ES2201167T3 - Soldadura para la reparacion de tejidos. - Google Patents
Soldadura para la reparacion de tejidos.Info
- Publication number
- ES2201167T3 ES2201167T3 ES96900477T ES96900477T ES2201167T3 ES 2201167 T3 ES2201167 T3 ES 2201167T3 ES 96900477 T ES96900477 T ES 96900477T ES 96900477 T ES96900477 T ES 96900477T ES 2201167 T3 ES2201167 T3 ES 2201167T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- protein
- weight
- welding
- parts
- tissue
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 230000008439 repair process Effects 0.000 title claims description 50
- 239000004744 fabric Substances 0.000 title claims description 6
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 53
- 238000005304 joining Methods 0.000 claims abstract description 12
- 238000003466 welding Methods 0.000 claims description 132
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 92
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 92
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 56
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 41
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 30
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 22
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 claims description 18
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 claims description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 18
- 230000003872 anastomosis Effects 0.000 claims description 14
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 13
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 9
- 210000000944 nerve tissue Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 claims description 7
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 6
- 210000004303 peritoneum Anatomy 0.000 claims description 6
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000001138 tear Anatomy 0.000 claims description 3
- 210000000013 bile duct Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000000621 bronchi Anatomy 0.000 claims description 2
- 230000001079 digestive effect Effects 0.000 claims description 2
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000001365 lymphatic vessel Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000003101 oviduct Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000000952 spleen Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000000626 ureter Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000003708 urethra Anatomy 0.000 claims description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims 2
- 239000003086 colorant Substances 0.000 claims 1
- 229910000679 solder Inorganic materials 0.000 abstract description 9
- 238000012546 transfer Methods 0.000 abstract description 7
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 description 77
- 210000003050 axon Anatomy 0.000 description 26
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 16
- 210000000578 peripheral nerve Anatomy 0.000 description 16
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 15
- 210000002972 tibial nerve Anatomy 0.000 description 15
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 13
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 12
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 11
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 9
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 9
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 8
- 229960004657 indocyanine green Drugs 0.000 description 7
- 239000000463 material Substances 0.000 description 7
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 7
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 7
- 210000003497 sciatic nerve Anatomy 0.000 description 7
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 6
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 6
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 6
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 5
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 5
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 5
- MOFVSTNWEDAEEK-UHFFFAOYSA-M indocyanine green Chemical compound [Na+].[O-]S(=O)(=O)CCCCN1C2=CC=C3C=CC=CC3=C2C(C)(C)C1=CC=CC=CC=CC1=[N+](CCCCS([O-])(=O)=O)C2=CC=C(C=CC=C3)C3=C2C1(C)C MOFVSTNWEDAEEK-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 4
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 4
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 4
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 3
- 230000036982 action potential Effects 0.000 description 3
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 3
- 230000008859 change Effects 0.000 description 3
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 3
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 3
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 3
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 3
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 3
- 238000000399 optical microscopy Methods 0.000 description 3
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 3
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 3
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 3
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 3
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 3
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 3
- RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N Copper Chemical compound [Cu] RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102100028188 Cystatin-F Human genes 0.000 description 2
- 101710169749 Cystatin-F Proteins 0.000 description 2
- 108010014258 Elastin Proteins 0.000 description 2
- 102100033167 Elastin Human genes 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910001218 Gallium arsenide Inorganic materials 0.000 description 2
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 description 2
- 230000009471 action Effects 0.000 description 2
- 230000007844 axonal damage Effects 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 2
- 210000005056 cell body Anatomy 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 2
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 229910052802 copper Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000010949 copper Substances 0.000 description 2
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 2
- 230000007831 electrophysiology Effects 0.000 description 2
- 238000002001 electrophysiology Methods 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 238000009413 insulation Methods 0.000 description 2
- 238000013532 laser treatment Methods 0.000 description 2
- 210000004088 microvessel Anatomy 0.000 description 2
- 230000007830 nerve conduction Effects 0.000 description 2
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 2
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 2
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 2
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 244000025254 Cannabis sativa Species 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 description 1
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 description 1
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010049003 Fibrinogen Proteins 0.000 description 1
- 102000008946 Fibrinogen Human genes 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 102000006386 Myelin Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010083674 Myelin Proteins Proteins 0.000 description 1
- 208000028389 Nerve injury Diseases 0.000 description 1
- 206010057249 Phagocytosis Diseases 0.000 description 1
- 229920000297 Rayon Polymers 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 206010000496 acne Diseases 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 230000003376 axonal effect Effects 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 239000004020 conductor Substances 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 230000002950 deficient Effects 0.000 description 1
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 1
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 229920002549 elastin Polymers 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 230000000763 evoking effect Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 description 1
- 210000003195 fascia Anatomy 0.000 description 1
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 description 1
- 229940012952 fibrinogen Drugs 0.000 description 1
- 239000001046 green dye Substances 0.000 description 1
- BCQZXOMGPXTTIC-UHFFFAOYSA-N halothane Chemical compound FC(F)(F)C(Cl)Br BCQZXOMGPXTTIC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003132 halothane Drugs 0.000 description 1
- 108010084652 homeobox protein PITX1 Proteins 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 1
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 230000002045 lasting effect Effects 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 1
- 210000001617 median nerve Anatomy 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000003387 muscular Effects 0.000 description 1
- 210000005012 myelin Anatomy 0.000 description 1
- 230000008764 nerve damage Effects 0.000 description 1
- 230000007383 nerve stimulation Effects 0.000 description 1
- 210000002747 omentum Anatomy 0.000 description 1
- 239000013307 optical fiber Substances 0.000 description 1
- 206010033675 panniculitis Diseases 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 235000015927 pasta Nutrition 0.000 description 1
- 210000004345 peroneal nerve Anatomy 0.000 description 1
- 230000008782 phagocytosis Effects 0.000 description 1
- 239000000825 pharmaceutical preparation Substances 0.000 description 1
- 229940127557 pharmaceutical product Drugs 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 210000004116 schwann cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001953 sensory effect Effects 0.000 description 1
- 238000005476 soldering Methods 0.000 description 1
- 239000008247 solid mixture Substances 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 210000004304 subcutaneous tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000001590 sural nerve Anatomy 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
- 210000000707 wrist Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/11—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets for performing anastomosis; Buttons for anastomosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/11—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets for performing anastomosis; Buttons for anastomosis
- A61B17/1128—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets for performing anastomosis; Buttons for anastomosis of nerves
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L24/00—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
- A61L24/04—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
- A61L24/10—Polypeptides; Proteins
- A61L24/106—Fibrin; Fibrinogen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/04—Macromolecular materials
- A61L31/043—Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/00491—Surgical glue applicators
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/00491—Surgical glue applicators
- A61B2017/00513—Tissue soldering
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Surgery (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Neurology (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Electrical Discharge Machining, Electrochemical Machining, And Combined Machining (AREA)
- Mechanical Treatment Of Semiconductor (AREA)
- Nonmetallic Welding Materials (AREA)
- Diaphragms For Electromechanical Transducers (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Electric Connection Of Electric Components To Printed Circuits (AREA)
- Parts Printed On Printed Circuit Boards (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
LA PRESENTE INVENCION SE REFIERE A UN METODO PARA UNIR TEJIDO QUE CONSISTE EN ALINEAR Y UNIR BORDES DEL TEJIDO A UNIR APLICANDO UN SOLDADOR BIOLOGICO, BIODEGRADABLE O UNO DE SUS ANALOGOS, A TRAVES DE LOS BORDES Y EXPONER EL SOLDADOR A UNA FUENTE DE ENERGIA BAJO CONDICIONES QUE TRANSFIEREN ENERGIA A PARTIR DE LA FUENTE AL SOLDADOR PARA HACER QUE EL SOLDADOR UNA LA SUPERFICIE DEL TEJIDO ADYACENTE A LOS BORDES PARA PROPORCIONAR UNA SOLDADURA QUE MANTENGA UNIDOS LOS BORDES.
Description
Soldadura para la reparación de tejidos.
La presente invención se refiere a métodos para
unir tejidos vivos, incluyendo venas, arterias, microvasos, tubos,
nervios, tejidos de órganos y superficies biológicas, tales como:
peritoneo, omento, fascia, espinilla, tejidos artificiales, y a
productos farmacéuticos útiles en unir estos tejidos.
La unión de tejidos tales como: venas, arterias,
microvasos, tubos, nervios, tejidos y superficies biológicas tales
como el peritoneo y la piel, se ha llevado a cabo principalmente
clínicamente, hasta la fecha, por suturación y microsuturación.
La microsuturación requiere considerable destreza
y es un procedimiento que exige mucho tiempo. Con frecuencia, los
tejidos que se han unido por microsuturación forman considerable
tejido de cicatriz. Se pueden comprender mejor algunas de las
dificultades que se encuentran con la microsuturación, considerando
el ejemplo de volver a unir tejido nervioso periférico dañado.
Las señales eléctricas que controlan los órganos
del cuerpo y transmiten información de una parte a otra al sistema
nervioso central (CNS) viajan a lo largo de nervios periféricos. La
estructura de estos nervios periféricos es análoga a los cables de
teléfono. En un cable de teléfono hay un recubrimiento externo,
protector, fuerte, que protege todos los componentes internos. Los
hilos de cobre con frecuencia están agrupados en tubos de
aislamiento independientes que conducen a sistemas diferentes. Cada
uno de los hilos de cobre internos es una línea única que puede
transmitir electricidad en cualquier dirección y tiene un
recubrimiento aislante a su alrededor de forma que no interfiera con
las líneas próximas a él.
