expresión de Cx43 es abundante.
Estudios en ratones deficitarios en Cx40 (Cx40
-/-) han demostrado que la difusión de la vasodilatación inducida
por la aplicación local de acetilcolina o bradiquinina está
fuertemente atenuada en los animales Cx40 -/-, en comparación con
los animales de tipo salvaje normales (Cx40 +/+) (73).
Adicionalmente, la tensión arterial se encuentra significativamente
aumentada en los animales Cx40 -/- comparados con los ratones
normales de tipo salvaje (Cx40 +/+). Estos resultados confirman un
papel importante de Cx40 en la comunicación intercelular vascular,
e indican que la comunicación alterada entre las uniones por
hendidura en la pared vascular se asocia con una transmisión
disminuida de las respuestas de vasodilatación dependientes den
endotelio que, a su vez, aumenta la resistencia vascular y provoca
hipertensión. Estudios in vivo recientes señalan que las
oscilaciones normales de presión en el riñón son extremadamente
importantes para la regulación de la tensión arterial (74). De esta
forma, las respuestas vasomotoras alteradas, debidas a un escaso
acoplamiento entre las células, pueden contribuir al desarrollo de
hipertensión en animales deficitarios en Cx40.
La regulación negativa de ARNm de Cx43 y de los
niveles de proteínas en células endoteliales senescentes sugiere
que la comunicación intercelular alterada entre uniones por
hendidura podría desempeñar una función en el proceso de
envejecimiento vascular (75).
Basándose en la información disponible sobre el
papel de las uniones por hendidura en las respuestas vasculares, es
probable que un compuesto farmacológico capaz de incrementar el
acoplamiento de las uniones por hendidura en la pared vascular
pudiera facilitar la conducción de respuestas vasculares y mejorar
el suministro de sangre durante situaciones en las que se produce
una demanda metabólica aumentada (por ejemplo, ejercicio físico,
taquicardia) y durante la isquemia. Además, una sustancia de este
tipo podría prevenir y/o tratar la hipertensión. Por consiguiente,
es un propósito adicional de la invención ofrecer compuestos que
aumenten el acoplamiento de las uniones por hendidura y/o la GJIC
en la pared vascular, siendo útiles, por tanto, para la prevención
o el tratamiento de la hipertensión. Este objetivo se alcanza con
los presentes compuestos peptídicos.
En el SNC se expresan ocho conexinas diferentes
(Cx26, 30, 32, 37, 40, 43, 45, 46). Adicionalmente, Cx36 parece
estar preferentemente expresada en las neuronas. Las diferentes
conexinas permiten la comunicación entre diversas poblaciones
celulares o segregar células en compartimientos aislados, de acuerdo
con su patrón de expresión de conexinas. Existen interfaces
compartimentales, en las que el acoplamiento heterotípico podría
tener importancia funcional, entre los oligodendrocitos (Cx32, Cx45)
y astrocitos (Cx43, Cx45, Cx40, Cx30) o neuronas (Cx26, Cx32, Cx43)
(76).
Resulta factible que un conjunto específico de
conexinas proporcione una ventaja funcional en determinados
compartimientos del cerebro; es decir, una conductancia unitaria
mayor o menor podría facilitar o limitar funcionalmente la
sincronización de las entradas neurales o la rapidez de
conducción.
En neuroblastos inmaduros y neuronas
post-natales se ha documentado un extenso
acoplamiento intercelular mediado por uniones por hendidura (76,77).
El incremento post-natal de uniones por hendidura
neuronales y su organización cortical sugieren un papel esencial de
estas uniones en acontecimientos morfogenéticos subyacentes a la
fase crítica de corticogénesis. La implicación de las uniones por
hendidura en el tráfico neuronal se ve potenciada por el hecho de
que los neurotransmisores son capaces de modificar el acoplamiento
de las uniones por hendidura.
Por lo tanto, los presentes inventores sugieren
que las sustancias de esta invención, conocidas por incrementar la
GJIC, podrían acelerar la reparación tras lesiones nerviosas o
durante el injerto de células inmaduras (células progenitoras) en
el tejido cerebral. Entre las tecnologías sometidas actualmente a
evaluación experimental para la reparación celular del sistema
nervioso central, se encuentran los injertos de células
progenitoras, tejido fetal y vectores virales utilizados para el
tratamiento de enfermedades tales como la de Parkinson, de
Huntington y otras enfermedades cerebrales neurodegenerativas.
La lesión del axón activa rápidamente células
microgliales y astrogliales próximas a las neuronas axotomizadas.
Tras una lesión de un axón motor, los astrocitos regulan
positivamente en cuestión de hora(s) la proteína de la unión
por hendidura conexina 43 y, en el plazo de un día, la proteína
ácida fibrilar glial (GFAP). Simultáneamente, proliferan células
microgliales y migran hacia el pericarion de la neurona
axotomizada. Un esquema hipotético de la activación de células
gliales tras una lesión de axón supone que las neuronas dañadas
interactúan inicialmente con los astrocitos adyacentes a través de
la GJIC. Seguidamente, se activan las células microgliales vecinas
que se encuentran en reposo. Estas reacciones gliales se amplifican
por mecanismos paracrinos y autocrinos, en los que las citoquinas
parecen jugar un papel importante como mediadores. Las propiedades
funcionales específicas de las células gliales activadas
determinarán su influencia sobre la supervivencia neuronal, la
regeneración del axón y la plasticidad sináptica. Por lo tanto, el
control de la inducción y progresión de estas respuestas son
posiblemente críticos para el resultado de, por ejemplo,
traumatismos neurológicos, isquemia cerebral y enfermedades
neurodegenerativas crónicas (78).
Se cree que las uniones por hendidura
proporcionan en enlace molecular para la señalización coordinada a
largo rango entre miembros individuales del compartimiento glial.
Del mismo modo, los astrocitos están especialmente adaptados para
el apoyo metabólico de las neuronas, puesto que están polarizados
funcionalmente, tocando un extremo el lecho vascular y el otro polo
se aproxima al parénquima neuronal (76). De esta forma, el mal
funcionamiento de estos mecanismos de apoyo puede ser instrumental
para el mal funcionamiento de las vías neuronales integradas y, por
lo tanto, el desarrollo de enfermedades en el sistema nervioso
central. Por consiguiente, los presentes inventores sugieren que
las sustancias de esta invención, que han demostrado incrementar la
GJIC, pueden prevenir la lesión isquémica en el cerebro al aumentar
el apoyo metabólico entre las células gliales y las neuronas.
Adicionalmente, las sustancias de la invención pueden ser de gran
importancia en pacientes con psicosis orgánicas que pueden
presentarse con signos tales como depresión, ansiedad, déficits de
aprendizaje y memoria, fobias y alucinaciones. Por lo tanto, es un
propósito de la presente invención ofrecer compuestos para la
preparación de medicamentos útiles en la prevención de la lesión
isquémica en el cerebro, y para el tratamiento de psicosis
orgánicas, incluidas depresión, ansiedad, déficits de aprendizaje y
memoria, fobias y alucinaciones. Este objetivo se alcanza con los
compuestos peptídicos de la invención, cuando se les selecciona o
formula de manera que estén disponibles para el sistema nervioso
central.
La lente ocular de los vertebrados es un quiste
sólido de células que crece durante toda la vida por la adición de
nuevas células sobre la superficie. Las células más antiguas,
enterradas por las nuevas generaciones, se diferencian en largas
fibras prismáticas, pierden sus orgánulos celulares y rellenan sus
citoplasmas con elevadas concentraciones de proteínas solubles, las
cristalinas. Las fibras lenticulares de larga duración están
interconectadas por uniones por hendidura, tanto entre sí como con
la capa anterior de células epiteliales cúbicas sencillas, en la
superficie de la lente. Esta red de uniones por hendidura reúne las
células de la lente en un sincitio con respecto a pequeñas
moléculas, permitiendo la cooperación metabólica: difusión
intercelular de iones, metabolitos y agua. En contacto con
nutrientes en la superficie de la lente, las células epiteliales
conservan sus orgánulos celulares y son capaces de proporcionar la
energía metabólica necesaria para mantener concentraciones correctas
de iones y metabolitos en el interior del citoplasma de las fibras
lenticulares, de forma que las cristalinas se conservan en solución
y no se agregan (catarata). En la lente están presentes tres clases
de conexinas: Cx43, Cx46 y Cx50, y se han asociado mutaciones de
cada una de estas proteínas de las uniones por hendidura con la
catarata (79-81). Estos hallazgos demuestran que la
GJIC resulta esencial para el metabolismo y función normales de la
lente. Por lo tanto, los presentes inventores sugieren que las
sustancias de esta invención, conocidas por aumentar la GJIC, se
pueden usar en la prevención y/o el tratamiento de la catarata. Por
consiguiente, es un propósito de la presente invención proporcionar
compuestos para la preparación de medicamentos útiles en la
prevención y/o el tratamiento de la catarata. Este objetivo se
alcanza con los presentes compuestos peptídicos.
Se han encontrado muchas diferentes mutaciones de
Cx32 en la neuropatía periférica hereditaria - síndrome de la
sordera asociada a X de
Charcot-Marie-Tooth, habiéndose
detectado múltiples mutaciones de Cx25 y Cx31 en la sordera (80).
De esta forma, los presentes inventores sugieren que las sustancias
de esta invención, de las que se sabe que incrementan la GJIC, se
pueden utilizar en la prevención y/o el tratamiento de determinados
tipos de sordera asociadas con una GJIC alterada en el oído. Por lo
tanto, es un propósito de la presente invención proporcionar
compuestos para la preparación de medicamentos útiles en la
prevención y/o el tratamiento de la sordera asociada con una GJIC
alterada. Este objetivo se alcanza con los presentes compuestos
peptídicos.
En la pared del intestino delgado se expresan
tanto Cx43 como Cx45 (82). Se cree que las células que expresan Cx45
a lo largo del plexo muscular profundo del intestino delgado
actúan, probablemente, como constituyentes de un sistema
marcapasos, que puede incluir un sistema conductivo, formando una
red celular que opera a través de tipos específicos de uniones por
hendidura. En el intestino y en el colon, las células
intersticiales de Cajal (ICC) son células marcapasos localizadas
entre los músculos lisos intestinales; generan ondas lentas
espontáneas de las capas de músculos lisos y median la
neurotransmisión. La red celular tridimensional de ICC está
conectada por uniones por hendidura Cx43 tanto entre ICC como entre
ICC y células musculares lisas (83). En pacientes con enfermedad de
Hirschsprung, la ausencia de expresión de Cx43 en el intestino
aganglionar sugiere que la alteración de la comunicación
intercelular entre ICC y las células musculares lisas puede ser
parcialmente responsable de la disfunción de la motilidad en esta
enfermedad (83). Los pacientes con enfermedad de Chagas (causada
por la infección con el protozoo Tripanosoma cruzii) exhiben
una marcada reducción de la expresión de Cx, que se considera
responsable tanto de la cardiomiopatía como del megacolon gravemente
dilatado que se registra en estos pacientes (7). Por lo tanto, la
comunicación normal por uniones por hendidura entre ICC y entre ICC
y las células musculares lisas se considera esencial para la
motilidad normal del intestino delgado y del colon. Por
consiguiente, es un propósito adicional de la invención ofrecer una
sustancia capaz de aumentar la conductancia entre uniones por
hendidura en el intestino y que, por lo tanto, puede ser útil en el
tratamiento de los trastornos de motilidad gastrointestinal.
Las uniones por hendidura entre células de
granulosa y entre el ovocito y las células de granulosa
circundantes juegan un papel importante durante el desarrollo del
folículo ovárico. En el nacimiento, el ovario contiene folículos
primordiales consistentes en ovocitos detenidos en meiosis, rodeados
por una capa única de células de sustentación (granulosa). De forma
periódica, subgrupos de folículos primordiales sufren un desarrollo
adicional, durante el cual el ovocito aumenta de tamaño y las
células de la granulosa proliferan, se estratifican y desarrollan un
antro relleno de líquido. Tras la ovulación, los ovocitos reanudan
la meiosis y las células de granulosa retenidas en el folículo se
diferencian en células esteroidegénicas, formando el cuerpo
lúteo.
Las uniones por hendidura conectan directamente
las células adyacentes, permitiendo los movimientos de difusión de
iones, metabolitos y otras moléculas potencialmente señalizadoras de
importancia en la regulación del ciclo ovárico y de la fertilidad
femenina. Como confirmación de la función esencial de las uniones
por hendidura para la función ovárica normal, se ha demostrado que
ratones deficitarios de Cx37 carecen de folículos (de Graaf)
maduros, no ovulan y desarrollan numerosos cuerpos lúteos
inadecuados. Además, el desarrollo de los ovocitos se detiene antes
de ser competitivos en la meiosis. De esta forma, la señalización
intercelular a través de los correspondientes canales regula de
manera crítica el conjunto altamente coordinado de interacciones
celulares necesario para una ovogénesis eficaz y la ovulación
(84).
La hormona folículo-estimulante
(FSH) es el principal regulador del crecimiento y desarrollo del
folículo ovárico. Junto con sus diversas acciones sobre la
maduración del folículo, la FSH mejora el acoplamiento entre células
entre las células de la granulosa y potencia la expresión del gen
Cx43 y, posiblemente, la formación de nuevas uniones por hendidura
(85). Por el contrario, la hormona luteinizante (LH) interrumpe la
comunicación entre células en el interior del folículo ovárico,
dando lugar a un descenso de las concentraciones
intra-ovocitarias de AMPc, seguido de una
reanudación de la meiosis (86).
Estos datos demuestran que la presencia de una
comunicación normal mediante uniones por hendidura a través de Cx37
y Cx43 resulta esencial para el crecimiento folicular normal y para
la ovulación. De este modo, es posible que determinadas formas de
infertilidad femenina se deban a un escaso acoplamiento entre
células en los ovarios. Por lo tanto, se podría utilizar una
sustancia que aumente el acoplamiento entre células para el
tratamiento de la infertilidad femenina en mujeres con una expresión
y/o regulación alterada de la función de las uniones por hendidura
del ovario. Los compuestos de la presente invención, al tener la
capacidad de incrementar la GJIC, son útiles para el tratamiento de
la infertilidad femenina debida a un escaso acoplamiento entre
células en los ovarios.
Las potentes contracciones sincrónicas del útero
durante el parto dependen del acoplamiento eléctrico de las células
musculares lisas del miometrio a través de uniones por hendidura.
En el ser humano y otros mamíferos, las uniones por hendidura son
escasa en el miometrio del útero no gestante, pero se tornan
abundantes a término y/o con el inicio del parto. La proteína de
uniones por hendidura predominantemente expresada por las células
musculares lisas del miometrio humano es Cx43, pero también se han
identificado Cx26, Cx40 y Cx45 en el miometrio humano (87,88).
Debido a la gran importancia de las contracciones
musculares coordinadas durante el parto, es un propósito adicional
de la invención proporcionar una sustancia capaz de incrementar el
acoplamiento entre células en el miometrio, de la que se espera que
tenga una influencia positiva sobre la sincronización de las
contracciones musculares. Dicha sustancia se puede utilizar junto
con oxitocina para la inducción y facilitación del parto. Este
objetivo se logra con los presentes compuestos peptídicos y la
invención se refiere, adicionalmente, al uso de los compuestos
peptídicos de la invención para la preparación de un medicamento
para la inducción y facilitación del parto.
Cx43 es la conexina más abundante en los
testículos y resulta interesante destacar que las cepas de ratas con
una expresión de Cx43 reducida exhiben una espermatogénesis alterada
(ratones ebo/ebo, jun-d-/-, Cx43 +/-).
Adicionalmente, trabajos anteriores sugieren que los pacientes con
hipospermia o aspermia presentan uniones por hendidura reducidas en
los testículos (90). Estos datos confirman la sugerencia de que un
acoplamiento reducido entre células en los testículos puede dar
lugar a infertilidad masculina y, por consiguiente, es un propósito
adicional de la invención ofrecer una sustancia capaz de
incrementar el acoplamiento entre células y, de esta forma, puede
ser un útil agente terapéutico en el tratamiento de la infertilidad
masculina asociada a un acoplamiento alterado entre células.
Los canales de uniones por hendidura, formados
por Cx43, acoplan funcionalmente las células sensibles a la glucosa
de los islotes pancreáticos y de una línea celular de insulinoma de
rata (91). Por el contrario, células de varias líneas celulares con
secreción anormal de insulina no expresan Cx43, presentan escasas
uniones por hendidura y están escasamente acopladas. Tras la
corrección de estos defectos por transfección estable de ADNc de
Cx43, las células que expresaban niveles modestos de Cx43 y
acoplamiento, como se observa en las células beta nativas, muestran
una expresión del gen de insulina y un contenido en insulina
marcadamente elevado, en comparación con los observados tanto en
células de tipo salvaje (desacopladas) y en células transfectadas
que sobre-expresan Cx43. Estos hallazgos indican que
se requiere un acoplamiento adecuado de Cx43 para una adecuada
producción y almacenamiento de insulina (91). Adicionalmente, la
estimulación in vivo de la liberación de insulina por medio
de glibenclamida se asocia con un incremento de expresión de Cx43 y
un aumento del acoplamiento entre células entre células \beta
adyacentes dentro del islote pancreático (92).
Estas observaciones indican una importante
función del acoplamiento por uniones por hendidura entre las células
\beta de los islotes pancreáticos para la producción y liberación
de insulina. Por lo tanto, es todavía un propósito adicional de la
presente invención proporcionar una sustancia capaz de aumentar la
conductancia eléctrica de las uniones por hendidura y, de este
modo, mejorar la tolerancia a la glucosa en sujetos con diabetes
mellitus no insulino-dependiente. Dicho objetivo se
logra con los compuestos peptídicos de la invención.
Se ha demostrado anteriormente que dos péptidos
estrechamente relacionados con las sustancias de la presente
invención tienen actividad antitrombótica. De esta forma, Dikshit
et al. (15) hallaron que los péptidos
Gly-Pro-Prp-Gly-Ala-Gly
y
Gly-Pro-Gly-Gly-Ala-Gly
previenen el desarrollo del embolismo pulmonar en el ratón cuando
se administra una dosis i.v. de colágeno y adrenalina. El documento
US 4.775.743 describe HP5, un péptido derivado de AAP que tiene la
secuencia
N-3-(4-hidroxifenil)-propionil-Pro-4Hyp-Gly-Ala-Gly-OH
y que es activo contra la aglutinación plaquetaria. Los compuestos
de la presente invención exhiben una llamativa similitud y es
probable que muestren efectos similares sobre la trombosis. De este
modo, las sustancias de esta invención se pueden usar en la
prevención de la trombosis.
La invención se refiere también a una composición
que comprende un péptido antiarrítmico farmacológicamente activo,
como se ha definido en este documento, en combinación con un
vehículo y/o diluyente farmacéuticamente aceptable. Estas
composiciones pueden encontrarse en una forma adaptada para la
administración oral, subcutánea, parenteral (intravenosa,
intraperitoneal), intramuscular, rectal, epidural, intratraqueal,
intranasal, dérmica, vaginal, bucal, ocular, cerebral o pulmonar
directa, preferentemente, en una forma adaptada a la administración
subcutánea, intravenosa u oral, y estas composiciones se pueden
preparar de manera bien conocida para el experto en la técnica, por
ejemplo, como se describe en general en "Remington's
Pharmaceutical Sciences", 17ª edición, Alfonso R. Gennaro
(compilador), Mark Publishing Company, Easton, PARTÍCULA, EE.UU.,
1985 y ediciones más recientes, y en las monografías en la serie
"Drugs and the Pharmaceutical Sciences", Marcel Dekker.
Las composiciones pueden estar presentes en formas convencionales,
por ejemplo, soluciones y suspensiones para inyección, incluidos
concentrados para infusiones i.v., cápsulas y comprimidos,
preferentemente, en forma de formulaciones entéricas, por ejemplo
como se describe en el documento US 5.350.741, para administración
oral.
El vehículo o diluyente farmacéutico empleado
puede ser un vehículo sólido o líquido convencional. Ejemplos de
vehículos sólidos son lactosa, arcilla blanca, sacarosa,
ciclodextrina, talco, gelatina, agar, pectina, acacia, estearato de
magnesio, ácido esteárico o éteres de alquilo inferior de celulosa.