Un nervio periférico (Figura 1) tiene una
membrana externa que consiste en tejido conjuntivo tal como
colágeno. Esta membrana (epineurio) protege y soporta los haces de
nervios independientes juntos. Los haces de nervios que yacen en el
interior de esta membrana se denominan fascículos. Estos fascículos
también tienen una membrana circundante a base de colágeno y su
cometido es agrupar juntos axones nerviosos suministrando un área
similar del cuerpo. En el interior de la membrana del fascículo los
axones están rodeados por tejido conjuntivo suelto. Los axones son
una larga extensión de un cuerpo celular que está contenido dentro
del CNS en la columna vertebral o en el cerebro. Los axones
sensoriales transmiten al CNS y los axones motores transmiten desde
el CNS. El metabolismo nervioso está sustentado por el sistema
vascular desde tanto el exterior del nervio como a lo largo del
centro del nervio.
Los nervios periféricos pueden tener diámetros
muy pequeños. Por ejemplo, el nervio mediano maduro en la muñeca
tiene aproximadamente 1 cm de diámetro y contiene una media de
cuarenta fascículos, cada uno de los cuales puede contener hasta
4.500 axones. Cuando se corta un nervio periférico, todos los
axones distales a la herida cambian sus propiedades ya que se corta
el flujo de axones del cuerpo celular. Incluso cuando se reconecta
el nervio, estos axones continúan degenerando distalmente. Las
células de Schwann que normalmente se envuelven alrededor de los
axones como guía de aislamiento regenerando axones. Unir nervios
tan precisamente como sea posible por alineamiento de los
correspondientes fascículos permite que los axones se regeneren más
eficazmente.
Se ha facilitado operar en los nervios usando
equipo microquirúrgico de ampliación y especial. Es necesario que
se efectúen reparaciones precisas al nivel fascicular asegurando
que la regeneración sea a lo largo del haz correcto conduciendo al
área original esos axones suministrados. La técnica actual de
reparación de nervios periféricos usa microsuturación (Figura 2).
Esta técnica requiere un cirujano especializado, totalmente
entregado, ya que la microsuturación de uno solo de los muchos
fascículos con tres o más microsuturas (usando digamos una aguja de
70 micrómetros de diámetro e hilo de 30 micrómetros) puede llevar
tiempos de operación muy largos.
Actualmente la microsuturación se usa
clínicamente donde están disponibles las técnicas.
Desafortunadamente, hay relativamente pocos cirujanos que tengan la
destreza de manipulación necesaria para operar a ampliación alta.
Incluso una técnica de microsuturación razonable da como resultado
largos tiempos de operación con daño añadido a los axones internos
debido a que las suturas penetran la fina envoltura perineurial de
aislamiento. El uso de suturas da como resultado algo de
cicatrización de la reparación debido a reacción del cuerpo
extraño. También hay evidencia que indica que, a la larga, la
formación de tejido de cicatriz y la maduración de la cicatriz
pueden conducir a deficiencia del nervio unido.
Se ha desarrollado trabajo sobre el uso de
láseres sólo en la realización de uniones de nervios. Uno de los
problemas de la soldadura por láser ha sido el hecho de que el
tejido nervioso con aspecto de gel, intacto, de los axones, está
realmente bajo presión dentro del fascículo. Cuando se corta el
fascículo, este material se extruye. Esto puede conducir a que se
forme la soldadura por láser directa sobre el tejido nervioso más
bien que rodeando la membrana del fascículo, causando daño del
nervio. Hasta la fecha, las soldaduras se han hecho típicamente
usando láseres de infrarrojo tales como láseres de CO_{2} que
cuentan con absorción de agua para transferencia de energía. La
preparación de tejidos antes de la soldadura cuenta con la
superposición de membranas nerviosas. Esto es difícil debido a la
extrusión de axones de aspecto de gel y puede conducir así a la
desnaturalización del material de axones nerviosos. El tejido
afectado tiende a cicatrizar y el tejido fibroso que prolifera
como resultado es un conductor de la electricidad más deficiente que
el tejido nervioso. Las uniones formadas hasta la fecha, como se
describieron en la técnica anterior, usando soldadura por láser,
han carecido típicamente de resistencia. Estas uniones por láser
solas tienden a fallar de forma que se ha usado la microsuturación
además de soldadura para fortalecer estas uniones.
Para hacer frente a al menos algunas de las
deficiencias de la soldadura por láser, se han usado diversas colas
en la formación de las soldaduras. Estas colas fluidas, de baja
concentración de proteínas, tienden a correr entre los extremos del
nervio que se están uniendo, que puede dar como resultado daño del
axoplasma del fascículo nervioso y también impedir la regeneración.
También se aplican alrededor de la unión, que se suelda entonces
circunferencialmente. Estas uniones muestran más tarde cicatrizado
grueso, que causa estrechamiento del nervio. Por otra parte, las
uniones tienden a ser débiles.
Las técnicas de soldadura disponibles hasta ahora
también tienden a carecer de precisión. Los factores que influyen
en la precisión de esta aproximación incluyen adversamente
diferencias en: la consistencia de la cola usada; la abertura de la
aguja u otro dispositivo usado para aplicar la cola; y la presión
ejercida en la aplicación de la cola.
La patente
WO-A-91/04073 describe soldadura de
tejido por láser con soldaduras exaltadas de colorante y usa una
solución viscosa de fibrinógeno para soldadura de tejido.
La patente
WO-A-92/14513 describe material de
carga para uso en soldadura de tejido, específicamente
preparaciones de colágeno en agua que contienen de
0,5-10% de colágeno en peso.
Ninguna de estas dos publicaciones mencionadas
resuelve los problemas identificados.
La presente invención proporciona composiciones
de soldadura líquidas o sólidas (reivindicación 21), su uso
(reivindicación 1) y sus métodos de preparación (reivindicación
15).
La soldadura de la invención es útil en un método
para unir tejido que comprende:
alinear y confinar bordes del tejido que se ha de
unir;
aplicar una soldadura, de un lado a otro de los
bordes alineados y confinados; y
exponer la soldadura a una fuente de energía bajo
condiciones que proporcionen una transferencia de energía desde la
fuente a la soldadura para causar que la soldadura se una a la
superficie de tejido adyacente a los bordes, proporcionando por lo
tanto una soldadura que soporte los bordes juntos.
Además de causar que la soldadura se una a la
proteína del tejido subyacente, la transferencia de energía puede
afectar a la estructura de la soldadura misma conduciendo a la
unión dentro de la soldadura y a una exaltación de la resistencia de
la soldadura y por lo tanto la unión.
Típicamente se usan gotas de soldadura donde la
soldadura sea una soldadura fluida, y se "pintan" de un lado a
otro de los bordes.
También se puede proporcionar la soldadura como
una tira sólida preformada.
La fuente de energía es típicamente un láser.
Se puede unir una variedad de tipos de tejido
usando este método. El método es aplicable a anastomosis de tubos
biológicos incluyendo: venas, arterias, vasos linfáticos, nervios,
vaso eferente, trompas de Falopio, vías biliares, tubos del aparato
digestivo, el uréter, la uretra, conductos lagrimales, bronquios y
cualquier otro de tales tubos corporales así como para reparaciones
de incisiones o desgarros de órganos biológicos tales como riñones,
hígado o bazo, o de superficies biológicas tales como el peritoneo y
la piel. Se entenderá, por lo tanto, que el método se puede usar en
una variedad de situaciones de unión incluyendo la unión de
anastomosis cilíndrica y el cierre de defectos lineales tales como
incisiones.
Cuando la reparación de tejido sea con respecto a
tejido nervioso u otros tubos de tejido donde se necesite proteger
de daño los contenidos del tubo, es especialmente importante que la
soldadura no se concentre sobre los bordes que se están uniendo
puesto que esto puede dañar tejido extruido. Más bien, la soldadura
se debería distribuir a lo largo de la superficie planar o tubular
en que yace la discontinuidad.
Cuando el tejido a reparar sea esencialmente un
tubo corporal hueco tal como un vaso sanguíneo, la reparación puede
adicionalmente comprender la inserción de un cilindro hueco de
paredes delgadas de soldadura, en el interior del tubo bajo
reparación, de forma que el cilindro se extienda sobre las partes
cortadas del tubo. Típicamente, al tiempo que se soporta el
conjunto de tubo cortado y cilindro juntos, se dirige energía de la
fuente de energía a través de la pared del tubo para unir el
cilindro a los extremos del tubo. El cilindro puede incorporar un
colorante, como se describirá de ahora en adelante, para atraer
energía al cilindro para soldadura más eficaz. La reparación se
completa por la aplicación de al menos una tira o gota de soldadura
de un lado a otro de los bordes sobre la superficie externa y
tratando la soldadura aplicada como se describió anteriormente.
Cuando la reparación sea con respecto a
superficies de tejido tales como peritoneo, se entenderá que es
menos importante evitar la concentración de soldadura sobre los
bordes.
El método también se puede modificar para la
reparación de otras discontinuidades en superficies de tejido tales
como agujeros, que resultan de accidentes o de cirugía. En esta
forma de la invención la soldadura se puede extender o precortar
para conformar la forma del sitio a reparar, y puede que los bordes
del sitio a reparar no necesiten que se alineen o confinen para la
reparación a efectuar.
Una reparación de nervios típica usando el método
de la invención es una en que los bordes son extremos de un
fascículo de nervios periféricos cortados que se han de unir juntos
o un extremo de un fascículo de nervios y el fascículo de material
de injerto de nervios sustituto. Esta última situación es
particularmente aplicable donde se requiere reparación de nervios
pero una sección del nervio bajo reparación se ha dañado severamente
o no está disponible, de forma que los extremos disponibles del
fascículo están demasiado lejos uno de otro para que se unan
directamente. La naturaleza real del daño sustentado por el nervio
y si la reparación es una reparación primaria o secundaria, son
factores que afectan a la recuperación pero en cualquier caso los
bordes de los fascículos del nervio que se han de unir están
cortados limpiamente en ángulos rectos previo a la unión.
La aplicación de la soldadura como una tira o
tiras, con espacio en medio para coadaptación natural de las
superficies mismas permite que se revascularice el nervio bajo
reparación. La soldadura circunferencial, por comparación, puede
presentar el procedimiento de curación natural del cuerpo y así
reducir el acceso capilar sanguíneo necesario para el área de
reparación. Las técnicas de soldadura por láser y suturación
cuentan por último con que el cuerpo regenere tejido conjuntivo para
soportar el nervio junto después de fallo de las conexiones bien de
soldadura o de sutura y se reemplacen por el procedimiento de
curación. Los autores presentes han mostrado en experimentos in
vivo que se puede conseguir regeneración exitosa por los métodos
de la presente invención sin restricción sobre el movimiento de
tejido circundante después de la operación. En el caso de operación
de reparación de nervios en pacientes humanos es rutina restringir
inicialmente los movimientos de las uniones de los miembros operados
para favorecer la reducción de tensión de un lado a otro del sitio
de reparación.
Soldaduras biológicas, biodegradables, típicas,
útiles en el método de la invención incluyen soldaduras de
proteína.
Se prevé que otras biomoléculas que se encuentran
en la naturaleza se puedan usar como alternativas. Se podían usar
análogos adicionales de polipéptidos biodegradables, biológicos.
Los análogos de polipéptidos biodegradables, biológicos, útiles en
la invención incluyen polipéptidos sintéticos y otras moléculas
capaces de formar una "cola" viscosa que no reaccione
adversamente dentro del tejido que experimenta reparación.
La soldadura de proteína puede ser una
composición de soldadura sólida o una fluida.
Las composiciones de soldadura de proteínas,
fluidas, útiles en soldadura de tiras, típicamente comprenden entre
100 y 120% en masa de proteína en relación con agua.
Preferiblemente, las soldaduras de proteína fluidas comprenden entre
100 y 110% en masa de proteína en relación con agua.
La tira de soldadura fluida tiene típicamente 50
a 200 \mum de espesor. Su longitud se selecciona para adaptar la
unión a formar pero típicamente es del orden de 2 a 3 mm de
longitud. Típicamente se pinta de un lado a otro de la unión.
Las composiciones de soldadura de proteínas,
sólidas, útiles en soldadura de tiras, típicamente comprenden entre
120 y 230% en masa de proteína en relación con agua.
Preferiblemente la tira comprende 170 a 230% en masa de proteína y
más preferiblemente aproximadamente 210% en masa.
Se entenderá que proteínas diferentes tendrán
diferentes grados de solubilidad en agua o soluciones apropiadas
que, a su vez, afectarán la concentración óptima de proteína en la
composición para diferentes soldaduras de proteína. Se pueden
determinar intervalos apropiados para proteínas particulares en
soldaduras tanto sólidas como fluidas, en base a las propiedades
conocidas de las proteínas.
Típicamente, se proporciona la composición de
soldadura de proteínas sólida como una tira preformada. Las tiras
de soldadura sólidas son más fáciles de manipular que las
soldaduras fluidas. Bajo las condiciones de humedad inherentes en
cirugía las soldaduras fluidas pueden correr haciendo difícil que
el láser desnaturalice la soldadura antes de que se haya extendido.
Las tiras de soldadura sólida pueden tener una consistencia similar
a pasta o más rígida. Típicamente se ponen de un lado a otro de la
unión con microforceps. En una forma de la invención, se prevé que
las tiras de soldadura sean sustancialmente rectangulares de forma.
Sin embargo, se pueden requerir tiras de forma diferente en
situaciones de reparación diferentes. También se puede desear
proporcionar una pluralidad de tiras unidas juntas para reparación
eficaz de un gran, o un sustancial, número de sitios de
reparación.
La soldadura de proteínas puede comprender una
proteína única de la que la albúmina es un ejemplo típico o
alternativamente la soldadura puede comprender más de una
proteína.
La albúmina presenta cualidades deseables para la
formación de tiras de soldadura sólida puesto que tiene una alta
proporción de estructura de hoja \beta, que da rigidez a las
tiras. La fibrina es otro ejemplo de una proteína con estructura de
hoja \beta significativa. La incorporación de proteína
\alpha-helicoidal en la soldadura puede favorecer
hacer las tiras más maleables y por lo tanto retener un perfil más
liso que sea particularmente bien adecuado para unir extremos de
nervios. Un ejemplo de una proporción adecuada de proteína
\alpha-helicoidal está entre 1 y 10% en peso de la
proteína usada. Aproximadamente 5% es una cantidad preferida.
Colágeno, tropoelastina y elastina son ejemplos de proteínas
\alpha-helicoidales adecuadas.
Se selecciona la proteína usada en la soldadura
para minimizar el riesgo de reacciones del huésped adversas y por
lo tanto debería ser preferiblemente una proteína autóloga para el
huésped o una proteína extraña de baja antigenicidad.
Las proteínas se pueden obtener a partir de
cualquier fuente adecuada. Se pueden usar proteínas producidas
recombinantemente o sintéticamente así como proteínas que se
encuentran en la naturaleza purificadas.
Preferiblemente, cuando se va a usar la soldadura
con un láser que produce energía a una longitud de onda adecuada,
la composición incluye una sustancia, tal como un colorante, que
absorbe energía a la longitud de onda producida por el láser con que
se va a usar la soldadura. Es preferible elegir la combinación tal
que el colorante u otra sustancia absorba la energía transmitida
por el láser eficazmente pero el tejido subyacente que se ha de
unir absorba la energía transmitida deficientemente. El colorante u
otra sustancia favorece hacer la soldadura específica a la
soldadura usada que, a su vez, ayuda a minimizar el daño por
calentamiento del tejido, accidental, al tejido subyacente.
El procedimiento de unión, donde se usan
soldaduras de proteínas, cuenta con moléculas de proteína que están
disponibles para reticulación. Esto ocurre cuando las moléculas de
proteína están desdobladas. En la irradiación con láser de, por
ejemplo, una soldadura que contiene albúmina y verde de indocianina
en una unión de tejido nervioso, se calientan moléculas de albúmina
a través de la transferencia de energía a partir de las moléculas
de verde de indocianina, permitiendo que se desdoblen y se unan
entre sí y a la superficie de tejido inmediata tal como la membrana
de fascículos.
También pueden ser útiles colorantes que
contrastan con los tejidos que se están reparando, en hacer más
fácil de ver la soldadura. Un ejemplo de un colorante con esta
propiedad es el verde de indocianina.
Cuando el láser usado es un láser de CO_{2}, un
colorante no favorecerá la transferencia de energía, ya que la
transferencia de energía es por absorción de agua.
La energía proporcionada por la fuente de energía
debería ser suficiente para unir la soldadura, para formar la
soldadura al tiempo que se minimiza el daño al tejido subyacente.
La temperatura requerida para desnaturalizar una soldadura de
proteínas es típicamente al menos 50ºC y puede superar 100ºC. Un
intervalo preferido es 50º a 90ºC. Un intervalo particularmente
preferido es 80º a 90ºC.
El tiempo de tratamiento para cada unión a
efectuar puede variar dependiendo de factores tales como
condiciones ambientales, altitud, y por supuesto la naturaleza del
tejido que se ha de unir. La duración del tratamiento es típicamente
corta. Un pase de 30 segundos por tratamiento con láser de una tira
de 0,4 mg es un ejemplo del tiempo implicado, aunque se entenderá
que se podían requerir tiempos de tratamiento más cortos o más
largos. Se entenderá que la soldadura sólida lleva más tiempo para
desnaturalizarse que la soldadura fluida.
En un segundo aspecto la presente invención
proporciona una composición de soldadura de tejido de proteínas que
comprende proteína soluble en agua y un disolvente que contiene
agua adecuado para la proteína.
En un tercer aspecto la presente invención
proporciona un kit para uso en unión de tejidos que comprende, en
un envase preferiblemente estéril, una pluralidad de tiras de
soldadura de tejido de proteínas y/o formas del segundo aspecto de
la invención. Preferiblemente se incluye una pluralidad de
longitudes de tira y/o tamaños de forma en el envase.
El kit preferiblemente incluye medios para
manipulación estéril de las tiras. El kit también incluye
preferiblemente medios para medir las tiras.
El kit también puede comprender una fuente de
energía tal como un sistema de láser acoplado de fibra.
La Figura 1 muestra la estructura de un nervio
periférico en forma esquemática.
La Figura 2 muestra la unión de un nervio
periférico por técnicas de microsuturación de la técnica
anterior.
Las Figuras 3 a) y b) muestran en forma
esquemática unión de un fascículo de nervios con a) soldadura
fluida y b) tiras sólidas.
La Figura 4 muestra el sitio de reparación de un
nervio tibial de 0,3 mm de diámetro inmediatamente después de: a)
soldadura de tira por láser de diodo, y b) microsuturación.
La Figura 5a muestra una soldadura de nervio
tibial de rata por los métodos de soldadura por láser de la
presente invención. La soldadura y la membrana se desnaturalizan
pero no ha tenido lugar cambio significativo de los axones (Giemsa
x100).
La Figura 5b muestra un nervio ciático de rata
unido por microsuturación usando nilón 10-0. Tiene
lugar daño perineural y axonal localizado.