Ejemplos de vehículos líquidos son jarabe, aceite de cacahuete,
aceite de oliva, fosfolípidos, ácidos grasos, aminas de ácidos
grasos, polioxietileno y agua.
De modo similar, el vehículo o diluyente puede
contener cualquier material de liberación sostenida conocido en la
técnica tales como monoestearato de glicerilo o diestearato de
glicerilo, solo o mezclado con una cera.
Si se utiliza un vehículo sólido para la
administración oral, la preparación se puede comprimir, incluir en
forma de polvo o granulado en una cápsula de gelatina dura, o puede
estar en forma de trocisco o pastilla. La cantidad de vehículo
sólido variará extensamente, pero normalmente será de
aproximadamente 25 mg a aproximadamente 1 g.
Un comprimido típico, que se puede preparar por
técnicas convencionales de compresión, puede contener: Núcleo:
compuesto activo (como compuesto libre o como su sal), 100 mg;
dióxido de silicio coloidal (Aerosil), 1,5 mg; celulosa,
microcristalina (Avicel), 70 mg; goma de celulosa modificada
(Ac-Di-Sol), 7,5 mg; estearato de
magnesio.
Recubrimiento: HPMC, aproximadamente 9 mg;
*Mywacett 9-40T, aproximadamente 0,9 mg;
*monoglicérido acilado usado como plastificante para recubrimiento
de película.
Si se utiliza un vehículo líquido, la preparación
puede estar en forma de jarabe, emulsión, cápsula de gelatina
blanda o líquido inyectable estéril, tal como una suspensión o
solución líquida acuosa o no acuosa.
Asimismo, la composición puede estar en una forma
adecuada para la inyección o infusión local o sistémica y, como tal,
se puede formular con agua estéril o una solución salina o de
glucosa isotónica. Las composiciones se pueden esterilizar por
técnicas convencionales de esterilización, bien conocidas en la
técnica. Las soluciones acuosas resultantes se pueden envasar para
su uso, o se filtran bajo condiciones de asepsia y se liofilizan,
combinándose la preparación liofilizada con la solución acuosa
estéril antes de la administración. La composición puede contener
sustancias auxiliares farmacéuticamente aceptables, según sean
necesarias para aproximarse a las condiciones fisiológicas, tales
como agentes tamponantes, agentes ajustadores de tonicidad y
similares, por ejemplo, acetato sódico, lactato sódico, cloruro
sódico, cloruro de potasio, cloruro de calcio, etc.
Se pueden preparar formulaciones
multi-dosis en forma de solución de un compuesto de
la invención en solución salina estéril e isotónica, envasada en
viales provistos de tapón y, si es necesario, se agrega un
conservante (por ejemplo, benzoatos). Se pueden preparar
formulaciones de dosis fija en forma de solución del compuesto en
solución salina estéril e isotónica, envasada en ampollas de vidrio
y, si es necesario, envasadas con un gas inerte. Cada dosis del
compuesto se envasa en seco en ampollas o viales provistos de
tapón, envasadas, si es preciso, con gas inerte. La formulación
multi-dosis exige el máximo grado de estabilidad del
compuesto. Cuando la estabilidad del compuesto es baja, se pueden
usar formulaciones de dosis fija. El péptido se puede formular
también como concentrado para infusión i.v.
Para la administración nasal, la preparación
puede contener un compuesto de la presente invención disuelto o
suspendido en un vehículo líquido, en particular, un vehículo
acuoso, para la aplicación por aerosol. El vehículo puede contener
aditivos tales como agentes solubilizantes, por ejemplo,
propilenglicol, tensioactivos tales como sales de ácidos biliares,
o éteres alcohólicos superiores de polioxietileno, potenciadores de
la absorción tales como lecitina (fosfatidil-colina)
o ciclodextrina, o conservantes tales como parabenos.
Adicionalmente, el pequeño tamaño de los
compuestos peptídicos de la invención puede ser una ventaja para la
administración oral o nasal, debido a que la absorción
relativamente rápida a través de las membranas mucosas, en
comparación con péptidos de mayor tamaño, minimiza la degradación
enzimática, especialmente en el duodeno y el íleon.
Se disuelven 400 mg de ácido
L-tartárico y 40 mg de aceite de ricino
hidrogenado-polietilenglicol en 5 ml de metanol. La
solución se deposita en un mortero previamente calentado a 30ºC. A
la solución se agregan 1,5 mg de Compuesto 2. Inmediatamente
después de la adición del Compuesto 2, la mezcla se agita con la
mano de mortero bajo una corriente de aire caliente de 40ºC y, a
continuación, se coloca en un disecador al vacío durante la noche
para separar el disolvente. La masa sólida resultante se pulveriza
con la mano del mortero y se amasa con 30 mg de bicarbonato sódico y
una pequeña cantidad de etanol al 70%. Seguidamente, la mezcla se
divide y se conforma en comprimidos y se seca. Los comprimidos secos
se recubren con ftalato de
hidroxipropil-metilcelulosa para obtener un
comprimido entérico.
La invención también se refiere a un péptido o
derivado peptídico o análogo funcional del mismo, antiarrítmico y
farmacológicamente activo, como se ha descrito en este documento,
para uso en terapia, y a su uso como se define en este documento
para la fabricación de una composición farmacéutica para usar en
terapia, por ejemplo, en el tratamiento de arritmias y
complicaciones trombóticas durante trastornos cardiovasculares tales
como cardiopatía isquémica (por ejemplo, angina de pecho estable,
angina de pecho inestable, infarto agudo de miocardio),
insuficiencia cardiaca congestiva (por ejemplo, insuficiencia
cardiaca sistólica, diastólica, de alto gasto, de bajo gasto, del
lado derecho o izquierdo), cardiopatías congénitas, cor pulmonale,
cardiomiopatías, miocarditis, cardiopatía hipertensiva, y durante la
revascularización coronaria.
En realizaciones específicas, se puede usar un
péptido antiarrítmico según la presente invención para tratar y/o
prevenir bradiarritmias (por ejemplo, debidas a enfermedades del
nódulo sinusal, nódulo AV, haz de His, rama derecha o izquierda), y
taquiarritmias asociadas con reentrada (por ejemplo, complejos
auriculares prematuros, complejos de la unión AV, complejos
ventriculares prematuros, fibrilación auricular, flúter auricular,
taquicardia supraventricular paroxística, taquicardia de reentrada
del nódulo sinusal, taquicardia de reentrada del nódulo AV, y
taquicardia ventricular no sostenida), ya sea solo o en combinación
con otros compuestos antiarrítmicos tales como agentes de clase I
(por ejemplo, lidocaína), agentes de clase II (por ejemplo,
metoprolol o propranolol), agentes de clase III (por ejemplo,
amiodarona o sotalol), o agentes de clase IV (por ejemplo,
verapamilo).
En realizaciones específicas, se puede utilizar
un péptido antiarrítmico según la presente invención para prevenir
acontecimientos trombóticos en pacientes con enfermedades de la
pared vascular (por ejemplo, aterosclerosis), producción
incrementada de plaquetas (policitemia universal), y/o reducción del
flujo (cardiopatía, vasculopatía), ya sea solo o en combinación con
inhibidores de GP IIb/IIIa (por ejemplo, c7E3; abciximab),
inhibidores de la ciclooxigenasa (por ejemplo, aspirina),
antagonistas de tromboxano A2, derivados de cumarina (por ejemplo,
warfarina), o con el péptido sintético intergrilina.
En realizaciones específicas, se puede utilizar
un péptido antiarrítmico según la presente invención, debido a su
efecto sobre los canales de las uniones por hendidura
intercelulares, para tratar y/o prevenir pérdida de tejido óseo y
acelerar la consolidación de fracturas óseas (93); tratar y/o
prevenir enfermedades en cartílagos y articulaciones con mala
vascularización (94); tratar y/o prevenir cataratas (81); tratar y/o
prevenir la vascularización de la córnea en estados patológicos con
mala nutrición de la córnea e incrementar la curación de lesiones
corneales (95); tratar y/o prevenir el crecimiento y difusión de
células cancerosas tales como células cancerosas derivadas de líneas
celulares epiteliales (96); tratar y/o prevenir hipertensión por
incremento de la vasomoción (74); prevenir el rechazo de injertos
tales como células y órganos en un organismo.
A continuación, se describe un procedimiento
general preferido. Sin embargo, en el documento WO98/11125 se
encuentran descripciones más detalladas de la síntesis de péptidos
en fase sólida.
Los péptidos se sintetizaron de manera
discontinua en un recipiente de polietileno equipado con un filtro
de polipropileno para filtración, usando
9-fluorenilmetil-oxicarbonilo (Fmoc)
como grupo
N-\alpha-amino-protector
y grupos comunes adecuados de protección para las funcionalidades
de cadena lateral.
El disolvente DMF
(N,N-dimetilformamida, Riedel
de-Häen, Alemania) se purificó haciéndolo pasar a
través de una columna empaquetada con una potente resina de
intercambio iónico (Lewatit S 100 MB/H ácido fuerte, Bayer AG,
Leverkusen, Alemania), y se analizaron las aminas libres antes de
usarlo por adición de
3,4-dihidro-3-hidroxi-4-oxo-1,2,3-benzotriazina
(Dhbt-OH), dando lugar a un color amarillo (anión
Dhbt-O^{-}) en caso de haber aminas libres
presentes. El disolvente DCM (diclorometano, categoría de análisis,
Riedel de-Häen, Alemania) se utilizó directamente,
sin purificación. Se utilizó acetonitrilo (categoría de HPLC,
Lab-Scan, Dublín, Irlanda) directamente sin
purificación.
Se adquirieron aminoácidos protegidos con Fmoc en
Advanced ChemTech (ACT) en formas de protección de la cadena lateral
adecuadas. Aminoácidos protegidos de otra forma
(Fmoc-Glu(OH)-O-alilo;
Fmoc-Asp(OH)-O-alilo
se adquirieron en NovaBiochem (Suiza),
Fmoc-4-Hyp(OtBu)-OH
en Bachem (Suiza).