La Figura 6 muestra en forma esquemática la unión
de un vaso sanguíneo usando cilindro de soldadura sólida,
biodegradable, interno y tiras de soldadura sólida externas.
La Figura 7 muestra en forma esquemática un corte
transversal de un fascículo de nervios reparado.
La Figura 8 muestra el método usado para medir la
resistencia a la tracción de nervios reparados.
La Figura 9 muestra una tira de soldadura sólida
posicionada sobre un nervio tibial de rata cortado justo previo a
la soldadura por láser.
La Figura 10a muestra regeneración de axones
mielinados en una reparación de nervios por láser que se ha
regenerado durante 3 meses.
La Figura 10b muestra tejido fibroso alrededor de
una sutura en un nervio suturado que se ha regenerado durante 3
meses.
La Figura 11 muestra resultados de potencial de
acción muscular por nervios reparados.
La reparación de tejido se lleva a cabo usando un
láser para activar una soldadura de proteínas aplicada de un lado a
otro de los bordes del tejido que se ha de unir. Esta soldadura se
desnaturaliza en irradiación con láser y se une consigo misma y la
membrana inmediata para formar la unión. El procedimiento se muestra
esquemáticamente en las Figuras 3 y 7 para una reparación de un
fascículo de nervios. La soldadura se aplica en tiras
longitudinales de un lado a otro de la unión.
La reparación de tejidos nerviosos cortados se
lleva a cabo por la colocación de soldadura de un lado a otro de
los bordes cortados y exposición de la soldadura a láser como se
describió anteriormente. Para reparar tejido nervioso sin daño a los
contenidos del nervio es deseable evitar concentrar la soldadura
sobre los bordes, ya que se pueden dañar los contenidos del nervio
extruido. Más bien la soldadura se debería distribuir de un lado a
otro de la superficie planar o tubular en que yace la
discontinuidad.
Cuando se reparan tubos corporales huecos es
preferible insertar un cilindro interno de soldadura en el tubo, de
forma que yazca en medio la discontinuidad. Los extremos cortados
del tubo se colocan sobre extremos opuestos del cilindro de
soldadura. La disposición se muestra en la Figura 6. Se puede
llevar a cabo entonces el tratamiento con láser para causar la
unión del cilindro al tubo que se está uniendo al tiempo que se
soporta la disposición en el lugar. Si hay un buen ajuste entre el
tubo y el cilindro puede que no se requiera esta etapa de láser. La
unión se completa por la adición de soldadura externa como para
reparaciones de nervios.
Las superficies tales como peritoneo, son planos
de tejido en que se pueden conseguir uniones sin suturas por la
aplicación de soldadura de un lado a otro de las discontinuidades
que se han de unir y soldar como se describió anteriormente. En este
caso es menos importante evitar concentración de soldadura sobre
los bordes.
Para desnaturalizar la soldadura de proteínas, se
usa un diodo láser GaAs/GaA1As con una potencia nominal de 250 mW
(Spectra Diode Labs, San Jose, California). La luz del láser se
acopla en una fibra óptica con núcleo de 100 \mum de diámetro que
se soporta manualmente en un soporte de fibra. El diodo se hace
funcionar en modo continuo a 75 mW durante la soldadura por láser.
Debido a que este láser es Clase 3b, y no es seguro para los ojos,
se deben llevar gafas protectoras en todo momento cuando se usa
este láser.
Una soldadura de proteínas adecuada es una mezcla
de agua, albúmina y colorante (ICG) verde de indocianina (Becton
Dickinson, Missouri). El verde de indocianina tiene un coeficiente
de absorción máxima a una longitud de onda de 805 nm de 2 x 10^{5}
M^{-1} cm^{-1}. Los porcentajes de albúmina y colorante
comparados con el agua fueron 110% y 0,6% respectivamente para
soldadura fluida. Se usó 210% de albumen en la preparación de tiras
de soldadura. Es de notar que el colorante ICG parece unirse
preferentemente con la albúmina asegurando que se transfiera
eficazmente el calor para desnaturalizar la soldadura de
proteína.
Cuando se lleva a cabo la cirugía, es preferible
un microscopio quirúrgico o alguna forma de ampliación. Para una
reparación de soldadura por láser de una unión tubular se coloca
una porción de material de gasa fina bajo la unión para favorecer
una técnica de rotación. Los bordes de tejido se preparan de
acuerdo con técnicas estándar para el tipo de tejido y geometría de
la reparación.
Usando microforceps, los bordes se alinean y se
cosen juntos. Se "pinta" una tira de 2 mm de largo, de
soldadura fluida, longitudinalmente de un lado a otro de la unión
de los bordes usando una aguja de calibre 30 recubierta
recientemente en la soldadura. Alternativamente se pone una
soldadura de tira de un lado a otro de la unión usando microforceps.
El método de reparación de tiras sólidas es más simple. Se soporta
una tira sólida en microforceps especiales y se coloca de un lado a
otro de la unión paralela a la longitud de las estructuras que se
han de unir. La salida del láser se dirige después a la tira sólida
y la soldadura sólida cambia de color indicando desnaturalización,
que causa que se adhiera a la membrana de tejido subyacente. El
procedimiento se repite con tiras adicionales para asegurar una
unión fuerte de superficie.
Se usa después la salida del láser de diodo a
partir de fibra óptica de 100 \mum, en un pase continuo de 30
segundos para desnaturalizar soldadura sólida en una soldadura de
tira. A una potencia de salida del diodo de 75 mW, la tira de
soldadura sólida se vuelve parda en la superficie y opaca debajo a
partir del pase único, indicando desnaturalización. Cuando se usa
soldadura fluida tiene lugar desnaturalización más rápidamente. Un
pase de láser de dos segundos puede ser suficiente para
desnaturalizar la soldadura fluida. Normalmente se aplica una
segunda capa de soldadura fluida a la tira para aumentar la
resistencia de la soldadura y se repite el pase de láser de dos
segundos. Después se usa la gasa bajo la unión con los microforceps
para rotar la unión de forma que se puedan aplicar otras tiras.
- -
- Albúmina (polvo de fracción V de Sigma, St. Louis, Missouri) al menos 100% a 110% en peso comparado con agua.
- -
- Verde de indocianina (Becton Dickinson, Missouri) aproximadamente 0,6% en peso comparado con agua.
- -
- Agua (grado inyección)
Procedimiento: Se preparó una solución de ICG en
agua en un minitubo. Se añadió la albúmina al tubo. Se mezclaron la
albúmina y la solución usando un mezclador vórtex. Esto causa que
la estructura de la proteína cambie conduciendo a la unión de
moléculas de proteína unas con otras más bien que a moléculas de
agua.
- -
- Albúmina (polvo de fracción V de Sigma, St. Louis, Missouri) 210% en peso comparado con agua.
- -
- Verde de indocianina (Becton Dickinson, Missouri) aproximadamente 0,6% en peso comparado con agua.
- -
- Agua (grado inyección)
Procedimiento: El ICG se disolvió en el agua y se
añadió la albúmina a esta solución en un minitubo. Esta
combinación se mezcló usando un mezclador vórtex y una aguja. La
combinación se mezcló (durante aproximadamente 3 minutos) hasta que
se hizo una pasta verde, maleable, homogénea. La fase de la mezcla
cambió bajo esta técnica de mezclado para proporcionar una
composición casi sólida, con proteína principalmente para uniones
de proteína más bien que proteína para uniones de agua. El sistema
no fue una solución más tiempo en esta fase. La pasta de proteína
fue maleable y se podía cortar en tiras durante hasta
aproximadamente 30 minutos después del mezclado.
Al cabo de este tiempo la pasta se endureció
debido a deshidratación y se hizo demasiado dura para cortarse.
Las tiras resultantes tenían entre 50 y 100
\mum de espesor, aproximadamente 0,6 mm de ancho y 1,5 a 3,5 mm
de largo. Se entenderá que donde se usan las tiras en componer
fascículos de nervios, el ancho y la longitud deseados se dictan por
las dimensiones de los fascículos. El ancho, espesor y longitud
mencionados aquí son los adecuados para uso con un nervio tibial de
rata que tiene un diámetro de 0,2 a 0,8 mm. La relación de ancho de
tira a circunferencia de nervio es típicamente:
Ancho \sim 1/5
circunferencia
Se ha usado un láser de diodo de 75 mW acoplado
con fibra óptica de núcleo de 100 \mum funcionando a una longitud
de onda de 800 nm, junto con una soldadura de proteína para hacer
tiras nervios tibiales de rata cortados de soldadura, reduciendo el
largo tiempo de operación requerido para la reparación de nervios
microquirúrgica. Se produce soldadura por desnaturalización con
láser selectiva de la soldadura a base de proteína que contiene el
colorante verde de indocianina. El tiempo de operación para
soldadura por láser fue 10 +/- 5 min. (n=24) comparado con 23 +/- 9
min (n=13) para microsuturación. La técnica de soldadura por láser
dió como resultado soldaduras de patente con una resistencia a la
tracción de 15 +/- 5 g, al tiempo que los nervios microsuturados
tenían una resistencia a la tracción de 40 +/- 10 g. La histología
patológica de los nervios soldados por láser, conducida
inmediatamente después de cirugía, indicó adhesión de la soldadura a
la membrana externa, con daño mínimo a los axones internos de los
nervios. Un estudio in vivo, con un total de cincuenta y
siete ratas wistar macho adultas, comparó nervios tibiales
reparados por soldadura por láser con reparación por microsutura
convencional. Se caracterizaron veinticuatro nervios soldados por
láser y trece nervios suturados a tres meses y mostraron
regeneración exitosa con Potencial de Acciones Musculares Compuestas
medias (CMAP) de 2,4 +/- 0,7 mV y 2,7 +/- 0,8 mV, respectivamente.
La histología patológica del estudio in vivo, confirmó la
regeneración comparable de axones en nervios operados con láser y
sutura. Se presenta una técnica anastomótica a base de láser más
rápida, menos dañina y de mayor duración.
Se usó un total de cincuenta y siete ratas Wistar
macho, adultas, jóvenes, pesando entre 400 y 550 g al principio, en
este estudio. Treinta y cuatro ratas recibieron reparación de
soldadura por láser y las veintitrés restantes recibieron
reparación por microsutura estándar, como se detalla a continuación.
Se usaron cinco ratas de cada método de reparación para mediciones
de resistencia a la tracción y microscopía óptica inmediatamente
después de cirugía y se sometieron las treinta y siete ratas
restantes a un estudio de recuperación funcional usando
electrofisiología e histología patológica.
Para desnaturalizar la soldadura de proteína, se
usó un diodo láser GaAs/GaA1As con una potencia nominal de 250 mW
(Spectra Diode Labs, San José, California). La luz del láser se
acopló en una fibra óptica de núcleo de 100 \mum de diámetro que
se soportó manualmente en un soporte de fibra. El láser de diodo se
montó sobre un disipador de calor y la corriente y temperatura del
diodo se controlaron por un diodo conductor
SDL-800. El diodo se hizo funcionar en modo continuo
a 75 mW durante el soldado por láser, correspondiendo a una
densidad de potencia máxima de 955 W/cm en el tejido. La potencia de
salida del láser se midió con un medidor de corriente Scientech
(Boulder, Colorado). Debido a que este láser es Clase 3b, y no es
seguro para los ojos, se llevaron puestas gafas protectoras todo el
tiempo cuando se usaba este láser.
La soldadura usada en este estudio fue una mezcla
de proteínas a base de albúmina, que también contenía colorante
(ICG) verde de indocianina (Becton Dickinson, Missouri). El verde de
indocianina tiene un coeficiente de absorción máxima a una longitud
de onda de 805 nm de 2 x 10^{5} M^{-1} cm^{-1}. Es de notar
que este colorante parece unirse preferencialmente con las
proteínas asegurando que se transfiere eficazmente calor para
desnaturalizar la soldadura de proteínas.
Se mantuvo anestesia durante la cirugía usando
una mezcla que contenía fluotano (4% durante inducción, 2% después)
en O_{2} (1l/min). Usando un microscopio quirúrgico OPMI 7
(Zeiss, Alemania Oeste) se expuso el nervio ciático de la pierna
izquierda en la escotadura ciática de forma que se pudieran
distinguir las ramas del nervio. Se expuso la rama tibial, justo
por debajo de la escotadura ciática, a partir del tejido subcutáneo
circundante durante una longitud de 1 cm. Para una reparación de
soldadura por láser, se colocó una porción de material de gasa
delgada bajo el nervio tibial para favorecer la rotación del
nervio, y para la reparación de sutura, se colocó una porción de
plástico bajo el nervio para permitir suturación más fácil. El
nervio tibial se cortó después con microtijeras dentadas y se dejó
durante 3 minutos para que tuviera lugar la extrusión normal de
axoplasma. Este después se cortó con las microtijeras dentadas como
se requería, después de lo cual se reparó el nervio con, bien cuatro
tiras de soldadura por láser o cuatro suturas perineuriales
10-0.
El método de soldadura por láser implicaba
alinear ambos muñones del nervio cortado con microforceps, después
se "pintó" una tira de 2 mm de largo de soldadura,
longitudinalmente, de un lado a otro de la unión de los extremos
cortados usando una aguja de calibre 30 recubierta recientemente en
la soldadura (Figura 3a). Se usó entonces la salida del láser de
diodo a partir de la fibra óptica de 100 \mum, en un pase de dos
segundos continuo, para desnaturalizar la soldadura en una soldadura
de tira. A una potencia de salida del diodo de 75 mW, se observó
que la soldadura se volvía parda en la superficie y opaca debajo a
partir del único pase, indicando desnaturalización. Se aplicó una
segunda capa de soldadura a la tira y se repitió el pase de láser
de dos segundos. Después se usó la gasa bajo el nervio con los
microforceps para rotar el nervio de forma que se podían aplicar
otras tres tiras de dos capas, cada una aproximadamente 90º
separadamente.
Se operaron siete ratas con una versión más
avanzada de la soldadura orgánica, que aún era una mezcla de
proteínas a base de albúmina pero tenía la ventaja de deshidratarse
y cortarse en tiras rectangulares sólidas (Figura 9). El área
superficial media de las tiras de soldadura fue 1,5 +/- 0,5 mm^{2}
y el espesor fue 0,15 +/- 0,01 mm. Se colocaron cuatro tiras a lo
largo del nervio anastomizado tibial y después se irradió con el
mismo procedimiento adoptado para la soldadura fluida. La tira
sólida se fusionó con el perineurio del nervio tibial por la
radiación láser, uniendo las extremidades del nervio seccionado.
Para toda la operación se registró el tiempo de
anastomosis y se tomó un registro fotográfico para referencia
posterior. Los animales se pusieron en sus jaulas sin restricción
de movimiento durante 3 meses.
En diez de las ratas operadas, se recogió la
porción de 1 cm de largo de los nervios reparados por láser y
sutura, inmediatamente, para mediciones de resistencia a la
tracción. Se ató seda fina a cada extremo del nervio tibial. Un
extremo se unió después a un transductor de fuerza calibrado
(FT30C, Grass Instruments, Quincy, Mass) y el otro a un traductor
conducido por tornillos (Figura 8). A medida que se giraba el
tornillo el traductor estiraría el nervio de una forma lenta y
firme. Se observó la tensión aplicada en un osciloscopio conectado
a la salida del transductor de fuerza. Se aplicó tensión hasta que
se cortó el nervio, y se registró la fuerza de rotura. Los nervios
se mantuvieron húmedos, ya que en el secado, se puede aumentar la
resistencia a la tracción.
Para microscopía óptica se fijó el sitio de
anastomosis de los nervios tibiales, en formalina al 5%, alcohol
deshidratado, embebido en parafina, seccionado longitudinalmente y
marcado con, bien tricromo de Masson o Giemsa.
Tres meses después de la operación se
reanestesiaron las ratas usando el método descrito en la sección 3.
Se expuso el sitio y se observó la anastomosis del nervio tibial.
Después se cortaron las otras dos ramas del nervio ciático, los
nervios peroneal y sural, de forma que sólo la rama del nervio
tibial del nervio ciático pudiera conducir estimulación eléctrica
del nervio ciático a los músculos del pie trasero. Dos días más
tarde se colocaron las ratas sobre su lado y se aislaron de la mesa
por un vendaje quirúrgico plegado. Se usó una lámpara de
infrarrojos para mantener su temperatura rectal por encima de
36ºC.
Se usó un electromiográfo clínico (Cadwell Sierra
EMG/EP) para estimulación y registro. Se pusieron dos electrodos de
estimulación de calibre 25 a 10 mm separadamente en cada lado del
nervio ciático por encima de la escotadura ciática, cerca de la
cadera. El nervio se activó usando pulsos rectangulares (0,1 a 0,3
ms; 0 a 30 mA; 1 Hz). Se registraron los potenciales de acción
muscular compuesta (CMAPs) a partir de los músculos plantares del
pie en respuesta a estimulación supramaximal del nervio ciático. Se
usó una serie de tres electrodos de registro. Se insertó un
electrodo de masa de calibre 25 subcutáneamente entre los
electrodos^{1, 2} de estimulación y de registro. Se insertó un
electrodo de referencia de calibre 30 en la zona terminal del talón
y se insertó un electrodo de registro de calibre 30 en los músculos
plantares del pie. Se registraron y se procesaron los CMAPs para
determinar su valor de pico de onda negativo.
Se llevó a cabo histología patológica de los
nervios suturados y soldados por láser, después del ensayo
electrofisiológico con el mismo procedimiento que se adoptó en la
sección 4.
A la terminación de la cirugía todas las
anastomosis fueron un éxito. Se encontró que el procedimiento de
operación fue más fácil por soldado por láser que por
microsuturación. Esto dio como resultado tiempos de operación más
cortos para reparaciones de soldadura por láser {10 \pm 5 min
(n=24)} que {23 \pm 9 min (n=13)} para reparaciones por
microsutura. La resistencia a la tracción de cinco nervios reparados
por soldadura por láser, inmediatamente después de la operación,
fue 15 \pm 5 g y la resistencia a la tracción de los nervios
microsuturados, 40 \pm 10 g.
El examen histopatológico de los sitios de
anastomosis inmediatamente después de cirugía demostraron que la
soldadura por láser a base de albúmina y colorante ICG se unía bien
con la membrana externa del nervio, el perineurio, al tiempo que los
axones internos permanecían sin calentarse. En la Figura 10a, se
muestra en corte una soldadura de fascículo de nervios tibiales
producida por la soldadura por láser de diodo y albúmina/colorante
ICG. Tanto la soldadura de proteínas como el perineurio se habían
desnaturalizado formando el enlace. En el lado inferior del enlace,
el axoplasma tenía su estructura ondulada normal. Obsérvese que
puesto que el calentamiento se concentró en el colorante, sólo tuvo
lugar desnaturalización de la soldadura y el perineurio
adyacente.
Uno de los aspectos prometedores de la
anastomosis con láser es el potencial para daño reducido al
axoplasma por eliminación de la necesidad de suturas. En la Figura
5b se muestra un corte que muestra el efecto de microsuturar
fascículos de nervios usando nilón 10-0. Este corte
marcado con Giemsa, indica extrusión de axones en la unión, así
como daño perineurial y axonal localizado debido a la sutura.