El reactivo de acoplamiento
diisopropil-carbodiimida (DIC) se adquirió en
Riedel de-Häen, Alemania, PyBop en Advanced
ChemTech.
Se adquirió ácido
(4-hidroximetil-fenoxi)-acético
(HMPA) en Novabiochem, Suiza y se acopló con la resina en forma de
un éster de 1-hidroxibenzotriazol (HOBt) preformado,
generado mediante DIC.
Los péptidos sintetizados según la estrategia de
Fmoc sobre resinas TentaGel S 0,22-0,31 mmol/g
(TentaGel-S-NH_{2}; TentaGel S
RAM, TentaGel
S-RAM-Lys(Boc)-Fmoc;
polímero Rapp, Alemania);
Se adquirió diisopropil-etilamina
(DIEA) en Aldrich, Alemania, y etilendiamina en Fluka, piperidina y
piridina en Riedel de-Häen, Frankfurt, Alemania. Se
adquirió
4-(N,N-dimetilamino)-piridina (DMAP)
en Fluka, Suiza, y se usó como catalizador en las reacciones de
acoplamiento en las que intervinieron anhídridos simétricos.
Etanoditiol se adquirió en Riedel de-Häen,
Frankfurt, Alemania. En Fluka, Suiza, se adquirieron
3,4-dihidro-3-hidroxi-4-oxo-1,2,3-benzotriazina
(Dhbt-OH), 1-hidroxibenzotriazol
(HOBt)(HOAt).
El primer aminoácido se acopló en forma de
anhídrido simétrico en DMF generado a partir del aminoácido
N-\alpha-protegido adecuado y DIC.
Los siguientes aminoácidos se acoplaron como ésteres de HOBt o HOAt
generados in situ, preparados a partir de aminoácidos
N-\alpha-protegidos adecuados y
HOBt o HOAt por medio de DIC en DMF. Las acilaciones se analizaron
por medio del ensayo de ninhidrina realizado a 80ºC para prevenir
la desprotección de Fmoc durante el ensayo (97).
La desprotección del grupo Fmoc se llevó a cabo
por tratamiento con piperidina al 20% en DMF (1 x 5 y 1 x 10 min),
seguido de un lavado con DMF (5 x 15 ml, 5 min cada uno) hasta que
no se detectó color amarillo alguno tras la adición de
Dhbt-OH al DMF drenado.
Se agregó a la resina peptídica una solución de 3
eq. de Pd(PPh_{3})_{4} disuelto en
15-20 ml de CHCl_{3}, AcOH, NMM (37:2:1). El
tratamiento se continuó durante tres horas a temperatura ambiente,
acompañado por el burbujeo de una corriente de N_{2} a través de
la mezcla.
Se disolvieron 3 eq. de aminoácidos
N-\alpha-amino-protegidos
en DMF junto con 3 eq. de HOBt y 3 eq. de DIC, agregándolo luego a
la resina.
Se disolvieron 6 eq. de aminoácido
N-\alpha-amino-protegido
en DCM y se enfrió a 0ºC. Se agregó DIC (3 eq.) y la reacción se
prosiguió durante 10 min. El disolvente se separó al vacío y el
remanente se disolvió en DMF. La solución se agregó de inmediato a
la resina, seguida de 0,1 eq. de DMAP.
Se disolvieron 1,5 eq. de PyBop en DMF junto con
1,5 eq. de HOBt y se agregaron 3 eq. de NMM a la resina peptídica.
La reacción se continuó durante la noche.
Los péptidos se escindieron de las resinas
mediante tratamiento con ácido trifluoroacético al 95% (TFA, Riedel
de-Häen, Frankfurt, Alemania)-agua
v/v, o con TFA al 95% y etanoditiol al 5% v/v, a temperatura
ambiente durante 2 h. Las resinas filtradas se lavaron con TFA al
95%-agua y los filtrados y lavados se evaporaron bajo presión
reducida. El residuo se lavó con éter y se liofilizó a partir de
ácido acético-agua. El producto liofilizado bruto
se analizó por cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC) y
se identificó por espectrometría de masa de ionización de
electrospray (ESMS).
Se depositó resina TentaGel (1 g,
0,22-0,31 mmol/g) en un recipiente de polietileno
equipado con un filtro de polipropileno para filtración. La resina
se hinchó en DMF (15 ml) y se trató con piperidina al 20% en DMF
para asegurar la presencia de grupos amino no protonados en la
resina. La resina se drenó y se lavó con DMF hasta que no se pudo
detectar color amarillo alguno tras la adición de
Dhbt-OH a la DMF drenada. Se acopló HMPA (3 eq.) en
forma de éster de HOBt preformado, como se ha descrito
anteriormente, y el acoplamiento se prosiguió durante 24 h. La
resina se drenó y se lavó con DMF (5 x 5 ml, 5 min cada vez) y se
comprobó la acilación mediante el ensayo de ninhidrina. El primer
aminoácido se acopló en forma de anhídrido simétrico preformado,
del modo anteriormente descrito. Los aminoácidos siguientes, según
la secuencia, se acoplaron como ésteres de HOBt protegidos con Fmoc
preformados (3 eq.) como se ha descrito anteriormente. Los
acoplamientos se continuaron durante 2 h, a menos que se
especifique lo contrario. La resina se frenó y se lavó con DMF (5 x
15 ml, 5 min cada vez) para separar el exceso de reactivo. Todas
las acilaciones se comprobaron por el ensayo de ninhidrina realizado
a 80ºC. Después de finalizada la síntesis, la resina con péptidos
se lavó con DMF (3 x 15 ml, 5 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min
cada vez) y, por último, éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez)
y se secó al vacío.
El análisis de gradiente de HPLC se llevó a cabo
usando un sistema de HPLC Hewlett Packard HP 1100 consistente en una
Bomba Cuaternaria HP 1100, un Automuestreador HP 1100, un Termostato
de Columna HP 1100 y un Detector de Longitudes de Onda Múltiples HP
1100. Se utilizó la Chemstation de Hewlett Packard para el software
LC (rev. A.06.01) para el control de instrumentos y la adquisición
de datos.
Se utilizaron las siguientes columnas y sistemas
de tampón de HPLC:
Columna
Kromasil, Phenomenex
00F-3033-EO, 329889 (nueva); 5
\mum C-18, 100 \ring{A} 150 x 4,6 mm; Lote nº
5243-10.
Sistema de tampón: A: TFA al 0,1% en MQV; B: TFA
al 0,085%, MQV al 10%, MeCN al 90%.
Gradiente:
- 1 - 1,5 min. 25% B
- 1,5 - 13,5 min. 25-50% B
- 13,5 -14,5 min. 50-100% B
- 14,5 - 15,5 min. 100% B
- 15,5 - 17,5 min. 100-25% B
- 17,5-20 min. 25% B
Caudal: 1,5 ml/min
Temperatura del horno: 40ºC
Detección UV: \lambda = 215 nm
Los espectros de masa se obtuvieron en un
instrumento LCT Micro-mass.
La invención se ilustra, adicionalmente, por los
siguientes ejemplos de síntesis específicos.
\newpage
Ejemplo de síntesis
1
Primer lote: se depositó
TentaGel-S-NH_{2} seco (0,27
mmol/g, 1 g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro
de polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la tirosina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron por la noche. Después de la
desprotección del grupo Fmoc, se acetiló el grupo amino
N-terminal con anhídrido de ácido acético (1 ml,
10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina disueltos en 2 ml de
DMF. El acoplamiento se continuó durante la noche. Se comprobaron
las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC,
como se ha descrito anteriormente. Después de completar la
síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15
ml, 1 min cada vez), y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético. El
producto liofilizado bruto se analizó por HPLC y se demostró que la
pureza fue mayor que 70%, y se confirmó la identidad del péptido por
ES- MS (MH^{+} hallado 619,24, MH^{+} calculado 619,26). El
rendimiento de material bruto fue de 137,7 mg. Después de la
purificación usando HPLC de preparación, como se ha descrito
anteriormente, se recogieron 59 mg de producto peptídico, con una
pureza superior a 95%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 35%.
Segundo lote: se depositó
TentaGel-S-NH_{2} seco (0,27
mmol/g, 1 g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro
de polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la tirosina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron por la noche. Después de la
desprotección del grupo Fmoc, se acetiló el grupo amino
N-terminal con anhídrido de ácido acético (1 ml,
10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina disueltos en 2 ml de
DMF. El acoplamiento se continuó durante la noche. Se comprobaron
las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC,
como se ha descrito anteriormente. Después de completar la
síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15
ml, 1 min cada vez), y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
descrita anteriormente y se liofilizó a partir de ácido acético. El
producto liofilizado bruto se analizó por HPLC y se demostró que la
pureza fue mayor que 70%, y se confirmó la identidad del péptido
por ES-MS (MH^{+} hallado: 619,25; MH^{+}
calculado, 619,26). El rendimiento de material bruto fue de 137,3
mg. Tras la purificación usando HPLC de preparación de la forma
anteriormente descrita, se recogieron 27,9 mg de producto peptídico
con una pureza superior a 91%. Rendimiento total de producto
peptídico purificado: 15,5%.
Ejemplo de síntesis
2
Primer lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la D-tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc, se
acetiló el grupo amino N-terminal con anhídrido de
ácido acético (1 ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina
disueltos en 2 ml de DMF. El acoplamiento se continuó durante la
noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina
llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después
de completar la síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3
x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético. El
rendimiento de producto bruto liofilizado fue de 119,7 mg. Se
confirmó la identidad del péptido por ES-MS
(MH^{+} hallado 618,25, MH^{+} calculado 618,28). Después de la
purificación usando HPLC de preparación, como se ha descrito
anteriormente, se recogieron 42 mg de producto peptídico, con una
pureza superior a 95%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 30%.
Segundo lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la D-tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc, se acetiló
el grupo amino N-terminal con anhídrido de ácido
acético (1 ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina
disueltos en 2 ml de DMF. El acoplamiento se continuó durante la
noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina
llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después
de completar la síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3
x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
descrita anteriormente y se liofilizó a partir de ácido acético. El
rendimiento de producto bruto liofilizado fue de 119,7 mg. Se
confirmó la identidad del péptido por ES-MS
(MH^{+} hallado: 618,29; MH^{+} calculado, 618,28). Tras la
purificación usando HPLC de preparación de la forma anteriormente
descrita, se recogieron 100 mg de producto peptídico con una pureza
superior a 99%. Rendimiento total de producto peptídico purificado:
71%.