La histología patológica a 3 meses mostró
regeneración de axones mielinados en reparaciones de nervios por
láser (Figura 10a), sin discontinuidad de, bien las fibras y sus
envolturas o el perineurio fibroso. No se vio evidencia de
inflamación o fagocitosis de mielina. Se había conseguido
restauración completa, como se evaluó por microscopía óptica, de la
integridad histológica del nervio tibial por la soldadura por
láser.
Los nervios suturados también mostraron
anastomosis exitosa con regeneración de axones mielinados, sin
embargo, era aún evidente que el hilo de nilón estaba rodeado por
tejido fibroso, que creaba un obstáculo a la direccionalidad de los
axones regenerados (Figura 10b).
Las mediciones electrofisiológicas del estudio
in vivo se realizaron sobre veinticuatro ratas reparadas por
soldadura por láser y trece ratas reparadas por microsutura con
tres meses de recuperación. De este grupo todas las veinticuatro
anastomosis de soldadura por láser eran patentes así como lo eran
las trece anastomosis de microsutura. La amplitud media de los
potenciales de acción muscular resultantes de estimulación
supramaximal del nervio por encima del sitio de reparación fue 2,4
+/- 0,7 mV para los veinticuatro nervios tibiales soldados por
láser y 2,7 +/- 0,8 mV para los trece nervios microsuturados. Se
registró el potencial de acción muscular normal producido por
estimulación del nervio tibial supramaximalmente, a 8,7 \pm 3 mV
a partir de diez ratas (Figura 11).
Clínicamente, cuando se corta un nervio
periférico principal, cuarenta o más fascículos pueden necesitar
que se vuelvan a unir individualmente. Con tres o cuatro
microsuturas por fascículo, la suturación tiende a prolongarse, ya
que debe ser meticulosa. En un injerto de nervio, donde se
necesitan dos anastomosis, el tiempo de suturación se dobla. Hemos
buscado un método adecuado de anastomosis de nervios que pueda al
menos duplicar el resultado final pero fue significativamente más
rápido que la presente técnica de microsutura cosida a mano. Un
plus del método de soldadura por láser descrito fue la falta
demostrada de cambio en los componentes axonales por debajo de la
capa perineurial desnaturalizada vista inmediatamente después de la
cirugía. Tres meses más tarde se demostró regeneración comparable
por estudios de conducción nerviosa electrofisiológicos.
La presente invención tiene aplicación en el
campo de la cirugía donde es de aplicación en unir juntos bordes de
tejido, en aplicaciones de extremo a extremo, lado a extremo y lado
a lado.
1) R. Malik, S. Ho y D.B.
Church: A new method for recording and analysing evoked motor
potential from dogs. Journal of Small Animal Practice
(1989) 30, 13-19.
2) R. Malik, S. Ho: Motor nerve
conduction parameters in the cat. Journal of Small Animal
Practice (1989) 30, 396-400.
3) Laser activated protein bands for peripheral
nerve repair. A Lauto, R Trickett, R Malik, J
Dawes, E Owen. Semana Óptica Biomédica Europea -BIOS
Europe 195. Septiembre 12-16, 1995 (Acta en
Prensa).
Claims (33)
1. Uso de, bien 100-120 partes
en peso de proteína soluble en agua por cada 100 partes en peso de
agua en un disolvente que contiene agua, en la fabricación de una
soldadura biológica, biodegradable, fluida, para unir tejido, o
120-230 partes en peso de proteína soluble en agua
por cada 100 partes en peso de agua en un disolvente que contiene
agua en la fabricación de una soldadura biológica, sustancialmente
sólida, para unir tejido.
2. Uso de acuerdo con la reivindicación 1, en el
que el tejido es tejido nervioso.
3. Uso de acuerdo con la reivindicación 1, en el
que el tejido que se han de unir es una anastomosis de un tubo
biológico incluyendo: venas, arterias, vasos linfáticos, vaso
eferente, trompas de Falopio, vías biliares, tubos del aparato
digestivo, el uréter, la uretra, conductos lagrimales o
bronquios.
4. Uso de acuerdo con la reivindicación 1, en el
que el tejido que se han de unir es una reparación de una incisión
o desgarro de un órgano biológico incluyendo riñones, hígado o
bazo, o de una superficie biológica tal como el peritoneo o la
piel.
5. Uso de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, en el que la soldadura incorpora una
sustancia que absorbe energía a partir de una fuente de energía
altamente comparable con la absorción de la energía por el
tejido.
6. Uso de acuerdo con la reivindicación 5, en el
que la sustancia es un colorante.
7. Uso de acuerdo con las reivindicaciones 5 ó
6, en el que la fuente de energía es un láser.
8. Uso, de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7, de 100-120 partes en peso
de proteína por cada 100 partes en peso de disolvente.
9. Uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7, de 120-230 partes en peso
de proteína por cada 100 partes en peso de disolvente.
10. Uso de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9, en el que el disolvente es agua.
11. Uso de acuerdo con cualquier reivindicación
precedente, en el que la proteína es albúmina.
12. Uso de acuerdo con cualquier reivindicación
precedente, en el que la proteína contiene estructura de
hoja-\beta.
13. Uso de acuerdo con la reivindicación 12, en
el que la estructura de hoja-\beta imparte rigidez
a la soldadura.
14. Uso de acuerdo con cualquier reivindicación
precedente, en el que la proteína tiene entre 1 y 10% en peso de
contenido \alpha-helicoidal.
15. Un método para preparar una soldadura
biológica, biodegradable, para unir tejido, que comprende mezclar
bien 100-120 partes en peso de proteína soluble en
agua con 100 partes en peso de agua en un disolvente que contiene
agua, siendo dicha soldadura fluida, o 120-230
partes en peso de proteína soluble en agua con 100 partes en peso
de agua en un disolvente que contiene agua, siendo dicha soldadura
sustancialmente sólida.
16. Un método de acuerdo con la reivindicación
15, en el que la soldadura comprende además una sustancia que
absorbe energía a partir de una fuente de energía altamente
comparable con la absorción de la energía por el tejido.
17. Un método de acuerdo con la reivindicación
16, en el que la sustancia es un colorante.
18. Un método de acuerdo con la reivindicación
16 ó 17, en el que la fuente de energía es un láser.
19. Un método de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 15 a 18, para preparar una soldadura de tejido
fluida que comprende mezclar 100-120 partes en peso
de proteína con 100 partes en peso de disolvente.
20. Un método de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 15 a 18, para preparar una soldadura de tejido
sólida que comprende mezclar 120-230 partes en peso
de proteína con 100 partes en peso de disolvente.
21. Una composición de soldadura de tejido, de
proteínas, fluida, que comprende 100 a 120 partes en peso de
proteína soluble en agua por cada 100 partes en peso de agua en un
disolvente que contiene agua.
22. Una composición de soldadura de tejido de
proteínas de acuerdo con la reivindicación 21, que comprende 100 a
110 partes en peso de proteína.
23. Una soldadura de tejido de proteínas
sustancialmente sólida que comprende 120 a 230 partes en peso de
proteína soluble en agua por cada 100 partes en peso de agua en un
disolvente que contiene agua.
24. Una soldadura de proteínas de acuerdo con
la reivindicación 23, que comprende 170 a 230 partes en peso de
proteína.
25. Una soldadura de proteínas de acuerdo con
la reivindicación 24, que comprende aproximadamente 210 partes en
peso de proteína.
26. Una soldadura de proteínas de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 21-25, en la que
el disolvente es agua.
27. Una composición de soldadura de proteínas
de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones
21-26, que comprende además una sustancia que
absorbe energía a partir de una fuente de energía altamente
comparable con la absorción de la energía por el tejido.
28. Una composición de soldadura de proteínas
de acuerdo con la reivindicación 27, en la que la sustancia es un
colorante.
29. Una soldadura de proteínas de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 21-28, en la que
la proteína es albúmina.
30. Una soldadura de proteínas sustancialmente
sólida de acuerdo con la reivindicación 23, en la que la proteína
contiene estructura de hoja-\beta.
31. Una soldadura de proteínas sustancialmente
sólida de acuerdo con la reivindicación 30, en la que la estructura
de hoja-\beta imparte rigidez a la soldadura.
32. Una soldadura de proteínas sustancialmente
sólida de acuerdo con la reivindicación 30, en la que la proteína
tiene entre 1 y 10% en peso de contenido
\alpha-helicoidal.