Ejemplo de síntesis
3
Primer lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético con
un rendimiento de producto bruto de 57 mg. Después de la
purificación usando HPLC de preparación, como se ha descrito
anteriormente, se recogieron 2,7 mg de producto peptídico cíclico,
con una pureza superior a 95%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 1,3%. La identidad del péptido se
confirmó por ES-MS (MH^{+} hallado 673,32;
MH^{+} calculado, 673,28).
Segundo lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente, y el acoplamiento
se continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético con
un rendimiento de producto bruto de 57 mg. Después de la
purificación usando HPLC de preparación, como se ha descrito
anteriormente, se recogieron 10 mg de producto peptídico cíclico,
con una pureza superior a 99%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 7%. La identidad del péptido se
confirmó por ES-MS (MH^{+} hallado 673,30;
MH^{+} calculado, 673,29).
Ejemplo de síntesis
4
Primer lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético
para dar el producto bruto. Después de la purificación usando HPLC
de preparación, como se ha descrito anteriormente, se recogió un
producto peptídico cíclico.
Segundo lote: se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente, y el acoplamiento
se continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al
vacío.
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético,
para dar 58,6 mg de producto bruto.
Después de la purificación usando HPLC de
preparación, como se ha descrito anteriormente, se recogieron 5,7 mg
de producto peptídico cíclico, con una pureza superior a 98%. El
rendimiento total de producto peptídico purificado fue de 4,4%. La
identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 616,25; MH^{+} calculado, 616,27).
Ejemplo de síntesis
5
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 46,6 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 99%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 28,6%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 576,27, MH^{+} calculado
576,26).
Ejemplo de síntesis
6
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 26 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 98%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 16,3%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 560,25, MH^{+} calculado
560,28).
Ejemplo de síntesis
7
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 18,9 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 98%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 12,2%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 534,25, MH^{+} calculado
534,26).
Ejemplo de síntesis
8
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 130 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 70,1 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 94%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 48,2%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 520,25, MH^{+} calculado
520,56).
Ejemplo de síntesis
9
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 131 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 72,4 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 92%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 49%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 550,28, MH^{+} calculado
550,59).
Ejemplo de síntesis
10
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 150,8 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 93,1 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 99%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 58%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 576,63, MH^{+} calculado
576,63).
Ejemplo de síntesis
11
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 24,3 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 10,2 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 91%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 4%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 602,23, MH^{+} calculado
602,32).
Ejemplo de síntesis
12
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 29,9 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 19 mg de producto peptídico, con una pureza superior
a 97%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
50%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 578,18, MH^{+} calculado
578,23).
Ejemplo de síntesis
13
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 27,3 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 12,7 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 97%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 34%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 546,28, MH^{+} calculado
546,55).
Ejemplo de síntesis
14
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 23,4 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 13,5 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 97%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 34,6%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 574,32, MH^{+} calculado
574,29).
Ejemplo de síntesis
15
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Después de
la desprotección del grupo Fmoc, el grupo amino
N-terminal se acetiló con anhídrido de ácido
acético (1 ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina
disueltos en 2 ml de DMF. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y
se secó al vacío.
Tras la desprotección del grupo Fmoc y del grupo
amino N-terminal, la resina con péptidos se lavó con
DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez),
éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 89,9 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 80,1 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 99%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 58,9%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 618,30, MH^{+} calculado
618,28).
Ejemplo de síntesis
16
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la Cistina(Acm)
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de la desprotección del grupo Fmoc y el
grupo amino N-terminal, la resina con péptidos se
lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 47,3 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 29,1 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 97%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 12,9%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 924,50, MH^{+} calculado
924,36).
Ejemplo de síntesis
17
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la Cistina(Acm)
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente.
Después de la desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto 45,67 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 29,15 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 94%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 14,9%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 796,25, MH^{+} calculado
796,30).
Ejemplo de síntesis
18
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la Cistina(Acm)
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente.
Después de la desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético. El
producto bruto liofilizado se analizó por HPLC y se purificó y
caracterizó de forma similar el compuesto 17.
Ejemplo de síntesis
19
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la Cistina(Acm)
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente.
Después de la desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 2,76 mg de producto
peptídico, con una pureza superior a 94%. El rendimiento total de
producto peptídico purificado fue de 17,9%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 796,25, MH^{+} calculado
796,30).
Ejemplo de síntesis
20
Se oxidan 19 mg del péptido
H-Cys-Tyr-Pro-Hyp-Gly-Cys-NH_{2}
disolviendo el péptido en 1,5 ml de ácido acético al 5% en agua y
DMSO, 4:1 v/v, pH \sim 6. La mezcla se sitúa en el refrigerador
durante 6 días.
Tras la purificación usando HPLC de preparación,
de la forma anteriormente descrita, se recogieron 91 mg de producto
peptídico con una pureza superior a 97%. El rendimiento total de
producto peptídico purificado fue de 47%. La identidad del péptido
se confirmó por ES-MS (MH^{+} hallado 652,29,
MH^{+} calculado 652,21).
Ejemplo de síntesis
21
Se oxidan 32 mg del péptido
H-Cys-Gly-4Hyp-Pro-Tyr-Cys-NH_{2}
disolviendo el péptido en 1,5 ml de ácido acético al 5% en agua y
DMSO, 4:1 v/v, pH \sim 6. La mezcla se coloca en el refrigerador
durante 6 días.
Tras la purificación usando HPLC de preparación,
de la forma anteriormente descrita, se recogieron 6,13 mg de
producto peptídico con una pureza superior a 99%. El rendimiento
total de producto peptídico purificado fue de 3%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 652,23, MH^{+} calculado
652,21).
\newpage
Ejemplo de síntesis
22
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 47 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 94%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 30%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 576,26, MH^{+} calculado
576,26).
Ejemplo de síntesis
23
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 93,7 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 60,7 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 93%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 47,5%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 690,32, MH^{+} calculado
690,30).
Ejemplo de síntesis
24
Se disuelven 40,6 mg (64 \mumol) del péptido
(Compuesto 2) en 10 ml de tampón fosfato 0,1 M, pH 6,5 (solución
A).
Se disuelven 75,6 mg de KI (400 \mumol) en 10
ml de tampón fosfato a pH 6,5 y se agregan 120 perlas de yodo
(IODO-BEADS,
N-cloro-bencenosulfonamida,
capacidad oxidativa 0,55 \mumol/perla; PIERCE 28665ZZ), y se deja
la solución a temperatura ambiente durante 10 min (solución B).
Se combinan las soluciones A y B y se agitan
suavemente durante 15 min. El péptido yodado se aisló y purificó
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente. Se
recogieron 39,5 mg de producto peptídico con una pureza superior a
90%. La identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 870,09, MH^{+} calculado 870,08).
Ejemplo de síntesis
25
Se disuelven 40,6 mg (64 \mumol) del péptido
(Compuesto 2) en 10 ml de tampón fosfato 0,1 M, pH 6,5 (solución
A).
Se disuelven 75,6 mg de KI (400 \mumol) en 10
ml de tampón fosfato a pH 6,5 y se agregan 120 perlas de yodo
(IODO-BEADS,
N-cloro-bencenosulfonamida,
capacidad oxidativa 0,55 \mumol/perla; PIERCE 28665ZZ), y se deja
la solución a temperatura ambiente durante 10 min (solución B).
Se combinan las soluciones A y B y se agitan
suavemente durante 15 min. El péptido yodado se aisló y purificó
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente. Se
recogieron 3,3 mg de producto peptídico con una pureza superior a
90%. La identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 744,19, MH^{+} calculado 744,18).
Ejemplo de síntesis
26
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la D-tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc, el
grupo amino N-terminal se acetiló con anhídrido de
ácido acético (1 ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina
disueltos en 2 ml de DMF. El acoplamiento se continuó durante la
noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina
llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después
de completar la síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3
x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 142,4 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 79,7 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 99%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 50%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 624,25, MH^{+} calculado
624,26).
Ejemplo de síntesis
27
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la prolina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 135,7 mg de producto
peptídico, con una pureza superior a 98%. El rendimiento total de
producto peptídico purificado fue de 82,7%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 690,38, MH^{+} calculado
690,31).
Ejemplo de síntesis
28
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la 4-hidroxiprolina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de la desprotección del grupo Fmoc y el
grupo amino N-terminal, la resina con péptidos se
lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 127 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 98%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 69,8%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 690,25, MH^{+} calculado
690,31).
Ejemplo de síntesis
29
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la sarcosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de la desprotección del grupo Fmoc y el
grupo amino N-terminal, la resina con péptidos se
lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 150 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 85,5 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 93%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 57%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 604,33, MH^{+} calculado
604,30).
Ejemplo de síntesis
30
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 124 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 64,8 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 96%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 41,6%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 590,19, MH^{+} calculado
590,29).
Ejemplo de síntesis
31
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la prolina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Después de
la desprotección del grupo Fmoc, el grupo amino
N-terminal se acetiló con ácido
Azido-salicílico usando el procedimiento de
acoplamiento convencional, como se ha descrito anteriormente. El
acoplamiento se continuó durante la noche. Se comprobaron las
acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como
se ha descrito anteriormente. Después de completar la síntesis, la
resina con péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez),
DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min
cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 15,9 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 94%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 575,23, MH^{+} calculado
575,56).
Ejemplo de síntesis
32
Se disuelven 10,3 mg del péptido (Compuesto 31)
en 2,5 ml de tampón fosfato 0,1 M, pH 6,5 (solución A).
Se disuelven 18,9 mg de KI (100 \mumol) en 2,5
ml de tampón fosfato a pH 6,5 y se agregan 30 perlas de yodo
(IODO-BEADS,
N-cloro-bencenosulfonamida,
capacidad oxidativa 0,55 \mumol/perla; PIERCE 28665ZZ), y se deja
la solución a temperatura ambiente durante 10 min (solución B).
Se combinan las soluciones A y B y se agitan
suavemente durante 1 hora. El péptido yodado se aisló y purificó
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente. Se
recogieron 4,4 mg de producto peptídico con una pureza superior a
99%. La identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 701,13, MH^{+} calculado 701,46).
Ejemplo de síntesis
33
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la tirosina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Después de
la desprotección del grupo Fmoc, el grupo amino
N-terminal se acetiló con ácido
Azido-benzoico usando el procedimiento de
acoplamiento convencional, como se ha descrito anteriormente. El
acoplamiento se continuó durante la noche. Se comprobaron las
acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como
se ha descrito anteriormente. Después de completar la síntesis, la
resina con péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez),
DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min
cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 20,5 mg de producto
peptídico, con una pureza superior a 90%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 721,28, MH^{+} calculado
721,26).
Ejemplo de síntesis
34
Se disuelven 10,3 mg del péptido (Compuesto 33)
en 2,5 ml de tampón fosfato 0,1 M, pH 6,5 (solución A).
Se disuelven 18,9 mg de KI (100 \mumol) en 2,5
ml de tampón fosfato a pH 6,5 y se agregan 30 perlas de yodo
(IODO-BEADS,
N-cloro-bencenosulfonamida,
capacidad oxidativa 0,55 \mumol/perla; PIERCE 28665ZZ), y se deja
la solución a temperatura ambiente durante 10 min (solución B).
Se combinan las soluciones A y B y se agitan
suavemente durante 1 hora. El péptido yodado se aisló y purificó
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente. Se
recogieron 1,2 mg de producto peptídico con una pureza superior a
90%. La identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 973,08, MH^{+} calculado 973,46).
Ejemplo de síntesis
35
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Glu(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la glicina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 135,3 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 19,1 mg de producto peptídico, con una pureza superior a
98%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
6,6%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 687,38; MH^{+} calculado,
687,32).
Ejemplo de síntesis
36
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la glicina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 xx 15 ml, min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 63,4 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 13,2 mg de producto peptídico, con una pureza superior a
97%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
6,2%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 673,38; MH^{+} calculado,
673,30).
Ejemplo de síntesis
37
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la glicina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 85,1 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 9,8 mg de producto peptídico, con una pureza superior a
98%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
3,5%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 657,38; MH^{+} calculado,
657,31).
Ejemplo de síntesis
38
Se disuelven 10,8 mg del péptido (Compuesto 3) en
2,5 ml de tampón fosfato 0,1 M, pH 6,5 (solución A).
Se disuelven 18,9 mg de KI (400 \mumol) en 2,5
ml de tampón fosfato a pH 6,5 y se agregan 30 perlas de yodo
(IODO-BEADS,
N-cloro-bencenosulfonamida,
capacidad oxidativa 0,55 \mumol/perla; PIERCE 28665ZZ), y se deja
la solución a temperatura ambiente durante 10 min (solución B).
Se combinan las soluciones A y B y se agitan
suavemente durante 2 horas. El péptido yodado se aisló y purificó
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente. Se
recogieron 9,8 mg de producto peptídico con una pureza superior a
95%. La identidad del péptido se confirmó por ES-MS
(MH^{+} hallado 925,10, MH^{+} calculado 925,30).
Ejemplo de síntesis
39
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 124 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 26,5 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 96%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 20,5%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 480,24, MH^{+} calculado
480,50).
Ejemplo de síntesis
40
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Después de la desprotección del grupo Fmoc, se acetiló el grupo
amino N-terminal con anhídrido de ácido acético (1
ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina disueltos en 2 ml
de DMF. El acoplamiento se continuó durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
acilación del grupo amino N-terminal, la resina
con péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x
15 ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez),
y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 90,4 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, de la forma anteriormente descrita, se
recogieron 63,4 mg de producto peptídico con una pureza superior a
99%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
65,1.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 394,16, MH^{+} calculado
394,20).
Ejemplo de síntesis
41
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 91,4 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 62,1 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 95%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 54,5%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 352,16, MH^{+} calculado
352,18).
Ejemplo de síntesis
42
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la alanina N-terminal.
Después de la desprotección del grupo Fmoc, se acetiló el grupo
amino N-terminal con anhídrido de ácido acético (1
ml, 10,5 mmol), junto con 100 \mul de piridina disueltos en 2 ml
de DMF. El acoplamiento se continuó durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
acilación del grupo amino N-terminal, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 105 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, de la forma anteriormente descrita, se
recogieron 52 mg de producto peptídico con una pureza superior a
98%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
45%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 465,22, MH^{+} calculado
465,30).
\newpage
Ejemplo de síntesis
43
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la alanina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 104,5 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 77,8 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 96%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 58,8%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 423,19, MH^{+} calculado
423,28).
Ejemplo de síntesis
44
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 60,2 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 5,0 mg de producto peptídico con una pureza superior a
87%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
4,3%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 564,25, MH^{+} calculado
564,57).
Ejemplo de síntesis
45
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 79,1 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 20 mg de producto peptídico con una pureza superior a
90%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
14%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 569,25, MH^{+} calculado
569,67).
\newpage
Ejemplo de síntesis
46
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 58,9 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 15,9 mg de producto peptídico con una pureza superior a
98%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
11%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 740,31, MH^{+} calculado
740,75).
Ejemplo de síntesis
47
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel". El
primer aminoácido
Fmoc-Asp(OH)-O-All
se conectó a la resina
TentaGel-S-Ram a través del ácido
carboxílico de cadena lateral, que terminará siendo amidado (Asn)
finalmente, tras la escisión. Se siguió el procedimiento descrito
bajo "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la tirosina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
por la noche. Después de la desprotección del grupo Fmoc y del
grupo alilo (según el procedimiento anteriormente descrito), el
péptido unido a la resina se cicló usando PyBop como reactivo de
acoplamiento, como se ha descrito anteriormente y el acoplamiento se
continuó durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el
ensayo de ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de completar la síntesis, la resina con
péptidos se lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15
ml, 1 min cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez), y
se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de producto bruto, 54,1 mg. Después de la purificación
usando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente, se
recogieron 19,6 mg de producto peptídico con una pureza superior a
95%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
15%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 649,10, MH^{+} calculado
649,68).
Ejemplo de síntesis
48
Se depositó
TentaGel-S-NH_{2} seco (0,27
mmmol/g, 1 g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro
de polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito
en "síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel"
hasta finalizar el acoplamiento de la glicina
N-terminal. Todos los acoplamientos se continuaron
durante la noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de
ninhidrina llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito
anteriormente. Después de la desprotección del grupo Fmoc y el
grupo amino N-terminal, la resina con péptidos se
lavó con DMF (3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min
cada vez), éter dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Tras la purificación utilizando HPLC de preparación, como se ha
descrito anteriormente, se recogieron 16,9 mg de producto peptídico,
con una pureza superior a 92%. El rendimiento total de producto
peptídico purificado fue de 10,1%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 471,22, MH^{+} calculado
471,21).
\newpage
Ejemplo de síntesis
49
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la glicina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Se
comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina llevado a
cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después de la
desprotección del grupo Fmoc y el grupo amino
N-terminal, la resina con péptidos se lavó con DMF
(3 x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 159 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 101 mg de producto peptídico, con una pureza superior
a 98%. El rendimiento total de producto peptídico purificado fue de
60%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 576,26, MH^{+} calculado
576,26).
Ejemplo de síntesis
50
Se depositó
TentaGel-S-Ram seco (0,23 mmol/g, 1
g) en un recipiente de polietileno equipado con un filtro de
polipropileno para la filtración, y se trató del modo descrito en
"síntesis discontinua de péptidos sobre resina TentaGel" hasta
finalizar el acoplamiento de la prolina N-terminal.
Todos los acoplamientos se continuaron durante la noche. Después de
la desprotección del grupo Fmoc, el grupo amino
N-terminal se acetiló con ácido
3-(4-hidroxifenil)-propiónico,
utilizando el procedimiento de acoplamiento convencional
anteriormente descrito. El acoplamiento se continuó durante la
noche. Se comprobaron las acilaciones por el ensayo de ninhidrina
llevado a cabo a 80ºC, como se ha descrito anteriormente. Después
de completar la síntesis, la resina con péptidos se lavó con DMF (3
x 15 ml, 1 min cada vez), DCM (3 x 15 ml, 1 min cada vez), éter
dietílico (3 x 15 ml, 1 min cada vez) y se secó al
vacío.
vacío.
El péptido se escindió de la resina de la forma
anteriormente descrita y se liofilizó a partir de ácido acético.
Rendimiento de material bruto, 143 mg. Tras la purificación
utilizando HPLC de preparación, como se ha descrito anteriormente,
se recogieron 73,7 mg de producto peptídico, con una pureza
superior a 95%. El rendimiento total de producto peptídico
purificado fue de 50%.
La identidad del péptido se confirmó por
ES-MS (MH^{+} hallado 561,30, MH^{+} calculado
561,24).
[1.] A. L. Waldo, A. J. Camm, H.
deRuyter, P. L. Friedman, D. J. MacNeil, J. F.
Pauls, B. Pitt, C. M. Pratt, P. J.
Schwartz, E. P. Veltri, Lancet 1996,
348 7-12.
[2.] P. A. Guerrero, R. B.
Schuessler, L. M. Davis, E. C. Beyer, C. M.
Johnson, K. A. Yamada, J. E. Saffitz, J Clin
Invest 1997, 99 1991-1998.
[3.] D. L. Lerner, K. A. Yamada, R.
B. Schuessler, J. E. Saffitz, Circulation
2000, 101 547-552.
[4.] A. Hagendorff, B. Schumacher,
S. Kirchhoff, B. Luderitz, K. Willecke,
Circulation 1999, 99
1508-1515.
[5.] S. Kirchhoff, E. Nelles, A.
Hagendorff, O. Kruger, O. Traub, K.
Willecke, Curr Biol 1998, 8
299-302.
[6.] A. M. Simon, D. A. Goodenough,
D. L. Paul, Curr Biol 1998, 8
295-298.
[7.] A. C. de Carvalho, M. O.