33. Un kit para unir tejidos que comprende, en un
envase preferiblemente estéril, una pluralidad de tiras y/o formas
de una soldadura de proteínas de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 23 a 32.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
AUPN0667A AUPN066795A0 (en) | 1995-01-20 | 1995-01-20 | Method of repair |
AUPN066795 | 1995-01-20 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2201167T3 true ES2201167T3 (es) | 2004-03-16 |
Family
ID=3785053
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES96900477T Expired - Lifetime ES2201167T3 (es) | 1995-01-20 | 1996-01-19 | Soldadura para la reparacion de tejidos. |
Country Status (11)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US6211335B1 (es) |
EP (1) | EP0804123B1 (es) |
JP (1) | JPH11501825A (es) |
AT (1) | ATE241319T1 (es) |
AU (1) | AUPN066795A0 (es) |
CA (1) | CA2210894A1 (es) |
DE (1) | DE69628408T2 (es) |
ES (1) | ES2201167T3 (es) |
HK (1) | HK1003613A1 (es) |
NZ (1) | NZ298721A (es) |
WO (1) | WO1996022054A1 (es) |
Families Citing this family (68)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AUPN066795A0 (en) * | 1995-01-20 | 1995-02-16 | Macquarie Research Limited | Method of repair |
EP1018983A4 (en) * | 1997-02-07 | 2006-09-27 | Providence Health Sys Oregon | PROCESS FOR PRODUCING BIOMATERIALS |
US5929044A (en) * | 1997-08-14 | 1999-07-27 | Cornell Research Foundation | Protein solder composition and method of use |
US6323037B1 (en) | 1998-04-06 | 2001-11-27 | Cornell Research Foundation, Inc. | Composition for tissue welding and method of use |
AU768533C (en) * | 1998-06-18 | 2005-12-08 | Macquarie Research Limited | Method of tissue repair II |
AUPP421498A0 (en) * | 1998-06-18 | 1998-07-09 | Macquarie Research Limited | Method of tissue repair |
EP1105167A1 (en) * | 1998-08-21 | 2001-06-13 | Tissuemed Limited | Activatable sheet for topical, therapeutic use |
US6626899B2 (en) | 1999-06-25 | 2003-09-30 | Nidus Medical, Llc | Apparatus and methods for treating tissue |
US6680063B1 (en) | 1999-10-08 | 2004-01-20 | Providence Health System-Oregon | Biocompatible albumin lamina and method |
GB0002719D0 (en) * | 2000-02-08 | 2000-03-29 | Tissuemed Ltd | Thermal ablation of tissue |
US6296607B1 (en) * | 2000-10-20 | 2001-10-02 | Praxis, Llc. | In situ bulking device |
US7033348B2 (en) * | 2001-04-10 | 2006-04-25 | The Research Foundation Of The City University Of New York | Gelatin based on Power-gel™ as solders for Cr4+laser tissue welding and sealing of lung air leak and fistulas in organs |
AU2002343413A1 (en) | 2001-09-26 | 2003-04-07 | Rice University | Optically-absorbing nanoparticles for enhanced tissue repair |
US8501165B2 (en) | 2001-12-12 | 2013-08-06 | Promethean Surgical Devices Llc | In situ bonds |
US6723095B2 (en) | 2001-12-28 | 2004-04-20 | Hemodynamics, Inc. | Method of spinal fixation using adhesive media |
US8021359B2 (en) | 2003-02-13 | 2011-09-20 | Coaptus Medical Corporation | Transseptal closure of a patent foramen ovale and other cardiac defects |
US7257450B2 (en) * | 2003-02-13 | 2007-08-14 | Coaptus Medical Corporation | Systems and methods for securing cardiovascular tissue |
US20040267191A1 (en) * | 2003-03-27 | 2004-12-30 | Cierra, Inc. | Methods and apparatus for treatment of patent foramen ovale |
US7293562B2 (en) * | 2003-03-27 | 2007-11-13 | Cierra, Inc. | Energy based devices and methods for treatment of anatomic tissue defects |
US7972330B2 (en) | 2003-03-27 | 2011-07-05 | Terumo Kabushiki Kaisha | Methods and apparatus for closing a layered tissue defect |
US7165552B2 (en) * | 2003-03-27 | 2007-01-23 | Cierra, Inc. | Methods and apparatus for treatment of patent foramen ovale |
US6939348B2 (en) * | 2003-03-27 | 2005-09-06 | Cierra, Inc. | Energy based devices and methods for treatment of patent foramen ovale |
US7186251B2 (en) | 2003-03-27 | 2007-03-06 | Cierra, Inc. | Energy based devices and methods for treatment of patent foramen ovale |
US8021362B2 (en) * | 2003-03-27 | 2011-09-20 | Terumo Kabushiki Kaisha | Methods and apparatus for closing a layered tissue defect |
US7311701B2 (en) * | 2003-06-10 | 2007-12-25 | Cierra, Inc. | Methods and apparatus for non-invasively treating atrial fibrillation using high intensity focused ultrasound |
US20050129733A1 (en) * | 2003-12-09 | 2005-06-16 | Milbocker Michael T. | Surgical adhesive and uses therefore |
WO2005079690A1 (ja) * | 2004-02-20 | 2005-09-01 | Keio University | レーザ溶着術を用いたシース抜去孔閉鎖装置 |
US7976539B2 (en) * | 2004-03-05 | 2011-07-12 | Hansen Medical, Inc. | System and method for denaturing and fixing collagenous tissue |
US7367975B2 (en) | 2004-06-21 | 2008-05-06 | Cierra, Inc. | Energy based devices and methods for treatment of anatomic tissue defects |
US7473252B2 (en) * | 2004-10-07 | 2009-01-06 | Coaptus Medical Corporation | Systems and methods for shrinking and/or securing cardiovascular tissue |
US20060111698A1 (en) * | 2004-11-22 | 2006-05-25 | Kihong Kwon | Apparatus and method for performing laser-assisted vascular anastomoses |
EP1869424A4 (en) * | 2005-04-11 | 2015-01-14 | Terumo Corp | METHOD AND DEVICE FOR CLOSING A LAYER WEBSECTED EFFECT |
WO2007030892A1 (en) * | 2005-09-15 | 2007-03-22 | Avastra Ltd | Method of tissue repair iii |
US20070093804A1 (en) * | 2005-10-17 | 2007-04-26 | Coaptus Medical Corporation | Control systems for patient devices, including devices for securing cardiovascular tissue, and associated methods |
CN101432044A (zh) * | 2006-04-28 | 2009-05-13 | 恩迪尼国际有限公司 | 光消毒装置和方法 |
US9079762B2 (en) | 2006-09-22 | 2015-07-14 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Micro-electromechanical device |
US9289279B2 (en) * | 2006-10-06 | 2016-03-22 | Promethean Surgical Devices, Llc | Apparatus and method for limiting surgical adhesions |
US7914552B2 (en) * | 2006-11-09 | 2011-03-29 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Method of performing an end-to-end anastomosis using a stent and an adhesive |
WO2008065464A2 (en) * | 2006-11-28 | 2008-06-05 | Universita' Degli Studi Di Padova | A method for the pulmonary aerostasis and a device for its application |
US20080140069A1 (en) * | 2006-12-07 | 2008-06-12 | Cierra, Inc. | Multi-electrode apparatus for tissue welding and ablation |
US20080139991A1 (en) * | 2006-12-08 | 2008-06-12 | Ondine International, Ltd. | Method of wound disinfecting and tissue welding |
US7713265B2 (en) | 2006-12-22 | 2010-05-11 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Apparatus and method for medically treating a tattoo |
US8801606B2 (en) | 2007-01-09 | 2014-08-12 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Method of in vivo monitoring using an imaging system including scanned beam imaging unit |
US8273015B2 (en) | 2007-01-09 | 2012-09-25 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Methods for imaging the anatomy with an anatomically secured scanner assembly |
US8216214B2 (en) | 2007-03-12 | 2012-07-10 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Power modulation of a scanning beam for imaging, therapy, and/or diagnosis |
US7995045B2 (en) | 2007-04-13 | 2011-08-09 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Combined SBI and conventional image processor |
US8626271B2 (en) | 2007-04-13 | 2014-01-07 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | System and method using fluorescence to examine within a patient's anatomy |
US20080269205A1 (en) * | 2007-04-27 | 2008-10-30 | Ondine International, Ltd. | Methods to prevent vertical transmission of infectious diseases |
US20100280545A1 (en) * | 2007-05-10 | 2010-11-04 | Seraffix Ltd. | System and method for bonding living tissue |
US20090024107A1 (en) | 2007-05-14 | 2009-01-22 | Promethean Surgical Devices, Llc | Disc annulus closure |
US8160678B2 (en) | 2007-06-18 | 2012-04-17 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Methods and devices for repairing damaged or diseased tissue using a scanning beam assembly |
US7982776B2 (en) | 2007-07-13 | 2011-07-19 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | SBI motion artifact removal apparatus and method |
US9125552B2 (en) | 2007-07-31 | 2015-09-08 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Optical scanning module and means for attaching the module to medical instruments for introducing the module into the anatomy |
US20090035725A1 (en) * | 2007-08-02 | 2009-02-05 | Ondine International, Ltd. | Photodisinfection of oral cavity |
US7983739B2 (en) | 2007-08-27 | 2011-07-19 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Position tracking and control for a scanning assembly |
US7925333B2 (en) | 2007-08-28 | 2011-04-12 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Medical device including scanned beam unit with operational control features |
CN101970049A (zh) * | 2008-02-13 | 2011-02-09 | 安德里亚斯·罗斯 | 提供径向光输出模式的光递送装置 |
US8050520B2 (en) | 2008-03-27 | 2011-11-01 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Method for creating a pixel image from sampled data of a scanned beam imager |
US8332014B2 (en) | 2008-04-25 | 2012-12-11 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Scanned beam device and method using same which measures the reflectance of patient tissue |
US20110152898A1 (en) * | 2008-05-09 | 2011-06-23 | The General Hospital Corporation | Tissue engineered constructs |