Masuda, H. B. Tanowitz, M. Wittner, R. C.
Goldenberg, D. C. Spray, J Cardiovasc
Electrophysiol 1994, 5
686-698.
[8.] R. R. Kaprielian, M. Gunning,
E. Dupont, M. N. Sheppard, S. M. Rothery, R.
Underwood, D. J. Pennell, K. Fox, J.
Pepper, P. A. Poole-Wilson, N. J.
Severs, Circulation 1998, 97
651-660.
[9.] N. S. Peters, C. R. Green, P.
A. Poole-Wilson, N. J. Severs,
Circulation 1993, 88
864-875.
[10.] J. E. Saffitz, R. B.
Schuessler, K. A. Yamada, Cardiovasc Res
1999, 42 309-317.
[11.] S. Aonuma, Y. Kohama, K.
Akai, Y. Komiyama, S. Nakajima, M.
Wakabayashi, T. Makino, Chem Pharm Bull (Tokyo)
1980, 28 3332-3339.
[12.] S. Aonuma, Y. Kohama, K.
Akai, S. Iwasaki, Chem Pharm Bull (Tokyo)
1980, 28 3340-3346.
[13.] S. Aonuma, Y. Kohama, T.
Makino, Y. Fujisawa, J Pharmacobiodyn
1982, 5 40-48.
[14.] M. A. Ronsberg, T. K.
Saunders, P. S. Chan, P. Cervoni, Med
Sci 86 A.D., 14 350-351.
[15.] M. Dikshit, R. Srivastava, B.
Kundu, K. B. Mathur, K. Kar, Indian J Exp
Biol 1988, 26 874-876.
[16.] Y. Kohama, N. Okimoto, T.
Mimura, C. Fukaya, M. Watanabe, K.
Yokoyama, Chem Pharm Bull (Tokyo) 1987,
35 3928-3930.
[17.] Y. Kohama, S. Kuwahara, K.
Yamamoto, M. Okabe, T. Mimura, C.
Fukaya, M. Watanabe, K. Yokoyama, Chem
Pharm Bull (Tokyo) 1988, 36
4597-4599.
[18.] S. Dhein, N. Manicone, A.
Muller, R. Gerwin, U. Ziskoven, A.
Irankhahi, C. Minke, W. Klaus, Naunyn
Schmiedebergs Arch Pharmacol 1994, 350
174-184.
[19.] T. Argentieri, E. Cantor, J.
R. Wiggins, Experientia 1989, 45
737-738.
[20.] A. Muller, M. Gottwald, T.
Tudyka W. Linke, W. Klaus, S. Dhein,
Eur J Pharmacol 1997, 327
65-72.
[21.] R. Grover, S. Dhein,
Peptides 1998, 19
1725-1729.
[22.] S. Dhein, T. Tudyka,
Drugs 1995, 49 851-855.
[23.] C. S. Kuo, K. Munakata, C. P.
Reddy, B. Surawicz, Circulation 1983,
67 1356-1367.
[24.] S. Dhein, K. Krusemann, T.
Schaefer, Br J Pharmacol 1999, 128
1375-1384.
[25.] N. S. Peters, J. Coromilas,
N. J. Severs, A. L. Wit, Circulation
1997, 95 988-996.
[26.] D. W. Liu, C. Antzelevitch,
Circ Res 1995, 76 351-365.
[27.] Kanagaratnam, P., Severs, N.
J., and Peters, N. S. The Relationship between Conduction,
Activation pattern and Quantity of Immunoreactive Connexin in
Chronic Human Atrial Fibrillation. Circulation
102[18], II-485. 2000. Ref Type:
Abstract
[28.] J. M. Pastore, D. S.
Rosenbaum, Circulation Research 2000, 87
1157-1163.
[29.] R. D. Berger, Circulation
Research 2000, 87 1083-1084.
[30.] J. E. Saffitz, K. A. Yamada,
Circulation 1998, 97
630-632.
[31.] Gutstein, D. E., Morley, G.
E., Tamaddon, Houman S., Vaidya, D.,
Schneider, M. D., Chen, J., Chien, K. R.,
Stuhlmann, H., and Fishman, G. I. Genetic Manipulation
of Connexin43 Expression in the Heart: Establishing a Role for Gap
Junction Remodeling in Arrhythmogenesis and Ventricular Dysfunction.
Circulation 102[18], 11-15.
2001. Ref Type: Abstract
[32.] A. Muller, T. Schaefer, W.
Linke, T. Tudyka, M. Gottwald, W. Klaus,
S. Dhein, Naunyn Schmiedebergs Arch .Pharmacol.
1997, 356 76-82.
[33.] S. Dhein, R. Grover, A.
Muller, M. Lauven, P. Poeppel, T.
Schaefer, Circulation 1999, 100
I-426.
[34] Koenig, J. I. Radioligand binding in
intact cells. Keen, M. [106], 89-98.
1999 Tótowa, NJ, Humana Press Inc. Methods in
Molecular Biology. Ref Type: Serial (Book,Moiloraph)
[35.] K. Wassermann, K. Molgaard,
E. Steiness, Cancer Chemother. Pharmacol. 1985,
15 244-252.
[36.] E. Meier, K. Frederiksen. M.
Nielsen, H. L. Lembol, H. Pedersen, J.
Hyttel, Drug Development Research 1997,
40 1-16.
[37.] J. J. Lynch, R. G. Rahwan, D.
T. Witiak, J Cardiovasc. Pharmacol. 1981,
3 49-60.
[38.] M. Zabel, S. H. Hohnloser, S.
Behrens, R. L. Woosley, M. R. Franz, J
Cardiovasc Electrophysiol 1997, 8
1239-1245.
[39.] S. Dhein, N. Manicone, A.
Muller, R. Gerwin, U. Ziskoven, A.
Irankhahi, C. Minke, W. Klaus, Naunyn
Schmiedebergs Arch Pharmacol 1994, 350
174-184.
[40.] X. D. Huang, G. E. Sandusky,
D. P. Zipes, J Cardiovasc. Electrophysiol.
1999, 10 79-91.
[41.] D. Xing, J. B. Martins, Am
J Physlol Heart Circ. Physiol 2001, 280
H684-H692.
[42.] F. Shapiro, Calcif Tissue Int
1997, 61 285-293.
[43.] R. Civitelli, E. C. Beyer, P.
M. Wariow, A. J. Robertson, S. T. Geist, T. H.
Steinberg, J. Clin. Invest. 1993, 91
1888-1896.
[44.] T. H. Steinberg, R.
Civitelli, S. T. Geist, A. J. Robertson, E.
Hick, R. D. Veenstra, H. Z. Wang, P. M.
Warlow, E. M. Westphale, J. G. Laing, a. et,
EMBO J. 1994, 13 744-750.
[45.] H. Chiba, N. Sawada, M.
Oyamada, T. Kojima, S. Nomura, S.
Ishii, M. Mori, Cell Struct. Funct.
1993, 18 419-426.
[46.] F. Lecanda, D. A. Towler, K.
Ziambaras, S. L. Cheng, M. Koval, T. H.
Steinberg, R. Civitelli, Mol Biol Cell
1998, 9 2249-2258.
[47.] F. Lecanda, P. M. Warlow, S.
Sheikh, F. Furlan, T. H. Steinberg, R.
Civitelli, J. Cell Biol. 2000, 151
931-943.
[48.] N. R. Jorgensen, S. T. Geist,
R. Civitelli, T. H. Steinberg, J. Cell Biol.
1997, 139 497-506.
[49.] N. R. Jorgensen, Z.
Henriksen, C. Brot, E. F. Eriksen, O. H.
Sorensen, R. Civitelli, T. H. Steinberg, J
Bone Miner. Res. 2000, 15
1024-1032.
[50.] A. Clairmont, D. Tessman, A.
Stock, S. Nicolai, W. Stahl, H. Sies,
Carcinogenesis 1996, 17
1389-1391.
[51.] M. A. Van der Molen, C. T.
Rubin, K. J. McLeod, L K. McCauley, H. J.
Donahue, J. Biol. Chem. 1996, 271
12165-12171.
[52.] R. Civitelli, K. Ziambaras,
P. M. Warlow, F. Lecanda, T. Nelson, J.
Harley, N. Atal, E. C. Beyer, T. H.
Steinberg, J. Cell Biochem. 1998, 68
8-21.
[53.] P. D'Andrea, A. Calabrese, I.
Capozzi, M. Grandolfo, R. Tonon, F.
Vittur, Biorheology 2000, 37
75-83.
[54.] P. D'Andrea, F. Vittur,
Cell Calcium 1996, 20
389-397.
[55.] S. Loty, C. Foil, N.
Forest, J. Sautier, Arch. Oral Biol.
2000, 45 843-856.
[56.] N. Cirenei, B. M. Colombo, M.
Mesnil, S. Benedetti, H. Yamasaki, G.
Finocchiaro, Gene Ther. 1998, 5
1221-1226.
[57.] O. Moennikes, A. Buchmann, K.
Willecke, O. Traub, M. Schwarz,
Hepatology 2000, 32
501-506.
[58.] O. Moennikes, A. Buchmann, A.
Romualdi, T. Ott, J. Werringloer, K.
Willecke, M. Schwarz, Cancer Res. 2000,
60 5087-5091.
[59.] L. Zhou, E. M. Kasperek, B.
J. Nicholson, J Cell Biol. 1999, 144
1033-1045.
[60.] D. W. Laird, P. Fistouris, G.
Batist, L. Alpert, H. T. Huynh, G. D.
Carystinos, M. A. Alaoui-Jamali,
Cancer Res. 1999, 59
4104-4110.
[61.] T. Shibata, H. Nagayasu, J.
Hamada, S. Konaka, M. Hosokawa, T.
Kawano, H. Kitajo, M. Arisue, Tumour.
Biol. 2000, 21 299-308.
[62] X. Guan, R. J. Ruch,
Carcinogenesis 1996, 17
1791-1798.
[63.] R. J. Ruch, W. J. Bonney, K.
Sigler, X. Guan, D. Matesic, L. D.
Schafer, E. Dupont, J. E. Trosko,
Carcinogenesis 1994, 15
301-306.
[64.] B. V. Madhukar, H. L.
Feijter-Rupp, J. E. Trosko, Cancer
Lett. 1996, 106 117-123.
[65] W. K. Hong, M. B. Spom,
Science 1997, 278
1073-1077.
[66.] K. M. Abdullah, G. Luthra, J.
J. Bilski, S. A. Abdullah, L. P. Reynolds, D.
A. Redmer, A. T. Grazul-Bilska,
Endocrine. 1999, 10 35-41.
[67.] M. Saitoh, M. Oyamada, Y.
Oyamada, T. Kaku, M. Mori,
Carcinogenesis 1997, 18
1319-1328.
[68.] J. A. Goliger, D. L. Paul,
Mol. Biol. Cell 1995, 6
1491-1501.
[69.] T. Mine, R. Kushima, T.
Fujita, J Clin. Gastroenterol. 1997, 25
Suppl 1 S111-S115.
[70.] T. Mine, H. Yusuda, A.
Kataoka, A. Tajima, J. Nagasawa, T.
Takano, J Clin. Gastroenterol. 1995, 21
Suppl 1 S104-S107.
[71.] G. J. Christ, P. R. Brik,
Braz. J Med Biol. Res. 2000, 33
423-429.
[72.] B. R. Berg, K. D. Cohen, I.
H. Sarelius, Am J Physiol 1997, 272
H2693-H2700.
[73.] C. de Wit, F. Roos, S. S.
Bolz, S. Kirchhoff, O. Kruger, K.
Willecke, U. Pohl, Circulation Research
2000, 86 649-655.
[74.] B. Nafz, J. Stegemann, M. H.
Bestle, N. Richter, E. Seeliger, I.
Schimke, H. W. Reinhardt, P. B. Persson,
Circulation 2000, 101
553-557.
[75.] H. Q. Xie, V. W. Hu, Exp.
Cell Res. 1994, 214 172-176.
[76.] R. Dermietzel, Brain Res Brain
Res Rev 1998, 26 176-183.
[77.] R. Rozental, M. Srinivas, S.
Gokhan, M. Urban, R. Dermietzel, J. A.
Kessler, D. C. Spray, M. F. Mehler, Brain
Res. Brain Res. Rev. 2000, 32
57-71.
[78.] H. Aldskogius, E. N. Kozlova,
Prog. Neurobiol. 1998, 55
1-26.
[79.] J. D. Pal, X. Liu, D.
Mackay, A. Shiels, V. M. Berthoud, E. C.
Beyer, L. Ebihara, Am J Physiol Cell Physiol
2000, 279 C596-C602.
[80.] V. Krutovskikh, H. Yamasaki,
Mutat. Res. 2000, 462
197-207.
[81.] D. Mackay, A. Ionides, Z.
Kibar, G. Rouleau, V. Berry, A. Moore,
A. Shiels, S. Bhattacharya, Am J Hum. Genet.
1999, 64 1357-1364.
[82.] K. Nakamura, Y. Shibata,
Cells Tissues. Organs 1999, 165
16-21.
[83.] L. Nemeth, S. Maddur, P.
Puri, J Pediatr. Surg. 2000, 35
823-828.
[84.] A. M. Simon, D. A.
Goodenough, E. U, D. L. Paul, Nature
1997, 385 525-529.
[85.] B. Sommersberg, A. Bulling,
U. Salzer, U. Frohlich, R. E. Garfield, A.
Amsterdam, A. Mayerhofer, Biol. Reprod.
2000, 63 1661-1668.
[86.]1. Granot, N. Dekel, Hum.
Reprod. 1998, 13 Suppl 4
85-97.
[87.] W. M. Kilarski, E. Dupont, S.
Coppen, H. I. Yeh, C. Vozzi, R. G.
Gourdie, M. Rezapour, U. Ulmsten, G. M.
Roomans, N. J. Severs, Eur. J Cell Biol.
1998, 75 1-8.
[88.] H. N. Ciray, X. Fu, M.
Olovsson, G. Ahlsen, C. Shuman, B.
Lindblom, U. Ulmsten, Am J Obstet. Gynecol.
2000, 182 926-930.
[89.] C. Batias, N. Defamie, A.
Lablack, D. Thepot, P. Fenichel, D.
Segretain, G. Pointis, Cell Tissue Res.
1999, 298 113-121.
[90.] E. Schleiermacher, Hum.
Genet. 1980, 54 391-404.
[91.] C. Vozzi, S. Ulirich, A.
Charollais, J. Philippe, L. Orci, P.
Meda, J Cell Biol. 1995, 131
1561-1572.
[92.] P. Meda, M. Chanson, M.
Pepper, E. Giordano, D. Bosco, O.
Traub, K. Willecke, A. el Aoumari, D.
Gros, E. C. Beyer, Exp. Cell Res. 1991,
192 469-480.
[93.] K. Ziambaras, F. Lecanda, T.
H. Steinberg, R. Civitelli, J. Bone Miner.
Res. 1998, 13 218-228.
[94.] I. Capozzi, R. Tonon, P.
D'Andrea, Biochem J 1999, 344 Pt 2
545-553.
[95.] S. G. Spanakis, S. Petridou,
S. K. Masur, Invest Ophthalmol. Vis. Sci.
1998, 39 1320-1328.
[96.] H. Yamasaki, V. Krutovskikh,
M. Mesnil, T. Tanaka, D. M. Zaidan, Y.
Omori, C. R. Acad. Sci. III. 1999, 322
151-159.
[97.] B. D. Larsen, A. Holm,
Int. J Pept. Protein Res. 1994, 43
1-9.
Claims (12)
1. Un compuesto que tiene la fórmula I:
X-(Y')_{b}-(Px)_{2}-G'-A-(G')_{a}-R_{7}
en la que todos los residuos aminoácidos son, de manera
independiente, formas D y en la que
X representa H o Ac;
G' representa un residuo de glicina o Sar;
A representa alanina;
Px representa un residuo aminoácido de la fórmula
II
en la que n es un número entero que
tiene el valor de 3, 4 ó 5, y R representa un sustituyente
opcional,
Y' representa tirosina o fenilalanina
opcionalmente sustituida en el anillo fenilo con halógeno o
hidroxi;
a y b son, independientemente, 0 ó 1;
R_{7} representa OH, NH_{2},
NHNH_{2}-Asn-NH_{2} o
Gln-NH_{2}; y sus sales farmacéuticamente
aceptables.
2. Un compuesto según la reivindicación 1 en el
que Px representa el residuo aminoácido de 3Hyp, 4Hyp o Pro.
3. Un compuesto según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, seleccionado del grupo consistente
en
Ac-D-Tyr-D-Pro-D-4Hyp-Gly-D-Ala-Gly-OH,
Ac-D-Tyr-D-Pro-D-4Hyp-Gly-D-Ala-Gly-NH_{2}
(Compuesto 2)
y sus sales farmacéuticamente
aceptables.
4. Una composición farmacéutica que comprende un
compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, y
un vehículo o diluyente farmacéuticamente aceptable.
5. Una composición según la reivindicación 4, que
es una preparación para inyección.
6. Uso de un compuesto según una cualquiera de
las reivindicaciones 1-3, para la preparación de un
medicamento para el tratamiento de arritmias.
7. Uso según la reivindicación 6, en el que dicha
arritmia es fibrilación auricular, fibrilación ventricular o
bloqueo AV.
8. Uso según la reivindicación 6, en el que la
arritmia es bradiarritmia.
9. Uso según la reivindicación 7, en el que la
arritmia es taquiarritmia.
10. Uso según la reivindicación 9, en el que la
taquiarritmia es taquicardia ventricular.
11. Uso de un compuesto, según se ha definido en
cualquiera de las reivindicaciones 1-3, para la
preparación de un medicamento para el tratamiento de la
contractilidad reducida.
12. Uso de un compuesto, según se ha definido en
cualquiera de las reivindicaciones 1-3, para la
preparación de un medicamento para el tratamiento de pacientes con
alternancia de onda T.
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Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7250397B2 (en) | 2000-02-23 | 2007-07-31 | Zealand Pharma A/S | Antiarrhythmic peptides |
WO2002077017A2 (en) * | 2001-02-22 | 2002-10-03 | Zealand Pharma A/S | Medical uses of intercellular communication facilitating compounds |
US7585839B2 (en) | 2000-02-23 | 2009-09-08 | Zealand Pharma A/S | Medical uses of intercellular communication facilitating compounds |
MXPA04007252A (es) * | 2002-01-29 | 2005-03-31 | Wyeth Corp | Composiciones y metodos para modular los hemicanales de conexina. |
AU2003281986B2 (en) * | 2002-11-25 | 2009-06-04 | Zealand Pharma A/S | Peptide gap junction modulators |
US7405210B2 (en) | 2003-05-21 | 2008-07-29 | Osi Pharmaceuticals, Inc. | Pyrrolopyridine-2-carboxylic acid amide inhibitors of glycogen phosphorylase |
ATE483708T1 (de) | 2004-03-08 | 2010-10-15 | Prosidion Ltd | Pyrrolopyridin-2-carbonsäurehydrazide als inhibitoren von glykogenphosphorylase |
GB0514071D0 (en) | 2005-07-07 | 2005-08-17 | Zealand Pharma As | N- or C- terminally modified small peptides |
ES2443242T3 (es) | 2005-12-23 | 2014-02-18 | Zealand Pharma A/S | Compuestos modificados miméticos de lisina |
PL2468724T3 (pl) | 2006-12-21 | 2016-05-31 | Zealand Pharma As | Synteza związków pirolidynowych |
EP2260859A1 (en) | 2009-06-12 | 2010-12-15 | Zealand Pharma A/S | Compounds acting as peptide gap junction modulators and their uses |
WO2014049540A2 (en) | 2012-09-29 | 2014-04-03 | Novartis Ag | Cyclic peptides and use as medicines |
CN103113456B (zh) * | 2013-03-05 | 2014-07-16 | 中国药科大学 | 具有抗血小板聚集活性的僵蚕多肽及其制备方法和应用 |
EP3618847B1 (en) | 2017-05-05 | 2021-04-07 | Zealand Pharma A/S | Gap junction intercellular communication modulators and their use for the treatment of diabetic eye disease |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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