CA2732307C (en) | 2008-08-01 | 2017-01-24 | Ondine International Ltd. | Composition and method for treatment of mrsa |
AU2009293172A1 (en) * | 2008-09-19 | 2010-03-25 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Solder formulation and use in tissue welding |
WO2010036617A1 (en) * | 2008-09-23 | 2010-04-01 | Ondine International Holdings Ltd. | Portable photodynamic disinfection light delivery device for catheter disinfection |
US8388613B1 (en) | 2010-04-09 | 2013-03-05 | The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration | Methods and apparatus for microwave tissue welding for wound closure |
US8974444B2 (en) * | 2010-04-20 | 2015-03-10 | Robert R. Alfano | Method for picosecond and femtosecond laser tissue welding |
DE102012008703A1 (de) | 2012-04-13 | 2013-10-17 | Bernhard Franz | Gerät zur Wiederherstellung der Funktion von durchtrennten und / oder verletzten Nerven |
US20220273365A1 (en) * | 2019-08-30 | 2022-09-01 | Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University | Nerve Repair Using Laser Sealing |
US20240245774A1 (en) | 2023-01-25 | 2024-07-25 | Ondine International Ag | Composition and a photodynamic therapeutic method to shorten infectivity period and to induce sustained humoral and cellular t-cell responses against a targeted antigen in infected individuals |
Family Cites Families (35)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4281942A (en) * | 1978-11-13 | 1981-08-04 | General Electric Company | Lubrication system for high speed spline connection and bearing |
US4470776A (en) * | 1979-11-28 | 1984-09-11 | Commercial Shearing, Inc. | Methods and apparatus for gear pump lubrication |
US4493320A (en) | 1982-04-02 | 1985-01-15 | Treat Michael R | Bipolar electrocautery surgical snare |
US5140984A (en) | 1983-10-06 | 1992-08-25 | Proclosure, Inc. | Laser healing method and apparatus |
US4672969A (en) | 1983-10-06 | 1987-06-16 | Sonomo Corporation | Laser healing method |
US5002051A (en) | 1983-10-06 | 1991-03-26 | Lasery Surgery Software, Inc. | Method for closing tissue wounds using radiative energy beams |
US4854320A (en) | 1983-10-06 | 1989-08-08 | Laser Surgery Software, Inc. | Laser healing method and apparatus |
US5409479A (en) | 1983-10-06 | 1995-04-25 | Premier Laser Systems, Inc. | Method for closing tissue wounds using radiative energy beams |
US4669999A (en) * | 1984-08-22 | 1987-06-02 | Sundstrand Corporation | Lubricant delivering and containment overload shearable coupling |
US4600533A (en) | 1984-12-24 | 1986-07-15 | Collagen Corporation | Collagen membranes for medical use |
US4856633A (en) * | 1988-03-31 | 1989-08-15 | Specht Victor J | Wheel hub assembly |
US4973466A (en) * | 1988-06-21 | 1990-11-27 | Chiron Ophthalmics, Inc. | Wound-healing dressings and methods |
US4810126A (en) * | 1988-07-05 | 1989-03-07 | Allied-Signal Inc. | Compact oil slinger and spring loaded retention device |
JPH05502386A (ja) | 1989-09-12 | 1993-04-28 | ザ トラスティーズ オブ コロンビア ユニバーシティ イン ザ シティ オブ ニュー ヨーク | 色素で強化した接着剤をもつレーザーによる組織接合法 |
US5071417A (en) | 1990-06-15 | 1991-12-10 | Rare Earth Medical Lasers, Inc. | Laser fusion of biological materials |
US5292362A (en) * | 1990-07-27 | 1994-03-08 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Tissue bonding and sealing composition and method of using the same |
US5209776A (en) * | 1990-07-27 | 1993-05-11 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Tissue bonding and sealing composition and method of using the same |
US5611794A (en) | 1990-10-11 | 1997-03-18 | Lasersurge, Inc. | Clamp for approximating tissue sections |
JPH06505656A (ja) * | 1991-02-13 | 1994-06-30 | フュージョン メデイカル テクノロジーズ インコーポレーテッド | 組織溶接用充填剤材料 |
US5156613A (en) | 1991-02-13 | 1992-10-20 | Interface Biomedical Laboratories Corp. | Collagen welding rod material for use in tissue welding |
US5669934A (en) | 1991-02-13 | 1997-09-23 | Fusion Medical Technologies, Inc. | Methods for joining tissue by applying radiofrequency energy to performed collagen films and sheets |
US5749895A (en) | 1991-02-13 | 1998-05-12 | Fusion Medical Technologies, Inc. | Method for bonding or fusion of biological tissue and material |
US5334191A (en) * | 1992-05-21 | 1994-08-02 | Dix Phillip Poppas | Laser tissue welding control system |
US5292253A (en) | 1992-06-22 | 1994-03-08 | Laser Medical Technology, Inc. | Method for repairing tooth and bone tissue |
US5254113A (en) | 1992-08-31 | 1993-10-19 | Wilk Peter J | Anastomosis method |
US5330974A (en) * | 1993-03-01 | 1994-07-19 | Fibratek, Inc. | Therapeutic fibrinogen compositions |
US5552452A (en) * | 1993-03-15 | 1996-09-03 | Arch Development Corp. | Organic tissue glue for closure of wounds |
EP0696185B1 (en) | 1993-04-28 | 1998-08-12 | Focal, Inc. | Apparatus, product and use related to intraluminal photothermoforming |
US5571216A (en) | 1994-01-19 | 1996-11-05 | The General Hospital Corporation | Methods and apparatus for joining collagen-containing materials |
US5583114A (en) * | 1994-07-27 | 1996-12-10 | Minnesota Mining And Manufacturing Company | Adhesive sealant composition |
US5662643A (en) | 1994-09-28 | 1997-09-02 | Abiomed R & D, Inc. | Laser welding system |
AUPN066795A0 (en) * | 1995-01-20 | 1995-02-16 | Macquarie Research Limited | Method of repair |
US5556414A (en) | 1995-03-08 | 1996-09-17 | Wayne State University | Composite intraluminal graft |
US5713891A (en) | 1995-06-02 | 1998-02-03 | Children's Medical Center Corporation | Modified solder for delivery of bioactive substances and methods of use thereof |
US6189411B1 (en) * | 1999-03-03 | 2001-02-20 | American Equipment Company | Rear end gear pump |
-
1995
- 1995-01-20 AU AUPN0667A patent/AUPN066795A0/en not_active Abandoned
-
1996
- 1996-01-19 DE DE69628408T patent/DE69628408T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1996-01-19 EP EP96900477A patent/EP0804123B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1996-01-19 US US08/875,228 patent/US6211335B1/en not_active Expired - Fee Related
- 1996-01-19 JP JP8521922A patent/JPH11501825A/ja active Pending
- 1996-01-19 CA CA002210894A patent/CA2210894A1/en not_active Abandoned
- 1996-01-19 WO PCT/AU1996/000024 patent/WO1996022054A1/en active IP Right Grant
- 1996-01-19 ES ES96900477T patent/ES2201167T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1996-01-19 AT AT96900477T patent/ATE241319T1/de not_active IP Right Cessation
- 1996-01-19 NZ NZ298721A patent/NZ298721A/en unknown
-
1998
- 1998-04-08 HK HK98102946A patent/HK1003613A1/xx not_active IP Right Cessation
-
2001
- 2001-01-25 US US09/769,585 patent/US6583117B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2003
- 2003-06-23 US US10/601,825 patent/US20050079997A1/en not_active Abandoned
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0804123A1 (en) | 1997-11-05 |
US6583117B2 (en) | 2003-06-24 |
US20020045732A1 (en) | 2002-04-18 |
AUPN066795A0 (en) | 1995-02-16 |
DE69628408T2 (de) | 2004-03-11 |
WO1996022054A1 (en) | 1996-07-25 |
HK1003613A1 (en) | 1998-11-06 |
EP0804123A4 (en) | 1999-01-07 |
NZ298721A (en) | 1999-11-29 |
US6211335B1 (en) | 2001-04-03 |
US20050079997A1 (en) | 2005-04-14 |
ATE241319T1 (de) | 2003-06-15 |
EP0804123B1 (en) | 2003-05-28 |
DE69628408D1 (de) | 2003-07-03 |
JPH11501825A (ja) | 1999-02-16 |
CA2210894A1 (en) | 1996-07-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2201167T3 (es) | Soldadura para la reparacion de tejidos. | |
US7078378B1 (en) | Method of tissue repair II | |
Bass et al. | Laser tissue welding: A comprehensive review of current and future | |
US6323037B1 (en) | Composition for tissue welding and method of use | |
US5669934A (en) | Methods for joining tissue by applying radiofrequency energy to performed collagen films and sheets | |
AU746482B2 (en) | Insertable stent and methods of making and using same | |
Lauto et al. | Laser‐activated solid protein bands for peripheral nerve repair: An in vivo study | |
CA2103727A1 (en) | Filler material for use in tissue welding | |
US4586504A (en) | Nerve connector and method | |
Lauto et al. | Sutureless nerve repair with laser-activated chitosan adhesive: a pilot in vivo study | |
McCarthy et al. | Patency of laser-assisted anastomoses in small vessels: one-year follow-up | |
Pabittei et al. | Ex vivo proof-of-concept of end-to-end scaffold-enhanced laser-assisted vascular anastomosis of porcine arteries | |
Lauto et al. | Laser nerve repair by solid protein band technique. I: Identification of optimal laser dose, power, and solder surface area | |
AU711199B2 (en) | Method of tissue repair | |
Lauto et al. | Laser-activated protein bands for peripheral nerve repair | |
WO2007030892A1 (en) | Method of tissue repair iii | |
Trickett et al. | Laser-activated protein solder for peripheral nerve repair | |
Trickett et al. | Laser welding of vas deferens in rodents: initial experience with fluid solders | |
Lauto et al. | Solubility study of albumin solders for laser tissue‐welding | |
AU768533C (en) | Method of tissue repair II | |
Xie et al. | Sutureless end-to-end ureteral anastomosis using a new albumin stent and diode laser | |
Popovic et al. | Comparison of CO2 laser welding with suture technique for repair of tendons | |
Vo-Dinh | Laser Tissue Welding |